RU2331075C2 - СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АНТИТЕЛ К КАПСУЛЬНОМУ ПОЛИСАХАРИДУ Haemophilus influenzae ТИПА b - Google Patents

СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АНТИТЕЛ К КАПСУЛЬНОМУ ПОЛИСАХАРИДУ Haemophilus influenzae ТИПА b Download PDF

Info

Publication number
RU2331075C2
RU2331075C2 RU2006133787/15A RU2006133787A RU2331075C2 RU 2331075 C2 RU2331075 C2 RU 2331075C2 RU 2006133787/15 A RU2006133787/15 A RU 2006133787/15A RU 2006133787 A RU2006133787 A RU 2006133787A RU 2331075 C2 RU2331075 C2 RU 2331075C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
antibodies
capsular polysaccharide
influenzae type
conjugate
incubated
Prior art date
Application number
RU2006133787/15A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2006133787A (ru
Inventor
Натали Евгеньевна Ястребова (RU)
Наталия Евгеньевна Ястребова
Наталь Павловна Ванеева (RU)
Наталья Павловна Ванеева
Ольга Анатольевна Маркина (RU)
Ольга Анатольевна Маркина
Ольга Евгеньевна Орлова (RU)
Ольга Евгеньевна Орлова
Станислава Ивановна Елкина (RU)
Станислава Ивановна Елкина
Михаил Петрович Костинов (RU)
Михаил Петрович Костинов
Петр Геннадьевич Апарин (RU)
Петр Геннадьевич Апарин
В чеслав Леонидович Львов (RU)
Вячеслав Леонидович Львов
Original Assignee
Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток им. И.И. Мечникова (ГУ НИВС им. И.И. Мечникова)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток им. И.И. Мечникова (ГУ НИВС им. И.И. Мечникова) filed Critical Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток им. И.И. Мечникова (ГУ НИВС им. И.И. Мечникова)
Priority to RU2006133787/15A priority Critical patent/RU2331075C2/ru
Publication of RU2006133787A publication Critical patent/RU2006133787A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2331075C2 publication Critical patent/RU2331075C2/ru

Links

Landscapes

  • Investigating Or Analysing Materials By The Use Of Chemical Reactions (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

Изобретение относится к области медицины, а именно к иммунологии, и касается способа определения антител к капсульному полисахариду Haemophilus influenzae типа b. Сущность изобретения заключается в том, что на твердый носитель с сорбированным на нем высокоочищенным капсульным полисахаридом Haemophilus influenzae типа b наносят рабочие разведения исследуемой и контрольной сывороток, а также калибровочные пробы, представляющие собой сыворотки с относительным содержанием IgG антител к капсульному полисахариду - полирибозилрибитолфосфату Haemophilus influenzae, инкубируют, удаляют избыток антител, вносят конъюгат в рабочем разведении, повторно инкубируют при тех же параметрах, отмывают от избытка конъюгата, вносят субстратную смесь, содержащую тетраметилбензидин и перекись водорода в заданных значениях, инкубируют в защищенном от света месте, останавливают реакцию введением реагента, измеряют оптическую плотность исследуемой и контрольной сывороток на содержание антител, строят график зависимости оптической плотности от условного количества антител в калибровочных пробах и по графику зависимости определяют количество антител в условных единицах в исследуемых пробах. Преимущество изобретения заключается в повышении чувствительности способа. 2 табл., 1 ил.

