RU2482181C1 - Клеточная линия d11 множественной миеломы человека, используемая для гибридомной технологии - Google Patents

Клеточная линия d11 множественной миеломы человека, используемая для гибридомной технологии Download PDF

Info

Publication number
RU2482181C1
RU2482181C1 RU2011149649/10A RU2011149649A RU2482181C1 RU 2482181 C1 RU2482181 C1 RU 2482181C1 RU 2011149649/10 A RU2011149649/10 A RU 2011149649/10A RU 2011149649 A RU2011149649 A RU 2011149649A RU 2482181 C1 RU2482181 C1 RU 2482181C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
cells
cell line
multiple myeloma
human
cell
Prior art date
Application number
RU2011149649/10A
Other languages
English (en)
Inventor
Михаил Иванович Давыдов
Анатолий Юрьевич Барышников
Ольга Семеновна Бурова
Наталья Валерьевна Голубцова
Ирина Владимировна Манина
Original Assignee
Учреждение Российской академии медицинских наук Российский онкологический научный центр имени Н.Н. Блохина РАМН
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Учреждение Российской академии медицинских наук Российский онкологический научный центр имени Н.Н. Блохина РАМН filed Critical Учреждение Российской академии медицинских наук Российский онкологический научный центр имени Н.Н. Блохина РАМН
Priority to RU2011149649/10A priority Critical patent/RU2482181C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2482181C1 publication Critical patent/RU2482181C1/ru

Links

Images

Abstract

Изобретение относится к биотехнологии, конкретно к получению клеточных линий, используемых для гибридомной технологии. Получена генетически и фенотипически стабильная клеточная линия D11 множественной миеломы человека, сохраняющая гистогенетический фенотип множественной миеломы человека, пригодная для культивирования в среде, содержащей 8-азагуанин. Изобретение позволяет эффективно использовать клеточную линию D11 в качестве партнера для слияния клеток и синтеза моноклональных антител. 2 ил., 1 табл., 1 пр.

