RU2324738C2 - ГЕНЕТИЧЕСКАЯ КОНСТРУКЦИЯ НА ОСНОВЕ ВЕКТОРНОЙ ПЛАЗМИДЫ pEGFP-N1, ПРОДУЦИРУЮЩАЯ siPHK-ИНГИБИТОРЫ РЕПРОДУКЦИИ ВИРУСА ИММУНОДЕФИЦИТА ЧЕЛОВЕКА 1 ТИПА (ЕЕ ВАРИАНТЫ) - Google Patents

ГЕНЕТИЧЕСКАЯ КОНСТРУКЦИЯ НА ОСНОВЕ ВЕКТОРНОЙ ПЛАЗМИДЫ pEGFP-N1, ПРОДУЦИРУЮЩАЯ siPHK-ИНГИБИТОРЫ РЕПРОДУКЦИИ ВИРУСА ИММУНОДЕФИЦИТА ЧЕЛОВЕКА 1 ТИПА (ЕЕ ВАРИАНТЫ) Download PDF

Info

Publication number
RU2324738C2
RU2324738C2 RU2006121114/13A RU2006121114A RU2324738C2 RU 2324738 C2 RU2324738 C2 RU 2324738C2 RU 2006121114/13 A RU2006121114/13 A RU 2006121114/13A RU 2006121114 A RU2006121114 A RU 2006121114A RU 2324738 C2 RU2324738 C2 RU 2324738C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
hiv
reproduction
pegfp
cells
vector plasmid
Prior art date
Application number
RU2006121114/13A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2006121114A (ru
Inventor
Николай Андреевич Чуриков (RU)
Николай Андреевич Чуриков
Ольга Валерьевна Кретова (RU)
Ольга Валерьевна Кретова
Наталь Матвеевна Гашникова (RU)
Наталья Матвеевна Гашникова
Андрей Георгиевич Покровский (RU)
Андрей Георгиевич Покровский
Original Assignee
Федеральное государственное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФГУН ГНЦ ВБ "Вектор" Роспотребнадзора)
Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта РАН
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФГУН ГНЦ ВБ "Вектор" Роспотребнадзора), Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта РАН filed Critical Федеральное государственное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФГУН ГНЦ ВБ "Вектор" Роспотребнадзора)
Priority to RU2006121114/13A priority Critical patent/RU2324738C2/ru
Publication of RU2006121114A publication Critical patent/RU2006121114A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2324738C2 publication Critical patent/RU2324738C2/ru

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Abstract

Изобретение относится к медицинской и молекулярной генетике. Предложены три генетические конструкции на основе векторной плазмиды pEGFP-N1, продуцирующие siPHK-ингибиторы репродукции вируса иммунодефицита человека 1 типа. Изобретение может использоваться в разработке более эффективных анти-ВИЧ препаратов на основе интерферирующих РНК (siPHK), продуцируемых в клетках с помощью введенных векторных экспрессирующих конструкций. 3 н.п. ф-лы, 1 ил., 5 табл.

