RU2252031C1 - Method for production of immune serum to virulent strain bacillus anthracis antigen - Google Patents
Method for production of immune serum to virulent strain bacillus anthracis antigen Download PDFInfo
- Publication number
- RU2252031C1 RU2252031C1 RU2003128626/13A RU2003128626A RU2252031C1 RU 2252031 C1 RU2252031 C1 RU 2252031C1 RU 2003128626/13 A RU2003128626/13 A RU 2003128626/13A RU 2003128626 A RU2003128626 A RU 2003128626A RU 2252031 C1 RU2252031 C1 RU 2252031C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- days
- animals
- anthracis
- bacillus anthracis
- immune serum
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к медицинской микробиологии и касается получения иммунных сывороток от животных, зараженных вирулентным штаммом В.anthracis.The invention relates to medical microbiology and for the production of immune sera from animals infected with a virulent B.anthracis strain.
Известно, что морские свинки высокочувствительны к возбудителю сибирской язвы и погибают в течение короткого времени (3-4 суток) после заражения. Поэтому для изучения динамики антител или специфической антигенемии обычно используют невирулентные (одноплазмидные) штаммы этого микроорганизма (Выявление специфических антигенов при экспериментальной сибирской язве. Абалкин В.А., Сергеева Л.В., Черкасский Б.Л. // Журн. микроб., биол., эпидемиол. 1989, №12.-С.63-68).It is known that guinea pigs are highly sensitive to the causative agent of anthrax and die within a short time (3-4 days) after infection. Therefore, to study the dynamics of antibodies or specific antigenemia, non-virulent (single-plasmid) strains of this microorganism are usually used (Identification of specific antigens in experimental anthrax. Abalkin V.A., Sergeeva L.V., Cherkassky B.L. // Journal of microbes, biol., epidemiol. 1989, No. 12.-C.63-68).
Возможно использование коров, которых заражают большими дозами возбудителя (Факторы специфической и неспецифической защиты у коров, экспериментально зараженных сибирской язвой. Буравцева Н.П., Ракитина Е.Л., Неляпин Н.М. и др. //Актуальн. вопросы иммунодиагнос. особо опасных инфекций. Ч.1., Ставрополь, 1986).It is possible to use cows that are infected with large doses of the pathogen (Factors of specific and nonspecific protection in cows experimentally infected with anthrax. Buravtseva N.P., Rakitina E.L., Nelyapin N.M. et al. // Current issues of immunodiagnosis. especially dangerous infections. Part 1., Stavropol, 1986).
Недостатком первого способа является то, что одноплазмидные штаммы обуславливают образование антител к определенным антигенам, что не позволяет выявить полный спектр антител в сыворотках животных. Это возможно лишь при иммунизации вирулентным штаммом этого микроорганизма. Второй метод - дорогостоящий.The disadvantage of the first method is that single-plasmid strains cause the formation of antibodies to specific antigens, which does not allow to reveal the full spectrum of antibodies in animal sera. This is possible only with immunization with a virulent strain of this microorganism. The second method is expensive.
Наиболее близким аналогом предлагаемого способа является публикация "Факторы специфической и неспецифической защиты у коров, экспериментально зараженных сибирской язвой".The closest analogue of the proposed method is the publication "Factors of specific and nonspecific protection in cows experimentally infected with anthrax."
Цель изобретения - получение иммунных сывороток от морских свинок после введения животным споровой взвеси вирулентного штамма В.аnthracis.The purpose of the invention is the production of immune sera from guinea pigs after administration to animals of a spore suspension of a virulent strain of B. anthracis.
Поставленная цель достигается тем, что морским свинкам перед заражением поочередно - вначале в правый пах, затем через 14 дней в левый пах вводят 0,2 мл неполного адъюванта Фрейнда (НАФ) с равным объемом физиологического раствора (опытная группа).This goal is achieved by the fact that before the infection, the guinea pigs take turns - first in the right groin, then after 14 days 0.2 ml of Freund's incomplete adjuvant (NAF) is injected into the left groin with an equal volume of physiological saline (experimental group).
Контрольной группе животных вводят 0,4 мл физиологического раствора.The control group of animals injected with 0.4 ml of physiological saline.
Через 14 дней после последнего введения НАФ животных обеих групп заражают введением в правых пах 20, 200, 2000 спор В.аnthracis 81/1 (по 5 животных на дозу).14 days after the last administration of NAF, animals of both groups were infected by the introduction of B. anthracis 81/1 spores (5 animals per dose) in the right groin of 20, 200, 2000.
