RU2324338C1 - Способ получения биомассы in vitro - Google Patents

Способ получения биомассы in vitro Download PDF

Info

Publication number
RU2324338C1
RU2324338C1 RU2007103055/13A RU2007103055A RU2324338C1 RU 2324338 C1 RU2324338 C1 RU 2324338C1 RU 2007103055/13 A RU2007103055/13 A RU 2007103055/13A RU 2007103055 A RU2007103055 A RU 2007103055A RU 2324338 C1 RU2324338 C1 RU 2324338C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
explants
biomass
growth
callus
callus formation
Prior art date
Application number
RU2007103055/13A
Other languages
English (en)
Inventor
Марина Эдуардовна Ламберова (RU)
Марина Эдуардовна Ламберова
Владимир Николаевич Хмелев (RU)
Владимир Николаевич Хмелев
Анна Александровна Ламберова (RU)
Анна Александровна Ламберова
Анна Николаевна Хмелева (RU)
Анна Николаевна Хмелева
Алена Сергеевна Косолапова (RU)
Алена Сергеевна Косолапова
Original Assignee
Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Алтайский государственный технический университет им. И.И. Ползунова" (АлтГТУ)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Алтайский государственный технический университет им. И.И. Ползунова" (АлтГТУ) filed Critical Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Алтайский государственный технический университет им. И.И. Ползунова" (АлтГТУ)
Priority to RU2007103055/13A priority Critical patent/RU2324338C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2324338C1 publication Critical patent/RU2324338C1/ru

Links

Landscapes

  • Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)

Abstract

Способ включает заготовку эксплантов, их стерилизацию, помещение эксплантов для каллусообразования и роста биомассы в стерильные пробирки с модифицированной питательной средой Мурасиге-Скуга с добавлением ростовых стимуляторов, термостатирование при 26±1°С. Стерилизацию эксплантов осуществляют в дистиллированной воде воздействием ультразвуковых колебаний с интенсивностью 1...2 Вт/кв.см на рабочей частоте 22...44 кГц в течение 3...6 мин. На этапах каллусообразования и роста биомассы пробирки с эксплантами погружают в водную среду и осуществляют через нее воздействие ультразвуковыми колебаниями с интенсивностью не менее 10...15 Вт/кв.см на частоте 22...44 кГц. Воздействие проводят со стороны дна пробирок с периодичностью не реже 1 раза в сутки в течение не менее 6 мин на каждом этапе. Прирост биомассы составляет 87,40-176,53%. Способ позволяет получить оздоровленный посадочный материал, увеличить эффективность стерилизации, увеличить способность неинфицированных эксплантов образовывать каллус. 5 табл.

