RU2486255C1 - OLIGONUCLEOTIDES AND METHOD OF DETERMINING DNA OF BACTERIA BELONGING TO FAMILY Chlamydiaceae - Google Patents

OLIGONUCLEOTIDES AND METHOD OF DETERMINING DNA OF BACTERIA BELONGING TO FAMILY Chlamydiaceae Download PDF

Info

Publication number
RU2486255C1
RU2486255C1 RU2011141514/10A RU2011141514A RU2486255C1 RU 2486255 C1 RU2486255 C1 RU 2486255C1 RU 2011141514/10 A RU2011141514/10 A RU 2011141514/10A RU 2011141514 A RU2011141514 A RU 2011141514A RU 2486255 C1 RU2486255 C1 RU 2486255C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
probe
pcr
dna
oligonucleotides
chlamydiaceae
Prior art date
Application number
RU2011141514/10A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2011141514A (en
Inventor
Владимир Витальевич Демкин
Наталья Валерьевна Кириллова
Original Assignee
Общество с ограниченной ответственностью "НаноДиагностика"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Общество с ограниченной ответственностью "НаноДиагностика" filed Critical Общество с ограниченной ответственностью "НаноДиагностика"
Priority to RU2011141514/10A priority Critical patent/RU2486255C1/en
Publication of RU2011141514A publication Critical patent/RU2011141514A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2486255C1 publication Critical patent/RU2486255C1/en

Links

Images

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: biotechnology.
SUBSTANCE: method of detecting DNA of microorganisms belonging to the family Chlamydiaceae is proposed, by the method of PCR with use of primers and a probe, complementary to conserved region of the 16S ribosomal riziform gene.
EFFECT: increased efficiency of using the composition.
2 dwg, 2 ex

Description

Настоящее изобретение относится к области молекулярной биологии. В частности, оно относится к способам и реагентам, предназначенным для обнаружения микроорганизмов, относящихся к семейству Chlamydiaceae. Областью применения изобретения является медицина, медицинская микробиология, ветеринария, биология, молекулярная биология.The present invention relates to the field of molecular biology. In particular, it relates to methods and reagents for detecting microorganisms belonging to the Chlamydiaceae family. The scope of the invention is medicine, medical microbiology, veterinary medicine, biology, molecular biology.

Хламидии являются облигатными внутриклеточными паразитами, вызывающими широкий спектр заболеваний у человека, животных и птиц. По современной классификации к филуму Chlamydiae относят 8 семейств, однако наиболее известными и актуальными в медицинском и ветеринарном значении являются микроорганизмы из семейства Chlamydiaceae, в котором насчитывают 9 видов, разделенных на два рода - Chlamydia и Chlamydophila. К роду Chlamydia относятся C.trachomatis, C.muridarum, C.suis. К роду Chlamydophila относятся С.pneumonia, C.abortus, C.caviae, C.felis, C.psittaci, C.pecorum. Хламидиозы отличаются большим полиморфизмом клинических проявлений и отсутствием специфических симптомов. У человека хламидии являются возбудителями трахомы, венерической лимфогрануломы, заболеваний урогенитального и респираторного тракта, конъюнктивитов, зоо- и орнитоантропонозных заболеваний. С некоторой долей вероятности с этими бактериями связывают развитие сердечно-сосудистых патологий, атеросклероза, болезни Альцгеймера, некоторых форм артритов и бронхиальной астмы. У животных хламидии могут вызывать респираторные заболевания и абортивные реакции у крупного и мелкого рогатого скота, конъюнктивиты и риниты у домашних животных, широкий спектр заболеваний у копытных животных, в том числе свиней, системные заболевания у попугаев, домашней птицы, и др. Однако истинная роль хламидии в патогенезе многих заболеваний остается невыясненной, в том числе по причине отсутствия простых и надежных средств детекции, идентификации и дифференциации хламидии, учитывающих современный уровень знаний об их биологическом разнообразии.Chlamydiae are obligate intracellular parasites that cause a wide range of diseases in humans, animals and birds. According to the current classification, 8 families are assigned to the Chlamydiae phylum, however, the microorganisms from the Chlamydiaceae family, in which there are 9 species, divided into two genera, Chlamydia and Chlamydophila, are the most famous and relevant in medical and veterinary importance. The genus Chlamydia includes C.trachomatis, C.muridarum, C.suis. The genus Chlamydophila includes C. pneumonia, C. abortus, C. caviae, C. felis, C. psittaci, C. pecorum. Chlamydia is characterized by a large polymorphism of clinical manifestations and the absence of specific symptoms. In humans, chlamydia is the causative agent of trachoma, venereal lymphogranuloma, diseases of the urogenital and respiratory tract, conjunctivitis, zoo and ornithanthroponous diseases. With some degree of probability, these bacteria are associated with the development of cardiovascular pathologies, atherosclerosis, Alzheimer's disease, some forms of arthritis and bronchial asthma. In animals, chlamydia can cause respiratory diseases and abortion reactions in cattle and small cattle, conjunctivitis and rhinitis in domestic animals, a wide range of diseases in ungulate animals, including pigs, systemic diseases in parrots, poultry, etc. However, the true role chlamydia in the pathogenesis of many diseases remains unclear, including due to the lack of simple and reliable means of detection, identification and differentiation of chlamydia, taking into account the current level of knowledge about their biological m variety.

