RU2481392C2 - Producer of impatiens necrotic spot virus inhibitor - Google Patents

Producer of impatiens necrotic spot virus inhibitor Download PDF

Info

Publication number
RU2481392C2
RU2481392C2 RU2010150343/10A RU2010150343A RU2481392C2 RU 2481392 C2 RU2481392 C2 RU 2481392C2 RU 2010150343/10 A RU2010150343/10 A RU 2010150343/10A RU 2010150343 A RU2010150343 A RU 2010150343A RU 2481392 C2 RU2481392 C2 RU 2481392C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
producer
necrotic spot
impatiens necrotic
tospovirus
virus
Prior art date
Application number
RU2010150343/10A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2010150343A (en
Inventor
Ирина Павловна Смирнова
Юрий Андреевич Шнейдер
Original Assignee
Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Российский университет дружбы народов" (РУДН)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Российский университет дружбы народов" (РУДН) filed Critical Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Российский университет дружбы народов" (РУДН)
Priority to RU2010150343/10A priority Critical patent/RU2481392C2/en
Publication of RU2010150343A publication Critical patent/RU2010150343A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2481392C2 publication Critical patent/RU2481392C2/en

Links

Landscapes

  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

FIELD: chemistry.
SUBSTANCE: invention relates to biochemistry and use of a Trichoderma harzianum Rifai strain as a producer of an Impatiens necrotic spot tospovirus inhibitor. The Trichoderma harzianum Rifai strain, which is deposited in the Russian National Collection of Industrial Microorganisms under No.F-180, is a producer of the homogeneous enzyme L-lysine-a-oxidase, which exhibits marked antiviral activity with respect to Impatiens necrotic spot tospovirus.
EFFECT: reduced loss of decorative and vegetable crops caused by Impatiens necrotic spot tospovirus.
2 ex

Description

Изобретение относится к биохимии и может найти применение в агробиотехнологии, микробиологии и растениеводстве.The invention relates to biochemistry and may find application in agrobiotechnology, microbiology and crop production.

В последние годы в Российскую Федерацию из европейских стран ежегодно импортируются сотни тысяч цветочно-декоративных растений, которые могут являться хозяевами тосповируса некротической пятнистости бальзамина (Impatiens necrotic spot tospovirus). В связи с тем что этот вирус имеет чрезвычайно широкий круг растений-хозяев на большинстве декоративных и овощных культур, создается опасность заражения потенциальных растений-хозяев данным вирусом. Вирус некротической пятнистости бальзамина приносит значительные убытки производству декоративных культур во многих Европейских странах.In recent years, hundreds of thousands of decorative flowers have been imported into the Russian Federation from European countries every year, which may be the masters of balsam necrotic spotted tospovirus (Impatiens necrotic spot tospovirus). Due to the fact that this virus has an extremely wide range of host plants on most ornamental and vegetable crops, there is a danger of infection of potential host plants with this virus. The balsam necrotic spotting virus causes significant losses to the production of ornamental crops in many European countries.

Impatiens necrotic spot tospovirus причинял большой вред различным видам декоративных и овощных культур, выращиваемых в теплицах на территории Мексики, США и на юге Канады и странах Европы. Потери урожая доходили до 100% (4, 5).Impatiens necrotic spot tospovirus caused great harm to various types of ornamental and vegetable crops grown in greenhouses in Mexico, the United States and southern Canada and Europe. Crop losses reached 100% (4, 5).

Из уровня техники известен ингибитор вируса герпеса простого 1-го типа (1) и ингибитор вируса иммунодефицита человека (2), в качестве ингибитора которых использовался метаболит штамма Trichoderma harzianum Rifai - гомогенный фермент L-лизин-α-оксидаза.The type 1 herpes simplex virus inhibitor (1) and the human immunodeficiency virus inhibitor (2) are known in the art, and the metabolite of the Trichoderma harzianum Rifai strain, a homogeneous enzyme L-lysine-α-oxidase, was used as an inhibitor.

