RU2492868C2 - Способ получения и очистки плацентарной щелочной фосфатазы - Google Patents

Способ получения и очистки плацентарной щелочной фосфатазы Download PDF

Info

Publication number
RU2492868C2
RU2492868C2 RU2011144738/15A RU2011144738A RU2492868C2 RU 2492868 C2 RU2492868 C2 RU 2492868C2 RU 2011144738/15 A RU2011144738/15 A RU 2011144738/15A RU 2011144738 A RU2011144738 A RU 2011144738A RU 2492868 C2 RU2492868 C2 RU 2492868C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
alkaline phosphatase
enzyme
extract
placental alkaline
minutes
Prior art date
Application number
RU2011144738/15A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2011144738A (ru
Inventor
Александр Владимирович Коханов
Владимир Викторович Белопасов
Александр Алексеевич Меснянкин
Ирина Сергеевна Ямпольская
Оксана Алексеевна Луцева
Original Assignee
Александр Владимирович Коханов
Александр Алексеевич Меснянкин
Оксана Алексеевна Луцева
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Александр Владимирович Коханов, Александр Алексеевич Меснянкин, Оксана Алексеевна Луцева filed Critical Александр Владимирович Коханов
Priority to RU2011144738/15A priority Critical patent/RU2492868C2/ru
Publication of RU2011144738A publication Critical patent/RU2011144738A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2492868C2 publication Critical patent/RU2492868C2/ru

Links

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Abstract

Изобретение относится к фармацевтической промышленности, а именно к способу получения плацентарной щелочной фосфатазы. Способ получения плацентарной щелочной фосфатазы заключается в том, что гомогенизируют отмытую от крови плаценту человека, экстрагируют гомогенат в растворе хлорида калия, центрифугируют полученный экстракт, прогревают, центрифугируют, полученный надосадок после первичного прогревания экстракта повторно прогревают в присутствии сульфата кадмия с последующим быстрым охлаждением колбы, добавляют сульфат аммония, отделяют осадок центрифугированием, надосадочную жидкость подвергают гидрофобной хроматографии на колонке, а ферментсодержащий элюат подвергают очистке препаративным электрофорезом в полиакриламидном геле, окрашивают гель, содержащий фермент, и под визуальным контролем, вырезают окрашенные фракции щелочной фосфатазы. Вышеописанный способ позволяет упростить технологический процесс получения и очистки фермента плацентарной щелочной фосфатазы с существенным увеличением выхода целевого продукта. 1 табл., 2 пр.

