RU2232550C2 - Способ пострезекционной регенерации печени в эксперименте - Google Patents

Способ пострезекционной регенерации печени в эксперименте Download PDF

Info

Publication number
RU2232550C2
RU2232550C2 RU2002119986/14A RU2002119986A RU2232550C2 RU 2232550 C2 RU2232550 C2 RU 2232550C2 RU 2002119986/14 A RU2002119986/14 A RU 2002119986/14A RU 2002119986 A RU2002119986 A RU 2002119986A RU 2232550 C2 RU2232550 C2 RU 2232550C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
liver
resection
hepatic
regeneration
cells
Prior art date
Application number
RU2002119986/14A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2002119986A (ru
Inventor
С.П. Чикотеев (RU)
С.П. Чикотеев
А.Н. Плеханов (RU)
А.Н. Плеханов
А.И. Товаршинов (RU)
А.И. Товаршинов
О.А. Гольдберг (RU)
О.А. Гольдберг
С.А. Лепехова (RU)
С.А. Лепехова
Н.Г. Корнилов (RU)
Н.Г. Корнилов
Original Assignee
Плеханов Александр Николаевич
Товаршинов Александр Искрович
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Плеханов Александр Николаевич, Товаршинов Александр Искрович filed Critical Плеханов Александр Николаевич
Priority to RU2002119986/14A priority Critical patent/RU2232550C2/ru
Publication of RU2002119986A publication Critical patent/RU2002119986A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2232550C2 publication Critical patent/RU2232550C2/ru

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Изобретение относится к медицине, а именно к экспериментальной хирургии, и может быть использовано при выполнении обширных резекций печени. Проводят предварительную ксенотрансплантацию криоконсервированными изолированными гепатоцитами свиньи в концентрации 2×106 в 1 мл питательной среды подкожно в переднюю брюшную стенку. Процедуру осуществляют за 48 часов до операции. Затем интраоперационно непосредственно после резекции печени выполняют трансплантацию таких же клеток под капсулу селезенки. Способ позволяет повысить эффективность пострезекционной регенерации печени.

