RU2559523C1 - Method of pre-seeding treatment of pathological material for extraction of nocardioformal actinomycetes - Google Patents
Method of pre-seeding treatment of pathological material for extraction of nocardioformal actinomycetes Download PDFInfo
- Publication number
- RU2559523C1 RU2559523C1 RU2014134943/10A RU2014134943A RU2559523C1 RU 2559523 C1 RU2559523 C1 RU 2559523C1 RU 2014134943/10 A RU2014134943/10 A RU 2014134943/10A RU 2014134943 A RU2014134943 A RU 2014134943A RU 2559523 C1 RU2559523 C1 RU 2559523C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- pathological material
- disinfectant
- minutes
- actinomycetes
- nocardioformal
- Prior art date
Links
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к бактериологическим исследованиям, касается способа обработки патологического материала и может быть использовано для выделения нокардиоформных актиномицетов. Способ основан на предпосевной обработке патологического материала и посеве на питательные среды.The invention relates to bacteriological research, relates to a method for processing pathological material and can be used to isolate nocardioform actinomycetes. The method is based on presowing treatment of pathological material and sowing on nutrient media.
По современной классификации микроорганизмов в группе 22 (нокардиоформные актиномицеты) определены роды Nocardia и Rhodococcus [1].According to the modern classification of microorganisms in group 22 (nocardioform actinomycetes), the genera Nocardia and Rhodococcus were determined [1].
Роды Nocardia и Rhodococcus (нокардиоформные актиномицеты), также как роды Corynebacteriwn и Mycobacterium, имеют клеточные стенки IV типа, содержащие в составе клеточной стенки миколовые кислоты, общие антигены, обладают кислотоустойчивостью в различной степени и другими общими признаками. Близкий состав и структура химических компонентов обусловливает не менее близкие биологические свойства. Исследованиями по гибридизации ДНК-РНК установлено близкое генетическое родство быстрорастущих микобактерий, нокардий и родококков, а коэффициент SAB M.phlei и R. spp. настолько высок (0,72), что их характеризуют как отдаленно родственные виды.The genera Nocardia and Rhodococcus (nocardioform actinomycetes), as well as the genera Corynebacteriwn and Mycobacterium, have type IV cell walls that contain mycolic acids, common antigens, have acid resistance to varying degrees, and other common features. The close composition and structure of chemical components determines no less close biological properties. DNA-RNA hybridization studies have established close genetic relationships between fast-growing mycobacteria, nocardia and rhodococci, and the SAB coefficient is M.phlei and R. spp. so high (0.72) that they are characterized as distantly related species.
Результативность бактериологического исследования во многом зависит от предварительной обработки патологического материала.The effectiveness of bacteriological research largely depends on the preliminary processing of pathological material.
В практике микробиологических лабораторий в настоящее время для предпосевной обработки патологического материала для выявления микобактерий используют растворы серной (А.Ф. Коржинская, 1926; К.К. Креслинг, 1929; А.Н. Маккавейская, 1956, метод А.П. Аликаевой, 1971), соляной (Ю.А. Юденич, 1928), щавелевой кислот (метод Гона, Левенштейна-Сумиоши), едкого натра (метод флотации О.В. Мартова, 1971), гипохлорита кальция и других растворов [2, 3]. К недостаткам перечисленных способов следует отнести губительное действие кислот и щелочей на нокардиоформные актиномицеты, коринебактерии и слабокислотоустойчивые микобактерии.In the practice of microbiological laboratories, sulfuric solutions are used for presowing treatment of pathological material for the detection of mycobacteria (A.F. Korzhinskaya, 1926; K.K. Kresling, 1929; A.N. Makkaveyskaya, 1956, method A.P. Alikaeva, 1971), hydrochloric acid (Yu.A. Yudenich, 1928), oxalic acid (Gon, Levenshtein-Sumiosi method), caustic soda (flotation method OV Martova, 1971), calcium hypochlorite and other solutions [2, 3]. The disadvantages of these methods include the destructive effect of acids and alkalis on nocardioform actinomycetes, corynebacteria and weakly acid-resistant mycobacteria.
Цель изобретения - способ обработки патологического материала для выделения нокардиоформных актиномицетов (нокардий и родококков).The purpose of the invention is a method for processing pathological material for the isolation of nocardioform actinomycetes (nocardia and rhodococcus).
Поставленная цель достигается предпосевной обработкой патологического материала дезинфекционным средством «Септустин».This goal is achieved by pre-sowing treatment of pathological material with a disinfectant "Septustine".