Description

Изобретение относится к медицинской и молекулярной генетике, а именно к генетическим конструкциям, продуцирующим siPHK, являющиеся ингибиторами репродукции вируса иммунодефицита человека (ВИЧ) 1 типа, и может быть использовано в медицине и научных исследованиях.
В настоящее время основным подходом лечения ВИЧ-инфекции является назначение пациентам противовирусной химиотерапии, включающей препараты, действующие на ключевые ферменты ВИЧ-1 - обратную транскриптазу, интегразу, протеазу. Наиболее эффективными из известных соединений являются 3'-азидо-3'-дезокситимидин (азидотимидин или AZT, зидовудин, «Ретровир», «Тимазид»), находящий применение в медицинской практике (Mitsuya, H.; Broder, S. Inhivition of the in vitro infectivity and cytiopathic effect of human T-lymphotropic virus type III/lymphoadenopathy-associated virus/HTLV-III(LAV) by 2',3'-dideoxynucleosides. Proc. Nat. Acad. Sci. USA, 1986, 83, 1911-1915), а также 2',3'-дидезоксицитидин (ddC, зальцитабин, «Гивид»), 2',3'-дидезоксиинозин (ddI, диданозин, «Видекс»), 3'-дезокси-2',3'-дидегидротимидин (d4T, ставудин, «Зерит») и 3'-тиоцитидин (ЗТС, ламивудин, «Эпивир»).
Однако, несмотря на большое количество разработанных анти-ВИЧ препаратов, существует проблема эффективности применяемой противовирусной терапии. Основная причина, объясняющая неэффективность лечения - адаптивный мутагенез вируса, приводящий к появлению вариантов ВИЧ-1, обладающих устойчивостью к противовирусным препаратам. Серьезными проблемами являются также токсичность и высокая стоимость применяемых лекарственных средств.
Известно применение рибозимов и антисмысловых РНК для терапии ВИЧ-инфекции [Dorman N. And Lever A.M. (2001) RNA-based gene therapy for HIV infection. HIV Med., 2, 114-122; Michienzi A., Conti L., Varano В., Prislei S., Gessani S., and Bozzoni I. (1998) Inhibition of human immunodeficiency virus type 1 replication by nuclear chimeric anti-HIVribozymes in a human Т lymphoblastoid cell line. Hum. Gene Ther., 9., 621-628; Veres G., Junker U., Baker J., Barske C., Kalfoglou C., Ilves H., Escaich S., Kaneshima H., and Bohnlein E. (1998) Comparative analisis of intracellularly expressed antisense RNAs as inhibitors of human immunodeficiency virus type 1 replication. J. Virol., 72, 1894-1901.], которые блокируют несколько генов ВИЧ, что снижает его активность.
Наиболее близким к заявленному техническому решению являются генетические конструкции, обеспечивающие экспрессию siPHK внутри ВИЧ-инфицированных клеток организма (Заявка на патент США № 20030059944, МПК С12N 15/867, опубл. 27.03.2003 г.).
Однако оценка действия интерферирующих РНК, продуцируемых в данных опубликованных генетических конструкциях, проводилась с использованием молекулярных клонов вируса иммунодефицита человека, что не позволяет прогнозировать их влияние на естественный пул вирусной популяции, заведомо обладающей генетическим разнообразием, что не допускает проведение более объективной оценки противовирусной эффективности таких генетических конструкций.
Техническим результатом предлагаемого изобретения является разработка более эффективных анти-ВИЧ препаратов на основе интерферирующих РНК (siPHK), продуцируемых в клетках с помощью введенных векторных экспрессирующих конструкций, содержащих палиндромы, предназначенные для образования "шпилек РНК" и отобранных с использованием вирусной модели - культуры клеток человека, инфицированных различными штаммами ВИЧ-1.
Поставленный технический результат достигается путем создания трех вариантов плазмидных конструкций, продуцирующих соответствующие участкам генов gag, pol и tat ВИЧ-1:
- генетическая конструкция на основе векторной плазмиды pEGFP-N1, продуцирующая siPHK-ингибиторы репродукции вируса иммунодефицита человека 1 типа, содержащая фрагмент генома ВИЧ-1: pr-hp-pEGFP-N1 с областью длиной 19 bp из консервативного района домена протеазы (1749...1767): 5' gaattccTGATTCAGATTGGTTGTACttttttGTACAACCAATCTGAATCAaccccggatcc 3'.
- генетическая конструкция на основе векторной плазмиды pEGFP-N1, продуцирующая siPHK-ингибиторы репродукции вируса иммунодефицита человека 1 типа, содержащая фрагмент генома ВИЧ-1 tat-hp-pEGFP-N1 с областью длиной 19 bp из консервативного района домена обратной транскриптазы (2116...2134):
5' gaattccTGCATATTTTTCAGTTCCCttttttGGGAACTGAAAAATATGCAtccccggatcc 3'.
- генетическая конструкция на основе векторной плазмиды pEGFP-N1, продуцирующая siPHK-ингибиторы репродукции вируса иммунодефицита человека 1 типа, содержащая фрагмент генома ВИЧ-1 RT-hp-pEGFP-N1 с областью длиной 19 bp из консервативного района tat-домена (5325...5343):