Диагностика хламидийных инфекций представляет собой сложную задачу ввиду как крайне широкого спектра клинических проявлений, так и недостатков традиционно использующихся диагностических методов. Наиболее мощным подходом для диагностики бактериальных и вирусных инфекций вообще, и хламидийных в частности, является метод полимеразной цепной реакции (ПЦР), в основе которого лежит многократное копирование с помощью фермента ДНК-полимеразы определенного фрагмента ДНК или РНК, являющегося маркерным для данного вида возбудителя инфекционного заболевания. В настоящее время ПЦР является наиболее чувствительным способом индикации микроорганизмов, способным потенциально обнаруживать единичные частицы возбудителей инфекционных заболеваний. Преимуществами данного типа диагностики также являются прямое определение собственно возбудителя, а не белков или других продуктов его жизнедеятельности, высокая специфичность, высокая скорость получения результата, а также возможность диагностики хронических и латентных инфекций, что особенно важно в случае хламидии. Существует несколько разновидностей ПЦР, описанных, например, в работах: PCR Protocols: A guide to methods and applications, 1990 (ред. M.A.Innis и др.), Academic Press, San Diego, CA; PCR Strategies, 1995 (ред. М.A.Innis и др.), Academic Press, San Diego, CA; PCR Protocols. Series: Methods in Molecular Biology, 2003, Vol.226 (ред., J.M.S.Bartlett, D.Stirling), Humana Press. В более ранних вариантах ПЦР для детекции продуктов амплификации использовали гель-электрофорез, что усложняет анализ. Современные модификации метода используют флуоресцентные метки и детекцию флуоресцентного сигнала непосредственно в процессе прохождения реакции, за что метод часто называют ПЦР в реальном времени («real-time PCR»). Другое название метода - количественная ПЦР («quantitative PCR, qPCR»),- отражает возможности метода проводить количественную оценку детектируемого объекта.Diagnosis of chlamydial infections is a difficult task due to both an extremely wide range of clinical manifestations and the disadvantages of the traditionally used diagnostic methods. The most powerful approach for the diagnosis of bacterial and viral infections in general, and chlamydial in particular, is the polymerase chain reaction (PCR) method, which is based on the multiple copying of a specific DNA or RNA fragment using the DNA polymerase enzyme, which is a marker for this type of infectious pathogen diseases. Currently, PCR is the most sensitive way to indicate microorganisms, capable of potentially detecting single particles of pathogens of infectious diseases. The advantages of this type of diagnosis are also a direct determination of the pathogen itself, and not of proteins or other products of its vital activity, high specificity, high speed of obtaining the result, as well as the ability to diagnose chronic and latent infections, which is especially important in the case of chlamydia. There are several varieties of PCR described, for example, in: PCR Protocols: A guide to methods and applications, 1990 (ed. M.A. Innis et al.), Academic Press, San Diego, CA; PCR Strategies, 1995 (ed. M. A. Innis et al.), Academic Press, San Diego, CA; PCR Protocols. Series: Methods in Molecular Biology, 2003, Vol. 226 (eds., J. M. S. Bartlett, D. Stirling), Humana Press. In earlier PCR versions, gel electrophoresis was used to detect amplification products, which complicates the analysis. Modern modifications of the method use fluorescent labels and detection of a fluorescent signal directly during the reaction, for which the method is often called real-time PCR ("real-time PCR"). Another name for the method is quantitative PCR (“quantitative PCR, qPCR”), which reflects the capabilities of the method to quantify the detected object.

