RU2508553C1 - Способ определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостях и тест-система - Google Patents

Способ определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостях и тест-система Download PDF

Info

Publication number
RU2508553C1
RU2508553C1 RU2012141547/15A RU2012141547A RU2508553C1 RU 2508553 C1 RU2508553 C1 RU 2508553C1 RU 2012141547/15 A RU2012141547/15 A RU 2012141547/15A RU 2012141547 A RU2012141547 A RU 2012141547A RU 2508553 C1 RU2508553 C1 RU 2508553C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
carrier
solution
quantum dots
column
conjugate
Prior art date
Application number
RU2012141547/15A
Other languages
English (en)
Inventor
Евгений Петрович Гребенников
Наталия Владимировна Белоглазова
Ирина Юрьевна Горячева
Вагиз Равилевич Курбангалеев
Елена Сергеевна Сперанская
Павел Сергеевич Шмелин
Original Assignee
Евгений Петрович Гребенников
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Евгений Петрович Гребенников filed Critical Евгений Петрович Гребенников
Priority to RU2012141547/15A priority Critical patent/RU2508553C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2508553C1 publication Critical patent/RU2508553C1/ru

Links

Images

Landscapes

  • Investigating Or Analysing Materials By The Use Of Chemical Reactions (AREA)
  • Investigating, Analyzing Materials By Fluorescence Or Luminescence (AREA)

Abstract

Группа изобретений относится к области биотехнологии и может быть использована для повышения эффективности и достоверности определения уровня токсикантов в различных средах путем проведения твердофазного иммуноферментного анализа. Способ, осуществляемый путем проводимого в колонке тест-системы иммуноферментного анализа, включает размещение в колонке носителя в виде слоя иммуноаффинного геля с привитыми антивидовыми антителами, зафиксированного между двумя пористыми мембранами, обработку носителя - слоя иммуноаффинного геля блокирующим раствором для закрытия на носителе оставшихся свободными мест неспецифического связывания, иммобилизацию на носителе специфических антител, внесение тестируемых образцов, обработку носителя конъюгатсодержащим раствором и анализ обработанного носителя, при этом в качестве конъюгатсодержащего раствора используют раствор конъюгата антигена - токсиканта, химически связанного с люминесцентными квантовыми точками или с липосомами, содержащими люминесцентные квантовые точки, а уровень токсикантов определяют по интенсивности люминесценции, возбужденной в квантовых точках при освещении обработанного носителя возбуждающим излучением. Также представлена тест-система для осуществления указанного способа. Достигается повышение эффективности и достоверности анализа. 2 н. и 1 з.п. ф-лы, 3 прим., 1 ил.