Description

Предлагаемое изобретение относится к области медицины, а именно к экспериментальной хирургии, и может быть использовано при выполнении обширных резекцией печени для стимуляции ее регенерации.
Известен способ стимуляции регенерации печени путем использования лекарственного препарата ловастатин (Cai S.R., Motoyama К, Shen K.J., Kennedy S.C., Flye M.W., Ponder K.P. Lovastatin decreases mortality and improves liver functions in fulminant hepatic failure from 90% partial hepatectomy in rats // J/ Hepatol-2000.-Vol.32, N1.-P.67-77). Ловастатин является ингибитором редуктазы, которая замедляет биосинтез холестерина. Использование ловастатина в пострезекционном периоде позволяло снизить биохимические показатели маркеров внутрипеченочного цитолиза и холестаза, вне зависимости от степени их выраженности, уменьшало гипераммониемию (до 427 мкмоль/л по сравнению с группой контроля 846 мкмоль/л), снижало протромбиновое время (до 23 с, против 29 с в группе контроля), активизировало частичное тромбопластиновое время (к 29 с, против 39 с в группе контроля).
Для коррекции острой пострезекционной печеночной недостаточности. ловастатин вводили внутримышечно крысам через 30 мин после резекции 90% объема печени. Введение ловастатина увеличивало выживаемость животных до 58%. Установлено, что в приведенных условиях препарат выполняет роль заместительной терапии. При введении препарата в более поздние сроки эффекта не наблюдалось.
К недостаткам данного способа следует отнести отсутствие регенеративной способности препарата и относительно низкую выживаемость животных в послеоперационном периоде. При введении препарата в более поздний период после резекции печени его действие по эффективности было значительно снижено.
Наиболее близким к предлагаемому по технической сущности является способ ксенотрансплантации изолированных криоконсервированных гепатоцитов (Kobayashi N., Miyazald M., Fukaya К. Transplantation of highly differentiated immortalized human hepatocytes to treat acute liver failure // Transplantation. - 2000.-N2.-P.202-207).
Сущность известного способа заключается в том, что за 12 часов перед резекцией 90% печени экспериментальным животным (крысам) имплантируют в селезенку высокодифференцированные гепатоциты человека в концентрации 20×106. Установлено, что данный прием снижает гипераммониемию у животных и связанную с этим энцефалопатию.
К недостаткам данного способа следует отнести то, что он не влияет на регенеративные процессы, происходящие в органе, а только обеспечивает метаболическую поддержку оставшейся паренхимы печени.
Задачей заявляемого изобретения является разработка способа стимуляции регенерации печени после ее обширной резекции (90%) в эксперименте.
Техническим результатом настоящего предложения является снижение процента послеоперационной летальности животных за счет усиления регенерации печеночной паренхимы.
Эта задача решается способом, заключающимся в том, что проводят предварительную ксенотрансплантацию изолированных криоконсервированных гепатоцитов.
Отличительным приемом заявляемого способа является то, что предварительную ксенторансплантацию проводят за 48 часов криоконсервированными изолированными гепатоцитами свиньи в концентрации 2×10 в 1 мл питательной среды подкожно в переднюю брюшную стенку.
Отличие способа также заключается и в том, что интраоперационно после резекции печени выполняют дополнительную трансплантацию таких же клеток под капсулу селезенки.
Сопоставительный анализ заявляемого решения и прототипа показывает, что предлагаемый способ отличается от известного тем, что проводят ксенотрансплантацию за 48 часов криоконсервированными изолированными гепатоцитами свиньи в концентрации 2×106 в 1 мл питательной среды. Предварительную ксенторансплантацию проводят путем подкожного введения трансплантата в переднюю брюшную стенку, а после резекции печени - интраоперационно таких же клеток под капсулу селезенки. Из приведенного сопоставительного анализа следует, что заявляемый способ соответствует критерию изобретения "новизна".
Способ, составляющий заявляемое изобретение, предназначен для использования в медицине, а именно в экспериментальной хирургии. Возможность его осуществления подтверждена описанными в заявке приемами и средствами.
Заявленный способ обеспечивает достижение технического результата, а именно снижение послеоперационной летальности экспериментальных животных за счет усиления регенерации печеночной паренхимы. Следовательно, заявляемое изобретение соответствует условию патентоспособности "промышленная применимость".
В доступной литературе нами не обнаружено данных по стимуляции процессов регенерации печени после ее обширной резекции (90%) в эксперименте. Анализ известных способов показал отсутствие сведений о влиянии отличительных признаков способа для достижения технического результата, что позволяет считать заявляемое изобретение соответствующим критерию "изобретательский уровень".
Авторами заявляемого способа опытным путем установлены сроки и эктопические зоны введения изолированных криоконсервированных ксеногепатоцитов, что позволило добиться наилучшей адаптации имплантированных клеток в организме животного - реципиента. Наличие процессов регенерации печеночной паренхимы крыс после обширной резекции 90% печени подтверждено гистологическими исследованиями авторов предлагаемого способа.
При морфологическом исследовании отмечено смещение популяции гепатоцитов с размером ядра 9 мкм в сторону клеток с размерами ядра 7 мкм:127 клеток в поле зрения - с размерами ядра 7 мкм против 42 клеток в поле зрения с размером ядра 9 мкм. В группе контроля соотношение этих клеток составило 59 клеток с размерами ядра 7 мкм против 86 клеток с размерами ядра 9 мкм. Об увеличении активности регенерации в опытной группе животных свидетельствовало снижение количества двуядерных клеток по сравнению с контролем (3 клетки в поле зрения в опытной группе против 14 в группе контроля). При этом содержание непаренхиматозных клеток печени - купферовских клеток - 16 клеток в поле зрения в опытной группе, против 57 в группе контроля. Это указывает на стимуляцию регенерации основных клеток печени - гепатоцитов в группе животных с ксентотрансплантацией по сравнению с контрольной группой - резекция 90% печени и без проведения ксенотрансплантации.
Предлагаемый способ осуществляют следующим образом.
За 48 часов до операции экспериментальным животным (крысам) подкожно вводят изолированные криоконсервированные гепатоциты свиньи в концентрации 2×106 в 1 мл в питательной среды. Введение трансплантата проводят однократно подкожно в переднюю брюшную стенку. Затем интраоперационно непосредственно после резекции печени выполняют трансплантацию таких же клеток под капсулу селезенки каждого экспериментального животного.
Предлагаемый способ поясняется примером.
Эксперимент проводили на 30 белых крысах-самцах породы “Вистар” в возрасте не менее 6-ти месяцев и с массой тела 200-250 г. Контрольную группу составили 30 крыс. За 48 часов до гепатэктомии каждому экспериментальному животному проводили введение трансплантата подкожно в переднюю брюшную стенку в количестве 1 мл. В качестве трансплантата были использованы изолированные криоконсервированные ксеногепатоциты в концентрации 2×106. Указанные гепатоциты подверглись консервации при температуре - 70°С в течение 1 месяца в специальной питательной среде (Среда для консервации клеток печени, Пат. РФ №2161198, МКИ7 С 12 N 5/00). Жизнеспособность размороженных криоконсервированных ксеногепатоцитов составила 80-85%.
Через 2-е суток после предварительной ксенотрансплантации опытным животным была выполнена частичная гепатэктомия в модификации А. Фишера (Фишер А. Физиология и экспериментальная патология печени. - Будапешт, 1961.- 230 с.) в объеме 90%. Контрольным животным также была выполнена 90%-ная гепатэктомия. Во время оперативного вмешательства после гепатэктомии животным опытной группы выполняли трансплантацию таких же клеток - размороженных криоконсервированных изолированных ксеногепатоцитов под капсулу селезенки в количестве 0,3 мл. В первые сутки послеоперационного периода летальность животных контрольной группы составила 100%. Летальность животных опытной группы пришлась на первые сутки после операции и составила 30%. Выжившим животным проводили определение биохимических показателей сыворотки крови, гемостаза; иммунологические исследования, оценку морфологической картины. Выведение животных из эксперимента - забор материала проводили на 2, 5 и 11 сутки пострезекционного периода. У большинства животных - 60% происходило улучшение белково-синтетической, жиролипидной и пигментной функции, снижение активности маркеров цитолиза, холестаза. При этом отмечалось снижение активности ACT с 710 МЕ/л до 149 МЕ/л, АЛТ с 406 МЕ/л до 98 МЕ/л, повышение активности холинэстеразы с 217 МЕ/л до 283 МЕ/л, увеличение уровня общего белка с 48 г/л до 60 г/л, альбумина с 11 г/л до 18 г/л, снижение общего билирубина с 37 мкмоль/л до 20 мкмоль/л. Кроме того, отмечалось увеличение массы печени с 2,614 г до 9,972 г, масса селезенки с 0,897 г до 2,402 г (в группе контроля масса печени увеличивалась до 6,692 г, селезенки - до 1,573 г). Приведенные показатели свидетельствуют о прогрессивном улучшении печеночной функции и купировании пострезекционной печеночной недостаточности, а также ускорении процессов регенерации.
Таким образом, предлагаемый способ позволил снизить процент послеоперационной летальности эксперементальных животных до 30% при 100%-ной летальности в группе контроля.

