RU2324338C1 - Способ получения биомассы in vitro - Google Patents
Способ получения биомассы in vitro Download PDFInfo
- Publication number
- RU2324338C1 RU2324338C1 RU2007103055/13A RU2007103055A RU2324338C1 RU 2324338 C1 RU2324338 C1 RU 2324338C1 RU 2007103055/13 A RU2007103055/13 A RU 2007103055/13A RU 2007103055 A RU2007103055 A RU 2007103055A RU 2324338 C1 RU2324338 C1 RU 2324338C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- explants
- biomass
- growth
- callus
- callus formation
- Prior art date
Links
Landscapes
- Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
Abstract
Способ включает заготовку эксплантов, их стерилизацию, помещение эксплантов для каллусообразования и роста биомассы в стерильные пробирки с модифицированной питательной средой Мурасиге-Скуга с добавлением ростовых стимуляторов, термостатирование при 26±1°С. Стерилизацию эксплантов осуществляют в дистиллированной воде воздействием ультразвуковых колебаний с интенсивностью 1...2 Вт/кв.см на рабочей частоте 22...44 кГц в течение 3...6 мин. На этапах каллусообразования и роста биомассы пробирки с эксплантами погружают в водную среду и осуществляют через нее воздействие ультразвуковыми колебаниями с интенсивностью не менее 10...15 Вт/кв.см на частоте 22...44 кГц. Воздействие проводят со стороны дна пробирок с периодичностью не реже 1 раза в сутки в течение не менее 6 мин на каждом этапе. Прирост биомассы составляет 87,40-176,53%. Способ позволяет получить оздоровленный посадочный материал, увеличить эффективность стерилизации, увеличить способность неинфицированных эксплантов образовывать каллус. 5 табл.
Description
Изобретение предназначено для использования в области сельского хозяйства и биотехнологии и может быть использовано для получения оздоровленного посадочного материала (микроразмножения при оздоровлении растений), выведении новых сортов и получения биомассы (каллуса) растительного сырья для фармацевтической и косметической промышленности.
В настоящее время актуальным является получение биомассы (каллуса) растительного сырья для выведения новых сортов растений, придание им устойчивости к различным видам бактерий, грибов и вирусов, сорнякам, насекомым-вредителям и другим неблагоприятным факторам окружающей среды, а также для получения экстрактов биологически активных веществ из растительного сырья и сохранения видов исчезающих растений, занесенных в Красную книгу.
Наиболее широко распространенными способами получения биомассы (каллуса) для указанных целей являются биотехнологические способы роста культур клеток и тканей in vitro [1, 2, 3, 4]. Все известные способы получения биомассы in vitro предполагают изоляцию зон роста в виде различных эксплантов из исходного растения, стерилизацию их и помещение в стерильных условиях на питательную среду Мурасиге-Скуга (МС) с заданным составом ростовых веществ. Для накопления биомассы (каллуса) обычно используются первичные экспланты в виде проростков семян, частей листьев и стеблей, пазушных и апикальных меристем и почек клубней или корнеплодов растений.
Общим недостатком всех известных способов является их низкая производительность (эффективность), обусловленная:
- низкой эффективностью стерилизации (менее 50%) исходного материала (эксплантов);
- малой долей эксплантов, образующих каллус (эффективность каллусообразования не более 30...40% от общего количества неинфицированных эксплантов);
- недостаточным приростом биомассы образовавшегося каллуса (не более 60% от исходной массы).
Перечисленные недостатки ограничивают возможность применения известных способов для промышленного производства.
В связи с этим возникает необходимость повышения эффективности способов получения биомассы in vitro на всех этапах осуществления процесса: стерилизация, каллусообразование и рост биомассы. Как правило, это осуществляют при помощи дополнительных воздействий на различных этапах реализации процесса (применение различных стерилизующих растворов, добавлением ростовых факторов каллусообразования, температурным воздействием и воздействием различных излучений).
Наиболее близким по технической сущности к предлагаемому является способ получения биомассы in vitro по патенту РФ 2222933 [5], принятый за прототип. Способ получения биомассы in vitro, по [5], включает заготовку эксплантов из проростков, тканей или клеток, их стерилизацию, помещение эксплантов для каллусообразования и роста биомассы в стерильные пробирки с модифицированной питательной средой Мурасиге-Скуга с добавлением ростовых факторов каллусообразования, термостатирование при температуре 26±1 градус Цельсия и относительной влажности 70%.
