RU2555750C1 - Method of intraoperative evaluation of peripheral nerves condition - Google Patents

Method of intraoperative evaluation of peripheral nerves condition Download PDF

Info

Publication number
RU2555750C1
RU2555750C1 RU2013157128/15A RU2013157128A RU2555750C1 RU 2555750 C1 RU2555750 C1 RU 2555750C1 RU 2013157128/15 A RU2013157128/15 A RU 2013157128/15A RU 2013157128 A RU2013157128 A RU 2013157128A RU 2555750 C1 RU2555750 C1 RU 2555750C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
nerve
incubation
medium
peripheral nerves
maleate buffer
Prior art date
Application number
RU2013157128/15A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2013157128A (en
Inventor
Татьяна Анатольевна Румянцева
Михаил Леонидович Новиков
Армен Славикович Карапетян
Варвара Витальевна Румянцева
Original Assignee
Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Ярославская государственная медицинская академия" Министерства здравоохранения Российской Федерации
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Ярославская государственная медицинская академия" Министерства здравоохранения Российской Федерации filed Critical Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Ярославская государственная медицинская академия" Министерства здравоохранения Российской Федерации
Priority to RU2013157128/15A priority Critical patent/RU2555750C1/en
Publication of RU2013157128A publication Critical patent/RU2013157128A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2555750C1 publication Critical patent/RU2555750C1/en

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: method consists in production of cryostat sections of nerve, washing them in two portions of maleate buffer, incubation in incubation medium. Incubation is carried out for 30-60 minutes and incubation medium has the following composition: acetylcholine iodide 10 mg; 0.1 M Na-maleate buffer 2 ml; 0.1 M sodium citrate 4 ml; 0.03 M copper sulphate 4 ml; 0.005M potassium ferricianide 4 ml; medium pH constitutes from 7.4 to 7.6 and temperature is from 50 to 55°C.
EFFECT: method by invention makes it possible to evaluate viability of peripheral nerves in short term, which is necessary during reconstructive-restoring and highly technological neurosurgical operations.
2 ex

Description

Изобретение относится к медицине, а именно к реконструктивной микрохирургии, и предназначено для интраоперационной оценки состояния периферических нервов.The invention relates to medicine, namely to reconstructive microsurgery, and is intended for intraoperative assessment of peripheral nerves.

Оценка состояния периферических нервов, банкированных фрагментов нервов представляет значительный интерес для нейрохирурга, т.к. исход восстановительных и реконструктивных операций напрямую зависит от жизнеспособности подшиваемых нервов. Оценить, есть ли в нерве прорастание нервных волокон, сохранен ли в поврежденном нервном стволе обмен медиатора, есть ли аксональный ток, невозможно без применения специальных морфологических методов.Assessing the condition of peripheral nerves, banking fragments of nerves is of considerable interest to a neurosurgeon, because The outcome of reconstructive and reconstructive operations directly depends on the viability of the hemmed nerves. It is impossible to evaluate whether there is a sprouting of nerve fibers in the nerve, whether the mediator exchange is preserved in the damaged nerve trunk, whether there is an axonal current, without the use of special morphological methods.

Известны электрофизиологические методы оценки проводимости по нерву: электростимуляция нерва, электромиография (Одинак М.М., Живолупов С.А. Заболевания и травмы периферической нервной системы (обобщение клинического и экспериментального опыта): руководство для врачей. - М.: СпецЛит, 2009, 384 с). Импульс, вызванный электростимуляцией нерва, направляется по двигательным, чувствительным и смешанным нервам, и характеристики проведения импульса оцениваются с помощью записи потенциалов с мышц, либо непосредственно с нерва. Если нерв поврежден и еще не произошло восстановления контакта с мишенями иннервации, то значение этих методов резко снижается. Кроме того, они не могут использоваться во время восстановительных и реконструктивных микрохирургических операций из-за сложности определения проекции тонких ветвей нервов.Known electrophysiological methods for assessing nerve conduction: electrical stimulation of a nerve, electromyography (Odinak M.M., Zhivolupov S.A. Diseases and injuries of the peripheral nervous system (generalization of clinical and experimental experience): a guide for doctors. - M .: SpetsLit, 2009, 384 s). The impulse caused by electrical stimulation of the nerve is directed along the motor, sensory and mixed nerves, and the characteristics of the impulse are evaluated by recording potentials from the muscles, or directly from the nerve. If the nerve is damaged and contact with the innervation targets has not yet been restored, the value of these methods decreases sharply. In addition, they cannot be used during reconstructive and reconstructive microsurgical operations because of the difficulty in determining the projection of the thin branches of nerves.

