RU2510398C2 - Способ выделения низкомолекулярных пептидов - Google Patents

Способ выделения низкомолекулярных пептидов Download PDF

Info

Publication number
RU2510398C2
RU2510398C2 RU2012123195/10A RU2012123195A RU2510398C2 RU 2510398 C2 RU2510398 C2 RU 2510398C2 RU 2012123195/10 A RU2012123195/10 A RU 2012123195/10A RU 2012123195 A RU2012123195 A RU 2012123195A RU 2510398 C2 RU2510398 C2 RU 2510398C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
molecular weight
peptides
inactivation
kda
erythromass
Prior art date
Application number
RU2012123195/10A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2012123195A (ru
Inventor
Лариса Владимировна Волкова
Александр Викторович Казьянин
Дарья Юрьевна Мальгина
Original Assignee
Лариса Владимировна Волкова
Александр Викторович Казьянин
Дарья Юрьевна Мальгина
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Лариса Владимировна Волкова, Александр Викторович Казьянин, Дарья Юрьевна Мальгина filed Critical Лариса Владимировна Волкова
Priority to RU2012123195/10A priority Critical patent/RU2510398C2/ru
Publication of RU2012123195A publication Critical patent/RU2012123195A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2510398C2 publication Critical patent/RU2510398C2/ru

Links

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Abstract

Изобретение относится к биотехнологии, а именно к способу выделения низкомолекулярных пептидов из сырья животного происхождения, которые могут служить в качестве биологически активных веществ при создании фармацевтических или косметических композиций. Способ включает ферментативный гидролиз исходного сырья, центрифугирование с последующей стерилизующей фильтрацией полученной субстанции через мелкопористые фильтры с диаметром пор 0,2 мкм. В качестве исходного сырья используют эритромассу крови доноров, которую предварительно подвергают гемолизу, вирусинактивации, инактивации фермента после ферментативного гидролиза. Проводят осветление раствором перекиси водорода с конечной концентрацией 0,83% с последующим выдерживанием при 66 °С в течение 15 мин. Изобретение позволяет выделить низкомолекулярные пептиды и повысить их биологическую активность. 2 табл., 1 пр.

