RU2366178C1 - Method of obtaining preparation based on microfungi chlamydospores for vegetation and animal parasitic nematode control - Google Patents
Method of obtaining preparation based on microfungi chlamydospores for vegetation and animal parasitic nematode control Download PDFInfo
- Publication number
- RU2366178C1 RU2366178C1 RU2008100897/13A RU2008100897A RU2366178C1 RU 2366178 C1 RU2366178 C1 RU 2366178C1 RU 2008100897/13 A RU2008100897/13 A RU 2008100897/13A RU 2008100897 A RU2008100897 A RU 2008100897A RU 2366178 C1 RU2366178 C1 RU 2366178C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- chlamydospores
- mycelial mass
- preparation
- vermiculite
- vegetative
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Cultivation Of Plants (AREA)
- Fertilizers (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к способам получения препарата на основе хламидоспор микроскопического нематофагового гриба Duddingtonia flagrans в жидкой или сухой форме, который может быть использован в микробиологии и сельском хозяйстве для борьбы с паразитическими нематодами растений и животных.The invention relates to methods for producing a preparation based on chlamydospores of the microscopic nematophagous fungus Duddingtonia flagrans in liquid or dry form, which can be used in microbiology and agriculture for controlling parasitic nematodes of plants and animals.
Известен способ получения спор грибов в жидкой культуре (патент Японии 2003079362, МПК A01N 63/04, опубл. 18.03.2003), в котором процесс спорообразования в грибной культуре запускается при недостатке питательных веществ в среде, т.е. для поддержания процесса спорообразования достаточно не добавлять компонентов питания после их исчерпания в питательной среде, не допуская размножения вегетативных клеток мицелия.A known method for producing fungal spores in liquid culture (Japanese Patent 2003079362, IPC A01N 63/04, published March 18, 2003), in which the process of spore formation in fungal culture is started when there is a lack of nutrients in the medium, i.e. To maintain the process of spore formation, it is enough not to add food components after they are exhausted in a nutrient medium, preventing the propagation of vegetative mycelial cells.
Однако у грибов Duddingtonia flagrans при исчерпании питательных веществ в среде формируется очень мало хламидоспор (см. таблицу 1), т.е. указанный способ не эффективен для использования в производстве препаратов на основе хламидоспор микроскопического нематофагового гриба Duddingtonia flagrans.However, in Duddingtonia flagrans fungi, when nutrients are exhausted, very few chlamydospores are formed in the medium (see table 1), i.e. this method is not effective for use in the manufacture of preparations based on chlamydospores of the microscopic nematophage fungus Duddingtonia flagrans.
Известен способ выращивания мицелиальных форм микроорганизмов на носителе (патент РФ №1169359, СПК С12N 3/00, опубл. 10.07.1999), предполагающий периодическое погружение носителя в питательную среду.A known method of growing mycelial forms of microorganisms on a carrier (RF patent No. 1169359, SEC C12N 3/00, publ. 07/10/1999), involving periodic immersion of the carrier in a nutrient medium.
Однако реализация данного способа требует сложного аппаратного обеспечения. Необходимость периодического погружения носителя в питательную среду вызвана недостаточной влагоемкостью использованных носителей. Недостаток воды и питательных веществ, адсорбированных в материале носителя, приводит к снижению урожая спор, что компенсируется периодическими погружениями в питательную среду.However, the implementation of this method requires complex hardware. The need for periodic immersion of the carrier in a nutrient medium is caused by the insufficient moisture capacity of the used carriers. The lack of water and nutrients adsorbed in the material of the carrier leads to a decrease in the yield of spores, which is offset by periodic immersion in a nutrient medium.
Наиболее близким аналогом (прототипом) является способ получения триходермина путем глубинного культивирования микроскопического гриба Trichoderma lignorum на питательной среде (патент РФ №2035145, МПК А01М 63/04, Опубл. 20.05.1995), содержащей источники углерода, органического азота, фосфаты, сернокислый магний, азотнокислый аммоний и воду, с последующим концентрированием культуральной жидкости. В качестве источника углерода используют глицерин и зеленую патоку, в качестве источника органического азота - гидролизат белково-витаминного концентрата при следующем соотношении компонентов в среде, мас.%:The closest analogue (prototype) is a method for producing trichodermin by deep cultivation of the microscopic fungus Trichoderma lignorum on a nutrient medium (RF patent No. 2035145, IPC A01M 63/04, publ. 05.20.1995) containing sources of carbon, organic nitrogen, phosphates, magnesium sulfate , ammonium nitrate and water, followed by concentration of the culture fluid. Glycerin and green molasses are used as a carbon source, and a protein-vitamin concentrate hydrolyzate is used as a source of organic nitrogen in the following ratio of components in the medium, wt.%:
Глицерин 0,3-2,0Glycerin 0.3-2.0
Зеленая патока 0,5-3,0Green molasses 0.5-3.0
Гидролизат белково-витаминного концентрата 3,0-10,0The hydrolyzate of protein-vitamin concentrate 3.0-10.0
Фосфаты 0,2-0,6Phosphates 0.2-0.6
Сернокислый магний 0,3-0,5Magnesium sulfate 0.3-0.5
Азотнокислый аммоний 0,3-0,6Ammonium nitrate 0.3-0.6
Вода - Остальное.Water - The rest.
В процессе культивирования при естественном снижении рН культуральной жидкости до 3,0-4,5 дополнительно вводят глицерин в количестве 0,3-1,0 мас.%. Культивирование гриба проводят до максимального накопления мицелиальной массы или спорообразования, концентрирование культуральной жидкости осуществляют до содержания сухих веществ 6-10%, в концентрат вводят 4-10 мас.% глицерина и 0,1-1,0 мас.% полиэтиленоксида или 1-3 мас.% поливинилпироллидона. Культивирование гриба проводят до максимального спорообразования, концентрирование культуральной жидкости осуществляют до содержания сухих веществ 20-30 мас.%, в концентрат вводят смесь цеолита типа NaX и монтмориллонита или полыгорскита в соотношении 1:2 в количестве 10-30 мас.% к сухим веществам. Полученную смесь гранулируют и высушивают. Титр хламидоспор в жидком препарате составляет 108 спор в 1 мл, а в сухой форме 109 спор в 1 г.In the process of cultivation with a natural decrease in the pH of the culture fluid to 3.0-4.5, glycerol is additionally introduced in an amount of 0.3-1.0 wt.%. The cultivation of the fungus is carried out until the maximum accumulation of mycelial mass or spore formation, the concentration of the culture fluid is carried out to a solids content of 6-10%, 4-10 wt.% Glycerol and 0.1-1.0 wt.% Polyethylene oxide or 1-3 are introduced into the concentrate wt.% polyvinylpyrrolidone. The cultivation of the fungus is carried out to the maximum spore formation, the concentration of the culture fluid is carried out to a dry matter content of 20-30 wt.%, A mixture of NaX type zeolite and montmorillonite or polygorskite in a ratio of 1: 2 in an amount of 10-30 wt.% To dry substances is introduced into the concentrate. The resulting mixture was granulated and dried. The titer of chlamydospores in a liquid preparation is 10 8 spores in 1 ml, and in dry form 10 9 spores in 1 g.