Наиболее близким техническим решением (прототипом) предлагаемого способа является метод Karnovsky M.J., Roots L. (Karnovsky M.J., Roots L., 1964 A ′′direct-coloring′′ Thiocholine method for cholinesterase, J. Histochem. Cytochem., 12, 219-22), который используется для выявления положительной активности ацетилхолинэстеразы (АХЭ) в нервной ткани, определения системной принадлежности нервных проводников и изучения особенностей постсинаптической мембраны в нервно-мышечных синапсах соматических мышц (Николаев Г.М. Изменение активности ацетилхолинэстеразы в моторных окончаниях поперечнополосатой мускулатуры при гипоксической гипоксии / Г.М. Николаев // Архив патологии, - 1970. - №3, - с.61-65).The closest technical solution (prototype) of the proposed method is the method Karnovsky MJ, Roots L. (Karnovsky MJ, Roots L., 1964 A ′ ′ direct-coloring ′ ′ Thiocholine method for cholinesterase, J. Histochem. Cytochem., 12, 219- 22), which is used to detect the positive activity of acetylcholinesterase (AChE) in the nervous tissue, to determine the systemic affiliation of nerve conductors and to study the features of the postsynaptic membrane in the neuromuscular synapses of somatic muscles (Nikolaev G.M. Change in acetylcholinesterase activity in the motor ends of striated mus ulatury during hypoxic hypoxia / GM Nikolaev // Archives of Pathology, - 1970. - №3, - s.61-65).

Фермент ацетилхолинэстераза образуется в соме нейрона и транспортируется по аксону к пресинаптическим нервным окончаниям или к нейромышечным синапсам (Диксон М., Уэбб Э., Ферменты, пер. с англ., т.I, М., 1982, с.363-364). Позитивная реакция на АХЭ является признаком сохранения синтетических и транспортных процессов в соме нейрона и его отростках. Позитивная реакция может проявляться только в осевых цилиндрах проводников и не зависит напрямую от состояния миелиновых оболочек. Негативная реакция на АХЭ свидетельствует о том, что в данном фрагменте нерва еще нет прорастающих волокон.The enzyme acetylcholinesterase is formed in the catfish of the neuron and is transported along the axon to the presynaptic nerve endings or to the neuromuscular synapses (Dixon M., Webb E., Enzymes, transl. From English, vol. I, M., 1982, p.363-364) . A positive reaction to AChE is a sign of the preservation of synthetic and transport processes in the catfish of the neuron and its processes. A positive reaction can occur only in the axial cylinders of the conductors and does not depend directly on the state of the myelin sheaths. A negative reaction to AChE indicates that there are no germinating fibers in this fragment of the nerve.

Определение активности ацетилхолинэстеразы (АХЭ) по Карновскому-Рутс выполняется следующим образом: забирают материал, затем изготавливают замороженные срезы, фиксируют образцы в 10% формалине до суток, промывают в двух порциях натрий-малеатного буфера по 5 минут в каждой, инкубируют в специальной среде: ацетилхолин иодид 10 мг; 0,1М Na-малеатный буфер 2 мл; 0,1М цитрат натрия 4 мл; 0,03М сульфат меди 4 мл; 0,005М феррицианид калия 4 мл, ингибитор неспецифической холинэстеразы (1,0 мл 10-4 М изо-ОМФА) при температуре 4°С, рН 6,0-24 часа, промывают дистиллированной водой, заключают в бальзам, микроскопируют. Общая длительность реакции составляет 18-24 часа.The determination of the activity of acetylcholinesterase (AChE) according to Karnowski-Roots is carried out as follows: take the material, then make frozen sections, fix the samples in 10% formalin for up to a day, wash in two portions of sodium maleate buffer for 5 minutes each, incubate in a special medium: acetylcholine iodide 10 mg; 0.1 M Na-maleate buffer 2 ml; 0.1 M sodium citrate 4 ml; 0.03 M copper sulfate 4 ml; 0.005 M potassium ferricyanide 4 ml, nonspecific cholinesterase inhibitor (1.0 ml 10-4 M iso-OMF) at a temperature of 4 ° C, pH 6.0-24 hours, washed with distilled water, enclosed in a balm, microscopic. The total reaction time is 18-24 hours.

