RU2235324C1 - Method for assay of caseinolytic activity of microorganisms in express-diagnosis of intestine dysbacteriosis - Google Patents
Method for assay of caseinolytic activity of microorganisms in express-diagnosis of intestine dysbacteriosis Download PDFInfo
- Publication number
- RU2235324C1 RU2235324C1 RU2003105528/15A RU2003105528A RU2235324C1 RU 2235324 C1 RU2235324 C1 RU 2235324C1 RU 2003105528/15 A RU2003105528/15 A RU 2003105528/15A RU 2003105528 A RU2003105528 A RU 2003105528A RU 2235324 C1 RU2235324 C1 RU 2235324C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- agar
- zones
- proteolysis
- casein
- added
- Prior art date
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к медицине, а именно к гастроэнтерологии, микробиологии и биохимии. В последнее время при самых разнообразных внешних воздействиях (загрязнение окружающей среды, повышенный радиационный фон, магнитные возмущения и др.), экстремальных условиях, стрессовых ситуациях, гиподинамии, нарушениях биоритмов, в случаях снижения иммунологического статуса, развития в желудочно-кишечном тракте патологических состояний и воспалительных процессов как инфекционной, так и неинфекционной этиологии происходят экологические сдвиги в микробном пейзаже кишечника (Соколова К.Я., Соловьева И.В. Дисбактериозы. Теория и практика. Н.Новгород, 1999; Ефимов Б.А., Володин Н.Н., Кафарская Л.И. и др. Характеристика микроорганизмов, колонизирующих кишечник человека. Журн. микробиол. 2002, 5:98-104).The invention relates to medicine, namely to gastroenterology, microbiology and biochemistry. Recently, with a wide variety of external influences (environmental pollution, increased radiation background, magnetic disturbances, etc.), extreme conditions, stressful situations, physical inactivity, biorhythm disturbances, in cases of decreased immunological status, development of pathological conditions in the gastrointestinal tract and of inflammatory processes of both infectious and non-infectious etiology, environmental shifts occur in the microbial landscape of the intestine (Sokolova K.Ya., Solovieva IV Dysbacteriosis. Theory and practice . Ka N. Novgorod, 1999; Efimov BA, Volodin NN Kafarskaya LI et al Characterization of microorganisms, colonizing the human gut mikrobiol Journal 2002, 5: 98-104).....
Развитие дисбактериозов кишечника различной этиологии отягощает течение основного заболевания, ухудшает его прогноз. В ряде случаев дисбактериозы становятся в последующем определяющим фактором в формировании патологического состояния организма, приводят к выраженным функциональным нарушениям в пищеварительном тракте и могут быть причиной развития инфекционного заболевания. По данным многих авторов, дисбактериоз кишечника наблюдается среди 70-90% больных желудочно-кишечными, сердечно-сосудистыми, неврологическими, аллергическими и др. заболеваниями (Воробьев А.А., Абрамов Н.А., Бондаренко В.М., Шендеров Б.А. Дисбактериозы - актуальная проблема медицины. Вестн. РАМН, 1997, 3:4-7. Salminen S., Isolauri E., Onnela Т. Gut flora in normal and disordered states. Chemotherapy. 1995, 41 (suppl.l):5-15).The development of intestinal dysbiosis of various etiologies aggravates the course of the underlying disease, worsens its prognosis. In some cases, dysbacterioses subsequently become a determining factor in the formation of the pathological state of the body, lead to pronounced functional disorders in the digestive tract and can cause the development of an infectious disease. According to many authors, intestinal dysbiosis is observed among 70-90% of patients with gastrointestinal, cardiovascular, neurological, allergic and other diseases (Vorobyov A.A., Abramov N.A., Bondarenko V.M., Shenderov B .A. Dysbacteriosis - an urgent problem of medicine.Vest. RAMS, 1997, 3: 4-7. Salminen S., Isolauri E., Onnela T. Gut flora in normal and disordered states. Chemotherapy. 1995, 41 (suppl.l) : 5-15).
