RU2482474C2 - Method for biotesting toxicity of water and aqueous solutions - Google Patents
Method for biotesting toxicity of water and aqueous solutions Download PDFInfo
- Publication number
- RU2482474C2 RU2482474C2 RU2011102403/15A RU2011102403A RU2482474C2 RU 2482474 C2 RU2482474 C2 RU 2482474C2 RU 2011102403/15 A RU2011102403/15 A RU 2011102403/15A RU 2011102403 A RU2011102403 A RU 2011102403A RU 2482474 C2 RU2482474 C2 RU 2482474C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- light
- intensity
- toxicity
- light exposure
- periods
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Investigating, Analyzing Materials By Fluorescence Or Luminescence (AREA)
Abstract
Description
Настоящее изобретение относится к биофизическим методам определения токсичности вод и водных растворов и может быть применено для оперативного биотестирования токсичности природных и сточных вод, а также для установления класса опасности различных отходов при использовании в качестве тест-объекта микроводорослей и других растительных организмов.The present invention relates to biophysical methods for determining the toxicity of water and aqueous solutions and can be used for operational biotesting of the toxicity of natural and waste waters, as well as for establishing the hazard class of various wastes when microalgae and other plant organisms are used as a test object.
Известен способ определения фитотоксичности вод, основанный на регистрации изменения интенсивности миллисекундного фотоиндуцируемого послесвечения (замедленной флуоресценции) хлоропластов или клеток хлореллы под действием химических соединений, содержащихся в тестируемых пробах [авт. свид. СССР №492805, G01N 33/00, опубл. 25.11.75 г.].A known method for determining the phytotoxicity of water, based on recording changes in the intensity of the millisecond photoinduced afterglow (delayed fluorescence) of chloroplasts or chlorella cells under the action of chemical compounds contained in the tested samples [ed. testimonial. USSR No. 492805, G01N 33/00, publ. 11.25.75 g.].
Недостатком данного способа является то, что он не обеспечивает высокую точность измерения степени воздействия токсических веществ в анализируемых водах, поскольку интенсивность регистрируемой замедленной флуоресценции (ЗФ) будет зависеть не только от степени токсичности пробы, но и от мутности и цветности тестируемой воды или раствора, а также количества взятого тест-организма.The disadvantage of this method is that it does not provide high accuracy in measuring the degree of exposure to toxic substances in the analyzed waters, since the intensity of the recorded delayed fluorescence (PF) will depend not only on the degree of toxicity of the sample, but also on the turbidity and color of the tested water or solution, and also the amount of test organism taken.
Наиболее близким техническим решением для способа определения содержания фитотоксических веществ, выбранным в качестве прототипа, является [патент РФ №2069851, G01N 21/64, G01N 33/00, опубл. 27.11.1996 г.], основанный на определении токсичности различных вод и водных растворов путем измерения отношения интенсивностей ЗФ тест-организма в индукционном максимуме на высоком и низком возбуждающем свету. Данный относительный параметр ЗФ не зависит от мутности и цветности анализируемых проб, а также количества взятого тест-организма, поскольку изменение интенсивности свечения во всех случаях будет пропорциональным для обоих световых условий возбуждения и регистрации ЗФ и потому не отражается на величине его относительного параметра.The closest technical solution for the method for determining the content of phytotoxic substances, selected as a prototype, is [RF patent No. 2069851, G01N 21/64, G01N 33/00, publ. November 27, 1996], based on the determination of the toxicity of various waters and aqueous solutions by measuring the ratio of the intensities of the ZF of the test organism at the induction maximum at high and low exciting light. This relative parameter of the SF does not depend on the turbidity and color of the analyzed samples, as well as the amount of the test organism taken, since the change in the glow intensity will in all cases be proportional to both light conditions for the excitation and registration of the SF and therefore does not affect the value of its relative parameter.
Недостатком этого способа является трудность подбора интенсивности низкого возбуждающего света, обеспечивающего максимальную чувствительность и точность данного метода. Ситуация усугубляется тем, что этот способ не использует возможности покомпонентной регистрации интенсивности ЗФ, что также оказывает существенное влияние на показатели чувствительности растительных тест-организмов к токсикантам.The disadvantage of this method is the difficulty in selecting the intensity of low exciting light, providing maximum sensitivity and accuracy of this method. The situation is aggravated by the fact that this method does not use the possibility of component-wise recording of PF intensity, which also has a significant effect on the sensitivity of plant test organisms to toxicants.