Дезинфекционное средство «Септустин» (изготовитель ООО «Уралстинол БИО», Россия) рекомендовано для дезинфекции объектов ветеринарного надзора. Данный препарат из группы катионных ПАВ содержит в качестве дезинфицирующего вещества катамин АБ, а также спирт изопропиловый, неионогенное ПАВ, гидрокарбонат натрия и бромфеноловый синий [4], обладает широким спектром действия в отношении возбудителей инфекционных болезней бактериальной (включая туберкулез), вирусной и грибковой этиологии.Septutin disinfectant (manufacturer of Uralstinol BIO LLC, Russia) is recommended for disinfection of veterinary surveillance facilities. This preparation from the group of cationic surfactants contains catamine AB as a disinfectant, as well as isopropyl alcohol, nonionic surfactant, sodium bicarbonate and bromphenol blue [4], has a wide spectrum of action against pathogens of bacterial infectious diseases (including tuberculosis), viral and fungal etiology .
Сущность способа заключается в предпосевной обработке патологического материала водным раствором дезинфекционного средства "Септустин" в концентрации 0,1% смешиванием в объемном соотношении 1:2 в течение 180 минут при комнатной температуре с последующей двукратной в течение 15 минут отмывкой стерильным физиологическим раствором.The essence of the method consists in the presowing treatment of pathological material with an aqueous solution of the Septutin disinfectant at a concentration of 0.1% by mixing in a volume ratio of 1: 2 for 180 minutes at room temperature, followed by washing twice with sterile physiological saline for 15 minutes.
Пример 1. Воздействие дезинфекционного средства «Септустин» в зависимости от концентрации и экспозиции определяли на культурах микроорганизмов, полученных из ГИСК им. Л.А. Тарасевича и выделенных из патологического материала (Rhodococcus equi №12). Результаты представлены в таблице 1.Example 1. The effect of the disinfectant "Septustine" depending on the concentration and exposure was determined on cultures of microorganisms obtained from GISK them. L.A. Tarasevich and isolated from pathological material (Rhodococcus equi No. 12). The results are presented in table 1.
Как видно из таблицы 1, 0,1% водный раствор дезинфекционного средства «Септустин» при экспозиции 15 минут оказывал бактерицидное действие на все микроорганизмы, при увеличении экспозиции до 30 минут - на E.coli и Staph. aureus, а при увеличении концентрации до 0,25% и при экспозиции 30 минут - на Rhodococcus equi. Бактерицидное действие дезинфекционного средства «Септустин» на все нокардиоформные актиномицеты отмечено при концентрации 0,25% и экспозиции 60 минут.As can be seen from table 1, a 0.1% aqueous solution of the Septutin disinfectant at an exposure of 15 minutes had a bactericidal effect on all microorganisms, with an increase in exposure to 30 minutes on E.coli and Staph. aureus, and with an increase in concentration to 0.25% and with an exposure of 30 minutes - on Rhodococcus equi. The bactericidal effect of the Septutin disinfectant on all nocardioform actinomycetes was observed at a concentration of 0.25% and an exposure of 60 minutes.
Пример 2. Биоматериал (печень, селезенка, легкие, почки, сердце) от белых мышей, зараженных культурой R. equi, измельчали в стерильной ступке стерильными ножницами, кусочки заливали раствором дезинфекционного средства «Септустин» 0,1, и 0,25% концентрации в объемном соотношении 1:2 и оставляли на 15, 30, 60, 120 и 180 минут при комнатной температуре. Затем сливали надосадочную жидкость и промывали стерильным физиологическим раствором дважды в течение 15 минут, хорошо перемешивали и сливали, а кусочки растирали песком стерильным пестиком. Полученную суспензию засевали на питательную среду Левенштейна-Иенсена, посевы инкубировали 15 дней при +37°С. Учет результатов проводили ежедневно. Результаты представлены в таблице 2.Example 2. Biomaterial (liver, spleen, lungs, kidneys, heart) from white mice infected with R. equi culture was crushed in a sterile mortar with sterile scissors, the pieces were poured with a solution of the disinfectant Septupine 0.1, and 0.25% concentration in a volume ratio of 1: 2 and left for 15, 30, 60, 120 and 180 minutes at room temperature. Then the supernatant was drained and washed with sterile saline twice for 15 minutes, mixed well and drained, and the pieces were ground with sand with a sterile pestle. The resulting suspension was seeded on a Levenshtein-Jensen nutrient medium, the crops were incubated for 15 days at + 37 ° C. Analysis was carried out daily. The results are presented in table 2.