Животные контрольной группы, зараженные 200 и 2000 спор, погибают в течение 3-4 суток, в то время как животные опытной группы, зараженные этими дозами спор, остаются живыми в течение 35 суток (срок наблюдения). При бактериологическом обследовании органов и крови на 21 и 35 сутки возбудитель сибирской язвы не был выделен.Animals of the control group infected with 200 and 2000 spores die within 3-4 days, while animals of the experimental group infected with these doses of spores remain alive for 35 days (observation period). During bacteriological examination of organs and blood on days 21 and 35, the causative agent of anthrax was not isolated.
В реакции иммунодиффузии в геле (РИД) с культуральными фильтрами (КФ) В.аnthracis 81/1 (tox+, cap+) СТИ (tox+, cap-) 81/1/1TR (tox-, cap-) титры сывороток животных опытной группы составляли 1:4-1:16.In the gel immunodiffusion reaction (RID) with culture filters (CF) of B. anthracis 81/1 (tox + , cap + ) STI (tox + , cap - ) 81/1 / 1TR (tox - , cap - ) animal serum titers the experimental groups were 1: 4-1: 16.
В РНГА с антигенными диагностикумами, приготовленными с использованием КФ В.аnthracis СТИ, Davis (tox-, cap+), 81/1TR титры антител сывороток этих животных колебались в пределах 1:80-1:640, с несенсибилизированными эритроцитами - 1:20.In RNGA with antigenic diagnostics prepared using CF of B. anthracis STI, Davis (tox - , cap + ), 81 / 1TR, antibody titers of the sera of these animals ranged from 1: 80-1: 640, with non-sensitized red blood cells - 1:20 .
Специфичность РНГА подтверждали РТНГА и РНат.The specificity of RNGA was confirmed by RTNGA and RNat.
Предлагаемый способ получения сибиреязвенной сыворотки от морских свинок, зараженных вирулентным штаммом, может быть полезным для оценки разрабатываемых диагностических препаратов.The proposed method for producing anthrax serum from guinea pigs infected with a virulent strain may be useful for evaluating the developed diagnostic drugs.
Примеры конкретного выполнения, подтверждающие осуществление предлагаемого способаExamples of specific performance, confirming the implementation of the proposed method
Пример 1. Введение животным неполного адъюванта ФрейндаExample 1. The introduction of animals incomplete adjuvant Freund
Равные объемы неполного адъюванта Фрейнда и 0,85% раствора хлористого натрия смешивали с помощью медицинского шприца и инъекционной иглы до получения стойкой эмульсии. По 0,4 мл эмульсии вводили морским свинкам в правый пах. Через 14 дней подобную эмульсию этим животным вводили в левых пах.Equal volumes of incomplete Freund's adjuvant and 0.85% sodium chloride solution were mixed with a medical syringe and injection needle until a stable emulsion was obtained. 0.4 ml of the emulsion was administered to guinea pigs in the right groin. After 14 days, a similar emulsion was administered to these animals in the left groin.
Контрольной группе животных вводили от 0,4 мл 0,85% раствора хлористого натрия.The control group of animals was injected with 0.4 ml of 0.85% sodium chloride solution.
Пример 2. Получение споровой взвеси В.аnthracis 81/1Example 2. Obtaining spore suspension of B. anthracis 81/1
В.аnthracis 81/1 высевали на агар Хоттингера, чашки инкубировали при 37°С в течение трех суток, затем при комнатной температуре - трое суток. Выросшую культуру снимали петлей в пробирки, в которые вносили 0,85% раствора хлористого натрия. Биомассу суспендировали с помощью пипетки и прогревали при 80°С 10 мин, повторно суспендировали после прогревания, оставляли в холодильнике (4°С) на 12 часов.B.anthracis 81/1 was plated on Hottinger agar, plates were incubated at 37 ° C for three days, then at room temperature for three days. The grown culture was looped off into tubes into which a 0.85% sodium chloride solution was added. The biomass was suspended using a pipette and heated at 80 ° C for 10 min, resuspended after heating, left in the refrigerator (4 ° C) for 12 hours.
Оставшуюся взвесь отсасывали и титровали по 0,5 мл в 4,5 мл физраствора, высевали по 0,1 мл на агар Хоттингера для определения концентрации жизнеспособных спор.The remaining suspension was aspirated and titrated with 0.5 ml in 4.5 ml of saline, 0.1 ml were sown on Hottinger agar to determine the concentration of viable spores.