Однако при использовании выше описанной технологии для получения препарата на основе хламидоспор микроскопического нематофагового гриба Duddingtonia flagrans не обеспечивается высокий титр микроскопического гриба: в жидкой форме не более 103 спор/мл, а в сухой форме - не более 104 спор/г. Это обусловлено биологическими различиями грибов Trichoderma lignorum и Duddingtonia flagrans. В частности, отличаются условия процесса спорообразования, а размеры спор D. flagrans более чем на порядок превышают размеры спор Т. lignorum. Использование цеолита, монтмориллонита или полыгорскита также нецелесообразно из-за малой сорбционной емкости указанных носителей.However, when using the technology described above to obtain a preparation based on chlamydospores of the microscopic nematophagous fungus Duddingtonia flagrans, a high titer of the microscopic fungus is not ensured: in liquid form no more than 10 3 spores / ml, and in dry form - no more than 10 4 spores / g. This is due to biological differences between the fungi Trichoderma lignorum and Duddingtonia flagrans. In particular, the conditions of the process of spore formation differ, and the size of D. flagrans spores exceeds the size of T. lignorum spores by more than an order of magnitude. The use of zeolite, montmorillonite or polygorskite is also impractical due to the low sorption capacity of these carriers.
Техническим результатом предлагаемого изобретения является создание технологии получения препарата на основе хламидоспор микроскопического нематофагового гриба Duddingtonia flagrans в жидкой и сухой форме с более высоким титром путем использования более эффективных добавок (индукторов спорообразования) на стадии образования хламидоспор указанного нематофагового гриба.The technical result of the invention is the creation of a technology for producing a preparation based on chlamydospores of the microscopic nematophagous fungus Duddingtonia flagrans in liquid and dry form with a higher titer by using more effective additives (spore formation inducers) at the stage of formation of chlamydospores of the indicated nematophagous fungus.
Указанный технический результат достигается тем, что в способе получения препарата на основе хламидоспор микроскопического гриба для борьбы с паразитическими нематодами растений и животных, включающем его глубинное культивирование на питательной среде, содержащей источники углерода и органического азота, соли и воду, до максимального накопления вегетативной мицелиальной массы, введение индукторов спорообразования с последующим получением хламидоспор, согласно изобретению в качестве микроскопического гриба используют штамм Duddingtonia flagrans F-882, глубинное культивирование осуществляют в биореакторе до достижения содержания биомассы по сухому веществу не менее 10 г/л, при получении препарата на основе хламидоспор в жидкой форме в качестве индуктора спорообразования вводят воду, разбавляя вегетативную мицелиальную массу в 2-5 раз, и/или добавляют глицерин до конечной концентрации 1-2 мас.% и биомассу инкубируют до максимального содержания хламидоспор в жидкой форме, а при получении препарата хламидоспор в сухой форме в качестве индуктора спорообразования вводят в вегетативную мицелиальную массу стерильный вспученный вермикулит в соотношении 1,0-4,0 мл мицелиальной массы на 1 г вспученного вермикулита, перемешивают и полученную смесь инкубируют до получения хламидоспор.The specified technical result is achieved by the fact that in the method for producing a preparation based on chlamydospores of a microscopic fungus for controlling parasitic nematodes of plants and animals, including its deep cultivation on a nutrient medium containing sources of carbon and organic nitrogen, salt and water, to the maximum accumulation of vegetative mycelial mass , the introduction of inducers of spore formation, followed by obtaining chlamydospores, according to the invention, the strain Duddingtoni is used as a microscopic fungus a flagrans F-882, deep cultivation is carried out in a bioreactor until a dry matter biomass content of at least 10 g / l is reached; upon receipt of a preparation based on chlamydospores in liquid form, water is introduced as a spore formation inducer, diluting the vegetative mycelial mass 2-5 times and / or glycerin is added to a final concentration of 1-2 wt.% and the biomass is incubated to the maximum content of chlamydospores in liquid form, and upon receipt of the drug, chlamydospores in dry form are introduced into the vegetative as an inducer of spore formation sterile expanded vermiculite in the ratio of 1.0-4.0 ml of mycelial mass per 1 g of expanded vermiculite, mix and the resulting mixture is incubated to obtain chlamydospores.
Глубинное культивирование указанного штамма Duddingtonia flagrans F-882 в биореакторе осуществляют 40-50 часов при температуре +28±2°С, интенсивном перемешивании и аэрации.The deep cultivation of the indicated strain of Duddingtonia flagrans F-882 in the bioreactor is carried out 40-50 hours at a temperature of + 28 ± 2 ° C, vigorous stirring and aeration.
При получении хламидоспор в жидкой форме дополнительное инкубирование осуществляют в биореакторе в течение 4-7 суток при температуре +28°С.Upon receipt of chlamydospores in liquid form, additional incubation is carried out in the bioreactor for 4-7 days at a temperature of + 28 ° C.
При получении хламидоспор в сухой форме дополнительное инкубирование смеси мицелиальной массы со вспученным вермикулитом осуществляют при температуре +28°С в течение 4-10 суток.Upon receipt of chlamydospores in dry form, additional incubation of a mixture of mycelial mass with expanded vermiculite is carried out at a temperature of + 28 ° C for 4-10 days.
При получении хламидоспор в сухой форме вегетативную мицелиальную массу перед смешиванием со вспученным вермикулитом концентрируют, например, в 5 раз.Upon receipt of chlamydospores in dry form, the vegetative mycelial mass is concentrated, for example, by a factor of 5, before mixing with expanded vermiculite.
При получении хламидоспор в сухой форме в полученную вегетативную мицелиальную массу гриба перед смешиванием со вспученным вермикулитом добавляют глицерин, или мелассу, или крахмал, или муку в количестве от 2,0 до 12,0 мас.%.Upon receipt of chlamydospores in dry form, glycerin, or molasses, or starch, or flour in an amount of from 2.0 to 12.0 wt.% Are added to the obtained vegetative mycelial mass of the fungus before mixing with expanded vermiculite.