Также из уровня техники известна возможность использования гена, ингибирующего вирус пятнистости бальзамина путем его введения в растение семейства Бальзаминовых с получением трансгенных растений, устойчивых к такому вирусу (US 6528703 B1, 04.03.2003) - прототип. Однако такая методика является трудоемкой и требует больших финансовых и временных затрат.Also known from the prior art is the possibility of using a gene that inhibits balsamic spotting virus by introducing it into a plant of the Balsamic family to obtain transgenic plants resistant to such a virus (US 6528703 B1, 03/04/2003) - prototype. However, this technique is time-consuming and requires large financial and time costs.

Техническим результатом изобретения является снижение потерь декоративных и овощных культур, вызванных вирусом Impatiens necrotic spot tospovirus.The technical result of the invention is to reduce losses of ornamental and vegetable crops caused by the Impatiens necrotic spot tospovirus virus.

Технический результат достигается тем, что штамм Trichoderma harzianum Rifai является продуцентом ингибитора тосповируса некротической пятнистости бальзамина. Штамм депонирован во Всероссийской коллекции промышленных микроорганизмов под №F-180 (Москва, Дорожный 1-й проезд, д.1, Институт генетики и селекции, 1987 г.).The technical result is achieved by the fact that the Trichoderma harzianum Rifai strain is a producer of the balsam necrotic spotting inhibitor tospovirus. The strain was deposited in the All-Russian collection of industrial microorganisms under the number F-180 (Moscow, Dorozhny 1-y passage, 1, Institute of Genetics and Selection, 1987).

Морфолого-биохимическая характеристика штаммаMorphological and biochemical characteristics of the strain

Штамм Trichoderma harzianum Rifai на среде сусло-агар образует колонии быстрорастущие. Мицелий гриба бесцветный, септированный, распростертый. На 4-е - 5-е сутки роста появляются дерновинки с конидиеносцами, подушковидные, сначала белые, со временем желто- или темно-зеленого цвета. Фиалиды бутыльчатые /9-12µ/, расположены мутовками по 3 и более. На каждой фиалиде образуются конидии, склеенные в головку. Конидии гриба округлые, гладкие, мелкие /3-5µ/, в проходящем свете бледно-зеленые, а в массе - темные.The strain Trichoderma harzianum Rifai on wort-agar medium forms fast-growing colonies. The fungal mycelium is colorless, septate, prostrate. On the 4th - 5th day of growth, tufts with conidiophores appear, pillow-shaped, initially white, with a yellow or dark green color over time. Bottle phialides / 9-12µ /, located in whorls of 3 or more. Conidia glued into the head form on each phialid. The conidia of the fungus are round, smooth, small / 3-5µ /, in transmitted light pale green, and in the mass - dark.

На агаризованной среде Чапека колонии штамма-продуцента быстрорастущие, но слабо спороносящие. Штамм хорошо растет на среде Чапека, однако лучший рост наблюдается на среде сусло-агар. Агар и желатину не разжижает, молоко не пептонизирует. Аэробный гриб. Температурный оптимум +28 - +29°С. На картофельно-декстрозном агаре наблюдается снижение интенсивности роста, образование воздушного мицелия и спороношения. Оптимальные условия роста гриба при рН 4-6, однако может расти и при рН от 1,5 до 9.On Chapek’s agar medium, the colonies of the producer strain are rapidly growing, but slightly spore-bearing. The strain grows well on the Chapek medium, but the best growth is observed on the wort-agar medium. Agar does not dilute gelatin, milk does not peptone. Aerobic mushroom. Temperature optimum +28 - + 29 ° С. On potato-dextrose agar there is a decrease in growth intensity, the formation of aerial mycelium and sporulation. Optimum conditions for the growth of the fungus at pH 4-6, however, can grow at pH from 1.5 to 9.

