RU2414223C1 - Medication possessing immunostimulating and hemostimulating action - Google Patents

Medication possessing immunostimulating and hemostimulating action Download PDF

Info

Publication number
RU2414223C1
RU2414223C1 RU2009142183/15A RU2009142183A RU2414223C1 RU 2414223 C1 RU2414223 C1 RU 2414223C1 RU 2009142183/15 A RU2009142183/15 A RU 2009142183/15A RU 2009142183 A RU2009142183 A RU 2009142183A RU 2414223 C1 RU2414223 C1 RU 2414223C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
oligonucleotides
ogn
activity
vitro
hemostimulating
Prior art date
Application number
RU2009142183/15A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Андрей Владимирович Артамонов (RU)
Андрей Владимирович Артамонов
Александр Михайлович Дыгай (RU)
Александр Михайлович Дыгай
Андрей Александрович Бекарев (RU)
Андрей Александрович Бекарев
Евгений Иванович Верещагин (RU)
Евгений Иванович Верещагин
Юрий Павлович Бельский (RU)
Юрий Павлович Бельский
Наталья Владимировна Массная (RU)
Наталья Владимировна Массная
Ольга Викторовна Першина (RU)
Ольга Викторовна Першина
Евгений Германович Скурихин (RU)
Евгений Германович Скурихин
Евгений Юрьевич Шерстобоев (RU)
Евгений Юрьевич Шерстобоев
Original Assignee
Общество с ограниченной ответственностью "Саентифик Фьючер Менеджемент"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Общество с ограниченной ответственностью "Саентифик Фьючер Менеджемент" filed Critical Общество с ограниченной ответственностью "Саентифик Фьючер Менеджемент"
Priority to RU2009142183/15A priority Critical patent/RU2414223C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2414223C1 publication Critical patent/RU2414223C1/en

Links

Abstract

FIELD: medicine, pharmaceutics.
SUBSTANCE: claimed is application of immobilised oligonucleotides as immunostimulating and hemostimulating medication for peroral introduction. Immobilised on polyethylene oxide oligonucleotides of DNA of salmon soft roes demonstrate immuno- and hemostimulating activity in conditions in vivo in case of peroral introduction in experimental animals and in vitro, which is manifested in stimulation of phagocytic reactions in vivo and in vitro, increase of IFN-γ in vitro, increase of cytotoxic activity of natural killers, increase of spontaneous proliferative activity of lymphoid cells of experimental animals and index of B-lymphocyte stimulation, increase of nitrogen oxide production, as well as in enchancement of hemopoiesis regeneration in early terms after cytostatic impact.
EFFECT: immobilised by physical method oligonucleotides are protected from destruction in gastrointestinal tract, which facilitates their permeability through intestine wall and increases bioavailability.
11 tbl

Description

Изобретение относится к медицине, конкретно к фармакологии, и касается средств, влияющих на иммунную и кроветворную системы.The invention relates to medicine, specifically to pharmacology, and relates to agents that affect the immune and hematopoietic systems.

Для поддержания иммунитета при острых воспалительных заболеваниях (например, пневмония) нагрузка только на костный мозг увеличивается в сотни раз. И самым напряженным, продолжительным и затратным моментом в поддержании числа и активности иммунокомпетентных клеток является синтез нуклеиновых кислот: ДНК и РНК. Дефицит олигонуклеотидов - фрагментов нуклеиновых кислот - приводит к хроническому течению различных болезней, снижению иммунитета и уменьшению способности организма к саморегуляции и восстановлению поврежденных структур, что значительно снижает качество жизни человека. При проведении лучевой или цитостатической терапии страдают, прежде всего, функции быстро обновляющихся клеточных структур, к которым относится и костный мозг. Именно в костном мозге происходит образование ключевых клеток, отвечающих за иммунитет и защиту внутренней среды - лимфоцитов, нейтрофилов, макрофагов. Поэтому подавление функций костного мозга, истощение его резервов сказывается на всем организме. Терапевтическое применение стимуляторов иммунной и кроветворной систем во многом ограничено вследствие их побочных эффектов [1, 2]. Кроме того, ряд препаратов представляет собой белок и поэтому они применяются исключительно парентерально (в виде инъекций), что также имеет свои негативные последствия.To maintain immunity in acute inflammatory diseases (for example, pneumonia), the load on the bone marrow only increases hundreds of times. And the most intense, long and costly moment in maintaining the number and activity of immunocompetent cells is the synthesis of nucleic acids: DNA and RNA. Deficiency of oligonucleotides - nucleic acid fragments - leads to a chronic course of various diseases, a decrease in immunity and a decrease in the body's ability to self-regulate and restore damaged structures, which significantly reduces the quality of human life. When conducting radiation or cytostatic therapy, first of all, the functions of rapidly renewing cell structures, including the bone marrow, are affected. It is in the bone marrow that the formation of key cells responsible for the immunity and protection of the internal environment — lymphocytes, neutrophils, macrophages — takes place. Therefore, the suppression of bone marrow functions, the depletion of its reserves affects the whole body. The therapeutic use of stimulants of the immune and hematopoietic systems is largely limited due to their side effects [1, 2]. In addition, a number of drugs is a protein and therefore they are used exclusively parenterally (in the form of injections), which also has its negative consequences.

Ближайшим аналогом к предлагаемому средству по достигаемому результату является натриевая соль дезоксирибонуклеиновой кислоты (дезоксинат), получаемой из молок осетровых рыб и частично деполимеризованной с помощью ультразвука до молекулярной массы 2,7-4,0×105 Дальтон. По данным литературы дезоксинат оказывает лечебное действие при острой лучевой болезни II-III степени тяжести и при гипо- и апластических состояниях системы крови, вызванных лучевой или полихимиотерапией [3]. Предполагается, что вследствие поступления дезоксината в поврежденную цитостатиками или ионизирующим излучением кроветворную ткань происходит усиление синтеза нуклеиновых кислот, что приводит к увеличению темпов деления гемопоэтических клеток-предшественников и, как следствие, ускоренному восстановлению клеточности ростков кроветворения.The closest analogue to the proposed tool for the achieved result is the sodium salt of deoxyribonucleic acid (deoxinate) obtained from sturgeon milk and partially depolymerized by ultrasound to a molecular weight of 2.7-4.0 × 10 5 Daltons. According to the literature, deoxinate has a therapeutic effect in acute radiation sickness of the II-III severity and in hypo- and aplastic conditions of the blood system caused by radiation or polychemotherapy [3]. It is assumed that due to the ingress of deoxinate into the blood-forming tissue damaged by cytostatics or ionizing radiation, the synthesis of nucleic acids increases, which leads to an increase in the rate of division of hematopoietic progenitor cells and, as a result, accelerated restoration of the cellularity of hematopoietic cells.

Применение препарата ограничено вследствие развития осложнений, свойственных парентеральному пути введения. При использовании дезоксината отмечается болезненность на месте инъекции, у больных может повышаться температура тела, возможны аллергические и анафилактические реакции [3, 4].The use of the drug is limited due to the development of complications characteristic of the parenteral route of administration. When using deoxinate, soreness at the injection site is noted, body temperature may increase in patients, allergic and anaphylactic reactions are possible [3, 4].

Задачей изобретения является расширение арсенала иммуно- и гемостимулирующих средств.The objective of the invention is to expand the arsenal of immuno-and hemostimulating agents.

Поставленную задачу решают путем применением иммобилизированных олигонуклеотидов в качестве иммуностимулирующего и гемостимулирующего средства для перорального введения.The problem is solved by the use of immobilized oligonucleotides as an immunostimulating and hemostimulating agent for oral administration.