Description

Изобретение относится к области медицины, к биохимии и биотехнологии и касается способов выделения ферментов, в частности плацентарной щелочной фосфатазы.
Известно, что плацентарный фермент - термостабильная щелочная фосфатаза ассоциирован не только с фетоплацентарной недостаточностью, но и с другими, не акушерскими патологическими состояниями. Фермент щелочная фосфатазы плацентарного типа относится к онкомаркерам, поэтому разработка способа выделения плацентарной щелочной фосфатазы (ПЩФ) для конструирования иммунохимических тест-систем на этот белок имеет важное значение для медицины (Сухарев А.Е., Вайчулис Ю.В., Асфандияров Р.И., Панченко Л.Ф., Терентьев А.А., Беда Н.А., Москаленко Н.П. Плацентарная щелочная фосфатаза и острофазовые белки в клинико-лабораторной оценке факторов повышенного тромбогеморрагического риска в акушерстве. М. - Астрахань, 2006. - 282 с).
Кроме того, ведущие косметические и фармацевтические фирмы активно разрабатывают линейку продуктов на основе препаратов плаценты и среди комплекса биологически активных веществ плаценты, кроме низкомолекулярных регуляторов роста, ими заявляется фермент ПЩФ (UA патент №2006/ а200605513; RU 2235550 C2, 10.09.2004; RU 2033797 C1, 30.04.95; RU 2071336 C1, 10.01.97; US 4348316, 07.09.82; EP 0297455 A1, 04.01.89; Заявка: RU 2007120122/15, 16.05.2007).
Существующие способы выделени фосфатазы (Заявка: RU 4946819/13, 19.06.1991; US патент №4581332, кл. С 12N 9/52), как правило, основаны на основном уникальном биологическом свойстве ПЩФ - способности выдерживать нагревание до 65°C в течение 10-15 минут, в связи с чем ПЩФ имеет другое название - термостабильная плацентарная щелочная фосфатаза.
Известен классический способ выделения ПЩФ, предусматривающий экстрагирование фермента из плацентарного сырья 30%-ным бутанолом, фракционное осаждение ацетоном, кратковременную термообработку (обычно при 65°C), фракционирование белков сульфатом аммония (45-62%), хроматографию ферментсодержащего раствора на диэтиламиноэтилсефадексе A-50, гельфильтрацию на сефадексе G-100 и кристаллизацию (Lehman F.Y., Lehman D. Regan-isoenzyme isolirung der alkalischen Phosphatase aus Menschlicher Plazenta und Entwichlung einer empfindlichen Methode fiir die Tumordiagnostik. - Wern. Dtsch. Ger. Aim Med. 80 Kongr., Wiesbaden, 1974, 1658-1661).
Недостатками известных способов являются:
- падение активности фермента по сравнению с исходным экстрактом плаценты примерно на 50%, так как органические растворители типа бутанола, вызывают денатурацию белка и увеличивают потери активности;
- ухудшение органолептических и, следовательно, коммерческих свойств целевого продукта (запах бутанола сохраняется на протяжении всех этапов выделени фермента);
- трудоемкость, техническая сложность используемых методов для практического применения.
Наиболее близким к заявленному решению является патент - (RU 1082811 A1, 30.03.1984), в котором раскрыт способ получения плацентарной щелочной фосфатазы, заключающийся в том, что отмытую от крови человеческую плаценту гомогенизируют при 8000 об/мин. 5 мин., полученную массу экстрагируют ЗМ хлоридом калия в соотношении 1:3 и перемешивают на магнитной мешалке при 4°C в течение 12 часов. Раствор центрифугируют при 6000 об/мин 30 мин и осадок отбрасывают. Надосадочную жидкость диализируют, прогревают 10 мин при 65°C. Экстракт центрифугируют при 6000 об/мин 30 мин. В надосадочной жидкости на магнитной мешалке при комнатной температуре растворяют 1% раствор цитилпиридиния. Экстракт цинтрифугируют. Надосадочную жидкость отбрасывают, а осадок растворяют в 3,5% р-ре NaCl, диализуют. Далее экстракт насыщают сульфатом аммония до 65% насыщения, диализируют и центрифугируют при 6000 об/мин в течение 30 мин, надосадок отбрасывают. Осадок растворяют в минимальном объеме трис-буфера (pH 8,6), пробы ставят в препаративный электрофорез в полиакриламидном геле. Окрашивают гель, содержащий фермент на щелочную фосфатазу: субстрат - нафтил-AS-Ол-фосфат, краситель - прочный синий ВВ, буфер веронил-мединовый (pH 8,6). Под визуальным контролем вырезают узкие полоски окрашенных фракций плацентарной щелочной фосфатазы. Недостатками прототипа являются:
- относительно низкий выход фермента, равный 72% по отношению к содержанию в исходном продукте (плацентарном экстракте);
- потери фермента на неоднократных этапах диализа;
- удлинение процедуры выделения фермента на неоднократных этапах диализа;
- сложность отделения методом диализа детергента хлористого цетилпиридиния от целевого продукта;
- зависимость от фирм-поставщиков дефицитного детергента цетилпиридиния;
- трудоемкость используемых методов для практического применения;
