RU2440801C1 - Method of treating deep stromal keratites - Google Patents

Method of treating deep stromal keratites Download PDF

Info

Publication number
RU2440801C1
RU2440801C1 RU2010148129/14A RU2010148129A RU2440801C1 RU 2440801 C1 RU2440801 C1 RU 2440801C1 RU 2010148129/14 A RU2010148129/14 A RU 2010148129/14A RU 2010148129 A RU2010148129 A RU 2010148129A RU 2440801 C1 RU2440801 C1 RU 2440801C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
suspension
treatment
cornea
corneal
solution
Prior art date
Application number
RU2010148129/14A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Надежда Анатольевна Левченко (RU)
Надежда Анатольевна Левченко
Ольга Ивановна Кривошеина (RU)
Ольга Ивановна Кривошеина
Игорь Викторович Запускалов (RU)
Игорь Викторович Запускалов
Original Assignee
Надежда Анатольевна Левченко
Ольга Ивановна Кривошеина
Игорь Викторович Запускалов
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Надежда Анатольевна Левченко, Ольга Ивановна Кривошеина, Игорь Викторович Запускалов filed Critical Надежда Анатольевна Левченко
Priority to RU2010148129/14A priority Critical patent/RU2440801C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2440801C1 publication Critical patent/RU2440801C1/en

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: invention relates to medicine and can be used for treatment of deep stromal keratites. Treatment is resalised by traditional pharmacotherapy, including specific antiviral and/or antibacterial medications, non-steroid anti-inflammatory and anti-allergic medications, as well as keratoprotectors. Additionally into layer of ill eye corneal stroma around pathologic nidus introduced are 0.5 ml of cell suspension, containing autologous mononuclear cells (AM). Suspension is introduced immediately after its preparation. For this purpose AM are isolated from heparinised patient's blood by method of fractioning in density gradient on separating ficoll-verografin solution with ratio of gradient and separated suspension volumes 1:3-1:4, at 2000 rev/min, at room temperature during 15 minutes. After that, 1.0 ml of isotonic sodium chloride solution is added and obtained suspension is re-centrifuged during 7 minutes at 1500 rev/min. Then, obtained cell suspension is placed into sterile vial with addition of 3.0 ml of isotonic sodium chloride solution and is used for introduction into cornea stromal layer. In the process of treatment procedure is repeated 1-2 times with 4-6 day interval depending on disease severity degree and clinical picture dynamics.
EFFECT: method ensures elimination of corneal syndrome, disappearance of cornea edema, resorption of necrotic masses, cornea epithelisation and increase of visual acuity, thus reducing treatment terms and number of disease complications.
1 ex, 1 tbl

Description

Изобретение относится к области медицины и может быть использовано для лечения глубоких стромальных кератитов.The invention relates to medicine and can be used to treat deep stromal keratitis.

Необходимость разработки новых методов лечения глубоких стромальных кератитов обусловлена недостаточной эффективностью традиционной фармакотерапии и высокой частотой развития осложнений. Согласно опубликованным данным [3, 7, 13, 14, 15] в 8-9% случаев патологический процесс завершается анатомической гибелью глаза, в 17% выполняется энуклеация в связи с безуспешностью лечения, в 23-25% наблюдается осложненное течение заболевания.The need to develop new treatments for deep stromal keratitis is due to the lack of effectiveness of traditional pharmacotherapy and the high incidence of complications. According to published data [3, 7, 13, 14, 15], in 8–9% of cases, the pathological process ends with anatomical death of the eye, enucleation is performed in 17% due to the failure of treatment, and a complicated course of the disease is observed in 23–25%.

Среди вирусных заболеваний глаз наиболее распространены герпетические поражения. Как признано во всем мире, вирус герпеса является наиболее частой причиной поражения роговицы [7]. Герпес-вирусный кератит признается первой причиной корнеальной слепоты. По данным Московского НИИ глазных болезней им. Гельмгольца, герпетический кератит составляет 66,6% от общего числа больных с роговичной патологией, 55,4% из числа больных с язвами роговицы. Герпетический кератит характеризуется тяжелым длительным течением и склонностью к рецидивам, которые возникают примерно у 25% больных после первого эпизода болезни, у 50% - после второй и до 75% после повторных. Типичным проявлением поражения роговицы является древовидный кератит с характерной формой инфильтрата. Реже встречаются другие разновидности: эпителиальный кератит, интерстициальный кератит, некротизирующий стромальный кератит, дисковидный стромальный.Among viral eye diseases, herpetic lesions are most common. As recognized worldwide, herpes virus is the most common cause of corneal damage [7]. Herpes virus keratitis is recognized as the first cause of corneal blindness. According to the Moscow Research Institute of Eye Diseases. Helmholtz, herpetic keratitis accounts for 66.6% of the total number of patients with corneal pathology, 55.4% of the number of patients with corneal ulcers. Herpetic keratitis is characterized by a severe prolonged course and a tendency to relapse, which occur in approximately 25% of patients after the first episode of the disease, in 50% after the second and up to 75% after repeated ones. A typical manifestation of corneal lesions is treelike keratitis with a characteristic form of infiltrate. Other varieties are less common: epithelial keratitis, interstitial keratitis, necrotizing stromal keratitis, disk-like stromal.

В настоящее время стали очевидными негативные эффекты применения антибактериальных препаратов: подавление иммунитета, повышение резистентности микроорганизмов [3, 7, 18]. Как правило, применение кератопротекторов при данных видах патологии малоэффективно, особенно у больных с грубыми изменениями роговицы, и при соответствующих показаниях производят хирургическое вмешательство (послойная или сквозная кератопластика). Данные операции технически сложны и требуют обязательного наличия трансплантатов, что в настоящее время является одной из важнейших проблем в офтальмологии. Возможны серьезные послеоперационные осложнения, связанные с развитием иммунологических реакций, приводящих к деструкции или отторжению трансплантата.Currently, the negative effects of the use of antibacterial drugs have become apparent: suppression of immunity, increased resistance of microorganisms [3, 7, 18]. As a rule, the use of keratoprotectors for these types of pathologies is ineffective, especially in patients with gross changes in the cornea, and surgery is performed with appropriate indications (layered or through keratoplasty). These operations are technically complex and require the presence of transplants, which is currently one of the most important problems in ophthalmology. Serious postoperative complications associated with the development of immunological reactions leading to destruction or rejection of the graft are possible.

В последние годы появились исследования, свидетельствующие о возможности ускорения регенераторных процессов в поврежденной роговице под действием цитокинов, вырабатываемых мононуклеарными клетками крови [5, 6, 11].In recent years, studies have appeared that indicate the possibility of accelerating regenerative processes in the damaged cornea under the action of cytokines produced by mononuclear blood cells [5, 6, 11].