Description

Изобретение относится к области медицины, а именно к иммунологии, и может быть использовано для оценки поствакцинального иммунитета при вакцинации существующими (АКТ-ХИБ) и разрабатываемыми форсифицированными вакцинами.
Haemophilus influenzae типа b (Hib) является наиболее частой причиной бактериальных менингитов, поражающих детей до 6-летнего возраста, особенно детей от 3 до 12 месяцев. При инфицировании этим видом бактерий у человека формируется иммунный ответ к трем основным антигенам: капсульному полисахариду, белкам наружной мембраны и липоолигосахаридам. Капсульный полисахарид - полирибозилрибитолфосфат (ПРФ) - является основой современных вакцинных препаратов. Для формирования Т-клеточного иммунитета его конъюгируют с различными бактериальными белками, такими как столбнячный и дифтерийный анатоксины и др. Для профилактики заболеваний, вызываемых Hib, за рубежом созданы вакцинирующие препараты. Одна из таких вакцин «АКТ-ХИБ» (Авентис Пастер, Франция), представляющая собой конъюгат ПРФ со столбнячным анатоксином, сертифицирована и разрешена к применению на территории России. Доказана ее высокая эффективность и безопасность. Разрабатываются подобные вакцины и в нашей стране. Для оценки эффективности разрабатываемых отечественных форсифицированных вакцин необходимы тесты, регистрирующие уровень поствакцинального иммунитета.
Известен способ выявления антител к олигосахариду капсульного полисахарида Hib с помощью ИФА. В качестве иммуносорбента используют 96-луночный полистироловый планшет, на котором сорбирован олигосахарид, конъюгированный с альбумином человека [Clin. And Diagn. Labor. Immunol., 1996, Jan., p.84-88]. Анализируемые образцы сывороток титруют с 1:50 в фосфатно-солевом буфере с добавлением твина и ЭДТА. После инкубации и отмывания вносят моноклональный конъюгат. Полученное соединение антиген-антитело-конъюгат проявляют субстратной смесью с последующей детекцией на спектрофотометре. Для калибровочной кривой используют аффинноочищенные антитела.
Однако при использовании иммуносорбента, содержащего альбумин человека, есть вероятность определения аутоантител к нему в анализируемых пробах.
Технический результат заявленного способа заключается в повышении эффективности определения антител к капсульному полисахариду H.influenzae за счет использования высокоочищенного полисахарида, не требующего конъюгации, а также за счет использования поликлонального конъюгата, представляющего собой кроличьи антитела против иммуноглобулинов G (H+L) человека, меченные пероксидазой, и калибровочных проб, представляющих собой сыворотки с относительным содержанием IgG антител к ПРФ Hib.
Для достижения указанного технического результата способ определения антител к капсульному полисахариду Haemophilus influenzae типа b заключается в том, что на твердый носитель с сорбированным на нем высокоочищенным капсульным полисахаридом Haemophilus influenzae типа b наносят рабочие разведения исследуемой и контрольной сывороток, а также калибровочные пробы, представляющие собой сыворотки с относительным содержанием IgG антител к капсульному полисахариду - полирибозилрибитолфосфату Haemophilus influenzae: 16; 8; 4; 2; 1; 0,5; 0,25 и 0 усл. Ед./мл, инкубируют при температуре 18-22°С в течение 30 минут, удаляют избыток антител, вносят конъюгат в рабочем разведении, повторно инкубируют при тех же параметрах, отмывают от избытка конъюгата, вносят субстратную смесь, содержащую тетраметилбензидин и перекись водорода в заданных значениях, инкубируют при температуре 18-22°С в течение 15-20 минут в защищенном от света месте, останавливают реакцию введением реагента, измеряют оптическую плотность исследуемой и контрольной сывороток на содержание антител, строят график зависимости оптической плотности от условного количества антител в калибровочных пробах и по графику зависимости определяют количество антител в условных единицах в исследуемых пробах.
Наличие гуморального иммунитета может быть оценено с помощью твердофазного иммуноферментного анализа (ИФА). В основе метода лежит иммуносорбент, представляющий собой стрипированный 96-луночный планшет, сорбированный высокоочищенным капсульным полисахаридом Hib, принадлежность которого к ПРФ доказана с помощью ядерно-магнитно-резонансной спектроскопии и химического анализа, а специфическая активность - в различных серологических тестах.
При выполнении анализа образцы сывороток и калибровочные пробы вносят в лунки иммуносорбента в рабочем разведении. После инкубации и отмывки во все лунки иммуносорбента вносят конъюгат в рабочем разведении. Проявка реакции осуществляется субстратной смесью, содержащей тетраметилбензидин (ТМБ) и перекись водорода.