В медицинской практике для диагностики дисбактериозов кишечника используется, как правило, классический бактериологический анализ, требующий наличия большого количества дорогостоящих питательных сред и длительный во времени (не менее 5 дней). Следует отметить, что только в кишечнике человека обитают около 500 видов микроорганизмов нормальной микрофлоры. При этом соотношение анаэробов к аэробам 1000:1, и учесть все столь отдаленные в таксономическом отношении микроорганизмы при классическом бактериологическом анализе практически невозможно.In medical practice, for the diagnosis of intestinal dysbiosis, as a rule, a classic bacteriological analysis is used, which requires a large number of expensive nutrient media and takes a long time (at least 5 days). It should be noted that about 500 species of microorganisms of normal microflora live in the human intestine alone. At the same time, the ratio of anaerobes to aerobes is 1000: 1, and it is practically impossible to take into account all microorganisms that are so distant in a taxonomic relation with classical bacteriological analysis.
Для скрининговых исследований на дисбактериоз требуется разработка достаточно быстрых биохимических методов, легко осуществляемых на практике.For screening studies for dysbiosis, the development of sufficiently fast biochemical methods that are easily implemented in practice is required.
Аналогом, по мнению авторов, является метод определения казеинолитической (протеолитической) активности микробов на казеиново-агаровых пластинках, предложенный В.М. Никитиным (Справочник методов биохимической экспресс-индикации микробов. Кишинев, 1986, с.117-119).An analog, according to the authors, is the method for determining the caseinolytic (proteolytic) activity of microbes on casein-agar plates, proposed by V.M. Nikitin (Handbook of methods for biochemical express indication of microbes. Chisinau, 1986, pp. 117-119).
Принцип. При взаимодействии протеиназ бактериальных культур с казеином, содержащимся в агаровой среде, происходит его расщепление. При добавлении коагулянта белка на мутном фоне агара выявляются зоны просветления вокруг роста казеинолитически активных микроорганизмов.Principle. In the interaction of bacterial culture proteinases with casein contained in an agar medium, its cleavage occurs. When a protein coagulant is added against a cloudy agar background, zones of enlightenment around the growth of caseinolytically active microorganisms are detected.
Реагенты и материалы. Исследуемые суточные культуры микробов на МПБ или МПА; раствор 1% казеина на 1/15 М фосфатном буфере рН 7,2; 2% агар на физрастворе, рН 7,2, в пробирке или колбочку; проявители для белка (казеина): а) 10% раствор трихлоруксусной кислоты во флаконе с притертой пробкой или б) ледяная уксусная кислота 1 г, метиловый спирт 4,5 мл, дист. вода 4,5 мл; красители для белка (казеина) - амидочерный 10 В или кумаси ярко-синий R-250 во флаконах из темного стекла с притертой стеклянной пробкой; пробирки, пипетки, чашки Петри, предметные стекла, пробойники для создания лунок (колодцев) в агаре и др. лабораторное оборудование.Reagents and materials. The studied daily culture of microbes on the BCH or MPA; a solution of 1% casein in 1/15 M phosphate buffer pH 7.2; 2% agar in saline, pH 7.2, in vitro or cone; developers for protein (casein): a) a 10% solution of trichloroacetic acid in a bottle with a ground stopper, or b) glacial acetic acid 1 g, methyl alcohol 4.5 ml, dist. water 4.5 ml; dyes for protein (casein) - amid black 10 V or kumashi bright blue R-250 in dark glass bottles with ground glass stopper; test tubes, pipettes, Petri dishes, slides, punches for creating holes (wells) in agar and other laboratory equipment.
Приготовление раствора-красителя, используемого для окраски белковых преципитатов казеина: амидочерный 10 В (или кумаси ярко-синий R-250) 50,0 г + этиловый спирт 96° 4,5 л + ледяная уксусная кислота 1,0 л + дист. вода 4,5 л. Краску растворяют, и раствор оставляют на ночь при комнатной температуре, затем фильтруют и используют. Применение красителя повышает чувствительность метода.Preparation of the dye solution used to color casein protein precipitates: amid black 10 V (or kumashi bright blue R-250) 50.0 g + ethanol 96 ° 4.5 l + glacial acetic acid 1.0 l + dist. water 4,5 l. The paint is dissolved and the solution is left overnight at room temperature, then filtered and used. The use of dye increases the sensitivity of the method.
