EA021097B1 - Method for biotesting toxicity of water and aqueous solutions - Google Patents
Method for biotesting toxicity of water and aqueous solutions Download PDFInfo
- Publication number
- EA021097B1 EA021097B1 EA201101386A EA201101386A EA021097B1 EA 021097 B1 EA021097 B1 EA 021097B1 EA 201101386 A EA201101386 A EA 201101386A EA 201101386 A EA201101386 A EA 201101386A EA 021097 B1 EA021097 B1 EA 021097B1
- Authority
- EA
- Eurasian Patent Office
- Prior art keywords
- light
- toxicity
- intensity
- water
- aqueous solutions
- Prior art date
Links
Landscapes
- Investigating, Analyzing Materials By Fluorescence Or Luminescence (AREA)
Abstract
Description
Настоящее изобретение относится к биофизическим методам определения токсичности вод и водных растворов и может быть применено для оперативного биотестирования токсичности природных и сточных вод, а также для установления класса опасности различных отходов при использовании в качестве тест-объекта микроводорослей и других растительных организмов.The present invention relates to biophysical methods for determining the toxicity of water and aqueous solutions and can be used for operational biotesting of the toxicity of natural and waste waters, as well as for establishing the hazard class of various wastes when microalgae and other plant organisms are used as a test object.
Известен способ определения фитотоксичности вод, основанный на регистрации изменения интенсивности миллисекундного фотоиндуцируемого послесвечения (замедленной флуоресценции) хлоропластов или клеток хлореллы под действием химических соединений, содержащихся в тестируемых пробах [Авт.св. СССР № 492805, Ο01Ν 33/00, опубл. 25.11.1975 г.].A known method for determining the phytotoxicity of water, based on recording changes in the intensity of the millisecond photoinduced afterglow (delayed fluorescence) of chloroplasts or chlorella cells under the action of chemical compounds contained in the tested samples [Auth. USSR No. 492805, Ο01Ν 33/00, publ. November 25, 1975].
Недостатком данного способа является то, что он не обеспечивает высокую точность измерения степени воздействия токсических веществ в анализируемых водах, поскольку интенсивность регистрируемой замедленной флуоресценции (ЗФ) будет зависеть не только от степени токсичности пробы, но и от мутности и цветности тестируемой воды или раствора, а также количества взятого тест-организма.The disadvantage of this method is that it does not provide high accuracy in measuring the degree of exposure to toxic substances in the analyzed waters, since the intensity of the recorded delayed fluorescence (SF) will depend not only on the degree of toxicity of the sample, but also on the turbidity and color of the tested water or solution, also the amount of test organism taken.
Наиболее близким техническим решением для способа определения содержания фитотоксических веществ, выбранным в качестве прототипа, является патент РФ № 2069851 [Ο01Ν 21/64, Ο01Ν 33/00, опубл. 27.11.1996 г.], основанный на определении токсичности различных вод и водных растворов путем измерения отношения интенсивностей ЗФ тест-организма в индукционном максимуме на высоком и низком возбуждающем свету. Данный относительный параметр ЗФ не зависит от мутности и цветности анализируемых проб, а также количества взятого тест-организма, поскольку изменение интенсивности свечения во всех случаях будет пропорциональным для обоих световых условий возбуждения и регистрации ЗФ, и потому не отражается на величине его относительного параметра.The closest technical solution for the method for determining the content of phytotoxic substances, selected as a prototype, is RF patent No. 2069851 [Ο01Ν 21/64, Ο01Ν 33/00, publ. November 27, 1996], based on the determination of the toxicity of various waters and aqueous solutions by measuring the ratio of the intensities of the ZF of the test organism at the induction maximum at high and low exciting light. This relative parameter of the SF does not depend on the turbidity and color of the analyzed samples, as well as the amount of the test organism taken, since the change in the intensity of the glow in all cases will be proportional to both light conditions of excitation and registration of the SF, and therefore does not affect the value of its relative parameter.
Недостатком этого способа является трудность подбора интенсивности низкого возбуждающего света, обеспечивающего максимальную чувствительность и точность данного метода. Ситуация усугубляется тем, что этот способ не использует возможности покомпонентной регистрации интенсивности ЗФ, что также оказывает существенное влияние на показатели чувствительности растительных тесторганизмов к токсикантам.The disadvantage of this method is the difficulty in selecting the intensity of low exciting light, providing maximum sensitivity and accuracy of this method. The situation is aggravated by the fact that this method does not use the possibility of component-wise recording of PF intensity, which also has a significant effect on the sensitivity of plant test organisms to toxicants.