Trichoderma harziatum Rifai в одинаковой степени усваивает как аммонийные, так и азотнокислые соли. Лучшим источником азота из органических соединений является пептон. Хорошо растет на средах с аспарагином и с глутаминовой кислотой. Лучшими источниками углерода являются ксилоза, глюкоза, сахароза, лактоза, галактоза, маннит, крахмал. На средах с этими сахарами наблюдается интенсивный рост. Слабо усваиваются спирты метиловый, этиловый, дульцит. Хорошо усваивает в качестве источника углерода пшеничные отруби. Инокулят гриба, выросший на среде с пшеничными отрубями, дает положительный результат при использовании его при ферментации на средах разного состава.Trichoderma harziatum Rifai equally assimilates both ammonium and nitrate salts. The best source of nitrogen from organic compounds is peptone. It grows well on media with asparagine and with glutamic acid. The best sources of carbon are xylose, glucose, sucrose, lactose, galactose, mannitol, and starch. On media with these sugars, intense growth is observed. Alcohols are poorly absorbed methyl, ethyl, dulcite. It assimilates wheat bran well as a carbon source. The inoculum of the fungus grown on a medium with wheat bran gives a positive result when used in fermentation on media of different compositions.

Штамм Trichoderma harzianum Rifai обладает L-лизин-α-оксидазной активностью. Активность L-лизин-α-оксидазы в культуральной жидкости Trichoderma harzianum Rifai рассчитывали по приросту НThe strain Trichoderma harzianum Rifai has L-lysine-α-oxidase activity. The activity of L-lysine-α-oxidase in the culture fluid Trichoderma harzianum Rifai was calculated by the growth of N 22 ОABOUT 22 , количество которой определяли спектрофотометрическим ортодиазидиновым микрометодом. Сущность метода заключается во взаимодействии всей образующейся в реакции H, the amount of which was determined by spectrophotometric orthodiazidine micromethod. The essence of the method is the interaction of all formed in the reaction H 22 OO 22 с O-дианизидингидрохлоридом. Инкубационная смесь содержала 20 мкг пероксидазы, 250 мкг O-дианизидингидрохлорида и 0,1-0,5 мг белка в 1 мл конечного объема. После 20 минут инкубирования в термостате при температуре +37°С пробы охлаждали до +4°С. Оптическую плотность окрашенных растворов опытной и контрольной (без субстрата) проб измеряли на спектрофотометре СФ-16 при 540 нм против второй контрольной пробы (без пероксидазы). with O-dianisidine hydrochloride. The incubation mixture contained 20 μg of peroxidase, 250 μg of O-dianisidine hydrochloride and 0.1-0.5 mg of protein in 1 ml of the final volume. After 20 minutes of incubation in a thermostat at a temperature of + 37 ° С, the samples were cooled to + 4 ° С. The optical density of the colored solutions of the experimental and control (without substrate) samples was measured on an SF-16 spectrophotometer at 540 nm against the second control sample (without peroxidase).

Для построения калибровочной кривой молярность свежеприготовленного раствора HTo build a calibration curve, the molarity of freshly prepared solution H 22 OO 22 определяли перманганатометрией. Субстратами служили L и DL-формы аминокислот («Reanal», Венгрия). Применяли 0,05 М фосфатный буфер. В качестве катализатора пероксидазной реакции использовали пероксидазу фирмы «Reanal», а в качестве донора протонов - O-дианизидингидрохлорид («Merck», ФРГ). За единицу активности принимали количество фермента, катализирующего образование 1 мкмоль Н determined by permanganometry. L and DL forms of amino acids served as substrates (Reanal, Hungary). Used 0.05 M phosphate buffer. Reanal peroxidase was used as a peroxidase reaction catalyst, and O-dianisidine hydrochloride (Merck, Germany) was used as a proton donor. The unit of activity was taken as the amount of enzyme catalyzing the formation of 1 μmol N 22 ОABOUT 22 за 1 мин при температуре +37°С. for 1 min at a temperature of + 37 ° C.