Description

Изобретение относится к биотехнологии, а именно к способам выделения низкомолекулярных пептидов из сырья животного происхождения, которые могут служить в качестве биологически активных веществ при создании фармацевтических или косметических композиций.
Известно, что естественные низкомолекулярные пептиды с молекулярной массой до 15 кДа способны поддерживать гомеостаз организма, проявляя разнообразную активность - антибактериальную, противовирусную, антиоксидантную, регенеративную. Пептиды с молекулярной массой менее 3 кДа имеют повышенную биодоступность при наружном применении. Обзор литературы показывает, что в результате ограниченного протеолиза биологически активного белка - предшественника-гемоглобина образуются пептиды, модулирующие функции иммунной, нервной, эндокринной, сердечно-сосудистой и других систем организма [Малкова Н.В. Р-эндорфинподобный пептид иммунорфин: свойства и механизм действия. Дис.к.б.н., М., 2002. 121 с.].
В качестве прототипа принято описание изобретения «Способ выделения низкомолекулярных пептидов» к патенту RU 2416243, МПК A23J 1/20, опубликовано: 20.04.2011, бюл. №11.
Способ осуществляют следующим образом. Получают гидролизат ферментативным гидролизом молозивной казеиново-сывороточной массы с использованием 0,3-0,6 г панкреатина на 1 л гидролизуемой смеси в течение 3-4 часов и с коррекцией среды 25%-ным водным раствором аммиака. К полученному гидролизату добавляют 300 г сефадекса G-25, оставляют на 10 мин, смесь центрифугируют при 3000 об/мин в течение 20 минут. Надосадочный раствор удаляют, набухший гель элюируют дистиллированной водой, вновь центрифугируют при 3000 об/мин в течение 20 минут. Полученные жидкие фракции стерилизуют фильтрацией через мелкопористые фильтры с диаметром пор 0,2 мкм. Из одного литра гидролизата получают 118-123 мл фракции, содержащей низкомолекулярные пептиды с молекулярной массой от 3 до 15 кДа. Для получения сухой формы фракции подвергают лиофильному высушиванию. Наличие низкомолекулярных пептидов во фракции проверяют электрофорезом в ПААГ. В прототипе дано описание выделенных пептидных фракций (табл.1).
Таблица 1
Содержание низкомолекулярных пептидов в гидролизате молозивной казеиново-сывороточной массы (электрофорез в ПААГ)
%±m
Пептиды с молекулярной массой от 7 до 14 кДа 9,3±4,7
Пептиды с молекулярной массой от 3 до 7 кДа 54,3±14,0
Аминокислоты (молекулярная масса менее 3 кДа) 36,4±4,2
Данные табл.1 показывают, что использование предлагаемого способа выделения низкомолекулярных пептидов из гидролизатов молозивной казеиново-сывороточной массы позволяет получить пептиды с молекулярной массой от 3 до 14 кДа с преобладанием пептидов, имеющих молекулярную массу от 3 до 7 кДа.
Признаки изобретения, общие с прототипом, заключаются в наличии ферментативного гидролиза исходного сырья, центрифугировании с последующей стерилизующей фильтрацией полученной субстанции через мелкопористые фильтры с диаметром пор 0,2 мкм.
Недостатком прототипа является способ выделения пептидов с использованием сефадекса G-25, обладающего высокой селективностью по молекулярной массе и способного удерживать до элюции узкий спектр пептидов с молекулярной массой от 1 до 5 кДа, что приводит к удалению большей части низкомолекулярных пептидов с другой молекулярной массой вместе с надосадочной жидкостью после центрифугирования, снижая тем самым биологическую ценность гидролизата.
Задача, решаемая изобретением, заключается в повышении биологической активности пептидов.
Технический результат, обеспечивающий решение поставленной задачи, заключается в снижении молекулярной массы пептидов.
Технический результат достигается тем, что в способе выделения низкомолекулярных пептидов, включающем ферментативный гидролиз исходного сырья, центрифугирование с последующей стерилизующей фильтрацией полученной субстанции через мелкопористые фильтры с диаметром пор 0,2 мкм, согласно изобретению в качестве исходного сырья используют эритромассу крови доноров, которую предварительно подвергают гемолизу, вирусинактивации, инактивации фермента после ферментативного гидролиза, осветлению раствором перекиси водорода с конечной концентрацией 0,83% с последующим выдерживанием при 66°С в течение 15 мин.
Использование в качестве исходного сырья эритромассы крови доноров, включающей в свой состав широкий спектр низкомолекулярных пептидов, обеспечивает дальнейшую возможность их выделения в технологии. Осуществление операций гемолиза, вирусинактивации, инактивации фермента после ферментативного гидролиза и осветления позволяет выделить больший спектр низкомолекулярных пептидов и изготовить необходимую композицию на их основе.
Признаки изобретения, отличающиеся от прототипа, заключаются в использовании в качестве исходного сырья эритромассы крови доноров, которую предварительно подвергают гемолизу, вирусинактивации, инактивации фермента после ферментативного гидролиза, осветлению раствором перекиси водорода с конечной концентрацией 0,83% с последующим выдерживанием при 66 °С в течение 15 мин.
Способ осуществляют следующим образом.
В качестве сырья используют эритромассу крови доноров. Отобранная для переработки эритромасса должна пройти вирусологический контроль (HBS-антиген к вирусу гепатита В, антитела к вирусу гепатита С и ВИЧ отсутствуют), рН (6,81±0,23), содержание аминного азота (249,90±36,35) мг%. Физико-химические параметры могут варьироваться в зависимости от сезона кроводачи, возраста и пола донора.
Гидролизат получают ферментативным гидролизом предварительно гемолизированной и вирусинактивированной эритромассы крови доноров с 2% пепсина от исходного объема в течение 144 ч и с коррекцией среды (0,01-0,1)М раствором соляной кислоты до рН (1,5-2,0), инактивируют фермент, осветляют гидролизат раствором перекиси водорода с конечной концентрацией 0,83% с последующим выдерживанием при 66°С в течение 15 мин и осаждают балластные вещества методом центрифугирования при 1,3*103 об/мин в течение 15 мин. Полученную жидкую фракцию подвергают стерилизующей фильтрации через мелкопористые фильтры с диаметром пор 0,2 мкм. Определение молекулярной массы пептидов в гидролизате проводят методом высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ). С 1 л исходного сырья эритромассы получают (100-110) г сухого вещества, что соответствует содержанию аминного азота (390-430) мг%, представленного низкомолекулярными пептидами, аминокислотами (табл.2).
Таблица 2
Содержание низкомолекулярных пептидов в гидролизате эритромассы (метод ВЭЖХ)
%±m
Пептиды с молекулярной массой от 4,5 до 6,0 кДа 89,00±1,20
Пептиды с молекулярной массой от 2 до 4,5 кДа 7,00±0,12
Мелкие пептиды и аминокислоты с молекулярной массой до 1,0 кДа 4,10±0,09
Данные таблицы 2 показывают, что использование предлагаемого способа выделения низкомолекулярных пептидов из эритромассы позволяет получить пептиды с молекулярной массой до 6,0 кДа с преобладанием пептидов, имеющих молекулярную массу от 4,5 до 6,0 кДа (до 90%). Нужно отметить, что при хроматографии образцов обнаруживаются пептиды с молекулярной массой от 2,0 до 4,5 кДа и до 1,0 кДа. Способ обеспечивает получение депротеинизированного раствора, содержащего спектр низкомолекулярных пептидов до 6 кДа, без потерь на фракционирование.