Description

Изобретение относится к биотехнологии, в частности к получению клеточных линий, используемых для гибридомной технологии как партнер для слияния клеток и синтеза моноклональных антител.
Гибридомная технология широко применяется в научных исследованиях для слияния клеток иммунной системы, прежде всего Т-лимфоцитов. Создание опухолевых клеточных линий, пригодных для использования в качестве партнера для слияния при проведении гибридизации, является актуальным. Моноклональные антитела широко используют в иммунодиагностике, иммунотерапии, для выделения различных биологически значимых молекул и с другими исследовательскими целями.
Потребность в человеческих моноклональных антителах, которые можно было бы использовать в иммунотерапии, очень велика. В настоящее время эта проблема решается с помощью молекулярно-генетических подходов [Ярилин А.А. Основы иммунологии: Учебник. Часть 2. М.: Медицина, 1999 г., с.119-120].
Известны клеточные линии, используемые для гибридомной технологии, которые были получены с помощью молекулярно-генетического метода «гуманизации» мышиных антител, суть которого состоит в создании «слитых» генетических комплексов, объединяющих V-ген мышиных моноклональных антител и С-гены иммуноглобулинов человека желаемого изотипа.
Известны также клеточные линии, полученные в результате объединения гипервариабельных частей V-генов мыши с генами, кодирующими каркасную последовательность V-гена человека, и человеческими С-генами [Martinsson-Niskanen Т., Riisbro R., Larsson L., et al. Monoclonal Antibody TB-403: A First-in-Human, Phase I, Double-Blind, Dose Escalation Study Directed Against Placental Growth Factor in Healthy Male Subjects. / Clin Ther. 2011 Sep; 33(9): 1142-1149].
Недостатками вышеперечисленных клеточных линий являются: трудоемкость, сложность технического исполнения и дороговизна их получения.
В качестве прототипа заявляемого изобретения использовали клеточные линии миеломы мыши P3X63Ag8.653 и P3-NS1-Ag4-1, устойчивые к 8-азагуанину не продуцирующие иммуноглубулины партнеры для получения гибридом [Zanella I, Verardi R, Negrini R. et al. New heteromyeloma cell lines for the production of human monoclonal antibodies. / J Immunol Methods. 1992 Dec 8; 156(2): 205-215]. Они происходят от продуцирующей IgG к-типа [Hancock R.J., Martin A., Laundy G.J. et al. Production of monoclonal human antibody to HLA-DR5 (DRw11) by mouse/human heterohybridomas. / Hum Immunol. 1988 Jun; 22(2): 135-142; Suzuki S, Masuko T, Takanashi К et al. Assay of cell surface-bound immunoliposomes using monoclonal antibody reactive with a cross-linking reagent. / Chem Pharm Bull (Tokyo). 1992 Jul; 40 (7): 1893-1896].
Недостаток: клеточные линии, представленные миеломными клетками мыши, не могут быть использованы для создания гибридом «человек-человек».
Задачей настоящего изобретения является получение новой клеточной линии множественной миеломы человека, пригодной в качестве партнера для слияния клеток с целью получения гибридом.
Поставленная задача решается тем, что получена новая генетически и фенотипически стабильная клеточная линия D11, сохраняющая гистогенетический фенотип множественной миеломы человека и адаптированная для роста в среде с 8-азагуанином.
Полученная клеточная линия обладает стабильными культуральными и морфологическими характеристиками.
Клеточная линия множественной миеломы человека D11 находится на хранении в Банке криоконсервированных биоматериалов РОНЦ им. Н.Н.Блохина РАМН под номером 1.2.6-3/D11.
Заявляемую клеточную линию множественной миеломы человека D11 получали из клеток исходной линии U-266, имеющих воспроизводимый фенотип клеток множественной миеломы человека.
Клеточную линию D11 получали в несколько этапов путем культивирования на питательной среде RPMI (ПанЭко, РФ), с добавлением 10% телячьей эмбриональной сыворотки (ТЭС), производство HyClone, США, гентамицина в концентрации 10 мг/мл (ПанЭко, РФ) и 8-азагуанина в концентрации 20 мкг/мл. Выращивание клеточной линии D11 проводили в культуральных флаконах объемом 25 см3 при температуре 37°C и 5%-ном содержании СО2 в инкубаторе. Пассаж проводили 1 раз в 2-3 суток.
При выращивании клеток в указанной культуральной среде добавляли 8-азагуанин в концентрации 20 мкг/мл. По истечении третьих суток наблюдали гибель 80-90% клеток и единичные клоны опухолевых клеток, устойчивых к 8-азагуанину, то есть имеющих альтернативный путь синтеза нуклеатидов. Затем в состав культуральной среды вводили 8-азагуанин в концентрации 10 мкг/мл, а концентрацию ТЭС увеличили до 20% с целью восполнения популяции при более мягких условиях культивирования. В течение последующих 10 пассажей пул клеток с альтернативным путем синтеза нуклеатидов восстановился полностью, что позволило применить исходные условия культивирования. Концентрация ТЭС была снижена до исходных 10% от состава культуральной среды, при этом гибель клеток не превышала 7%, скорость роста оставалась стабильной. Спустя 5 пассажей при данных условиях концентрацию 8-азагуанина вновь увеличили до 20 мкг/мл, гибель клеток составила не более 20%, скорость роста оставалась стабильной. В течение последующих 10 пассажей наблюдали дальнейший рост и жизнеспособность клеточной популяции. При обзорной микроскопии и динамическом наблюдении фенотипических изменений клеток не выявлено. Оценку скорости роста клеток и их подсчет осуществляли в инвертированном световом микроскопе DMIL (Leica Microsystems, Германия). Стабильно растущая клеточная линия получена на 20-м пассаже.
Морфологические признаки клеточной линии D11: В-лимфоциты. Клетки имели суспензионный тип роста. На Фиг.1 представлена картина микроскопии клеток множественной миеломы человека D11 в период экспоненциальной фазы роста: клетки округлой правильной формы, свободно расположены в среде в виде отдельных клеток или конгломератов по типу «гроздьев винограда». Клетки имели четко очерченную цитоплазму и хорошо выраженное ядро. Клетки D11 стабильно сохраняли свои свойства в течение всего периода наблюдения и культивирования.