Препарат иммобилизированных олигонуклеотидов представляет собой короткие фрагменты ДНК, высокоочищенные протеолитическими ферментами, молекулярной массой в пределах 500-700 кДа, полученных из сырья - «Экстракт молок лососевых - кислота дезоксирибонуклеиновая низкомолекулярная». Иммобилизацию олигонуклеотидов осуществляют путем облучения 10% водного раствора полиэтиленоксида (ПЭО) с молекулярной массой 1,5 кДа потоком ускоренных электронов в дозе 1,5 Мрад и внесения в облученный раствор олигонуклеотидов ДНК молок лососевых рыб до конечной концентрации 10 мг в 1 мл, смесь перемешивают 10 минут до получения опалесцирующего раствора. Предварительно облученный полиэтиленоксид образует мицеллы, содержащие конденсированную ДНК, что позволяет защитить молекулу ДНК от деструкции в желудочно-кишечном тракте и облегчает проницаемость мицеллы через стенку кишечника. Повышенная биодоступность такого препарата предполагает возможность его применения путем приема внутрь.The preparation of immobilized oligonucleotides is short DNA fragments, highly purified by proteolytic enzymes, molecular weight in the range of 500-700 kDa obtained from raw materials - "Salmon milk extract - low molecular weight deoxyribonucleic acid." The oligonucleotides are immobilized by irradiating a 10% aqueous solution of polyethylene oxide (PEO) with a molecular mass of 1.5 kDa with a stream of accelerated electrons in a dose of 1.5 Mrad and introducing salmon fish milk DNA into the irradiated solution of oligonucleotides to a final concentration of 10 mg in 1 ml, the mixture is mixed 10 minutes to obtain an opalescent solution. Pre-irradiated polyethylene oxide forms micelles containing condensed DNA, which protects the DNA molecule from destruction in the gastrointestinal tract and facilitates the permeability of the micelle through the intestinal wall. The increased bioavailability of such a drug suggests the possibility of its use by ingestion.

Новым в предлагаемом изобретении является то, что иммобилизированные на ПЭО олигонуклеотиды (им-ОГН) впервые предложены для применения в качестве иммуно- и гемостимулирующего средства для перорального введения.New in the present invention is that the oligonucleotides (im-OGN) immobilized on PEO are first proposed for use as an immuno-and hemostimulating agent for oral administration.

Поэтому лекарственное средство, предлагаемое нами для перорального приема, может являться препаратом выбора при наличии у больного противопоказаний для применения других лекарственных препаратов и не имеет адекватных аналогов. Преимущества данного препарата очевидны. Во-первых, использование нанотехнологий радиационного синтеза и гамма излучения для иммобилизации молекул лекарственного средства на носителях низкой молекулярной массы препятствует их деградации в гастроинтестинальном отделе пищеварительного тракта и создает условия для транспорта через ячейки слизистой кишечника в кровоток. Во-вторых, применение уникальной технологии позволяет создавать водорастворимые конъюгаты полимеров и белковых фармакологических препаратов размерами 20-100 нм, обладающих повышенной биодоступностью при энтеральном приеме и сохраненной фармакологической активностью и терапевтической эффективностью [5].Therefore, the drug that we offer for oral administration may be the drug of choice if the patient has contraindications for the use of other drugs and does not have adequate analogues. The benefits of this drug are obvious. Firstly, the use of nanotechnology of radiation synthesis and gamma radiation to immobilize drug molecules on carriers of low molecular weight prevents their degradation in the gastrointestinal section of the digestive tract and creates conditions for transport through the intestinal mucosa cells into the bloodstream. Secondly, the use of a unique technology allows the creation of water-soluble conjugates of polymers and protein pharmacological preparations with sizes of 20-100 nm, which have increased bioavailability during enteral administration and retained pharmacological activity and therapeutic efficacy [5].

Применение иммобилизированных на ПЭО олигонуклеотидов стало возможным благодаря обнаружению у них иммуностимулирующих свойств, а именно стимуляции фагоцитарных реакций in vivo и in vitro, повышении продукции интерферона-гамма (ИФН-γ) in vitro, усилении цитотоксической активности естественных киллеров (ЕК), повышении спонтанной пролиферативной активности лимфоидных клеток экспериментальных животных и индекса стимуляции В-лимфоцитов, повышении продукции оксида азота, а также гемостимулирующих свойств при введении per os.The use of oligonucleotides immobilized on PEO became possible due to the discovery of immunostimulating properties in them, namely, stimulation of phagocytic reactions in vivo and in vitro, increased production of interferon-gamma (IFN-γ) in vitro, increased cytotoxic activity of natural killer cells (EC), increased spontaneous proliferative the activity of lymphoid cells in experimental animals and the stimulation index of B-lymphocytes, increased production of nitric oxide, as well as hemostimulating properties with the introduction of per os.

Применение иммобилизированных на ПЭО олигонуклеотидов для перорального введения в качестве иммуно- и гемостимулирующего средства в литературе не описано. Данное свойство явным образом не вытекает для специалиста из уровня техники. Иммобилизированные олигонуклеотиды можно использовать у больных с иммунной недостаточностью, ассоциированной с острыми и хроническими инфекционными заболеваниями, при гипо- и апластических состояниях системы крови на фоне лучевой терапии и лечения цитостатиками.The use of oligonucleotides immobilized on PEO for oral administration as an immuno-and hemostimulating agent is not described in the literature. This property does not explicitly follow for a person skilled in the art. Immobilized oligonucleotides can be used in patients with immune deficiency associated with acute and chronic infectious diseases, with hypo- and aplastic states of the blood system during radiation therapy and treatment with cytostatics.

Таким образом, данное техническое решение соответствует критериям изобретения: «новизна», «изобретательский уровень», «промышленная применимость».Thus, this technical solution meets the criteria of the invention: "novelty", "inventive step", "industrial applicability".

Иммуностимулирующие свойства иммобилизированных на ПЭО олигонуклеотидов были обнаружены благодаря экспериментальным исследованиям.The immunostimulating properties of oligonucleotides immobilized on PEO were discovered through experimental studies.

Для установления иммуностимулирующей активности иммобилизированных на ПЭО олигонуклеотидов было изучено их влияние на фагоцитоз нейтрофилов in vivo и in vitro, выработку ИФН-γ in vitro, на активность ЕК, пролиферативную активность лимфоидных клеток при пероральном способе применения исследуемого препарата, выработку оксида азота перитонеальными макрофагами лабораторных животных при добавлении им-ОГН in vitro.To establish the immunostimulating activity of oligonucleotides immobilized on PEO, we studied their effect on neutrophil phagocytosis in vivo and in vitro, IFN-γ production in vitro, EC activity, proliferative activity of lymphoid cells with the oral route of administration of the studied drug, and production of nitric oxide by peritoneal animal macrophages when im-OGN is added in vitro.

Изучение иммунотропной активности иммобилизированных на ПЭО олигонуклеотидов проводилось согласно «Методическим указаниям по изучению иммунотропной активности фармакологических веществ» [6].The study of the immunotropic activity of oligonucleotides immobilized on PEO was carried out according to the “Guidelines for the study of the immunotropic activity of pharmacological substances” [6].

В исследовании были использованы 175 мышей-самцов линии CBA/CaLac и 22 мыши-самца линии BALB/C массой 18-20 г в возрасте 1,5-2 мес, полученные из питомника НИИ фармакологии СО РАМН. Мыши линии BALB/C использовали в качестве источника перитонеальных макрофагов. Животные были конвенциональные 1-й категории (сертификат ГУ Научного центра биомедицинских технологий РАМН №188-05). Содержание, питание, уход за животными и выведение их из эксперимента осуществляли в соответствии с требованиями «Правил проведения работ с использованием экспериментальных животных» (Приложение к приказу МЗ СССР от 12.08.1977 г. №755).The study used 175 male CBA / CaLac mice and 22 BALB / C male mice weighing 18-20 g at the age of 1.5-2 months, obtained from the nursery of the Scientific Research Institute of Pharmacology SB RAMS. BALB / C mice were used as a source of peritoneal macrophages. The animals were conventional of the 1st category (certificate of the State Research Center for Biomedical Technologies of the Russian Academy of Medical Sciences No. 188-05). Keeping, feeding, caring for animals and removing them from the experiment was carried out in accordance with the requirements of the "Rules for the Use of Experimental Animals" (Appendix to the order of the Ministry of Health of the USSR dated 08.08.1977, No. 755).