- сложность используемых методов для получения целевого продукта в коммерческих масштабах;
- невозможность получения моноспецифических антисывороток к плацентарной щелочной фосфатазе при иммунизации из-за наличия минорных примесей посторонних белков;
- способ не гарантирует полного отсутствия вирусных частиц, что недопустимо для медицинских и косметических препаратов и препятствует использованию плацентарной щелочной фосфатазы в качестве ингредиента перспективных лечебно-косметических композиций.
Изобретение направлено на упрощение технологического процесса получения фермента плацентарной щелочной фосфатазы с существенным увеличением выхода целевого продукта.
Указанный технический результат достигается тем, что после первичного прогревания экстракта, проводят повторную термообработку экстракта в присутствии сульфата кадмия 0,14%-ной концентрации в течение 1-3 мин при 65°C с последующим охлаждением колбы под струей воды, добавляют сульфат аммония до 30% насыщения, отделяют осадок центрифугированием, надосадочную жидкость, подвергают гидрофобной хроматографии на колонке с фенил-сефарозой CL-4B, элюцию с колонки проводят 0,02М трис-глициновым электродным буфером pH 8,6, а ферментсодержащий элюат подвергают препаративному электрофорезу в 7%-ном полиакриламидном геле.
Предлагаемый способ основан на обнаруженном нами феномене относительной устойчивости ПЩФ к ионам тяжелых металлов (кадмия) при термообработке раствора белка. Соли кадмия издавна применяются как осадитель белка, но в отличие от других солей тяжелых металлов (ртути, серебра), избирательно осаждают белки, пропорционально концентрации и физико-химическим свойствам белка. В результате предварительных экспериментов нами подобрана концентрация сульфата кадмия 0,14% как оптимальная для сохранения термостабильных свойств ПЩФ при 65°C. При этом наблюдается максимальное выпадение в осадок балластных плацентарных белков.
Предварительные эксперименты показали, что лучше проводить повторную термообработку экстракта в присутствии сульфата кадмия после первой (классической) термообработки экстракта и удаления выпавших в осадок белков центрифугированием, чем проводить единственную термообработку в присутствии сульфата кадмия, так как образующийся обильный осадок денатурированных белков частично адсорбирует на себя очищаемый фермент и снижает его выход.
Температура 65°C относится к одной из трех стандартных критических точек (56, 65 и 100°C) исторически применяемых в биохимии, микробиологии и экспериментальной медицине для оценки термостабильности белков, поэтому и вторая термообработка термостабильной при 65°C плацентарной щелочной фосфатазы мы проводили именно при этой температуре. При этом выпадение в осадок балластных плацентарных белков при термообработке в присутствии сульфата кадмия достигала максимума через 1 мин термообработки при 65°C, до 3-х мин термообработки объем осадка не увеличивался, однако дальнейшая термообработка приводило к незначительному снижению концентрации ПЩФ, за счет его частичной денатурации. Этим объясняется необходимость спустя 1-3 мин термообработки при 65°C, достаточно быстрого (в течение 1 мин) снижения температуры ферментсодержащего раствора ниже минимальной критической точки в 56°C, остужая колбу под водопроводной водой. По достижению температуры 55°C скорость дальнейшего охлаждения раствора фермента ПЩФ не влияет на выход, степень очистки и активность фермента.
Из литературы известно, что белок ПЩФ высаливается сульфатом аммония в диапазоне 30-65% насыщения. При 30% насыщения сульфатом аммония из раствора в осадок выпадают попутные белки, а ПЩФ в этих условиях сохраняет растворимость.
Для дальнейшего фракционирования ПЩФ в солевом растворе сульфата аммония 30% насыщения обычно применяется его осаждение сульфатом аммония 65% насыщения, центрифугирование осадка, растворение его в минимальном объеме буфера и длительная стадия его обессоливания методом диализа. Альтернативой переосаждению и диализу препарата ПЩФ является метод гидрофобной хроматографии. Сам принцип гидрофобной хроматографии заключается в нанесении белка на колонку в растворе соли высокой концентрации и десорбции его с гидрофобного носителя буферными растворами низкой ионной силы, если белок не десорбируются и в этих условиях, в элюирующий раствор добавочно вносят полярные растворители (многоатомные спирты) и детергенты.
Нами установлено, что ПЩФ, растворимый в водном растворе сульфата аммония 30% насыщения эффективно адсорбируется на гидрофобном сорбенте фенил-сефарозе и легко десорбируется элюирующим буферным раствором низкой ионной силы, в частности, 0,02М трис-глициновым буфером, применяемым при электрофорезе в полиакриламидном геле.