Техническим результатом изобретения является повышение точности и чувствительности способа измерения токсичности при биотестировании вод и водных растворов за счет создания новых условий регистрации замедленной флуоресценции хлорофилла растительных объектов.The technical result of the invention is to increase the accuracy and sensitivity of the method for measuring toxicity during biotesting of water and aqueous solutions by creating new conditions for recording the delayed fluorescence of chlorophyll in plant objects.
Технический результат достигается тем, что в способе биотестирования токсичности вод и водных растворов, включающем облучение исследуемого образца растительного объекта прерывистым светом высокой интенсивности 100-250 Вт/м2 от светодиодов видимого спектра излучения с возбуждением замедленной флуоресценции этого образца и её регистрации в индукционных максимумах в красной спектральной области фотоприемником между световыми импульсами, причем за счет сокращения длительности световых периодов возбуждения свечения при одновременном увеличении темновых интервалов между ними создают условия низкого светового облучения, а за счет увеличения соотношения длительности световых периодов к темновым создают условия высокого светового облучения, измеряют интенсивность замедленной флуоресценции исследуемого образца в режиме высокого светового облучения в начале каждой кривой затухания, интенсивность в режиме низкого светового облучения измеряют в конце каждой кривой затухания, а о токсичности судят по их отношению.The technical result is achieved by the fact that in the method of biotesting the toxicity of water and aqueous solutions, including irradiating the test sample of a plant object with high-intensity intermittent light of 100-250 W / m 2 from the LEDs of the visible radiation spectrum with excitation of the delayed fluorescence of this sample and its registration at induction maxima in the red spectral region of the photodetector between light pulses, and by reducing the duration of the light periods of the excitation of the glow with simultaneous By increasing the dark intervals between them create conditions for low light exposure, and by increasing the ratio of the duration of light periods to dark, create conditions for high light exposure, measure the intensity of the delayed fluorescence of the test sample in the high light exposure mode at the beginning of each attenuation curve, the intensity in the low light exposure mode measured at the end of each attenuation curve, and toxicity is judged by their ratio.
Заявляемый способ биотестирования вод и водных растворов отличается увеличением диапазона реагирования относительного показателя замедленной флуоресценции хлорофилла растительного тесторганизма при воздействии на него поллютантов, что обеспечивает большую точность и чувствительность способа измерения токсического эффекта.The inventive method for biotesting water and aqueous solutions is characterized by an increase in the response range of the relative delayed fluorescence of chlorophyll of a plant test organism when exposed to pollutants, which provides greater accuracy and sensitivity of the method for measuring the toxic effect.
Таким образом, заявляемый способ биотестирования токсичности вод и водных растворов соответствует критерию новизна.Thus, the claimed method of biotesting the toxicity of water and aqueous solutions meets the criterion of novelty.
Признаки, отличающие заявляемое техническое решение от прототипа, не выявлены в других технических решениях при изучении данных и смежных областей техники и, следовательно, обеспечивают заявляемому решению соответствие критерию изобретательский уровень.Signs that distinguish the claimed technical solution from the prototype are not identified in other technical solutions when studying data and related areas of technology and, therefore, provide the claimed solution with the criterion of inventive step.
Изобретение поясняется чертежами. На фиг. 1 показаны зависимости интенсивности ЗФ суспензии хлореллы, возбуждаемой в режимах высокого (ЗФв) и низкого (ЗФн) света, от концентрации (в моль/л) диурона-токсиканта, вызывающего подавление фотосинтетического транспорта электронов. На фиг. 2 показаны концентрационные зависимости показателей ЗФ водоросли хлорелла в присутствии ионов кадмия. На фиг. 3 показана зависимость относительного показателя ЗФ от концентрации (процента разбавления) тестируемых сточных вод.The invention is illustrated by drawings. In FIG. Figure 1 shows the dependences of the PF intensity of a chlorella suspension excited in the high (PF) and low (PF) modes of light on the concentration (in mol / L) of a toxicant diuron, which suppresses photosynthetic electron transport. In FIG. Figure 2 shows the concentration dependences of the SF indicators of the chlorella alga in the presence of cadmium ions. In FIG. Figure 3 shows the dependence of the relative indicator of SF on the concentration (percentage dilution) of the tested wastewater.