Мышам иммобилизированные олигонуклеотиды вводили перорально курсом в течение 10-ти либо 14-ти суток один раз в день в дозе 10 мг/кг, 100 мг/кг и 250 мг/кг в объеме 0,2 мл стерильного физиологического раствора, контрольные животные получали в эквивалентном объеме растворитель (физиологический раствор). В качестве фона использовали интактных животных соответствующего пола и возраста.Immobilized oligonucleotides were administered to mice orally for 10 or 14 days once a day at a dose of 10 mg / kg, 100 mg / kg and 250 mg / kg in a volume of 0.2 ml of sterile physiological saline, control animals received equivalent volume of solvent (saline). Intact animals of the corresponding sex and age were used as the background.

В опытах in vitro им-ОГН добавляли в культуру нейтрофилов и мононуклеарных клеток здоровых доноров (в количестве 40 человек в возрасте 24-38 лет) в дозах 0,07 мкг/мл, 0,7 мкг/мл и 7 мкг/мл, а в культуру перитонеальных макрофагов мышей в дозах, на порядок различающихся, от 0,00034 мкг/мл до 33,775 мкг/мл.In in vitro experiments, im-OGN was added to the culture of neutrophils and mononuclear cells of healthy donors (in the amount of 40 people aged 24-38 years) at doses of 0.07 μg / ml, 0.7 μg / ml and 7 μg / ml, and into the culture of peritoneal macrophages of mice in doses varying by an order of magnitude, from 0.00034 μg / ml to 33.775 μg / ml.

Цитостатическую миелосупрессию моделировали однократным, внутрибрюшинным введением животным раствора фторпиримидинового антиметаболита 5-фторурацила в 1/3 максимально переносимой дозы (МПД) (76 мг/кг).Cytostatic myelosuppression was modeled by a single, intraperitoneal administration to animals of a solution of 5-fluorouracil fluoropyrimidine antimetabolite in 1/3 of the maximum tolerated dose (MTD) (76 mg / kg).

Забивали животных декапитацией под эфирным наркозом, либо передозировкой хлороформа.Animals were killed by decapitation under ether anesthesia, or an overdose of chloroform.

Фагоцитарная активность перитонеальных нейтрофилов оценивалась через 24 ч после окончания 14-дневного курса введения иммобилизированных олигонуклеотидов по способности фагоцитов поглощать суточную культуру Staph. aureus, штамм 209. На мазках содержимого перитонеальной полости учитывали процент нейтрофилов, поглотивших микробы (фагоцитарный индекс - ФИ) и среднее число стафилококков, поглощенное одной клеткой (фагоцитарное число - ФЧ) [6].The phagocytic activity of peritoneal neutrophils was evaluated 24 hours after the end of the 14-day course of administration of immobilized oligonucleotides by the ability of phagocytes to absorb daily Staph culture. aureus strain 209. On the smears of the contents of the peritoneal cavity, the percentage of neutrophils that absorbed microbes (phagocytic index — PI) and the average number of staphylococci absorbed by one cell (phagocytic number — PS) were taken into account [6].

Для оценки влияния препарата на фагоцитоз in vitro брали кровь у здоровых доноров из кубитальной вены в пробирку с гепарином из расчета 25 ЕД на 1 мл исследуемой крови и смешивали с 0,8 мл 3% раствора желатины приготовленного на среде 199. Готовили клеточную суспензию, содержащую 2 млн нейтрофилов в 1 мл. Параллельно готовили взвесь Staph. aureus, штамм 209 в концентрации 20 млн/мл. При постановке реакции смешивали в 96-луночных круглодонных планшетах 90 мкл клеточной суспензии и 90 мкл стафилококка (соотношение 1:10) и планшеты инкубировали при 37°С в течение 30 мин. Для изучения влияния им-ОГН на фагоцитоз к смеси добавляли по 20 мкл исследуемого препарата в концентрациях 0,07 мкг/мл, 0,7 мкг/мл и 7 мкг/мл. После инкубации планшеты центрифугировали в течение 10 мин при 1000 об/мин, из осадка готовили мазки на предметном стекле, фиксировали этанолом 30 мин и окрашивали азур II-эозином в течение 30-40 мин. На мазках учитывали процент нейтрофилов, поглотивших микробы (фагоцитарный индекс - ФИ) и среднее число стафилококков, поглощенное одной клеткой (фагоцитарное число - ФЧ) [6].To assess the effect of the drug on in vitro phagocytosis, blood was drawn from healthy donors from a cubital vein into a test tube with heparin at a rate of 25 PIECES per 1 ml of test blood and mixed with 0.8 ml of a 3% gelatin solution prepared on medium 199. A cell suspension was prepared containing 2 million neutrophils in 1 ml. In parallel, a suspension of Staph was prepared. aureus strain 209 at a concentration of 20 million / ml. When setting up the reaction, 90 μl of a cell suspension and 90 μl of staphylococcus (ratio 1:10) were mixed in 96-well round-bottom plates and the plates were incubated at 37 ° C for 30 min. To study the effect of im-OGN on phagocytosis, 20 μl of the studied drug was added to the mixture at concentrations of 0.07 μg / ml, 0.7 μg / ml and 7 μg / ml. After incubation, the plates were centrifuged for 10 min at 1000 rpm, smears were prepared from a precipitate on a glass slide, fixed with ethanol for 30 min, and azure II-eosin was stained for 30-40 min. On smears, the percentage of neutrophils that absorbed microbes (phagocytic index - PH) and the average number of staphylococci absorbed by one cell (phagocytic number - PS) were taken into account [6].

Оценку влияния препарата на выработку ИФН-γ проводили на культуре мононуклеаров (МНК) периферической крови здоровых доноров [6]. Для этого исследуемый препарат добавляли в культуры мононуклеаров в концентрациях 0,07 мкг/мл, 0,7 мкг/мл и 7 мкг/мл в объеме 50 мкл. ИФН-γ в суточных супернатантах культур мононуклеаров определяли с помощью иммуноферментного метода, используя соответствующий набор производства ЗАО «Вектор-Бест» (Новосибирск).Evaluation of the effect of the drug on the production of IFN-γ was performed on a culture of peripheral blood mononuclear cells (MNCs) of healthy donors [6]. For this, the test drug was added to mononuclear cultures at concentrations of 0.07 μg / ml, 0.7 μg / ml and 7 μg / ml in a volume of 50 μl. IFN-γ in the daily supernatants of mononuclear cultures was determined using the enzyme-linked immunosorbent assay using the appropriate kit manufactured by Vector-Best CJSC (Novosibirsk).

Изучение влияния курсового 14-суточного введения им-ОГН на функциональную активность ЕК определяли в цитотоксической реакции по их способности лизировать клетки миелобластоидной линии К-562, используя колорометрический метод [7].A study of the effect of 14-day course administration of im-OGN on the functional activity of EC was determined in the cytotoxic reaction by their ability to lyse K-562 myeloblastoid line cells using the colorimetric method [7].

