RU2432395C2 - Способ получения сэндвичной культуры изолированных клеток печени - Google Patents

Способ получения сэндвичной культуры изолированных клеток печени Download PDF

Info

Publication number
RU2432395C2
RU2432395C2 RU2008125854/10A RU2008125854A RU2432395C2 RU 2432395 C2 RU2432395 C2 RU 2432395C2 RU 2008125854/10 A RU2008125854/10 A RU 2008125854/10A RU 2008125854 A RU2008125854 A RU 2008125854A RU 2432395 C2 RU2432395 C2 RU 2432395C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
matrix
cells
cell
coated
hepatocytes
Prior art date
Application number
RU2008125854/10A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2008125854A (ru
Inventor
Любомир АРСЕНИЕВ (DE)
Любомир АРСЕНИЕВ
Крассимира АЛЕКСАНДРОВА (DE)
Крассимира АЛЕКСАНДРОВА
Марк БАРТХОЛЬД (DE)
Марк БАРТХОЛЬД
Забине КАФЕРТ-КАСТИНГ (DE)
Забине КАФЕРТ-КАСТИНГ
Бритта ЛАУБЕ (DE)
Бритта ЛАУБЕ
Original Assignee
Цитонет Гмбх Унд Ко. Кг
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Цитонет Гмбх Унд Ко. Кг filed Critical Цитонет Гмбх Унд Ко. Кг
Publication of RU2008125854A publication Critical patent/RU2008125854A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2432395C2 publication Critical patent/RU2432395C2/ru

Links

Images

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602—Vertebrate cells
    • C12N5/067—Hepatocytes
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N1/00—Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
    • A01N1/02—Preservation of living parts
    • A01N1/0278—Physical preservation processes
    • A01N1/0284—Temperature processes, i.e. using a designated change in temperature over time
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N1/00—Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
    • A01N1/02—Preservation of living parts
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N1/00—Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
    • A01N1/02—Preservation of living parts
    • A01N1/0205—Chemical aspects
    • A01N1/0231—Chemically defined matrices, e.g. alginate gels, for immobilising, holding or storing cells, tissue or organs for preservation purposes; Chemically altering or fixing cells, tissue or organs, e.g. by cross-linking, for preservation purposes
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602—Vertebrate cells
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2533/00—Supports or coatings for cell culture, characterised by material
    • C12N2533/50—Proteins
    • C12N2533/54—Collagen; Gelatin

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Dentistry (AREA)
  • Environmental Sciences (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)

Abstract

Изобретение относится к области биотехнологии, конкретно к способу получения сэндвичной культуры клеток печени, и может быть использовано в медицине. Способ предусматривает стадии: (а) подготовки матрицы, (b) подготовки изолированных клеток печени, (с) высевания клеток печени на матрицу с плотностью от 2 до 4×103 мм-2, (d) оставления в покое покрытой клетками матрицы в течение 10-180 минут, так что клетки могут прилипать к матрице, (е) смывания не прилипших клеток с покрытой клетками матрицы, (f) оставления в покое покрытой клетками матрицы в течение максимально 180 минут, и (g) замораживания покрытой клетками матрицы в среде замораживания, (h) хранения замороженной, покрытой клетками матрицы, (i) размораживания замороженной, покрытой клетками матрицы, (j) смывания не прилипших клеток с покрытой клетками матрицы, (k) покрывания размороженной, покрытой клетками матрицы слоем второй матрицы, и (1) рекультивирования заделанных между матрицами клеток. Изобретение позволяет повысить процент жизнеспособных гепатоцитов в сэндвичных культурах. 11 з.п. ф-лы, 4 ил., 1 табл.