Техническим результатом изобретения является повышение точности и чувствительности способа измерения токсичности при биотестировании вод и водных растворов за счет создания новых условий регистрации замедленной флуоресценции хлорофилла растительных объектов.The technical result of the invention is to increase the accuracy and sensitivity of the method for measuring toxicity during biotesting of water and aqueous solutions by creating new conditions for recording the delayed fluorescence of chlorophyll in plant objects.
Технический результат достигается тем, что в способе биотестирования токсичности вод и водных растворов, включающем облучение исследуемого образца растительного объекта прерывистым светом высокой интенсивности 100-250 Вт/м2 от синих светоизлучающих диодов с возбуждением замедленной флуоресценции этого образца и ее регистрации в индукционных максимумах в красной спектральной области фотоприемником между световыми импульсами, причем за счет сокращения длительности световых периодов возбуждения свечения при одновременном увеличении темновых интервалов между ними создают условия низкого светового облучения, а за счет увеличения соотношения длительности световых периодов к темновым создают условия высокого светового облучения, измеряют интенсивность замедленной флуоресценции исследуемого образца в режиме высокого светового облучения в начале каждой кривой затухания, интенсивность в режиме низкого светового облучения измеряют в конце каждой кривой затухания, а о токсичности судят по их отношению.The technical result is achieved by the fact that in the method of biotesting the toxicity of water and aqueous solutions, including irradiating the test sample of a plant object with high-intensity intermittent light of 100-250 W / m 2 from blue light-emitting diodes with excitation of the delayed fluorescence of this sample and its registration at the induction maxima in red the spectral region of the photodetector between light pulses, moreover, by reducing the duration of the light periods of the excitation of the glow with a simultaneous increase in At intervals between them, low light exposure conditions are created, and by increasing the ratio of light to dark periods, high light conditions are created, the delayed fluorescence intensity of the test sample is measured in the high light exposure mode at the beginning of each attenuation curve, and the intensity in the low light exposure mode is measured at the end of each attenuation curve, and toxicity is judged by their ratio.
Заявляемый способ биотестирования вод и водных растворов отличается увеличением диапазона реагирования относительного показателя замедленной флуоресценции хлорофилла растительного тест-организма при воздействии на него поллютантов, что обеспечивает большую точность и чувствительность способа измерения токсического эффекта.The inventive method for biotesting water and aqueous solutions is characterized by an increase in the response range of the relative delayed fluorescence of chlorophyll of the plant test organism when exposed to pollutants, which provides greater accuracy and sensitivity of the method for measuring the toxic effect.
Таким образом, заявляемый способ биотестирования токсичности вод и водных растворов соответствует критерию «новизна».Thus, the claimed method of biotesting the toxicity of water and aqueous solutions meets the criterion of "novelty."
Признаки, отличающие заявляемое техническое решение от прототипа, не выявлены в других технических решениях при изучении данных и смежных областей техники и, следовательно, обеспечивают заявляемому решению соответствие критерию «изобретательский уровень».The features distinguishing the claimed technical solution from the prototype are not identified in other technical solutions when studying data and related areas of technology and, therefore, provide the claimed solution with the criterion of "inventive step".
Изобретение поясняется чертежами. На фиг.1 показаны зависимости интенсивности ЗФ суспензии хлореллы, возбуждаемой в режимах высокого (ЗФв) и низкого (ЗФн) света, от концентрации (в молях/литр) диурона - токсиканта, вызывающего подавление фотосинтетического транспорта электронов. На фиг.2 показаны концентрационные зависимости показателей ЗФ водоросли хлорелла в присутствии ионов кадмия. На фиг.3 показана зависимость относительного показателя ЗФ от концентрации (процента разбавления) тестируемых сточных вод.The invention is illustrated by drawings. Figure 1 shows the dependence of the SF intensity of a chlorella suspension excited in high (ZFv) and low (ZFn) light modes on the concentration (in moles / liter) of diuron, a toxicant that suppresses photosynthetic electron transport. Figure 2 shows the concentration dependences of the parameters PF algae chlorella in the presence of cadmium ions. Figure 3 shows the dependence of the relative indicator of ZF on the concentration (percentage dilution) of the tested wastewater.