Для оценки влияния курсового 14-суточного введения им-ОГН на пролиферативную активность Т- и В-лимфоцитов экспериментальных животных использовали реакцию бласттрансформации, которая в известной степени является интегральным методом определения их функциональной активности [6]. Этот метод основан на способности некоторых лектинов вызывать поликлональную активацию и пролиферацию лимфоцитов, которая оценивалась колориметрически [8]. Для активации Т-лимфоцитов использовали фитогемагглютинин (ФГА); для активации В-лимфоцитов - липополисахарид (ЛПС). В качестве источника лимфоидных клеток использовали спленоциты экспериментальных животных.To assess the effect of a 14-day course administration of im-OGN on the proliferative activity of T and B lymphocytes of experimental animals, the blast transformation reaction was used, which to a certain extent is an integral method for determining their functional activity [6]. This method is based on the ability of some lectins to induce polyclonal activation and proliferation of lymphocytes, which was evaluated colorimetrically [8]. Phytohemagglutinin (PHA) was used to activate T-lymphocytes; to activate B-lymphocytes - lipopolysaccharide (LPS). Splenocytes from experimental animals were used as a source of lymphoid cells.

Для определения влияния исследуемого препарата на продукцию оксида азота перитонеальными макрофагами интактных мышей им-ОГН добавляли в культуру макрофагов в дозах, на порядок различающихся, от 0,00034 мкг/мл до 33,775 мкг/мл. Макрофаги культивировали в плоскодонных 96-луночных планшетах в концентрации 2×105 клеток на лунку 48 ч, после чего собирали из лунок надосадок и замеряли в нем количество нитритов при помощи реактива Грейса с использованием спектрофотометра «Titertek Multis-can MCC» («Titertek», Финляндия) при длине волны 540 нм [9].To determine the effect of the studied drug on the production of nitric oxide by peritoneal macrophages of intact mice, im-OGN was added to the macrophage culture in doses varying by an order of magnitude from 0.00034 μg / ml to 33.775 μg / ml. Macrophages were cultured in flat-bottomed 96-well plates at a concentration of 2 × 10 5 cells per well for 48 h, after which they were collected from supernatant wells and the amount of nitrite was measured therein using a Grace reagent using a Titertek Multis-can MCC spectrophotometer (Titertek) , Finland) at a wavelength of 540 nm [9].

В качестве лиганда TLR-9 использовали CpG-олигонуклеотид ODN1826 («InvivoGen», США). В качестве блокатора TLR-9 использовали ингибиторный олигонуклеотид ODN2088 («InvivoGen», США).As the ligand of TLR-9, the CpG oligonucleotide ODN1826 (InvivoGen, USA) was used. The inhibitor oligonucleotide ODN2088 (InvivoGen, USA) was used as a TLR-9 blocker.

Гемостимулирующие свойства им-ОГН изучали на модели цитостатической миелосупресии, вызванной введением 5-фторурацила (5-ФУ). Препарат иммобилизированных олигонуклеотидов вводился мышам per os ежедневно с 1 по 10-й день исследования в дозе 250 мг/кг.The hemostatic properties of im-OGN were studied using a model of cytostatic myelosuppression caused by the introduction of 5-fluorouracil (5-FU). The preparation of immobilized oligonucleotides was administered to mice per os daily from 1 to 10 days of the study at a dose of 250 mg / kg.

На 3, 5, 7, 9, 11 и 13 день эксперимента у мышей с помощью автоматического гематологического анализатора ABACUS (Diatron, Австрия) в ветеринарном режиме оценивали состояние периферического звена системы эритрона (содержание гемоглобина, количество эритроцитов, гематокрит, среднюю корпускулярную концентрацию гемоглобина). Далее общепринятыми методами изучали содержание ретикулоцитов, различных форм лейкоцитов в периферической крови [10]. После умерщвления методом краниоцервикальной дислокации под эфирным наркозом оценивалось общее количество миелокариоцитов и абсолютное содержание клеточных элементов отдельных ростков гемопоэза в костном мозге [11].On the 3rd, 5th, 7th, 9th, 11th, and 13th day of the experiment in mice, using the ABACUS automatic hematology analyzer (Diatron, Austria), the state of the peripheral unit of the erythron system (hemoglobin content, number of red blood cells, hematocrit, and average corpuscular hemoglobin concentration) was evaluated in veterinary mode. . Further, by the generally accepted methods, the content of reticulocytes and various forms of leukocytes in peripheral blood was studied [10]. After killing by the craniocervical dislocation method under ether anesthesia, the total number of myelocaryocytes and the absolute content of the cellular elements of individual hematopoietic sprouts in the bone marrow were evaluated [11].

Статистическая обработка результатов осуществлялась с применением пакета статистических программ Statistica for Windows (версия 5.0) с предварительной оценкой нормальности распределения и использованием t-критерия Стьюдента, при отклонении вариационных рядов от нормального распределения применяли метод непараметрической статистики Вилкоксо-на-Манна-Уитни.Statistical processing of the results was carried out using the statistical software package Statistica for Windows (version 5.0) with a preliminary assessment of the normality of the distribution and the use of Student t-test, when the variational series deviated from the normal distribution, the non-parametric Wilcoxon-Mann-Whitney statistic method was used.

Результаты, подтверждающие иммуностимулирующие свойства иммобилизированных на ПЭО олигонуклеотидов при пероральном способе применения.Results confirming the immunostimulating properties of oligonucleotides immobilized on PEO by the oral route of administration.

Пример 1. Изучение фагоцитарной активности перитонеальных нейтрофилов оценивалась через 24 ч после окончания 14-дневного курса введения иммобилизированных олигонуклеотидов в дозе 10 мг/кг (группа 3), в дозе 100 мг/кг (группа 4) или растворителя (группа 2) по способности фагоцитов поглощать суточную культуру Staph. aureus, штамм 209. Курсовое введение им-ОГН в дозе 10 мг/кг приводило к достоверному повышению относительного количества фагоцитирующих нейтрофилов экспериментальных животных как по сравнению с контрольной группой, так и с фоновой, а также с группой мышей, получавших исследуемый препарат в дозе 100 мг/кг (табл.1). При этом число поглощенных бактерий (ФЧ) в группе животных с применением им-ОГН в дозе 10 мг/кг было статистически значимо выше относительно значений контрольной группы. Курсовое введение им-ОГН в дозе 100 мг/кг не приводило к достоверным изменениям фагоцитарного индекса и фагоцитарного числа нейтрофилов экспериментальных животных по сравнению Example 1. The study of the phagocytic activity of peritoneal neutrophils was evaluated 24 hours after the end of the 14-day course of administration of immobilized oligonucleotides at a dose of 10 mg / kg (group 3), at a dose of 100 mg / kg (group 4) or solvent (group 2) according to ability phagocytes absorb the daily culture of Staph. aureus strain 209. The course administration of im-OGN at a dose of 10 mg / kg led to a significant increase in the relative number of phagocytic neutrophils in experimental animals as compared to the control group and the background, as well as to the group of mice that received the studied drug at a dose of 100 mg / kg (table 1). Moreover, the number of absorbed bacteria (PS) in the group of animals using im-OGN at a dose of 10 mg / kg was statistically significantly higher relative to the values of the control group. The course introduction of im-OGN at a dose of 100 mg / kg did not lead to significant changes in the phagocytic index and the phagocytic number of neutrophils in experimental animals compared

Таблица 1
Оценка влияния курсового введения иммобилизированных олигонуклеотидов на фагоцитарную активность перитонеальных нейтрофилов мышей линии CBA/CaLac

Figure 00000001
Table 1
Assessment of the effect of the course administration of immobilized oligonucleotides on the phagocytic activity of peritoneal neutrophils of CBA / CaLac mice
Figure 00000001
Исследуемые показателиResearch indicators Группы экспериментальных животныхGroups of experimental animals Группа 1
Фон
(n=7)
Group 1
Background
(n = 7)
Группа 2
Контроль
(n=7)
Group 2
The control
(n = 7)
Группа 3
им-ОГН
(10 мг/кг)
(n=7)
Group 3
im-ogn
(10 mg / kg)
(n = 7)
Группа 4
им-ОГН
(100 мг/кг)
(n=7)
Group 4
im-ogn
(100 mg / kg)
(n = 7)
ФИ, %FI,% 12,0±0,3612.0 ± 0.36 14,0±0,73*14.0 ± 0.73 * 24,14±2,06*
2-3Р<0,001
24.14 ± 2.06 *
2-3 P <0.001
16,57±1,41*
3-4Р<0,05
16.57 ± 1.41 *
3-4 P <0.05
ФЧFf 2,97±0,142.97 ± 0.14 2,60±0,162.60 ± 0.16 3,69±0,31
2-3Р<0,01
3.69 ± 0.31
2-3 P <0.01
2,96±0,152.96 ± 0.15
Примечание: * - различия между опытными группами и фоном, между контрольной группой и фоном достоверны (р<0,05), n - количество животных в группе.Note: * - differences between the experimental groups and the background, between the control group and the background are significant (p <0.05), n is the number of animals in the group.