Description

Изобретение относится к области биотехнологии и может быть использовано для повышения эффективности и достоверности определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостях путем проведения твердофазного иммуноферментного анализа.
Из уровня техники известен способ проведения иммуноферментного анализа, включающий адсорбцию антигенов на твердой фазе физической сорбции, инкубацию тестируемых биологических образцов, инкубацию конъюгатсодержащего раствора, спектрофотометрический анализ реакции по экстинции раствора хромагента (RU 2014610 С1, G01N 33/53, 1994).
Также известен способ определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостях путем проводимого в колонке тест-системы иммуноферментного анализа, включающий размещение в колонке носителя в виде слоя иммуноаффинного геля с привитыми антивидовыми антителами, зафиксированного между двумя пористыми мембранами, обработку носителя блокирующим раствором для закрытия на носителе оставшихся свободными мест неспецифического связывания, иммобилизацию на носителе специфических антител, внесение тестируемых образцов, обработку носителя конъюгатсодержащим раствором и анализ обработанного носителя на изменение окраски (RU 2374649 С1, G01N 33/53, 2009). Несмотря на достаточную простоту точность визуального определения уровня токсикантов в данном способе недостаточно высокая.
Кроме того, известна тест-система для иммуноферментного определения токсикантов, включающая колонку, в которой установлен носитель в виде слоя иммуноаффинного геля с привитыми специфическими антителами, размещенного между двумя пористыми мембранами (RU 2374649 C1, G01N 33/53, 2009). Недостатком данного устройства является отсутствие средств, обеспечивающих измерение уровня токсикантов.
Технический результат, на получение которого направлено изобретение, заключается в повышении эффективности и достоверности иммуноферментного определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостях, проводимого в колонке тест-системы.
Решение поставленной задачи с достижением заявленного технического результата обеспечивается тем, что в способе определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостях путем проводимого в колонке тест-системы твердофазного иммуноферментного анализа, включающем размещение в колонке носителя в виде слоя иммуноаффинного геля с привитыми антивидовыми антителами, зафиксированного между двумя пористыми мембранами, обработку носителя - слоя иммуноаффинного геля блокирующим раствором для закрытия на носителе оставшихся свободными мест неспецифического связывания, иммобилизацию на носителе специфических антител, внесение тестируемых образцов, обработку носителя конъюгатсодержащим раствором и анализ обработанного носителя, согласно изобретению, в качестве конъюгатсодержащего раствора используют раствор конъюгата антигена - токсиканта, химически связанного с люминесцентными квантовыми точками или с липосомами, содержащими люминесцентные квантовые точки, а уровень токсикантов определяют по интенсивности люминесценции, возбужденной в квантовых точках при освещении обработанного носителя возбуждающим излучением.
При этом иммуноаффинный гель приготовляют, например, в емкости с пористым дном путем обработки циан бром активированной сефарозы соляной кислотой и введения после набухания в полученный гель раствора антивидовых антител - кроличьих антимышиных антител в карбонатном буфере.
Решение поставленной задачи обеспечивается также тем, что в тест-системе для способа определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостях, включающей колонку, в которой установлен носитель в виде слоя иммуноаффинного геля с привитыми специфическими антителами, размещенного между двумя пористыми мембранами, согласно изобретению, колонка снабжена устройством для измерения уровня люминесценции, включающим источник возбуждающего излучения и фотоприемник, причем перед фотоприемником дополнительно установлена фокусирующая оптическая система, а выход фотоприемника электрически подключен через усилитель сигнала и аналого-цифровой преобразователь к блоку управления - контроллеру, к выходу которого подключены блок индикации и через блок стабилизации источник возбуждающего излучения, при этом боковые стенки колонки выполнены из прозрачного для возбуждающего и люминесцентного излучения материала.
Кроме того, между фотоприемником и фокусирующей оптической системой может быть размещен светофильтр.
Благодаря наличию в растворе конъюгата люминесцентных квантовых точек (или липосом, содержащих люминесцентные квантовые точки), химически связанных с молекулами антигена - токсиканта, которые обладают способностью связываться с сорбированными на носителе - слое иммуноаффинного геля специфическими антителами, оставшимися свободными после связывания с находящимися в анализируемой среде молекулами токсиканта, и при освещении возбуждающим излучением люминесцируют, в заявленном изобретении, реализующем прямой конкурентный твердофазный иммуноферментный анализ, обеспечивается увеличение интенсивности полезного сигнала люминесценции, обратно пропорционального концентрации токсинов, что повышает чувствительность способа определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостях. Кроме того, наличие в заявленной тест-системе устройства для измерения уровня люминесценции, включающего источник возбуждающего излучения и фотоприемник, которые подключены к блоку управления - контроллеру, позволяет в автоматическом режиме просто и достоверно определять уровень токсикантов по степени интенсивности люминесценции, возбужденной в квантовых точках.
