RU2278678C2 - Method for obtaining preparation to increase body resistance in animals - Google Patents
Method for obtaining preparation to increase body resistance in animals Download PDFInfo
- Publication number
- RU2278678C2 RU2278678C2 RU2004116104/15A RU2004116104A RU2278678C2 RU 2278678 C2 RU2278678 C2 RU 2278678C2 RU 2004116104/15 A RU2004116104/15 A RU 2004116104/15A RU 2004116104 A RU2004116104 A RU 2004116104A RU 2278678 C2 RU2278678 C2 RU 2278678C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- hydrolyzate
- hydrolysis
- drug
- animals
- succinic acid
- Prior art date
Links
Landscapes
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Fodder In General (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
Abstract
Description
Способ получения препарата для повышения резистентности организма животных.The method of obtaining the drug to increase the resistance of the animal organism.
Изобретение относится к ветеринарии, в частности к способу получения средства, повышающего резистентность организма животных.The invention relates to veterinary medicine, in particular to a method for producing agents that increase the resistance of animals.
Известен способ получения средства для повышения резистентности организма молодняка животных, включающий очистку железистых тканей от соединительно-тканных и жировых элементов, промывку их и гомогенизацию. В качестве железистых тканей используют тимус, селезенку и поджелудочную железу, которые после гомогенизации смешивают, добавляют поджелудочный сок и консервант хинозол, а затем выдерживают смесь в течение 5-6 суток при 38-40°С с периодическим ежесуточным перемешиванием (Авт. св. №904707, М. Кл. А 61 К 35/26 1982 г. Средство для повышения резистентности организма молодняка животных и способ его получения. Авт. А.М.Смирнов и др.).A known method of obtaining funds for increasing the resistance of the body of young animals, including cleaning the glandular tissue from connective tissue and fatty elements, washing them and homogenizing. Thymus, spleen and pancreas are used as glandular tissues, which are mixed after homogenization, add pancreas juice and preservative chinosol, and then the mixture is kept for 5-6 days at 38-40 ° С with periodic daily stirring (Aut. St. No. 904707, M. Cl. A 61 K 35/26, 1982. Means for increasing the body resistance of young animals and a method for its production, author A. M. Smirnov and others).
Недостатком этого способа является то, что процесс ферментации и гидролиза тканей с помощью ферментов поджелудочной железы и желудочного сока занимает длительное время (до 6 суток), а температурный режим 38-40°С благоприятствует проявлению ростовой активности микрофлоры, что требует добавления консерванта. Полученный таким образом гидролизат содержит взвесь тканей, существенно затрудняющую процесс фильтрации через марлевый фильтр. Для получения очищенного от баланса веществ гидролизат после фильтрации подвергают центрифугированию. Отсутствие в препарате пролонгатора сокращает период его биологического действия в организме.The disadvantage of this method is that the process of fermentation and hydrolysis of tissues using enzymes of the pancreas and gastric juice takes a long time (up to 6 days), and the temperature regime of 38-40 ° C favors the manifestation of growth activity of microflora, which requires the addition of a preservative. The hydrolyzate thus obtained contains a suspension of tissues, which substantially complicates the process of filtering through a gauze filter. To obtain a purified from balance substances hydrolyzate after filtration is subjected to centrifugation. The absence of a prolongator in the preparation shortens the period of its biological action in the body.
Для устранения вышеуказанных недостатков предлагается способ получения препарата, повышающего резистентность организма животных, включающий применение известных технологических приемов, в частности замораживание и размораживание паренхиматозных органов животных, таких как селезенка, печень, тестикулы, их гомогенизацию, кислотный гидролиз и очистку янтарной кислотой.To eliminate the above disadvantages, a method for producing a drug that increases the resistance of an animal organism is proposed, including the use of known technological methods, in particular, freezing and thawing animal parenchymal organs, such as the spleen, liver, testicles, their homogenization, acid hydrolysis and purification with succinic acid.