с контрольной группой, лишь относительно фона наблюдалось статистически значимое увеличение относительного числа фагоцитирующих нейтрофилов.With the control group, only with respect to the background was a statistically significant increase in the relative number of phagocytic neutrophils observed.

Пример 2. Оценка влияния иммобилизированных олигонуклеотидов на фагоцитоз нейтрофилов in vitro. При добавлении им-ОГН к нейтрофилам периферической крови здоровых доноров в различных концентрациях (0,07 мкг/мл, 0,7 мкг/мл и 7 мкг/мл) наблюдалось достоверное повышение фагоцитарного числа относительно значения контрольной группы при внесении в культуру нейтрофилов дозы иммобилизированных олигонуклеотидов 0,7 мкг/мл (табл.2). Также необходимо отметить, что при добавлении им-ОГН к нейтрофилам в различных дозах показатели фагоцитарной активности превышали контрольные значения, хотя и статистически незначимо, при этом по мере увеличения концентрации добавляемых им-ОГН фагоцитарный индекс снижался, а фагоцитарное число - повышалось.Example 2. Evaluation of the effect of immobilized oligonucleotides on phagocytosis of neutrophils in vitro. When im-OGN was added to healthy blood donors of peripheral blood neutrophils at various concentrations (0.07 μg / ml, 0.7 μg / ml and 7 μg / ml), a significant increase in the phagocytic number was observed relative to the control group when a dose of immobilized neutrophils was introduced into the culture oligonucleotides 0.7 μg / ml (table 2). It should also be noted that when im-OGN was added to neutrophils in various doses, the phagocytic activity indices exceeded the control values, although not statistically insignificantly, while with increasing concentration of im-OGN added, the phagocytic index decreased, and the phagocytic number increased.

Таблица 2
Оценка влияния иммобилизированных олигонуклеотидов в дозах 0,07 мкг/мл, 0,7 мкг/мл и 7 мкг/мл при их добавлении in vitro на фагоцитоз нейтрофилов периферической крови доноров

Figure 00000001
table 2
Evaluation of the effect of immobilized oligonucleotides at doses of 0.07 μg / ml, 0.7 μg / ml and 7 μg / ml when added in vitro to the donor peripheral blood phagocytosis
Figure 00000001
Исследуемые показателиResearch indicators Экспериментальные группыExperimental groups Группа 1 Контроль
(n=10)
Group 1 Control
(n = 10)
Группа 2
им-ОГН
(0,07 мкг/мл)
(n=10)
Group 2
im-ogn
(0.07 mcg / ml)
(n = 10)
Группа 3
им-ОГН
(0,7 мкг/мл)
(n=10)
Group 3
im-ogn
(0.7 mcg / ml)
(n = 10)
Группа 4
им-ОГН (7 мкг/мл)
(n=10)
Group 4
im-OGN (7 μg / ml)
(n = 10)
ФИ, %FI,% 26,90±2,6526.90 ± 2.65 35,50±3,5335.50 ± 3.53 33,80±3,3433.80 ± 3.34 32,10±3,0632.10 ± 3.06 ФЧFf 3,86±0,363.86 ± 0.36 4,73±0,414.73 ± 0.41 4,91±0,26
1-3Р<0,05
4.91 ± 0.26
1-3 P <0.05
5,09±0,505.09 ± 0.50
Примечание: n - количество доноров в группе.Note: n is the number of donors in the group.

Пример 3. Оценка влияния иммобилизированных олигонуклеотидов на синтез ИФН-γ мононуклеарами периферической крови. При добавлении им-ОГН статистически значимое усиление продукции ИФН-γ наблюдалось при дозе вносимого препарата 0,7 мкг/мл (табл.3). Спонтанная выработка исследуемого цитокина в этой группе была достоверно выше как по сравнению сExample 3. Evaluation of the effect of immobilized oligonucleotides on the synthesis of IFN-γ by peripheral blood mononuclear cells. When im-OGN was added, a statistically significant increase in the production of IFN-γ was observed at a dose of 0.7 μg / ml of the introduced drug (Table 3). The spontaneous production of the studied cytokine in this group was significantly higher than in comparison with

Таблица 3
Оценка влияния иммобилизированных олигонуклеотидов в дозах 0,07 мкг/мл, 0,7 мкг/мл и 7 мкг/мл при их добавлении in vitro в культуру мононуклеаров на синтез ИФН-γ

Figure 00000001
Table 3
Assessment of the effect of immobilized oligonucleotides at doses of 0.07 μg / ml, 0.7 μg / ml and 7 μg / ml when added in vitro to mononuclear culture on IFN-γ synthesis
Figure 00000001
Экспериментальные группыExperimental groups Концентрация цитокина (пг/мл)The concentration of cytokine (PG / ml) Группа 1 Контроль (без добавления препаратов) (n=10)Group 1 Control (no drug added) (n = 10) 9,64±1,179.64 ± 1.17 Группа 2 им-ОГН (0,07 мкг/мл) (n=10)Group 2 im-OGN (0.07 μg / ml) (n = 10) 10,31±1,1410.31 ± 1.14 Группа 3 им-ОГН (0,7 мкг/мл) (n=10)Group 3 im-OGN (0.7 μg / ml) (n = 10) 21,29±5,21
1-3Р<0,05
2-3Р<0,05
21.29 ± 5.21
1-3 P <0.05
2-3 P <0.05
Группа 4 им-ОГН (7 мкг/мл) (n=10)Group 4 im-OGN (7 μg / ml) (n = 10) 9,52±1,469.52 ± 1.46 Примечание: n - количество доноров в группе.Note: n is the number of donors in the group.

контролем, так и с группой, в которой им-ОГН добавлялись в дозе 0,07 мкг/мл.control, and with the group in which im-OGN was added at a dose of 0.07 μg / ml.

Пример 4. Изучение влияния иммобилизированных олигонуклеотидов на функциональную активность естественных киллеров мышей. После 14-дневного курсового введения им-ОГН в дозе 10 мг/кг функциональная активность естественных киллерных клеток мышей повышалась как по сравнению с фоном, так и с группой контроля при всех изученных соотношениях мишеней к эффекторам, но статистически незначимо (табл.4). При этом применение им-ОГН курсом в дозе 100 мг/кг достоверно усиливалоExample 4. The study of the effect of immobilized oligonucleotides on the functional activity of natural killer mice. After a 14-day course administration of im-OGN at a dose of 10 mg / kg, the functional activity of the natural killer cells of mice increased both in comparison with the background and the control group for all studied ratios of targets to effectors, but statistically insignificant (Table 4). Moreover, the use of im-OGN in a dose of 100 mg / kg significantly enhanced

Таблица 4
Оценка влияния курсового введения иммобилизированных олигонуклеотидов в дозах 10 мг/кг и 100 мг/кг на естественную киллерную активность (ЕКА) мышей линии CBA/CaLac