Description

Область техники, к которой относится изобретение
Данное изобретение относится к технической области криогенной консервации и, в частности, к способам подготовки клеток печени для криогенной консервации, способам криогенной консервации изолированных клеток печени и к способам получения сэндвичной культуры криогенно консервированных изолированных клеток печени.
Уровень техники
Изолированные из тканевого соединения клетки печени, а именно гепатоциты, используются прежде всего в виде культур первичных клеток для тестирования физиологического действия возможных лекарственных средств. Прежде всего свежепрепарированные первичные гепатоциты человека представляют «золотой стандарт» для in vitro определения в тестируемых рядах в пробирках возможных действующих веществ или для исследования метаболизма биологически активных веществ или индукции ферментов. К сожалению, свежеизолированные гепатоциты человека имеются в распоряжении не регулярно и не в любое время. Поэтому существует потребность в способах, с помощью которых изолированные гепатоциты можно хранить определенное время. При этом физиологическая функция клеток, т.е. прежде всего их метаболическая, соответственно, ферментативная способность, должны по возможности полностью сохраняться.
Как известно, гепатоциты хранятся в криогенно консервированном виде. Как правило, гепатоциты подвергаются криогенной консервации в суспензии. Суспензия содержит наряду с гепатоцитами еще среду замораживания, которая должна предотвращать повреждение клеток за счет замораживания и размораживания. Для хранения суспензию замораживают в большинстве случаев до температур ниже -80°С. Для применения после хранения замороженную суспензию клеток размораживают, и клетки переносят на пластинки для культуры или в сосуды для культуры. Для рекультивирования образованных клеток сосуды для культуры, как правило, покрывают матричным материалом, к которому могут прилипать клетки. Успешное прилипание является существенным для рекультивирования и последующих исследований. Однако в большинстве случаев можно получать и рекультивировать лишь небольшую долю первоначально замороженных в живом состоянии клеток. Недостаток этого способа состоит прежде всего в том, что нельзя прогнозировать, будут ли и в каком количестве размороженные клетки из суспензии прилипать к пластинке для культуры. Доля прилипающих клеток в порции зависит от отдельной порции. Регулярно прилипает в достаточной степени к пластинке для культуры лишь небольшое число размороженных после криогенной консервации клеток порции.
Другой известный способ криогенной консервации состоит в том, что свежеизолированные клетки вносят в сосуды для культуры для последующего замораживания внесенных клеток вместе с сосудами для культуры. В данном случае сосуды для культуры также покрывают перед внесением клеток матрицей, к которой могут прилипать клетки. Как известно, используют предпочтительно коллагеновые гели. В одном известном способе гепатоциты высевают на покрытые коллагеном типа I пластинки и оставляют на коллагеновой матрице в течение примерно 4 часов для прилипания. Возникающую монослойную культуру клеток затем культивируют в течение примерно 20 часов. Затем смывают не прилипшие клетки. Еще после 6 часов культуру покрывают средой замораживания, охлаждают до -70°С и хранят (Watts und Grant, 1998; Human & Experimental Toxicology 15:30-37). Для последующего применения монослойные культуры размораживают и рекультивируют. Однако размороженные культуры имеют большую долю не прилипших и не живых клеток, а также обломков клеток. Хотя обычно большие части матрицы покрываются клетками, однако конфлюэнтный, сплошной клеточный комплекс не возникает.
В другом известном способе гепатоциты замораживают в сэндвичной конфигурации, т.е. в системе с двойным гелем. Для этого сначала высевают суспензию гепатоцитов на покрытые коллагеновым гелем пластинки для культуры. После 24 часов культивирования клеток наливают второй слой коллагенового геля на высеянные клетки. Затем полученную сэндвичную культуру замораживают в среде замораживания до температуры -70°С и хранят (Koebe et al., 1990; Cryobiology 27:576-584).
За счет иммобилизации клеток печени на матрице или между двумя матрицами перед замораживанием, клетки механически стабилизируются, и тем самым повышается степень выживания. За счет того, что клетки могут прилипать в свежеизолированном, высоковитальном состоянии, значительно повышается коэффициент прилипания по сравнению с прилипанием замороженных в суспензии и размороженных после криогенной консервации клеток. Несмотря на это в данном случае после размораживания также образуются большие доли не прилипших, соответственно, не живых клеток. Идеальное состояние сплошной культуры живых гепатоцитов не достигается. Кроме того, замороженные в суспензии клетки, как правило, в течение нескольких часов после размораживания теряют свою метаболическую способность. В этом случае они непригодны для большого числа проводимых в пробирках тестов.
Кроме того, изолированные из органов человека клетки являются в большинстве случаев менее устойчивыми, чем извлеченные из животных моделей клетки. Это объясняется, прежде всего, тем, что человеческие клетки из донорских органов можно получать при менее благоприятных условиях, чем клетки из животных, которые в большинстве случаев специально выращиваются для этого, а затем усыпляются (например, крысы, мыши или свиньи). Поэтому человеческие клетки требуют значительно более щадящих условий культивирования. До настоящего времени не известен ни один способ, с помощью которого можно успешно подвергать криогенной консервации гепатоциты человека, для того чтобы затем можно было в течение длительного времени проводить изучения в пробирке.
Поэтому существует потребность в улучшенных способах криогенной консервации клеток печени, которые обеспечивают возможность щадящей криогенной консервации, то есть, прежде всего, щадящего размораживания с высоким коэффициентом выживания. Улучшенный способ криогенной консервации должен быть пригодным, прежде всего, для успешной криогенной консервации изолированных гепатоцитов человека. При этом должна обеспечиваться возможность рекультивирования большой доли размороженных клеток, по возможности в виде конфлюэнтного единичного слоя (сплошного монослоя) на матрице для культивирования. Кроме того, способ должен быть пригодным для получения улучшенных сэндвичных культур изолированных клеток печени, которые содержат большую долю живых клеток. Кроме того, необходимо обеспечить, чтобы размороженные после криогенной консервации, рекультивированные клетки по возможности сохраняли в течение длительного времени свою метаболическую, соответственно, ферментативную способность, так чтобы их можно было использовать для большого числа тестирований в пробирке.