Новым является то, что при получении тканевого гидролизата в гомогенат добавляют янтарную кислоту, новокаин, гель гидрата окиси алюминия. Янтарная кислота - сама по себе универсальный стимулятор обмена веществ живой клетки, естественный эндогенный субстрат окислительно-восстановительных процессов (цикл Кребса) в живых организмах.What is new is that upon receipt of the tissue hydrolyzate, succinic acid, novocaine, and alumina hydrate gel are added to the homogenate. Succinic acid is itself a universal stimulator of metabolism of a living cell, a natural endogenous substrate of redox processes (Krebs cycle) in living organisms.
Добавление новокаина обусловлено необходимостью снятия болевой реакции при парентеральном методе введения. Кроме того, тканевые препараты, приготовленные на растворе новокаина, оказывают более быстро стимулирующее действие, чем взвеси, приготовленные на физиологическом растворе.The addition of novocaine is due to the need to relieve pain during the parenteral administration. In addition, tissue preparations prepared on a solution of novocaine have a more rapidly stimulating effect than suspensions prepared on a physiological solution.
Добавление в гидролизат геля гидрата окиси алюминия позволяет обеспечить более длительный период действия, в связи с чем отпадает необходимость проведения курса учащенного применения препарата.Adding alumina hydrate to the gel hydrolyzate allows for a longer period of action, and therefore there is no need to conduct a course of frequent use of the drug.
В конечном итоге получается менее реактогенный препарат, обладающий выраженным антиинфекционным действием.The result is a less reactogenic drug with a pronounced anti-infectious effect.
Пример 1. Получение препарата для повышения резистентности организма с использованием тканей селезенки.Example 1. Obtaining a drug to increase body resistance using spleen tissue.
Для получения препарата использовали 500 г селезенки, которую подвергли замораживанию в морозильной камере. После частичного оттаивания подвергли гомогенизации. В полученный гомогенизат добавили 5 частей дистиллированной воды, в которой предварительно растворили янтарную кислоту до рН 4,0. Полученную смесь тщательно перемешали и поместили в термостат. Кислотный гидролиз провели в режиме 45°С. После полного разделения гомогената на жидкую гидролизированную часть и осадок из негидролизированной части тканей, декантировали гидролизат. Дробным добавлением 3% раствора едкого натрия довели рН до нейтральной, равной 7,0.To obtain the drug used 500 g of the spleen, which was subjected to freezing in the freezer. After partial thawing, they were homogenized. 5 parts of distilled water were added to the obtained homogenizate, in which succinic acid was previously dissolved to pH 4.0. The resulting mixture was thoroughly mixed and placed in a thermostat. Acid hydrolysis was carried out at 45 ° C. After complete separation of the homogenate into the liquid hydrolyzed part and the precipitate from the non-hydrolyzed part of the tissues, the hydrolyzate was decanted. By fractional addition of a 3% sodium hydroxide solution, the pH was adjusted to a neutral pH of 7.0.
Требуемое количество порошка новокаина рассчитали с таким условием, чтобы его концентрация в гидролизате находилась в пределах 0,4-0,5%.The required amount of novocaine powder was calculated so that its concentration in the hydrolyzate was in the range of 0.4-0.5%.
Для сорбции биологически активных веществ препарата в гидролизат добавили гель гидрата окиси алюминия из расчета 2-3 мг/мл. Полученный гидролизат расфасовали по флаконам емкостью 50 мл и провели стерилизацию автоклавированием в режиме 1,0 атм в течение 20 минут.To sorb the biologically active substances of the preparation, an alumina hydrate gel was added to the hydrolyzate at a rate of 2-3 mg / ml. The resulting hydrolyzate was packaged in 50 ml vials and sterilized by autoclaving at 1.0 atm for 20 minutes.
Стерильность препарата оценили по результатам контрольных посевов содержимого флаконов на мясопептонный агар и мясопептонный бульон. Роста микроорганизмов не наблюдали, что свидетельствовало о стерильности гидролизата.The sterility of the drug was evaluated according to the results of the control culture of the contents of the vials on meat peptone agar and meat peptone broth. No growth of microorganisms was observed, indicating the sterility of the hydrolyzate.
Антиинфекционную активность указанного гидролизата селезенки испытали при моделировании острого инфекционного процесса на белых мышах.The anti-infectious activity of the indicated spleen hydrolyzate was tested in modeling an acute infectious process in white mice.