Штамм гриба Duddingtonia flagrans T-89 выделен из почвы тепличного комбината «Кировец» г.Новосибирска в 1989 г., депонирован в коллекции микроорганизмов НИИ коллекции культур микроорганизмов ФГУН ГНЦ ВБ «Вектор» Роспотребнадзора (р.п.Кольцове, Новосибирская область) под номером F-882 и защищен патентом РФ №2253671, МПК8 С12N 1/14, А01N 63/00, опубл. 27.11.2004.The strain of the fungus Duddingtonia flagrans T-89 was isolated from the soil of the Kirovets greenhouse plant in Novosibirsk in 1989, and was deposited in the microorganism collection institute of the Microorganism Culture Research Institute of the Federal Research Center of Scientific Research of the Scientific and Production Center “Vector” of the Federal Service for Supervision of Consumer Rights Protection and Human Welfare (Koltsove, Novosibirsk Region) under the number F-882 and is protected by RF patent No. 2253671, IPC 8 C12N 1/14, A01N 63/00, publ. 11/27/2004.
Штамм характеризуется:The strain is characterized by:
- образованием в поверхностной культуре на различных твердых (агаризованных и сыпучих) средах спороношения преимущественно в виде хламидоспор, имеющих толстую оболочку;- the formation in surface culture on various solid (agarized and granular) sporulation media mainly in the form of chlamydospores having a thick shell;
- хламидоспоры хранятся в сухом состоянии без потери исходных свойств гриба и жизнеспособности не менее двух лет, легко восстанавливаются даже после 10-летнего хранения при помещении культуры в суспензию нематод, которые стимулируют прорастание хламидоспор;- chlamydospores are stored in a dry state without loss of the initial properties of the fungus and viability of at least two years, are easily restored even after 10 years of storage when placing the culture in a suspension of nematodes, which stimulate the germination of chlamydospores;
- обладает высокой эффективностью по отношению к разным нематодам, проявляет длительность действия. Штамм обладает высокой эффективностью в уничтожении галловых нематод растений, возбудителей гельминтозов животных, способностью сохранять жизнеспособность без потери свойств как при прохождении через желудочно-кишечный тракт животных, так и в условиях почвы, а также обладает свойством стимулировать рост и развитие растений.- has high efficiency in relation to different nematodes, exhibits a duration of action. The strain is highly effective in the destruction of gall nematodes of plants, pathogens of helminth infections of animals, the ability to maintain viability without loss of properties both when passing through the gastrointestinal tract of animals and in soil conditions, and also has the property of stimulating plant growth and development.
Вспученный вермикулит представляет собой сыпучий пористый материал в виде чешуйчатых частиц серебристого и золотистого цветов, получаемых ускоренным обжигом (до температуры 600°÷1000°С) до вспучивания вермикулита - гидрослюды, содержащей между элементарными слоями связанную воду. Пар, образующийся из этой воды, действует перпендикулярно плоскостям спайности и раздвигает пластинки слюды, увеличивая первоначальный объем зерен в 18÷25 раз. Плотность вспученного вермикулита составляет 70÷150 г/л. Вспученный вермикулит способен абсорбировать до 400% воды, т.е. на 1 г вермикулита можно наносить до 4 мл культуральной жидкости, и при этом свободная жидкость отсутствует. К достоинствам вспученного вермикулита можно отнести также отсутствие токсичности и практическую стерильность благодаря высокотемпературной обработке природного материала. В частности, его используют для улучшения структуры почвы и в качестве субстрата при гидропонном выращивании растений. Благодаря высокой сорбционной емкости вспученного вермикулита можно варьировать количество наносимого посевного материала и питательных веществ в широком диапазоне.Expanded vermiculite is a loose porous material in the form of flake particles of silver and golden colors, obtained by accelerated firing (up to a temperature of 600 ° ÷ 1000 ° C) before expanding vermiculite - hydromica, containing bound water between the elementary layers. The steam generated from this water acts perpendicular to cleavage planes and pushes mica plates, increasing the initial grain volume by 18–25 times. The density of expanded vermiculite is 70 ÷ 150 g / l. Expanded vermiculite is able to absorb up to 400% of water, i.e. per 1 g of vermiculite can be applied up to 4 ml of culture fluid, and there is no free fluid. The advantages of expanded vermiculite include the absence of toxicity and practical sterility due to the high-temperature processing of natural material. In particular, it is used to improve the structure of the soil and as a substrate in hydroponic plant cultivation. Due to the high sorption capacity of expanded vermiculite, the amount of applied seed and nutrients can be varied over a wide range.
Описание способа получения препарата на основе хламидоспор микроскопического нематофагового гриба в жидкой или сухой формеDescription of a method for producing a preparation based on chlamydospores of a microscopic nematophage fungus in liquid or dry form
Готовят стерильную питательную среду, содержащую источники углерода и органического азота, соли и воду, а также 2-х суточный посевной материал штамма F-882 гриба вида Duddingtonia flagrans. Процесс культивирования проводят в биореакторе при температуре 28°С, в условиях интенсивного перемешивания и аэрации. Культивирование осуществляют до достижения содержания биомассы по сухому веществу не менее 10,0 г/л (40-50 часов).A sterile nutrient medium is prepared containing sources of carbon and organic nitrogen, salts and water, as well as a 2-day seed of strain F-882 of the fungus of the species Duddingtonia flagrans. The cultivation process is carried out in a bioreactor at a temperature of 28 ° C, under conditions of intensive mixing and aeration. Cultivation is carried out until the biomass content of the dry matter is not less than 10.0 g / l (40-50 hours).
При получении препарата на основе хламидоспор в жидкой форме в вегетативную мицелиальную массу вводят индуктор спорообразования, в качестве которого используют воду, разбавляя ею вегетативную мицелиальную массу в 2-5 раз, и/или добавляют глицерин до конечной концентрации 1-2 мас.%. Далее биомассу дополнительно инкубируют в биореакторе в течение 4-7 суток при температуре +28°С, интенсивном перемешивании и аэрации до максимального накопления хламидоспор в культуре.Upon receipt of the drug based on chlamydospores in liquid form, a spore formation inducer is introduced into the vegetative mycelial mass, water is used as it, diluting the vegetative mycelial mass 2-5 times with it, and / or glycerin is added to a final concentration of 1-2 wt.%. Next, the biomass is additionally incubated in the bioreactor for 4-7 days at a temperature of + 28 ° C, vigorous stirring and aeration to the maximum accumulation of chlamydospores in the culture.