Сущность изобретения заключается в том, что токсическое воздействие на тест-организмы оценивается на основе регистрации интенсивности замедленной флуоресценции содержащегося в них хлорофилла с помощью устройства для регистрации ЗФ хлорофилла растительных объектов. При определении токсичности тестируемых вод по относительному показателю (ОП) ЗФ в индукционном максимуме измерение интенсивности свечения тест-организма при возбуждении светом высокой интенсивности производят в начале каждой кривой затухания, а в режиме возбуждения низким светом - в ее конце. При этом условия низкого светового облучения создают посредством сокращения длительности световых импульсов возбуждения при одновременном увеличении длительности темновых интервалов между ними. В свою очередь, формирование условий высокого светового облучения обеспечивают не только путем использования высокоинтенсивного возбуждающего света, но через повышение среднего уровня светового облучения тест-организма за счет увеличения длительности световых периодов и сокращения темновых.The essence of the invention lies in the fact that the toxic effect on test organisms is evaluated on the basis of recording the intensity of the delayed fluorescence of the chlorophyll contained in them using a device for recording the chlorophyll PF of plant objects. When determining the toxicity of the tested waters by the relative indicator (OD) of the SF at the induction maximum, the luminescence intensity of the test organism when excited by high intensity light is measured at the beginning of each attenuation curve, and in the low-light excitation mode, at its end. In this case, low light exposure conditions are created by reducing the duration of the light excitation pulses while increasing the duration of the dark intervals between them. In turn, the formation of high light exposure conditions is ensured not only by using high-intensity exciting light, but by increasing the average level of light exposure of the test organism by increasing the duration of light periods and reducing dark ones.
Пример 1Example 1
В 6 кювет из материала с низким уровнем послесвечения (ЗФ) вносят по 4 см3 суспензии водоросли хлореллы с оптической плотностью 0,040, измеренной при длине волны 560 нм и толщине слоя 2 см. В первую из них добавляют 0,1 см3 дистиллированной воды (контроль), а в остальные по 0,1 см3 раствора диурона различных концентраций. После этого кюветы загружают в устройство для регистрации замедленной флуоресценции хлорофилла растительных объектов и производят измерение ЗФ в двух световых режимах. На фиг.1 показаны зависимости интенсивности ЗФ суспензии хлореллы, возбуждаемой в режимах высокого (ЗФв) и низкого (ЗФн) света, от концентрации (в молях/литр) диурона - токсиканта, вызывающего подавление фотосинтетического транспорта электронов. Первый режим достигают тем, что относительно длительные импульсы (20 мсек) возбуждающего света высокой интенсивности (100-250 Вт/м2) чередуют со сравнительно короткими темновыми интервалами (5 мсек), во время которых, в первую миллисекунду, регистрируют ЗФ. Режим низкого света получен благодаря тому, что столь же яркий импульс возбуждения подают в течение 1-4 мсек, после которого следует более длительный темновой интервал (50 мсек). При этом интенсивность ЗФ измеряют не сразу после окончания светового возбуждения, а с задержкой 20-30 мсек. Поскольку в этот промежуток быстрые компоненты успеют полностью затухнуть, то в конце кривой затухающего свечения остаются и регистрируются только медленные компоненты.4 cm 3 of a suspension of chlorella algae with an optical density of 0.040, measured at a wavelength of 560 nm and a layer thickness of 2 cm, are introduced into 6 cuvettes from a material with a low level of afterglow (ZF). 0.1 cm 3 of distilled water is added to the first one ( control), and the remaining 0.1 cm 3 of a solution of diuron of various concentrations. After this, the cuvettes are loaded into the device for recording the delayed fluorescence of chlorophyll of plant objects and the measurement of SF in two light modes is performed. Figure 1 shows the dependence of the SF intensity of a chlorella suspension excited in high (ZFv) and low (ZFn) light modes on the concentration (in moles / liter) of diuron, a toxicant that suppresses photosynthetic electron transport. The first mode is achieved by the fact that relatively long pulses (20 ms) of high-intensity exciting light (100-250 W / m 2 ) are alternated with relatively short dark intervals (5 ms), during which, in the first millisecond, the SF is recorded. The low light mode is obtained due to the fact that an equally bright excitation pulse is supplied for 1-4 ms, followed by a longer dark interval (50 ms). In this case, the intensity of the SF is not measured immediately after the end of the light excitation, but with a delay of 20-30 ms. Since fast components will completely decay during this interval, only slow components remain and are recorded at the end of the damped glow curve.