На этапе роста биомассы в известном способе осуществляется воздействие посредством индуктора последовательностью однонаправленных импульсов магнитной индукции с амплитудным значением 0,05 Тл, периодом 5, 12 с, скважностью от 100 до 4500, причем апикальную часть экспланта ориентируют противоположно направлению вектора магнитной индукции, а число импульсов устанавливают от 10 до 100.
Способ позволяет увеличить количество образующейся биомассы in vitro. В этом случае рост биомассы происходит только на неинфицированных эксплантах, образовавших каллус.
При этом основные потери исходного материала из-за инфицирования и отсутствия каллусообразования не были устранены.
Таким образом, прототип не позволяет повысить производительность процесса и довести эффективность способа получения биомассы in vitro до промышленного применения.
В предлагаемом способе получения биомассы in vitro решается задача увеличения производительности процесса получения биомассы за счет повышения эффективности всех основных стадий этого процесса:
- стерилизации исходного материала (эксплантов) без применения химических дезинфицирующих растворов;
- увеличения способности неинфицированных эксплантов образовывать каллус;
- увеличения получаемой биомассы не только за счет увеличения прироста на каждом образовавшем каллус неинфицированном экспланте, но и за счет увеличения числа неинфицированных и образующих каллус первичных эксплантов.
Предлагаемый способ получения биомассы in vitro включает заготовку эксплантов из различных частей растений (проростков, тканей или клеток), их стерилизацию, помещение эксплантов для каллусообразования и роста биомассы в стерильные пробирки с модифицированной питательной средой Мурасиге-Скуга с добавлением ростовых стимуляторов каллусообразования, термостатирование при температуре 26±1 градус Цельсия и относительной влажности 70%. Стерилизацию эксплантов осуществляют в дистиллированной воде воздействием на экспланты ультразвуковыми колебаниями с интенсивностью 1...2 Вт/кв.см на рабочей частоте 22...44 кГц в течение 3...6 минут. После помещения эксплантов на питательную среду, на этапах каллусообразования и роста биомассы пробирки с эксплантами погружают в водную среду и осуществляют через нее воздействие ультразвуковыми колебаниями с интенсивностью не менее 10...15 Вт/кв.см на частоте 22...44 кГц со стороны дна пробирок с периодичностью не реже 1 раза в сутки в течение не менее 6 минут на каждом этапе.
Сущность предлагаемого способа заключается:
- в рациональном (оптимальном по интенсивности и времени) воздействии на помещенные в стерильную воду экспланты ультразвуковыми колебаниями, обеспечивающими стерилизующий эффект за счет формирования и захлопывания в водной среде на поверхности эксплантов кавитационных пузырьков [6]. При этом происходит разрушение патогенных форм без применения каких-либо химических стерилизующих веществ;
- в рациональном (оптимальном по интенсивности и времени) воздействии ультразвуковыми колебаниями на экспланты, находящиеся в стерильных пробирках на питательной среде. УЗ колебания, распространяясь в водной среде, проникают через стенки пробирок и питательную среду к поверхности эксплантов. При воздействии ультразвуковых колебаний на экспланты, находящиеся в питательной среде, интенсифицируются процессы массообмена и проникновения питательной среды внутри эксплантов и растущей биомассы. Ускорение процессов массообмена [6] обеспечивает интенсификацию подвода питательной среды к поверхности экспланта и растущей биомассы, а звукокапиллярный эффект [6] обеспечивает эффективное проникновение питательной среды по капиллярам эксплантов и через поры к растущей биомассе.
Способ осуществляют следующим образом. Берется по 40 пробирок с питательной средой и эксплантами. Эксплантами являлись зародышевые листки проростков семян и пазушные почки растений гречихи, картофеля и сои.
Эффективность стерилизации (Э1) определяют по количеству неинфицированных эксплантов после стерилизации (с) в процентах от исходного количества стерилизуемых эксплантов (х):
Эффективность каллусообразования (Э2) определяют по количеству стерильных эксплантов, образовавших каллус в пробирках с питательной средой (k) в процентах, от исходного количества вводимых в культуру эксплантов (х):
Прирост биомассы определяют в граммах и процентах.
Прирост биомассы в граммах - это разница между конечным и начальным весом биомассы, образовавшейся за определенный промежуток времени.
Прирост биомассы в процентах - это разница между конечным и начальным весом биомассы за определенный промежуток времени, отнесенный к начальному весу каллуса в культивационной пробирке.
Результаты стерилизации эксплантов по способу, принятому за прототип (без ультразвука), и по предложенному способу представлены в таблице 1.