Этот метод является специфичным для выявления определенной фракции ацетилхолинэстеразы.This method is specific for detecting a specific fraction of acetylcholinesterase.

Недостатки этого метода следующие: сложность и длительность процедуры, вследствие чего невозможность использования его интраоперационно.The disadvantages of this method are: the complexity and duration of the procedure, as a result of which the inability to use it intraoperatively.

Целью предлагаемого способа является упрощение процедуры и сокращение времени определения состояния периферического нерва.The aim of the proposed method is to simplify the procedure and reduce the time to determine the state of the peripheral nerve.

Поставленная цель достигается тем, что изменяется режим инкубации: время инкубации от 30 до 60 мин, и состав инкубационной среды: отсутствует ингибитор неспецифической холинэстеразы, рН среды составляет от 7,4 до 7,6, температура от 50 до 55°C.This goal is achieved by changing the incubation mode: incubation time from 30 to 60 minutes, and the composition of the incubation medium: there is no inhibitor of nonspecific cholinesterase, the pH of the medium is from 7.4 to 7.6, and the temperature is from 50 to 55 ° C.

Предлагаемый способ оценки состояния периферических нервов по активности АХЭ позволяет за короткий промежуток времени провести исследование их жизнеспособности, что дает возможность использовать его интраоперационно.The proposed method for assessing the condition of peripheral nerves by AChE activity allows for a short period of time to conduct a study of their viability, which makes it possible to use it intraoperatively.

Новизна предлагаемого способа заключается в том, что значительно сокращается время инкубации, инкубационная среда имеет более простой состав: ацетилхолин иодид 10 мг; 0,1М Na-малеатный буфер 2 мл; 0,1М цитрат натрия 4 мл; 0,03М сульфат меди 4 мл; 0,005М феррицианид калия 4 мл, а ее рН составляет от 7,4 до 7,6; температура от 50 до 55°C.The novelty of the proposed method lies in the fact that the incubation time is significantly reduced, the incubation medium has a simpler composition: acetylcholine iodide 10 mg; 0.1 M Na-maleate buffer 2 ml; 0.1 M sodium citrate 4 ml; 0.03 M copper sulfate 4 ml; 0.005 M potassium ferricyanide 4 ml, and its pH is from 7.4 to 7.6; temperature from 50 to 55 ° C.

Технические решения, имеющие признаки, совпадающие с отличительными признаками предлагаемого нами способа, не выявлены, что позволяет сделать вывод о соответствии заявляемого способа критерию «изобретательский уровень».Technical solutions that have features that match the distinguishing features of our proposed method are not identified, which allows us to conclude that the proposed method meets the criterion of "inventive step".

Предлагаемый способ осуществляется следующим образом: во время операции забирают фрагмент нерва, затем изготавливают криостатные срезы. Полученные срезы наклеивают на предметные стекла, промывают в двух порциях малеатного буфера, помещают в инкубационную среду следующего состава: ацетилхолин иодид 10 мг; 0,1М Na-малеатный буфер 2 мл; 0,1М цитрат натрия 4 мл; 0,03М сульфат меди 4 мл; 0,005М феррицианид калия 4 мл, при температуре от 50 до 55°C, рН 7,4-7,6. Время инкубации 30-60 минут. После инкубации проводят микроскопию срезов для выявления активности ацетилхолинэстеразы (АХЭ). Если реакция на ацетилхолинэстеразу позитивна, нерв считается жизнеспособным; если негативна - нерв оценивается как нежизнеспособный. Срезы обезвоживают, заключают в бальзам, фотографируют для документирования.The proposed method is as follows: during the operation, a nerve fragment is taken, then cryostatic sections are made. The obtained sections are glued onto slides, washed in two portions of maleate buffer, placed in an incubation medium of the following composition: acetylcholine iodide 10 mg; 0.1 M Na-maleate buffer 2 ml; 0.1 M sodium citrate 4 ml; 0.03 M copper sulfate 4 ml; 0.005 M potassium ferricyanide 4 ml, at a temperature of 50 to 55 ° C, pH 7.4-7.6. The incubation time is 30-60 minutes. After incubation, microscopy of the sections is carried out to detect the activity of acetylcholinesterase (AChE). If the reaction to acetylcholinesterase is positive, the nerve is considered viable; if negative, the nerve is assessed as nonviable. Slices are dehydrated, enclosed in a balm, photographed for documentation.