Наиболее близким к предлагаемому является способ интракамеральной локальной экспресс-аутоцитокинотерапии (ЛЭАЦКТ), при котором в условиях операционной в переднюю камеру больного глаза вводятся активированные Полуданом аутологичные мононуклеарные клетки крови пациента. Забор крови у пациента производится с соблюдением правил асептики и антисептики в условиях процедурного кабинета. Кровь берется из локтевой вены пациента в количестве 5,0 мл. Содержимое 2 флаконов Полудана растворяют в 2,0 мл раствора воды для инъекций и водный раствор Полудана переносят в стерильную пробирку с 5,0 мл крови. Содержимое пробирки тщательно перемешивают путем переворачивания. Далее пробирку помещают в термостат на 2-4 часа. После окончания инкубирования пробирку со свернувшейся кровью центрифугируют в течение 5-10 минут при 500-1000 об/мин. Далее, на границе сыворотки и сгустка свернувшейся крови пипеткой собирается клеточная взвесь. В условиях операционной после обработки операционного поля и ретробульбарной анестезии вблизи лимба лезвием производится парацентез роговицы размером 2-3 мм. В переднюю камеру постепенно осуществляют инфузию суспензии аутологичных мононуклеаров крови в количестве 1,0-2,0 мл до полного замещения ею влаги передней камеры. Накладывают супрамидный шов в зоне парацентеза роговицы. Сразу после операции больной должен принять положение лицом вниз и лежать в течение 1 часа, чтобы введенные клетки контактировали с эндотелием роговицы. Сеансы ЛЭАЦКТ проводят с интервалом 3-6 дней в количестве от 1 до 4.Closest to the proposed is a method of intracameral local rapid autocytokine therapy (LEACCT), in which, under operating conditions, autologous mononuclear blood cells of the patient activated by Poludan are introduced into the anterior chamber of the patient’s eye. Blood sampling from a patient is carried out in compliance with the rules of asepsis and antiseptics in a treatment room. Blood is taken from the patient's ulnar vein in an amount of 5.0 ml. The contents of 2 vials of Poludan are dissolved in 2.0 ml of water for injection and the aqueous solution of Poludan is transferred into a sterile tube with 5.0 ml of blood. The contents of the tube are thoroughly mixed by inverting. Next, the test tube is placed in a thermostat for 2-4 hours. After incubation, the clotted tube is centrifuged for 5-10 minutes at 500-1000 rpm. Further, at the border of serum and clot of coagulated blood, a cell suspension is collected with a pipette. In the operating room, after processing the surgical field and retrobulbar anesthesia near the limb with a blade, a corneal paracentesis of 2-3 mm is performed. A suspension of autologous blood mononuclear cells in an amount of 1.0-2.0 ml is gradually infused into the anterior chamber until it completely replaces the moisture of the anterior chamber. A supramid suture is applied in the area of corneal paracentesis. Immediately after surgery, the patient should take the position face down and lie for 1 hour, so that the introduced cells are in contact with the corneal endothelium. LEACCT sessions are carried out with an interval of 3-6 days in an amount of 1 to 4.

Однако широкое применение данного способа в клинической практике ограничено в связи с длительностью и трудоемкостью получения аутологичных мононуклеаров крови, активированных с помощью Полудана, в подготовительном периоде.However, the widespread use of this method in clinical practice is limited due to the duration and the complexity of obtaining autologous blood mononuclear cells activated with the help of Poludan in the preparatory period.

Новая техническая задача - повышение эффективности лечения за счет сокращения сроков и снижения числа осложнений.A new technical task is to increase the effectiveness of treatment by reducing the time and reducing the number of complications.

Для решения поставленной задачи в способе лечения глубоких стромальных кератитов путем введения аутологичных мононуклеаров крови на фоне традиционной фармакотерапии, включающей специфические противовирусные и/или антибактериальные препараты, нестероидные противовоспалительные и антиаллергические средства, а также кератопротекторы, после проведения местной анестезии, 0,5 мл клеточной взвеси AM вводят в толщу стромы роговицы больного глаза вокруг патологического очага непосредственно после ее приготовления, для чего AM выделяют из гепаринизированной крови пациента методом фракционирования в градиенте плотности на разделяющем растворе фиколл-верографин при соотношении объемов градиента и разделяемой суспензии 1:3-1:4 путем центрифугирования при 2000 об/мин при комнатной температуре в течение 15 минут, добавляют 1,0 мл изотонического раствора хлорида натрия, полученную суспензию отмывают центрифугированием в течение 7 мин при 1500 об/мин и помещают в стерильный флакон, причем в процессе лечения процедуру повторяют 1-2 раза с интервалом 4-6 дней в зависимости от степени тяжести заболевания и динамики клинической картины.To solve the problem in a method of treating deep stromal keratitis by introducing autologous blood mononuclear cells against the background of traditional pharmacotherapy, including specific antiviral and / or antibacterial drugs, non-steroidal anti-inflammatory and anti-allergic drugs, as well as keratoprotectors, after local anesthesia, 0.5 ml of cell suspension AM is injected into the stroma of the cornea of the diseased eye around the pathological focus immediately after its preparation, for which AM is isolated from arinized blood of a patient by density gradient fractionation on a ficoll-verographin separation solution with a ratio of the gradient volumes and the suspension divided by 1: 3-1: 4 by centrifugation at 2000 rpm at room temperature for 15 minutes, add 1.0 ml of isotonic solution sodium chloride, the resulting suspension is washed by centrifugation for 7 min at 1500 rpm and placed in a sterile vial, and during the treatment the procedure is repeated 1-2 times with an interval of 4-6 days, depending on the severity diseases and dynamics of the clinical picture.

Способ осуществляют следующим образом.The method is as follows.

После поступления пациента проводят его обследование и одновременно назначают фармакотерапию, включающую специфические противовирусные и/или антибактериальные препараты, нестероидные противовоспалительные и антиаллергические средства, а также кератопротекторы. На вторые сутки после начала лечения проводят процедуру согласно предлагаемому способу, заключающуюся в выделении аутологичных мононуклеаров (AM) из крови пациента и последующего введения полученной клеточной взвеси в патологический очаг больного глаза. Для этого аутологичные мононуклеары (АМ) крови пациента выделяют методом фракционирования в градиенте плотности на разделяющем растворе фиколл-верографин [2] и после отмывания и размещения клеточной взвеси в стерильном флаконе с добавлением 3,0 мл изотонического раствора хлорида натрия непосредственно начинают процедуру.After the patient arrives, they are examined and pharmacotherapy is prescribed at the same time, including specific antiviral and / or antibacterial drugs, non-steroidal anti-inflammatory and anti-allergic drugs, as well as keratoprotectors. On the second day after the start of treatment, the procedure according to the proposed method is carried out, which consists in the isolation of autologous mononuclear cells (AM) from the patient’s blood and the subsequent introduction of the resulting cell suspension into the pathological focus of the patient’s eye. For this, autologous mononuclear cells (AM) of the patient’s blood are isolated by density gradient fractionation on a ficoll-verographin separation solution [2] and, after washing and placing the cell suspension in a sterile vial with the addition of 3.0 ml of an isotonic sodium chloride solution, the procedure begins directly.

Выделение аутологичных мононуклеаров (АМ) осуществляют следующим образом: в условиях процедурного кабинета с соблюдением условий асептики и антисептики производится забор крови из локтевой вены пациента в количестве 4,0-5,0 мл, которую помещают в стерильную пробирку, содержащую 1,0 мл раствора гепарина. Гепаринизированную кровь разводят в 2 раза изотоническим раствором хлорида натрия. Полученную суспензию наслаивают на 3,0 мл смеси фиколла-верографина (12 частей 9% фиколла и 5 частей 33,9% верографина с плотностью 1,067-1,077 г/мл). Соотношение объемов градиента и разделяемой суспензии составляет 1:3-1:4.The selection of autologous mononuclear cells (AM) is carried out as follows: in the conditions of the treatment room in compliance with aseptic and antiseptic conditions, blood is taken from the patient's ulnar vein in an amount of 4.0-5.0 ml, which is placed in a sterile tube containing 1.0 ml of solution heparin. Heparinized blood is diluted 2 times with isotonic sodium chloride solution. The resulting suspension is layered on 3.0 ml of a mixture of ficoll-verographin (12 parts of 9% ficoll and 5 parts of 33.9% verographin with a density of 1.067-1.077 g / ml). The ratio of the volume of the gradient and the shared suspension is 1: 3-1: 4.