Пример 3. Заражение морских свинок спорами В.аnthracis 81/1Example 3. Infection of guinea pigs with spores of B. anthracis 81/1
В день заражения животных через 14 суток после последнего введения НАФ споровую взвесь тировали повторно для определения концентрации спор. Животным опытной и контрольной групп вводили в правых пах по 20, 200, 2000 спор в объеме 0,5 мл.On the day of infection of the animals, 14 days after the last administration of NAF, the spore suspension was re-weighted to determine the concentration of spores. The animals of the experimental and control groups were injected in the right groin with 20, 200, 2000 spores in a volume of 0.5 ml.
Пример 4. Бактериологическое обследование павших животныхExample 4. Bacteriological examination of dead animals
Обычно в течение 3-4 суток погибали морские свинки контрольной группы, зараженные 200, 2000 спорами В.аnthracis 81/1, и часть животных, зараженных 20 спорами этого микроорганизма.Usually, guinea pigs of the control group infected with 200, 2000 spores of B. anthracis 81/1, and some animals infected with 20 spores of this microorganism died within 3-4 days.
В опытной группе за это время погибала часть морских свинок, зараженных 2000 спор, а животные, зараженные 20 и 200 спорами В.аnthracis 81/1 оставались живыми в течение длительного времени (срок наблюдения 35 суток).In the experimental group, part of the guinea pigs infected with 2,000 spores died during this time, and animals infected with 20 and 200 spores of B. anthracis 81/1 remained alive for a long time (observation period 35 days).
ЛД50 В.аnthracis 81/1 для животных контрольной группы составляло примерно 20 спор, для животных опытной группы - 2000 спор (см. таблицу).LD 50 of B. anthracis 81/1 for animals of the control group was approximately 20 spores, for animals of the experimental group - 2000 spores (see table).
При осмотре павших животных отмечали отеки в месте введения возбудителя, при вскрытии - кровенаполнение с кровоизлияниями в печени и селезенке.When examining the fallen animals, edema was noted at the site of introduction of the pathogen; at autopsy, there was blood filling with hemorrhages in the liver and spleen.
При посеве на агар Хоттингера отпечатков внутренних органов этих животных выделяли В.аnthracis, который идентифицировали до чувствительности к фагу К и в тесте жемчужного ожерелья.When inoculated on the Hottinger agar, imprints of the internal organs of these animals were isolated by B. anthracis, which was identified before sensitivity to phage K and in the pearl necklace test.
Пример 5. Бактериологическое обследование выживших после заражения морских свинок, забор крови у животныхExample 5. Bacteriological examination of survivors after infection of guinea pigs, blood sampling in animals
На 21 и 35 сутки выживших морских свинок после хлороформирования вскрывали. Кровь забирали из сердца. Кров и отпечатки внутренних органов засевали на агар Хоттингера.On days 21 and 35, the surviving guinea pigs after chloroformation were opened. Blood was taken from the heart. Shelter and imprints of internal organs were seeded on Hottinger agar.
При вскрытии на 21 и 35 сутки после заражения внутренние органы животных были без особенностей. В.аnthracis из внутренних органов и крови этих животных не выделяли.At autopsy on days 21 and 35 after infection, the internal organs of animals were without features. B. anthracis was not isolated from the internal organs and blood of these animals.
После проверки на стерильность сыворотки крови этих животных отсасывали, инактивировали при 56°С 30 мин. К инактивированным сывороткам добавляли 1% мертиолят 1:100 и хранили в холодильнике до использования в реакции непрямой гемагглютинации (РНГА) и реакции иммунодиффузии в геле (РИД).After checking for sterility, the blood serum of these animals was aspirated, inactivated at 56 ° C for 30 minutes. 1: 100% merthiolate was added to inactivated sera and stored in a refrigerator until use in indirect hemagglutination (RNGA) and gel immunodiffusion (RID) reactions.
Пример 6. Получение антигенных эритроцитарных диагностикумовExample 6. Obtaining antigenic red blood cell diagnostics
Для сенсибилизации формализированных таннизированных эритроцитов барана использовали оптимальные для сенсибилизации разведения культуральных фильтратов (КФ) различных генотипов В.аnthracis.Optimal dilutions of culture filtrates (CF) of various B. anthracis genotypes were used for sensitization of formalized tannizated sheep erythrocytes.