Сущность изобретения
Положенный в основу данного изобретения технический результат состоит в создании улучшенного способа криогенной консервации изолированных клеток печени, в частности клеток печени человека, так что криогенно консервированные клетки печени можно затем рекультивировать в виде улучшенной сэндвичной культуры.
Положенная в основу изобретения техническая задача решена с помощью способа, согласно пункту 1 формулы изобретения, в частности способа препарирования клеток печени для криогенной консервации, который содержит следующие стадии:
На стадии (а) подготавливают матрицу, в частности коллагеновую матрицу, предпочтительно коллагеновый гель. Матрица предпочтительно находится в сосуде для культуры, например пластинке с 6 колодцами. Сосуд для культуры предпочтительно покрывают матричным материалом.
На стадии (b) подготавливают изолированные клетки печени, в частности изолируют из ткани.
На следующей стадии (с) изолированные клетки печени высевают на матрицу. При этом плотность клеток печени на матрице составляет от 2 до 4×103 клеток на квадратный миллиметр поверхности матрицы. Предпочтительная плотность клеток составляет от 2,6 до 3,2×103 мм-2. То есть, при сосуде для культуры с основной площадью 9,6 см2, например, площадью дна одного колодца в пластине с 6 колодцами, число высеянных клеток составляет для каждого колодца от 2,5 до 3×106.
На следующей, предпочтительно непосредственно примыкающей стадии (d) клетки оставляют в покое на матрице (фаза покоя, фаза прилипания). Для этого покрытую клетками матрицу оставляют в покое в течение 10-180 минут, предпочтительно 30-90 минут, особенно предпочтительно в течение 1 часа, так что высеянные на матрицу клетки могут прилипать к матрице. Выдерживание в покое осуществляют предпочтительно в шкафу для культуры (инкубаторе), в частности, в стандартных условиях при температуре 37°С, содержании СО2 5% и относительной влажности 95%. Успешное прилипание можно дополнительно контролировать с помощью микроскопа.
После выдерживания в покое на стадии (d) на стадии (е) не прилипшие к матрице клетки смывают, в частности, осторожно с покрытой клетками матрицы (стадия промывки). Смывание происходит предпочтительно за счет того, что на покрытую клетками матрицу наносят слой культуральной среды, а затем откачивают жидкий остаток из культуральной среды и не прилипших клеток. Эту стадию предпочтительно повторяют, по меньшей мере, один раз.
В следующей стадии (f) снова оставляют в покое промытую, покрытую клетками матрицу (вторая фаза покоя). Выдерживание в покое происходит в течение максимально 180 минут, в частности 30-180 минут, особенно предпочтительно в течение около 1 часа. Выдерживание в покое осуществляют предпочтительно в шкафу для культуры, в частности, в стандартных условиях при температуре 37°С, содержании СО2 5% и относительной влажности 95%.
После второй фазы покоя покрытую клетками матрицу замораживают на стадии (g) в среде замораживания (стадия замораживания). Перед замораживанием и после второй фазы покоя покрытую клетками матрицу предпочтительно снова промывают, прежде всего, для удаления оставшихся не прилипших клеток (стадия промывания). Эта стадия предпочтительно соответствует стадии (е).
Таким образом, способ, согласно изобретению, предусматривает высевание изолированных клеток печени с определенной плотностью на матрицу и замораживания в среде замораживания клеток после определенной последовательности фаз покоя и смывания не прилипших клеток. Таким образом, замораживают покрытую клетками матрицу, в частности коллагеновую матрицу, на которой прилипли клетки и находятся, в частности, в одном слое. За счет мер, согласно изобретению, неожиданным образом получается культура невридимых клеток, которую можно особенно хорошо замораживать, то есть криогенно консервировать. При этом обнаруживается, что препарированные, согласно изобретению, и криогенно консервированные культуры после размораживания являются особенно живучими (витальными) и имеют большое число прилипших на матрице клеток. При этом размороженные клетки можно предпочтительно рекультивировать в сплошном монослое.
Способ согласно изобретению является неожиданным образом особенно щадящим для клеток и поэтому пригоден также для менее прочных клеток, таких как изолированные из органов человека гепатоциты. Прежде всего, проявляется, что препарированные согласно изобретению и подвергнутые криогенной консервации клетки, если они после размораживания покрываются слоем второй матрицы, сохраняют в течение нескольких дней, в частности более 3 дней, свою полную метаболическую активность, соответственно метаболическую способность.
В одном предпочтительном варианте выполнения способа согласно изобретению замораживание происходит на стадии (g) со средой замораживания, которую добавляют в количестве около 0,5 мл на 1 мм2 основной поверхности сосуда для культуры. Для этого покрытую клетками матрицу покрывают слоем среды замораживания. Среда замораживания предпочтительно содержит 10% фетальной телячьей сыворотки (FCS), а также 10% диметилсульфоксида (DMSO).
В особенно предпочтительном варианте выполнения на стадии (g) после добавления среды замораживания выполняют контролируемое охлаждение, т.е. замораживание, предпочтительно до температуры -80°С или ниже. Для охлаждения предпочтительно используют скорости охлаждения от -0,5 до -20°С в минуту. При этом в одном варианте выполнения компенсируют фазовый переход; это осуществляется предпочтительно за счет кратковременного нагревания со скоростью нагревания предпочтительно от +1 до +3°С в минуту.
После препарирования согласно изобретению и замораживания изолированных клеток печени на матрице покрытую клетками матрицу хранят в замороженном состоянии в рамках криогенной консервации. При хранении температура предпочтительно составляет -80°С или ниже, особенно предпочтительно -150°С или ниже. Хранение осуществляется целесообразно в холодильном шкафу или в паровой фазе жидкого воздуха, соответственно жидкого азота. Естественно, для температурного хранения клеток пригодны также все другие известные способы. Специалист может выбирать способ хранения в соответствии с областью применения и в соответствии с целесообразностью.