Предлагаемый способ получения ПЩФ человека прошел успешную апробацию на 35 образцах плаценты в практической работе кафедры биологической химии и учебно-научно-диагностического центра Астраханской государственной медицинской академии в течение 2011 года.
Способ обеспечивает выход фермента ПЩФ до 92,9% от исходного содержания. Степень очистки ПЩФ по данному способу превышала 30 раз (табл.1). Удельная активность фермента при его концентрации 10 мг/л составляла 8-10 тыс нмоль/сек/л (ME).
Изменение концентрации ПЩФ и общего белка на этапах получения фермента представлены в таблице 1.
Ниже приводятся результаты апробации.
Пример 1. Получение первичного экстракта плаценты.
Нарезанную ножницами крупными кусками свежую плаценту от рожениц 40 недель беременности промывают несколько часов под холодной водопроводной водой в эксикаторе, накрытом марлей или сеткой. Отмытую от крови ткань плаценты гомогенизируют при 8000 об/мин 5 мин. К одному объему гомогената добавляют три объема ЗМ раствора хлорида калия и перемешивают на магнитной мешалке при 4°C в течение 12 часов. Раствор центрифугируют при 6000 об/мин 30 мин и осадок отбрасывают. (Общий объем 2000 мл, общий белок 44000 мг, ПЩФ 1240 мг, концентрация ПЩФ по белку 2,82%, выход 100%, степень очистки 1).
Термообработка первичного экстракта.
Надосадочную жидкость прогревают 10 мин при 65°C. Экстракт центрифугируют при 6000 об/мин 30 мин. Осадок отбрасывают. (Общий объем 2000 мл, общий белок 5200 мг, ПЩФ 1200 мг, концентрация ПЩФ по белку 23,1%, выход 96,8%, степень очистки 8,5).
Повторная термообработка с сульфатом кадмия.
В надосадочной жидкости на магнитной мешалке при комнатной температуре растворяют сухой сульфат кадмия до конечной концентрации ОД 4%. Проводят повторную термообработку экстракта при 65°C в присутствии сульфата кадмия в течение 1 мин, колбу с экстрактом быстро охлаждают под струей воды. Экстракт центрифугируют при 6000 об/мин 30 мин и осадок отбрасывают. (Общий объем 2000 мл, общий белок 2600 мг, ПЩФ 1170 мг, концентрация ПЩФ по белку 45%, выход 94,4%, степень очистки 16,9).
Обработка сульфатом аммония.
На следующем этапе выделения фермента экстракт насыщают сульфатом аммония до 30% насыщения и после формирования видимого осадка повторно центрифугируют при 6000 об/мин в течение 30 мин, осадок отбрасывают. (Общий объем 5000 мл, общий белок 1800 мг, ПЩФ 1160 мг, концентрация ПЩФ по белку 64,4%, выход 93,5%, степень очистки 24,4).
Гидрофобная хроматография.
Полученный раствор фермента в сульфате аммония, минуя стадию диализа, подвергают гидрофобной хроматографии на колонке с фенил-сефарозой CL-4B. Элюцию фермента с колонки проводят 0,02М трис-глициновым буфером (pH 8,6), являющегося электродным буфером для следующей стадии препаративного электрофореза. (Общий объем 50 мл, общий белок 1450 мг, ПЩФ 1160 мг, концентрация ПЩФ по белку 80%, выход 93,5%, степень очистки 30,3).
Препаративный электрофорез в полиакриламидном геле.
После этих этапов пробы ставят в препаративный электрофорез в 7%-ном полиакриламидном геле. Окрашивают гель, содержащий фермент на щелочную фосфатазу: субстрат - нафтил-фосфат AS-TR, краситель - прочный синий ВВ, буфер - трис-глициновый (pH 8,6). Под визуальным контролем вырезают узкие полоски окрашенных фракций плацентарной щелочной фосфатазы. (Общий объем 40 мл, общий белок 1300 мг, ПЩФ 1150 мг, концентрация ПЩФ по белку 88,5%), выход 92,9%, степень очистки 33,8).
Основные характеристики препарата ПЩФ на этапах получения очищенного фермента представлены в таблице 1.
Пример 2. Нарезанную ножницами плаценту от рожениц 37 недель беременности промывают, гомогенизируют, проводят экстракцию ЗМ раствором хлорида калия и прогревают 10 мин при 65°C как в примере 1. В надосадочной жидкости на магнитной мешалке при комнатной температуре растворяют сухой сульфат кадмия до конечной концентрации 0,14%. Проводят повторную термообработку экстракта при 65°C в присутствии сульфата кадмия в течение 3 мин, колбу с экстрактом быстро охлаждают под струей воды. Экстракт центрифугируют и осадок отбрасывают. Последующие этапы аналогичны примеру 1.
Сохраняется выход фермента ПЩФ до 92,9% от содержания в первичном экстракте плаценты. Удельная активность фермента при его концентрации 10 мг/л также оставалась высокой и составляла 8-10 тыс нмоль/сек/л (ME).
Предлагаемым способом достигается сокращение времени получения фермента до 2-х суток, увеличение выхода целевого продукта до 92,9% с высокой степенью очистки (33-кратной) удельной активности (см. табл.1) и снижение стоимости целевого продукта, а также при осуществлении предлагаемого способа требуется меньшее количество реактивов, исключается применение высокоскоростных рефрижераторных центрифуг и дорогостоящей аппаратуры.