5' gaattccAGTAGGACTAATAGTAGCAttttttTGCTACTATTAGTCCTACTatccccggatcc 3',
где (во всех трех вариантах): строчными буквами показаны области, содержащие искусственные сайты рестрикции для рестриктаз EcoRI (на 5'-концах) и BamHI (на 3'-концах), а также петли, разделяющие области, способные образовать двуспиральный дуплекс с петлей, причем, области, соответствующие смысловой цепи РНК вируса, показаны в строке слева, а антисмысловой - справа.
Приведенные генетические конструкции обеспечивают целенаправленное воздействие на мРНК вируса иммунодефицита человека первого типа (ВИЧ-1) в клетках человека вирусспецифическими интерферирующими РНК (siPHK), продуцирующимися в клетках. Терапевтическим результатом такого воздействия является подавление репродукции ВИЧ-1 в клетках человека.
Для вируса иммунодефицита человека первого типа характерно быстрое возникновение и отбор мутантных вариантов, обладающих резистентностью к различным противовирусным препаратам. Для решения проблемы вирусной изменчивости разработано три генетических конструкции, стабильно экспрессирующие несколько siPHK. Затем для оценки эффективности действия используют вирусную модель - культуру клеток человека, инфицированную различными штаммами ВИЧ-1, в частности, штаммами, репродуцирующимися по типу острой и хронической инфекции. Такой подход позволяет проводить исследования, приближенные к реальным процессам развития ВИЧ-инфекции в организме. Применение лабораторных штаммов ВИЧ-1 (в отличие от молекулярных клонов вируса в прототипе) дает возможность оценивать влияние интерферирующих РНК на естественный пул вирусной популяции, заведомо обладающий генетическим разнообразием. Это также допускает проведение более объективной оценки противовирусной эффективности генетических конструкций.
На чертеже приведена физическая карта векторной плазмиды pEGFP-N1.
Пример 1. Описание генетических конструкций (три варианта) и способа их получения Плазмида pEGFP-N1 зарегистрирована GenBank Accession #U55762, номер по каталогу 6085-1, CLONOTECH Laboratories, Inc. (Prasher, D. С., et al. (1992) Primary structure of the Aequorea victoria green fluorescent protein. Gene 111: 229-233), имеет размер 4,7 т.п.о. и характеризующаяся тем, что содержит:
1. Ранний промотор цитомегаловируса человека (PCMV IE): 1-589
Энхансерный район: 59-465
ТАТА box: 554-560
Сайг начала транскрипции: 583
C->G мутацию, удаляющую сайт Sac I: 569
2. Сайты множественного клонирования (MSC). На последовательности отмечены участки узнавания для эндонуклеаз рестрикции, по которым проводилось встраивание ВИЧ-специфических фрагментов ДНК:
Figure 00000002
Figure 00000003
3. Ген EGFP (1-3), позволяющий осуществлять контроль введения векторных конструкций в клетки эукариот и проводить оптимизацию трансфекции (EGFP):
Участок последовательности Kozak (сайг инициации трансляции): 672-682
Старт кодон (ATG): 679-681; Стоп кодон: 1396-1398
Инсерция Val в позиции 2: 682-684
Мутации в гене GFPmutl (Phe-64 to Leu; Ser-65 to Thr): 871-876
His-231 to Leu mutation (A⌀T): 1373
4. Фрагмент SV40 сигнала полиаденилирования mRNA (SV40 poly A):
Сигнал полиаденилирования: 1552-1557 & 1581-1586
mRNA 3' конец: 1590 & 1602
5. Ориджин одноцепочечной ДНК фага f1 (f1 ori): 1649-2104
(пакуется некодирующая цепь EGFP)
6. Бактериальный промотор для экспрессии гена устойчивости к канамицину Kanr (Р):
- 35 район: 2166-2171; - 10 район: 2189-2194
Точка начала транскрипции: 2201
7. Ориджин репликации SV40 (SV40 ori): 2445-2580
8. Ранний промотор SV40 (PSV40e)
Энхансер (тандемный повтор 72-п.о.): 2278-2349 & 2350-2421
Повтор 21-п.о.: 2425-2445, 2446-2466, & 2468-2488
Элемент раннего промотора: 2501-2507
Основная точка начала транскрипции: 2497, 2535, 2541 & 2546
9. Ген устойчивости к канамицину/неомицину (Kanr/Neor):
Последовательность, кодирующая неомицинфосфотрансферазу:
Старт кодон (ATG): 2629-2631; стоп кодон: 3421-3423
G->A мутация, удаляющая сайт Pst 1: 2811
С->А (Arg to Ser) мутация, удаляющая сайт BssH II: 3157
10. Сигнал полиаденилирования тимидинкиназы (ТК) вируса простого герпеса (HSV ТК poly А): Сигнал полиаденилирования: 3659-3664 & 3672-3677
11. Ориджин репликации плазмиды pUC (pUC ori): 4008-4651
12. Праймеры для секвенирования
EGFP-N: 745-724
EGFP-C: 1332-1353