Пробирку центрифугируют при комнатной температуре в течение 15 мин при 800 g (2000 об/мин). После центрифугирования интерфазный слой, содержащий аутологичные мононуклеары и располагающийся между плазмой и градиентом, забирают пастеровской пипеткой. Добавляют 1,0 мл изотонического раствора хлорида натрия и полученную суспензию вновь центрифугируют в течение 7 мин при 400 g (1500 об/мин) для отмывания клеточной взвеси.The tube is centrifuged at room temperature for 15 min at 800 g (2000 rpm). After centrifugation, an interphase layer containing autologous mononuclear cells located between the plasma and the gradient is collected with a Pasteur pipette. Add 1.0 ml of isotonic sodium chloride solution and the resulting suspension is again centrifuged for 7 min at 400 g (1500 rpm) to wash the cell suspension.

Чистота мононуклеаров, полученных на градиенте фиколл-верографин, составляет 96-98%. Жизнеспособность клеточного материала оценивают в тесте с трипановым синим следующим способом: предварительно на основе раствора Рингера готовят 0,1% раствор эозина. Далее на основе дистиллированной воды готовят 0,1% раствор трипанового синего. После этого к капле клеточной суспензии добавляют 1-2 капли свежей смеси растворов, приготовленных ранее красителей, взятых в равных объемах. Полученную смесь помещают в камеру Горяева. При подсчете клеток процент окрашенных (погибших) элементов должен составлять 1,5-2%, что не превышало бы допустимое (не более 3%) количество. Жизнеспособность клеточного материала в тесте с трипановым синим должна быть в пределах 97-98%.The purity of mononuclear cells obtained on a ficoll-verographin gradient is 96-98%. The viability of the cellular material is evaluated in a trypan blue test in the following way: first, a 0.1% eosin solution is prepared on the basis of Ringer's solution. Then, based on distilled water, a 0.1% trypan blue solution is prepared. After that, 1-2 drops of a fresh mixture of solutions of previously prepared dyes taken in equal volumes are added to a drop of cell suspension. The resulting mixture is placed in the camera Goryaeva. When counting cells, the percentage of stained (dead) elements should be 1.5-2%, which would not exceed the permissible (no more than 3%) amount. The viability of the cellular material in the trypan blue test should be between 97-98%.

В условиях операционной после предварительной инстилляции 1-2 капель 0,4% раствора инокаина и субтенонеальной инъекции 2,0 мл 2% раствора лидокаина полученную клеточную взвесь в объеме 0,5 мл вводят в толщу стромы роговицы вокруг патологического очага. Режим способа основан на анализе результатов клинических наблюдений: введения в количестве 1-2 раза с интервалом 4-6 дней достаточно для достижения положительной динамики заболевания (очищения язвенного дефекта от некротических масс, купирования воспаления, эпителизации роговицы), в то же время предотвращается излишняя травматизация.Under operating conditions, after preliminary instillation of 1-2 drops of a 0.4% solution of inocaine and a subtenoneal injection of 2.0 ml of a 2% solution of lidocaine, the resulting cell suspension in a volume of 0.5 ml is injected into the thickness of the corneal stroma around the pathological focus. The mode of the method is based on the analysis of the results of clinical observations: the introduction of 1-2 times with an interval of 4-6 days is enough to achieve positive dynamics of the disease (cleansing the ulcer from necrotic masses, stopping inflammation, epithelization of the cornea), while excessive trauma is prevented .

Лечение предлагаемым способом проводится на фоне традиционной фармакотерапии с использованием специфических (противовирусных и/или антибактериальных) препаратов, нестероидных противовоспалительных и антиаллергических средств, а также кератопротекторов.Treatment by the proposed method is carried out against the background of traditional pharmacotherapy using specific (antiviral and / or antibacterial) drugs, non-steroidal anti-inflammatory and anti-allergic drugs, as well as keratoprotectors.

Клинические исследования проведены в группе из 50 пациентов (50 глаз), которые в зависимости от способа лечения были подразделены на 2 группы - основную и сравнения. Всем пациентам основной группы 27 человек (27 глаз) на фоне традиционной фармакотерапии, включающей специфические (противовирусные или антибактериальные) средства, нестероидные противовоспалительные и антиаллергические препараты, а также кератопротекторы, выполнялись интрастромальные инъекции аутологичных мононуклеаров крови 1-2 раза на курс лечения с интервалом 4-6 дней в зависимости от степени тяжести заболевания и динамики клинической картины.Clinical studies were conducted in a group of 50 patients (50 eyes), which, depending on the method of treatment, were divided into 2 groups - the main and comparisons. All patients of the main group of 27 people (27 eyes) under the background of traditional pharmacotherapy, including specific (antiviral or antibacterial) drugs, non-steroidal anti-inflammatory and anti-allergic drugs, as well as keratoprotectors, were given intrastromal injections of autologous blood mononuclear cells 1-2 times per treatment course with an interval of 4 -6 days depending on the severity of the disease and the dynamics of the clinical picture.

Группа сравнения представлена 23 пациентами (23 глаза), получавшими традиционное лечение без интрастромального введения аутологичных мононуклеаров крови.The comparison group is represented by 23 patients (23 eyes) who received conventional treatment without intrastromal administration of autologous blood mononuclear cells.

Пациенты обеих групп сопоставимы по полу, возрасту и тяжести поражения роговой оболочки.Patients of both groups are comparable in sex, age and severity of corneal lesions.

Всем пациентам проводили общеофтальмологическое обследование, включавшее визометрию, периметрию, биомикроскопию, офтальмоскопию, определение чувствительности роговицы, флюоресцеиновую пробу, фоторегистрацию, исследование мазков конъюнктивальной полости. Интенсивность помутнения роговицы оценивали по 10-балльной шкале Войно-Ясенецкого.All patients underwent general phthalmological examination, including visometry, perimetry, biomicroscopy, ophthalmoscopy, determination of corneal sensitivity, fluorescein test, photorecording, examination of conjunctival smears. The intensity of corneal opacity was evaluated on a 10-point scale Voino-Yasenetsky.

Критерием выздоровления считали: устранение роговичного синдрома, исчезновение отека роговицы, резорбцию некротических масс, эпителизацию роговицы, повышение остроты зрения.The criterion of recovery was considered to be: elimination of the corneal syndrome, the disappearance of corneal edema, resorption of necrotic masses, corneal epithelization, increased visual acuity.

Сравнительный анализ результатов лечения глубоких стромальных кератитов позволил выявить значительную эффективность интрастромального введения аутологичных мононуклеаров крови, данные представлены в таблице 1.A comparative analysis of the treatment results for deep stromal keratitis revealed a significant effectiveness of intrastromal administration of autologous blood mononuclear cells, the data are presented in table 1.

Срок очищения язвенного дефекта от некротического детрита у пациентов основной группы сократился в 1,5-2 раза в отличие от группы сравнения (p<0,05). Резорбция перифокального отека и инфильтрации стромы роговицы ускорилась на 40-42%. В основной группе раньше, чем в группе сравнения, наступила полная эпителизация язвы роговицы (7,2±0,17 суток и 11,0±0,16 суток соответственно).The period of cleansing of a ulcer defect from necrotic detritus in patients of the main group decreased by 1.5-2 times in contrast to the comparison group (p <0.05). The resorption of perifocal edema and corneal stroma infiltration accelerated by 40-42%. In the main group, earlier than in the comparison group, complete corneal ulcer epithelization occurred (7.2 ± 0.17 days and 11.0 ± 0.16 days, respectively).

Таким образом, применение предлагаемого способа способствует ускорению в 1,5 раза заживления язвенного дефекта роговицы у пациентов основной группы, а также позволило сократить число осложнений данного заболевания (формирование десцеметоцеле, перфорация роговицы, развитие эндофтальмита).Thus, the application of the proposed method accelerates 1.5 times the healing of corneal ulcer in patients of the main group, and also reduced the number of complications of this disease (formation of descemetocele, perforation of the cornea, development of endophthalmitis).