Claims (1)

  1. Способ получения плацентарной щелочной фосфатазы, заключающийся в том, что гомогенизируют отмытую от крови плаценту человека, экстрагируют гомогенат в ЗМ растворе хлорида калия в соотношении 1:3, центрифугируют полученный экстракт 30 мин при 6000 об/мин, полученный надосадок прогревают 10 мин при 65°C, центрифугируют, добавляют раствор сульфата аммония, после проводят очистку полученного фермента методом препаративного электрофореза в полиакриламидном геле, окрашивают гель, содержащий фермент, и под визуальным контролем вырезают окрашенные фракции щелочной фосфатазы, отличающийся тем, что после первичного прогревания экстракта проводят его повторное прогревание в присутствии сульфата кадмия 0,14%-ной концентрации в течение 1-3 мин при 65°C с последующим быстрым охлаждением колбы, добавляют сульфат аммония до 30% насыщения, отделяют осадок центрифугированием, надосадочную жидкость подвергают гидрофобной хроматографии на колонке с фенил-сефарозой CL-4B, элюцию с колонки проводят 0,02М трис-глициновым электродным буфером pH 8,6, а ферментсодержащий элюат подвергают очистке препаративным электрофорезом в 7%-ном полиакриламидном геле.
RU2011144738/15A 2011-11-03 2011-11-03 Способ получения и очистки плацентарной щелочной фосфатазы RU2492868C2 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2011144738/15A RU2492868C2 (ru) 2011-11-03 2011-11-03 Способ получения и очистки плацентарной щелочной фосфатазы

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2011144738/15A RU2492868C2 (ru) 2011-11-03 2011-11-03 Способ получения и очистки плацентарной щелочной фосфатазы

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2011144738A RU2011144738A (ru) 2013-05-10
RU2492868C2 true RU2492868C2 (ru) 2013-09-20

Family

ID=48788663

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2011144738/15A RU2492868C2 (ru) 2011-11-03 2011-11-03 Способ получения и очистки плацентарной щелочной фосфатазы

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2492868C2 (ru)

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SU1576563A1 (ru) * 1988-03-15 1990-07-07 Научно-производственное объединение "Фермент" Способ получени щелочной фосфатазы
US4946819A (en) * 1987-11-27 1990-08-07 Nitto Chemical Industry Co., Ltd. Phosphorus-antimony-containing catalyst for oxidation
RU2016899C1 (ru) * 1991-06-19 1994-07-30 Научно-исследовательский институт текстильных материалов Способ получения щелочной фосфатазы

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4946819A (en) * 1987-11-27 1990-08-07 Nitto Chemical Industry Co., Ltd. Phosphorus-antimony-containing catalyst for oxidation
SU1576563A1 (ru) * 1988-03-15 1990-07-07 Научно-производственное объединение "Фермент" Способ получени щелочной фосфатазы
RU2016899C1 (ru) * 1991-06-19 1994-07-30 Научно-исследовательский институт текстильных материалов Способ получения щелочной фосфатазы

Also Published As

Publication number Publication date
RU2011144738A (ru) 2013-05-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Cohn The properties and functions of the plasma proteins, with a consideration of the methods for their separation and purification.
KR940003751B1 (ko) 항혈액 응고물질의 제조방법
CN105153297B (zh) 一种从Cohn组分Ⅳ沉淀中分离纯化α2-巨球蛋白的方法
CH634334A5 (de) Neues glycoprotein und verfahren zu dessen herstellung.
Burke The purification of interferon
Fagerhol Nomenclature for proteins: is calprotectin a proper name for the elusive myelomonocytic protein?
US4301064A (en) Ubiquitary tissue protein PP8
DE2640387C3 (de) Gewebespezifisches Protein und Verfahren zu dessen Herstellung
KR100436857B1 (ko) 생물학적 공급원으로부터 인자나인을 제조하는 방법
RU2492868C2 (ru) Способ получения и очистки плацентарной щелочной фосфатазы
US6869934B2 (en) Method of purifying calcium ion-binding protein
RU2230325C2 (ru) Способ приготовления очищенного препарата ботулинического токсина типа а
WO2020210965A1 (zh) 水蛭素突变体的提取纯化方法及其应用
Thomas et al. Electrophoretic studies of proteins in Avena in relation to genome homology
Barraco et al. Paleobiochemical analysis of an Egyptian mummy
US6222010B1 (en) Urogenital carcinoma TLP peptides
JP2019163212A (ja) スフェロイド形成促進剤の濃縮方法および精製方法。
RU2524668C1 (ru) Способ выделения спермаспецифического ингибитора трипсина человека
CN108822205A (zh) 一种羊血清白蛋白的提取方法
RU2787593C1 (ru) Способ выделения и очистки альфа-2-макроглобулина
JP2002506882A (ja) 金属含有リボヌクレオチドポリペプチド
SU1082811A1 (ru) Способ выделени термостабильной плацентарной щелочной фосфатазы
Zainal Estimation activity and partial purification of Ceruloplasmin from sera of patients with chronic renal Failure and healthy
Mandal et al. Isolation of the predominant coagulum protein of human semen before liquefaction
RU1836957C (ru) Способ получени трофобластического бета @ -гликопротеина

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20131104