Известен способ обнаружения бактерий, принадлежащих семейству Chlamydiaceae (с флуоресцентной детекцией продуктов амплификации), в котором в качестве мишени использовали ген 23 S рРНК и так называемые FRET-зонды (DeGraves et al. 2003). Авторы способа не учитывали 9-ти видовую классификацию хламидий, вошедшую в обиход в начале 20-го столетия (Everett et al. 1999), и декларировали детекцию только трех видов С.psittaci, С.corum и С.pneumonia.A known method for detecting bacteria belonging to the family Chlamydiaceae (with fluorescence detection of amplification products), in which the gene 23 S rRNA and the so-called FRET probes were used as a target (DeGraves et al. 2003). The authors of the method did not take into account the 9 species classification of chlamydia, which came into use at the beginning of the 20th century (Everett et al. 1999), and declared the detection of only three species of C. psittaci, C. corum and C. pneumonia.

Еще один способ описан в работе (Robertson et al. 2009). В этом способе в качестве мишени использовали ген 16S рРНК, а генерация флуоресцентного сигнала происходила в результате использования интеркалирующего красителя SYTO 9 green. Недостатком методов с интеркалирующими красителями является их более низкая специфичность, так как краситель будет взаимодействовать и с неспецифическими ампликонами, давая рост флуоресцентного сигнала.Another method is described in (Robertson et al. 2009). In this method, the 16S rRNA gene was used as a target, and the fluorescent signal was generated as a result of using the intercalating dye SYTO 9 green. The disadvantage of methods with intercalating dyes is their lower specificity, since the dye will also interact with non-specific amplicons, giving rise to a fluorescent signal.

Наиболее близким настоящему изобретению является способ, описанный в работе (Wooters et al. 2009). В качестве мишени использовали ген 16S рРНК и Taqman-зонд. Размер ампликона составлял 208 п.о., что для данного метода не является оптимальным, т.к. амплифицируется значительная часть мишени, которая не связывается с зондом и является излишней.Closest to the present invention is the method described in (Wooters et al. 2009). The 16S rRNA gene and Taqman probe were used as a target. The amplicon size was 208 bp, which is not optimal for this method, because a significant part of the target is amplified, which does not bind to the probe and is unnecessary.

Технической задачей изобретения является выявление ДНК любого из 9-ти видов бактерий, относящихся к семейству Chlamydiaceae, в исследуемом материале с высокой степенью специфичности и с детекцией результатов реакции в режиме реального времени с помощью семейство-специфичного зонда.An object of the invention is to identify the DNA of any of 9 species of bacteria belonging to the Chlamydiaceae family in the studied material with a high degree of specificity and with the detection of reaction results in real time using a family-specific probe.

Указанный технический результат достигается тем, что в способе определения ДНК микроорганизмов, относящихся к семейству Chlamydiaceae, используется полимеразная цепная реакция с использованием двух праймеров и одного зонда, отличающихся тем, что в качестве праймеров используют олигонуклеотиды формулы Seq1 и Seq2, а в качестве зонда - олигонуклеотид формулы Seq3.The specified technical result is achieved in that in the method for determining the DNA of microorganisms belonging to the Chlamydiaceae family, a polymerase chain reaction is used using two primers and one probe, characterized in that oligonucleotides of the formula Seq1 and Seq2 are used as primers, and an oligonucleotide is used as a probe Seq3 formulas.