Методика внесения казеина в агар. В 10 мл расплавленного и охлажденного до 60-65°С 2% агара в пробирке приливают 1 мл 1% раствора казеина, перемешивают и содержимое быстро выливают в стерильную чашку Петри или на поверхность двух предметных стекол. После застывания агара в нем проделывают лунки диаметром 5-7 мм. В каждую лунку вносят густую взвесь испытуемых микробов, заполняя ее до краев. Чашки (предметные стекла) с посевами помещают в термостат при 37°С. Через 6-12 ч на поверхность агара с пробами наносят проявитель “а” или “б” в объеме 4-5 мл (пробы на предметном стекле опускают в чашку с проявителем), выдерживают 7-10 мин и удаляют.The method of making casein in agar. In 10 ml of molten and cooled to 60-65 ° С 2% agar, 1 ml of 1% casein solution is poured in a test tube, mixed and the contents are quickly poured into a sterile Petri dish or on the surface of two glass slides. After solidification of the agar, holes with a diameter of 5-7 mm are made in it. A thick suspension of the tested microbes is introduced into each well, filling it to the brim. Cups (slides) with crops are placed in a thermostat at 37 ° C. After 6-12 hours, the developer “a” or “b” is applied to the surface of the agar with samples in a volume of 4-5 ml (the samples on a glass slide are lowered into a cup with the developer), incubated for 7-10 minutes and removed.
Регистрация результатов осуществляется визуально. На мутном фоне казеинового агара при положительном результате отмечаются зоны просветления с казеинолитическими микробными культурами. При отрицательной реакции агаровая среда вокруг лунки остается равномерно мутной. Применение красителей способствует повышению чувствительности методики, поскольку мутные преципитаты казеина становятся более контрастными, приобретая черно-синий цвет, а зоны лизиса, наоборот, бывают неокрашенными и светлыми и лучше выявляются, особенно слабые степени бактериального казеинолизиса.Registration of results is carried out visually. Against the turbid background of casein agar with a positive result, zones of enlightenment with caseinolytic microbial cultures are noted. In a negative reaction, the agar medium around the well remains uniformly cloudy. The use of dyes helps to increase the sensitivity of the method, since turbid casein precipitates become more contrasting, becoming black and blue, and lysis zones, on the contrary, are unpainted and bright and are better detected, especially weak degrees of bacterial caseinolysis.
Некоторыми недостатками предлагаемого способа являются:Some of the disadvantages of the proposed method are:
- плохая растворимость казеина в фосфатном буфере,- poor solubility of casein in phosphate buffer,
- неравномерное его введение в питательную среду.- uneven its introduction into the nutrient medium.
В качестве прототипа авторы предлагают биохимический экспресс-метод, разработанный в лаборатории генетики вирулентности бактерий НИИЭМ им. Н.Ф. Гамалеи (Лучшев Л.И., Бондаренко В.М., Исаева Н.П., Земскова Л.И., Шахмарданов М.З., Грицевская Н.Ю. Косвенный метод экспресс-диагностики дисбактериозов кишечника у больных сальмонеллезом и дизентерией. Эпидемиология и инфекционные болезни. 1996, 1:52-54), основанный на определении протеолитической (казеинолитической) активности содержимого толстой кишки, что позволяет в общей сложности оценить состояние микробного биоценоза и дать ориентировочный ответ через 18 ч от начала исследования.As a prototype, the authors propose a biochemical rapid method developed in the laboratory of bacterial virulence genetics of the NIIEM them. N.F. Gamalei (Luchshev L.I., Bondarenko V.M., Isaeva N.P., Zemskova L.I., Shakhmardanov M.Z., Gritsevskaya N.Yu. Indirect method for rapid diagnosis of intestinal dysbiosis in patients with salmonellosis and dysentery. Epidemiology and Infectious Diseases. 1996, 1: 52-54), based on the determination of the proteolytic (caseinolytic) activity of the contents of the colon, which allows a total assessment of the state of microbial biocenosis and an approximate response after 18 hours from the start of the study.