Формирующееся в исходе заболевания помутнение роговицы у пациентов основной группы было меньшей интенсивности, чем у пациентов группы сравнения (по шкале Войно-Ясенецкого - 4,5 и 6,0 баллов соответственно).The corneal opacity formed in the outcome of the disease was lower in the patients of the main group than in the patients of the comparison group (on the Vojno-Yasenetsky scale - 4.5 and 6.0 points, respectively).

При этом у большинства пациентов группы сравнения помутнение роговицы выходило за пределы дефекта на 3-4 мм.Moreover, in most patients of the comparison group, corneal opacity went beyond the defect by 3-4 mm.

Применение предлагаемого способа в комплексном лечении пациентов с глубокими стромальными кератитами положительно отразилось и на состоянии зрительных функций. На момент лечения острота зрения у пациентов обеих групп составляла 0,01-0,02. К окончанию лечения повышение остроты зрения до 0,4-0,5 отмечено в 62% случаев (17 человек) в основной группе и в 47,8% (11 человек) в группе сравнения.The use of the proposed method in the complex treatment of patients with deep stromal keratitis positively affected the state of visual functions. At the time of treatment, visual acuity in patients of both groups was 0.01-0.02. By the end of treatment, an increase in visual acuity to 0.4-0.5 was observed in 62% of cases (17 people) in the main group and in 47.8% (11 people) in the comparison group.

Также важным в медико-социальном аспекте явилось сокращение пребывания пациентов основной группы в стационаре в среднем на 5,5±0,3 койко-дней. Средний период стационарного лечения пациентов основной группы составил 13,0±0,5 дней, пациентов группы сравнения 19,0±0,2 дней.Also important in the medical and social aspect was the reduction in the stay of patients of the main group in the hospital by an average of 5.5 ± 0.3 hospital days. The average period of inpatient treatment of patients of the main group was 13.0 ± 0.5 days, patients of the comparison group 19.0 ± 0.2 days.

Клинический пример на осуществление метода.A clinical example on the implementation of the method.

Пример 1. Больной Т., 22 года, обратился с жалобами на покраснение, слезотечение, снижение зрения левого глаза.Example 1. Patient T., 22 years old, complained of redness, lacrimation, decreased vision of the left eye.

Анамнез заболевания: около 1 мес назад во время ремонта в левый глаз попало инородное тело. К офтальмологу пациент обратился через 2 дня. Инородное тело было удалено, местно назначены антибиотики и кератопротекторы. Однако лечение пациент принимал нерегулярно, в связи с чем через несколько дней отметил ухудшение в виде резкого покраснения, светобоязни, боли, слезотечения и снижения зрения в левом глазу. Бригадой «скорой помощи» был госпитализирован в офтальмологическое отделение МСЧ №2 с диагнозом: язва роговицы левого глаза, где назначено противовоспалительное лечение и наложена лечебная контактная линза. Однако проводимое лечение положительных результатов не дало, язва роговицы OS прогрессировала с развитием десцеметоцеле, в связи с чем пациент был переведен для продолжения лечения в офтальмологическую клинику СибГМУ.Medical history: about 1 month ago, during the repair, a foreign body fell into the left eye. The patient turned to an ophthalmologist after 2 days. The foreign body was removed, antibiotics and keratoprotectors were locally prescribed. However, the patient took the treatment irregularly, and therefore a few days later noted a deterioration in the form of sharp redness, photophobia, pain, lacrimation and decreased vision in the left eye. The ambulance team was hospitalized in the ophthalmology department of MSC No. 2 with a diagnosis of a corneal ulcer of the left eye, where anti-inflammatory treatment was prescribed and a therapeutic contact lens was applied. However, the treatment carried out did not give positive results, OS corneal ulcer progressed with the development of descemetocele, in connection with which the patient was transferred for further treatment to the ophthalmological clinic of the Siberian State Medical University.

Объективный осмотр:Objective inspection:

Vis OD=1,0Vis OD = 1.0

OS=0,5 н/кOS = 0.5 n / a

При осмотре глазная щель OS уже OD за счет блефароспазма, отмечалось слезотечение.On examination, the palpebral fissure OS is already OD due to blepharospasm, lacrimation was noted.

Биомикроскопия OD - глаз спокоен. Проводящие среды прозрачные.Biomicroscopy OD - the eye is calm. Conductive media are transparent.

OS - смешанная инъекция бульбарной конъюнктивы, на роговице парацентрально снизу снаружи язвенный дефект овальной формы, в d≈4,0 мм края рыхлые, подрытые, значительно истончены. Дно язвенного дефекта выстлано некротическим детритом. Перифокально отмечался отек и инфильтрация стромы роговицы. Детали передней камеры просматриваются с трудом из-за отека роговицы. Офтальмоскопия затруднена из-за помутнения роговицы. Чувствительность роговицы отсутствует.OS - a mixed injection of the bulbar conjunctiva, on the cornea, paracentrally from below, an oval ulcerative defect, in d≈4.0 mm the edges are loose, saped, and significantly thinned. The bottom of the ulcer is lined with necrotic detritus. Edema and infiltration of the corneal stroma were perifocal. Parts of the anterior chamber are difficult to see due to corneal edema. Ophthalmoscopy is difficult due to clouding of the cornea. Sensitivity of the cornea is absent.

Диагноз: герпетическая язва роговицы с угрозой перфорации левого глаза.Diagnosis: herpetic corneal ulcer with a threat of perforation of the left eye.

Назначено лечение: общее - таблетки Ацикловир-Акос 200 мг 4 раза в день, внутримышечно - раствор Аскорбиновой кислоты 5% - 2 мл №10, раствор Супрастина 1,0 мл №5, раствор Диклофенака 75 мг №5; внутривенно - раствор Цефазолина 1,0 №5; местно-субконъюнктивально раствор Полудана 0,5 мл, глазная мазь Ацикловир 3% - за нижнее веко через 1 час, инсталляции - Полудан, Офтальмоферон каждый час.The prescribed treatment: general - tablets Acyclovir-Akos 200 mg 4 times a day, intramuscularly - Ascorbic acid solution 5% - 2 ml No. 10, Suprastin solution 1.0 ml No. 5, Diclofenac solution 75 mg No. 5; intravenously - cefazolin solution 1.0 No. 5; local-subconjunctival solution of Poludan 0.5 ml, eye ointment Acyclovir 3% - for the lower eyelid after 1 hour, installations - Poludan, Ophthalmoferon every hour.

Дополнительно к местному лечению на 2 сутки в условиях операционной пациенту выполнено лечение согласно предлагаемому способу, включающему выделение и последующее интрастромальное введение аутологичных мононуклеаров крови. В условиях процедурного кабинета кровь, взятую из локтевой вены пациента, поместили в стерильную пробирку, содержащую 1,0 мл раствора гепарина. Гепаринизированную кровь дважды развели в изотоническом растворе хлорида натрия. Полученную суспензию наслоили на 3,0 мл смеси феколла-верографина. Пробирку центрифугировали при комнатной температуре в течение 15 мин при 800 g (2000 об/мин). После центрифугирования интерфазный слой, содержащий мононуклеары, забрали пастеровской пипеткой и после добавления 1,0 мл физиологического раствора полученную суспензию вновь центрифугировали в течение 7 мин при 400 g (1500 об/мин). В условиях операционной после обработки операционного поля с соблюдением правил асептики и антисептики выполнили местную анестезию (инсталляции 0,4% раствора инокаина, субтенонеально 2% - 2,0 мл раствора лидокаина) больного глаза и в строму роговицы ввели суспензию аутологичных мононуклеаров крови в количестве 0,5 мл.In addition to local treatment for 2 days in the operating room, the patient underwent treatment according to the proposed method, including the selection and subsequent intrastromal administration of autologous blood mononuclear cells. In the treatment room, blood taken from the patient’s elbow vein was placed in a sterile tube containing 1.0 ml of heparin solution. Heparinized blood was diluted twice in isotonic sodium chloride solution. The resulting suspension was layered in 3.0 ml of fecoll-verographin mixture. The tube was centrifuged at room temperature for 15 min at 800 g (2000 rpm). After centrifugation, the interphase layer containing mononuclear cells was taken with a Pasteur pipette and after adding 1.0 ml of physiological saline, the resulting suspension was again centrifuged for 7 min at 400 g (1500 rpm). In the operating room, after processing the surgical field in compliance with aseptic and antiseptic rules, local anesthesia was performed (installations of a 0.4% inocaine solution, subtenoneally 2% - 2.0 ml lidocaine solution) of the sick eye and a suspension of autologous blood mononuclear cells was injected into the corneal stroma in an amount of 0 5 ml.