Claims (1)

  1. Способ выделения низкомолекулярных пептидов, включающий ферментативный гидролиз исходного сырья, центрифугирование с последующей стерилизующей фильтрацией полученной субстанции через мелкопористые фильтры с диаметром пор 0,2 мкм, отличающийся тем, что в качестве исходного сырья используют эритромассу крови доноров, которую предварительно подвергают гемолизу, вирусинактивации, инактивации фермента после ферментативного гидролиза, осветлению раствором перекиси водорода с конечной концентрацией 0,83% с последующим выдерживанием при 66 °С в течение 15 мин.
RU2012123195/10A 2012-06-05 2012-06-05 Способ выделения низкомолекулярных пептидов RU2510398C2 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2012123195/10A RU2510398C2 (ru) 2012-06-05 2012-06-05 Способ выделения низкомолекулярных пептидов

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2012123195/10A RU2510398C2 (ru) 2012-06-05 2012-06-05 Способ выделения низкомолекулярных пептидов

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2012123195A RU2012123195A (ru) 2013-12-10
RU2510398C2 true RU2510398C2 (ru) 2014-03-27

Family

ID=49682804

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2012123195/10A RU2510398C2 (ru) 2012-06-05 2012-06-05 Способ выделения низкомолекулярных пептидов

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2510398C2 (ru)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2729016C1 (ru) * 2019-10-29 2020-08-04 Игорь Александрович Базиков Способ выделения природных антимикробных пептидов из лейкоцитарно-эритроцитарно-тромбоцитарной массы крови
RU2813979C2 (ru) * 2022-03-29 2024-02-20 Игорь Александрович Базиков Способ выделения эндогенных антимикробных пептидов из плацентарной ткани

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2737730C2 (ru) * 2019-05-13 2020-12-02 федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Пермский национальный исследовательский политехнический университет" Способ фракционирования лейкоцитарных белков

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0416416B1 (en) * 1989-09-04 1993-12-01 SCLAVO S.p.A. Method for purifying low molecular weight compounds of peptide or pseudo-peptide structure
RU2076715C1 (ru) * 1991-11-05 1997-04-10 Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток им.Мечникова Способ получения препарата "аффинолейкин" для противоинфекционной иммунотерапии
KR20040004347A (ko) * 2003-12-24 2004-01-13 주식회사 신동방 저분자 대두 펩타이드의 제조방법
RU2416243C2 (ru) * 2008-12-04 2011-04-20 Федеральное государственное учреждение науки "Ростовский научно-исследовательский институт микробиологии и паразитологии" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФГУН РостовНИИМП Роспотребнадзора) Способ выделения низкомолекулярных пептидов