Тестирование казеинолитической активности проводили на чашках Петри с казеиновым агаром после 18-часовой инкубации в термостате. Зоны протеолиза проявляли добавлением 5% трихлоруксусной кислоты.Caseinolytic activity testing was performed on Petri dishes with casein agar after an 18-hour incubation in an incubator. Zones of proteolysis showed the addition of 5% trichloroacetic acid.
Активность считали низкой при диаметре зон до 10 мм, средней - при 11-15 мм и высокой - при диаметре зон протеолиза выше 16 мм.Activity was considered low with zone diameters up to 10 mm, medium at 11-15 mm and high with proteolysis zones above 16 mm.
Недостатками прототипа является отсутствие данных о заборе материала для исследований, о способе внесения в питательную среду казеина, о приготовлении питательной среды для определения казеинолитической активности.The disadvantages of the prototype is the lack of data on the collection of material for research, on the method of introducing casein into the nutrient medium, on the preparation of a nutrient medium for determining caseinolytic activity.
Авторами предлагается способ определения казеинолитической (протеолитической) активности микроорганизмов при экспресс-диагностике дисбактериозов в супернатантах фекалий.The authors propose a method for determining the caseinolytic (proteolytic) activity of microorganisms in the rapid diagnosis of dysbiosis in feces supernatants.
Для анализа порции фекалий собирали в стерильную посуду либо сбор материала осуществляли стерильным зондом с декроновым или ватным тампоном, который вводили в прямую кишку как можно выше, и вращательными движениями, избегая соприкосновения со стенками кишечника, собирали материал, который переносили в пробирку с физиологическим раствором. До отправки в лабораторию образцы можно хранить в течение нескольких дней при +5-8°С.For analysis, portions of feces were collected in a sterile dish or the material was collected using a sterile probe with a dekron or cotton swab, which was inserted into the rectum as high as possible, and by rotating movements, avoiding contact with the intestinal walls, material was collected, which was transferred to a test tube with physiological saline. Before sending to the laboratory, samples can be stored for several days at + 5-8 ° C.
Исследование протеолитической (казеинолитической) активности супернатантов фекалий осуществляли в порции фекалий 1-2 г, которую разводили физиологическим раствором 1:10. После 20 мин отстаивания жидкость над осадком отсасывали и переносили в пробирки, приливали к пробе не более 0,05 мл (1 каплю) хлороформа (для лизиса бактерий и обеззараживания), отстаивали в течение 30-40 мин и вносили в лунки (не более 9 на чашке) со специально приготовленной питательной средой по 20 мкл. В одну из лунок для контроля вносили казеинолитически активную пробу с известной степенью протеолиза.The study of the proteolytic (caseinolytic) activity of feces supernatants was carried out in a portion of feces 1-2 g, which was diluted with saline 1:10. After 20 minutes of settling, the liquid above the precipitate was aspirated and transferred to test tubes, not more than 0.05 ml (1 drop) of chloroform (for lysis of bacteria and disinfection) was added to the sample, sedimented for 30-40 minutes and introduced into wells (no more than 9 per cup) with a specially prepared nutrient medium of 20 μl. A caseinolytically active sample with a known degree of proteolysis was introduced into one of the control wells.
Способ приготовления питательной среды с казеином состоит из следующих этапов. Вначале готовили 100 мл 3,5% стандартного питательного агара, содержащего дрожжевой или рыбный экстракт и другие ингредиенты (производство г.Махачкала и др.), предназначенного для 5 чашек Петри, и доводили до кипения. Затем готовили 1,5% раствор казеина на 0,2 Н NaOH (0,15 г казеина на 10 мл щелочи). При этом добивались полного растворения казеина в щелочном растворе. После этого питательный агар и раствор казеина смешивали 10:1, автоклавировали при 121°С 15 мин, доводили рН до 7,2-7,4 и разливали в стерильные чашки Петри. После охлаждения чашек на ровной поверхности в агаре делали лунки диаметром 6 мм специальным пробойником или штампом. Таким образом, питательная среда с казеином была готова для внесения в лунки супернатантов фекалий для определения в них казеинолитической (протеинолитической) активности.A method of preparing a nutrient medium with casein consists of the following steps. First, 100 ml of a 3.5% standard nutrient agar containing yeast or fish extract and other ingredients (manufactured in Makhachkala and others) for 5 Petri dishes was prepared and brought to a boil. Then prepared a 1.5% solution of casein on 0.2 N NaOH (0.15 g of casein per 10 ml of alkali). In this case, complete dissolution of casein in an alkaline solution was achieved. After that, nutrient agar and casein solution were mixed 10: 1, autoclaved at 121 ° C for 15 min, adjusted to pH 7.2–7.4 and poured into sterile Petri dishes. After cooling the cups on a flat surface in the agar, holes with a diameter of 6 mm were made with a special punch or stamp. Thus, the nutrient medium with casein was ready for introducing fecal supernatants into the wells to determine caseinolytic (proteinolytic) activity in them.