Данное изобретение относится также к способу криогенной консервации изолированных клеток печени, который содержит указанные выше стадии (а)-(g), при этом в дополнительной стадии (h) замороженную, покрытую клетками матрицу хранят в течение неопределенного времени, которые выбирают в зависимости от области и цели применения.
В следующей дополнительной стадии (i) в зависимости от области и цели применения предпочтительно непосредственно перед применением или в другой подходящий момент времени снова размораживают замороженную, покрытую клетками матрицу. Это происходит предпочтительно посредством нанесения на замороженную, покрытую клетками матрицу слоя теплой культуральной среды. Замороженная, покрытая клетками матрица предпочтительно находится в сосуде для культуры, например пластинке с 6 колодцами. Сосуд для культуры предпочтительно извлекают из холодильного шкафа, соответственно из бака с жидким азотом, и, в частности, непосредственно после этого инкубируют в течение примерно 5 минут в холодильнике в стандартных условиях (37°С, 5% СО2, относительной влажности 95%). Затем на покрытую клетками матрицу предпочтительно из пипетки подают среду размораживания (среду 1), предпочтительно медленно и по каплям. На площадь около 9,6 см2 (пластинка с 6 колодцами) подают примерно 1 мл среды 1. Температура среды предпочтительно составляет около 37°С. Процесс повторяют для каждого сосуда с клеточной культурой. Обычно используют максимально три пластинки с 6 колодцами, так что максимально в 18 колодцах покрытую клетками матрицу покрывают слоем теплой среды. Затем предпочтительно каждый сосуд с клеточной культурой, соответственно колодец, покрывают слоем одинакового количества среды 1 (1 мл на 9,6 см2) аналогичным образом, предпочтительно медленно и по каплям. В одном предпочтительном варианте выполнения среда 1 является содержащей сыворотку средой размораживания, которая содержит предпочтительно 10% фетальной телячьей сыворотки (FCS).
В дополнительной стадии (j) прежде всего не прилипшие клетки или отставшие, не живые клетки смывают с покрытой клетками матрицы, так что получают свободную от не прилипших клеток матрицу. Для этого сначала по возможности полностью откачивают полученный за счет добавления на стадии (i) среды 1 остаток над покрытой клетками матрицей. Остаток содержит по существу размороженные, не живые и не прилипшие клетки. В особенно предпочтительном варианте выполнения после этого на откачанную, покрытую клетками матрицу подают другую среду, т.е. среду 2, предпочтительно по каплям. Среда 2 имеет предпочтительно температуру 37°С. При добавлении среды 2 предпочтительно выбирают указанный в стадии (i) двухступенчатый процесс; сначала распределяют во все соответствующие сосуды для культуры первую половину среды, а затем соответственно вторую половину. Добавляемые количества среды 2 соответствуют количествам среды 1 в стадии (i). Среда 2 предпочтительно имеет отличающийся от среды размораживания (среды 1) состав. Среда 2 предпочтительно содержит сыворотку и предпочтительно содержит 10% CFS.
В особенно предпочтительном варианте выполнения покрытые слоем среды 2 покрытые клетками матрицы после этого инкубируют в течение около 30 минут в шкафу для культуры при стандартных условиях (фаза покоя, инкубация).
Для удаления не прилипших и не живых клеток после этого по возможности полностью откачивают остаток над покрытой клетками матрицей из сосуда для культуры. За счет этого получают по существу свободную от не прилипших и не живых клеток, покрытую клетками матрицу.
В дополнительной стадии (k) размороженную, обмытую, покрытую клетками матрицу покрывают слоем второй матрицы, предпочтительно коллагеновой матрицы, особенно предпочтительно коллагеновым гелем, соответственно заливают слоем геля. Предпочтительно залитый гель предпочтительно затвердевает в течение от нескольких минут до 1 часа. В предпочтительном варианте выполнения состав первой, нижней матрицы и нанесенной после размораживания второй, верхней матрицы, по существу, одинаков, предпочтительно идентичен. Вторую, верхнюю матрицу предпочтительно наливают на прилипший на нижнюю матрицу монослой прилипших клеток печени. Таким образом, согласно изобретению получают сэндвичную культуру, в которой изолированные клетки печени заделаны между двумя матрицами, в частности двумя коллагеновыми матрицами.
В заключительной стадии (l) заделанные между матрицами клетки рекультивируют и в зависимости от области и цели применения тотчас или после целесообразно выбранного времени культивирования применяют по назначению, т.е. предпочтительно для тестирования в пробирках.
Препарированные согласно изобретению и подвергнутые криогенной консервации, размороженные и рекультивированные изолированные клетки печени имеют особенно высокий коэффициент живучести. Они проявляют особенно долго после размораживания свою метаболическую способность. С помощью способа согласно изобретению можно предпочтительно подвергать криогенной консервации и успешно размораживать прежде всего изолированные из органов человека менее стойкие гепатоциты, так что их можно затем в течение длительного времени применять в соответствующих тестах в пробирках. Неожиданным образом получена клеточная культура, в которой клетки можно рекультивировать, по существу, в виде конфлюэнтного монослоя и в которой доля не живых, соответственно не прилипших клеток является очень небольшой.
Изобретение относится также к способу получения сэндвичной культуры криогенно консервированных изолированных клеток печени, при этом выполняют, по меньшей мере, стадии (а)-(l) способов согласно изобретению и получают сэндвичную культуру из заключенных между верхней и нижней матрицей клеток.
Наконец, предметом данного изобретения является также способ получения сэндвичной культуры изолированных клеток печени, при этом сначала приготавливают печеночную ткань животного или человеческого организма, а затем изолируют клетки печени из ткани и выполняют, по меньшей мере, стадии (а)-(l) способов согласно изобретению. Специалист может выбирать в зависимости от области и цели применения известные способы изоляции клеток печени из тканей.