Культуральные фильтраты В.аnthracis СТИ, 81/1TR, Davis получали по ранее описанной методике (Барков А.М., Липницкий А.В., Евтеева Е.В. Выделение и антигенная характеристика компонентов культурального фильтрата Bacillus аnthracis. //Биотехнология, 2000. №6.-С.27-33).Cultural filtrates of B. anthracis STI, 81 / 1TR, Davis were obtained according to the previously described method (Barkov A.M., Lipnitsky A.V., Evteeva E.V. Isolation and antigenic characteristics of the components of the cultural filtrate Bacillus anthracis. // Biotechnology, 2000 No. 6.-C.27-33).
Сенсибилизацию эритроцитов проводили по (Bushanan T.M., Feeley J.C., Haues P.S., Brachman P.S. "Anthrax inderect hemagglutination test //J.Immunol, 1971.-Vol.107.-P.2631-2636").Erythrocyte sensitization was carried out according to (Bushanan T.M., Feeley J.C., Haues P.S., Brachman P.S. "Anthrax inderect hemagglutination test // J. Immmunol, 1971.-Vol.107.-P.2631-2636").
Пример 7. Проверка в РНГА активности и специфичности сывороток морских свинок, выживших после заражения В.аnthracis 81/1.Example 7. Verification in RNGA of the activity and specificity of the serum of guinea pigs that survived after infection with B. anthracis 81/1.
РНГА ставили по общепринятой методике в объеме 0,025 мл. В качестве разбавителя использовали 1% нормальную кроличью сыворотку в физрастворе рН 7,2. Исследуемые сыворотки титровали в разбавителе с 1:10 до 1:1280. После внесения диагностикумов в объеме 0,025 мл плашки встряхивали, инкубировали при 37°С 40 мин. Результат учитывали в течение 20 мин.RNGA was set according to the standard method in a volume of 0.025 ml. As diluent used 1% normal rabbit serum in saline pH 7.2. Test sera were titrated in a diluent from 1:10 to 1: 1280. After making diagnosticum in a volume of 0.025 ml, the plates were shaken, incubated at 37 ° C for 40 min. The result was taken into account for 20 minutes.
Специфичность РНГА подтверждали контролями: разбавитель + эритроцитарный диагностикум; сыворотки исследуемых морских свинок + несенсибилизированные танизированные эритроциты.The specificity of RNGA was confirmed by the controls: diluent + erythrocyte diagnosticum; serum of the investigated guinea pigs + non-sensitized tanized red blood cells.
Титры сывороток, полученные на 21 и 35 сутки после заражения спорами В.аnthracis 81/1, составляли для диагностикума на основе КФ. В.аnthracis СТИ 1:320-1:640; для диагностикумов на основе КФ В.аnthracis 81/1TR и Davis- 1:80-1:320 (см. таблицу).Serum titers obtained on days 21 and 35 after infection with B. anthracis 81/1 spores were made for CF-based diagnosticum. B. anthracis STI 1: 320-1: 640; for diagnostic kits based on CF B. anthracis 81 / 1TR and Davis-1: 80-1: 320 (see table).
Специфичность РНГА подтверждена также РТНГА и РНАт.The specificity of RNGA is also confirmed by RTNGA and RNAT.
Пример 8. Активность сывороток морских свинок, выживших после заражения В.аnthracis 81/1 в РИДExample 8. The activity of the serum of guinea pigs surviving after infection with B. anthracis 81/1 in RID
Сыворотки морских свинок были неодинаково активны в РИД с КФ различных генотипов В.аnthracis и образовывали зоны преципитатов в разделении 1:4-1:16. (см. чертеж).Guinea pig sera were not equally active in RID with CFs of various B. anthracis genotypes and formed precipitate zones in the division 1: 4-1: 16. (see drawing).
Таким образом, предварительное введение морским свинкам НАФ обуславливает длительное выживание животных после заражения 10 ЛД50 В.аnthracis 81/1 с образованием антител к различным антигенам вирулентного штамма В.аnthracis.Thus, the preliminary introduction of NAF to guinea pigs leads to the long-term survival of animals after infection with 10 LD 50 of B. anthracis 81/1 with the formation of antibodies to various antigens of the virulent B. anthracis strain.