Удельную активность фермента выражали числом единиц активности на 1 мг белка или 1 мл культуральной жидкости. Белок определяли по методу Лоури. В качестве стандарта использовали 0.05%-ный раствор кристаллического бычьего альбумина («Reanal», Венгрия).The specific activity of the enzyme was expressed by the number of units of activity per 1 mg of protein or 1 ml of culture fluid. Protein was determined by the Lowry method. A 0.05% solution of crystalline bovine albumin (Reanal, Hungary) was used as a standard.

Для оценки чистоты препарата использовали электрофорез в 10% ПААГ в присутствии додецилсульфата натрия, а также капиллярный электрофорез на установке Капель 105 производства фирмы Люмекс (Санкт-Петербург).To assess the purity of the drug, we used electrophoresis in 10% PAAG in the presence of sodium dodecyl sulfate, as well as capillary electrophoresis on the Drops 105 device manufactured by Lumex (St. Petersburg).

Условия культивирования штамма Trichoderma harzianum RifaiThe cultivation conditions of the strain Trichoderma harzianum Rifai

Ферментация штамма производилась на оборудовании Опытной технологической установки ИБФМ РАН им. Г.К.Скрябина (г.Пущино).Fermentation of the strain was carried out on the equipment of the Experimental technological installation of IBPM RAS named after G.K.Skryabin (Pushchino city).

Использовали ферментер типа БИОР-01 производства ОКБ ТБМ, г.Кириши, объемом 100 л с коэффициентом заполнения 0,6. Ферментер оснащен магнитной мешалкой, фильтрами тонкой очистки воздуха, датчиками температуры и рН.Used a BIOR-01 type fermenter manufactured by OKB TBM, Kirishi, with a volume of 100 l with a fill factor of 0.6. The fermenter is equipped with a magnetic stirrer, fine filters, air, temperature and pH sensors.

Питательную среду готовили непосредственно в аппарате. Для этого в аппарат заливали 60 л водопроводной воды, вносили 1% пшеничных отрубей, стимулятор - 0,1%, 1,3% сульфата аммония, значение рН 5.8-6,0 устанавливали 10%-ным раствором HCl. Пшеничные отруби и стимулятор предварительно замачивали в 10 л воды в течение 4-х ч, стерилизовали в автоклаве 1 ч при температуре +125°C. Затем подготовленный ферментер засевали посевным материалом из колб. Посевная доза не менее 5%. Культивирование проводили при температуре +26°С, расход воздуха на протяжении всей ферментации 30 л в минуту, скорость вращения мешалки 200 оборотов в минуту. Величину рН в процессе роста корректировали до 6,5. Продолжительность выращивания составила 94-98 ч, конечные значения рН от 5,3 до 7.5.The nutrient medium was prepared directly in the apparatus. To do this, 60 l of tap water was poured into the apparatus, 1% of wheat bran was introduced, a stimulant - 0.1%, 1.3% ammonium sulfate, the pH value of 5.8-6.0 was set with a 10% HCl solution. Wheat bran and the stimulator were pre-soaked in 10 l of water for 4 hours, sterilized in an autoclave for 1 h at a temperature of + 125 ° C. Then the prepared fermenter was seeded with seed from flasks. Sowing dose of at least 5%. The cultivation was carried out at a temperature of + 26 ° C, air flow throughout the fermentation 30 l per minute, the speed of rotation of the mixer 200 rpm. The pH during the growth process was adjusted to 6.5. The duration of cultivation was 94-98 h, the final pH values from 5.3 to 7.5.

По окончании ферментации культуральную жидкость направляли на участок предварительной очистки, где мицелий гриба отделяли фильтрованием под вакуумом на нутч-фильтре. Вес полученной биомассы составил 3,5 кг. Полученный нативный раствор подвергали дополнительному сепарированию на сепараторе типа ОСБ при 9000 об/мин в течение часа при температуре +2 - +4°С. Затем нативный раствор в объеме 55 л, полученный после отделения биомассы, концентрировали до 1,5 л (концентрат).At the end of the fermentation, the culture fluid was sent to the pre-treatment section, where the mycelium of the fungus was separated by filtration under vacuum on a suction filter. The weight of the obtained biomass was 3.5 kg. The resulting native solution was subjected to additional separation on an OSB separator at 9000 rpm for an hour at a temperature of +2 - + 4 ° С. Then the native solution in a volume of 55 l, obtained after separation of the biomass, was concentrated to 1.5 l (concentrate).