Динамика течения заболевания:The dynamics of the disease:

На 2-й день после процедуры (соответственно 3-й день после госпитализации и начала лечения) отмечена положительная динамика клинической картины.On the 2nd day after the procedure (respectively, the 3rd day after hospitalization and the start of treatment), a positive dynamics of the clinical picture was noted.

Vis OS=0,6c(+)1,0Vis OS = 0.6c (+) 1.0 дd =1,0= 1,0

Status localis OS: отмечается незначительная светобоязнь, умеренная цилиарная болезненность. Офтальмотонус в норме. Язвенный дефект в диаметре несколько уменьшился за счет эпителизации, дно очистилось от некротических масс, перифокальный отек роговицы также несколько уменьшился. Передняя камера мелковатая, влага прозрачная, рисунок радужки несколько сглажен, зрачок средней ширины, округлой формы, реакция на свет ослаблена.Status localis OS: slight photophobia, moderate ciliary soreness. Ophthalmotonus is normal. A peptic ulcer in diameter decreased slightly due to epithelization, the bottom cleared of necrotic masses, perifocal corneal edema also decreased slightly. The anterior chamber is small, the moisture is transparent, the pattern of the iris is somewhat smoothed out, the pupil is of medium width, rounded, the reaction to light is weakened.

На 5-й день после интрастромального введения клеточной взвеси:On the 5th day after the intrastromal injection of cell suspension:

Vis OS=0,7c(+)0,5Vis OS = 0.7c (+) 0.5 дd =1,0= 1,0

Status localis OS: пальпация безболезненная. Края язвенного дефекта стали менее рыхлыми и подрытыми, однако несколько истончены в зоне с 1 ч до 5 ч. Перифокально сохраняется незначительный отек стромы роговицы. Отмечено врастание сосудистых веточек в строму роговицы вокруг язвенного дефекта. Дно язвы практически полностью выстлано эпителием (тем не менее, при проведении флюоресцеиновой пробы обнаруживаются точечные участки деэпителизации). Передняя камера равномерная, влага прозрачная, зрачок округлой формы, средней ширины, реакция на свет хорошо выражена.Status localis OS: palpation is painless. The edges of the ulcerative defect became less friable and sap, however, they were slightly thinned in the zone from 1 h to 5 h. Minor edema of the corneal stroma remained perifocal. The growth of vascular branches in the stroma of the cornea around the ulcer defect was noted. The bottom of the ulcer is almost completely lined with epithelium (nevertheless, when conducting a fluorescein test, point sites of de-epithelization are detected). The anterior chamber is uniform, the moisture is transparent, the pupil is round in shape, of medium width, the reaction to light is well defined.

На 7-й день после интрастромального введения клеточной взвеси:On the 7th day after the intrastromal injection of cell suspension:

Vis OS=0,9Vis OS = 0.9

Status localis: края язвенного дефекта стали однородными, гладкими, дно полностью выстлано эпителием, что подтверждается результатами флюоресцеиновой пробы.Status localis: the edges of the ulcer became homogeneous, smooth, the bottom is completely lined with epithelium, which is confirmed by the results of the fluorescein test.

На 12-й день:On the 12th day:

Vis OS=0,9-1,0Vis OS = 0.9-1.0

Status localis: полная эпителизация язвенного дефекта. Окружающая роговица гладкая, блестящая, прозрачная. Снизу снаружи поверхностная васкуляризация. Передняя камера средней глубины, влага прозрачная, зрачок правильной формы, средней ширины, реакция на свет хорошо выражена. Пациент выписан из офтальмологической клиники СибГМУ в удовлетворительном состоянии под наблюдение окулиста по месту жительства. Общая продолжительность пребывания пациента в стационаре составила 14 дней.Status localis: complete epithelization of a peptic ulcer. The surrounding cornea is smooth, shiny, transparent. Bottom outside surface vascularization. The anterior chamber is of medium depth, the moisture is transparent, the pupil is of regular shape, medium width, the reaction to light is well defined. The patient was discharged from the ophthalmological clinic of the Siberian State Medical University in satisfactory condition under the supervision of an ophthalmologist at the place of residence. The total duration of the patient’s hospital stay was 14 days.

Современные представления о биологической роли мононуклеаров основываются на их функциональной гетерогенности, включающей фагоцитарные, регуляторные и эффекторные свойства [4]. Однако в последние годы наряду с подробно изученными функциями миграции и хемотаксиса, эндоцитоза и внутриклеточного переваривания большое внимание исследователей привлекает секреторная функция мононуклеарных фагоцитов. Учение И.И.Мечникова о макрофагальных ферментах-цитазах переросло в концепцию о монокинах-продуктах секреции моноцитов/макрофагов, которые вместе с лимфокинами получили название «цитокины». Современная трактовка мононуклеаров как секретирующих клеток основывается на их способности продуцировать и выделять более 75 различных видов молекул [4, 11]. Посредством цитокинов мононуклеары влияют на миграцию и пролиферацию гранулоцитов, эндотелиальных клеток, индуцируют хемотаксис и пролиферацию фибробластов, влияют на продукцию коллагена [8, 9, 11].Modern ideas about the biological role of mononuclear cells are based on their functional heterogeneity, including phagocytic, regulatory, and effector properties [4]. However, in recent years, along with the extensively studied functions of migration and chemotaxis, endocytosis, and intracellular digestion, the secretory function of mononuclear phagocytes has attracted great attention of researchers. The teachings of II Mechnikov on macrophage cytase enzymes developed into the concept of monokines, products of the secretion of monocytes / macrophages, which together with lymphokines are called "cytokines". The modern interpretation of mononuclear cells as secreting cells is based on their ability to produce and isolate more than 75 different types of molecules [4, 11]. Using cytokines, mononuclear cells affect the migration and proliferation of granulocytes and endothelial cells, induce chemotaxis and fibroblast proliferation, and affect the production of collagen [8, 9, 11].

Попадая в очаг воспаления, мононуклеары испытывают влияние множества локальных факторов, включающих в себя как сам индуктор воспаления (например, микроорганизм), так и эндогенные флогогены-компоненты комплемента, простагландины и т.д. В результате происходит активация мононуклеарных фагоцитов, которая сочетается с ростом микробиоцидного и цитотоксического потенциала клеток-эффекторов воспаления.Once in the focus of inflammation, mononuclear cells are influenced by many local factors, including both the inducer of inflammation (for example, a microorganism) and endogenous phlogogens — complement components, prostaglandins, etc. As a result, the activation of mononuclear phagocytes takes place, which is combined with the growth of the microbiocidal and cytotoxic potential of inflammatory effector cells.