На чертеже схематично подставлен общий вид тест-системы.
Заявленная тест-система для определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостях включает колонку 1 с боковыми стенками, выполненными из прозрачного для возбуждающего и люминесцентного излучения материала, в которой установлен носитель в виде слоя 2 иммуноаффинного геля с привитыми специфическими антителами, размещенного между двумя пористыми мембранами 3, и устройство для измерения уровня люминесценции, включающее источник 4 возбуждающего излучения, выполненный, например, в виде набора светодиодов с максимумами длин волн излучения в диапазоне 395÷500 нм, и фотоприемник 5 (фотодиод), спектральный диапазон чувствительности которого лежит в диапазоне 420÷675 нм, причем перед фотоприемником 5 дополнительно установлена фокусирующая оптическая система 6 (например, собирающая линза F=5÷30 мм) и светофильтр 7, спектр пропускания которого соответствуют спектру люминесценции. Выход фотоприемника 5 электрически подключен через усилитель 8 сигнала и аналого-цифровой преобразователь 9 к блоку 10 управления - контроллеру, к выходу которого подключены блок 11 индикации и через блок 12 стабилизации источник 4 возбуждающего излучения.
Заявленный способ определения уровня токсикантов реализуют следующим образом.
Для приготовления иммуноаффинного геля, например, 0,5 г циан бром активированной сефарозы 4 В помещают в емкость с пористым дном и промывают в 100 мл 0,001 М соляной кислоты. После набухания геля раствор соляной кислоты сливают и добавляют 150 мкл раствора антивидовых антител (кроличьих антимышиных антител) с концентрацией 2,5 г/л и 450 мкл карбонатного буфера (рН=8,3), содержащего 0,1 М гидрокарбоната натрия и 0,1 М хлорида натрия, после чего смесь продолжительно встряхивают (в течение 2-х часов) при комнатной температуре. Остаток не связавшихся антивидовых антител удаляют с помощью промывания геля 5 мл карбонатного буфера (рН=8,3), содержащего 0,1 М гидрокарбоната натрия и 0,1 М хлорида натрия. Для закрытия оставшихся свободными мест неспецифического связывания (активных групп сефарозы) в полученный гель с привитыми антивидовыми антителами вносят блокирующий рас твор, в качестве которого используют 0,2 М раствор глицина в карбонатном буфере (рН=8,3), содержащем 0,1 М гидрокарбоната натрия и 0,1 М хлорида натрия, и перемешивают в течение 2 часов при комнатной температуре. После процедуры блокирования гель трижды промывают последовательно пятикратным объемом ацетатного буфера (0,1 М ацетата натрия, 0,5 моль хлорида натрия, рН=4,0) и пятикратным объемом фосфатного буфера (рН=7.4÷7.6). Полученный иммуноафинный гель с привитыми антивидовыми антителами разводят в фосфатном буфере (рН=7.4÷7.6) в соотношении 1:3 и хранят при температуре 4°С.
Пример 1.
Для определения уровня токсиканта, например, концентрации зераленона, в анализируемой среде (природной воде) предварительно приготовляют - синтезируют раствор конъюгата зераленона, связанного с люминесцентными квантовыми точками - полупроводниковые наночастицы CdSe/ZnS, следующим образом.
В 1 мл диметилформамида растворяют 92 мг н-гидроксисукцинимида и 124 мг 1-этил-3-(3-диметиламинопропил)карбодиимида. Образовавшийся раствор разводят в 1000 раз в диметилформамиде (необходимая концентрация 0.8 µмоль). Затем 20 µл полученного раствора сливают с 800 µл раствора квантовых точек CdSe/ZnS (разведение 1/10 в карбонатном буфере (0,1 М гидрокарбоната натрия, 0,1 М хлорида натрия, рН=8,3), количество квантовых точек CdSe/ZnS равно 3.2×10-4 µmol), и перемешивают в течение 45 минут, после чего капельно добавляют 176 µл раствора зераленона (0,4 мг/мл), химически связанного с яичным альбумином, в фосфатном буфере (рН=7.4-7.6)). Реакционую смесь постоянно перемешивают в течение 12 часов при температуре 4°С. Избыток низкомолекулярных веществ удаляют с помощью диализа в течение 2 дней при температуре 4°С. Полученные конъюгаты хранят при температуре 4°С.
Затем 200 мкл ранее приготовленного иммуноаффинного геля с привитыми антивидовыми антителами помещают в виде слоя 2 носителя на пористую полиэтиленовую мембрану 3 (фритт), установленную в пустую колонку 1 типа Bond Elut (V=1 мл), предварительно промытую фосфатным буфером (рН=7.4÷7.6) и хранившуюся при температуре 4°С. Вносят в слой 2 иммуноаффинного геля с привитыми антивидовыми антителами 5 мкл раствора специфичных к зераленону (токсиканту) моноклональных мышиных антител, тщательно перемешивают и промывают фосфатным буфером (рН=7.4÷7.6). Затем сверху на слой 2 иммуноаффинного геля с привитыми специфическими антителами помещают вторую пористую полиэтиленовую мембрану 3 (фритт).
Через подготовленную таким образом колонку 1 пропускают 1 мл анализируемой среды и промывают колонку 1 фосфатным буфером (рН=7.4÷7.6), содержащим 0,05% Tween 20.
Затем в колонку 1 вводят 100 мкл предварительно приготовленного раствора конъюгата токсиканта - зераленона, связанного с люминесцентными квантовыми точками - полупроводниковые наночастицы CdSe/ZnS (разведение 1/30 в фосфатном буфере (рН=7.4÷7.6), содержащем 0,05% Tween 20 и 0,2% бычьего сывороточного альбумина), и инкубируют в течение 6 минут. Избыток конъюгата удаляют путем промывания колонки 1 фосфатным буфером (рН=7.4÷7.6) и осуществляют освещение носителя - слоя 2, содержащего люминесцентные квантовые точки - полупроводниковые наночастицы, световым потоком, поступающим от источника 4 возбуждающего излучения устройства для измерения уровня люминесценции.