При получении препарата хламидоспор в сухой форме в вегетативную мицелиальную массу вводят индуктор спорообразования, в качестве которого используют стерильный вспученный вермикулит в соотношении 1,0-4,0 мл мицелиальной массы на 1 г вспученного вермикулита, перемешивают и полученную смесь дополнительно инкубируют при температуре +28°С в течение 10 суток до получения хламидоспор. Полученный влажный препарат высушивают. Влажность готового препарата должна быть не более 12%. Количество хламидоспор достигает (2÷4)*106 спор/г сухого препарата.Upon receipt of the preparation of chlamydospores in dry form, a spore formation inducer is introduced into the vegetative mycelial mass, using sterile expanded vermiculite in a ratio of 1.0-4.0 ml of mycelial mass per 1 g of expanded vermiculite, mixed and the resulting mixture is further incubated at a temperature of +28 ° C for 10 days to obtain chlamydospores. The resulting wet preparation is dried. The moisture content of the finished product should be no more than 12%. The amount of chlamydospores reaches (2 ÷ 4) * 10 6 spores / g of dry preparation.
При получении хламидоспор в сухой форме вегетативную мицелиальную массу перед смешиванием со вспученным вермикулитом концентрируют в 5 раз.Upon receipt of chlamydospores in dry form, the vegetative mycelial mass is concentrated 5 times before mixing with expanded vermiculite.
При получении хламидоспор в сухой форме для повышения титра хламидоспор в полученную вегетативную мицелиальную массу гриба перед смешиванием со вспученным вермикулитом добавляют источник углерода глицерин, или мелассу, или крахмал, или муку в количестве от 2,0 до 12,0 мас.%.Upon receipt of chlamydospores in dry form to increase the titer of chlamydospores, the carbon source glycerin, or molasses, or starch, or flour in an amount of from 2.0 to 12.0 wt.% Is added to the obtained vegetative mycelial mass of the fungus before mixing with expanded vermiculite.
Ниже приведены конкретные примеры выполнения способа.The following are specific examples of the method.
Пример 1. Наработку вегетативного мицелия (первая стадия) штамма D. flagrans F-882 производили в 5 л вихревом биореакторе БИОК - 022 с. Культивирование проводили в питательной среде следующего состава:Example 1. The accumulation of the vegetative mycelium (first stage) of the D. flagrans F-882 strain was performed in a 5 L BIOK vortex bioreactor - 022 s. Cultivation was carried out in a nutrient medium of the following composition:
Доводили рН до 6,8.The pH was adjusted to 6.8.
В биореактор загружали 4 л питательной среды и 400 мл инокулята - 2-х суточной культуры F-882. Культивирование продолжалось в течение 48 часов, при условиях, указанных ниже:4 l of culture medium and 400 ml of inoculum, a 2-day F-882 culture, were loaded into the bioreactor. Cultivation continued for 48 hours, under the conditions indicated below:
- аэрация - 6 л/мин,- aeration - 6 l / min,
- скорость вращения активатора - 2000 об./мин,- activator rotation speed - 2000 rpm,
- температура - +28°С.- temperature - + 28 ° С.
В конце культивирования получили культуральную жидкость, содержащую 12 г/л вегетативного мицелия, по сухому весу.At the end of the cultivation, a culture fluid containing 12 g / l of vegetative mycelium was obtained by dry weight.
Пример 2. Исследовали зависимость урожая хламидоспор от степени разбавления культуральной жидкости (КЖ). Вегетативный мицелий был получен, как описано в примере 1. КЖ разводили стерильной водопроводной водой и разливали по 100 мл в колбы объемом 0,5 л. Образцы инкубировали на качалке (при 180 об./мин, +28°С) в течение 4 суток. Отбирали пробы, гомогенизировали и подсчитывали концентрацию хламидоспор. Результаты приведены в таблице 1.Example 2. Investigated the dependence of the harvest of chlamydospores on the degree of dilution of the culture fluid (QOL). Vegetative mycelium was obtained as described in example 1. QOL was diluted with sterile tap water and poured into 100 ml flasks in a volume of 0.5 L. Samples were incubated on a shaker (at 180 rpm, + 28 ° C) for 4 days. Samples were taken, homogenized and the concentration of chlamydospores was counted. The results are shown in table 1.
Данные по содержанию хламидоспор в зависимости от разбавления водойTable 1
Chlamydospore content according to dilution with water
В таблице 1 приведены значения, усредненные по трем повторностям, отклонения от среднего в пределах 10%.Table 1 shows the values averaged over three replicates, deviations from the average within 10%.
Хламидоспоры образуются также в неразбавленной культуральной жидкости (КЖ), но их очень мало. Разбавление культуральной жидкости водой стимулирует процесс спорообразования так, что выход хламидоспор с 1 мл КЖ увеличивается в 23-68 раз по сравнению с неразбавленной КЖ. Чем больше степень разбавления КЖ, тем выше урожай хламидоспор, образующихся из вегетативного мицелия. Вероятно роль пускового фактора для процесса спорообразования играет резкое уменьшение концентрации питательных веществ в среде. Чем выше степень разбавления, тем сильнее ощущается недостаток питательных веществ клетками мицелия, и тем больше клеток мицелия трансформируется в хламидоспоры.Chlamydospores are also formed in undiluted culture fluid (QOL), but there are very few of them. Dilution of the culture fluid with water stimulates the process of spore formation so that the yield of chlamydospores with 1 ml of QOL increases by 23-68 times in comparison with undiluted QL. The greater the degree of dilution of QOL, the higher the yield of chlamydospores formed from the vegetative mycelium. Probably the role of a trigger factor for the spore formation process is played by a sharp decrease in the concentration of nutrients in the medium. The higher the degree of dilution, the stronger the lack of nutrients in the mycelial cells, and the more mycelial cells are transformed into chlamydospores.
Пример 3. Исследовали зависимость урожая хламидоспор от добавок глицерина в жидкой культуре штамма F-882. Условия эксперимента аналогичны описанным в примере 2. Отличие лишь в том, что в часть образцов, наряду с разбавлением водой, добавляли глицерин. Через 4, 7 и 14 суток отбирали пробы, гомогенизировали и подсчитывали концентрацию хламидоспор. Результаты приведены в таблице 2.Example 3. Investigated the dependence of the harvest of chlamydospores on the additives of glycerol in the liquid culture of strain F-882. The experimental conditions are similar to those described in Example 2. The only difference is that glycerol was added to some of the samples, along with dilution with water. After 4, 7, and 14 days, samples were taken, homogenized, and the concentration of chlamydospores was calculated. The results are shown in table 2.
Данные по содержанию хламидоспор в зависимости от концентрации в КЖ глицеринаtable 2
Data on the content of chlamydospores depending on the concentration in the QOL of glycerol
В таблице приведены значения (концентрация хламидоспор в 1 мл жидкости *104), усредненные по трем повторностям, отклонения от среднего в пределах 10%.The table shows the values (concentration of chlamydospores in 1 ml of liquid * 10 4 ), averaged over three replicates, deviations from the average within 10%.