Маркерные признаки клеточной линии D11: устойчива к 8-азагуанину.
Устойчивость клеточной линии D11 к 8-азагуанину означает, что у клеток блокирован запасной путь синтеза нуклеотидов из гипоксантина и гуанина, используемых в качестве предшественников.
Основной путь новообразования нуклеотидов, звеньев, входящих в состав нуклеиновых кислот, включает несколько этапов и блокируется противоопухолевым препаратом аминоптерином (А). Однако гибели клеток при этом не происходит, так как они обладают резервным путем синтеза нуклеотидов и нуклеиновых кислот, реутилизируя продукты распада ранее синтезированных нуклеиновых кислот: гипоксантина и тимидина. Добавление гипоксантина и тимидина в питательную среду, содержащую аминоптерин (среда HAT), снимает токсический эффект последнего. Аминоптерин блокирует основной путь биосинтеза нуклеотидов, гипоксантин и тимидин - субстраты для реализации запасных путей, заблокированных в миеломных клетках (о чем свидетельствует устойчивость к 8-азагуанину или 6-тиогуанину), но реализуемых в гибридных клетках, которые наследуют соответствующий ген от родительских клеток. В результате культивирования в среде HAT гибнут неслившиеся опухолевые клетки и естественным образом погибают неслившиеся нормальные клетки, а выживают только гибридные клетки, которые унаследовали бессмертие [Абелев Г.И. Моноклональные антитела / Соросовский Образовательный журнал. 1998 (1): 16-20].
Данное обстоятельство важно в связи с применяемым методом отбора гибридных клеток. Его суть состоит в следующем. Разнородные клетки, у которых слились оболочки, образуют двуядерные гибриды, которые сохраняют способность к клеточному делению. В процессе клеточного деления хромосомы обоих ядер образуют общее ядро. Таким образом, получен истинный гибрид - потомок двух соматических клеток или гибридома. Ее синтетический аппарат обладал способностью синтеза иммуноглобулинов. При соблюдении всех деталей технологии доля слившихся клеток невелика, поэтому их отбор является важной задачей.
Проведен тест выживаемости в среде HAT: гибель клеток зарегистрирована на 6 сутки культивирования в 20%-ной среде HAT, что подтверждает пригодность линии клеток D11 при использовании в качестве партнера для получения гибридом.
Оценка фенотипа линии клеток D11 представлена в таблице. Выявлена экспрессия CD10+ (31,3±1%).
Контаминация: бактерии и грибы в культуре клеток не обнаружены за весь период наблюдения и культивирования. Тест на микоплазму отрицателен.
Условия криоконсервации:
Линии клеток D11 ресуспендировали в среде для замораживания, содержащей полиглюкин (Биохимик, РФ) (95%), DMSO (ПанЭко, РФ) (5%). Криоконсервацию проводили в криопробирках в концентрации 1×105 клеток/мл среды в жидком азоте при снижении температуры на ГС в минуту до минус 25°C. Затем осуществляли быстрое замораживание до минус 70°C. Клетки хранили в жидком азоте при температуре минус 196°C. Размораживание проводили в течение 3-5 минут при t=37°C. Клетки разводили в 10 мл бессывороточной среды и осаждали центрифугированием при скорости 4000 об/мин в течение 2 минут. Супернатант удаляли, а осевшие клетки ресуспендировали в 5 мл той же среды, содержащей 10% эмбриональной телячьей сыворотки, и переносили в культуральный флакон. Жизнеспособность клеток оценивали по включению трипанового синего, после размораживания она составила 90%.
Полученная линия клеток множественной миеломы человека D11 обладала рядом качеств: устойчивостью к 8-азагуанину, отсутствием роста в среде HAT, пригодностью для осуществления гибридомной технологии.
Изобретение иллюстрировано следующим примером.
Пример.
Для получения человеческих гибридом путем слияния использовали линии клеток множественной миеломы человека D11 и лимфоцитов человека. В качестве реагента, используемого для слияния клеток, применяли раствор полиэтиленгликоля (ПЭГ).
В процессе гибридизации обнаружено 3 типа клеток: гибридомные клетки (гибридомы), родительские клетки множественной миеломы человека D11 и лимфоциты человека.
Родительские миеломные клетки погибали при росте в селективной среде HAT. Неслившиеся с миеломными клетками лимфоциты погибали в течение 6-7 суток.
Выявлено, что 50% гибридных клеток имели ожидаемые характеристики обоих родительских клеток: неограниченную пролиферацию в культуре клеток, способность активно синтезировать антитела от миеломных родительских клеток и специфичность антител от родительских лимфоцитов.
На Фиг.2 представлена обзорная микроскопия проведенной гибридизации, где указаны 3 типа клеток: 1 - гибридомы - крупные полиядерные клетки, полученные путем слияния клеток множественной миеломы человека D11 с лимфоцитами, 2 - свободно расположенные в среде клетки множественной миеломы человека D11, 3 - свободно расположенные в среде лимфоциты человека. Микрофотосъемка произведена с помощью оборудования Nikon (Nikon digital camera DXM1200F, инвертированный световой микроскоп Nikon Eclipse TE2000-u, Япония).
Показано, что клетки множественной миеломы человека D11 могут быть использованы в качестве партнера для слияния с лимфоцитами с целью получения гибридом.
Технический результат состоит в расширении арсенала клеточных линий, используемых для гибридомной технологии.
Клеточная линия D11 множественной миеломы человека, используемая для гибридомной технологии.
Антигены Линия клеток U-266 Линия клеток-D11
CD45 0,15±0,1% 3,7±0,1%
CD3 0,3±0,1% 0,1±0,1%
CD20 1,4±0,1% 2,2±0,1%
CD10 14,0±1% 31,3±1%
CD13 1,0±0,1% 1,7±0,1%
CD15 0,2±0,1% 0,4±0,1%
CD33 1,2±0,1% 0,3±0,1%
CD34 0,1±0,1% 0,1±0,1%
CD24 2,8±0,2% 3,2±0,2%
CD133 1,9±0,1% 2,1±0,1%
CD116 3,4±0,2% 5,5±0,2%
CD38 0,8±0,1% 1,2±0,1%
HLA-AB1 2,6±0,1% 1,9±0,1%
HLA-DR 6,1±0,2% 4,3±0,2%