Description

Изобретение предназначено для использования в области сельского хозяйства и биотехнологии и может быть использовано для получения оздоровленного посадочного материала (микроразмножения при оздоровлении растений), выведении новых сортов и получения биомассы (каллуса) растительного сырья для фармацевтической и косметической промышленности.
В настоящее время актуальным является получение биомассы (каллуса) растительного сырья для выведения новых сортов растений, придание им устойчивости к различным видам бактерий, грибов и вирусов, сорнякам, насекомым-вредителям и другим неблагоприятным факторам окружающей среды, а также для получения экстрактов биологически активных веществ из растительного сырья и сохранения видов исчезающих растений, занесенных в Красную книгу.
Наиболее широко распространенными способами получения биомассы (каллуса) для указанных целей являются биотехнологические способы роста культур клеток и тканей in vitro [1, 2, 3, 4]. Все известные способы получения биомассы in vitro предполагают изоляцию зон роста в виде различных эксплантов из исходного растения, стерилизацию их и помещение в стерильных условиях на питательную среду Мурасиге-Скуга (МС) с заданным составом ростовых веществ. Для накопления биомассы (каллуса) обычно используются первичные экспланты в виде проростков семян, частей листьев и стеблей, пазушных и апикальных меристем и почек клубней или корнеплодов растений.
Общим недостатком всех известных способов является их низкая производительность (эффективность), обусловленная:
- низкой эффективностью стерилизации (менее 50%) исходного материала (эксплантов);
- малой долей эксплантов, образующих каллус (эффективность каллусообразования не более 30...40% от общего количества неинфицированных эксплантов);
- недостаточным приростом биомассы образовавшегося каллуса (не более 60% от исходной массы).
Перечисленные недостатки ограничивают возможность применения известных способов для промышленного производства.
В связи с этим возникает необходимость повышения эффективности способов получения биомассы in vitro на всех этапах осуществления процесса: стерилизация, каллусообразование и рост биомассы. Как правило, это осуществляют при помощи дополнительных воздействий на различных этапах реализации процесса (применение различных стерилизующих растворов, добавлением ростовых факторов каллусообразования, температурным воздействием и воздействием различных излучений).
Наиболее близким по технической сущности к предлагаемому является способ получения биомассы in vitro по патенту РФ 2222933 [5], принятый за прототип. Способ получения биомассы in vitro, по [5], включает заготовку эксплантов из проростков, тканей или клеток, их стерилизацию, помещение эксплантов для каллусообразования и роста биомассы в стерильные пробирки с модифицированной питательной средой Мурасиге-Скуга с добавлением ростовых факторов каллусообразования, термостатирование при температуре 26±1 градус Цельсия и относительной влажности 70%.
На этапе роста биомассы в известном способе осуществляется воздействие посредством индуктора последовательностью однонаправленных импульсов магнитной индукции с амплитудным значением 0,05 Тл, периодом 5, 12 с, скважностью от 100 до 4500, причем апикальную часть экспланта ориентируют противоположно направлению вектора магнитной индукции, а число импульсов устанавливают от 10 до 100.
Способ позволяет увеличить количество образующейся биомассы in vitro. В этом случае рост биомассы происходит только на неинфицированных эксплантах, образовавших каллус.
При этом основные потери исходного материала из-за инфицирования и отсутствия каллусообразования не были устранены.
Таким образом, прототип не позволяет повысить производительность процесса и довести эффективность способа получения биомассы in vitro до промышленного применения.
В предлагаемом способе получения биомассы in vitro решается задача увеличения производительности процесса получения биомассы за счет повышения эффективности всех основных стадий этого процесса:
- стерилизации исходного материала (эксплантов) без применения химических дезинфицирующих растворов;