Рибонуклеиновую кислоту (РНК) тосповируса некротической пятнистости бальзамина выделяли из декоративного горшечного растения Стрептокарпус (лат. Streptocarpus) семейства Геснериевые. Производили замораживание при температуре -20°C растительных образцов (листья декоративной культуры Стрептокарпус). Затем образцы растирали в фарфоровой ступке до гомогенного состояния с добавлением лизирующего буфера из набора «Проба НК» фирмы ООО «Агродиагностика». Из предварительно приготовленных образцов выделяли РНК с использованием наборов «Проба НК» фирмы ООО «Агродиагностика» по протоколу из набора.Ribosucleic acid (RNA) of tospovirus necrotic spotting of balsam was isolated from a decorative potted plant Streptocarpus (lat. Streptocarpus) of the Gesneriaceae family. Produced freezing at a temperature of -20 ° C of plant samples (leaves of Streptocarpus ornamental culture). Then, the samples were ground in a porcelain mortar to a homogeneous state with the addition of a lysis buffer from the Sample NK kit of the Agrodiagnostics LLC. RNA was isolated from pre-prepared samples using the Proba NK kits of Agrodiagnostika LLC according to the protocol from the kit.

Для постановки обратной транскрипции (ОТ) в пробирки была добавлена следующая смесь для ОТ: ОТ-буфер AMV фирмы «Promega» (250 mM Трис-HCl, 250 mM KCl, 50 mM MgClFor reverse transcription (RT), the following RT mixture was added to the tubes: RT buffer AMV from Promega (250 mM Tris-HCl, 250 mM KCl, 50 mM MgCl 22 , 2,5 mM spermidine, 50 mM DTT) - 5 µ1, смесь дНТФ фирмы ЗАО «Диалат ЛТД» (дА, дТ, дГ, дЦ - по 200 µМ каждого) - 2,5 µl, РНазин - 40ед. (1 µ1), ревертаза AMV фирмы «Promega» (10 U/µl) - 3 µl, вода до общего объема 20 µl РНК образца - 5 µl. Реакция обратной транскрипции (процесс образования двуцепочечной ДНК на матрице одноцепочечной РНК) происходила при температуре +42°С в течение 1 ч, при температуре +95°С - 5 мин., 2.5 mM spermidine, 50 mM DTT) - 5 μ1, a mixture of DNTF manufactured by ZAO Dialat LTD (dA, dT, dG, dTs - 200 μM each) - 2.5 μl, RNazine - 40 units. (1 µ1), Promega AMV revertase (10 U / µl) - 3 µl, water to a total volume of 20 µl of sample RNA - 5 µl. The reverse transcription reaction (the process of the formation of double-stranded DNA on a single-stranded RNA matrix) occurred at a temperature of + 42 ° C for 1 h, at a temperature of + 95 ° C - 5 min.