Векторная плазмида pEGFP-N1 кодирует ген GFP, позволяющий осуществлять контроль введения векторных конструкций в клетки эукариот по появлению в клетках флюоресцентного свечения и проводить оптимизацию трансфекини. Набор уникальных сайтов узнавания для эндонуклеаз рестрикции (MSC), расположенный между ранним промотором цитомегаловпруса человека (CMV) и HGFP кодирующей последовательностью позволяет проводить встраивание и получать экспрессию различных генов. Вектор содержит ориджин SV40, обеспечивающий репликацию в клетках млекопитающих. Кассета устойчивости к неомицину (neor), состоящая из раннего промотора SV40, гена устойчивости к канамицину/неомицину (Kanr/Neor) и сигнала полиаденилирования гена тимидинкиназы вируса простого герпеса позволяет стабильно трансфецировать клетки эукариот, используя селективное давление G418. Бактериальный промотор, расположенный рядом, обеспечивает устойчивость к канамицину клеток Е. Coli. pEGFP-N1 содержит также ориджин репликации pUC19, позволяющий проводить наработку векторной плазмиды на бактериальной культуре Е. coli и ориджин репликации фага 1 для получения одноцепочечных молекул ДНК.
Экспрессирующие "шпилечные" конструкции содержат фрагменты генома ВИЧ-1: pr-hp-pEGFP-N1, tat-hp-pEGFP-N1, RT-hp-pEGFP-N1. С помощью программы BLAST были выбраны наиболее консервативные области генома HIV-1, соответствующие функционально важным областям вируса - доменам протеазы, обратной транскриптазы и tat в последовательности AF316544 (HIV-1 подтип А). Мишенями конструкций, кодирующих siPHK, были данные области. Первая конструкция содержит область длиной 19 bp из консервативного района домена протеазы (1749...1767):
5' gaattccTGATTCAGATTGGTTGTACttttttGTACAACCAATCTGAATCAaccccggatcc 3'.
Вторая - область длиной 19 bp из консервативного района домена обратной транскриптазы (2116...2134):
5' gaattccTGCATATTTTTCAGTTCCCttttttGGGAACTGAAAAATATGCAtccccggatcc 3'.
Третья - область длиной 19 bp из консервативного района tat-домена (5325...5343):
5' gaattccAGTAGGACTAATAGTAGCAttttttTGCTACTATTAGTCCTACTatccccggatcc 3'. В вышеуказанных нуклеотидных текстах строчными буквами показаны области, содержащие искусственные сайты рестрикции для рестриктаз EcoRI (на 5'-концах) и BamHI (на 3'-концах), а также петли, разделяющие области, способные образовать двуспиральный дуплекс с петлей ("шпилька" дсРНК). Области, соответствующие смысловой цепи РНК вируса, показаны в строке слева, а антисмысловой - справа. Двуспиральные ДНК, соответствующие указанным текстам, были клонированы в EcoRI-BamHI-сайты вектора pEGFP-N1.
Пример 2. Подавление репродукции вируса иммунодефицита человека в культуре клеток МТ-4, трансфецированных различными вариантами плазмид, экспрессирующих вирусспецифичные короткие интерферирующие РНК.
Исследования проводят на перевиваемой линии лимфоидных клеток МТ-4. Клетки культивируют на среде RPMI-1640 с добавлением 10% фетальной сыворотки КРС, предварительно инактивированной прогреванием при 56°С в течение 30 минут, 300 мг/мл L-глютамина и 100 мкг/мл гентамицина.
Наработку и выделение ДНК плазмид проводят с помощью ацетата аммония согласно разработанной методике по подготовке ДНК для трансфекции клеток млекопитающих [Saporito-Irwin S.M., Geist R.T. and Gutmann D.H. (1997) Ammonium Acetate Protocol for the preparation of plasmid DNA Sutable for Mammalian Cell Transfections. BioTechniques 23(3), 424-427.]
Введение экспрессирующих плазмид в клетки осуществляют с помощью трансфекции. Трансфекцию проводят с использованием липофектамина (LipofectamineТМ 2000, Invitrogen). На третьи сутки культивирования клетки МТ-4 отмывают в минимальной среде (ДМЕМ без фенолового красного) и разводят до концентрации 0,5×106 кл/мл. 5 мкг плазмидной ДНК разводят в 50 мкл минимальной среды, выдерживают 5 мин при комнатной температуре и смешивают с 3 мкл липофектамина, разведенного в 50 мкл минимальной среды. Смесь инкубируют 20 мин при комнатной температуре. 100 мкл раствора ДНК/липофектамин добавляют к 500 мкл клеток МТ-4. Клетки культивируют в 24-луночном планшете. Клетки инкубируют 5 часов при 37°С в СО2-инкубаторе. Затем добавляют 500 мкл ростовой среды, содержащей 20% фетальную сыворотку КРС. Эффективность трансфекции составляет около 30%. Эффективность оценивают регистрацией появления зеленой флюоресценции с использованием флюоресцентного микроскопа "Olimpus". Клетки МТ-4, трансфецированные различными вариантами плазмид, инфицируют штаммом ВИЧ-1/ГКВ-4046 через 24 и 72 часа. Для заражения используют супернатант инфицированных штаммом ГКВ-4046 ВИЧ-1 клеток со множественностью заражения 2-5×10-1 и 2-5×10-2 инфекционных единиц на клетку. Планшет инкубируют при 37°С четверо суток в атмосфере 5% СО2. Ежедневно отбирают пробы для количественного определения вирусспецифического белка р24 методом прямого иммуноферментного анализа. Концентрацию и жизнеспособность клеток оценивают методом исключения трипанового синего.