Пример 3. Провели культуральное исследование патологического материала (кусочки органов с характерными для туберкулеза изменениями) от коров с положительной реакцией на ППД-туберкулин для млекопитающих из хозяйства, благополучного по туберкулезу. Патологический материал измельчали в стерильной ступке стерильными ножницами, кусочки заливали раствором дезинфекционного средства «Септустин» 0,1% концентрации в объемном соотношении 1:2 и оставляли на 180 минут при комнатной температуре. Затем сливали надосадочную жидкость и промывали стерильным физиологическим раствором дважды в течение 15 минут, хорошо перемешивали и сливали, а кусочки растирали песком стерильным пестиком. Из полученной суспензии производили посевы на питательную среду Левенштейна-Йенсена и помещали в термостат. На вторые сутки выращивания при температуре +37°С отмечали рост в виде крупных слизистых без поверхностного мицелия беловато-желтых колоний. В мазках при окраске по Цилю-Нильсену выявили некислотоустойчивые микроорганизмы, клетки полиморфные - палочки и кокки, которые идентифицировали методом газожидкостной хроматографии (выраженный пик туберкулостеариновой кислоты, низкомолекулярные эфиры жирных кислот с числом углеродных атомов от 12 до 20 и отсутствие высокомолекулярных миколовых кислот) как родококки.Example 3. A cultural study of pathological material (pieces of organs with changes characteristic of tuberculosis) from cows with a positive reaction to PPD-tuberculin for mammals from a tuberculosis-free farm was carried out. The pathological material was crushed in a sterile mortar with sterile scissors, the pieces were poured with a solution of the Septutin disinfectant 0.1% concentration in a volume ratio of 1: 2 and left for 180 minutes at room temperature. Then the supernatant was drained and washed with sterile saline twice for 15 minutes, mixed well and drained, and the pieces were ground with sand with a sterile pestle. From the resulting suspension, crops were plated on Levenshtein-Jensen nutrient medium and placed in a thermostat. On the second day of cultivation at a temperature of + 37 ° C, growth was noted in the form of large mucous membranes without surface mycelium of whitish-yellow colonies. Zil-Nielsen stains showed non-acid-resistant microorganisms, polymorphic cells - rods and cocci, which were identified by gas-liquid chromatography (pronounced peak of tuberculostearic acid, low molecular weight esters of fatty acids with the number of carbon atoms from 12 to 20 and the absence of high molecular weight mycolic acids) as smears .
Пример 4. Провели культуральное исследование патологического материала (лимфатические узлы, печени, легкие) от морских свинок, зараженных Nocardia asteroides. Патологический материал измельчали в стерильной ступке стерильными ножницами, кусочки заливали раствором дезинфекционного средства «Септустин» 0,1, 0,25 и 0,5% концентрации в объемном соотношении 1:2 и оставляли на 30, 60, 120 и 180 минут при комнатной температуре. Затем сливали надосадочную жидкость и промывали стерильным физиологическим раствором дважды в течение 15 минут, хорошо перемешивали и сливали, а кусочки растирали песком стерильным пестиком. Полученную суспензию засевали на питательную среду Левенштейна-Йенсена и инкубировали при +37°С. Учет результатов проводили ежедневно. Первичный рост отмечали через 3-4 дня. Результаты представлены в таблице 3.Example 4. Conducted a cultural study of pathological material (lymph nodes, liver, lungs) from guinea pigs infected with Nocardia asteroides. The pathological material was crushed in a sterile mortar with sterile scissors, the pieces were poured with a solution of the Septutin disinfectant 0.1, 0.25 and 0.5% concentration in a volume ratio of 1: 2 and left for 30, 60, 120 and 180 minutes at room temperature . Then the supernatant was drained and washed with sterile saline twice for 15 minutes, mixed well and drained, and the pieces were ground with sand with a sterile pestle. The resulting suspension was seeded on a Levenshtein-Jensen medium and incubated at + 37 ° C. Analysis was carried out daily. Primary growth was observed after 3-4 days. The results are presented in table 3.
Пример 5. Провели культуральное исследование биоматериала (брыжеечные, заглоточные, подчелюстные, лимфатические узлы, печени, легкие) от пяти коров с положительной реакцией на ППД-туберкулин для млекопитающих способом в соответствии с изобретением. При просматривании посевов учитывали выделение культур и чистоту посевов. В качестве контроля выбран метод А.П. Аликаевой. Результаты представлены в таблице 4.Example 5. Conducted a cultural study of biomaterial (mesenteric, pharyngeal, submandibular, lymph nodes, liver, lungs) from five cows with a positive reaction to PPD-tuberculin for mammals by the method in accordance with the invention. When browsing crops, crop isolation and crop cleanliness were taken into account. A.P. method was chosen as a control. Alikayeva. The results are presented in table 4.