Пример 1. Пациент Т. 27 лет, диагноз: частичный левосторонний паралич лицевого нерва. Во время операции для определения состояния ствола лицевого нерва был взят отрезок нерва длиной 0,3 см. Отрезок нерва доставили в лабораторию, приготовили криостатные срезы 40 мкм, промывали их в двух порциях малеатного буфера, помещали в инкубационную среду с рН 7,4, температурой 52°C, время инкубации 45 мин. Через 45 минут срезы промыли в дистиллированной воде и произвели микроскопирование. В результате было установлено, что активность ацетилхолинэстеразы в стволе положительна, ствол нерва жизнеспособный. Затем произвели восстановление поврежденного лицевого нерва с помощью нервного аутотрансплантата, вшитого между стволом лицевого нерва и его скуловой ветвью. В качестве нервного аутотрансплантата был использован икроножный нерв. Достигнуто восстановление мимики левой стороны лица.Example 1. Patient T., 27 years old, diagnosis: partial left-sided paralysis of the facial nerve. During the operation, a 0.3 cm length of a nerve was taken to determine the condition of the facial nerve trunk. A nerve segment was delivered to the laboratory, 40 μm cryostat sections were prepared, washed in two portions of maleate buffer, and placed in an incubation medium with a pH of 7.4 and temperature 52 ° C, incubation time 45 minutes After 45 minutes, the sections were washed in distilled water and microscopy was performed. As a result, it was found that the activity of acetylcholinesterase in the trunk is positive, the nerve trunk is viable. Then, the damaged facial nerve was restored using a nerve autograft sewn between the trunk of the facial nerve and its zygomatic branch. The calf nerve was used as a nerve autograft. A restoration of facial expressions of the left side of the face is achieved.

Пример 2. Больной М. 35 лет поступил в клинику с диагнозом: повреждение правого плечевого сплетения. Выполнялась операция по восстановлению целостности поврежденных нервов. Во время операции было обнаружено повреждение срединного нерва и неврома на протяжении. Была удалена часть нерва, которая содержала неврому. После удаления части поврежденного нерва возникла необходимость пластики нерва икроножными нервными аутотрансплантатами, так как был дефект нерва 7 см. После чего возник вопрос: не поврежден ли нерв проксимальнее? Для оценки состояния проксимальной части срединного нерва была взята часть нерва 0,3 см для интраоперационной гистохимической оценки состояния. Данный образец был доставлен в лабораторию, где образцы нерва замораживали в криостате и изготавливали криостатные срезы, 40 мкм. Срезы промывали в двух порциях буферного раствора (0,1М Na-малеатный буфер, рН=7,6). Далее срезы помещались в инкубационную среду с рН=7,6. Инкубировали в термостате при температуре 55°C в течение 30 минут. Через 30 минут срезы промывали в дистиллированной воде и производили микроскопирование. В результате было установлено, что нерв на данном уровне имеет положительную ацетилхолинэстеразную активность, что дало возможность сократить расстояние между поврежденными нервами и тем самым уменьшить размеры икроножных нервных аутотрансплантатов для замещения дефекта нерва. В результате оперативного вмешательства появилась подвижность правой кисти.Example 2. Patient M., 35 years old, was admitted to the hospital with a diagnosis of damage to the right brachial plexus. An operation was performed to restore the integrity of damaged nerves. During the operation, damage to the median nerve and neuroma throughout was detected. The part of the nerve that contained the neuroma was removed. After removal of a part of the damaged nerve, there was a need for plastic surgery of the nerve with gastrocnemius nerve autografts, since there was a nerve defect of 7 cm. Then the question arose: is the nerve more proximal? To assess the state of the proximal part of the median nerve, a 0.3 cm part of the nerve was taken for intraoperative histochemical assessment of the condition. This sample was delivered to the laboratory, where nerve samples were frozen in a cryostat and cryostatic sections, 40 μm, were made. Sections were washed in two portions of a buffer solution (0.1 M Na-maleate buffer, pH = 7.6). Next, the sections were placed in an incubation medium with pH = 7.6. Incubated in a thermostat at 55 ° C for 30 minutes. After 30 minutes, the sections were washed in distilled water and microscopy was performed. As a result, it was found that the nerve at this level has positive acetylcholinesterase activity, which made it possible to reduce the distance between the damaged nerves and thereby reduce the size of the calf nerve autografts to replace the nerve defect. As a result of surgery, the mobility of the right hand appeared.