Наконец, данное изобретение относится также к сэндвичной культуре, которую можно получать и которую предпочтительно получают с помощью указанных выше способов. Сэндвичная культура согласно изобретению имеет все указанные выше преимущества и представляет по сравнению с уровнем техники улучшенную культуру изолированных клеток печени.
Примеры выполнения
Ниже приводится подробное пояснение изобретения с помощью примеров и чертежей. Примеры следует понимать ни как имеющие ограничительный характер, а как иллюстрацию положенной в основу данного изобретения изобретательской идеи и преимуществ изобретения на основе конкретных примеров.
На чертежах изображено:
фиг.1 - микроскопические фотографии культивированных гепатоцитов (масштаб с увеличением примерно в 150 раз), при этом на фиг.1А показаны свежеизолированные гепатоциты человека, а на фиг.1В - подвергнутые криогенной консервации гепатоциты человека;
фиг.2 - число живых гепатоцитов в зависимости от длительности культивирования;
фиг.3 - образование 6β-ОНТ и 16α-ОНТ после ферментной индукции с рифампицином.
Пример 1. Препарирование гепатоцитов человека для криогенной консервации
1.1 Изоляция гепатоцитов человека
Гепатоциты из человеческих доноров изолируют известным образом из хирургически удаляемых частей ткани, которые удаляются с согласия донора. Для этого ткань подвергают перфузии, при этом гепатоциты выделяются из совокупности тканей и их можно получать из перфузионного раствора. Жизнеспособность получаемых гепатоцитов определяют с помощью теста окраски трипановым синим. Для дальнейших экспериментов применяют лишь препараты клеток, которые имеют выход окраски трипановым синим более 70%.
1.2 Подготовка матрицы
В последующих экспериментах применяют сосуды для культуры в виде пластинок с несколькими колодцами, а именно пластинки с 6 колодцами (тип 657 160, фирмы Greiner Bio-One). Пластинки покрывают слоем природного коллагенового геля, который изолируют предпочтительно из хвостов крыс. В качестве альтернативного решения применяют предварительно покрытые слоем коллагена тип 1 пластинки с несколькими колодцами, а именно пластинки с 6 колодцами (тип 657 950 CELLCOAT, фирмы Greiner Bio-One). Пластинки с 6 колодцами имеют площадь дна 9,6 см2 каждого колодца.
1.3 Высевание клеток
Изолированные гепатоциты высевают на пластинки с несколькими колодцами. Для этого изготавливают суспензию изолированных гепатоцитов, которая содержит от 2,5 до 3 миллионов живых гепатоцитов в 2 мл суспензии. В каждый колодец пластинки с 6 колодцами вносят с помощью пипетки 2 мл этой клеточной суспензии. Таким образом, плотность клеток составляет от 2600 до 3200 живых гепатоцитов на 1 мм2 поверхности сосуда для культуры.
После высевания пластинки оставляют в течение около 1 часа. Для этого пластинки помещают в шкаф для культуры, где поддерживаются стандартные условия (37°С, 5% СО2, относительная влажность воздуха 95%). Фаза покоя обеспечивает прилипание клеток из суспензии на коллагеновый гель. Успешное прилипание можно оценивать посредством контроля с помощью микроскопа.
После фазы прилипания/покоя откачивают остаток клеточной суспензии, который имеет, по существу, не прилипшие клетки.
1.4 Замораживание покрытой клетками матрицы
После откачивания остатка добавляют примерно 1 мл теплой среды 1 с температурой 37°С в каждый колодец. Затем оставляют снова в покое клетки в течение примерно 1 часа в инкубаторе при стандартных условиях. После этого тщательно откачивают остаток, который, по существу, содержит не прилипшие клетки.
Среда 1 является производной от стандартной среды клеточной культуры для гепатоцитов и содержит 10% фетальной телячьей сыворотки (FCS).
Для замораживания в каждый колодец добавляют 0,5 мл среды замораживания. Добавление среды замораживания осуществляют быстро. После добавления среды замораживания пластинки тотчас ставят в предварительно охлажденную до 0°С холодильную машину и запускают программу замораживания.
Среда замораживания основана, по существу, на среде 1 и содержит 10% фетальной телячьей сыворотки (FCS) и 10% диметилсульфоксида (DMSO).
Программа замораживания предусматривает компенсацию фазового перехода и достижение целевой температуры -100°С.
Затем пластинки с замороженной клеточной культурой хранят при температуре -151°С в холодильному шкафу, соответственно в газовой фазе в баке с азотом.
Пример 2. Размораживание криогенно консервированных гепатоцитов
Замороженные согласно примеру 1 и хранимые при температуре -151°С культуры гепатоцитов размораживают и рекультивируют для дальнейшего применения в тестах в пробирках после хранения в течение до 4 недель.
Для размораживания криогенно консервированных культур гепатоцитов пластинки с 6 колодцами сначала помещают непосредственно после извлечения из холодильного шкафа, соответственно бака с азотом на 5 минут в шкаф для культуры, который имеет стандартные условия (смотри пример 1). Затем добавляют в каждый колодец медленно и по каплям предварительно подогретую до 37°С среду 1 (смотри пример 1). Этот процесс повторяют для максимально трех одновременно размораживаемых пластинок с 6 колодцами, т.е. для максимально 18 колодцев.
Затем процесс повторяют, при этом снова медленно добавляют в каждый колодец по 1 мл среды 1. После этого остаток откачивают с помощью пипетки Пастера. Остаток содержит, по существу, размороженные не живые и не прилипшие клетки.
Для дальнейшего промывания добавляют аналогичным образом в каждый колодец два раза по 1 мл теплой среды 2 с температурой 37°С. При этом среду 2 добавляют указанным выше для среды 1 способом двумя заходами по 1 мл в каждый колодец. После этого пластины инкубируют примерно в течение 30 минут в шкафу для культуры при стандартных условиях. После инкубации весь остаток, который содержит другие не живые и не прилипшие клетки, откачивают с помощью пипетки Пастера.
Полученный таким образом монослой из прилипших гепатоцитов покрывают другим слоем коллагенового клея для получения сэндвичной конфигурации. Коллагеновый гель затвердевает после наливания в течение примерно 30 минут. Он имеет состав, который, по существу, соответствует составу нижнего коллагенового геля, который находился в сосудах для культуры.
Среда 2 является стандартной средой для длительного культивирования гепатоцитов и содержит 10% фетальной телячьей сыворотки (FCS).
Дальнейшее рекультивирование полученной сэндвичной культуры осуществляют в среде 2, которую примерно каждые 24 часа заменяют свежей средой.
Пример 3. Определение числа жизнеспособных клеток