Стремление восстановить нарушенный баланс в системе аутофибринолиза и репарации воплощено в методе лечения язвенных кератитов введением непосредственно в роговичный инфильтрат аутокрови больного (Поромонова И.Ю., Мюсин Ф.А., 2005), которая содержит в себе как антипротеазные вещества, необходимые для прекращения процесса деструкции роговичной ткани, так и кератопластические и трофические компоненты, позволяющие оптимизировать рассасывание и заживление язвенного дефекта [10].The desire to restore the disturbed balance in the system of autofibrinolysis and repair is embodied in the method of treating ulcerative keratitis by injecting the patient’s autologous blood directly into the corneal infiltrate (Poromonova I.Yu., Myusin F.A., 2005), which contains antiprotease substances necessary for terminating the process destruction of corneal tissue, as well as keratoplastic and trophic components, allowing to optimize the resorption and healing of the ulcer defect [10].

Интрастромальное введение аутологичных мононуклеаров крови при воспалительных и дистрофических заболевания роговицы позволяет создать локально высокую концентрацию клеток данной популяции в очаге экссудативно-деструктивного воспаления и направленно воздействовать на определенные стадии патологического процесса.Intrastromal administration of autologous blood mononuclear cells in inflammatory and dystrophic diseases of the cornea allows you to create a locally high concentration of cells of this population in the focus of exudative-destructive inflammation and to target specific stages of the pathological process.

Можно предположить, что благодаря действию таких провоспалительных цитокинов, как интерлейкины - 1, 6, 8, фактор некроза опухоли и интерферон происходит рекрутирование в очаг воспаления полиморфноядерных лейкоцитов с развитием респираторного взрыва, стимуляцией дегрануляции, индукцией синтеза и секреции лизосомальных ферментов, формированием аутокринного пути регуляции клеток [1, 8, 9].It can be assumed that due to the action of proinflammatory cytokines such as interleukins 1, 6, 8, tumor necrosis factor and interferon, polymorphonuclear leukocytes are recruited to the site of inflammation with the development of a respiratory explosion, stimulation of degranulation, induction of synthesis and secretion of lysosomal enzymes, and the formation of an autocrine regulation pathway cells [1, 8, 9].

Вследствие функциональной кооперации экзогенно вводимых мононуклеарных клеток и мигрирующих под их влиянием полинуклеарных фагоцитов в очаге экссудативно-деструктивного воспаления происходит ускоренное очищение от некротических масс, что подтверждается результатами клинического исследования, и переход воспалительного процесса в фазу репарации.Due to the functional cooperation of exogenously introduced mononuclear cells and polynuclear phagocytes migrating under their influence in the focus of exudative-destructive inflammation, accelerated cleansing of necrotic masses occurs, which is confirmed by the results of a clinical study, and the inflammatory process goes into the repair phase.

Необходимо отметить, что фибропластический процесс, ход которого находится под контролем множества механизмов, зарождается в недрах клеточной инфильтрации в очаге воспаления. Прежде всего фибропластический процесс зависит от структурно-функциональных параметров самих фибробластов, а также от формирующихся сложных каскадов межклеточных взаимодействий. Среди них важная роль принадлежит тандему «макрофаг-фибробласт» и триаде «лимфоцит-макрофаг-фибробласт» [8, 9, 16]. Связующей фигурой в указанных взаимодействиях является макрофаг.It should be noted that the fibroplastic process, the course of which is controlled by many mechanisms, originates in the bowels of cell infiltration in the focus of inflammation. First of all, the fibroplastic process depends on the structural and functional parameters of the fibroblasts themselves, as well as on the emerging complex cascades of intercellular interactions. An important role is played by the tandem “macrophage-fibroblast” and the triad “lymphocyte-macrophage-fibroblast” [8, 9, 16]. The connecting figure in these interactions is the macrophage.

Мононуклеары, как отмечалось выше, представляют собой источник многочисленных биорегуляторов, в том числе факторов, стимулирующих пролиферацию и другие функции фибробластов [8, 9, 16, 17]. Это обеспечивает один из центральных механизмов подключения фибробластов к репаративным процессам.Mononuclear cells, as noted above, are a source of numerous bioregulators, including factors that stimulate proliferation and other functions of fibroblasts [8, 9, 16, 17]. This provides one of the central mechanisms for connecting fibroblasts to reparative processes.

Безусловно, кроме монокинов фибробласты воспринимают продукты лимфоцитов, нейтрофилов, тромбоцитов, эпителия. Пролиферацию фибробластов запускают тромбин и ряд протеиназ [8, 9]. Однако больше данных за то, что именно макрофаги ведут главный диалог с фибробластами, трансформируя через них часть собственного патогенетического потенциала, а также эффекторные возможности ряда других клеток и гуморальных факторов [16]. Другими словами, активированные макрофаги рассматриваются как важнейшее связующее звено между фибробластами и повреждением, фиброгенезом и гомеостазом.Of course, in addition to monokines, fibroblasts perceive the products of lymphocytes, neutrophils, platelets, and epithelium. Thrombin and a number of proteinases trigger proliferation of fibroblasts [8, 9]. However, there is more evidence that it is macrophages that lead the main dialogue with fibroblasts, transforming through them part of their own pathogenetic potential, as well as the effector capabilities of a number of other cells and humoral factors [16]. In other words, activated macrophages are considered as the most important link between fibroblasts and damage, fibrogenesis and homeostasis.

Морфологически макрофагально-фибробластические взаимодействия ведут к миграции и ускоренной пролиферации фибробластов, их дифференцировке и продукции компонентов экстрацеллюлярного матрикса [9, 16], что обеспечивает закрытие язвенного дефекта соединительной тканью и формирование в исходе заболевания грубого помутнения роговицы.Morphologically macrophage-fibroblastic interactions lead to migration and accelerated proliferation of fibroblasts, their differentiation and production of extracellular matrix components [9, 16], which ensures the closure of the ulcerous defect by connective tissue and the formation of a rough corneal opacity in the outcome of the disease.

Однако в зависимости от меняющихся по ходу воспалительного процесса условий мононуклеары за счет коллагенолитических ферментов и других гидролаз могут также участвовать в резорбции межуточного вещества, способны секретировать факторы, стимулирующие продукцию коллагеназы в фибробластах, и факторы, усиливающие фагоцитоз фибрилл фиброкластами [16].However, depending on the changing conditions of the inflammatory process, mononuclear cells, due to collagenolytic enzymes and other hydrolases, can also participate in the resorption of interstitial substances, are able to secrete factors that stimulate collagenase production in fibroblasts, and factors that enhance fibril phagocytosis by fibroclasts [16].

В связи с этим можно предположить, что дополнительное экзогенное поступление в патологический очаг мононуклеарных клеток способствует включению механизмов подавления избыточного разрастания соединительной ткани, обеспечивая сопряжение воспаления и регенерации. Под влиянием гуморальных стимулов и факторов микроокружения большая часть фибробластов дифференцируется при этом в малоактивные фиброциты. Одновременно усиливается и феномен фиброклазии, что обеспечивает ремоделирование и инволюцию вновь образованной соединительной ткани. Клинически это проявляется формированием меньшего по площади и интенсивности помутнения роговицы.In this regard, it can be assumed that additional exogenous intake of mononuclear cells into the pathological focus contributes to the inclusion of mechanisms to suppress the excessive proliferation of connective tissue, providing a combination of inflammation and regeneration. Under the influence of humoral stimuli and microenvironment factors, most of the fibroblasts differentiate into low-activity fibrocytes. At the same time, the phenomenon of fibroclasia is also enhanced, which ensures remodeling and involution of newly formed connective tissue. Clinically, this is manifested by the formation of a smaller area and intensity of corneal opacity.