При этом, если в анализируемой среде концентрация токсиканта - зераленона превышает концентрацию сорбированных на носителе - слое 2 иммуноаффинного геля специфических антител, которая соответствует, например, предельно допустимой концентрации токсиканта, то происходит связывание всех специфических антител с молекулами токсиканта - зераленона, а при пропускании через носитель - слой 2 раствора конъюгата токсиканта - зераленона с флуоресцентными метками - люминесцентными квантовыми точками из-за отсутствия свободных специфических антител содержащиеся в конъюгате молекулы токсиканта - зераленона остаются несвязанными (свободными) и удаляются после промывки из колонки 1 вместе с люминесцентными квантовыми точками - полупроводниковые наночастицы CdSe/ZnS. В результате при облучении носителя - слоя 2 источником 4 возбуждающего излучения люминесценция не возникает.
В том случае, если в анализируемой среде концентрация токсиканта - зераленона не превышает концентрацию сорбированных на носителе - слое 2 иммуноаффинного геля специфических антител, которая соответствует, например, предельно допустимой концентрации токсиканта, или токсикант - зераленон в анализируемой среде отсутствует, то только происходит связывание только части специфических антител с молекулами токсиканта - зераленона, и при пропускании через носитель - слой 2 раствора конъюгата токсиканта - зераленона с флуоресцентными метками - люминесцентными квантовыми точками происходит связывания оставшихся свободными специфических антител с содержащиеся в конъюгате молекулами токсиканта - зераленона, содержащими люминесцентные квантовые точки - полупроводниковые наночастицы CdSe/ZnS. В результате при облучении носителя - слоя 2 источником 4 возбуждающего излучения возникает люминесценция, уровень которой обратно пропорционален концентрации токсиканта - зераленона в анализируемой среде.
При этом поступающий из носителя - слоя 2 суммарный световой фронт, состоящий из полезного сигнала люминесценции и паразитного сигнала возбуждающего излучения, проходит через светофильтр 6, который ослабляет паразитный сигнал, и отфильтрованный суммарный световой фронт с выделенным полезным сигналом фокусируется оптической системой 7 на фотоприемник 5 (фотодиод). Выработанный на выходе фотоприемника 5 электрический сигнал (значение напряжения которого соответствует уровню люминесценции) усиливается усилителем сигнала 8, оцифровывается с помощью аналого-цифрового преобразователя 9, и в цифровом представлении передаются для регистрации на вход блока 10 управления -контроллера для регистрации уровня люминесценции, где обрабатывается, путем сопоставления с предварительно занесенными в память калибровочными постоянными, и количественное значение уровня люминесценции, обратно пропорциональное концентрации токсиканта - зераленона, и/или соответствующее значение уровня (концентрации) токсиканта заносится в память блока 10 управления -контроллера и отображается в блоке 11 индикации.
Кроме того, блок 10 управления - контроллер в соответствии с заложенным программным алгоритмом в автоматическом режиме осуществляет программируемое управление работой светодиодов источника 4 возбуждающего излучения, нормируя посредством блока 12 стабилизации напряжение источника 1 возбуждающего излучения, и обеспечивает сохранение в памяти параметров калибровочных постоянных (калибровочной кривой), значения которых определяются в процессе предварительных тарировочных измерений с использованием стандартных источников возбуждающего излучения и предварительной калибровки колонки 1 с использованием образцов анализируемой среды, содержащей токсиканты, например, зераленон, известной концентрации.
Пример 2.
Для определения уровня токсиканта, например, концентрации зераленона, в анализируемой среде (природной воде) предварительно приготовляют поэтапно раствор конъюгата зераленона с липосомами, содержащими водорастворимые люминесцентными квантовые точки - полупроводниковые наночастицы CdSe/ZnS, следующим образом.
На первом этапе методом гидратирования тонких пленок готовят липосомы, содержащие водорастворимые люминесцентными квантовые точки - полупроводниковые наночастицы CdSe/ZnS. Для этого 70 мг (94 µмоль) фосфолипидов (Lipoid S75) растворяют в 1 мл хлороформа в круглодонной колбе (V=10 мл). Затем хлороформ выпаривают с помощью роторного испарителя до образования пленки фосфолипидов на стенках колбы. Образовавшуюся пленку фосфолипидов обрабатывают 6 мл воды, содержащей 5 µмоль квантовых точек CdSe/ZnS, и перемешивают в течение 30 минут при температуре 45°С. Затем раствор обрабатывают ультразвуком в течение 5 минут для достижения приемлемого размера частиц липосом (порядка 100 нм). Полученный раствор, содержащий липосомы с водорастворимыми квантовыми точками CdSe/ZnS, хранят при температуре 45°С.
На втором этапе осуществляют синтез конъюгата зераленона с липосомами, содержащими квантовые точки.