На этапе обратной транскрипции к выделенной и очищенной РНК вируса некротической пятнистости бальзамина был добавлен концентрат культуральной жидкости в разных разведениях (от 5 до 0,025 Ед/мл). Далее для реакции амплификации готовили следующую смесь: 10х MagMIX - 2025 фирмы ЗАО «Диалат-ЛТД» - 2,5 µl на образец, праймеры INSV прямые (S1) и обратные (S2) - по 2 µl (10 ρmol/µl) на образец, кДНК - 5 µl, вода до 25 µ1, минеральное масло. В результате выделена комплементарная-дезоксирибонуклеиновая кислота (кДНК). Для получения продуктов реакции (ампликонов) проводили нагревание смеси по следующей схеме: один цикл при температуре +94°С в течение 15 минут, 30 циклов при температуре +94°С в течение 1 минуты, при температуре +48С в течение 1 минуты и при температуре +72°С в течение 1 минуты; один цикл при температуре +72°С в течение 10 минут. Хранение осуществляли при температуре +4°С. Полученные ампликоны (многократно увеличенное число копий изучаемого участка кДНК) вносили в 1,5% агарозный гель, после чего получали электрофореграммы и оценивали полученные результаты (6).At the stage of reverse transcription, a concentrated culture fluid in various dilutions (from 5 to 0.025 U / ml) was added to the isolated and purified RNA of the balsam necrotic spot virus. Next, the following mixture was prepared for the amplification reaction: 10x MagMIX - 2025 from Dialat-LTD CJSC - 2.5 μl per sample, INSV primers direct (S1) and reverse (S2) primers - 2 μl (10 ρmol / μl) per sample , cDNA - 5 µl, water up to 25 µ1, mineral oil. As a result, complementary deoxyribonucleic acid (cDNA) was isolated. To obtain reaction products (amplicons), the mixture was heated according to the following scheme: one cycle at a temperature of + 94 ° C for 15 minutes, 30 cycles at a temperature of + 94 ° C for 1 minute, at a temperature of + 48 ° C for 1 minute, and at temperature + 72 ° С for 1 minute; one cycle at a temperature of + 72 ° C for 10 minutes. Storage was carried out at a temperature of + 4 ° C. The resulting amplicons (a multiple increase in the number of copies of the studied cDNA region) were introduced into a 1.5% agarose gel, after which electrophoregrams were obtained and the results obtained were evaluated (6).

Пример 1Example 1

После проведения обратной транскрипции к образцам выделенной кДНК был добавлен фермент в концентрациях 2,5 Ед/мл и 5 Ед/мл. Также был взят контрольный образец кДНК, в который не был добавлен фермент. На электрофореграмме наличие темной полосы в контрольном образце свидетельствовало о сохранении вируса, отсутствие полосы означало его разрушение. При концентрации 2,5 Ед/мл и более кДНК вируса разрушается, при этом не наблюдается образования темной полосы.After reverse transcription, the enzyme was added to the samples of the isolated cDNA at concentrations of 2.5 Units / ml and 5 Units / ml. A control cDNA sample was also taken in which no enzyme was added. On the electrophoregram, the presence of a dark band in the control sample indicated the preservation of the virus, the absence of the band meant its destruction. At a concentration of 2.5 U / ml or more, the cDNA of the virus is destroyed, and no dark band is observed.

Пример 2Example 2

После проведения обратной транскрипции к образцам выделенной кДНК был добавлен фермент в разных концентрациях (1, 0,1, 0,05, 0,025 Ед/мл). Также был взят контрольный образец кДНК без добавления фермента. На электрофореграмме наличие темной полосы в контрольном образце свидетельствовало о сохранении вируса, отсутствие полосы означало его разрушение. При концентрации более 1 Ед/мл кДНК вируса разрушалось, при этом не наблюдалось образования темной полосы. При большем разведении фермента вирусная кДНК сохраняется и наблюдается темная полоса.After reverse transcription, the enzyme in different concentrations (1, 0.1, 0.05, 0.025 U / ml) was added to the samples of the isolated cDNA. A cDNA control sample was also taken without enzyme addition. On the electrophoregram, the presence of a dark band in the control sample indicated the preservation of the virus, the absence of the band meant its destruction. At a concentration of more than 1 U / ml, the cDNA of the virus was destroyed, and no dark band was observed. With greater dilution of the enzyme, viral cDNA is retained and a dark band is observed.

ЛитератураLiterature

1. Ингибитор вируса герпеса простого 1-го типа. Патент РФ №2022012, 1994. Алексеев С.Б, Берёзов Т.Т., Анджапаридзе О.Г. и др.1. Inhibitor of herpes simplex virus type 1. RF patent №2022012, 1994. Alekseev S.B., Berezov T.T., Andzhaparidze O.G. and etc.