Таблица 1 | |||
Результаты стерилизации эксплантов | |||
Вариант | Исходное количество эксплантов, шт. | Количество неинфицированных эксплантов, шт. | Эффективность стерилизации, % |
Гречиха | |||
Прототип | 30 | 19 | 63,30 |
Предложенный способ | 30 | 27 | 90,00 |
Картофель | |||
Прототип | 30 | 19 | 63,30 |
Предложенный способ | 30 | 26 | 86,70 |
Соя | |||
Прототип | 40 | 25 | 62,50 |
Предложенный способ | 40 | 31 | 77,50 |
Эффективность каллусообразования по предложенному способу представлена результатами эксперимента, приведенными в таблице 2.
Таблица 2 Результаты каллусообразования из эксплантов |
|||
Вариант | Исходное количество эксплантов, % | Количество пробирок с каллусом, % | Эффективность каллусообразования, % |
Гречиха | |||
Прототип | 30 | 5 | 16,70 |
Предложенный способ | 30 | 12 | 40,00 |
Картофель | |||
Прототип | 50 | 12 | 24,00 |
Предложенный способ | 50 | 21 | 42,00 |
Соя | |||
Прототип | 25 | 8 | 32,00 |
Предложенный способ | 31 | 15 | 48,40 |
Результаты прироста биомассы представлены в таблицах 3, 4 и 5.
Таблица 3 | ||||||
Прирост биомассы картофеля | ||||||
Вариант | Начальная масса каллуса, г | Конечная масса каллуса, г | Прирост биомассы | |||
Абсолютный, г | Средний, г | Абсолютный, % | Средний, % | |||
1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 |
Прототип | 0,035 | 0,071 | 0,036 | 0,036 | 102,86 | 57,69 |
0,042 | 0,080 | 0,038 | 90,48 | |||
0,053 | 0,093 | 0,040 | 75,47 | |||
0,061 | 0,090 | 0,029 | 47,54 | |||
0,067 | 0,099 | 0,032 | 47,76 | |||
0,074 | 0,108 | 0,034 | 45,95 | |||
0,083 | 0,119 | 0,036 | 43,37 | |||
0,089 | 0,126 | 0,037 | 41,57 | |||
0,094 | 0,133 | 0,039 | 41,49 | |||
0,099 | 0,139 | 0,040 | 40,40 | |||
Предложенный способ | 0,043 | 0,106 | 0,063 | 0,061 | 146,51 | 98,54 |
0,049 | 0,114 | 0,065 | 132,65 | |||
0,051 | 0,123 | 0,072 | 141,18 | |||
0,056 | 0,109 | 0,053 | 94,64 | |||
0,062 | 0,121 | 0,059 | 95,16 | |||
0,064 | 0,130 | 0,066 | 103,13 | |||
0,077 | 0,127 | 0,050 | 64,94 | |||
0,083 | 0,145 | 0,062 | 74,70 | |||
0,091 | 0,160 | 0,069 | 75,82 | |||
0,097 | 0,152 | 0,055 | 56,70 |
Таблица 4 | ||||||
Прирост биомассы гречихи | ||||||
Вариант | Начальная масса каллуса, г | Конечная масса каллуса, г | Прирост биомассы | |||
Абсолютный, г | Средний, г | Абсолютный, % | Средний, % | |||
1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 |
Прототип | 0,055 | 0,120 | 0,065 | 0,077 | 118,18 | 136,29 |
0,046 | 0,109 | 0,063 | 136,96 | |||
0,038 | 0,108 | 0,070 | 184,21 | |||
0,056 | 0,154 | 0,098 | 175,00 | |||
0,052 | 0,095 | 0,043 | 82,69 | |||
0,072 | 0,179 | 0,107 | 148,61 | |||
0,078 | 0,193 | 0,115 | 147,44 | |||
0,074 | 0,179 | 0,105 | 141,89 | |||
0,044 | 0,094 | 0,050 | 113,64 | |||
0,049 | 0,105 | 0,056 | 114,28 | |||
Предложенный способ | 0,077 | 0,212 | 0,135 | 0,103 | 175,32 | 176,53 |
0,046 | 0,132 | 0,086 | 186,96 | |||
0,063 | 0,157 | 0,094 | 149,20 | |||