Исследования показали, что добавка глицерина до концентрации 1-2% существенно увеличивает выход хламидоспор (см. табл.2). В неразбавленной КЖ добавка глицерина увеличивает урожай хламидоспор на 2 порядка. К сожалению при этом длительность процесса формирования хламидоспор увеличивается до 2 недель. В разбавленной в 2-3 раза культуральной жидкости процесс спорообразования заканчивается за 7 суток, тогда как без глицерина формирование хламидоспор занимает 4 суток. Однако добавка глицерина (+разбавление водой) приводит к увеличению выхода хламидоспор в 2-3 раза, по сравнению с образцами без глицерина.Studies have shown that the addition of glycerol to a concentration of 1-2% significantly increases the yield of chlamydospores (see table 2). In undiluted QL, glycerol supplementation increases the chlamydospore yield by 2 orders of magnitude. Unfortunately, the duration of the process of formation of chlamydospores increases to 2 weeks. In a culture fluid diluted 2–3 times, the process of spore formation ends in 7 days, whereas without glycerol, the formation of chlamydospores takes 4 days. However, the addition of glycerol (+ dilution with water) leads to an increase in the yield of chlamydospores by a factor of 2–3, compared with samples without glycerol.
Таким образом, глицерин может использоваться либо в качестве самостоятельного индуктора спорообразования, либо параллельно с разбавлением культуральной жидкости.Thus, glycerin can be used either as an independent inducer of spore formation, or in parallel with dilution of the culture fluid.
Пример 4. Выращивали вегетативный мицелий штамма D. flagrans F-882, как описано в примере 1. Параллельно готовили вермикулит - в 0,5 л колбы насыпали по 10 г вермикулита, стерилизовали 4 часа при 180°С. Культуральную жидкость, выращенную в биореакторе, наносили на вермикулит и тщательно смешивали.Example 4. The vegetative mycelium of strain D. flagrans F-882 was grown, as described in example 1. At the same time, vermiculite was prepared - 10 g of vermiculite was poured into 0.5 L flasks, sterilized for 4 hours at 180 ° C. The culture fluid grown in the bioreactor was applied to vermiculite and thoroughly mixed.
Закрытые фольгой колбы помещали в термостат при +28°С на время процесса спорообразования (4 суток). В таблице 3 приведены усредненные результаты тестирования по 4 вариантам, отличающимся по количеству КЖ, наносимой на 1 г вермикулита. Каждый вариант ставили в 4-х повторностях.The flasks closed with foil were placed in a thermostat at + 28 ° С for the duration of the spore formation process (4 days). Table 3 shows the average test results for 4 options, differing in the amount of QOL applied per 1 g of vermiculite. Each option was set in 4 replicates.
Данные по содержанию хламидоспор в зависимости от соотношения КЖ и вермикулитаTable 3
Data on the content of chlamydospores depending on the ratio of QOL and vermiculite
Отклонения от указанных средних значений составляют ±10%.Deviations from the indicated average values are ± 10%.
Урожай хламидоспор практически линейно зависит от количества биомассы вегетативного мицелия, нанесенного на вермикулит. Однако дальнейшее увеличение урожая хламидоспор за счет увеличения количества КЖ, наносимой на вермикулит, невозможно, так как влагоемкость вермикулита ограничена 400% от массы самого вермикулита. Количество биомассы в 1 мл глубинной культуры также ограничено.The crop of chlamydospores almost linearly depends on the amount of biomass of vegetative mycelium deposited on vermiculite. However, a further increase in the yield of chlamydospores due to an increase in the amount of QL applied to vermiculite is impossible, since the moisture capacity of vermiculite is limited to 400% by weight of the vermiculite itself. The amount of biomass in 1 ml of deep culture is also limited.
Пример 5. Выращивали вегетативный мицелий и готовили вермикулит, как описано в примерах 1 и 4. Биомассу концентрировали в 5 раз посредством фильтрования. Концентрат культуральной жидкости наносили на вермикулит, по 3 мл концентрата на 1 г вермикулита, и тщательно смешивали. Закрытые фольгой колбы помещали в термостат при +28°С на время процесса спорообразования (10 суток). В таблице 4 приведены усредненные (по 4 повторностям) результаты тестирования.Example 5. Vegetative mycelium was grown and vermiculite was prepared as described in examples 1 and 4. The biomass was concentrated 5 times by filtration. The culture fluid concentrate was applied to vermiculite, 3 ml of concentrate per 1 g of vermiculite, and thoroughly mixed. The flasks closed with foil were placed in a thermostat at + 28 ° C for the duration of the spore formation process (10 days). Table 4 shows the averaged (over 4 replicates) test results.
Данные по содержанию хламидоспор на вермикулите при концентрировании КЖTable 4
Data on the content of chlamydospores on vermiculite in the concentration of QOL
Использование концентрата биомассы позволило увеличить выход хламидоспор в 9 раз, тогда как культуральная жидкость была сконцентрирована только в 5 раз. Дополнительный выигрыш в урожае обусловлен тем, что в концентрированной биомассе хламидоспоры формировались более интенсивно. В расчете на 1 мл исходной КЖ в концентрате получилось почти в 2 раза больше хламидоспор. Полученные результаты говорят о том, что повышенная плотность мицелия на поверхности вермикулита является дополнительным фактором, стимулирующим спорообразование.The use of biomass concentrate allowed to increase the yield of chlamydospores by 9 times, while the culture fluid was concentrated only 5 times. An additional gain in yield is due to the fact that chlamydospores formed more intensively in concentrated biomass. Based on 1 ml of the original QOL in the concentrate, almost 2 times more chlamydospores were obtained. The results obtained indicate that the increased density of mycelium on the surface of vermiculite is an additional factor stimulating spore formation.
Пример 6. Выращивали вегетативный мицелий и готовили вермикулит, как описано в примерах 1 и 4. В полученную в биореакторе культуральную жидкость добавляли один из следующих источников углерода: мелассу, глицерин, крахмал или муку, в различных концентрациях. Обогащенную питательными веществами культуральную жидкость (КЖ) вносили в емкости со стерильным вермикулитом, из расчета 2 мл КЖ на 1 г вспученного вермикулита, и тщательно перемешивали.Example 6. A vegetative mycelium was grown and vermiculite was prepared as described in examples 1 and 4. One of the following carbon sources was added to the culture fluid obtained in the bioreactor: molasses, glycerin, starch or flour, in various concentrations. Enriched with nutrients, the culture fluid (QL) was introduced into containers with sterile vermiculite, at the rate of 2 ml of QOL per 1 g of expanded vermiculite, and thoroughly mixed.