Claims (1)

  1. Клеточная линия множественной миеломы человека D11, используемая для гибридомной технологии, находится на хранении в Банке криоконсервированных биоматериалов РОНЦ им. Н.Н.Блохина РАМН под номером 1.2.6-3/D11.
RU2011149649/10A 2011-12-07 2011-12-07 Клеточная линия d11 множественной миеломы человека, используемая для гибридомной технологии RU2482181C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2011149649/10A RU2482181C1 (ru) 2011-12-07 2011-12-07 Клеточная линия d11 множественной миеломы человека, используемая для гибридомной технологии

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2011149649/10A RU2482181C1 (ru) 2011-12-07 2011-12-07 Клеточная линия d11 множественной миеломы человека, используемая для гибридомной технологии

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2482181C1 true RU2482181C1 (ru) 2013-05-20

Family

ID=48789857

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2011149649/10A RU2482181C1 (ru) 2011-12-07 2011-12-07 Клеточная линия d11 множественной миеломы человека, используемая для гибридомной технологии

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2482181C1 (ru)

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU1806195C (ru) * 1991-01-03 1993-03-30 Вячеслав Юрьевич Кравцов Способ селекции попул ции клеток IN VIVo
US20090232736A1 (en) * 2000-06-29 2009-09-17 Albert Collinson Dual specificity antibodies and methods of making and using