Таким образом, результаты клинических исследований свидетельствуют о высокой эффективности применения предлагаемого способа в комплексном лечении глубоких стромальных кератитов.Thus, the results of clinical studies indicate the high efficiency of the proposed method in the complex treatment of deep stromal keratitis.

Источники информацииInformation sources

1. Васильев Г.И., Иванов И.А., Тюкавкина С.Ю. Кооперативное воздействие моно- и полинуклеарных фагоцитов, опосредованное моно- и нейтрофилокинами // Иммунология. - 2000. - №5. - C.11-17.1. Vasiliev G.I., Ivanov I.A., Tyukavkina S.Yu. The cooperative effect of mono- and polynuclear phagocytes mediated by mono- and neutrophilokines // Immunology. - 2000. - No. 5. - C.11-17.

2. Тольдберг Е.Д., Дыгай A.M., Шахов В.П. Методы культуры ткани в гематологии. - Томск: Изд-во ТГУ, 1992. - 264 с.2. Toldberg E.D., Dygay A.M., Shakhov V.P. Methods of tissue culture in hematology. - Tomsk: Publishing house of TSU, 1992. - 264 p.

3. Даутова З.А. Разработка и применение новых препаратов ранозаживляющего и антибактериального действия в офтальмологии: Автореф. дис. д-ра мед. наук. - Уфа. 2000. - 42 с.3. Dautova Z.A. Development and application of new wound healing and antibacterial drugs in ophthalmology: Abstract. dis. Dr. med. sciences. - Ufa. 2000 .-- 42 p.

4. Земсков В.М., Николаева Е.Н., Родионов С.В. Гетерогенность мононуклеарных фагоцитов // Успехи совр. биологии. - 1993. - T.113, №3. - С.336-349.4. Zemskov V.M., Nikolaev E.N., Rodionov S.V. Heterogeneity of mononuclear phagocytes // Successes sovr. biology. - 1993. - T.113, No. 3. - S.336-349.

5. Ковальчук Л.В., Гановская Л.В. Иммуноцитокины и локальная иммуннокорекция // Иммунология. - 1995. - №1. - С.4-7.5. Kovalchuk L.V., Ganovskaya L.V. Immunocytokines and local immunocorrection // Immunology. - 1995. - No. 1. - S. 4-7.

6. Ковальчук Л.В., Ганковская Л.В., Крайнова Т.А., Егорова Э.В. Аутолимфокинотерапия в стимуляции репаративных процессов тканей глаза // Вестник офтальмологии - 1993. - Т.109, №3. - С.8-9.6. Kovalchuk L.V., Gankovskaya L.V., Kraynova T.A., Egorova E.V. Autolymphokine therapy in stimulation of reparative processes of eye tissues // Bulletin of Ophthalmology - 1993. - T. 109, No. 3. - S.8-9.

7. Майчук Ю.Ф. Принципы всемирной инициативы ВОЗ по ликвидации устранимой слепоты // Окулист. - 2003. - С.7-9.7. Maychuk Yu.F. Principles of the WHO global initiative to eliminate disposable blindness // Optometrist. - 2003. - S.7-9.

8. Маянский А.Н., Пикуза О.И. Клинические аспекты фагоцитоза. - Казань: Магариф, 1993. - 192 с.8. Mayansky A.N., Pikuza O.I. Clinical aspects of phagocytosis. - Kazan: Magarif, 1993 .-- 192 p.

9. Маянский Д.Н. Хроническое воспаление. - Москва: Медицина, 1991. - 272 с.9. Mayansky D.N. Chronic inflammation - Moscow: Medicine, 1991 .-- 272 p.

10. Поромова И.Ю., Мисюн Ф.А. // Современные направления в лечении язвенных кератоувеитов // Офтальмохирургия и терапия. - 2005. - Т.5, Вып.1. - С.8-13.10. Poromova I.Yu., Misyun F.A. // Modern trends in the treatment of ulcerative keratouveitis // Ophthalmic surgery and therapy. - 2005. - V.5, Issue 1. - S.8-13.

11. Фрейдлин И.С. Дефекты цитокиновой сети и принципы их коррекции // Иммунология. - 1998. - №6. - С.23-25.11. Freidlin I.S. Defects of the cytokine network and principles of their correction // Immunology. - 1998. - No. 6. - S.23-25.

12. Хорошилова-Маслова И.П., Ковальчук Л.В., Ганковская Л.В., Гундорова Р.А. Механизм регуляции заживления проникающих ранений роговицы с помощью естественного комплекса цитокинов // Вестник офтальмологии - 1995. - Т.3, №4. - С.14-19.12. Khoroshilova-Maslova I.P., Kovalchuk L.V., Gankovskaya L.V., Gundorova R.A. The mechanism of regulation of the healing of penetrating wounds of the cornea using a natural complex of cytokines // Bulletin of Ophthalmology - 1995. - T.3, No. 4. - S.14-19.

13. Шаимова В.А. Особенности гнойных язв роговицы, вызванной ношением контактных линз // Материалы II Евро-Азиатской конференции по офтальмохирургии. - Екатеринбург, 2001. - С.243-244.13. Shaimova V.A. Features of purulent corneal ulcers caused by wearing contact lenses // Materials of the II Euro-Asian Conference on Ophthalmic Surgery. - Yekaterinburg, 2001. - S.243-244.

14. Шаимова В.А. Гнойные язвы роговицы // Тез. докл. VII Съезда офтальмологов России. - Москва, 2000. - С.52-53.14. Shaimova V.A. Purulent corneal ulcers // Thesis. doc. VII Congress of Ophthalmologists of Russia. - Moscow, 2000. - P. 52-53.

15. Шаимова В.А. Клиника гнойной язвы роговицы // Актуальные проблемы клинической офтальмологии. - Челябинск, 1999. - С.104-106.15. Shaimova V.A. Clinic of purulent corneal ulcer // Actual problems of clinical ophthalmology. - Chelyabinsk, 1999 .-- S.104-106.

16. Шехтер А.Б., Серов В.В. Воспаление, адаптивная регенерация и дисрегенерация (анализ межклеточных взаимодействий) // Арх. патологии. - 1991. - Т.53, №7. - С.7-14.16. Shekhter A.B., Serov V.V. Inflammation, adaptive regeneration and dysregeneration (analysis of intercellular interactions) // Arch. pathology. - 1991. - T.53, No. 7. - S.7-14.

17. Шубич М.Г., Авдеева М.Г. Медиаторные аспекты воспалительного процесса // Арх. патологии. - 1997. - Т.59, №2. - С.3-8.17. Shubich M.G., Avdeeva M.G. Mediator aspects of the inflammatory process // Arch. pathology. - 1997. - T. 59, No. 2. - C.3-8.

18. Najjar D.M., Aktan S.G., Rapuano C.J. Contact lens-related corneal ulcers in complicant patients // Am. J. Ophtalm. - 2004. - Vol.137, №1. - P.170-172.18. Najjar D.M., Aktan S.G., Rapuano C.J. Contact lens-related corneal ulcers in complicant patients // Am. J. Ophtalm. - 2004. - Vol.137, No. 1. - P.170-172.