Калибровочные пробы - сыворотки с относительным содержанием IgG антител к ПРФ Hib: 16; 8; 4; 2; 1; 0,5; 0,25 и 0 усл. ед./мл. На их основе строится график зависимости оптической плотности от условного количества антител в калибровочных пробах (см. чертеж).
По калибровочному графику определяют относительное количество IgG антител к ПРФ Hib в анализируемых сыворотках крови человека.
Используемые реагенты:
(1) иммуносорбент - планшет полистирольный разборный, состоящий из 128-луночных стрипов, сорбированных капсульным полисахаридом Hib, - 1 шт.;
(2) калибровочные пробы (8) - сыворотки с относительным содержанием IgG антител к ПРФ Hib: 16; 8; 4; 2; 1; 0,5; 0,25 и 0 усл. ед./мл. Каждая проба содержит 0,2 мл раствора, во флаконе;
(3) отрицательный контроль (К-) - сыворотка крови человека, содержащая <0,5 усл. ед./мл, жидкая - 1 фл., 0,1 мл;
(4) положительный контроль (К+) - сыворотка крови человека, содержащая >2,0 усл. ед./мл, жидкая - 1 фл., 0,1 мл;
(5) конъюгат (КГ) - антитела кроличьи против IgG (H+L) человека, меченные пероксидазой, жидкий, концентрированный - 1 фл., 0,2 мл;
(6) субстратная смесь, содержащая тетраметилбензидин (ТМБ) - 1 фл., 12 мл;
(7) промывающий и разводящий фосфатно-солевой буферный раствор, десятикратный концентрат с детергентом (ФСБ-Д)к - 1 фл., 50 мл;
(8) стоп-реагент - 0,9 М H2SO4.
Приготовление растворов для проведения анализа:
1) (ФСБ-Д)к перед применением разводят дистиллированной водой в 10 раз. Полученный раствор ФСБ-Д хранят не более 3 недель при 4-8°С. Раствор предназначен для отмывки планшета от непрореагировавших компонентов, разведения сывороток и конъюгата;
2) контроли (К+ и К-), а также анализируемые сыворотки перед проведением анализа разводят раствором ФСБ-Д до соотношения 1:100 (10 мкл на 1000 мкл ФСБ-Д.) Рабочее разведение сывороток хранению не подлежит;
3) рабочее разведение конъюгата готовят непосредственно перед использованием, разводя исходный раствор до соотношения 1:200 ФСБ-Д (50 мкл на 10 мл ФСБ-Д).
Последовательность операций
Отмывка иммуносорбента. Во все лунки планшета вносят ФСБ-Д в объеме не менее 0,2 мл. Выдерживают планшет при комнатной температуре в течение 2-3 мин. Содержимое лунок удаляют вытряхиванием. Отмывку повторяют еще 3 раза.
Внесение образцов. В лунки первого ряда планшета последовательно вносят калибровочные пробы №№1-8. Далее последовательно вносят рабочие растворы (1:100) контролей (К+ и К-) в дублях и анализируемые сыворотки. Объем вносимых проб - 100 мкл.
Инкубация. Выдерживают планшет с растворами сывороток в течение 30 мин при 18-22°С.
Отмывка от избытка антител. Жидкость из лунок планшета удаляют вытряхиванием и трехкратно отмывают раствором ФСБ-Д, как указано в п.1.
Внесение рабочего раствора конъюгата. Во все лунки планшета вносят по 100 мкл рабочего раствора КГ.
Инкубация. Как в п.3.
Отмывка от избытка КГ. Как в п.1.
Внесение субстратного раствора ТМБ. Во все лунки вносят по 100 мкл раствора ТМБ.
Инкубация. 15-20 мин в темноте при температуре 18-22°С.
В каждую лунку вносят по 50 мкл стоп-реагента.
Учет результатов
Вывести спектрофотометр на нулевой уровень («blank») по воздуху.
Измерить оптическую плотность в лунках планшета при 450 нм в течение 10 минут после остановки реакции.
Построить график зависимости оптической плотности от условного количества антител в калибровочных пробах.
По калибровочному графику определить относительное количество IgG антител к ПРФ Hib в анализируемых пробах.
Пример исследования сывороток детей в возрасте до 3 лет, подвергшихся иммунизации вакциной «АКТ-ХИБ» (Авентис Пастер, Франция), на наличие антител к капсульному полисахариду Hib
№№ п/п ОП 450 нм Усл. ед./мл
до иммунизации через месяц после иммунизации до иммунизации через месяц после иммунизации
1 0,76 0,65 1,3 1,04°
2 0,83 0,94 1,6 1,9*
3 1,02 0,55 2,3 0,8°
4 0,71 1,36 1,2 5,2**
5 0,61 0,36 0,9 0,4°
6 0,55 0,56 0,8 0,8-
7 0,94 0,99 1,9 2,0*
8 0,93 1,05 1,8 2,4*
9 0,27 0,70 0,3 1,2**
10 0,70 1,25 1,2 3,9*
11 0,52 0,56 0,7 0,8*
12 0,65 0,86 1,0 1,6*
13 0,33 0,52 0,4 0,7*
14 0,28 1,48 0,3 6,7**
15 0,34 0,75 0,4 1,3*
16 1,32 1,73 4,7 14,8**
17 0,84 1,79 1,6 17,9**
Из 17 детей у 13 (*) уровень IgG AT после вакцинации вырос (из них - в 4 и более раз - только у 5 человек (**)). У 3 детей произошло понижение уровня AT после вакцинации (°), а у одного уровень AT не изменился (-).
Пример определения антител капсульному полисахариду в сыворотках вакцинированных детей с помощью набора «Fuller Laboratories» и предложенного способа.
№№ сыворотки Набор «Fuller» Предложенный способ
до вакцинациим кг/мл после вакцинациим кг/мл до вакцинации усл.ед./мл после вакцинации усл.ед./мл
1 0,7 21,1 1,58 1,87
2 0,5 22,4 1,2 5,17
3 0,5 21,9 0,27 1,09
4 0,4 21,8 1,17 3,87
5 0,4 22,6 0,28 6,68
6 0,2 11,4 0,38 1,32
7 1,7 22,2 4,71 14,75
8 1,6 22,4 1,6 17,88