Для подбора праймеров и зонда был проведен компьютерный анализ нуклеотидных последовательностей гена 16S рРНК, определены консервативные всех видов семейства Chlamydiaceae участки, в пределах которых могут быть подобраны фланкирующие праймеры и зонд. В результате были подобраны олигонуклеотиды следуюшет составаTo select primers and a probe, a computer analysis of the nucleotide sequences of the 16S rRNA gene was performed; conservative regions of all species of the Chlamydiaceae family were determined within which flanking primers and probe could be selected. As a result, oligonucleotides were selected as follows

Seq1 5′-AAGAAGGGGATCTTAGGACCTTTCGGTT-3′Seq1 5′-AAGAAGGGGATCTTAGGACCTTTCGGTT-3 ′

Seq2 5′-GCAGTGTCTCAGTCCCAGTGTTGGC-3′Seq2 5′-GCAGTGTCTCAGTCCCAGTGTTGGC-3 ′

Seq3 5′-TGACGTCTAGGCGGATTGAGAGATTG-3′Seq3 5′-TGACGTCTAGGCGGATTGAGAGATTG-3 ′

Рассчитанная длина продукта ПЦР для праймеров Seq1 и Seq2 составляет приблизительно 150 п.н.The calculated PCR product length for primers Seq1 and Seq2 is approximately 150 bp

Техническим результатом заявляемого изобретения является сочетание нуклеотидных последовательностей двух праймеров и флуоресцентного зонда, которые могут быть использованы для ПЦР в реальном времени для определения ДНК микроорганизмов, относящихся к семейству Chlamydiaceae.The technical result of the claimed invention is a combination of the nucleotide sequences of two primers and a fluorescent probe, which can be used for real-time PCR to determine the DNA of microorganisms belonging to the Chlamydiaceae family.

Сущность изобретения поясняется на следующих примерах.The invention is illustrated by the following examples.

Пример 1. Амплификация участка гена 16S рРНК трех видов хламидий: C.trachomatis, C.pneumoniae, C.psittaci.Example 1. Amplification of the 16S rRNA gene region of three types of chlamydia: C.trachomatis, C. pneumoniae, C. psittaci.

Работоспособность праймеров исследовали в ПЦР с электрофоретическим анализом продуктов реакции.The performance of the primers was investigated in PCR with electrophoretic analysis of the reaction products.

Полимеразную цепную реакцию проводили на амплификаторе ДТ-96, производитель "ДНК-технология", г.Москва. В качестве матрицы использовали образцы ДНК C.trachomatis, C.pneumoniae, C.psittaci, полученные как описано в работе (Demkin, Zimin 2005). В качестве отрицательных образцов использовали mQ H2O и ДНК, выделенную из урогенитальных мазков здоровых людей.The polymerase chain reaction was carried out on a DT-96 thermocycler, manufacturer DNA-technology, Moscow. As a matrix, DNA samples of C.trachomatis, C. pneumoniae, C.psittaci obtained as described in (Demkin, Zimin 2005) were used. As negative samples, mQ H 2 O and DNA isolated from urogenital smears of healthy people were used.

Реакцию проводили в следующем режиме: 1 цикл стадии предварительной денатурации 2 минуты при 95°С и 40 циклов, включающих в себя 10 секунд при 95°С и 30 секунд при 55°С стадии отжига. Анализ продуктов амплификации проводили путем электрофореза в 2% агарозном геле с бромистым этидием. Результаты эксперимента, представленные на рисунке 1, показывают, что только в пробах, содержащих ДНК хламидий, образуются ампликоны расчетного размера.The reaction was carried out in the following mode: 1 cycle of the preliminary denaturation stage 2 minutes at 95 ° C and 40 cycles, including 10 seconds at 95 ° C and 30 seconds at 55 ° C of the annealing stage. The analysis of amplification products was carried out by electrophoresis in a 2% agarose gel with ethidium bromide. The experimental results shown in Figure 1 show that only samples containing chlamydial DNA produce amplicons of the calculated size.

Пример 2. Определение ДНК C.trachomatis, C.pneumoniae, C.psittaci с флуоресцентной детекцией.Example 2. Determination of DNA of C.trachomatis, C.pneumoniae, C.psittaci with fluorescence detection.

Пример демонстрирует работоспособность зонда Seq3 в режиме детекции флуоресцентного сигнала. Зонд на 5′-конце содержал флуоресцентный краситель FAM, а на 3′-конце - флуоресцентный гаситель BHQ2.The example demonstrates the operability of the Seq3 probe in the detection mode of a fluorescent signal. The probe at the 5′-end contained FAM fluorescent dye, and the BHQ2 fluorescent quencher at the 3′-end.