Как видно из таблицы 4, оптимальные показатели (выявляемость нокардиоформных актиномицетов, % пророста) отмечались при предпосевной обработке патологического материала водным раствором дезинфекционного средства «Септустин» 0,1% концентрации с экспозицией 180 минут. При увеличении концентрации и экспозиции нокардиоформные актимециты не выявлялись. При предпосевной обработке по А.П. Аликаевой (1971) нокардиоформные актиномицеты не выявлялись.As can be seen from table 4, the optimal parameters (detectability of nocardioform actinomycetes,% seedlings) were observed when presowing the treatment of pathological material with an aqueous solution of the Septutin disinfectant 0.1% concentration with an exposure of 180 minutes. With an increase in concentration and exposure, nocardioform actimecites were not detected. During pre-sowing treatment according to A.P. Alikayeva (1971) no nocardioform actinomycetes were detected.
Проведенные исследования подтвердили, что обработка патологического материала водным раствором дезинфекционного средства «Септустин» 0,1% концентрации с экспозицией 180 минут сдерживает развитие посторонней микрофлоры (споровых палочковидных форм, плесневых грибков), повышает эффективность очистки, снижает вероятность проростов посторонней микрофлоры, не влияет на интенсивность и характер роста нокардиоформных актиномицетов, что свидетельствует об отсутствии подавляющего действия дезинфекционного средства при заявленных параметрах.Studies have confirmed that the treatment of pathological material with an aqueous solution of Septutin disinfectant 0.1% concentration with an exposure of 180 minutes inhibits the development of extraneous microflora (spore rod-shaped forms, molds), increases the cleaning efficiency, reduces the likelihood of extraneous microflora sprouts, does not affect the intensity and nature of the growth of nocardioform actinomycetes, which indicates the absence of the inhibitory effect of a disinfectant with the stated parameter x.
Источники информацииInformation sources
1. Хоулт Д. и др. Определитель бактерий Берджи. 2 тома. - М.: Мир, 1967.1. Hoult D. et al. Determinant of the bacteria Bergey. 2 volumes. - M .: Mir, 1967.
2. Должанский В.М. и др. Современные методы лабораторной диагностики туберкулеза: Метод. рекомендации. - М., 1992.2. Dolzhansky V.M. et al. Modern methods of laboratory diagnosis of tuberculosis: Method. recommendations. - M., 1992.
3. Кассич Ю.Я. Туберкулез животных и меры борьбы с ним. - Киев, 1990.3. Kassich, Yu.Ya. Animal tuberculosis and measures to combat it. - Kiev, 1990.
4. Наставление по применению препарата «Септустин» для дезинфекции объектов ветнадзора. Уралстинол. - БИО. - 2002.4. Manual on the use of the drug "Septustine" for the disinfection of objects of veterinary surveillance. Uralstinol. - BIO. - 2002.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2014134943/10A RU2559523C1 (en) | 2014-08-26 | 2014-08-26 | Method of pre-seeding treatment of pathological material for extraction of nocardioformal actinomycetes |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2014134943/10A RU2559523C1 (en) | 2014-08-26 | 2014-08-26 | Method of pre-seeding treatment of pathological material for extraction of nocardioformal actinomycetes |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2559523C1 true RU2559523C1 (en) | 2015-08-10 |
Family
ID=53796420
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2014134943/10A RU2559523C1 (en) | 2014-08-26 | 2014-08-26 | Method of pre-seeding treatment of pathological material for extraction of nocardioformal actinomycetes |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2559523C1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2619220C1 (en) * | 2016-01-12 | 2017-05-12 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Научно-исследовательский ветеринарный институт Нечернозёмной зоны Российской Федерации" (ФГБНУ "НИВИ НЗ России") | Method for mycobacteria detection from surfaces |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2190220C1 (en) * | 2001-04-02 | 2002-09-27 | Научно-исследовательский ветеринарный институт Нечерноземной зоны РФ | Method for finding tuberculosis micobacteria |
RU2402781C1 (en) * | 2009-06-23 | 2010-10-27 | Государственное научное учреждение "Прикаспийский зональный НИВИ" Россельхозакадемии | Method of pre-inoculation processing of samples collected from environment objects for release of microbacteria |
RU2473906C1 (en) * | 2011-12-14 | 2013-01-27 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Белгородская государственная сельскохозяйственная академия имени В.Я. Горина" | Method for pre-inoculation processing of pathological material for recovery of l-forms of mycobacteria |