Для этого к 0,4 мл раствора, содержащего липосомы с инкорпорированными квантовыми точками - полупроводниковыми наночастицами CdSe/ZnS, капельно при постоянном перемешивании добавляют 0,5 мл 2,5% раствора глутарового альдегида в воде, после чего образовавшийся раствор перемешивают в течение 3 часов при комнатной температуре. Избыток глутарового альдегида удаляют с помощью диализа в течение 2 дней при температуре 4°С. Затем капельно при постоянном перемешивании в течение 2 часов при комнатной температуре добавляют 98 µг раствора зераленона (0,4 мг/мл), химически связанного с яичным альбумином, в фосфатном буфере (рН=7.4÷7.6). Затем добавляют 60 µл 3 М глицина в растворе гидроксида натрия (рН=7,2) для блокирования оставшихся свободными альдегидных групп глутарового альдегида на поверхности липосом. Полученную смесь выдерживают при температуре 4°С при постоянном перемешивании. Избыток не прореагировавших компонентов удаляют с помощью диализа в течение 3 часов. Полученные конъюгаты хранят при температуре 4°С.
Затем через подготовленную, аналогично примеру 1, колонку 1, содержащую слой 2 иммуноаффинного геля с привитыми специфичными к зераленону антителами, пропускают 1 мл анализируемой среды и промывают колонку 1 фосфатным буфером (рН=7.4÷7.6), содержащим 0,05% Tween 20.
Потом в колонку 1 вводят 100 мкл предварительно приготовленного раствора конъюгата зераленона с липосомами, содержащими водорастворимые люминесцентные квантовые точки - полупроводниковые наночастицы CdSe/ZnS (разведение 1/20 в фосфатном буфере (рН=7.4÷7.6)), и инкубируют в течение 6 минут. Избыток конъюгата удаляют путем промывания колонки 1 фосфатным буфером (рН=7.4÷7.6), и осуществляют освещение обработанного носителя - слоя 2, содержащего люминесцентные квантовые точки - полупроводниковые наночастицы, световым потоком, поступающим от источника 4 возбуждающего излучения. При этом происходит рптическое возбуждение люминесценции, уровень которой, обратно пропорциональный концентрации токсиканта, регистрируют устройством для измерения уровня люминесценции описанным выше образом.
Пример 3.
Для определения уровня токсиканта, например, концентрации зераленона, в анализируемой среде (природной воде) предварительно приготовляют поэтапно раствор конъюгата зераленона с липосомами, содержащими гидрофобные люминесцентными квантовые точки - полупроводниковые наночастицы CdSe/ZnS, следующим образом.
На первом этапе 70 мг (94 µмоль) фосфолипидов (Lipoid S75) и 30 пмоль гидрофобных квантовых точек (lem=577 nm) в толуоле (52 µл) of wisQDs растворяют в 1 мл хлороформа в круглодонной колбе (V=10 мл) при воздействии ультразвуком при температуре 45°С.
Затем в образовавшийся раствор добавляют 3 мл воды и хлороформ выпаривают с помощью роторного испарителя. После этого добавляют еще 3 мл воды и в течение 60 минут перемешивают раствор с образовавшимися липосомами при температуре 45°С.
Затем раствор обрабатывают ультразвуком в течение 5 минут для достижения приемлемого размера частиц липосом (порядка 100 нм). Полученный раствор, содержащий липосомы с гидрофобными квантовыми точками CdSe/ZnS, хранят при температуре 45°С.
На втором этапе осуществляют синтез конъюгата зераленона с липосомами, содержащими квантовые точки.
Для этого к 0,4 мл раствора, содержащего липосомы с инкорпорированными квантовыми точками - полупроводниковыми наночастицами CdSe/ZnS, капельно при постоянном перемешивании добавляют 0,5 мл 2,5% раствора глутарового альдегида в воде, после чего образовавшийся раствор перемешивают в течение 3 часов при комнатной температуре. Избыток глутарового альдегида удаляют с помощью диализа в течение 2 дней при температуре 4°С. Затем капельно при постоянном перемешивании в течение 2 часов при комнатной температуре добавляют 98 µг раствора зераленона (0,4 мг/мл), химически связанного с яичным альбумином, в фосфатном буфере (рН=7.4-7.6). Затем добавляют 60 µл 3 М глицина в растворе гидроксида натрия (рН=7,2) для блокирования оставшихся свободными альдегидных групп глутарового альдегида на поверхности липосом. Полученную смесь выдерживают при температуре 4°С при постоянном перемешивании. Избыток не прореагировавших компонентов удаляют с помощью диализа в течение 3 часов. Полученные конъюгаты хранят при температуре 4°С.
Затем через подготовленную, аналогично примеру 1, колонку 1, содержащую слой 2 иммуноаффинного геля с привитыми специфичными к зераленону антителами, пропускают 1 мл анализируемой среды и промывают колонку 1 фосфатным буфером (рН=7.4÷7.6), содержащим 0,05% Tween 20.
Потом в колонку 1 вводят 100 мкл предварительно подготовленного раствора конъюгата зераленона с липосомами, содержащими гидрофобные люминесцентные квантовые точки - полупроводниковые наночастицы CdSe/ZnS, (разведение 1/45 в фосфатном буфере (рН=7.4-7.6)), и инкубируют в течение 6 минут. Избыток конъюгата удаляют с помощью промывания колонки 1 фосфатным буфером (рН=7.4÷7.6).
После промывания колонки 1 осуществляют освещение обработанного носителя - слоя 2, содержащего люминесцентные квантовые точки - полупроводниковые наночастицы, световым потоком, поступающим от источника 4 возбуждающего излучения, при этом происходит оптическое возбуждение люминесценции, обратно пропорциональное концентрации токсиканта, которое регистрируется устройством для измерения уровня люминесценции описанным выше образом.
Заявленное изобретение обеспечивает возможность определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостях путем проводимого в колонке тест-системы прямого конкурентного иммуноферментного анализа уровня токсиканта с пределом обнаружения (чувствительностью) 1÷3 нг/мл.