Влияние введения в клетки экспрессирующих векторных конструкций на репродукцию ВИЧ-1 оценивают по накоплению вирусспецифического антигена р24 через 24, 48 и 72 часа. Результаты приведены в таблицах 1-4.
Таблица 1
Накопление антигена р24 (нг) в клетках МТ-4 при инфицировании со множественностью заражения 2-5×10-1 инфекционных единиц ВИЧ-1 на клетку
1 2 3 4 5
24 часа 1421 1126,4 1306 1239 н.о
48 часов 1523 819 909 947 н.о
72 часа 3098 1613 1664 1869 1248
Таблица 2
Накопление антигена р24 (нг) в клетках МТ-4 при инфицировании со множественностью заражения 2-5×10-2 инфекционных единиц ВИЧ-1 на клетку
1 2 3 4 5
24 часа 174,4 193,6 219,2 212,8 н.о
48 часов 222 147 138 149 н.о
72 часа 2035 1178 1434 1293 174
Таблица 3
Процент ингибирования ВИЧ-1 в клетках МТ-4 при инфицировании со множественностью заражения 2-5×10-1 инфекционных единиц ВИЧ-1 на клетку
2 3 4 5
24 часа 20,7 8,1 12,8 н.о
48 часов 46,2 40,3 37,8 н.о
72 часа 47,9 46,3 39,7 59,7
Таблица 4
Процент подавления репродукции ВИЧ в клетках МТ-4 при инфицировании со множественностью заражения 2-5×10-2 инфекционных единиц ВИЧ-1 на клетку
2 3 4 5
24 часа -11 -25,7 -22,2 н.о
48 часов 33,8 37,8 32,9 н.о
72 часа 42,1 29,5 36,4 91,4
Примечание:
1 - клетки МТ-4;
2 - клетки МТ-4, трансфецированные плазмидой RT-hp-pEGFP-NI;
3 - клетки МТ-4, трансфецированные плазмидой tat-hp-pEGFP-NI;
4 - клетки МТ-4, трансфецированные плазмидой pr-hp-pEGEP-NI.
5 - клетки МТ-4, трансфецированные плазмидой RT-hp-pEGFP-NI (инфицирование клеток проводили через 72 часа).
При заражении клеток МТ-4 вирусом иммунодефицита человека первого типа показано ингибирование репродукции вируса в клетках, трансфецированных плазмидами, экспрессирующими вирусспецифические siPHK. Выраженный противовирусный эффект наблюдается при заражении клеток высокой концентрацией ВИЧ-1 (количество вирусных частиц эквивалентно 1081,5 нг р24), таблицы 1 и 3. Максимальное подавление вируса (60% и 91%) выявлено при заражении клеток через 72 часа после введения плазмиды.
Пример 3. Подавление репродукции ВИЧ в культуре клеток МТ-4 путем введения в клетки электропорацией векторных конструкций, экспрессирующих короткие интерферирующие РНК.
Клетки МТ-4 культивируют, как описано выше, 3 суток до концентрации 1,6 млн/мл, отмывают дважды средой RPMI, суспендируют в нужном объеме среды до концентрации 1×107 кл/мл. К 800 мкл суспензии клеток добавляют 40 мкг плазмидной ДНК, выдерживают 15 мин во льду и переносят в кювету для электропорации. Электропорацию проводят при 400 Вт, 960 мкФ (Gene PulserR Transfection Apparatus, Bio-Rad). Продолжительность импульса 31-36 мс. После электропорации клетки переносят в среду RPMI с добавлением 10% фетальной сыворотки КРС. Эффективность введения плазмидной ДНК 92-98% (оценивают регистрацией появления зеленой флюоресценции с использованием флюоресцентного микроскопа "Olimpus"). Клетки инфицируют через 3 суток после электропорации с различной множественностью заражения. Для заражения используют супернатант инфицированных штаммом ГКВ-4046 ВИЧ-1 клеток со множественностью заражения 2-5×10-1, 2-5×10-2 и 2-5×10-3 инфекционных единиц на клетку. Планшет инкубируют при 37°С четверо суток в атмосфере 5% СО2. На четвертые сутки отбирают пробы для количественного определения вирусспецифического белка р24 методом прямого иммуноферментного анализа. Концентрацию и жизнеспособность клеток оценивают методом исключения трипанового синего. Влияние введения в клетки экспрессирующих векторных конструкций на репродукцию ВИЧ-1 оценивают по накоплению вирусспецифического антигена р24. Результаты приведены в таблице 5.
Таблица 5
Процент подавления репродукции ВИЧ-1 в клетках МТ-4 при инфицировании с различной множественностью заражения
1 2 3 4
Инфицирующая доза ВИЧ-1
0.2-0.5 36,9 26,4 23,4
0.2-0.5×10-1 75,3 72,0 71,6
0.2-0.5×10-2 98 89 79
Примечание:
2 - клетки МТ-4, трансфецированные плазмидой RT- hp-pEGFP-NI;
3 - клетки МТ-4, трансфецированные плазмидой tat-hp-pEGFP-NI;
4 - клетки МТ-4, трансфецированные плазмидой pr-hp-pEGEP-NI.
Показано, что в клетках, содержащих векторные конструкции, наблюдается значительное подавление репродукции ВИЧ-1 по сравнению с нетрансфецированными клетками (до 90%). При этом наблюдается зависимость величины ингибирования репродукции вируса от инфицирующей дозы ВИЧ-1.