Порядок сравнительной оценки предусматривал однократное внутрибрюшинное введение гидролизатов селезенки в дозе 0,5 мл белым мышам массой 20-21 г с последующим их заражением культурой Е. coli в дозе 4 LD50. Заражение провели спустя сутки, на 7 и 14 день после иммунизации. Результаты наблюдений представлены в таблице 1.The comparative evaluation procedure included a single intraperitoneal administration of splenic hydrolysates at a dose of 0.5 ml to white mice weighing 20-21 g, followed by their infection with E. coli culture at a dose of 4 LD 50 . Infection was carried out one day later, on the 7th and 14th day after immunization. The results of the observations are presented in table 1.
Антиинфекционная активность гидролизатов селезенки при моделировании острого инфекционного процесса культурой Е. coli на белых мышах.Table 1.
Anti-infectious activity of spleen hydrolysates in modeling an acute infectious process with E. coli culture in white mice.
Таким образом, добавление в гидролизат геля гидрата окиси алюминия позволило стабилизировать антиинфекционную активность препарата в отдаленные периоды после иммунизации мышей.Thus, the addition of alumina hydrate to the gel hydrolyzate made it possible to stabilize the anti-infective activity of the drug in long periods after immunization of mice.
Пример 2. Получение препарата для повышения резистентности организма с использованием тканей печени.Example 2. Obtaining a drug to increase the body's resistance using liver tissue.
Для получения препарата использовали 300 г печени. Ткань печени подвергли замораживанию в морозильной камере. После частичного оттаивания ее подвергли гомогенизации. В полученный гомогенат добавили 5 частей дистиллированной воды, в которой растворили янтарную кислоту до рН 4,0. Полученную смесь тщательно перемешивали. Кислотный гидролиз провели при температуре 45°С. Спустя 3 часа произошло полное разделение содержимого биобутыли с гомогенатом на жидкую часть гидролизата и осадок. Декантированием отделили гидролизат от осадка. Добавив 3% раствора едкого натрия, нейтрализовали повышенную кислотность гидролизата. В гидролизат добавили гель гидрата окиси алюминия из расчета 2-3 мг/мл.To obtain the drug used 300 g of the liver. Liver tissue was frozen in a freezer. After partial thawing, it was homogenized. 5 parts of distilled water were added to the obtained homogenate, in which succinic acid was dissolved to pH 4.0. The resulting mixture was thoroughly mixed. Acid hydrolysis was carried out at a temperature of 45 ° C. After 3 hours, there was a complete separation of the contents of the bio-bottle with the homogenate into the liquid part of the hydrolyzate and sediment. By decantation, the hydrolyzate was separated from the precipitate. By adding a 3% sodium hydroxide solution, the increased acidity of the hydrolyzate was neutralized. An alumina hydrate gel of 2-3 mg / ml was added to the hydrolyzate.
Расфасовку, стерилизацию и контроль на стерильность гидролизата провели, как и в примере 1.Packing, sterilization and control on the sterility of the hydrolyzate was carried out, as in example 1.
Антиинфекционную активность печеночного гидролизата испытали на белых мышах массой 17-18 г при моделировании острого инфекционного процесса культурой S. aureus в дозе 4LD50. Результаты наблюдений представлены в таблице 2.The anti-infectious activity of the hepatic hydrolyzate was tested on white mice weighing 17-18 g when simulating an acute infection process with a S. aureus culture at a dose of 4LD 50 . The results of the observations are presented in table 2.
Антиинфекционная активность гидролизатов печени при моделировании острого инфекционного процесса культурой S. aureus на белых мышах.Table 2.
Anti-infectious activity of liver hydrolysates in modeling an acute infectious process by S. aureus culture in white mice.
Исходя из второй серии опытов по испытанию янтарного гидролизата печени установлено, что добавление в препарат геля гидрата окиси алюминия пролонгирует антиинфекционную активность гидролизата в отдаленный период после иммунизации.Based on the second series of experiments on testing the amber hydrolyzate of the liver, it was found that the addition of alumina hydrate to the gel preparation prolongs the anti-infection activity of the hydrolyzate in the long-term period after immunization.