Число жизнеспособных (живых) клеток в культурах свежеизолированных гепатоцитов, а также криогенно консервированных согласно изобретению гепатоцитов определяют посредством подсчета морфологически невредимых клеток. При этом подсчет проводят на фотографиях сравнительных поверхностей величиной 0,259 мм2. Из числа обнаруженных на сравнительной поверхности невредимых клеток делают вывод о числе невредимых клеток во всем сосуде для культуры (для применяемых пластинок с 6 колодцами с площадью 9,6 см2 каждого колодца получают коэффициент коррекции 3700).
Перед замораживанием и в различные моменты времени после размораживания после криогенной консервации фотографически документируют морфологию рекультивированных гепатоцитов и сравнивают с культурами свежеизолированных и культивированных гепатоцитов.
Результаты:
На фиг.1 показана морфология свежеизолированных и высеянных на слой коллагенового геля человеческих гепатоцитов (фиг.1А), а также морфология подвергнутых криогенной консервации, размороженных и в течение 7 дней рекультивированных изолированных человеческих гепатоцитов (фиг.1В). Рекультивированные подвергнутые криогенной консервации клетки можно морфологически едва отличить от свежеизолированных клеток.
Доля живых клеток в культуре лишь немного уменьшилась по сравнению с долей живых клеток в культурах свежеизолированных гепатоцитов. На фиг.2 показано число живых (витальных) человеческих гепатоцитов в зависимости от длительности рекультивирования после размораживания гепатоцитов. Сравнительная кривая показывает число живых человеческих гепатоцитов при культивировании свежеизолированных клеток в тот же период времени. Первоначально были высеяны для криогенной консервации 3 миллиона клеток, для свежего препарирования - 1,5 миллионов клеток.
Было установлено, что размороженные рекультивированные человеческие гепатоциты растут конфлюэнтно, и что число живых прилипших клеток не существенно отличается от числа живых клеток в сравнимых свежих культурах. При этом следует отметить, что после длительного времени культивирования число живых клеток остается почти постоянным в подвергнутых криогенной консервации размороженных препаратах.
Пример 4. Ферментная активность криогенно консервированных гепатоцитов
Хорошим маркером для метаболической, соответственно ферментной способности клеток печени является способность индуцирования ферментативного гидроксилирования тестостерона. В невредимых клетках печени происходит основной обмен «базального уровня» этой реакции, при этом образуется гидрокситестостерон (ОНТ). Скорость образования можно увеличивать при невредимых клетках за счет ферментной индукции. Поэтому доказательство образования ОНТ в культивированных гепатоцитах позволяет делать выводы о ферментативной способности и физиологической функции культивированных гепатоцитов.
Анализ и квантификация региоселективного, соответственно стереоселективного гидроксилирования тестостерона осуществлялись само по себе известным методом, опубликованным, например, в статье Friedrich et al., 2003 (J.Chromatogr. B. 784:49-61).
Для этого исследования были разморожены криогенно консервированные согласно изобретению человеческие гепатоциты и рекультивированы в течение двух дней, а затем инкубированы еще в течение 24 часов в рифампицине. Рифампицин индуцирует гидроксилирование тестостерона в позициях 6β, 16α и 2β. Гидроксилирование тестостерона в позиции 6α рифампицином не стимулируется. Поэтому измерение гидроксилированного тестостерона 6α служило в качестве сравнительного измерения для ферментной индукции с помощью рифампицина.
Для контроля свежеизолированные культуры также инкубировали в течение 24 часов в рифампицине, после их культивирования в течение двух дней. Условия культивирования были выбраны аналогично условиям способов, согласно изобретению.
Наряду со способностью индуцирования ферментов определяли основной обмен тестостерона в подвергнутых криогенной консервации и рекультивированных клетках, а также в свежепрепарированных и культивированных клетках.
Результаты:
Криогенно консервированные, согласно изобретению, рекультивированные гепатоциты и свежепрепарированные культивированные гепатоциты показали сравнимую способность ферментной индукции. Средние величины для индукции гидроксилирования тестостерона приведены в следующей таблице:
  Криогенно консервированные, рекультивированные гепатоциты (согласно изобретению) Свежеизолированные гепатоциты
(сравнительный пример)
6β-гидроксилирование в 2,8 раза в 2,3 раза
16α-гидроксилирование в 2,4 раза в 1,6 раза
2β-гидроксилирование в 2,3 раза в 2,4 раза
Как и ожидалось, рифампицин не мог индуцировать образование 6α-гидрокситестостерона (6α-ОНТ) ни в криогенно консервированных и рекультивированных гепатоцитах, ни в свежекультивированных гепатоцитах.
На фиг.3 показана абсолютная концентрация образованного гидрокситестостерона (в качестве примера показана концентрация для 6β-ОНТ и 16α-ОНТ) перед и после индукции гидроксилирования тестостерона с помощью рифампицина. В левой части изображения показаны результаты для свежекультивированных гепатоцитов, а в правой части изображения - результаты для криогенно консервированных согласно изобретению и рекультивированных гепатоцитов. На фиг.3А показано образование 6β-ОНТ, а на фиг.3В показано образование 16α-ОНТ. Пятна Бокса и Уискера показывают квартили. Уровень значимости р<0,05 (тест t).
Из опыта обращения с криогенно консервированными в суспензии клетками печени следует, что криогенная консервация сильно уменьшает основной обмен при гидроксилировании тестостерона по сравнению со свежепрепарированными гепатоцитами. Как и ожидалось, в криогенно консервированных в монослое клетках печени также уменьшалась основная активность рекультивированных гепатоцитов по сравнению со свежей культурой. Однако она все еще хорошо обнаруживалась 24 и 72 часа после размораживания.
В частности, было установлено, что криогенно консервированные гепатоциты 72 часа после размораживания и после предшествующей инкубации в течение 24 часов рифампицином проявляют явную способность к индукции гидроксилирования тестостерона.
Полученная в течение, по меньшей мере, трех дней основная активность вместе с неуменьшающейся способностью к индукции являются существенным доказательством того, что криогенно консервированные согласно изобретению человеческие гепатоциты можно успешно применять для большого числа тестов в пробирке.