Сущность изобретения заключается в том, что токсическое воздействие на тест-организмы оценивается на основе регистрации интенсивности замедленной флуоресценции содержащегося в них хлорофилла с помощью устройства для регистрации ЗФ хлорофилла растительных объектов. При определении токсичности тестируемых вод по относительному показателю (ОП) ЗФ в индукционном максимуме измерение интенсивности свечения тест-организма при возбуждении светом высокой интенсивности производят в начале каждой кривой затухания, а в режиме возбуждения низким светом - в ее конце. При этом условия низкого светового облучения создают посредством сокращения длительности световых импульсов возбуждения при одновременном увеличении длительности темновых интервалов между ни- 1 021097 ми. В свою очередь, формирование условий высокого светового облучения обеспечивают не только путем использования высокоинтенсивного возбуждающего света, но через повышение среднего уровня светового облучения тест-организма за счет увеличения длительности световых периодов и сокращения темновых.The essence of the invention lies in the fact that the toxic effect on the test organisms is evaluated based on the registration of the intensity of the delayed fluorescence of the chlorophyll contained in them using a device for recording the chlorophyll PF of plant objects. When determining the toxicity of the tested waters by the relative index (OD) of the SF at the induction maximum, the luminescence intensity of the test organism when excited by high intensity light is measured at the beginning of each attenuation curve, and in the low-light excitation mode, at its end. At the same time, low light exposure conditions are created by shortening the duration of the light excitation pulses while increasing the duration of the dark intervals between the lower ones. In turn, the formation of high light exposure conditions is ensured not only by using high-intensity exciting light, but by increasing the average level of light exposure of the test organism by increasing the duration of light periods and reducing dark ones.
Пример 1.Example 1
В 6 кювет из материала с низким уровнем послесвечения (ЗФ) вносят по 4 см3 суспензии водоросли хлореллы с оптической плотностью 0,040, измеренной при длине волны 560 нм и толщине слоя 2 см. В первую из них добавляют 0,1 см3 дистиллированной воды (контроль), а в остальные по 0,1 см3 раствора диурона различных концентраций. После этого кюветы загружают в устройство для регистрации замедленной флуоресценции хлорофилла растительных объектов и производят измерение ЗФ в двух световых режимах. На фиг. 1 показаны зависимости интенсивности ЗФ суспензии хлореллы, возбуждаемой в режимах высокого (ЗФв) и низкого (ЗФн) света, от концентрации (в моль/ль) диурона-токсиканта, вызывающего подавление фотосинтетического транспорта электронов. Первый режим достигают тем, что относительно длительные импульсы (20 мс) возбуждающего света высокой интенсивности (100-250 Вт/м2) чередуют со сравнительно короткими темновыми интервалами (5 мс), во время которых в первую миллисекунду регистрируют ЗФ. Режим низкого света получен благодаря тому, что столь же яркий импульс возбуждения подают в течение 1-4 мс, после которого следует более длительный темновой интервал (50 мс). При этом интенсивность ЗФ измеряют не сразу после окончания светового возбуждения, а с задержкой 20-30 мс. Поскольку в этот промежуток быстрые компоненты успеют полностью затухнуть, то в конце кривой затухающего свечения остаются и регистрируются только медленные компоненты.4 cm 3 of a suspension of chlorella algae with an optical density of 0.040, measured at a wavelength of 560 nm and a layer thickness of 2 cm, are introduced into 6 cuvettes from a material with a low level of afterglow (ZF). 0.1 cm 3 of distilled water is added to the first one ( control), and the remaining 0.1 cm 3 of a solution of diuron of various concentrations. After this, the cuvettes are loaded into the device for recording the delayed fluorescence of chlorophyll of plant objects and the SF measurement is performed in two light modes. In FIG. Figure 1 shows the dependences of the SF intensity of a chlorella suspension excited in the high (ZFv) and low (ZFn) modes of light on the concentration (in mol / L) of a toxicant diuron, which suppresses photosynthetic electron transport. The first mode is achieved by the fact that relatively long pulses (20 ms) of high-intensity exciting light (100-250 W / m 2 ) alternate with relatively short dark intervals (5 ms) during which the SF is recorded in the first millisecond. The low light mode is obtained due to the fact that an equally bright excitation pulse is supplied for 1-4 ms, followed by a longer dark interval (50 ms). In this case, the AF intensity is not measured immediately after the end of light excitation, but with a delay of 20-30 ms. Since fast components will completely decay during this interval, only slow components remain and are recorded at the end of the damped glow curve.