Использование сывороток таких животных будет полезным для (отбора) оценки сибиреязвенных диагностических препаратов.The use of the sera of such animals will be useful for (selection) evaluation of anthrax diagnostic drugs.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2003128626/13A RU2252031C1 (en) | 2003-09-24 | 2003-09-24 | Method for production of immune serum to virulent strain bacillus anthracis antigen |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2003128626/13A RU2252031C1 (en) | 2003-09-24 | 2003-09-24 | Method for production of immune serum to virulent strain bacillus anthracis antigen |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2252031C1 true RU2252031C1 (en) | 2005-05-20 |
Family
ID=35820478
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2003128626/13A RU2252031C1 (en) | 2003-09-24 | 2003-09-24 | Method for production of immune serum to virulent strain bacillus anthracis antigen |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2252031C1 (en) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EA017617B1 (en) * | 2011-08-10 | 2013-01-30 | Открытое Акционерное Общество "Институт Биотехнологий Ветеринарной Медицины" | Method for producing serum for diagnosis of anthrax and a diagnostics kit |
RU2478647C1 (en) * | 2011-08-10 | 2013-04-10 | Открытое Акционерное Общество "Институт Биотехнологий Ветеринарной Медицины" | Method for preparing anthrax diagnostic serum and diagnostic set |
-
2003
- 2003-09-24 RU RU2003128626/13A patent/RU2252031C1/en not_active IP Right Cessation
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EA017617B1 (en) * | 2011-08-10 | 2013-01-30 | Открытое Акционерное Общество "Институт Биотехнологий Ветеринарной Медицины" | Method for producing serum for diagnosis of anthrax and a diagnostics kit |
RU2478647C1 (en) * | 2011-08-10 | 2013-04-10 | Открытое Акционерное Общество "Институт Биотехнологий Ветеринарной Медицины" | Method for preparing anthrax diagnostic serum and diagnostic set |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Avery et al. | Acute lobar pneumonia | |
Rodewald et al. | Neonatal mouse model of group B streptococcal infection | |
Manish et al. | Brucellosis: An updated review of the disease | |
Grippi et al. | serogroup Sejroe serovar Hardjo in aborting cows: two herd cases in Sicily (Italy) | |
Felix | The preparation, testing and standardization of typhoid vaccine | |
Camussone et al. | Efficacy of immunization with a recombinant S. aureus vaccine formulated with liposomes and ODN-CpG against natural S. aureus intramammary infections in heifers and cows | |
Adlam et al. | Natural and experimental staphylococcal mastitis in rabbits | |
CN105611942A (en) | Compositions and methods of immunizing against clostridium difficile | |
RU2252031C1 (en) | Method for production of immune serum to virulent strain bacillus anthracis antigen | |
Gay et al. | AN EXPERIMENTAL STUDY OF METHODS OF PROPHYLACTIC IMMUNIZATION AGAINST TYPHOID FEVER: STUDIES IN TYPHOID IMMUNIZATION. V | |
RU2425148C2 (en) | Brucella abortus uf-1 strain for preparing biological preparations for diagnostics and specific prevention of brucellosis in farm animals | |
US3318775A (en) | Production of viral antigens with n-acetyl-ethyleneimine | |
RU2308969C1 (en) | LIVE TULAREMIA VACCINE Nik-sp. Francisella tularensis | |
RU2416429C2 (en) | Method for producing antigen preparation of l-brucellas | |
RU2802251C1 (en) | Vaccine composition for the prevention of enzootic abortion in sheep | |
RU2812350C1 (en) | Method of obtaining diagnostic serum against brucella in r-form | |
RU2065749C1 (en) | Method of prophylaxis of brucellosis in cattle | |
RU2768008C1 (en) | Virulent strain of bacteria leptospira interrogans of the icterohaemorrhagiae serogroup of the copenhageni serovar, used for experimental study of the leptospiral infection | |
RU2752978C1 (en) | Test strain leptospira interrogans of serogroup grippotyphosa of serovar grippotyphosa for detection of antibodies to l. grippotyphosa | |
RU2366455C2 (en) | Method for preparing specific immunomodulator | |
RU2707289C1 (en) | Method for producing vaccine associated with colibacillosis, streptococcus and pseudomonosis of bovine animals | |
BRPI0900592B1 (en) | VACINAL COMPOSITION FOR CANINE PIODERMITE, VACCINATION METHOD FOR CANINE PIODERMITE AND USE OF STAPHYLOCOCCUS INTERMEDIUS TOXOIDS | |
RU2008918C1 (en) | Method for detection of germ carrier in cattle brucellosis | |
RU2416642C1 (en) | Manichino-09 strain of rabbit hemorrhagic disease virus for preparing vaccines and diagnostic products | |
EVSTIFEEV et al. | Study of The Immunobiological Properties of a New Chlamydia Isolate Obtained from Goats During Chlamydia Abortion. |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20050925 |