- увеличения способности неинфицированных эксплантов образовывать каллус;
- увеличения получаемой биомассы не только за счет увеличения прироста на каждом образовавшем каллус неинфицированном экспланте, но и за счет увеличения числа неинфицированных и образующих каллус первичных эксплантов.
Предлагаемый способ получения биомассы in vitro включает заготовку эксплантов из различных частей растений (проростков, тканей или клеток), их стерилизацию, помещение эксплантов для каллусообразования и роста биомассы в стерильные пробирки с модифицированной питательной средой Мурасиге-Скуга с добавлением ростовых стимуляторов каллусообразования, термостатирование при температуре 26±1 градус Цельсия и относительной влажности 70%. Стерилизацию эксплантов осуществляют в дистиллированной воде воздействием на экспланты ультразвуковыми колебаниями с интенсивностью 1...2 Вт/кв.см на рабочей частоте 22...44 кГц в течение 3...6 минут. После помещения эксплантов на питательную среду, на этапах каллусообразования и роста биомассы пробирки с эксплантами погружают в водную среду и осуществляют через нее воздействие ультразвуковыми колебаниями с интенсивностью не менее 10...15 Вт/кв.см на частоте 22...44 кГц со стороны дна пробирок с периодичностью не реже 1 раза в сутки в течение не менее 6 минут на каждом этапе.
Сущность предлагаемого способа заключается:
- в рациональном (оптимальном по интенсивности и времени) воздействии на помещенные в стерильную воду экспланты ультразвуковыми колебаниями, обеспечивающими стерилизующий эффект за счет формирования и захлопывания в водной среде на поверхности эксплантов кавитационных пузырьков [6]. При этом происходит разрушение патогенных форм без применения каких-либо химических стерилизующих веществ;
- в рациональном (оптимальном по интенсивности и времени) воздействии ультразвуковыми колебаниями на экспланты, находящиеся в стерильных пробирках на питательной среде. УЗ колебания, распространяясь в водной среде, проникают через стенки пробирок и питательную среду к поверхности эксплантов. При воздействии ультразвуковых колебаний на экспланты, находящиеся в питательной среде, интенсифицируются процессы массообмена и проникновения питательной среды внутри эксплантов и растущей биомассы. Ускорение процессов массообмена [6] обеспечивает интенсификацию подвода питательной среды к поверхности экспланта и растущей биомассы, а звукокапиллярный эффект [6] обеспечивает эффективное проникновение питательной среды по капиллярам эксплантов и через поры к растущей биомассе.
Способ осуществляют следующим образом. Берется по 40 пробирок с питательной средой и эксплантами. Эксплантами являлись зародышевые листки проростков семян и пазушные почки растений гречихи, картофеля и сои.
Эффективность стерилизации (Э1) определяют по количеству неинфицированных эксплантов после стерилизации (с) в процентах от исходного количества стерилизуемых эксплантов (х):
Figure 00000001
Эффективность каллусообразования (Э2) определяют по количеству стерильных эксплантов, образовавших каллус в пробирках с питательной средой (k) в процентах, от исходного количества вводимых в культуру эксплантов (х):
Figure 00000002
Прирост биомассы определяют в граммах и процентах.
Прирост биомассы в граммах - это разница между конечным и начальным весом биомассы, образовавшейся за определенный промежуток времени.
Прирост биомассы в процентах - это разница между конечным и начальным весом биомассы за определенный промежуток времени, отнесенный к начальному весу каллуса в культивационной пробирке.
Результаты стерилизации эксплантов по способу, принятому за прототип (без ультразвука), и по предложенному способу представлены в таблице 1.
Таблица 1
Результаты стерилизации эксплантов
Вариант Исходное количество эксплантов, шт. Количество неинфицированных эксплантов, шт. Эффективность стерилизации, %
Гречиха
Прототип 30 19 63,30
Предложенный способ 30 27 90,00
Картофель
Прототип 30 19 63,30
Предложенный способ 30 26 86,70
Соя
Прототип 40 25 62,50
Предложенный способ 40 31 77,50
Эффективность каллусообразования по предложенному способу представлена результатами эксперимента, приведенными в таблице 2.
Таблица 2
Результаты каллусообразования из эксплантов