В связи с тем, что интенсивность этих компонент у контрольной тест-культуры водоросли в отсутствие токсикантов в несколько сотен раз ниже, чем быстрых компонент, то при переходе в режим низкого света чувствительность системы регистрации автоматически увеличивается в 100 раз. Поэтому для реального представления о величине ОП ЗФ его значения, показанные на фиг. 3, надо увеличить в 100 раз. Чтобы интенсивность свечения могла быть измерена в его индукционных максимумах, световые импульсы возбуждения, чередующиеся периодами регистрируется ЗФ, подаются в течение 2-3 с.Due to the fact that the intensity of these components in the control test culture of algae in the absence of toxicants is several hundred times lower than that of the fast components, when switching to low light mode, the sensitivity of the registration system automatically increases by 100 times. Therefore, for a real idea of the magnitude of the OP ZF, its values shown in FIG. 3, it is necessary to increase 100 times. So that the luminescence intensity can be measured at its induction maxima, excitation light pulses alternating with periods are recorded by the SF, and they are applied for 2-3 s.
Представленные на фиг. 1 данные показывают, что интенсивность ЗФв тест-культуры водоросли хлорелла с ростом концентрации токсиканта многократно снижается. В этих условиях ЗФн столь же значительно возрастает. При этом относительный показатель ЗФ в виде отношения интенсивностей свечений в режимах высокого и низкого возбуждающего света уменьшается в 100 и более раз.Presented in FIG. 1, the data show that the intensity of the PFV of the test culture of chlorella algae decreases with increasing concentration of the toxicant. Under these conditions, the ZFn increases equally. In this case, the relative index of the SF in the form of the ratio of the intensities of the glows in the regimes of high and low exciting light decreases by 100 times or more.
Пример 2.Example 2
В кюветы, аналогичные примеру № 1, вместо диурона вносят различные концентрации ионов кадмия. Согласно рекомендациям [патент РФ № 2222003, Ο01Ν 21/64, опубл. 20.01.2004 г.], тестируемые пробы, для большего проявления действия данного тяжелого металла на клетки водоросли, в течение 1 ч подвергают световой экспозиции. Интенсивность светового облучения кювет с тест-культурой водоросли составляет 60 Вт/м2. На фиг. 2 показаны концентрационные зависимости показателей ЗФ водоросли хлорелла в присутствии ионов кадмия, измеренные в условиях, аналогичных указанным в примере 1. Хорошо видно, что и этот токсикант вызывает значительное снижение интенсивности ЗФв и увеличение ЗФн. Величина отношения этих показателей ЗФ также многократно снижается.In cuvettes similar to example No. 1, instead of diuron, various concentrations of cadmium ions are introduced. According to the recommendations [RF patent No. 2222003, Ο01Ν 21/64, publ. January 20, 2004], tested samples, for a greater manifestation of the action of this heavy metal on algal cells, they are exposed to light exposure for 1 h. The intensity of light irradiation of the cell with a test culture of algae is 60 W / m 2 . In FIG. Figure 2 shows the concentration dependences of the PF of the chlorella algae in the presence of cadmium ions, measured under conditions similar to those described in Example 1. It is clearly seen that this toxicant also causes a significant decrease in the PFv intensity and an increase in PF. The magnitude of the ratio of these indicators PF is also many times reduced.