Емкости помещали в термальную комнату при +28°С и инкубировали в течение 13 суток. В таблице 5 приведены усредненные (по 4 повторностям) результаты тестирования.The containers were placed in a thermal room at + 28 ° C and incubated for 13 days. Table 5 shows the averaged (over 4 replicates) test results.
Добавка источников углерода позволяет повысить урожай хламидоспор в 2-11 раз, при том что количество посевного материала, наносимого на вермикулит, не увеличивается. Наибольший эффект дают добавки 12% мелассы, 10% картофельного крахмала и особенно 10% пшеничной муки.The addition of carbon sources allows to increase the yield of chlamydospores by 2–11 times, while the amount of seed applied to vermiculite does not increase. The greatest effect is given by additives of 12% molasses, 10% potato starch, and especially 10% wheat flour.
Данные по содержанию хламидоспор на вермикулите при добавлении в КЖ источника углеродаTable 5
Data on the content of chlamydospores on vermiculite when a carbon source is added to the QOL
Добавки таких компонентов, как меласса и глицерин, в основном расходуются на процесс формирования хламидоспор, тогда как добавки крахмала и муки, наряду с формированием хламидоспор, стимулируют и процесс роста вегетативного мицелия. Использование добавок позволяет, во-первых, в несколько раз сократить производственные затраты на выращивание посевного материала в биореакторе, и, во-вторых, исключает операцию концентрирования биомассы перед нанесением на вермикулит.Supplements of components such as molasses and glycerin are mainly spent on the formation of chlamydospores, while additives of starch and flour, along with the formation of chlamydospores, stimulate the growth of the vegetative mycelium. The use of additives allows, firstly, several times to reduce the production costs for growing seed in a bioreactor, and, secondly, eliminates the operation of concentrating biomass before applying to vermiculite.
Пример 7. Исследовали динамику процесса формирования хламидоспор на вермикулите в образцах с различными добавками. Эксперимент проводился по схеме, описанной в примере 6. Но отбор проб делали после 4, 7, 10 и 13 суток инкубирования образцов. В таблице 6 приведены результаты - динамика прироста хламидоспор на вермикулите.Example 7. Investigated the dynamics of the process of formation of chlamydospores on vermiculite in samples with various additives. The experiment was carried out according to the scheme described in example 6. But the sampling was done after 4, 7, 10 and 13 days of incubation of the samples. Table 6 shows the results - the dynamics of the growth of chlamydospores on vermiculite.
Данные по содержанию хламидоспор на вермикулите при добавлении в КЖ источника углеродаTable 6
Data on the content of chlamydospores on vermiculite when a carbon source is added to the QOL
В таблице указано содержание хламидоспор в расчете на 1 г сухого препарата 106. В контроле, где на вермикулит наносится КЖ без добавок, процесс формирования хламидоспор завершается в течение 4 суток. Практически также быстро завершается спорообразование в образцах с добавками глицерина и мелассы. В образцах с добавками крахмала и муки процесс растягивается на 13 суток. Причина в том, что крахмал и мука прежде всего стимулируют рост вегетативного мицелия, в результате чего формирование хламидоспор начинается значительно позже, чем в контроле. С другой стороны, добавка муки обеспечивает наиболее высокое содержание хламидоспор в препарате. Наиболее оптимальным представляется вариант с добавкой 12% мелассы, где высокое содержание хламидоспор достигается за минимальное время - 4 суток.The table shows the content of chlamydospores per 1 g of dry preparation 10 6 . In the control, where QL without additives is applied to vermiculite, the process of chlamydospore formation is completed within 4 days. Spore formation in samples with additions of glycerol and molasses also almost quickly ends. In samples with starch and flour additives, the process stretches for 13 days. The reason is that starch and flour primarily stimulate the growth of the vegetative mycelium, as a result of which the formation of chlamydospores begins much later than in the control. On the other hand, the addition of flour provides the highest content of chlamydospores in the preparation. The best option seems to be with the addition of 12% molasses, where a high content of chlamydospores is achieved in a minimum time of 4 days.
Полученный влажный препарат высушивают. Влажность готового препарата должна быть не более 12%. Количество хламидоспор достигает (2-4)*106 спор/г сухого препарата.The resulting wet preparation is dried. The moisture content of the finished product should be no more than 12%. The amount of chlamydospores reaches (2-4) * 10 6 spores / g of dry preparation.
Таким образом, примеры 1-7 подтверждают, что технический результат предлагаемого изобретения обеспечивает получение препарата на основе хламидоспор микроскопического нематофагового гриба Duddingtonia flagrans в жидкой и сухой форме с более высоким титром (до 4*106 спор/г сухого препарата) путем использования более эффективных добавок (индукторов спорообразования) на стадии образования хламидоспор.Thus, examples 1-7 confirm that the technical result of the present invention provides a preparation based on chlamydospores of the microscopic nematophagous fungus Duddingtonia flagrans in liquid and dry form with a higher titer (up to 4 * 10 6 spores / g of dry preparation) by using more effective additives (sporulation inducers) at the stage of formation of chlamydospores.
Пример 8. В зараженную галловыми нематодами (Meloidogyne incognita) почву теплицы Новосибирского метрополитена вносили сухую и жидкую формы препарата на основе штамма Duddingtonia flagrans F-882, одновременно с высадкой рассады огурца сорта Королек. По окончании вегетации растений учитывали балл поражения корневой системы и средний урожай на одно растение. В каждом варианте проводили учет по 100 растениям. В табл.7 представлены результаты по урожайности и пораженности корневой системы в опытных и контрольных вариантах.Example 8. In the soil of the Novosibirsk Metro greenhouse infected with gall nematodes (Meloidogyne incognita), dry and liquid forms of the preparation were applied based on the Duddingtonia flagrans strain F-882, simultaneously with the planting of seedlings of Korolek cucumber. At the end of the growing season, the root system damage score and the average yield per plant were taken into account. In each variant, 100 plants were counted. Table 7 presents the results of yield and root system damage in the experimental and control variants.
Средний урожай на одно растение и пораженность корней огурца мелойдогинозом, обработанных препаративными формами на основе Duddingtonia flagrans F-882Table 7
The average yield per plant and the damage to the roots of the cucumber by meloidoginosis treated with preparative forms based on Duddingtonia flagrans F-882
Как видно из полученных результатов, наибольший эффект проявила сухая форма препарата, что обусловлено большим содержанием грибных пропагул во внесенной дозе по сравнению с жидкой формой.As can be seen from the results obtained, the dry form of the drug showed the greatest effect, which is due to the high content of mushroom propagules in the introduced dose compared to the liquid form.