Более низкий уровень антиинфекционной активности гидролизата печени по отношению к гидролизату селезенки обусловлен тем, что последняя относится к органам иммунной системы, что и оказывает более выраженное иммуногенное действие.The lower level of anti-infectious activity of the liver hydrolyzate with respect to the spleen hydrolyzate is due to the fact that the latter refers to the organs of the immune system, which has a more pronounced immunogenic effect.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2004116104/15A RU2278678C2 (en) | 2004-05-26 | 2004-05-26 | Method for obtaining preparation to increase body resistance in animals |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2004116104/15A RU2278678C2 (en) | 2004-05-26 | 2004-05-26 | Method for obtaining preparation to increase body resistance in animals |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2004116104A RU2004116104A (en) | 2005-11-10 |
RU2278678C2 true RU2278678C2 (en) | 2006-06-27 |
Family
ID=35865069
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2004116104/15A RU2278678C2 (en) | 2004-05-26 | 2004-05-26 | Method for obtaining preparation to increase body resistance in animals |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2278678C2 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2769508C2 (en) * | 2020-09-28 | 2022-04-01 | Юрий Гаврилович Крысенко | Method for producing combined preparation of animal placenta and phyto-raw material |
-
2004
- 2004-05-26 RU RU2004116104/15A patent/RU2278678C2/en not_active IP Right Cessation
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2769508C2 (en) * | 2020-09-28 | 2022-04-01 | Юрий Гаврилович Крысенко | Method for producing combined preparation of animal placenta and phyto-raw material |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2004116104A (en) | 2005-11-10 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
RU2303979C2 (en) | Method for producing succinic biostimulator for increasing organism resistance | |
RU2428196C1 (en) | Method for preparing biologically active complex and biologically active protein-polypeptide complex | |
RU2278678C2 (en) | Method for obtaining preparation to increase body resistance in animals | |
CN111778300A (en) | Beta-1, 3-glucan and preparation method and application thereof | |
RU2618467C1 (en) | Normalization method of trombocytes catalase activity of newborn calves with iron deficiency | |
RU2483110C1 (en) | Method to produce chitosan-nucleic hydrolysate | |
RU2414227C1 (en) | Immunomodulator for broiler culture and method for applying thereof | |
RU2361429C1 (en) | Biologically active supplement for preventive measures againts rheumatoid illnesses | |
RU2206337C1 (en) | Medicinal preparation for treatment of muscle dystonia and method for its preparing | |
RU2673802C1 (en) | Method of manufacture of sterile pharmaceutical substance | |
RU2402900C1 (en) | Method of correction of hyperfibrinogenemia at anemia of newborn calves and piglets | |
CN103561735B (en) | There is the pharmaceutical preparation of antibacterial, antiulcer and immunoregulation effect | |
CN108451903A (en) | A kind of Betagen Solution and preparation method thereof | |
EP0904701B1 (en) | Inactivated micro-organisms containing minerals, process for their preparation, and their use in food, veterinary and pharmaceutical compositions | |
RU2700163C1 (en) | Method for preparing a biologically active antiseptic preparation and an antiseptic preparation based thereon | |
RU2663463C1 (en) | Method for increasing effectiveness of application of nutrient stimulants in fattening of young cattle | |
RU2546252C2 (en) | Method of producing protein hydrolysate from meat or meat and bone material of mink carcass for parenteral feeding | |
RU2020153C1 (en) | Method of preparing of enzyme hydrolysate and nutrient medium for cultivation of eucaryotic cells | |
RU2769508C2 (en) | Method for producing combined preparation of animal placenta and phyto-raw material | |
RU2768609C1 (en) | Method of treating subclinical mastitis in lactating cows | |
RU2395278C1 (en) | Method of obtaining complex medication for prevention and treatment of metabolism pathology and malfunctions of immune system in animals | |
RU2746616C1 (en) | Method for prevention of nodular dermatitis in cattle | |
RU2644248C2 (en) | Dense nutrient medium for cultivation and growing of tularemic microbe | |
RU2675365C1 (en) | Method for normalizing activity of neutrophil superoxide dismutase in newborn calves with iron deficiency | |
RU2470648C1 (en) | Preparation for stimulating animal metabolism and nonspecific resistance |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20060527 |