Claims (3)

1. Генетическая конструкция на основе векторной плазмиды pEGFP-N1, продуцирующая siPHK-ингибиторы репродукции вируса иммунодефицита человека 1 типа, содержащая фрагмент генома ВИЧ-1: pr-hp-pEGFP-N1 с областью длиной 19 bp из консервативного района домена протеазы (1749...1767):
5'
gaattccTGATTCAGATTGGTTGTACttttttGTACAACCAATCTGAATCAaccc
cggatcc3',
где строчными буквами показаны области, содержащие искусственные
сайты рестрикции для рестриктаз EcoRI (на 5'-концах) и BamHI (на 3'-концах), а также петли, разделяющие области, способные образовать двуспиральный дуплекс с петлей, причем области, соответствующие смысловой цепи РНК вируса, показаны в строке слева, а антисмысловой - справа.
2. Генетическая конструкция на основе векторной плазмиды pEGFP-N1, продуцирующая siPHK-ингибиторы репродукции вируса иммунодефицита человека 1 типа, содержащая фрагмент генома ВИЧ-1 tat-hp-pEGFP-N1 с областью длиной 19 bp из консервативного района домена обратной транскриптазы (2116...2134):
5'
gaattccTGCATATTTTTCAGTTCCCttttttGGGAACTGAAAAATATGCAtcccc
ggatcc3',
где строчными буквами показаны области, содержащие искусственные сайты рестрикции для рестриктаз EcoRI (на 5'-концах) и BamHI (на 3'- концах), а также петли, разделяющие области, способные образовать двуспиральный дуплекс с петлей, причем области, соответствующие смысловой цепи РНК вируса, показаны в строке слева, а антисмысловой - справа.
3. Генетическая конструкция на основе векторной плазмиды pEGFP-N1, продуцирующая siPHK-ингибиторы репродукции вируса иммунодефицита человека 1 типа, содержащая фрагмент генома ВИЧ-1 RT-hp-pEGFP-N1 с областью длиной 19 bp из консервативного района tat-домена(5325...5343):
5'
gaattccAGTAGGACTAATAGTAGCAttttttTGCTACTATTAGTCCTACTatccc cggatcc 3',
где строчными буквами показаны области, содержащие искусственные сайты рестрикции для рестриктаз EcoRI (на 5'-концах) и BamHI (на 3'-концах), а также петли, разделяющие области, способные образовать двуспиральный дуплекс с петлей, причем области, соответствующие смысловой цепи РНК вируса, показаны в строке слева, а антисмысловой - справа.
RU2006121114/13A 2006-06-16 2006-06-16 ГЕНЕТИЧЕСКАЯ КОНСТРУКЦИЯ НА ОСНОВЕ ВЕКТОРНОЙ ПЛАЗМИДЫ pEGFP-N1, ПРОДУЦИРУЮЩАЯ siPHK-ИНГИБИТОРЫ РЕПРОДУКЦИИ ВИРУСА ИММУНОДЕФИЦИТА ЧЕЛОВЕКА 1 ТИПА (ЕЕ ВАРИАНТЫ) RU2324738C2 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2006121114/13A RU2324738C2 (ru) 2006-06-16 2006-06-16 ГЕНЕТИЧЕСКАЯ КОНСТРУКЦИЯ НА ОСНОВЕ ВЕКТОРНОЙ ПЛАЗМИДЫ pEGFP-N1, ПРОДУЦИРУЮЩАЯ siPHK-ИНГИБИТОРЫ РЕПРОДУКЦИИ ВИРУСА ИММУНОДЕФИЦИТА ЧЕЛОВЕКА 1 ТИПА (ЕЕ ВАРИАНТЫ)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2006121114/13A RU2324738C2 (ru) 2006-06-16 2006-06-16 ГЕНЕТИЧЕСКАЯ КОНСТРУКЦИЯ НА ОСНОВЕ ВЕКТОРНОЙ ПЛАЗМИДЫ pEGFP-N1, ПРОДУЦИРУЮЩАЯ siPHK-ИНГИБИТОРЫ РЕПРОДУКЦИИ ВИРУСА ИММУНОДЕФИЦИТА ЧЕЛОВЕКА 1 ТИПА (ЕЕ ВАРИАНТЫ)