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0416416B1 (en) * 1989-09-04 1993-12-01 SCLAVO S.p.A. Method for purifying low molecular weight compounds of peptide or pseudo-peptide structure
RU2076715C1 (ru) * 1991-11-05 1997-04-10 Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток им.Мечникова Способ получения препарата "аффинолейкин" для противоинфекционной иммунотерапии
KR20040004347A (ko) * 2003-12-24 2004-01-13 주식회사 신동방 저분자 대두 펩타이드의 제조방법
RU2416243C2 (ru) * 2008-12-04 2011-04-20 Федеральное государственное учреждение науки "Ростовский научно-исследовательский институт микробиологии и паразитологии" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФГУН РостовНИИМП Роспотребнадзора) Способ выделения низкомолекулярных пептидов

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2729016C1 (ru) * 2019-10-29 2020-08-04 Игорь Александрович Базиков Способ выделения природных антимикробных пептидов из лейкоцитарно-эритроцитарно-тромбоцитарной массы крови
RU2813979C2 (ru) * 2022-03-29 2024-02-20 Игорь Александрович Базиков Способ выделения эндогенных антимикробных пептидов из плацентарной ткани

Also Published As

Publication number Publication date
RU2012123195A (ru) 2013-12-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Bah et al. Generation of bioactive peptide hydrolysates from cattle plasma using plant and fungal proteases
CN104250285B (zh) 一种大黄鱼鱼肉抗氧化肽及其制备方法和用途
Chauhan et al. Bioactive peptides: Synthesis, functions and biotechnological applications
JP5437378B2 (ja) ヒャッポダ由来のヘモコアグラーゼ
US20070017447A1 (en) Avian eggshell membrane polypeptide extraction via fermentation process
CN116063386B (zh) 一种鹿角盘免疫活性肽及其制备方法和应用
RU2510398C2 (ru) Способ выделения низкомолекулярных пептидов
CN104945484A (zh) 一种抗菌肽及其制备方法与应用
CN105648010B (zh) 一种激活Nrf2-ARE通路的双髻鲨鱼肉抗氧化肽的制备方法
CN109369781B (zh) 一种麒麟菜抗氧化四肽及其应用
KR20150081789A (ko) 난백 단백질 연속분리공정 방법
RU2416243C2 (ru) Способ выделения низкомолекулярных пептидов
US9492486B2 (en) Preparation of bee venom with allergenic components removed
Hou et al. Extraction, Purification and characterization of collagen peptide prepared from skin hydrolysate of Sturgeon fish
RU2729016C1 (ru) Способ выделения природных антимикробных пептидов из лейкоцитарно-эритроцитарно-тромбоцитарной массы крови
RU2737730C2 (ru) Способ фракционирования лейкоцитарных белков
Mohammad et al. Characteristics of enzymatic hydrolysis of protein from different food sources and potential separation techniques
KR20140091228A (ko) 계란 난백으로부터 라이소자임과 오보알부민을 연속적으로 분리추출하는 추출방법
Salvado et al. Enzymatic production of bioactive peptides from whey proteins: Their active role and potential health benefits
CN111004305B (zh) 姬松茸小肽及其制备方法和应用
RU2415943C1 (ru) Биологически активный пептид, полученный из молочного белка
US2432970A (en) Method of reducing the pyrogen contents of parenteral solutions
RU2799637C1 (ru) Способ получения биологически активного пептидно-аминокислотного препарата на основе плазмы крови человека
RU2745443C1 (ru) Способ получения средства, обладающего антигипоксической, регенеративной активностью
CN105622719B (zh) 一种激活Nrf2-ARE通路的双髻鲨鱼肉抗氧化肽的用途

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20140606