Пример 9. Для отработки доз применения сухой формы препарата (на вспученном вермикулите) на основе штамма Duddingtonia flagrans F-882 против галловых нематод растений был заложен вегетационный опыт. Почва для эксперимента была взята из очага сильного поражения корневой системы огурца мелойдогинозом (5 баллов), тщательно перемешана и набита в сосуды, вмещающие 400 г почвы. Доза внесенного препарата составляла 1%, 2% и 3% к массе почвы в сосуде. Контролем служили сосуды с необработанной почвой. Каждый вариант был представлен 20 сосудами. Использовали проросшие семена огурца сорта Королек. Через 1 месяц опыт был прерван и проведены замеры высоты растений, площади листовых пластин, длины корней, балла поражения корневой системы мелойдогинозом (табл.8).Example 9. For practicing doses of the dry form of the drug (on expanded vermiculite) based on the strain Duddingtonia flagrans F-882 against gall nematodes of plants, a vegetative experiment was laid. The soil for the experiment was taken from the site of severe damage to the root system of the cucumber by meloidoginosis (5 points), thoroughly mixed and packed into vessels containing 400 g of soil. The dose of the drug was 1%, 2% and 3% by weight of soil in the vessel. Vessels with untreated soil served as control. Each variant was represented by 20 vessels. Used sprouted seeds of cucumber varieties Korolek. After 1 month, the experiment was interrupted and measurements were taken of the plant height, leaf plate area, root length, and the root lesion score by meloidoginosis (Table 8).
Результаты вегетационного опыта по оценке оптимальной дозы сухой формы препарата на основе Duddingtonia flagrans F-882 против галловых нематодTable 8
The results of the growing experiment to assess the optimal dose of the dry form of the drug based on Duddingtonia flagrans F-882 against gall nematodes
Как видно из табл.8, корневая система у всех опытных растений была в основном очищена от нематод, однако результаты по росту и развитию растений были лучшими в варианте с 1%-м препаратом, что, возможно, связано с незначительным токсическим эффектом биопрепарата в повышенных дозах на начальных стадиях развития растений огурца.As can be seen from table 8, the root system in all experimental plants was mainly cleared of nematodes, however, the results on plant growth and development were best in the version with 1% preparation, which is probably due to the insignificant toxic effect of the biological product in increased doses at the initial stages of development of cucumber plants.
Пример 10. На участке с высоким уровнем зараженности почвы картофельной нематодой Globodera rostochiensis (10-12 тысяч личинок на 100 г почвы) препарат на основе штамма Duddingtonia flagrans F-882 в сухой и жидкой форме вносили под сорта картофеля «Свитанок Киевский» и «Любава» (восприимчивые к нематоде), «Никита» (устойчивый сорт). Доза внесения биопрепарата составляла 150 г/м2 (сухая и жидкая формы). Препарат вносили в лунку при посадке картофеля в мае месяце.Example 10. In the area with a high level of soil contamination with the Globodera rostochiensis potato nematode (10-12 thousand larvae per 100 g of soil), a preparation based on the Duddingtonia flagrans F-882 strain was applied in dry and liquid form for the Svitanok Kievsky and Lyubava potato varieties "(Susceptible to the nematode)," Nikita "(resistant variety). The dose of the biological product was 150 g / m 2 (dry and liquid forms). The drug was added to the well when planting potatoes in the month of May.
По всем сортам на стадии всходов отмечалось стимулирующее влияние препарата, особенно в жидкой форме. Данные по влиянию препарата на зараженность картофеля нематодой представлены в табл.9.For all varieties at the germination stage, the stimulating effect of the drug was noted, especially in liquid form. Data on the effect of the drug on potato nematode infection are presented in Table 9.
Как видно из табл.9, снижение зараженности картофельной нематодой у восприимчивых сортов было выше в вариантах с препаратом на вспученном вермикулите по сравнению с жидкой формой (68-70% против 52-60%).As can be seen from Table 9, the decrease in infection with potato nematode in susceptible varieties was higher in variants with the drug on expanded vermiculite compared with the liquid form (68-70% versus 52-60%).
Пример 11. Эффективность жидкой формы препарата на основе штамма Duddingtonia flagrans F-882 оценивали на личинках возбудителя элафостронгилеза (Elaphostrongylus panticola) маралов.Example 11. The effectiveness of the liquid form of the drug based on the strain Duddingtonia flagrans F-882 was evaluated on the larvae of the pathogen Elaphostrongylus (Elaphostrongylus panticola) maral.
Влияние препарата на основе штамма Duddingtonia flagrans F-882 на зараженность растений картофельной нематодой Globodera rostochiensis (среднее по повторностям)Table 9
The effect of the drug based on the strain Duddingtonia flagrans F-882 on the infection of plants with the potato nematode Globodera rostochiensis (average repetition)
Для этого использовали фекалии маралов, содержащие в среднем 18,5 личинок в 1 г. В опытные варианты, помещенные в чашки Петри, вносили по 30 мл препарата, в контрольные чашки вносили такое же количество дистиллированной воды. Пробы помещали в термостат при температуре +26,4°С. На 3, 6 и 10 сутки исследовали по три пробы от каждой группы, подсчитывая количество личинок Е. panticola в 1 г фекалий по методу Бермана-Орлова (табл.10).For this purpose maral feces were used, containing on average 18.5 larvae per 1 g. 30 ml of the preparation was added to the experimental variants placed in Petri dishes; the same amount of distilled water was added to the control plates. Samples were placed in a thermostat at a temperature of + 26.4 ° C. On days 3, 6 and 10, three samples from each group were examined, counting the number of E. panticola larvae in 1 g of feces according to the Berman-Orlov method (Table 10).
Влияние жидкой формы препарата на основе штамма Duddingtonia flagrans F-882 на численность личинок элафостронгилеза мараловTable 10
The influence of the liquid form of the drug based on the strain Duddingtonia flagrans F-882 on the number of larvae of elaphostrongile maral
Как видно из табл.10, зарегистрировано значительное снижение количества личинок под влиянием жидкой формы препарата уже через 3 суток. По сравнению с контролем на 3-и, 6-е и 10-е сутки количество личинок уменьшилось в 53, 236 и 167 раз, соответственно.As can be seen from table 10, a significant decrease in the number of larvae was detected under the influence of the liquid form of the drug after 3 days. Compared with the control on the 3rd, 6th and 10th day, the number of larvae decreased 53, 236 and 167 times, respectively.