0,068 | 0,196 | 0,128 | 188,23 | |||
0,056 | 0,160 | 0,104 | 185,71 | |||
0,060 | 0,170 | 0,110 | 183,33 | |||
0,052 | 0,138 | 0,086 | 165,38 | |||
0,062 | 0,170 | 0,108 | 174,19 | |||
0,047 | 0,130 | 0,083 | 176,59 | |||
0,051 | 0,143 | 0,092 | 180,39 |
Таблица 5 | ||||||
Прирост биомассы сои | ||||||
Вариант | Начальная масса каллуса, г | Конечная масса каллуса, г | Прирост биомассы | |||
Абсолютный, г | Средний, г | Абсолютный, % | Средний, % | |||
1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 |
Прототип | 0,193 | 0,222 | 0,029 | 0,035 | 15,13 | 34,52 |
0,15 | 0,178 | 0,027 | 18,34 | |||
0,190 | 0,230 | 0,040 | 21,56 | |||
0,117 | 0,151 | 0,034 | 29,42 | |||
0,111 | 0,152 | 0,041 | 37,78 | |||
0,093 | 0,135 | 0,042 | 45,17 | |||
0,074 | 0,111 | 0,037 | 50,29 | |||
0,052 | 0,082 | 0,030 | 58,45 | |||
Предложенный способ | 0,114 | 0,171 | 0,057 | 0,094 | 50,57 | 87,40 |
0,131 | 0,213 | 0,082 | 62,97 | |||
0,117 | 0,200 | 0,083 | 71,55 | |||
0,135 | 0,236 | 0,101 | 75,47 | |||
0,100 | 0,179 | 0,079 | 79,93 | |||
0,096 | 0,175 | 0,079 | 83,52 | |||
0,127 | 0,236 | 0,109 | 86,61 | |||
0,139 | 0,270 | 0,131 | 94,70 |
Таким образом, в результате реализации предлагаемого способа получения биомассы in vitro была решена проблема увеличения производительности процесса получения биомассы за счет повышения эффективности всех основных стадий этого процесса:
- увеличения эффективности стерилизации с 60% до 90% без применения химических стерилизаторов;
- увеличения в два раза способности неинфицированных эксплантов образовывать каллус;
- увеличения, практически в два раза, получаемой биомассы за счет увеличения прироста на каждом образовавшем каллус неинфицированном экспланте;
- многократное (не менее 10 раз) увеличение эффективности способа, то есть производительности получения конечного продукта - биомассы из заготовленного полевого исходного сырья (нестерилизованных эксплантов).
Технический результат предлагаемого решения выражается в том, что полученные результаты позволяют использовать предложенный способ для промышленного применения, например, при получении биомассы лекарственных растений для последующего экстрагирования или сельскохозяйственных растений для дальнейшего получения оздоровленных растений - регенерантов.
В настоящее время Бийским технологическим институтом Алтайского государственного технического университета ведется подготовка к серийному производству биомассы лекарственных и сельскохозяйственных растений на основе предложенного способа.
Список литературы
1. Патент РФ №2286053.
2. Патент РФ №2279212.
3. Патент РФ №2180165.
4. Патент РФ №2282352.
5. Патент РФ №2222933 (прототип).
6. Хмелев В.Н. Многофункциональные ультразвуковые аппараты и их применение в условиях малых производств, сельском хозяйстве и домашнем хозяйстве / В.Н.Хмелев, О.В.Попова. - Барнаул: изд. АлтГТУ, 1997, - 160 с.