Claims (3)

1. Способ определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостях путем проводимого в колонке тест-системы иммуноферментного анализа, включающий размещение в колонке носителя в виде слоя иммуноаффинного геля с привитыми антивидовыми антителами, зафиксированного между двумя пористыми мембранами, обработку носителя - слоя иммуноаффинного геля блокирующим раствором для закрытия на носителе оставшихся свободными мест неспецифического связывания, иммобилизацию на носителе специфических антител, внесение тестируемых образцов, обработку носителя конъюгатсодержащим раствором и анализ обработанного носителя, отличающийся тем, что в качестве носителя используют слой иммуноаффинного геля с привитыми антивидовыми антителами, а в качестве конъюгатсодержащего раствора используют раствор конъюгата антигена - токсиканта, химически связанного с люминесцентными квантовыми точками или с липосомами, содержащими люминесцентные квантовые точки, а уровень токсикантов определяют по интенсивности люминесценции, возбужденной в квантовых точках при освещении обработанного носителя возбуждающим излучением.
2. Способ по п.1, отличающийся тем, что иммуноаффинный гель приготовляют в емкости с пористым дном путем обработки циан бром активированной сефарозы соляной кислотой и введения после набухания в полученный гель раствора антивидовых антител - кроличьих антимышиных антител в карбонатном буфере.
3. Тест-система для способа определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостях по п.1, включающая колонку, в которой установлен носитель в виде слоя иммуноаффинного геля с привитыми специфическими антителами, размещенного между двумя пористыми мембранами, отличающаяся тем, что колонка снабжена устройством для измерения уровня люминесценции, включающим источник возбуждающего излучения и фотоприемник, причем перед фотоприемником дополнительно установлена фокусирующая оптическая система, а выход фотоприемника электрически подключен через усилитель сигнала и аналого-цифровой преобразователь к блоку управления - контроллеру, к выходу которого подключены блок индикации и через блок стабилизации источник возбуждающего излучения, при этом боковые стенки колонки выполнены из прозрачного для возбуждающего и люминесцентного излучения материала.
RU2012141547/15A 2012-10-01 2012-10-01 Способ определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостях и тест-система RU2508553C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2012141547/15A RU2508553C1 (ru) 2012-10-01 2012-10-01 Способ определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостях и тест-система