Инкубационная смесь была как в примере 1 за тем исключением, что дополнительно был добавлен зонд в концентрации 0,17 мкМ. Набор исследованных образцов и режим амплификации - тот же, что и в примере 1, с тем лишь отличием, что проводили детекцию флуоресцентного сигнала по каналу FAM на этапе отжига праймеров при 55°С. На рис.2 представлены результаты эксперимента. Разгорание флуоресцентного сигнала наблюдается только в пробах, содержащих ДНК хламидий. Разгорание флуоресцентного сигнала в образцах, где в качестве матрицы была использована mQ H2O, и в образце ДНК, выделенной из урогенитального мазка здорового человека, не выявлено.The incubation mixture was as in Example 1, with the exception that a probe was added at a concentration of 0.17 μM. The set of samples studied and the amplification mode are the same as in Example 1, with the only difference being that the fluorescent signal was detected via the FAM channel at the stage of primer annealing at 55 ° C. Figure 2 shows the experimental results. The flare-up of a fluorescent signal is observed only in samples containing Chlamydia DNA. The flare-up of the fluorescent signal in the samples, where mQ H 2 O was used as the matrix, and in the DNA sample isolated from the urogenital smear of a healthy person, were not detected.

Полученные результаты говорят о том, что подобранные олигонуклеотиды обеспечивают специфическое определение ДНК хламидий. Целевые последовательности тех видов семейства Chlamydiaceae, тестирование которых не проводилось в описанных экспериментах, полностью комплементарны разработанным праймерам и зонду, что обеспечивает универсальность работы праймеров и зондов при определении ДНК любого из видов семейства Chlamydiaceae.The results obtained indicate that the selected oligonucleotides provide a specific definition of chlamydial DNA. The target sequences of those species of the Chlamydiaceae family that were not tested in the described experiments are fully complementary to the developed primers and probe, which ensures the universal operation of primers and probes in determining the DNA of any species of the Chlamydiaceae family.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫBIBLIOGRAPHY

PCR Strategies, 1995 (ред. М.A.Innis и др.), Academic Press, San Diego, CA;PCR Strategies, 1995 (ed. M. A. Innis et al.), Academic Press, San Diego, CA;

PCR Protocols. Series: Methods in Molecular Biology, 2003, Vol.226 (ред., J.M.S.Bartlett, D.Stirling), Humana Press.PCR Protocols. Series: Methods in Molecular Biology, 2003, Vol. 226 (eds., J. M. S. Bartlett, D. Stirling), Humana Press.

DeGraves FJ, Gao D, Hehnen HR, Schlapp T, Kaltenboeck В Quantitative detection of Chlamydia psittaci and С pecorum by high-sensitivity real-time PCR reveals high prevalence of vaginal infection in cattle. J Clin Microbiol 2003 Vol.41(4): 1726-1729DeGraves FJ, Gao D, Hehnen HR, Schlapp T, Kaltenboeck B Quantitative detection of Chlamydia psittaci and C pecorum by high-sensitivity real-time PCR reveals high prevalence of vaginal infection in cattle. J Clin Microbiol 2003 Vol.41 (4): 1726-1729

Robertson T, Bibby S, O′Rourke D, Belfiore T, Lambie H, Noormohammadi AH.Robertson T, Bibby S, O′Rourke D, Belfiore T, Lambie H, Noormohammadi AH.

Characterization of Chlamydiaceae species using PCR and high resolution melt curve analysis of the 16S rRNA gene. J Appl Microbiol. 2009 Vol.107(6):2017-2028.Characterization of Chlamydiaceae species using PCR and high resolution melt curve analysis of the 16S rRNA gene. J Appl Microbiol. 2009 Vol. 107 (6): 2017-2028.

Wooters MA, Kaufhold RM, Field JA, Indrawati L, Heinrichs JH, Smith JG. A real-time quantitative polymerase chain reaction assay for the detection of Chlamydia in the mouse genitalWooters MA, Kaufhold RM, Field JA, Indrawati L, Heinrichs JH, Smith JG. A real-time quantitative polymerase chain reaction assay for the detection of Chlamydia in the mouse genital

tract model. Diagn Microbiol Infect Dis. 2009 Vol.63(2):140-147.tract model. Diagn Microbiol Infect Dis. 2009 Vol. 63 (2): 140-147.