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU1806195C (ru) * 1991-01-03 1993-03-30 Вячеслав Юрьевич Кравцов Способ селекции попул ции клеток IN VIVo
US20090232736A1 (en) * 2000-06-29 2009-09-17 Albert Collinson Dual specificity antibodies and methods of making and using

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
АЛЕКСЕЕВА Л.П. и др. Антигенные свойства штаммов Vibrio cholerae 0139, выделенных из различных источников, Биотехнология, 2003, No.3, с.90-95. *
АЛЕКСЕЕВА Л.П. и др. Антигенные свойства штаммов Vibrio cholerae 0139, выделенных из различных источников, Биотехнология, 2003, №3, с.90-95. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Sharma et al. Mimicking the functional hematopoietic stem cell niche in vitro: recapitulation of marrow physiology by hydrogel-based three-dimensional cultures of mesenchymal stromal cells
CN101080486B (zh) 多谱系祖细胞
CN106687581A (zh) 用于治疗用途的岩藻糖基化细胞的制备和冷冻干燥
WO2015154012A1 (en) Clonogenic natural killer (nk) cell populations and methods of producing and using such populations
Minagawa et al. Generation of suicide gene-modified chimeric antigen receptor-redirected T-cells for cancer immunotherapy
Grigorian et al. Alterations of Cytological and Karyological Profi le of Human Mesenchymal Stem Cells during in Vitro Culturing
SU1424744A3 (ru) Способ получени перманентно растущих животных и человеческих клеток
Stanevsky et al. Cord blood stem cells for hematopoietic transplantation
Binsila et al. Isolation and enrichment of putative spermatogonial stem cells from ram (Ovis aries) testis
Duarte et al. Chromosomal characterization of cryopreserved mesenchymal stem cells from the human subendothelium umbilical cord vein
De Wynter et al. Properties of peripheral blood and cord blood stem cells
FI76118B (fi) Foerfarande foer framstaellning av en hgprt-defekt leukemisk human-t-cellinje.
JP2022515144A (ja) オフザシェルフのダブルネガティブt細胞の産生および治療的使用
Karnas et al. Extracellular vesicles from human iPSCs enhance reconstitution capacity of cord blood-derived hematopoietic stem and progenitor cells
Porubska et al. Sertoli cells possess immunomodulatory properties and the ability of mitochondrial transfer similar to mesenchymal stromal cells
RU2482181C1 (ru) Клеточная линия d11 множественной миеломы человека, используемая для гибридомной технологии
CA2168348A1 (en) Novel stem cell marker
Cwykiel et al. Cellular therapy models: Ex vivo chimera model by cell fusion
RU2620981C2 (ru) Способ получения культуры мезенхимных стволовых клеток человека из периваскулярного пространства вены пупочного канатика
Digneffe et al. Fusion cell lines
RU2425874C1 (ru) ШТАММ КУЛЬТИВИРУЕМЫХ ГИБРИДНЫХ КЛЕТОК ЖИВОТНЫХ Mus. musculus L - ПРОДУЦЕНТ МОНОКЛОНАЛЬНЫХ АНТИТЕЛ, СПЕЦИФИЧНЫХ К О-АНТИГЕНУ ХОЛЕРНЫХ ВИБРИОНОВ О1 СЕРОГРУППЫ
SU1705343A1 (ru) Штамм гибридных культивируемых клеток животных MUS мUSсULUS L. - продуцент моноклональных антител к дифференцировочному антигену @ -лимфоцитов человека
Misfeldt et al. Complementation of the plaque-forming cell responses of T-cell-deficient nude mice by a T-cell hybridoma.
Hicks et al. CXCR4 expression on transplanted peripheral blood CD34+ cells: relationship to engraftment after autologous transplantation in a cohort of multiple myeloma patients
Milani et al. Effect of Myeloma-Derived Microparticles on in Vitro Proliferation and Viability of Alloimmune Human Peripheral Blood Mononuclear Cells

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20181208