Claims (1)
- Способ получения биомассы in vitro, включающий заготовку эксплантов из проростков, тканей или клеток, их стерилизацию, помещение эксплантов для каллусообразования и роста биомассы в стерильные пробирки с модифицированной питательной средой Мурасиге-Скуга с добавлением ростовых стимуляторов каллусообразования, термостатирование при температуре 26±1°С и относительной влажности 70%, отличающийся тем, что стерилизацию эксплантов осуществляют в дистиллированной воде воздействием на экспланты ультразвуковыми колебаниями с интенсивностью 1...2 Вт/см2 на рабочей частоте 22...44 кГц в течение 3...6 мин, после помещения эксплантов на питательную среду на этапах каллусообразования и роста биомассы пробирки с эксплантами погружают в водную среду и осуществляют через нее воздействие ультразвуковыми колебаниями с интенсивностью не менее 10...15 Вт/см2 на частоте 22...44 кГц со стороны дна пробирок с периодичностью не реже 1 раза в сутки в течение не менее 6 мин на каждом этапе.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2007103055/13A RU2324338C1 (ru) | 2007-01-25 | 2007-01-25 | Способ получения биомассы in vitro |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2007103055/13A RU2324338C1 (ru) | 2007-01-25 | 2007-01-25 | Способ получения биомассы in vitro |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2324338C1 true RU2324338C1 (ru) | 2008-05-20 |
Family
ID=39798703
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2007103055/13A RU2324338C1 (ru) | 2007-01-25 | 2007-01-25 | Способ получения биомассы in vitro |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2324338C1 (ru) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
MD3899C2 (ru) * | 2009-02-23 | 2009-12-31 | Институт Генетики, Физиологии И Защиты Растений Академии Наук Молдовы | Способ микроразмножения Echinacea purpurea L. Moench in vitro |
MD31Z (ru) * | 2009-02-23 | 2010-01-31 | Институт Генетики, Физиологии И Защиты Растений Академии Наук Молдовы | Способ микроразмножения Echinacea purpurea L. Moench in vitro |
MD605Z (ru) * | 2012-07-09 | 2013-10-31 | Институт Генетики И Физиологии Растений Академии Наук Молдовы | Способ микроклонального размножения растений Actinidia arguta in vitro |
-
2007
- 2007-01-25 RU RU2007103055/13A patent/RU2324338C1/ru not_active IP Right Cessation
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
MD3899C2 (ru) * | 2009-02-23 | 2009-12-31 | Институт Генетики, Физиологии И Защиты Растений Академии Наук Молдовы | Способ микроразмножения Echinacea purpurea L. Moench in vitro |
MD31Z (ru) * | 2009-02-23 | 2010-01-31 | Институт Генетики, Физиологии И Защиты Растений Академии Наук Молдовы | Способ микроразмножения Echinacea purpurea L. Moench in vitro |
MD605Z (ru) * | 2012-07-09 | 2013-10-31 | Институт Генетики И Физиологии Растений Академии Наук Молдовы | Способ микроклонального размножения растений Actinidia arguta in vitro |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Loureiro et al. | Extract powder from the brown alga Ascophyllum nodosum (Linnaeus) Le Jolis (AMPEP): a “vaccine-like” effect on Kappaphycus alvarezii (Doty) Doty ex PC Silva | |
CN105191793B (zh) | 紫马铃薯组培苗的高效繁育方法 | |
CN104412968A (zh) | 香草醛在制备南方根结线虫杀虫抑制剂中的应用 | |
CN106212281B (zh) | 一种提高香蕉成活率的组织培养方法 | |
CN101803569A (zh) | 试管内诱导草莓匍匐茎和高温处理结合茎尖培养脱毒方法 | |
CN106471931A (zh) | 一种有机辣椒的种植方法 | |
RU2324338C1 (ru) | Способ получения биомассы in vitro | |
CN106065392B (zh) | 一种柑橘木虱高致病力玫烟色棒束孢菌株及其应用 | |
CN107114131A (zh) | 林木根部快捷菌剂接种方法 | |
JP3865735B2 (ja) | 冬虫夏草の人工栽培方法 | |
CN108617503A (zh) | 一种超声波介导的秋水仙素加倍粳稻染色体的生产方法 | |
CN106171970B (zh) | 一种低酚类含量植物培养基的快速制备方法 | |
CN103798044A (zh) | 甘薯近缘野生种抗茎线虫病抗性鉴定方法 | |
CN106857252A (zh) | 二氧化氯消毒培养基用于马铃薯幼苗快速繁殖或试管薯诱导的方法 | |
RU2675932C1 (ru) | Стимулятор роста растений | |
Padhi et al. | Surface sterilization for reducing microbial contamination in in vitro propagation of lasora (Cordia myxa Roxb.) using nodal segments | |
CN106358858A (zh) | 一种嗜菌异小杆线虫在温室蔬菜地下害虫生防中的应用 | |
CN107903110A (zh) | 一种植物疫苗及其制备 | |
EA035296B1 (ru) | Способ получения in vitro корней phlojodicarpus sibiricus (steph.) к.-pol. | |
Putri et al. | Tissue culture sterilization of Callophylum inophyllum: Renewable energy resources | |
Zemene et al. | Protocol optimization for micro-propagation of Green pepper (Capsicum annum L.) cultivated in Ethiopia | |
CN104082147B (zh) | 细柱五加的离体快速繁殖方法 | |
CN106613358A (zh) | 银耳菌种提取方法 | |
CN106386702A (zh) | 海南五指山蜘蛛的养殖方法 | |
KR101089318B1 (ko) | 식물기생선충 방제용 제제 및 그 제조방법 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20120126 |