Demkin, V.V., Zimin A.L. A new amplification target for PCR-RFLP detection and identification of Chlamydiaceae species. Arch Microbiol. 2005 Vol.183(3): 169-175.Demkin, V.V., Zimin A.L. A new amplification target for PCR-RFLP detection and identification of Chlamydiaceae species. Arch Microbiol. 2005 Vol. 183 (3): 169-175.

Claims (2)

1. Способ определения бактерий семейства Chlamydiaceae, включающий амплификацию бактериальной нуклеиновой кислоты в исследуемом материале путем проведения полимеразной цепной реакции с использованием олигонуклеотидных праймеров с последовательностями, не менее чем на 75% гомологичными последовательностям SEQ ID NO:1 и SEQ ID NO:2, и зонда с последовательностью, не менее чем на 75% гомологичной последовательности SEQ ID NO:3, содержащего на 5′ и/или 3′ концах метки.1. A method for determining bacteria of the Chlamydiaceae family, comprising the amplification of a bacterial nucleic acid in a test material by polymerase chain reaction using oligonucleotide primers with sequences of at least 75% homologous to the sequences of SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 2, and the probe with a sequence of not less than 75% homologous sequence of SEQ ID NO: 3 containing at the 5 ′ and / or 3 ′ ends of the label. 2. Способ по п.1, где в качестве меток зонда могут выступать радиоизотопы, ферменты, флуоресцентные красители, люминесцентные красители, вещества, поглощающие флуоресценцию, биотин. 2. The method according to claim 1, where the labels of the probe can be radioisotopes, enzymes, fluorescent dyes, luminescent dyes, fluorescence-absorbing substances, biotin.
RU2011141514/10A 2011-10-13 2011-10-13 OLIGONUCLEOTIDES AND METHOD OF DETERMINING DNA OF BACTERIA BELONGING TO FAMILY Chlamydiaceae RU2486255C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2011141514/10A RU2486255C1 (en) 2011-10-13 2011-10-13 OLIGONUCLEOTIDES AND METHOD OF DETERMINING DNA OF BACTERIA BELONGING TO FAMILY Chlamydiaceae

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2011141514/10A RU2486255C1 (en) 2011-10-13 2011-10-13 OLIGONUCLEOTIDES AND METHOD OF DETERMINING DNA OF BACTERIA BELONGING TO FAMILY Chlamydiaceae

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2011141514A RU2011141514A (en) 2013-04-20
RU2486255C1 true RU2486255C1 (en) 2013-06-27

Family

ID=48702222

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2011141514/10A RU2486255C1 (en) 2011-10-13 2011-10-13 OLIGONUCLEOTIDES AND METHOD OF DETERMINING DNA OF BACTERIA BELONGING TO FAMILY Chlamydiaceae

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2486255C1 (en)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2700381C1 (en) * 2018-10-01 2019-09-16 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина" Method for detecting dna of chlomydia in farm animals and birds
RU2700456C1 (en) * 2018-10-01 2019-09-17 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина" Method for detecting dna of avnithosis agent (chlamydophila psittaci) in birds
RU2700448C1 (en) * 2018-10-01 2019-09-17 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина" Test system for detecting dna of bird flu ornithosis (chlamydophila psittaci) in birds
RU2701332C1 (en) * 2018-10-01 2019-09-25 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина" Test system for detecting chlamydial dna in livestock animals and birds

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2241042C1 (en) * 2003-05-08 2004-11-27 Смоленская государственная медицинская академия Method for differential diagnosis of chlamydia species, chlamydophila pneumoniae and pathogens of zoonotic chlamydiosis
RU2245370C1 (en) * 2003-05-05 2005-01-27 Смоленская государственная медицинская академия Method for differential diagnosis of representatives of family chlamydiaceae
UA51635U (en) * 2010-01-19 2010-07-26 Полтавская Исследовательская Станция Института Ветеринарной Медицины Украинской Академии Аграрных Наук method for determination of DNA of Chlamydiaceae family bacteria in polymerase chain reaction by amplification of gene fragment of membrane main protein (MOMP)