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2006121114A RU2006121114A (ru) 2008-01-10
RU2324738C2 true RU2324738C2 (ru) 2008-05-20

Family

ID=39019535

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2006121114/13A RU2324738C2 (ru) 2006-06-16 2006-06-16 ГЕНЕТИЧЕСКАЯ КОНСТРУКЦИЯ НА ОСНОВЕ ВЕКТОРНОЙ ПЛАЗМИДЫ pEGFP-N1, ПРОДУЦИРУЮЩАЯ siPHK-ИНГИБИТОРЫ РЕПРОДУКЦИИ ВИРУСА ИММУНОДЕФИЦИТА ЧЕЛОВЕКА 1 ТИПА (ЕЕ ВАРИАНТЫ)

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2324738C2 (ru)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2562868C2 (ru) * 2009-07-15 2015-09-10 Кэлиммьюн Инк. Двойной вектор для подавления вируса иммунодефицита человека
RU2607381C1 (ru) * 2015-06-22 2017-01-10 Федеральное Государственное Бюджетное Учреждение Науки Институт Молекулярной Биологии Им. В.А. Энгельгардта Российской Академии Наук (Имб Ран) Кассетная генетическая конструкция, экспрессирующая две биологически активные siPHK, эффективно атакующие мишени в мРНК обратной транскриптазы ВИЧ-1 субтипа А у больных в России, и одну siPHK, направленную на мРНК гена CCR5
RU2630644C1 (ru) * 2016-10-04 2017-09-11 Федеральное Государственное Бюджетное Учреждение Науки Институт Молекулярной Биологии Им. В.А. Энгельгардта Российской Академии Наук (Имб Ран) Кассетная генетическая конструкция, экспрессирующая две биологически активные siPHK, эффективно атакующие мишени в мРНК генов vpu и env ВИЧ-1 субтипа А у больных в России, и одну siPHK, направленную на мРНК гена CCR5
RU2666991C1 (ru) * 2017-09-14 2018-09-13 Федеральное бюджетное учреждение науки "Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФБУН ЦНИИ Эпидемиологии Роспотребнадзора) Генетические конструкции и их смеси для антиВИЧ терапии

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2562868C2 (ru) * 2009-07-15 2015-09-10 Кэлиммьюн Инк. Двойной вектор для подавления вируса иммунодефицита человека
RU2607381C1 (ru) * 2015-06-22 2017-01-10 Федеральное Государственное Бюджетное Учреждение Науки Институт Молекулярной Биологии Им. В.А. Энгельгардта Российской Академии Наук (Имб Ран) Кассетная генетическая конструкция, экспрессирующая две биологически активные siPHK, эффективно атакующие мишени в мРНК обратной транскриптазы ВИЧ-1 субтипа А у больных в России, и одну siPHK, направленную на мРНК гена CCR5
RU2630644C1 (ru) * 2016-10-04 2017-09-11 Федеральное Государственное Бюджетное Учреждение Науки Институт Молекулярной Биологии Им. В.А. Энгельгардта Российской Академии Наук (Имб Ран) Кассетная генетическая конструкция, экспрессирующая две биологически активные siPHK, эффективно атакующие мишени в мРНК генов vpu и env ВИЧ-1 субтипа А у больных в России, и одну siPHK, направленную на мРНК гена CCR5
RU2666991C1 (ru) * 2017-09-14 2018-09-13 Федеральное бюджетное учреждение науки "Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФБУН ЦНИИ Эпидемиологии Роспотребнадзора) Генетические конструкции и их смеси для антиВИЧ терапии