Claims (6)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2008100897/13A RU2366178C1 (en) | 2008-01-09 | 2008-01-09 | Method of obtaining preparation based on microfungi chlamydospores for vegetation and animal parasitic nematode control |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2008100897/13A RU2366178C1 (en) | 2008-01-09 | 2008-01-09 | Method of obtaining preparation based on microfungi chlamydospores for vegetation and animal parasitic nematode control |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2008100897A RU2008100897A (en) | 2009-07-20 |
RU2366178C1 true RU2366178C1 (en) | 2009-09-10 |
Family
ID=41046715
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2008100897/13A RU2366178C1 (en) | 2008-01-09 | 2008-01-09 | Method of obtaining preparation based on microfungi chlamydospores for vegetation and animal parasitic nematode control |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2366178C1 (en) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2475531C2 (en) * | 2011-03-22 | 2013-02-20 | Федеральное бюджетное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" (ФБУН ГНЦ ВБ "Вектор") | ANTIVIRAL MEDICATION BASED ON NEMATOPHAGOUS FUNGUS Duddingtonia flagrans |
RU2631826C2 (en) * | 2010-07-30 | 2017-09-26 | Эмпреза Бразилейра Де Песквиза Агропекуариа-Эмбрапа | Method for fungal spores packaging in modified atmosphere to increase fungi storage life |
RU2634390C1 (en) * | 2016-12-29 | 2017-10-26 | Общество с ограниченной ответственностью "Микопро" | Strains of nematophage fungus arthrobotrys oligospora infecting eggs and larvae of cyst-forming golden nematode globodera rostochiensis in cysts |
RU2691591C1 (en) * | 2018-06-21 | 2019-06-14 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Новосибирский государственный аграрный университет" | Method for increasing broiler breeds efficiency of different crosses |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN116200328B (en) * | 2023-04-26 | 2023-07-07 | 云南大学 | Method for producing chlamydospores by liquid fermentation of arthrocele and application of chlamydospores |
-
2008
- 2008-01-09 RU RU2008100897/13A patent/RU2366178C1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
ЛУКЬЯНЧЕНКО Т.А. и др. Оценка возможности использования глубинных культур хищных грибов Duddingtonia flagrans и Artrobotrus sp. против возбудителей стронгилятозов лошадей в условиях Украины, Vestnik zoologii, Supplement №14, 2000, с.213-219. * |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2631826C2 (en) * | 2010-07-30 | 2017-09-26 | Эмпреза Бразилейра Де Песквиза Агропекуариа-Эмбрапа | Method for fungal spores packaging in modified atmosphere to increase fungi storage life |
RU2475531C2 (en) * | 2011-03-22 | 2013-02-20 | Федеральное бюджетное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" (ФБУН ГНЦ ВБ "Вектор") | ANTIVIRAL MEDICATION BASED ON NEMATOPHAGOUS FUNGUS Duddingtonia flagrans |
RU2634390C1 (en) * | 2016-12-29 | 2017-10-26 | Общество с ограниченной ответственностью "Микопро" | Strains of nematophage fungus arthrobotrys oligospora infecting eggs and larvae of cyst-forming golden nematode globodera rostochiensis in cysts |
RU2691591C1 (en) * | 2018-06-21 | 2019-06-14 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Новосибирский государственный аграрный университет" | Method for increasing broiler breeds efficiency of different crosses |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2008100897A (en) | 2009-07-20 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
FI69390B (en) | BEHANDLINGSMEDEL I STAOND ATT SKYDDA VAEXTER BUSKAR TRAED OCH LIKNANDE MOT ANGREPP AV PATOGENA SVAMPAT SAMT FOERFARANDE FOR FRAMSTAELLNING AV BEHANDLINGSMEDLET | |
CN107188674B (en) | Solanaceous vegetable seedling culture substrate and preparation method thereof | |
RU2366178C1 (en) | Method of obtaining preparation based on microfungi chlamydospores for vegetation and animal parasitic nematode control | |
CN107652027A (en) | A kind of complex composition of biological control crop droop and its application | |
CA2924786A1 (en) | Hydroponic method utilizing beneficial micro-organisms | |
CN117580815A (en) | Composition for promoting plant growth and/or protecting plants against at least one plant pest and/or at least one plant disease | |
KR102251508B1 (en) | Novel Beauveria bassiana KNU-101 Strain with Improved Insecticidal Effect and Spore Production and Uses thereof | |
CN106007824B (en) | Composite bacterial fertilizer and preparation method and application thereof | |
EP0401560B1 (en) | Antibacterial, anti-nematode and/or plant-cell activating composition, and chitinolytic microorganisms for producing the same | |
CN102919279B (en) | Compound microbial preparation for preventing and controlling root knot nematodes and preparation method thereof | |
CN112574906B (en) | Bacterial strain for preventing and treating common continuous cropping diseases of greenhouse tomatoes and compound microbial agent thereof | |
CN102604857B (en) | Biological control pseudomonas monteilii strain against tobacco mosaic virus (TMV) | |
CN114287447A (en) | Biological control method for bamboo forest wireworms | |
JP7425884B2 (en) | Bacillus subtilis JCK-1398 strain that induces resistance in various plants, composition and method for controlling pine wood nematode disease using the same | |
CN112063543B (en) | Urease-producing bacterium and application thereof in preparation of microbial inoculum for preventing and treating tobacco root knot nematode disease | |
Elhadidy | Performance of some new bioformulations against tomato fusarium wilt | |
CN116918832A (en) | Composite biocontrol microbial agent, preparation method, application and application method | |
CN112913844B (en) | Sterilization composition for preventing and treating powdery mildew | |
CN114617127A (en) | Pesticide sterilization composition and application thereof | |
Huang et al. | A formulated container medium suppressive to Rhizoctonia damping-off of cabbage | |
CN1994083B (en) | A compound bactericidal agent | |
CN114634878A (en) | Compound microbial preparation and application thereof in preventing and treating root-knot nematodes | |
JP4398663B2 (en) | Plant growth promotion and disease control materials | |
CN109526966B (en) | Insect antifeedant eurycolatone F for in-vivo delivery of plants and application thereof | |
CN110724640B (en) | Tomato root knot nematode biocontrol bacteria, preparation and application thereof |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
QB4A | Licence on use of patent |
Effective date: 20101110 |
|
PD4A | Correction of name of patent owner | ||
QC41 | Official registration of the termination of the licence agreement or other agreements on the disposal of an exclusive right |
Free format text: LICENCE FORMERLY AGREED ON 20101110 Effective date: 20120628 |
|
QB4A | Licence on use of patent |
Free format text: LICENCE Effective date: 20140130 |
|
PD4A | Correction of name of patent owner | ||
QB4A | Licence on use of patent |
Free format text: LICENCE Effective date: 20171211 |