Figure 00000002
Table 4
Evaluation of the effect of course administration of immobilized oligonucleotides at doses of 10 mg / kg and 100 mg / kg on the natural killer activity (ESA) of CBA / CaLac mice
Figure 00000002
Исследуемые показателиResearch indicators Экспериментальные группыExperimental groups Группа 1
Фон (n=7)
Group 1
Background (n = 7)
Группа 2 Контроль (n=7)Group 2 Control (n = 7) Группа 3
им-ОГН
(10 мг/кг) (n=7)
Group 3
im-ogn
(10 mg / kg) (n = 7)
Группа 4
им-ОГН
(100 мг/кг) (n=7)
Group 4
im-ogn
(100 mg / kg) (n = 7)
ЕКА (%) соотношение мишеней: эффекторов 1:10ESA (%) target: effector ratio 1:10 35,70±2,6635.70 ± 2.66 32,67±1,4432.67 ± 1.44 38,90±3,3238.90 ± 3.32 38,86±2,43
2-4p<0,05
38.86 ± 2.43
2-4 p <0.05
ЕКА (%) соотношение мишеней: эффекторов 1:25ESA (%) target: effector ratio 1:25 35,24±2,2635.24 ± 2.26 34,20±1,2334.20 ± 1.23 39,61±2,5439.61 ± 2.54 39,36±1,55
2-4p<0,05
39.36 ± 1.55
2-4 p <0.05
ЕКА (%) соотношение мишеней: эффекторов 1:50ESA (%) target: effector ratio 1:50 37,49±1,5037.49 ± 1.50 37,60±1,4237.60 ± 1.42 42,68±2,7842.68 ± 2.78 49,32±4,47
1-4p<0,05
2-4p<0,05
49.32 ± 4.47
1-4 p <0.05
2-4 p <0.05
Примечание: n - количество животных в группе.Note: n is the number of animals in the group.

цитотоксическую активность ЕК экспериментальных животных по сравнению с контролем при всех изученных соотношениях мишеней к эффекторам, а при соотношении мишеней к эффекторам 1:50 функциональная активность естественных киллеров статистически значимо возрастала и по сравнению с фоном.the cytotoxic activity of the EC of experimental animals compared with the control for all studied ratios of targets to effectors, and at a ratio of targets to effectors of 1:50, the functional activity of natural killers increased statistically significantly compared to the background.

Пример 5. Исследование влияния иммобилизированных олигонуклеотидов на пролиферативную активность лимфоцитов. После 14-дневного курсового введения им-ОГН в дозе 10 мг/кг наблюдалось достоверное повышение спонтанной пролиферативной активности лимфоидных клеток экспериментальных животных как по сравнению с фоном, так и с группой контроля (табл.5). При этом индекс стимуляции (ИС) Т-лимфоцитов статистическиExample 5. The study of the effect of immobilized oligonucleotides on the proliferative activity of lymphocytes. After a 14-day course administration of im-OGN at a dose of 10 mg / kg, a significant increase in the spontaneous proliferative activity of lymphoid cells of experimental animals was observed both in comparison with the background and the control group (Table 5). In this case, the stimulation index (IS) of T-lymphocytes is statistically

Таблица 5
Оценка влияния курсового введения иммобилизированных олигонуклеотидов в дозах 10 мг/кг и 100 мг/кг на пролиферативную активность лимфоцитов мышей линии CBA/CaLac

Figure 00000003
Table 5
Evaluation of the effect of a course of administration of immobilized oligonucleotides at doses of 10 mg / kg and 100 mg / kg on the proliferative activity of lymphocytes of CBA / CaLac mice
Figure 00000003
Исследуемые показателиResearch indicators Группы экспериментальных животныхGroups of experimental animals Группа 1
Фон (n=7)
Group 1
Background (n = 7)
Группа 2 Контроль (n=7)Group 2 Control (n = 7) Группа 3
им-ОГН
(10 мг/кг) (n=7)
Group 3
im-ogn
(10 mg / kg) (n = 7)
Группа 4
им-ОГН
(100 мг/кг) (n=7)
Group 4
im-ogn
(100 mg / kg) (n = 7)
Спонтанная пролиферация (ед.опт.плот.)Spontaneous proliferation (unit density) 0,196±0,0160.196 ± 0.016 0,217±0,0050.217 ± 0.005 0,238±0,007
1-3р<0,05
2-3p<0,05
0.238 ± 0.007
1-3 p <0.05
2-3 p <0.05
0,206±0,006
3-4р<0,01
0.206 ± 0.006
3-4 p <0.01
ИС (ФГА)IS (FGA) 1,11±0,081.11 ± 0.08 1,06±0,021.06 ± 0.02 1,12±0,031.12 ± 0.03 1,23±0,161.23 ± 0.16 ИС (ЛПС)IP (LPS) 1,94±0,221.94 ± 0.22 1,53±0,151.53 ± 0.15 2,09±0,07
2-3р<0,01
2.09 ± 0.07
2-3 p <0.01
1,99±0,14
2-4p<0,05
1.99 ± 0.14
2-4 p <0.05
Примечание: n - количество животных в группе.Note: n is the number of animals in the group.

значимо не изменялся как в группе с применением им-ОГН в дозе 10 мг/кг, так и в дозе 100 мг/кг. Однако индекс стимуляции В-лимфоцитов в обеих опытных группах с курсовым введением им-ОГН в дозе 10 мг/кг и 100 мг/кг был достоверно выше соответствующего показателя контрольной группы.did not significantly change both in the group using im-OGN at a dose of 10 mg / kg, and at a dose of 100 mg / kg. However, the stimulation index of B-lymphocytes in both experimental groups with course administration of im-OGN at a dose of 10 mg / kg and 100 mg / kg was significantly higher than the corresponding indicator of the control group.

Пример 6. Исследование влияния иммобилизированных олигонуклеотидов на продукцию оксида азота в культуре перитонеальных макрофагах in vitro. Исследуемый препарат (табл.6) дозозависимо стимулировал продукцию оксида азота в концентрациях 3,3775 и 33,775 мкг/мл.Example 6. The study of the effect of immobilized oligonucleotides on the production of nitric oxide in a culture of peritoneal macrophages in vitro. The studied drug (Table 6) dose-dependently stimulated the production of nitric oxide at concentrations of 3.3775 and 33.775 μg / ml.

Таблица 6
Влияние иммобилизированных олигонуклеотидов на продукцию оксида азота перитонеальными макрофагами

Figure 00000004
Table 6
The effect of immobilized oligonucleotides on the production of nitric oxide by peritoneal macrophages
Figure 00000004
Концентрация
им-ОГН (мкг/мл)
Concentration
im-OGN (μg / ml)
NO (нитриты, мкМ)NO (nitrites, μm)
контроль(без добавления препарата)control (no drug added) 19,0±1,019.0 ± 1.0 0,000340,00034 21,4±1,921.4 ± 1.9 0,003380,00338 19,9±1,319.9 ± 1.3 0,033780,03378 19,7±1,519.7 ± 1.5 0,337750.33775 18,9±1,718.9 ± 1.7 3,377503,37750 27,0±2,5*27.0 ± 2.5 * 33,775033.7750 49,5±3,2*49.5 ± 3.2 * Примечание: * - достоверные различия с контролем (р<0,05).Note: * - significant differences with control (p <0.05).

Для выяснения роли рецептора TLR-9 в стимуляции оксида азота препаратом были использованы коммерческий лиганд TLR-9 (CpG-олигонуклеотид ODN1826) и блокатор TLR-9 (ингибиторный олигонуклеотид ODN2088). Результаты исследования представлены в таблице 7. Стимулирующее действие CpG-олигонуклеотида дозозависимо отменялось при блокировании рецептора TLR-9. Действие исследуемого препарата также отменялось ингибиторным олигонуклеотидом ODN2088.The commercial ligand TLR-9 (CpG oligonucleotide ODN1826) and the blocker TLR-9 (inhibitory oligonucleotide ODN2088) were used to clarify the role of the TLR-9 receptor in stimulation of nitric oxide by the preparation. The results of the study are presented in table 7. The stimulating effect of the CpG oligonucleotide was dose-dependently canceled when the TLR-9 receptor was blocked. The effect of the study drug was also canceled by the inhibitory oligonucleotide ODN2088.