Пример 3.Example 3
В кюветы, аналогичные примеру № 1, вносят по 3,6 см3 сточных вод целлюлозно-бумажного комбината (ЦБК) и сточных вод на выходе городских очистных сооружений (ОС), разбавленные дистиллированной водой в ряд, кратный двум. В качестве контроля используют дистиллированную воду. В каждое разведение сточных вод добавляют по 0,4 см3 культуры водоросли хлорелла с оптической плотностью 0,4. После 1-часовой световой экспозиции с интенсивностью светового облучения 60 Вт/м2 производят измерение интенсивности замедленной флуоресценции в режимах высокого и низкого светового облучения. На фиг. 3 показана зависимость относительного показателя ЗФ от концентрации (процента разбавления) тестируемых сточных вод (параметры замера ЗФ как в примере 1). Сточная вода после очистных сооружений практически не вызывает изменения относительного показателя ЗФ культуры водоросли, что свидетельствует о ее не токсичности. И наоборот, стоки ЦБК проявляют достаточно высокую токсичность, которая снимается только после их 8-кратного разбавления чистой водой.In cuvettes similar to example No. 1, 3.6 cm 3 of wastewater from a pulp and paper mill (PPM) and wastewater at the outlet of a municipal treatment plant (OS), diluted with distilled water in a multiple of two, are added. Distilled water is used as a control. 0.4 cm 3 of chlorella algae culture with an optical density of 0.4 is added to each wastewater dilution. After a 1-hour light exposure with a light irradiation intensity of 60 W / m 2 , the delayed fluorescence intensity is measured in high and low light irradiation modes. In FIG. Figure 3 shows the dependence of the relative indicator of SF on the concentration (percentage of dilution) of the tested wastewater (parameters of the measurement of SF as in example 1). Wastewater after treatment facilities practically does not cause a change in the relative indicator of SF of algae culture, which indicates its non-toxicity. Conversely, the effluents of the pulp and paper mill show rather high toxicity, which is removed only after their 8-fold dilution with clean water.
Преимущество заявляемого способа биотестирования токсичности вод и водных растворов заключается в повышении точности и чувствительности измерения токсичности вод при биотестировании, вследствие увеличения диапазона реагирования относительного показателя замедленной флуоресценции хлорофилла растительного тест-организма при воздействии на него поллютантов, за счет создания новых условий регистрации замедленной флуоресценции хлорофилла растительных тест-организмов.The advantage of the proposed method for biotesting the toxicity of water and aqueous solutions is to increase the accuracy and sensitivity of measuring the toxicity of water during biotesting, due to the increase in the response range of the relative delayed fluorescence of chlorophyll of the plant test organism when exposed to pollutants, by creating new conditions for recording the delayed fluorescence of chlorophyll of plant test organisms.
Claims (1)
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2011102403/15A RU2482474C2 (en) | 2011-01-21 | 2011-01-21 | Method for biotesting toxicity of water and aqueous solutions |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| EA201101386A1 EA201101386A1 (en) | 2012-07-30 |
| EA021097B1 true EA021097B1 (en) | 2015-04-30 |
Family
ID=46614808
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| EA201101386A EA021097B1 (en) | 2011-01-21 | 2011-10-25 | Method for biotesting toxicity of water and aqueous solutions |
Country Status (2)
| Country | Link |
|---|---|
| EA (1) | EA021097B1 (en) |
| RU (1) | RU2482474C2 (en) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2732203C1 (en) * | 2019-12-26 | 2020-09-14 | федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования «Национальный исследовательский Томский политехнический университет» | Method of determining concentration of cells in suspension of microalgae |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN106248882B (en) * | 2016-08-19 | 2018-04-17 | 河北神通光电科技有限公司 | The method for obtaining the red blue spectrum ratios of plant illumination LED |
Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2069851C1 (en) * | 1992-07-15 | 1996-11-27 | Григорьев Юрий Сергеевич | Process of detection of content of phytotoxic substances |
| EP1205756A2 (en) * | 1993-09-24 | 2002-05-15 | Abbott Laboratories | Automated liquid level sensing system and method |
| US20030048445A1 (en) * | 2001-09-12 | 2003-03-13 | Eugene Tokhtuev | Multichannel fluorosensor |
| WO2009111834A1 (en) * | 2008-03-14 | 2009-09-17 | Runcie John W | Automated shutter for dark acclimating samples |
Family Cites Families (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US3873273A (en) * | 1973-10-15 | 1975-03-25 | Hycel Inc | Automatic chemical testing system |