Вариант Исходное количество эксплантов, % Количество пробирок с каллусом, % Эффективность каллусообразования, %
Гречиха
Прототип 30 5 16,70
Предложенный способ 30 12 40,00
Картофель
Прототип 50 12 24,00
Предложенный способ 50 21 42,00
Соя
Прототип 25 8 32,00
Предложенный способ 31 15 48,40
Результаты прироста биомассы представлены в таблицах 3, 4 и 5.
Таблица 3
Прирост биомассы картофеля
Вариант Начальная масса каллуса, г Конечная масса каллуса, г Прирост биомассы
Абсолютный, г Средний, г Абсолютный, % Средний, %
1 2 3 4 5 6 7
Прототип 0,035 0,071 0,036 0,036 102,86 57,69
0,042 0,080 0,038 90,48
0,053 0,093 0,040 75,47
0,061 0,090 0,029 47,54
0,067 0,099 0,032 47,76
0,074 0,108 0,034 45,95
0,083 0,119 0,036 43,37
0,089 0,126 0,037 41,57
0,094 0,133 0,039 41,49
0,099 0,139 0,040 40,40
Предложенный способ 0,043 0,106 0,063 0,061 146,51 98,54
0,049 0,114 0,065 132,65
0,051 0,123 0,072 141,18
0,056 0,109 0,053 94,64
0,062 0,121 0,059 95,16
0,064 0,130 0,066 103,13
0,077 0,127 0,050 64,94
0,083 0,145 0,062 74,70
0,091 0,160 0,069 75,82
0,097 0,152 0,055 56,70
Таблица 4
Прирост биомассы гречихи
Вариант Начальная масса каллуса, г Конечная масса каллуса, г Прирост биомассы
Абсолютный, г Средний, г Абсолютный, % Средний, %
1 2 3 4 5 6 7
Прототип 0,055 0,120 0,065 0,077 118,18 136,29
0,046 0,109 0,063 136,96
0,038 0,108 0,070 184,21
0,056 0,154 0,098 175,00
0,052 0,095 0,043 82,69
0,072 0,179 0,107 148,61
0,078 0,193 0,115 147,44
0,074 0,179 0,105 141,89
0,044 0,094 0,050 113,64
0,049 0,105 0,056 114,28
Предложенный способ 0,077 0,212 0,135 0,103 175,32 176,53
0,046 0,132 0,086 186,96
0,063 0,157 0,094 149,20
0,068 0,196 0,128 188,23
0,056 0,160 0,104 185,71
0,060 0,170 0,110 183,33
0,052 0,138 0,086 165,38
0,062 0,170 0,108 174,19
0,047 0,130 0,083 176,59
0,051 0,143 0,092 180,39
Таблица 5
Прирост биомассы сои
Вариант Начальная масса каллуса, г Конечная масса каллуса, г Прирост биомассы
Абсолютный, г Средний, г Абсолютный, % Средний, %
1 2 3 4 5 6 7
Прототип 0,193 0,222 0,029 0,035 15,13 34,52
0,15 0,178 0,027 18,34
0,190 0,230 0,040 21,56
0,117 0,151 0,034 29,42
0,111 0,152 0,041 37,78
0,093 0,135 0,042 45,17
0,074 0,111 0,037 50,29
0,052 0,082 0,030 58,45
Предложенный способ 0,114 0,171 0,057 0,094 50,57 87,40
0,131 0,213 0,082 62,97
0,117 0,200 0,083 71,55
0,135 0,236 0,101 75,47
0,100 0,179 0,079 79,93
0,096 0,175 0,079 83,52
0,127 0,236 0,109 86,61
0,139 0,270 0,131 94,70
Таким образом, в результате реализации предлагаемого способа получения биомассы in vitro была решена проблема увеличения производительности процесса получения биомассы за счет повышения эффективности всех основных стадий этого процесса:
- увеличения эффективности стерилизации с 60% до 90% без применения химических стерилизаторов;
- увеличения в два раза способности неинфицированных эксплантов образовывать каллус;
- увеличения, практически в два раза, получаемой биомассы за счет увеличения прироста на каждом образовавшем каллус неинфицированном экспланте;
- многократное (не менее 10 раз) увеличение эффективности способа, то есть производительности получения конечного продукта - биомассы из заготовленного полевого исходного сырья (нестерилизованных эксплантов).
Технический результат предлагаемого решения выражается в том, что полученные результаты позволяют использовать предложенный способ для промышленного применения, например, при получении биомассы лекарственных растений для последующего экстрагирования или сельскохозяйственных растений для дальнейшего получения оздоровленных растений - регенерантов.
В настоящее время Бийским технологическим институтом Алтайского государственного технического университета ведется подготовка к серийному производству биомассы лекарственных и сельскохозяйственных растений на основе предложенного способа.
Список литературы
1. Патент РФ №2286053.
2. Патент РФ №2279212.
3. Патент РФ №2180165.
4. Патент РФ №2282352.
5. Патент РФ №2222933 (прототип).
6. Хмелев В.Н. Многофункциональные ультразвуковые аппараты и их применение в условиях малых производств, сельском хозяйстве и домашнем хозяйстве / В.Н.Хмелев, О.В.Попова. - Барнаул: изд. АлтГТУ, 1997, - 160 с.