Таким образом, исследуемый препарат обладает стимулирующим действием в отношении макрофагов. Это действие опосредуется макрофагальным рецептором TLR-9.Thus, the studied drug has a stimulating effect against macrophages. This action is mediated by the macrophage receptor TLR-9.

Таблица 7
Роль TLR-9 в стимуляции продукции оксида азота перитонеальными макрофагами иммобилизированными олигонуклеотидами

Figure 00000004
Table 7
The role of TLR-9 in stimulating nitric oxide production by peritoneal macrophages with immobilized oligonucleotides
Figure 00000004
Условия культивированияCultivation conditions Продукция оксида азота в присутствии:Nitric oxide production in the presence of: контроль-1control-1 2,5 мкМ лиганда TLR-92.5 μM ligand TLR-9 3,3775 мкг/мл им-ОГН3.3775 μg / ml im-OGN 33,775 мкг/мл им-ОГН33.775 μg / ml im-OGN - контроль-2- control-2 00 14,3±0,5*14.3 ± 0.5 * 6,7±1,0*6.7 ± 1.0 * 10,4±0,6*10.4 ± 0.6 * + блокатор TLR-9 1,25 мкМ+ TLR-9 blocker 1.25 μM 00 7,8±0,6*#7.8 ± 0.6 * # 0#0 # 4,0±0,5*#4.0 ± 0.5 * # + блокатор TLR-9 2,5 мкМ+ TLR-9 2.5 μM blocker 00 0#0 # 0#0 # 0#0 # Примечания: * - достоверные различия с контролем-1 (р<0,05);Notes: * - significant differences with control-1 (p <0.05); # - достоверные различия с контролем-2 (р<0,05).# - significant differences with control-2 (p <0.05).

Пример 7. Исследование влияние иммобилизированных олигонуклеотидов на восстановление кроветворения, подавленного введением 5-фторурацила. Введение им-ОГН способствовало значительному приросту абсолютного количества лейкоцитов в периферической крови в период постцитостатического восстановления гемопоэза (9-е, 11-е, 13-е сутки) (табл.8). Обнаруженный в опыте лейкоцитоз был следствием накопления числа лимфоцитов и нейтрофилов в указанные сроки. Курсовое введение исследуемого препарата в дозе 250 мг/кг увеличивало содержание незрелых (на 3-и и 5-е сутки) и зрелых (на 7-е сутки) форм нейтрофильных гранулоцитов в сравнении с аналогичными параметрами цитостатического контроля (табл.9). Курсовое введение им-ОГН способствовало увеличению количества ретикулоцитов (на 13-е сутки) и тромбоцитов (на 9-е и 13-е сутки) в периферической крови после применения 5-ФУ (табл.10, 11).Example 7. The study of the effect of immobilized oligonucleotides on the restoration of hematopoiesis, suppressed by the introduction of 5-fluorouracil. The introduction of im-OGN contributed to a significant increase in the absolute number of leukocytes in the peripheral blood during the post-cytostatic restoration of hematopoiesis (9th, 11th, 13th day) (Table 8). Leukocytosis found in the experiment was a consequence of the accumulation of the number of lymphocytes and neutrophils at the indicated times. The course administration of the studied drug at a dose of 250 mg / kg increased the content of immature (on the 3rd and 5th day) and mature (on the 7th day) forms of neutrophilic granulocytes in comparison with the same parameters of the cytostatic control (Table 9). The course administration of im-OGN contributed to an increase in the number of reticulocytes (on the 13th day) and platelets (on the 9th and 13th day) in the peripheral blood after application of 5-FU (Table 10, 11).

Figure 00000005
Figure 00000006
Figure 00000005
Figure 00000006

Таблица 10
Влияние препарата иммобилизированных олигонуклеотидов в дозе 250 мг/кг на динамику содержания ретикулоцитов в периферической крови мышей линии CBA/CaLac, получавших 5-фторурацил (‰)

Figure 00000001
Table 10
The effect of the preparation of immobilized oligonucleotides at a dose of 250 mg / kg on the dynamics of the content of reticulocytes in the peripheral blood of CBA / CaLac mice treated with 5-fluorouracil (‰)
Figure 00000001
Сроки исследования, суткиStudy time, days Экспериментальные группыExperimental groups 5-фторурацил5-fluorouracil Иммобилизированные олигонуклеотидыImmobilized Oligonucleotides Интактный контрольIntact control 30,17±1,9230.17 ± 1.92 30,17±1,9230.17 ± 1.92 33 16,29±1,38*16.29 ± 1.38 * 13,57±1,19*13.57 ± 1.19 * 55 15,5±3,06*15.5 ± 3.06 * 14,78±3,10*14.78 ± 3.10 * 77 11,78±1,25*11.78 ± 1.25 * 14,20±1,40*14.20 ± 1.40 * 99 17,56±1,23*17.56 ± 1.23 * 18,16±1,36*18.16 ± 1.36 * 11eleven 22,85±2,73*22.85 ± 2.73 * 18,65±2,07*
Р<0,02
18.65 ± 2.07 *
P <0.02
1313 17,93±5,58*17.93 ± 5.58 * 31,59±3,45
Р<0,02
31.59 ± 3.45
P <0.02

Figure 00000007
Figure 00000007

Таким образом, использование предложенного способа физической иммобилизации олигонуклеотидов ДНК молок лососевых рыб на полиэтиленоксиде, массой 1,5 кДа, позволяет получить препарат для перорального применения, который проявляет существенную иммуностимулирующую активность, которая выражается в стимуляции фагоцитарных реакций in vivo и in vitro, повышении продукции ИФН-γ in vitro, усилении цитотоксической активности естественных киллеров, повышении спонтанной пролиферативной активности лимфоидных клеток экспериментальных животных и индекса стимуляции В-лимфоцитов, повышении продукции оксида азота, а также гемостимулирующие свойства при введении per os.Thus, the use of the proposed method for the physical immobilization of oligonucleotides of DNA of salmon milk on polyethylene oxide, weighing 1.5 kDa, allows you to get a drug for oral administration, which exhibits significant immunostimulating activity, which is expressed in stimulation of phagocytic reactions in vivo and in vitro, increasing the production of IFN -γ in vitro, increased cytotoxic activity of natural killers, increased spontaneous proliferative activity of lymphoid cells in experimental animals and index timulyatsii B-lymphocytes, enhancing nitric oxide production, and hemostimulating properties when administered per os.

Источники литературыSources of literature

1. Гончаров А.Г., Фрейдлин И.С., Смирнов B.C. и др. Основы клинической иммунологии и методологические подходы к оценке иммунного статуса: Практикум. - Калининград: Изд-во КГУ, 1997. - 73 с.1. Goncharov A.G., Freidlin I.S., Smirnov B.C. et al. Fundamentals of clinical immunology and methodological approaches to assessing the immune status: Workshop. - Kaliningrad: KSU Publishing House, 1997 .-- 73 p.

2. Гершанович М.Л., Филов В.А., Акимов М.А., Акимов А.А. Введению в фармакотерапию злокачественных опухолей. - Санкт-Петербург, 1999. - 143 с.2. Gershanovich M.L., Filov V.A., Akimov M.A., Akimov A.A. Introduction to the pharmacotherapy of malignant tumors. - St. Petersburg, 1999 .-- 143 p.

3. Пашук Л.К., Апрышко Г.Н., Трещалина Е.М. Препараты ДНК как потенциальные терапевтические средства // Хим.-фарм. журнал. - 1995. - №6. - С.61-64.3. Pashuk L.K., Apryshko G.N., Treshchalina E.M. DNA preparations as potential therapeutic agents // Chem.-farm. Journal. - 1995. - No. 6. - S. 61-64.