В связи с тем, что интенсивность этих компонент у контрольной тест-культуры водоросли в отсутствие токсикантов в несколько сотен раз ниже, чем быстрых компонент, то при переходе в режим низкого света чувствительность системы регистрации автоматически увеличивается в 100 раз. Поэтому для реального представления о величине ОП ЗФ его значения, показанные на фиг.3, надо увеличить в 100 раз. Чтобы интенсивность свечения могла быть измерена в его индукционных максимумах, световые импульсы возбуждения, чередующиеся периодами, регистрируется ЗФ, подаются в течение 2-3 секунд.Due to the fact that the intensity of these components in the control test culture of algae in the absence of toxicants is several hundred times lower than that of the fast components, when switching to low light mode, the sensitivity of the registration system automatically increases by 100 times. Therefore, for a real idea of the magnitude of the OP ZF its values, shown in figure 3, must be increased 100 times. So that the luminescence intensity can be measured at its induction maxima, the light pulses of excitation, alternating in periods, are recorded by the SF, and they are supplied for 2-3 seconds.
Представленные на фиг.1 данные показывают, что интенсивность ЗФв тест-культуры водоросли хлорелла с ростом концентрации токсиканта многократно снижается. В этих условиях ЗФн столь же значительно возрастает. При этом относительный показатель ЗФ, в виде отношения интенсивностей свечений в режимах высокого и низкого возбуждающего света, уменьшается в 100 и более раз.The data presented in figure 1 show that the intensity of the PFV of the test culture of chlorella algae decreases with increasing concentration of the toxicant. Under these conditions, the ZFn increases equally. In this case, the relative index of the SF, in the form of the ratio of the intensities of the glows in the regimes of high and low exciting light, decreases by a factor of 100 or more.
Пример 2Example 2
В кюветы, аналогичные примеру 1, вместо диурона вносят различные концентрации ионов кадмия. Согласно рекомендациям [патент РФ №2222003, G01N 21/64, опубл. 20.01.2004 г.] тестируемые пробы, для большего проявления действия данного тяжелого металла на клетки водоросли, в течение 1 часа подвергают световой экспозиции. Интенсивность светового облучения кювет с тест-культурой водоросли составляет 60 Вт/м. На фиг.2 показаны концентрационные зависимости показателей ЗФ водоросли хлорелла в присутствии ионов кадмия, измеренные в условиях, аналогичных указанным в примере 1. Хорошо видно, что и этот токсикант вызывает значительное снижение интенсивности ЗФв и увеличение ЗФн. Величина отношения этих показателей ЗФ также многократно снижается.In cuvettes similar to Example 1, instead of diuron, various concentrations of cadmium ions are introduced. According to the recommendations [RF patent No. 2222003, G01N 21/64, publ. January 20, 2004] the tested samples, for a greater manifestation of the action of this heavy metal on algal cells, are exposed to light exposure for 1 hour. The intensity of light irradiation of the cell with a test culture of algae is 60 W / m Figure 2 shows the concentration dependences of the SF indicators of chlorella algae in the presence of cadmium ions, measured under conditions similar to those described in example 1. It is clearly seen that this toxicant also causes a significant decrease in the intensity of the RFF and an increase in the APF. The magnitude of the ratio of these indicators of SF also decreases many times.
Пример 3Example 3
В кюветы, аналогичные примеру 1, вносят по 3,6 см3 сточных вод целлюлозно-бумажного комбината (ЦБК) и сточных вод на выходе городских очистных сооружений (ОС), разбавленные дистиллированной водой в ряд кратный двум. В качестве контроля используют дистиллированную воду. В каждое разведение сточных вод добавляют по 0,4 см3 культуры водоросли хлорелла с оптической плотностью 0,4. После 1-часовой световой экспозиции с интенсивностью светового облучения 60 Вт/м2 производят измерение интенсивности замедленной флуоресценции в режимах высокого и низкого светового облучения. На фиг.3 показана зависимость относительного показателя ЗФ от концентрации (процента разбавления) тестируемых сточных вод (параметры замера ЗФ, как в примере 1). Сточная вода после очистных сооружений практически не вызывает изменения относительного показателя ЗФ культуры водоросли, что свидетельствует о ее нетоксичности. И наоборот, стоки ЦБК проявляют достаточно высокую токсичность, которая снимается только после их 8-кратного разбавления чистой водой.3.6 cm 3 of wastewater from a pulp and paper mill (PPM) and wastewater at the outlet of a municipal treatment plant (OS) diluted with distilled water in a multiple of two are added to cuvettes similar to Example 1. Distilled water is used as a control. 0.4 cm 3 of chlorella algae culture with an optical density of 0.4 is added to each wastewater dilution. After a 1-hour light exposure with a light irradiation intensity of 60 W / m 2 , the delayed fluorescence intensity is measured in high and low light irradiation modes. Figure 3 shows the dependence of the relative indicator of SF on the concentration (percentage dilution) of the tested wastewater (measurement parameters of SF, as in example 1). Wastewater after treatment plants practically does not cause a change in the relative indicator of SF of algae culture, which indicates its non-toxicity. Conversely, the effluents of the pulp and paper mill show rather high toxicity, which is removed only after their 8-fold dilution with clean water.