Таблица 1Table 1 Динамика течения глубоких стромальных кератитов в зависимости от способов леченияThe dynamics of the course of deep stromal keratitis depending on the treatment methods Клинический признакClinical sign Группа больныхGroup of patients основнаяthe main сравненияcomparisons Исчезновение отека роговицыThe disappearance of corneal edema началоStart 3,5±0,173.5 ± 0.17 5,2±0,165.2 ± 0.16 завершениеcompletion 6,2±0,176.2 ± 0.17 8,5±0,168.5 ± 0.16 Эпителизация язвенного дефектаUlcerative epithelization началоStart 3,7±0,173.7 ± 0.17 5,6±0,165.6 ± 0.16 завершениеcompletion 7,2±0,177.2 ± 0.17 11,0±0,1611.0 ± 0.16 Рассасывание инфильтрацииResorption of infiltration началоStart 2,8±0,172.8 ± 0.17 5,1±0,175.1 ± 0.17 завершениеcompletion 5,1±0,155.1 ± 0.15 10,2±0,1610.2 ± 0.16 Купирование воспаленияRelief of inflammation 7,9±0,177.9 ± 0.17 14,5±0,1614.5 ± 0.16

Claims (1)

Способ лечения глубоких стромальных кератитов путем введения аутологичных мононуклеаров (AM) крови на фоне традиционной фармакотерапии, включающей специфические противовирусные и/или антибактериальные препараты, нестероидные противовоспалительные и антиаллергические средства, а также кератопротекторы, отличающийся тем, что после осуществления местной анестезии клеточную взвесь AM в объеме 0,5 мл вводят в толщу стромы роговицы больного глаза вокруг патологического очага непосредственно после ее приготовления, для чего AM выделяют из гепаринизированной крови пациента методом фракционирования в градиенте плотности на разделяющем растворе фиколл-верографин при соотношении объемов градиента и разделяемой суспензии 1:3-1:4, при 2000 об/мин, при комнатной температуре в течение 15 минут, добавляют 1,0 мл изотонического раствора хлорида натрия и полученную суспензию вновь центрифугируют в течение 7 минут при 1500 об/мин, далее полученную клеточную взвесь размещают в стерильном флаконе с добавлением 3,0 мл изотонического раствора хлорида натрия, причем в процессе лечения процедуру повторяют 1-2 раза с интервалом 4-6 дней в зависимости от степени тяжести заболевания и динамики клинической картины. A method of treating deep stromal keratitis by administering autologous blood mononuclear cells (AM) against the background of traditional pharmacotherapy, including specific antiviral and / or antibacterial drugs, non-steroidal anti-inflammatory and anti-allergic drugs, and keratoprotectors, characterized in that after local anesthesia is performed, AM cell suspension in volume 0.5 ml is injected into the stroma of the cornea of the diseased eye around the pathological focus immediately after its preparation, for which AM is isolated from the patient’s parinized blood by density gradient fractionation on a ficoll-verographin separation solution with a ratio of the gradient volumes and the divided suspension of 1: 3-1: 4, at 2000 rpm, at room temperature for 15 minutes, add 1.0 ml of isotonic solution sodium chloride and the resulting suspension are again centrifuged for 7 minutes at 1500 rpm, then the resulting cell suspension is placed in a sterile bottle with the addition of 3.0 ml of isotonic sodium chloride solution, and during the treatment process they bite 1-2 times with an interval of 4-6 days, depending on the severity of the disease and the dynamics of the clinical picture.
RU2010148129/14A 2010-11-25 2010-11-25 Method of treating deep stromal keratites RU2440801C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2010148129/14A RU2440801C1 (en) 2010-11-25 2010-11-25 Method of treating deep stromal keratites

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2010148129/14A RU2440801C1 (en) 2010-11-25 2010-11-25 Method of treating deep stromal keratites

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2440801C1 true RU2440801C1 (en) 2012-01-27

Family

ID=45786381

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2010148129/14A RU2440801C1 (en) 2010-11-25 2010-11-25 Method of treating deep stromal keratites

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2440801C1 (en)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2601317C1 (en) * 2015-07-30 2016-11-10 государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Сибирский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ГБОУ ВПО СибГМУ Минздрава России) Method of treating endothelial epithelial corneal dystrophy
RU2674237C1 (en) * 2017-07-31 2018-12-05 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Сибирский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО СибГМУ Минздрава России) Method of surgical treatment of endothelial-epithelial dystrophy of cornea

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ЕЛЕГЕЧЕВА О.Н. Применение аутологичных мононуклеаров крови в комплексном лечении гнойных язв роговицы (экспериментально-клиническое исследование). - Красноярск, 2009, с.1-15. Найдено в Интернет 12.08.2011, http://www.dissercat.com/content/primenenie-autologichnykh-mononuklearov-krovi-v-kompleksnom-lechenii-gnoinykh-yazv-rogovitsy. КАСПАРОВА Е.А. К вопросу о механизмах действия локальной экспресс-аутоцитокинотерапии (ЛЭАЦКТ) на основе полудана (комплекса поли А. поли У) при герпетических кератоиридоциклитах. Актуальные вопросы офтальмологии, 2000, ч.2, с.28-29. ДЖАМБИНОВА Н.С. Применение цитокинотерапии в комплексном лечении вирусных и травматических кератитов у детей. Дисс. на соиск. учен. степ. канд. мед. наук, 2010, с.1-13. DAI Е, et al. Bilateral marginal keratitis associated with engraftment syndrome after hematopoietic stem cell transplantation. Cornea. 2007 Jul; 26(6):756-8. *
Офтальмология. Национальное руководство под ред. С.Э.Аветисова и др. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2008, с.448-449. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2601317C1 (en) * 2015-07-30 2016-11-10 государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Сибирский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ГБОУ ВПО СибГМУ Минздрава России) Method of treating endothelial epithelial corneal dystrophy
RU2674237C1 (en) * 2017-07-31 2018-12-05 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Сибирский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО СибГМУ Минздрава России) Method of surgical treatment of endothelial-epithelial dystrophy of cornea

Similar Documents

Publication Publication Date Title
FI79554C (en) FOERFARANDE FOER FRAMSTAELLNING AV HYALURONSYRAFRAKTIONER MED FARMACEUTISK AKTIVITET.
JP2611159B2 (en) Hyaluronic acid pharmacologically active fraction, method for producing the same and pharmaceutical composition
US10675294B2 (en) Pharmaceutical composition containing 8 OXO-deoxyguanosine or pharmaceutically acceptable salt thereof as active ingredient for treating corneal disease
RU2601317C1 (en) Method of treating endothelial epithelial corneal dystrophy
Koffler Autologous serum therapy of the ocular surface with novel delivery by platelet concentrate gel
RU2440801C1 (en) Method of treating deep stromal keratites
RU2324488C1 (en) Method of treatment of corneal ulcers
RU2357743C1 (en) Medication, method of obtaining medication, and method of treatment for cornea edema and other early bullous keratopathy manifestations
CN109593117B (en) Polypeptide CKA18N for inhibiting angiogenesis and application thereof
RU2714193C1 (en) Method of treating inflammatory or dystrophic eye diseases
CN105214071A (en) A kind of size variance eye drop and preparation method thereof
RU2699206C1 (en) Method of treating corneal defects via an autologous thrombofibrin clot
RU2393824C1 (en) Method of treating macular oedemas of various geneses
RU2730975C1 (en) Method of treating endothelial-epithelial dystrophy of cornea
RU2644701C1 (en) Method of conservative treatment of adapted penetrating wounds of the cornea
RU2434607C1 (en) Method of treating infectious inflammatory diseases of cornea
RU2780273C1 (en) Method for surgical treatment of keratectasia of various origins
RU2822412C1 (en) Method for preventing keratotransplant lysis in urgent surgery
CN112569338B (en) Application of TDFA in preparation of medicine for preventing and/or treating ocular surface inflammatory diseases
Gadallah et al. Compare the Efficacy of Corneal Healing Between AS and E-PRP Treatment in Dogs
RU2258510C1 (en) Method for complex therapy of corneal ulcers
Holowaychuk et al. Miscellaneous Blood Product Usage
CN109776656B (en) Polypeptide TIN7N for inhibiting angiogenesis and application thereof
RU2674237C1 (en) Method of surgical treatment of endothelial-epithelial dystrophy of cornea
RU2421160C1 (en) Method of treating purulent wounds of soft tissues