4. Рыкова Е.Ю., Лактионов П.П., Власов В.В. Активирующее влияние ДНК на иммунную систему // Успехи современной биологии. - 2001. - №121. - С.160-171.4. Rykova E.Yu., Laktionov P.P., Vlasov V.V. The activating effect of DNA on the immune system // Successes in modern biology. - 2001. - No. 121. - S.160-171.

5. Сейфулла Р.Д., Тимофеев А.Б., Орджоникидзе З.Г. и др. Проблемы использования нанотехнологии в фармакологии // Эксперим. и клиническая фармакология. - 2008. - Т.71, №1. - С.61-69.5. Seyfulla R. D., Timofeev A. B., Ordzhonikidze Z. G. et al. Problems of the use of nanotechnology in pharmacology // Exper. and clinical pharmacology. - 2008. - T. 71, No. 1. - S. 61-69.

6. Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ.- М., 2005 - 832 с.6. Guidance on the experimental (preclinical) study of new pharmacological substances. - M., 2005 - 832 p.

7. Кузовкова Н.А. Оценка активности естественных киллеров колориметрическим методом // Иммунология. - 1991. - №4. - С.59-61.7. Kuzovkova N.A. Assessment of the activity of natural killers by the colorimetric method // Immunology. - 1991. - No. 4. - S. 59-61.

8. Scudiero P.A. et al. // Cancer Res. - 1988. - Vol.48. - P.4827-4833.8. Scudiero P.A. et al. // Cancer Res. - 1988. - Vol. 48. - P. 4827-4833.

9. Green L.C., Wagner D.A., Glogowski J. Analysis of nitrate, nitrit and nitrat in biological fluids // Anal. Biochem. - 1982. - V.126. - P.131-138.9. Green L.C., Wagner D.A., Glogowski J. Analysis of nitrate, nitrit and nitrat in biological fluids // Anal. Biochem. - 1982. - V.126. - P.131-138.

10. Лабораторные методы исследования в клинике: Справочник / Под ред. В.В.Меньшикова. - М.: Медицина, 1987. - 368 с.10. Laboratory research methods in the clinic: Handbook / Ed. V.V. Menshikova. - M .: Medicine, 1987 .-- 368 p.

11. Гольдберг Е.Д., Дыгай A.M., Шахов В.П. Методы культуры ткани в гематологии. - Томск: Изд-во ТГУ, 1992. - 272 с.11. Goldberg E.D., Dygay A.M., Shakhov V.P. Methods of tissue culture in hematology. - Tomsk: Publishing house of TSU, 1992. - 272 p.

Claims (1)

Применение иммобилизированных олигонуклеотидов, представляющих собой фрагменты ДНК молекулярной массой 500-700 кДа, высокоочищенные протеолитическими ферментами, полученные из экстракта молок лососевых, иммобилизованных на полиэтиленоксиде путем облучения 10%-ного водного раствора полиэтиленоксида с молекулярной массой 1,5 кДа потоком ускоренных электронов в дозе 1,5 Мрад и внесения в облученный раствор олигонуклеотидов ДНК молок лососевых рыб до конечной концентрации 10 мг в 1 мл, в качестве иммуностимулирующего и гемостимулирующего средства для перорального введения. The use of immobilized oligonucleotides, which are DNA fragments with a molecular weight of 500-700 kDa, highly purified by proteolytic enzymes, obtained from an extract of salmon milk immobilized on polyethylene oxide by irradiating a 10% aqueous solution of polyethylene oxide with a molecular weight of 1.5 kDa with a stream of accelerated electrons in a dose of 1 , 5 Mrad and introducing salmon fish milk DNA into an irradiated solution of oligonucleotides to a final concentration of 10 mg in 1 ml, as an immunostimulating and hemostimulating medium for oral administration.
RU2009142183/15A 2009-11-16 2009-11-16 Medication possessing immunostimulating and hemostimulating action RU2414223C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2009142183/15A RU2414223C1 (en) 2009-11-16 2009-11-16 Medication possessing immunostimulating and hemostimulating action

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2009142183/15A RU2414223C1 (en) 2009-11-16 2009-11-16 Medication possessing immunostimulating and hemostimulating action

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2414223C1 true RU2414223C1 (en) 2011-03-20

Family

ID=44053567

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2009142183/15A RU2414223C1 (en) 2009-11-16 2009-11-16 Medication possessing immunostimulating and hemostimulating action

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2414223C1 (en)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2663285C2 (en) * 2017-01-31 2018-08-03 Общество с ограниченной ответственностью "Саентифик Фьючер Менеджмент" (ООО "СФМ") Hemostimulating agent, and a method for preparation thereof
RU2779914C1 (en) * 2022-04-06 2022-09-15 Общество с ограниченной ответственностью "БИОМАН" Method for producing dna-containing preparation for oral use and preparation obtained by this method

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Сейфулла Р.Д. и др. Проблемы использования нанотехнологии в фармакологии. Экспериментальная и клиническая фармакология, 2008, т.71, январь-февраль, №1, с.61-69. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2663285C2 (en) * 2017-01-31 2018-08-03 Общество с ограниченной ответственностью "Саентифик Фьючер Менеджмент" (ООО "СФМ") Hemostimulating agent, and a method for preparation thereof
RU2779914C1 (en) * 2022-04-06 2022-09-15 Общество с ограниченной ответственностью "БИОМАН" Method for producing dna-containing preparation for oral use and preparation obtained by this method

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP5409710B2 (en) Composition for reducing postoperative complications of cardiopulmonary bypass (CPB) surgery
JP6359013B2 (en) Inhibitor of apoptosis-related spec-like card protein containing 1,5-D-anhydrofructose
KR100420377B1 (en) New Uses of Lysozyme Dimers
RU2414223C1 (en) Medication possessing immunostimulating and hemostimulating action
RU2145875C1 (en) Using lysozyme dimer as drug and compositions containing thereof
AU662883B2 (en) Use of trinitrobenzenes or carminic acid in the treatment of cancer or viral diseases
ES2575534T3 (en) Remedy
CN110755638A (en) Bone-targeting drug carrier and preparation method and application thereof
RU2486896C1 (en) Method of obtaining medication for activation of non-specific resistance, prevention and therapy of diseases in young agricultural animals
CN103154012B (en) The sugared dendrimer of poly-propyl ether imines
KR20060038387A (en) A method for treating cancer patients undergoing chemotherapy
EP2606885B1 (en) Medicinal preparation &#34;renessans&#34; having an antibacterial, anti-ulcerous and immuno-modulating action
RU2414926C1 (en) Hemostimulant and excitant and method for hemopoiesis stimulation
RU2328272C2 (en) Interferon inductor suppositories
RU2206326C2 (en) Application of sodium nucleospermate for treatment of hiv-infection and method of treatment
CA2380908A1 (en) Plasma substitute composition
Di Luzio et al. Glucans as Immunomodulators
JP5628466B2 (en) Aqueous solutions for the treatment of degenerative or autoimmune diseases and / or as immunomodulators
RU2527329C2 (en) Method for producing combination immunometabolic preparation with anti-infectious activity
RU2486897C1 (en) Method of obtaining immunotropic medication for prevention and treatment of inflammatory processes of agricultural animals
WO2002074311A1 (en) Antitumoral, antiviral, antibacterial, antiparasitic, anti-inflammatory, immunomodulatory and antimicotic medicinal preparation, method for production and dosage forms thereof
RU2329054C1 (en) Method of blood corpuscle antibiotics saturation
RU2277418C1 (en) Preparation for treating bronchopneumonia in calves
CN116785283A (en) Nanoparticle, nano preparation, and preparation method and application thereof
MXPA97005246A (en) New applications of dimero de lisoz