-
2014
- 2014-08-26 RU RU2014134943/10A patent/RU2559523C1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2190220C1 (en) * | 2001-04-02 | 2002-09-27 | Научно-исследовательский ветеринарный институт Нечерноземной зоны РФ | Method for finding tuberculosis micobacteria |
RU2402781C1 (en) * | 2009-06-23 | 2010-10-27 | Государственное научное учреждение "Прикаспийский зональный НИВИ" Россельхозакадемии | Method of pre-inoculation processing of samples collected from environment objects for release of microbacteria |
RU2473906C1 (en) * | 2011-12-14 | 2013-01-27 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Белгородская государственная сельскохозяйственная академия имени В.Я. Горина" | Method for pre-inoculation processing of pathological material for recovery of l-forms of mycobacteria |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Наставление по применению препарата "Сепустин" для дезинфекции объектов ветнадзора. Уралстинол, БИО, 2002,стр. 1-5 * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2619220C1 (en) * | 2016-01-12 | 2017-05-12 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Научно-исследовательский ветеринарный институт Нечернозёмной зоны Российской Федерации" (ФГБНУ "НИВИ НЗ России") | Method for mycobacteria detection from surfaces |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Ordax et al. | Medfly Ceratitis capitata as potential vector for fire blight pathogen Erwinia amylovora: survival and transmission | |
US10264795B2 (en) | Streptomyces badius SP6C4 strain having antimicirobial activity against insect pathogen or strawberry fungal disease pathogen isolated from strawberry pollen and uses thereof | |
Tyagi et al. | Identification and prevention of bacterial contimination on explant used in plant tissue culture labs | |
CN108179115B (en) | Chrysanthemum endophytic spore shell bacteria and application thereof | |
CN108935466A (en) | Methylmalonic acid is preparing the application in nematode killer | |
CN109355208A (en) | A kind of highly pathogenicity biocontrol microorganisms Java cordyceps sinensis and its application | |
Geerinck et al. | Diversity and composition of the microbiome associated with eggs of the Southern green stinkbug, Nezara viridula (Hemiptera: Pentatomidae) | |
RU2559523C1 (en) | Method of pre-seeding treatment of pathological material for extraction of nocardioformal actinomycetes | |
Thapa et al. | Survival of chicken ascarid eggs exposed to different soil types and fungi | |
CN107287142B (en) | One plant inhibits sickle-like bacteria growth and produces serratia marcescens SerEW01 and its application of poison | |
RU2402781C1 (en) | Method of pre-inoculation processing of samples collected from environment objects for release of microbacteria | |
CN110004098B (en) | Bacillus thuringiensis and application thereof | |
CN107667987B (en) | Method for creating intestinal sterile rhynchophorus ferrugineus larva experimental model | |
CN104894149B (en) | A kind of chitinase and its encoding gene to the high virulence of Caenorhabditis elegans | |
Gasz et al. | Bacterial association observations in Lucilia sericata and Lucilia cuprina organs through 16S rRNA gene sequencing | |
Brand et al. | First report on Pythium miriotylum as pathogen on duckweed (Lemna minor L.) in hydroponic systems in Germany | |
AU2021104714A4 (en) | A method for identifying bacterial infection types based on duckweed | |
KR20160148770A (en) | Method for simultaneous sampling and quantification of bacteria and host-based virus | |
Hao et al. | Inactivation of Phytophthora and bacterial species in water by a potential energy-saving heat treatment | |
CN104974949A (en) | Screening method of insecticidal bacteria aiming to marine fish philasterides dicentrarchi antigen | |
CN103333898B (en) | Constructing method and application of transgenic chlamydomonas reinhardtii for expressing epinephelus antibacterial peptide piscidin | |
RU2610412C2 (en) | Method of primary identification of mycobacteria of mycobacterium tuberculosis complex from non-tuberculosis mycobacteria | |
RU2542460C1 (en) | Method for pre-inoculation processing of pathological material for mycobacterial recovery | |
Ramachandiran et al. | Identification and characterization of gut associated bacteria in Epilachna vigintioctopunctata Fab.(Coleoptera: Coccinellidae) | |
RU2321636C1 (en) | Method for bacteriological detection of nocardiomorphous actinomyces |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20160827 |