Claims (12)

1. Способ получения сэндвичной культуры изолированных клеток печени, содержащий стадии (а)-(1):
(a) подготовки матрицы,
(b) подготовки изолированных клеток печени,
(c) высевания клеток печени на матрицу с плотностью от 2 до 4×103 мм-2,
(d) оставления в покое покрытой клетками матрицы в течение 10-180 мин, так что клетки могут прилипать к матрице,
(e) смывания неприлипших клеток с покрытой клетками матрицы,
(f) оставления в покое покрытой клетками матрицы в течение максимально 180 мин, и
(g) замораживания покрытой клетками матрицы в среде замораживания,
(h) хранения замороженной покрытой клетками матрицы,
(i) размораживания замороженной покрытой клетками матрицы,
(j) смывания неприлипших клеток с покрытой клетками матрицы,
(k) покрывания размороженной покрытой клетками матрицы слоем второй матрицы и
(1) рекультивирования заделанных между матрицами клеток.
2. Способ по п.1, при этом матрица является коллагеновой матрицей.
3. Способ по п.1, при этом оставление в покое в стадии (d) происходит в течение 30-90 мин.
4. Способ по п.1, при этом в стадии (е) покрывают слоем культуральной среды, а затем откачивают жидкий остаток над покрытой клетками матрицей.
5. Способ по п.1, при этом оставление в покое в стадии (f) происходит в течение 30-180 мин.
6. Способ по п.1, при этом в стадии (g) добавляют среду замораживания в количестве 0,5 мкл/мм-2.
7. Способ по п.6, при этом среда замораживания содержит фетальную телячью сыворотку (FCS) и DMSO.
8. Способ по п.1, при этом в стадии (g) замораживание происходит за счет покрытия покрытой клетками матрицы слоем среды замораживания и контролируемого охлаждения до -80°С или ниже со скоростью охлаждения от 0,5 до 20°С мин-1, при необходимости с компенсацией фазового перехода.
9. Способ по п.1, при этом хранение в стадии (h) происходит при температуре -150°С.
10. Способ по п.1, при этом в стадии (i) покрытую клетками матрицу покрывают слоем теплой культуральной среды.
11. Способ по п.1, при этом в стадии (j) покрытую клетками матрицу покрывают слоем теплой культуральной среды, а затем откачивают жидкий остаток над покрытой клетками матрицей.
12. Способ по п.1, при этом стадия (а) содержит стадии:
(а1) подготовки ткани печени из животного или человеческого организма и
(а2) изолирования клеток печени из ткани.
RU2008125854/10A 2005-11-25 2006-11-03 Способ получения сэндвичной культуры изолированных клеток печени RU2432395C2 (ru)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE102005057106A DE102005057106A1 (de) 2005-11-25 2005-11-25 Kryokonservierung von Hepatocyten
DE102005057106.9 2005-11-25