После культивирования в термостате при 37°С 6-8 ч зоны протеолиза проявляли внесением на агар 5 мл 5% водного раствора соляной кислоты. При этом не требуется дополнительно подкрашивать агар для проявления зон протеолиза, что сокращает количество этапов и делает способ более экономичным.After cultivation in a thermostat at 37 ° C for 6-8 h, the proteolysis zones were manifested by adding 5 ml of a 5% aqueous hydrochloric acid solution to agar. In this case, it is not necessary to additionally tint the agar for the manifestation of proteolysis zones, which reduces the number of steps and makes the method more economical.
Способ позволяет оценить состояние микробного биоценоза, обладает быстротой и легкостью осуществления, что позволяет использовать его в скрининговых исследованиях.The method allows to assess the state of microbial biocenosis, has the speed and ease of implementation, which allows its use in screening studies.
Предложенный способ позволяет полностью растворять казеин и вносить его без остатка в питательную среду. При этом можно увеличить концентрацию казеина в растворе, что повышает чувствительность определения. Время культивирования в термостате сокращается до 6-8 ч. При проявлении реакции не требуется дополнительного подкрашивания среды, т.е. исключается дополнительный этап реакции, что делает способ более экономичным во времени и в плане материальных затрат.The proposed method allows you to completely dissolve casein and make it without residue in a nutrient medium. In this case, you can increase the concentration of casein in the solution, which increases the sensitivity of the determination. The cultivation time in the thermostat is reduced to 6-8 hours. When the reaction manifests itself, additional coloring of the medium is not required, i.e. the additional reaction stage is excluded, which makes the method more economical in time and in terms of material costs.
Диаметры зон протеолиза измеряли в миллиметрах (мм). В результате измерения зон протеолиза на нашей среде активность считали низкой при диаметре зон до 10 мм, средней - при 11-16 мм, высокой - при диаметре зон протеолиза выше 16 мм.The diameters of the proteolysis zones were measured in millimeters (mm). As a result of measuring the proteolysis zones on our medium, activity was considered low when the diameter of the zones is up to 10 mm, medium - at 11-16 mm, high - with the diameter of the proteolysis zones above 16 mm.
При параллельном исследовании фекалий на дисбактериоз с помощью классического бактериологического анализа и с использованием экспресс-метода, проведенным на большом количестве пациентов (543 чел.), была установлена корреляция между снижением популяционного уровня анаэробной облигатной и факультативной нормальной микрофлоры, повышением численности аэробной условно патогенной грамнегативной микрофлоры и размерами зон протеолиза супернатантов фекалий. Это связано с возрастанием количества бактерий, продуцирующих различные протеазы.A parallel study of feces for dysbiosis using classical bacteriological analysis and using the express method performed on a large number of patients (543 people) showed a correlation between a decrease in the population level of anaerobic obligate and optional normal microflora, and an increase in the number of aerobic conditionally pathogenic gram-negative microflora and the size of the proteolysis zones of feces supernatants. This is due to an increase in the number of bacteria producing various proteases.