Преимущество заявляемого способа биотестирования токсичности вод и водных растворов заключается в повышении точности и чувствительности измерения токсичности вод при биотестировании вследствие увеличения диапазона реагирования относительного показателя замедленной флуоресценции хлорофилла растительного тест-организма при воздействии на него поллютантов, за счет создания новых условий регистрации замедленной флуоресценции хлорофилла растительных тест-организмов.The advantage of the proposed method for biotesting the toxicity of water and aqueous solutions is to increase the accuracy and sensitivity of measuring the toxicity of water during biotesting due to an increase in the response range of the relative delayed fluorescence of chlorophyll of the plant test organism when exposed to pollutants, by creating new conditions for recording the delayed fluorescence of chlorophyll of the plant test -organisms.
Claims (1)
Priority Applications (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2011102403/15A RU2482474C2 (en) | 2011-01-21 | 2011-01-21 | Method for biotesting toxicity of water and aqueous solutions |
EA201101386A EA021097B1 (en) | 2011-01-21 | 2011-10-25 | Method for biotesting toxicity of water and aqueous solutions |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2011102403/15A RU2482474C2 (en) | 2011-01-21 | 2011-01-21 | Method for biotesting toxicity of water and aqueous solutions |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2011102403A RU2011102403A (en) | 2012-07-27 |
RU2482474C2 true RU2482474C2 (en) | 2013-05-20 |
Family
ID=46614808
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2011102403/15A RU2482474C2 (en) | 2011-01-21 | 2011-01-21 | Method for biotesting toxicity of water and aqueous solutions |
Country Status (2)
Country | Link |
---|---|
EA (1) | EA021097B1 (en) |
RU (1) | RU2482474C2 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN106248882A (en) * | 2016-08-19 | 2016-12-21 | 河北神通光电科技有限公司 | Plant illumination LED red blue spectrum ratio evaluation methodology |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2732203C1 (en) * | 2019-12-26 | 2020-09-14 | федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования «Национальный исследовательский Томский политехнический университет» | Method of determining concentration of cells in suspension of microalgae |
Citations (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
SU492805A1 (en) * | 1974-03-20 | 1975-11-25 | Всесоюзный научно-исследовательский институт химических средств защиты растений | Method for determining herbicidal activity |
SU566534A3 (en) * | 1973-10-15 | 1977-07-25 | Хайсел Инк (Фирма) | Apparatus for conducting an analysis |
RU2065722C1 (en) * | 1992-09-17 | 1996-08-27 | Раменское приборостроительное конструкторское бюро | Device for evaluation of eye fundus blood supply |
RU2069851C1 (en) * | 1992-07-15 | 1996-11-27 | Григорьев Юрий Сергеевич | Process of detection of content of phytotoxic substances |
US20030048445A1 (en) * | 2001-09-12 | 2003-03-13 | Eugene Tokhtuev | Multichannel fluorosensor |
RU2282196C2 (en) * | 2001-05-09 | 2006-08-20 | Эксис-Шилд Аса | Device for analyzing |
RU2349355C2 (en) * | 2006-11-07 | 2009-03-20 | Андрей Андреевич Ворона | Physiotherapeutic device for light-beam therapy |
WO2009111834A1 (en) * | 2008-03-14 | 2009-09-17 | Runcie John W | Automated shutter for dark acclimating samples |
Family Cites Families (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CA2650259C (en) * | 1993-09-24 | 2010-01-12 | Abbott Laboratories | Capped-closure for a container |
-
2011
- 2011-01-21 RU RU2011102403/15A patent/RU2482474C2/en active
- 2011-10-25 EA EA201101386A patent/EA021097B1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
SU566534A3 (en) * | 1973-10-15 | 1977-07-25 | Хайсел Инк (Фирма) | Apparatus for conducting an analysis |
SU492805A1 (en) * | 1974-03-20 | 1975-11-25 | Всесоюзный научно-исследовательский институт химических средств защиты растений | Method for determining herbicidal activity |