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2012141547/15A RU2508553C1 (ru) 2012-10-01 2012-10-01 Способ определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостях и тест-система

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2508553C1 true RU2508553C1 (ru) 2014-02-27

Family

ID=50152266

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2012141547/15A RU2508553C1 (ru) 2012-10-01 2012-10-01 Способ определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостях и тест-система

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2508553C1 (ru)

Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SU1160484A1 (ru) * 1983-07-07 1985-06-07 Институт Полупроводников Ан Усср Способ определени подвижности неосновных носителей зар да (его варианты)
RU2083983C1 (ru) * 1994-04-19 1997-07-10 Фрида Насыровна Гильмиярова Способ оценки суммарной токсичности химических факторов окружающей среды
RU2110067C1 (ru) * 1996-08-15 1998-04-27 Санкт-Петербургский государственный университет Биологический способ определения степени общей токсичности и основных токсикантов водной среды (варианты)
RU2266537C2 (ru) * 2004-01-29 2005-12-20 Институт геохимии и аналитической химии им. В.И. Вернадского Российской Академии Наук (ГЕОХИ РАН) Способ экологической оценки загрязнения окружающей среды тяжелыми металлами
RU2374649C1 (ru) * 2008-05-04 2009-11-27 Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Саратовский государственный университет им. Н.Г. Чернышевского" Тест-система для иммуноферментного определения токсикантов
RU2394910C2 (ru) * 2008-07-10 2010-07-20 Елена Николаевна Ефременко Люминесцентный биокатализатор для определения токсикантов
RU2426779C1 (ru) * 2009-11-13 2011-08-20 Российская Федерация, От Имени Которой Выступает Министерство Образования И Науки Российской Федерации Биосенсор на основе клеток микроводорослей для определения тяжелых металлов и гербицидов в водных системах