Предлагаемый способ использовался в хирургической клинике при операциях аутотрансплантации периферических нервов.The proposed method was used in a surgical clinic for operations of autologous transplantation of peripheral nerves.

Claims (1)

Способ интраоперационной оценки состояния периферических нервов путем выявления положительной активности ацетилхолинэстеразы, заключающийся в изготовлении криостатных срезов нерва, промывании их в двух порциях малеатного буфера, инкубации в инкубационной среде, отличающийся тем, что инкубацию производят в течение 30-60 минут в инкубационной среде, которая имеет следующий состав: ацетилхолин иодид 10 мг; 0,1М Na-малеатный буфер 2 мл; 0,1М цитрат натрия 4 мл; 0,03М сульфат меди 4 мл; 0,005М феррицианид калия 4 мл, pH от 7,4 до 7,6 и температуру от 50 до 55°C. The method of intraoperative assessment of the condition of peripheral nerves by identifying the positive activity of acetylcholinesterase, which consists in the manufacture of cryostatic sections of the nerve, washing them in two portions of maleate buffer, incubation in an incubation medium, characterized in that the incubation is carried out for 30-60 minutes in an incubation medium that has following composition: acetylcholine iodide 10 mg; 0.1 M Na-maleate buffer 2 ml; 0.1 M sodium citrate 4 ml; 0.03 M copper sulfate 4 ml; 0.005 M potassium ferricyanide 4 ml, pH 7.4 to 7.6 and temperature 50 to 55 ° C.
RU2013157128/15A 2013-12-23 2013-12-23 Method of intraoperative evaluation of peripheral nerves condition RU2555750C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2013157128/15A RU2555750C1 (en) 2013-12-23 2013-12-23 Method of intraoperative evaluation of peripheral nerves condition

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2013157128/15A RU2555750C1 (en) 2013-12-23 2013-12-23 Method of intraoperative evaluation of peripheral nerves condition

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2013157128A RU2013157128A (en) 2015-06-27
RU2555750C1 true RU2555750C1 (en) 2015-07-10

Family

ID=53497226

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2013157128/15A RU2555750C1 (en) 2013-12-23 2013-12-23 Method of intraoperative evaluation of peripheral nerves condition

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2555750C1 (en)

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2178984C2 (en) * 1998-08-17 2002-02-10 Нижегородский государственный научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии Method for diagnosing peripheral nerve injuries
RU2220406C1 (en) * 2002-07-08 2003-12-27 Нижегородский государственный научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии Method for intraoperation monitoring of blood supply of nerve trunk at microsurgical epineural suture
RU2260371C1 (en) * 2004-03-30 2005-09-20 Государственное учреждение "Нижегородский научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии Министерства здравоохранения Россйиской Федерации" Method for making intra-operative determination of surgical intervention tactics in the peripheral nerve compression cases
RU2305486C1 (en) * 2005-12-05 2007-09-10 ФГУ "Саратовский научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии Росздрава" (СарНИИТО) Intraoperative method for diagnosing nerve injuries cases
RU2492813C1 (en) * 2012-05-25 2013-09-20 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Саратовский научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "СарНИИТО" Минздрава России) Method of selecting surgical tactics of treating injury of peripheral nerve with impairment of conductivity