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2245370C1 (en) * 2003-05-05 2005-01-27 Смоленская государственная медицинская академия Method for differential diagnosis of representatives of family chlamydiaceae
RU2241042C1 (en) * 2003-05-08 2004-11-27 Смоленская государственная медицинская академия Method for differential diagnosis of chlamydia species, chlamydophila pneumoniae and pathogens of zoonotic chlamydiosis
UA51635U (en) * 2010-01-19 2010-07-26 Полтавская Исследовательская Станция Института Ветеринарной Медицины Украинской Академии Аграрных Наук method for determination of DNA of Chlamydiaceae family bacteria in polymerase chain reaction by amplification of gene fragment of membrane main protein (MOMP)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2700381C1 (en) * 2018-10-01 2019-09-16 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина" Method for detecting dna of chlomydia in farm animals and birds
RU2700456C1 (en) * 2018-10-01 2019-09-17 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина" Method for detecting dna of avnithosis agent (chlamydophila psittaci) in birds
RU2700448C1 (en) * 2018-10-01 2019-09-17 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина" Test system for detecting dna of bird flu ornithosis (chlamydophila psittaci) in birds
RU2701332C1 (en) * 2018-10-01 2019-09-25 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина" Test system for detecting chlamydial dna in livestock animals and birds

Also Published As

Publication number Publication date
RU2011141514A (en) 2013-04-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Pantchev et al. New real-time PCR tests for species-specific detection of Chlamydophila psittaci and Chlamydophila abortus from tissue samples
Kumar et al. Rapid multiplex PCR assay for the simultaneous detection of the Brucella Genus, B. abortus, B. melitensis, and B. suis
Pusterla et al. Real‐time polymerase chain reaction: a novel molecular diagnostic tool for equine infectious diseases
RU2625006C1 (en) Method for target amplification of human reproductive organs infectors genomes for simultaneous identification of infectors with primer set
RU2486255C1 (en) OLIGONUCLEOTIDES AND METHOD OF DETERMINING DNA OF BACTERIA BELONGING TO FAMILY Chlamydiaceae
Kim et al. Differential diagnosis of Brucella abortus by real-time PCR based on a single-nucleotide polymorphisms
Kim et al. Detection of representative enteropathogenic bacteria, Vibrio spp., pathogenic Escherichia coli, Salmonella spp., Shigella spp., and Yersinia enterocolitica, using a virulence factor gene-based oligonucleotide microarray
Dong et al. Development of a three-panel multiplex real-time PCR assay for simultaneous detection of nine canine respiratory pathogens
Ciervo et al. Rapid detection and differentiation of Bartonella spp. by a single-run real-time PCR
KR20090100950A (en) Method for detection brucellosis using real time pcr
Okuda et al. Detection of Chlamydophila psittaci by using SYBR green real-time PCR
JP2014501494A (en) Quantitative multiple identification of nucleic acid targets
US20160122805A1 (en) Primers for the detection and typing of carbapenemase-producing bacterial strains, and detection method and kit
RU2715333C1 (en) Kit of reagents for detection and identification of dna of brucellosis agents by real-time polymerase chain reaction om-screen-brucellosis-rv
Nour et al. Amplification of P1 and 16S rRNA genes by nested PCR for detection of Mycoplasma pneumoniae in paediatric patients
RU2551208C1 (en) SET OF OLIGONUCLEOTIDE PRIMERS AND FLUORESCENTLY LABELLED PROBE FOR IDENTIFICATION OF Burkholderia mallei AND ITS DIFFERENTIATION FROM Burkholderia pseudomallei
Galluzzi et al. Current molecular techniques for the detection of microbial pathogens
RU2737775C1 (en) Method for identifying yersinia pestis and yersinia pseudotuberculosis and simultaneous differentiation of yersinia pestis of main and central asian subspecies by multiplex pcr
WO2014189398A1 (en) Method for simultaneous detection of bacteria and fungi in a biological preparation by pcr, primers as well as bacteria and fungi detection kit
Yang et al. Development of a rapid real-time PCR assay for detection and quantification of four familiar species of Chlamydiaceae
Chua et al. Rapid identification of melioidosis agent by an insulated isothermal PCR on a field–deployable device
RU2732626C1 (en) System of oligonucleotide primers and probe for detecting dna mycoplasma bovigenitalium
RU2740808C1 (en) System of oligonucleotide primers and probe for detecting dna mycoplasma bovis
US20040185446A1 (en) Cpn60 targets for quantification of microbial species
Giles et al. Development of a DNA-based microarray for the detection of zoonotic pathogens in rodent species

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20141014

NF4A Reinstatement of patent

Effective date: 20160220

MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20171014