Claims (1)

  1. Способ определения антител к капсульному полисахариду Haemophilus influenzae типа b, заключающийся в том, что на твердый носитель с сорбированным на нем высокоочищенным капсульным полисахаридом Haemophilus influenzae типа b наносят рабочие разведения исследуемой и контрольной сывороток, а также калибровочные пробы, представляющие собой сыворотки с относительным содержанием IgG антител к капсульному полисахариду - полирибозилрибитолфосфату Haemophilus influenzae: 16; 8; 4; 2; 1; 0,5; 0,25 и 0 условных единиц/мл, инкубируют при температуре 18-22°С в течение 30 мин, удаляют избыток антител, вносят конъюгат в рабочем разведении, повторно инкубируют при тех же параметрах, отмывают от избытка конъюгата, вносят субстратную смесь, содержащую тетраметилбензидин и перекись водорода в заданных значениях, инкубируют при температуре 18-22°С в течение 15-20 мин в защищенном от света месте, останавливают реакцию введением реагента, измеряют оптическую плотность исследуемой и контрольной сывороток на содержание антител, строят график зависимости оптической плотности от условного количества антител в калибровочных пробах и по графику зависимости определяют количество антител в условных единицах в исследуемых пробах.
RU2006133787/15A 2006-09-22 2006-09-22 СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АНТИТЕЛ К КАПСУЛЬНОМУ ПОЛИСАХАРИДУ Haemophilus influenzae ТИПА b RU2331075C2 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2006133787/15A RU2331075C2 (ru) 2006-09-22 2006-09-22 СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АНТИТЕЛ К КАПСУЛЬНОМУ ПОЛИСАХАРИДУ Haemophilus influenzae ТИПА b

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2006133787/15A RU2331075C2 (ru) 2006-09-22 2006-09-22 СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АНТИТЕЛ К КАПСУЛЬНОМУ ПОЛИСАХАРИДУ Haemophilus influenzae ТИПА b

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2006133787A RU2006133787A (ru) 2008-03-27
RU2331075C2 true RU2331075C2 (ru) 2008-08-10

Family

ID=39746564

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2006133787/15A RU2331075C2 (ru) 2006-09-22 2006-09-22 СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АНТИТЕЛ К КАПСУЛЬНОМУ ПОЛИСАХАРИДУ Haemophilus influenzae ТИПА b

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2331075C2 (ru)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2465316C1 (ru) * 2011-10-05 2012-10-27 Общество с ограниченной ответственностью "ГРИТВАК" Штамм бактерий haemophilus influenzae в №326, стабильный продуцент капсульного полисахарида
CN104181301A (zh) * 2014-08-18 2014-12-03 湖北工业大学 基于磁性分离和多色量子点标记的抗人流感嗜血杆菌IgM、IgG抗体快速共检的方法和试剂盒