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2008125854A RU2008125854A (ru) 2010-01-10
RU2432395C2 true RU2432395C2 (ru) 2011-10-27

Family

ID=37636094

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2008125854/10A RU2432395C2 (ru) 2005-11-25 2006-11-03 Способ получения сэндвичной культуры изолированных клеток печени

Country Status (21)

Country Link
US (1) US20080280357A1 (ru)
EP (1) EP1956896B1 (ru)
JP (1) JP4927089B2 (ru)
CN (1) CN101312648B (ru)
AT (1) ATE519364T1 (ru)
AU (1) AU2006317162B2 (ru)
BR (1) BRPI0618988B1 (ru)
CA (1) CA2632247C (ru)
CY (1) CY1112746T1 (ru)
DE (1) DE102005057106A1 (ru)
DK (1) DK1956896T3 (ru)
ES (1) ES2369414T3 (ru)
HK (1) HK1118422A1 (ru)
IL (1) IL191268A (ru)
NZ (1) NZ568555A (ru)
PL (1) PL1956896T3 (ru)
PT (1) PT1956896E (ru)
RU (1) RU2432395C2 (ru)
SI (1) SI1956896T1 (ru)
WO (1) WO2007059855A1 (ru)
ZA (1) ZA200804245B (ru)

Families Citing this family (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP2221362A1 (en) * 2009-02-19 2010-08-25 Naturin GmbH & Co Method for the cryopreservation of cells, artificial cell constructs or three-dimensional complex tissues assemblies
WO2011059547A2 (en) * 2009-10-30 2011-05-19 Xenotech, Llc Cryopreservation of cells and subcellular fractions
TWI607757B (zh) * 2010-11-10 2017-12-11 英瑞金公司 治療製劑
CN102172237B (zh) * 2010-12-30 2013-05-22 北京民海生物科技有限公司 一种细胞冻存液及其制备方法和应用
US9078430B2 (en) * 2012-09-18 2015-07-14 Albert Li Cell preparation method
US10159244B2 (en) 2015-02-27 2018-12-25 Lonza Walkersville, Inc. Method for pooling hepatocytes

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5795711A (en) * 1996-04-04 1998-08-18 Circe Biomedical, Inc. Cryopreserved hepatocytes and high viability and metabolic activity

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
КОЕВЕ H.G. et al. A new approach to the cryopreservation of hepatocytes in a sandwich culture configuration// Cryobiology. - 1990, v.27, n.5, p.576-584. *

Also Published As

Publication number Publication date
CN101312648A (zh) 2008-11-26
AU2006317162B2 (en) 2012-05-31
EP1956896B1 (de) 2011-08-10
RU2008125854A (ru) 2010-01-10
DE102005057106A1 (de) 2007-06-06
AU2006317162A1 (en) 2007-05-31
EP1956896A1 (de) 2008-08-20
CN101312648B (zh) 2013-08-14
ES2369414T3 (es) 2011-11-30
CA2632247C (en) 2012-01-03
ATE519364T1 (de) 2011-08-15
NZ568555A (en) 2011-01-28
CA2632247A1 (en) 2007-05-31
IL191268A (en) 2012-07-31
WO2007059855A1 (de) 2007-05-31
US20080280357A1 (en) 2008-11-13
ZA200804245B (en) 2009-08-26
JP2009517007A (ja) 2009-04-30
DK1956896T3 (da) 2011-11-21
PL1956896T3 (pl) 2011-12-30
HK1118422A1 (en) 2009-02-13
BRPI0618988A2 (pt) 2011-09-20
CY1112746T1 (el) 2016-02-10
SI1956896T1 (sl) 2011-11-30
JP4927089B2 (ja) 2012-05-09
PT1956896E (pt) 2011-10-31
BRPI0618988B1 (pt) 2018-03-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Berthiaume et al. Effect of extracellular matrix topology on cell structure, function, and physiological responsiveness: hepatocytes cultured in a sandwich configuration
RU2432395C2 (ru) Способ получения сэндвичной культуры изолированных клеток печени
Comez-L et al. Biochemical functionality and recovery of hepatocytes after deep freezing storage
Wang et al. Cryopreservation of tissue-engineered dermal replacement in Me2SO: Toxicity study and effects of concentration and cooling rates on cell viability
US20200170244A1 (en) Methods for preserving, transporting and storing living biological materials
Petrenko et al. Perfusion bioreactor-based cryopreservation of 3D human mesenchymal stromal cell tissue grafts
Rendal-Vázquez et al. Effect of cryopreservation on human articular chondrocyte viability, proliferation, and collagen expression
US20130295669A1 (en) Method for controlling binding of cells to a substrate
JP2007306856A (ja) 細胞凍結保存方法
Lesman et al. Cell tri-culture for cardiac vascularization
Naito et al. Three-dimensional cardiac tissue engineering using a thermoresponsive artificial extracellular matrix
Sugimachi et al. Long-term function of cryopreserved rat hepatocytes in a coculture system
US10155928B2 (en) Assays using a multi-divot platform and multi-source, multi-cell type clusters
Mariana et al. Hepatocytes isolation from adult rats for liver recellularization
CN102614547B (zh) 一种快速构建复层细胞的方法
Mutsenko et al. Cryosensitivity of Mesenchymal Stromal Cells Cryopreserved Within Marine Sponge Ianthella basta Skeleton-Based Carriers
Plaksina et al. Cryopreservation of multicellular spheroids derived from newborn piglet adrenal glands
Miyoshi et al. Growth and albumin secretion of mouse fetal liver cells cryopreserved within porous polymer scaffolds as a viable cell source for bioartificial livers
CN113512524B (zh) 一种三维肝脏类器官复苏液和三维肝脏类器官的复苏方法
Kakehi et al. Repeated and long-term cryopreservation of primary bovine myogenic cells to maintain quality in biomimetic cultured meat
WO2020067442A1 (ja) 細胞の凍結保存方法
WO2020067434A1 (ja) 細胞の凍結保存方法
CN115885974A (zh) 一种水牛组织保存液及水牛组织的保存方法

Legal Events

Date Code Title Description
PC41 Official registration of the transfer of exclusive right

Effective date: 20170426

MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20191104