2. Ингибитор вируса иммунодефицита человека. Патент РФ №2022011, 1994. Алексеев С.Б., Веса B.C., Смирнова И.П. и др.2. Inhibitor of human immunodeficiency virus. RF patent №2022011, 1994. Alekseev SB, Vesa B.C., Smirnova I.P. and etc.

3. Смирнова И.П., Алексеев С.Б. Биосинтез противоопухолевого фермента L-лизин-α-оксидазы Trichoderma sp. // Антибиотики и химиотерапия. - 2009 - Т.54. - В.5-6. - С.8-11.3. Smirnova I.P., Alekseev S.B. Biosynthesis of the antitumor enzyme L-lysine-α-oxidase Trichoderma sp. // Antibiotics and chemotherapy. - 2009 - T. 54. - B.5-6. - S.8-11.

4. ОЕРР/ЕРРО (2004). Diagnostic protocol for regulated pests. PM 7/34(1). Tomato spotted wilt tospovirus, Impatiens necrotic spot tospovirus and Watermellon silver mottle tospovirus. Bulletin ОЕРР/ЕРРО Bulletin 34, 271-279.4. OERR / EPRO (2004). Diagnostic protocol for regulated pests. PM 7/34 (1). Tomato spotted wilt tospovirus, Impatiens necrotic spot tospovirus and Watermellon silver mottle tospovirus. Bulletin OEPP / EPRO Bulletin 34, 271-279.

5. Windham A.S., Hale F., Yanes J. Impatiens necrotic spot virus: a serious pathogen of floral crops (1998). Agricultural Extension Service University of Tennessee. SP370A.5. Windham A.S., Hale F., Yanes J. Impatiens necrotic spot virus: a serious pathogen of floral crops (1998). Agricultural Extension Service University of Tennessee. SP370A.

6. Mumford R.A., Barker I., Wood K.R. (1996b) An improved method for the detection of Tospoviruses using the polymerase chain reaction. Journal of Virological Methods 57, 109-115.6. Mumford R.A., Barker I., Wood K.R. (1996b) An improved method for the detection of Tospoviruses using the polymerase chain reaction. Journal of Virological Methods 57, 109-115.

Claims (1)

Применение штамма Trichoderma harzianum Rifai, депонированного в ВКПМ под №F-180 - в качестве продуцента ингибитора вируса некротической пятнистости бальзамина. The use of the Trichoderma harzianum Rifai strain deposited in VKPM under No. F-180 as a producer of an inhibitor of the balsam necrotic spotting virus.
RU2010150343/10A 2010-12-09 2010-12-09 Producer of impatiens necrotic spot virus inhibitor RU2481392C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2010150343/10A RU2481392C2 (en) 2010-12-09 2010-12-09 Producer of impatiens necrotic spot virus inhibitor

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2010150343/10A RU2481392C2 (en) 2010-12-09 2010-12-09 Producer of impatiens necrotic spot virus inhibitor

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2010150343A RU2010150343A (en) 2012-06-20
RU2481392C2 true RU2481392C2 (en) 2013-05-10

Family

ID=46680574

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2010150343/10A RU2481392C2 (en) 2010-12-09 2010-12-09 Producer of impatiens necrotic spot virus inhibitor

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2481392C2 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2535983C1 (en) * 2013-12-17 2014-12-20 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Российский университет дружбы народов" (РУДН) PRODUCER OF CUCURBIT BACTERIAL SPOT AGENT (Acidovorax citrulli) INHIBITOR

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0747477A1 (en) * 1994-01-28 1996-12-11 Irina Pavlovna Smirnova Strain of trichoderma harzieanum rifai, process for obtaining l-lysine-alpha-oxidase as an inhibitor of viral and bacterial activity, immunomodulator and skin healing agent
US6528703B1 (en) * 1998-09-11 2003-03-04 Ball Horticultural Company Production of transgenic impatiens
RU2233171C2 (en) * 2002-04-03 2004-07-27 Смирнова Ирина Павловна POLYFUNCTIONAL PHARMACEUTICAL COMPOSITION BASED ON L-LYSINE-α-OXIDASE FROM FUNGUS OF GENUS TRICHODERMA AND METHOD FOR PREPARING THIS ENZYME