Also Published As

Publication number Publication date
RU2006121114A (ru) 2008-01-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
ES2887776T3 (es) Vectores de ADN no integradores para la modificación genética de células
JP4024830B2 (ja) Hhv−7由来の組換ウイルスベクター、その製造方法、それを用いた宿主細胞の形質転換方法、それにより形質転換された宿主細胞およびそれを用いた遺伝子治療方法
US20060228800A1 (en) Novel Transgenic Methods Using intronic RNA
JP2016521133A (ja) 環状rnaの細胞内翻訳
CA2502649A1 (en) Double-stranded rna structures and constructs, and methods for generating and using the same
NZ550284A (en) Multiple promoter expression cassettes for simultaneous delivery of RNAi agents
TW201136594A (en) Modulation of hsp47 expression
RU2324738C2 (ru) ГЕНЕТИЧЕСКАЯ КОНСТРУКЦИЯ НА ОСНОВЕ ВЕКТОРНОЙ ПЛАЗМИДЫ pEGFP-N1, ПРОДУЦИРУЮЩАЯ siPHK-ИНГИБИТОРЫ РЕПРОДУКЦИИ ВИРУСА ИММУНОДЕФИЦИТА ЧЕЛОВЕКА 1 ТИПА (ЕЕ ВАРИАНТЫ)
US20120301449A1 (en) Rna interference target for treating aids
CN111040998B (zh) 一种稳定表达狂犬病毒糖蛋白细胞株的构建及其应用
RU2385939C1 (ru) Генетические конструкции, атакующие шесть новых мишеней рнк-интерференции в транскриптах вируса иммунодефицита человека 1 типа и подавляющие репродукцию вируса в клетках человека
US20180044679A1 (en) Composition for treating cancer associated with hpv infection
WO2020125576A1 (zh) 一种在细胞中递送基因的方法
US9421167B2 (en) Preparation of microvesicle-siRNA complexes and use thereof in AIDS treatment
RU2425150C1 (ru) КАССЕТНАЯ ГЕНЕТИЧЕСКАЯ КОНСТРУКЦИЯ, ЭКСПРЕССИРУЮЩАЯ ТРИ БИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНЫЕ siPHK, ЭФФЕКТИВНО АТАКУЮЩИЕ ТРАНСКРИПТЫ ВИРУСА ИММУНОДЕФИЦИТА ЧЕЛОВЕКА И ГЕНА CCR5 С ПОМОЩЬЮ PHK-ИНТЕРФЕРЕНЦИИ
CZ294170B6 (cs) Podmíněně se replikující virové vektory a jejich použití
US20110027313A1 (en) Viral recombineering and uses thereof
Camerini et al. A dormant internal ribosome entry site controls translation of feline immunodeficiency virus
CN109266684B (zh) 一种构建病原感染敏感性动物模型的方法
RU2630644C1 (ru) Кассетная генетическая конструкция, экспрессирующая две биологически активные siPHK, эффективно атакующие мишени в мРНК генов vpu и env ВИЧ-1 субтипа А у больных в России, и одну siPHK, направленную на мРНК гена CCR5
RU2552607C2 (ru) КАССЕТНАЯ ГЕНЕТИЧЕСКАЯ КОНСТРУКЦИЯ, ЭКСПРЕССИРУЮЩАЯ ДВЕ БИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНЫЕ siPHK, ЭФФЕКТИВНО АТАКУЮЩИЕ ТРАНСКРИПТЫ ВИЧ-1 СУБТИПА А У БОЛЬНЫХ В РОССИИ, И ОДНУ siPHK, НАПРАВЛЕННУЮ НА мРНК ГЕНА CCR5
CN114908089B (zh) 3’utr的构建方法和应用
CN103966259B (zh) 一种基于J亚群禽白血病病毒gag基因保守序列的siRNA重组干扰载体及其制备方法和应用
RU2552486C2 (ru) КАССЕТНАЯ ГЕНЕТИЧЕСКАЯ КОНСТРУКЦИЯ, ЭКСПРЕССИРУЮЩАЯ ДВЕ БИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНЫЕ siPHK, ЭФФЕКТИВНО АТАКУЮЩИЕ ТРАНСКРИПТЫ ВИЧ-1 СУБТИПА А У БОЛЬНЫХ В РОССИИ, НАПРАВЛЕННЫЕ НА мPHK ОБРАТНОЙ ТРАНСКРИТАЗЫ И ИНТЕГРАЗЫ, И ОДНУ siPHK, НАПРАВЛЕННУЮ НА мPHK ГЕНА CCR5
ES2366126T3 (es) CASSETTE DE EXPRESIÓN DE PROMOTOR MÚLTIPLE PARA EL SUMINISTRO SIMULTÁNEO DE AGENTES ARNi.

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20150617