RU2069851C1 (en) * | 1992-07-15 | 1996-11-27 | Григорьев Юрий Сергеевич | Process of detection of content of phytotoxic substances |
RU2065722C1 (en) * | 1992-09-17 | 1996-08-27 | Раменское приборостроительное конструкторское бюро | Device for evaluation of eye fundus blood supply |
RU2282196C2 (en) * | 2001-05-09 | 2006-08-20 | Эксис-Шилд Аса | Device for analyzing |
US20030048445A1 (en) * | 2001-09-12 | 2003-03-13 | Eugene Tokhtuev | Multichannel fluorosensor |
RU2349355C2 (en) * | 2006-11-07 | 2009-03-20 | Андрей Андреевич Ворона | Physiotherapeutic device for light-beam therapy |
WO2009111834A1 (en) * | 2008-03-14 | 2009-09-17 | Runcie John W | Automated shutter for dark acclimating samples |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
КРАЙНЮКОВ A.H. Методы биотестирования вод по замедленной флуоресценции микроводорослей. Черноголовка: ОИФХ, 1988, 128 с. * |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN106248882A (en) * | 2016-08-19 | 2016-12-21 | 河北神通光电科技有限公司 | Plant illumination LED red blue spectrum ratio evaluation methodology |
CN106248882B (en) * | 2016-08-19 | 2018-04-17 | 河北神通光电科技有限公司 | The method for obtaining the red blue spectrum ratios of plant illumination LED |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
EA021097B1 (en) | 2015-04-30 |
RU2011102403A (en) | 2012-07-27 |
EA201101386A1 (en) | 2012-07-30 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Bastien et al. | Performance evaluation of phycocyanin probes for the monitoring of cyanobacteria | |
Franklin et al. | Development of flow cytometry‐based algal bioassays for assessing toxicity of copper in natural waters | |
Schreiber et al. | New type of dual-channel PAM chlorophyll fluorometer for highly sensitive water toxicity biotests | |
TWI576586B (en) | Method for monitoring and control of a wastewater process stream | |
Franklin et al. | Development of multispecies algal bioassays using flow cytometry | |
CN101512321A (en) | Method and apparatus for the detection of living phytoplankton cells in water | |
DE60109128D1 (en) | Device for determining the volume of a single red blood cell | |
JP4108555B2 (en) | Water quality measuring method and apparatus | |
Renzi et al. | Early warning tools for ecotoxicity assessment based on Phaeodactylum tricornutum | |
CN106053421B (en) | Content of organic matter on-line checking and filter core/film breakdown early warning method and apparatus in water | |
WO2016071356A1 (en) | A ballast water analysis system | |
RU2482474C2 (en) | Method for biotesting toxicity of water and aqueous solutions | |
JPWO2005062027A1 (en) | Hazardous substance evaluation method and hazardous substance evaluation kit | |
Song et al. | Electrokinetic detection and separation of living algae in a microfluidic chip: Implication for ship’s ballast water analysis | |
EP2321423B1 (en) | Method of detecting bioactive molecules in a fluid sample | |
Wirz et al. | Micronucleus test for monitoring genotoxicity of polluted river water in Rana catesbeiana tadpoles. | |
CN103472046A (en) | Method of analyzing heavy metal pollution of vegetable based on reactive oxygen species level | |
Exton et al. | Spectral differences and temporal stability of phycoerythrin fluorescence in estuarine and coastal waters due to the domination of labile cryptophytes and stabile cyanobacteria | |
WO2014156363A1 (en) | Water quality examination method utilizing alga | |
McFarland et al. | Impact of phytoplankton size and physiology on particulate optical properties determined with scanning flow cytometry | |
Török et al. | Seasonal variation of eutrophication in some lakes of Danube Delta Biosphere Reserve | |
RU2222003C2 (en) | Method of biological testing of natural water, sewage and aqueous solutions | |
Faria et al. | Water toxicity monitoring using Vibrio fischeri: a method free of interferences from colour and turbidity | |
KR20140093389A (en) | Total Ecotoxicological measuring system using Photochemical algae sensor | |
JP2009236832A (en) | Monitoring method and device for dissolved pollutant |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PD4A | Correction of name of patent owner |