Совпадение результатов при использовании классического и экспресс-методов составило 89,8%. Прослеживалась прямая корреляция между диаметрами зон протеолиза и степенью выраженности дисбактериоза, что может применяться с диагностической целью и служить критерием эффективности проводимой терапии.The coincidence of the results when using the classical and express methods was 89.8%. There was a direct correlation between the diameters of the proteolysis zones and the severity of dysbiosis, which can be used for diagnostic purposes and serve as a criterion for the effectiveness of the therapy.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2003105528/15A RU2235324C1 (en) | 2003-02-25 | 2003-02-25 | Method for assay of caseinolytic activity of microorganisms in express-diagnosis of intestine dysbacteriosis |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2003105528/15A RU2235324C1 (en) | 2003-02-25 | 2003-02-25 | Method for assay of caseinolytic activity of microorganisms in express-diagnosis of intestine dysbacteriosis |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2003105528A RU2003105528A (en) | 2004-08-27 |
RU2235324C1 true RU2235324C1 (en) | 2004-08-27 |
Family
ID=33414038
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2003105528/15A RU2235324C1 (en) | 2003-02-25 | 2003-02-25 | Method for assay of caseinolytic activity of microorganisms in express-diagnosis of intestine dysbacteriosis |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2235324C1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2487943C1 (en) * | 2012-05-25 | 2013-07-20 | Федеральное казённое учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Method to assess biological activity of lactobacilli and bifidus bacterial relative to choleraic vibrios in vitro |
-
2003
- 2003-02-25 RU RU2003105528/15A patent/RU2235324C1/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
НИКИТИН В.М. Справочник методов биохимической экспресс-индикации микробов. - Кишинев, 1986, с.117-119. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2487943C1 (en) * | 2012-05-25 | 2013-07-20 | Федеральное казённое учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Method to assess biological activity of lactobacilli and bifidus bacterial relative to choleraic vibrios in vitro |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN106238112B (en) | A kind of micro-fluidic chip and its application in the identification and drug sensitive experiment of pathogen | |
CN110343780A (en) | Gardner bacillus, the primer of Candida albicans and trichomonas vaginalis Multiple detection, probe groups, kit and detection method | |
CN103266163B (en) | Combined detection kit for detecting and identifying candida and trichomonias | |
CN111286474A (en) | Lactobacillus paracasei and application thereof | |
CN101402989A (en) | Syringe-shaped microorganism culture device | |
CN104450860A (en) | Pneumonia mycoplasma medium | |
RU2619834C2 (en) | Method research on feces dysbacteriosis of the intestine | |
CN101177668B (en) | Novel neisseria gonorrhoeae culture medium and method for making same | |
RU2235324C1 (en) | Method for assay of caseinolytic activity of microorganisms in express-diagnosis of intestine dysbacteriosis | |
CN109370986A (en) | The extracting method and its preparation of a kind of dog fat stem cell and application | |
US20180274005A1 (en) | Cord blood therapy to treat chronic disease caused by l-form bacteria | |
CN109385381A (en) | A kind of Urogenital Mycoplasma biphasic culture | |
CN108285917A (en) | Detect coliform and the chromogenic culture medium and detection lug of salmonella simultaneously | |
RU2768493C1 (en) | Method for diagnosing degree of periodontitis by determining proteinolytic activity of oral fluid microorganisms | |
US5091307A (en) | Procedure for the counting, detection and identification of mycoplasms in general and urinogenital mycoplasms in particular and a biological medium specially adapted to this effect | |
CN105803044A (en) | Starch degrading microorganism detection kit and method for detecting starch degrading microorganism | |
CN104178550A (en) | Use method of mycobacterium tuberculosis drug-sensitive indicator | |
WO2016079733A1 (en) | Method for early diagnosis of cancer | |
Saha et al. | Prevalence of Salmonella associated with goats in Bangladesh | |
RU2553548C1 (en) | Kit for laboratory diagnosis of infections caused by mycoplasma hominis and ureaplasma urealyticum | |
CN109355226A (en) | Zengjing Granule for Legionella and the biphasic culture and preparation method thereof that is separately cultured | |
RU2088938C1 (en) | Method for diagnosing intestinal dysbiosis and intestinal infection cases | |
ES2966679T3 (en) | Methods and compositions to improve the detection of microorganisms | |
Sahu et al. | Isolation and Biochemical Characterization of Canis Lupus Familiaris and Human Saliva against the Pathogenic Bacteria and Analysis of Antimicrobial Activity | |
RU2261903C1 (en) | NUTRIENT MEDIUM FOR DETECTION OF Mycoplasma hominis AND METHOD FOR DIAGNOSIS OF UROGENITAL MYCOPLASMOSIS |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20070226 |