Patent Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SU1160484A1 (ru) * 1983-07-07 1985-06-07 Институт Полупроводников Ан Усср Способ определени подвижности неосновных носителей зар да (его варианты)
RU2083983C1 (ru) * 1994-04-19 1997-07-10 Фрида Насыровна Гильмиярова Способ оценки суммарной токсичности химических факторов окружающей среды
RU2110067C1 (ru) * 1996-08-15 1998-04-27 Санкт-Петербургский государственный университет Биологический способ определения степени общей токсичности и основных токсикантов водной среды (варианты)
RU2266537C2 (ru) * 2004-01-29 2005-12-20 Институт геохимии и аналитической химии им. В.И. Вернадского Российской Академии Наук (ГЕОХИ РАН) Способ экологической оценки загрязнения окружающей среды тяжелыми металлами
RU2374649C1 (ru) * 2008-05-04 2009-11-27 Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Саратовский государственный университет им. Н.Г. Чернышевского" Тест-система для иммуноферментного определения токсикантов
RU2394910C2 (ru) * 2008-07-10 2010-07-20 Елена Николаевна Ефременко Люминесцентный биокатализатор для определения токсикантов
RU2426779C1 (ru) * 2009-11-13 2011-08-20 Российская Федерация, От Имени Которой Выступает Министерство Образования И Науки Российской Федерации Биосенсор на основе клеток микроводорослей для определения тяжелых металлов и гербицидов в водных системах

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP6260541B2 (ja) 夾雑物の影響を低減する免疫測定法
KR20130091644A (ko) 감도가 증가된 균질 화학발광 검정 방법
CA2832010C (en) A device for detecting an analyte
KR20160134796A (ko) 당화 단백질 분석
CN108700572A (zh) 用于定量生物试样中的胆汁酸的试剂盒及定量生物试样中的胆汁酸的方法
CN103026230B (zh) 共偶联以控制免疫测定中试剂的反应性
US20150198528A1 (en) Assay detection system
JP6677284B2 (ja) 分析対象物の検出方法及びラテラルフロー用テストストリップ
JP6605802B2 (ja) 免疫アッセイによる微生物の検出方法、免疫アッセイに付す検体の処理方法、免疫アッセイ用検体前処理液、及びイムノクロマトグラフィー用試験キット
US20220365092A1 (en) A method for detecting an analyte
RU2508553C1 (ru) Способ определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостях и тест-система
JP4810639B2 (ja) 赤外蛍光粒子を用いた定量方法
RU2538707C1 (ru) Способ определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостях и тест-система
US10871447B2 (en) Bleaching of dyes in luminescent detection
JP4913454B2 (ja) ビタミンの濃度測定方法及びpcbの濃度測定方法
RU2506586C1 (ru) Способ определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостях и тест-система
RU2547577C1 (ru) Способ определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостях и тест-система
RU2005100042A (ru) Пригодные для высокопроизводительного скрининга (hts) способ и тест-система для определения взаимодействия между c-реактивным белком и связывающимися с c-реактивным белком компонентами
CN103712963B (zh) 一种荧光分析方法和装置
JP7190196B2 (ja) 時間分解蛍光分析を用いたノロウイルス側方流動分析装置およびこれを用いた測定方法
JP2004144687A (ja) 物質の測定方法
JP5583644B2 (ja) バイオセンサー装置、及びそれを用いた濃度測定方法
Ibragimova et al. Optimized immonochromatographic system for antigen determination based on monoclonal antibody conjugates with quantum dots
CN106680498B (zh) 一种单纯疱疹病毒i型和ii型抗原联检试剂盒
WO2007111851A1 (en) Use of additives to lower the rate of a binding reaction