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
MADORE D.V. et al. Interlaboratory study evaluating quantitation of antibodies to Haemophilus influenzae type b polysaccharide by enzyme-linked immunosorbent assay, Clin. Diagn. Lab. Immunol, 1996, Jan., 3(1), 84-88. MITCHELL J., HILL S.L. Immune response to Haemophilus parainfluenzae in patients with chronic obstructive lung disease. Clinical and Diagnostic Laboratory Immunol., 2000, Jan. 7(1), 25-30. *

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2465316C1 (ru) * 2011-10-05 2012-10-27 Общество с ограниченной ответственностью "ГРИТВАК" Штамм бактерий haemophilus influenzae в №326, стабильный продуцент капсульного полисахарида
CN104181301A (zh) * 2014-08-18 2014-12-03 湖北工业大学 基于磁性分离和多色量子点标记的抗人流感嗜血杆菌IgM、IgG抗体快速共检的方法和试剂盒
CN104181301B (zh) * 2014-08-18 2016-01-06 湖北工业大学 基于磁性分离和多色量子点标记的抗人流感嗜血杆菌IgM、IgG抗体快速共检的方法和试剂盒

Also Published As

Publication number Publication date
RU2006133787A (ru) 2008-03-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Raoult et al. Line blot and western blot immunoassays for diagnosis of Mediterranean spotted fever
Konradsen et al. A modified enzyme-linked immunosorbent assay for measuring type-specific anti-pneumococcal capsular polysaccharide antibodies
Ciocchini et al. A bacterial engineered glycoprotein as a novel antigen for diagnosis of bovine brucellosis
Ren et al. A brief review of diagnosis of small ruminants brucellosis
Baldi et al. Diagnosis of canine brucellosis by detection of serum antibodies against an 18 kDa cytoplasmic protein of Brucella spp.
Czerkinsky et al. The detection and specificity of class specific antibodies to whole bacterial cells using a solid phase radioimmunoassay.
RU2331075C2 (ru) СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АНТИТЕЛ К КАПСУЛЬНОМУ ПОЛИСАХАРИДУ Haemophilus influenzae ТИПА b
Kumar et al. Improvement in the diagnosis of Brucella abortus infections in naturally infected water buffaloes (Bubalus bubalis) using an ELISA with a Protein-G-based indicator system
Goldsmith A highly sensitive enzyme-linked immunosorbent assay for human immunoglobulin E: comparison of microtiter plate and disk methodologies
Savage et al. Radioimmunosorbent assay for Botrytis cinerea
Nguyen et al. Rapid method for detection of Coxiella burnetii antibodies using high-density particle agglutination
Keysary et al. Use of enzyme-linked immunosorbent assay techniques with cross-reacting human sera in diagnosis of murine typhus and spotted fever
Estein et al. Comparison of serological tests based on outer membrane or internal antigens for detecting antibodies to Brucella ovis in infected flocks
Kahane et al. Detection of IgG antibodies specific for measles virus by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA)
Kuno-Sakai et al. A simple and sensitive ELISA of antibodies to pertussis antigens
Minas et al. Validation of a competitive ELISA for diagnosis of Brucella melitensis infection in sheep and goats
Wilkinson et al. Detection of cell-associated or soluble antigens of Legionella pneumophila serogroups 1 to 6, Legionella bozemanii, Legionella dumoffii, Legionella gormanii, and Legionella micdadei by staphylococcal coagglutination tests
KR20160075964A (ko) 돼지 콜레라 바이러스의 e2 단백질 및 이에 특이적인 단일클론항체를 이용한 돼지 콜레라 감염여부를 진단하는 방법 및 이를 구현하기 위한 진단키트
Witkowski et al. Development of ELISA test for determination of the level of antibodies against Rhodococcus equi in equine serum and colostrum
Ruths et al. ELISA procedures for the measurement of IgG subclass antibodies to bacterial antigens
Vojdani Cross-reactivity of Aspergillus, Penicillium, and Stachybotrys antigens using affinity-purified antibodies and immunoassay
MXNL06000077A (es) Un antigeno modificado para deteccion de anticuerpos contra brucella y metodo de uso.
WO1997046883A1 (en) Elisa serodiagnosis of pig pleuropneumonia serotypes 4 and 7
Choi et al. Enzyme-linked immunosorbent assay for detecting anti-pertussis toxin antibody in mouse
Noya et al. Improvements and variants of the multiple antigen blot assay-MABA: an immunoenzymatic technique for simultaneous antigen and antibody screening