| SU492805A1 (en) * | 1974-03-20 | 1975-11-25 | Всесоюзный научно-исследовательский институт химических средств защиты растений | Method for determining herbicidal activity |
| RU2065722C1 (en) * | 1992-09-17 | 1996-08-27 | Раменское приборостроительное конструкторское бюро | Device for evaluation of eye fundus blood supply |
| AU2002253388B2 (en) * | 2001-05-09 | 2006-09-28 | Axis-Shield Asa | Assay system |
| RU2349355C2 (en) * | 2006-11-07 | 2009-03-20 | Андрей Андреевич Ворона | Physiotherapeutic device for light-beam therapy |
-
2011
- 2011-01-21 RU RU2011102403/15A patent/RU2482474C2/en active
- 2011-10-25 EA EA201101386A patent/EA021097B1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2069851C1 (en) * | 1992-07-15 | 1996-11-27 | Григорьев Юрий Сергеевич | Process of detection of content of phytotoxic substances |
| EP1205756A2 (en) * | 1993-09-24 | 2002-05-15 | Abbott Laboratories | Automated liquid level sensing system and method |
| US20030048445A1 (en) * | 2001-09-12 | 2003-03-13 | Eugene Tokhtuev | Multichannel fluorosensor |
| WO2009111834A1 (en) * | 2008-03-14 | 2009-09-17 | Runcie John W | Automated shutter for dark acclimating samples |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2732203C1 (en) * | 2019-12-26 | 2020-09-14 | федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования «Национальный исследовательский Томский политехнический университет» | Method of determining concentration of cells in suspension of microalgae |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| RU2482474C2 (en) | 2013-05-20 |
| EA201101386A1 (en) | 2012-07-30 |
| RU2011102403A (en) | 2012-07-27 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Bastien et al. | Performance evaluation of phycocyanin probes for the monitoring of cyanobacteria | |
| Franklin et al. | Development of flow cytometry‐based algal bioassays for assessing toxicity of copper in natural waters | |
| Schreiber et al. | New type of dual-channel PAM chlorophyll fluorometer for highly sensitive water toxicity biotests | |
| TWI576586B (en) | Method for monitoring and control of a wastewater process stream | |
| Franklin et al. | Development of multispecies algal bioassays using flow cytometry | |
| JP6238046B2 (en) | Microbiological testing method | |
| Matorin et al. | Chlorophyll fluorimetry as a method for studying light absorption by photosynthetic pigments in marine algae | |
| JP4108555B2 (en) | Water quality measuring method and apparatus | |
| CN106053421B (en) | Content of organic matter on-line checking and filter core/film breakdown early warning method and apparatus in water | |
| Renzi et al. | Early warning tools for ecotoxicity assessment based on Phaeodactylum tricornutum | |
| WO2016071356A1 (en) | A ballast water analysis system | |
| RU2482474C2 (en) | Method for biotesting toxicity of water and aqueous solutions | |
| CN109564163A (en) | Method and apparatus for determining the concentration of the substance in liquid medium | |
| JPWO2005062027A1 (en) | Hazardous substance evaluation method and hazardous substance evaluation kit | |
| CN109520983B (en) | DOM-based water quality evaluation method and device | |
| Scordino et al. | Delayed luminescence of microalgae as an indicator of metal toxicity | |
| CN102706837B (en) | The method of photic Ultra-weak Luminescence imaging technique qualification waste oil | |
| Nguyen et al. | Impact of green algae on the measurement of Microcystis aeruginosa populations in lagoon-treated wastewater with an algae online analyser | |
| Exton et al. | Spectral differences and temporal stability of phycoerythrin fluorescence in estuarine and coastal waters due to the domination of labile cryptophytes and stabile cyanobacteria | |
| JPH08242886A (en) | Measurement of concentration of plant plankton | |
| WO2014156363A1 (en) | Water quality examination method utilizing alga | |
| McFarland et al. | Impact of phytoplankton size and physiology on particulate optical properties determined with scanning flow cytometry | |
| Eleršek | The advantages of flow cytometry in comparison to fluorometric measurement in algal toxicity test | |
| KR20140093389A (en) | Total Ecotoxicological measuring system using Photochemical algae sensor | |
| Török et al. | Seasonal variation of eutrophication in some lakes of Danube Delta Biosphere Reserve |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| MM4A | Lapse of a eurasian patent due to non-payment of renewal fees within the time limit in the following designated state(s) |
Designated state(s): AM AZ KZ KG MD TJ TM RU |
|
| MM4A | Lapse of a eurasian patent due to non-payment of renewal fees within the time limit in the following designated state(s) |
Designated state(s): BY |