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0747477A1 (en) * 1994-01-28 1996-12-11 Irina Pavlovna Smirnova Strain of trichoderma harzieanum rifai, process for obtaining l-lysine-alpha-oxidase as an inhibitor of viral and bacterial activity, immunomodulator and skin healing agent
US6528703B1 (en) * 1998-09-11 2003-03-04 Ball Horticultural Company Production of transgenic impatiens
RU2233171C2 (en) * 2002-04-03 2004-07-27 Смирнова Ирина Павловна POLYFUNCTIONAL PHARMACEUTICAL COMPOSITION BASED ON L-LYSINE-α-OXIDASE FROM FUNGUS OF GENUS TRICHODERMA AND METHOD FOR PREPARING THIS ENZYME

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2535983C1 (en) * 2013-12-17 2014-12-20 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Российский университет дружбы народов" (РУДН) PRODUCER OF CUCURBIT BACTERIAL SPOT AGENT (Acidovorax citrulli) INHIBITOR

Also Published As

Publication number Publication date
RU2010150343A (en) 2012-06-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN108504594B (en) Amycolatopsis and application thereof in preparation of pseudo-ginseng root rot resistant agent
CN103131656B (en) Streptomyces YT027 and application thereof
CN115161362B (en) Application of Phellinus linteus fermentation liquor in regulation and control of peony rhizosphere microorganisms
CN101855973B (en) Fungus strain irpex iacteus for producing laccase, and culturing method and application thereof
US12010999B2 (en) Application of endophytic Falciphora oryzae FO-R20 in controlling panicle blast
CN112341284A (en) Special microbial fertilizer for tobacco and preparation method and application thereof
Bose et al. Optimization of Culture Conditions for Growth and Production of Bioactive Metabolites by Endophytic Fungus-Aspergillus tamarii
CN1124350C (en) Strain of the microorganism penicillium oxalicum Var armeniaca and its application
RU2481392C2 (en) Producer of impatiens necrotic spot virus inhibitor
CN114292759B (en) Fusarium oxysporum with function of preventing and treating tobacco continuous cropping obstacle
RU2475528C2 (en) STRAIN Trichoderma harzianum Rifai - PRODUCER OF INHIBITOR OF Tobacco ringspot virus
RU2493247C1 (en) Inhibitor of stimulant of bacterial burn of fruit crops (erwinia amylovora)
CN100595270C (en) Microorganism capable of hydrolyzing glycosyl to hydroxyl and application thereof
CN1876830B (en) Levo-phosphonomycin biotransformation strain screening method using dextro-phosphonomycin as substrate
KR102125358B1 (en) Novel Aspergillus oryzae IF18-2 with high saccharogenic power and high liquerying activity and drying method thereof
RU2535983C1 (en) PRODUCER OF CUCURBIT BACTERIAL SPOT AGENT (Acidovorax citrulli) INHIBITOR
CN113817653A (en) Pseudomonas fluorescens BsEB-1 and application thereof
SU1717052A1 (en) Fungous strain trichoderma lignorum for production of trichodermin
RU2001949C1 (en) Strain of fungus trichoderma reesei - a producer of cellulolytic enzymes
RU2195490C2 (en) Strain of mycelioid fungus trichoderma longibrachiatum as producer of carbohydrases complex containing cellulase, beta-glucanase, xylanase, pectinase and mannanase
CN114806922B (en) Biocontrol microbial agent for preventing and treating edible fungus diseases and application thereof
US20080085543A1 (en) Process for gibberellic acid production with "fusarium moniliforme" strains
CN115521877B (en) Penicillium strain and application thereof in preparation of brefeldin A
KR20050116297A (en) Pseudomonas sp. rrj228 helping the growth of crops and the microbial agent containing the same
CN117986326B (en) Trichoderma hook T21 antibacterial peptide BII and preparation method and application thereof

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20151210