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2178984C2 (en) * 1998-08-17 2002-02-10 Нижегородский государственный научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии Method for diagnosing peripheral nerve injuries
RU2220406C1 (en) * 2002-07-08 2003-12-27 Нижегородский государственный научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии Method for intraoperation monitoring of blood supply of nerve trunk at microsurgical epineural suture
RU2260371C1 (en) * 2004-03-30 2005-09-20 Государственное учреждение "Нижегородский научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии Министерства здравоохранения Россйиской Федерации" Method for making intra-operative determination of surgical intervention tactics in the peripheral nerve compression cases
RU2305486C1 (en) * 2005-12-05 2007-09-10 ФГУ "Саратовский научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии Росздрава" (СарНИИТО) Intraoperative method for diagnosing nerve injuries cases
RU2492813C1 (en) * 2012-05-25 2013-09-20 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Саратовский научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "СарНИИТО" Минздрава России) Method of selecting surgical tactics of treating injury of peripheral nerve with impairment of conductivity

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Karnovsky M.J. et al. A "direct-coloring" Thiocholine method for cholinesterase. " J.Histochem.Cytochem., 1964, 12, p.219-222. *

Also Published As

Publication number Publication date
RU2013157128A (en) 2015-06-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Bryant et al. Identification of regenerative roadblocks via repeat deployment of limb regeneration in axolotls
Han et al. Basal lamina strengthens cell membrane integrity via the laminin G domain-binding motif of α-dystroglycan
Gompelman et al. Update on the role of infection and biofilms in wound healing: pathophysiology and treatment
Foreman et al. Role of bacterial and fungal biofilms in chronic rhinosinusitis
Deng et al. Identification of an intraocular microbiota
De Berdt et al. Dental apical papilla as therapy for spinal cord injury
Jeffery Marano et al. Secreted biofilm factors adversely affect cellular wound healing responses in vitro
Brandenburg et al. Development of Pseudomonas aeruginosa biofilms in partial-thickness burn wounds using a Sprague-Dawley rat model
Li et al. The cellular and molecular mechanisms of tissue repair and regeneration as revealed by studies in Xenopus
Karim et al. Discordance between histologic and visual assessment of tissue viability in excised burn wound tissue
Calhoun et al. Beyond linear elastic modulus: viscoelastic models for brain and brain mimetic hydrogels
Gruber et al. Clinical utility of a polymerase chain reaction assay in culture-negative necrotizing otitis externa
Ramos Inflammation as an animal development phenomenon
Garvican et al. Exposure of a tendon extracellular matrix to synovial fluid triggers endogenous and engrafted cell death: a mechanism for failed healing of intrathecal tendon injuries
Imperadore et al. Nerve regeneration in the cephalopod mollusc Octopus vulgaris: label-free multiphoton microscopy as a tool for investigation
Skokan et al. Cell sorting in Hydra vulgaris arises from differing capacities for epithelialization between cell types
Nett et al. Modeling of fungal biofilms using a rat central vein catheter
Góngora et al. Evaluating the Effect of Sarconesiopsis magellanica (Diptera: Calliphoridae) Larvae‐Derived Haemolymph and Fat Body Extracts on Chronic Wounds in Diabetic Rabbits
RU2555750C1 (en) Method of intraoperative evaluation of peripheral nerves condition
EP2279264A1 (en) Method for characterising the biological activity of helminth eggs, in particular trichuris eggs
Abdulrahim et al. Molecular detection of biofilm-producing Staphylococcus aureus isolates from national orthopaedic Hospital Dala, Kano State, Nigeria
Hillje et al. Utilization of stem cells to model Parkinson's disease–current state and future challenges
Roselló‐Díez et al. Regulative patterning in limb bud transplants is induced by distalizing activity of apical ectodermal ridge signals on host limb cells
Hartley Outcomes of treatments for keratomalacia in dogs and cats: a systematic review of the published literature including non‐randomised controlled and non‐controlled studies
Burrough et al. Spatial distribution of putative growth factors in the guinea pig placenta and the effects of these factors, plasma, and bile on the growth and chemotaxis of Campylobacter jejuni

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20161224