Claims (1)

  1. Способ получения биомассы in vitro, включающий заготовку эксплантов из проростков, тканей или клеток, их стерилизацию, помещение эксплантов для каллусообразования и роста биомассы в стерильные пробирки с модифицированной питательной средой Мурасиге-Скуга с добавлением ростовых стимуляторов каллусообразования, термостатирование при температуре 26±1°С и относительной влажности 70%, отличающийся тем, что стерилизацию эксплантов осуществляют в дистиллированной воде воздействием на экспланты ультразвуковыми колебаниями с интенсивностью 1...2 Вт/см2 на рабочей частоте 22...44 кГц в течение 3...6 мин, после помещения эксплантов на питательную среду на этапах каллусообразования и роста биомассы пробирки с эксплантами погружают в водную среду и осуществляют через нее воздействие ультразвуковыми колебаниями с интенсивностью не менее 10...15 Вт/см2 на частоте 22...44 кГц со стороны дна пробирок с периодичностью не реже 1 раза в сутки в течение не менее 6 мин на каждом этапе.
RU2007103055/13A 2007-01-25 2007-01-25 Способ получения биомассы in vitro RU2324338C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2007103055/13A RU2324338C1 (ru) 2007-01-25 2007-01-25 Способ получения биомассы in vitro

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2007103055/13A RU2324338C1 (ru) 2007-01-25 2007-01-25 Способ получения биомассы in vitro

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2324338C1 true RU2324338C1 (ru) 2008-05-20

Family

ID=39798703

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2007103055/13A RU2324338C1 (ru) 2007-01-25 2007-01-25 Способ получения биомассы in vitro

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2324338C1 (ru)

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
MD3899C2 (ru) * 2009-02-23 2009-12-31 Институт Генетики, Физиологии И Защиты Растений Академии Наук Молдовы Способ микроразмножения Echinacea purpurea L. Moench in vitro
MD31Z (ru) * 2009-02-23 2010-01-31 Институт Генетики, Физиологии И Защиты Растений Академии Наук Молдовы Способ микроразмножения Echinacea purpurea L. Moench in vitro
MD605Z (ru) * 2012-07-09 2013-10-31 Институт Генетики И Физиологии Растений Академии Наук Молдовы Способ микроклонального размножения растений Actinidia arguta in vitro

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
MD3899C2 (ru) * 2009-02-23 2009-12-31 Институт Генетики, Физиологии И Защиты Растений Академии Наук Молдовы Способ микроразмножения Echinacea purpurea L. Moench in vitro
MD31Z (ru) * 2009-02-23 2010-01-31 Институт Генетики, Физиологии И Защиты Растений Академии Наук Молдовы Способ микроразмножения Echinacea purpurea L. Moench in vitro
MD605Z (ru) * 2012-07-09 2013-10-31 Институт Генетики И Физиологии Растений Академии Наук Молдовы Способ микроклонального размножения растений Actinidia arguta in vitro

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Loureiro et al. Extract powder from the brown alga Ascophyllum nodosum (Linnaeus) Le Jolis (AMPEP): a “vaccine-like” effect on Kappaphycus alvarezii (Doty) Doty ex PC Silva
CN105191793B (zh) 紫马铃薯组培苗的高效繁育方法
CN104412968A (zh) 香草醛在制备南方根结线虫杀虫抑制剂中的应用
CN106212281B (zh) 一种提高香蕉成活率的组织培养方法
CN101803569A (zh) 试管内诱导草莓匍匐茎和高温处理结合茎尖培养脱毒方法
CN106471931A (zh) 一种有机辣椒的种植方法
RU2324338C1 (ru) Способ получения биомассы in vitro
CN106065392B (zh) 一种柑橘木虱高致病力玫烟色棒束孢菌株及其应用
CN107114131A (zh) 林木根部快捷菌剂接种方法
JP3865735B2 (ja) 冬虫夏草の人工栽培方法
CN108617503A (zh) 一种超声波介导的秋水仙素加倍粳稻染色体的生产方法
CN106171970B (zh) 一种低酚类含量植物培养基的快速制备方法
CN103798044A (zh) 甘薯近缘野生种抗茎线虫病抗性鉴定方法
CN106857252A (zh) 二氧化氯消毒培养基用于马铃薯幼苗快速繁殖或试管薯诱导的方法
RU2675932C1 (ru) Стимулятор роста растений
Padhi et al. Surface sterilization for reducing microbial contamination in in vitro propagation of lasora (Cordia myxa Roxb.) using nodal segments
CN106358858A (zh) 一种嗜菌异小杆线虫在温室蔬菜地下害虫生防中的应用
CN107903110A (zh) 一种植物疫苗及其制备
EA035296B1 (ru) Способ получения in vitro корней phlojodicarpus sibiricus (steph.) к.-pol.
Putri et al. Tissue culture sterilization of Callophylum inophyllum: Renewable energy resources
Zemene et al. Protocol optimization for micro-propagation of Green pepper (Capsicum annum L.) cultivated in Ethiopia
CN104082147B (zh) 细柱五加的离体快速繁殖方法
CN106613358A (zh) 银耳菌种提取方法
CN106386702A (zh) 海南五指山蜘蛛的养殖方法
KR101089318B1 (ko) 식물기생선충 방제용 제제 및 그 제조방법

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20120126