Claims (1)

  1. Способ пострезекционной регенерации печени в эксперименте, включающий предварительную ксенотрансплантацию изолированных криоконсервированных гепатоцитов, отличающийся тем, что предварительную ксенотрансплантацию проводят за 48 часов до операции криоконсервированными изолированными гепатоцитами свиньи в концентрации 2·106 в 1 мл питательной среды подкожно в переднюю брюшную стенку, после чего интраоперационно непосредственно после резекции печени выполняют трансплантацию таких же клеток под капсулу селезенки.
RU2002119986/14A 2002-07-22 2002-07-22 Способ пострезекционной регенерации печени в эксперименте RU2232550C2 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2002119986/14A RU2232550C2 (ru) 2002-07-22 2002-07-22 Способ пострезекционной регенерации печени в эксперименте

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2002119986/14A RU2232550C2 (ru) 2002-07-22 2002-07-22 Способ пострезекционной регенерации печени в эксперименте

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2002119986A RU2002119986A (ru) 2004-02-20
RU2232550C2 true RU2232550C2 (ru) 2004-07-20

Family

ID=33412691

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2002119986/14A RU2232550C2 (ru) 2002-07-22 2002-07-22 Способ пострезекционной регенерации печени в эксперименте

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2232550C2 (ru)

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2556609C1 (ru) * 2014-06-10 2015-07-10 Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Курский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации Способ стимуляции регенерации резецированной печени l-норвалином
RU2601160C1 (ru) * 2015-07-09 2016-10-27 государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Омский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ГБОУ ВПО ОмГМУ Минздрава России) Способ резекции печени у мелких лабораторных животных
RU2610361C2 (ru) * 2015-06-03 2017-02-09 Игорь Иванович Бабич Способ экспериментального моделирования аутотрансплантации селезеночной ткани в печень
RU2636194C1 (ru) * 2016-11-23 2017-11-21 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Курский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации Способ стимуляции репаративной регенерации печени после ее резекции
RU2798133C1 (ru) * 2022-09-15 2023-06-15 государственное автономное учреждение здравоохранения "Кузбасская клиническая больница скорой помощи им. М.А.Подгорбунского" (ГАУЗ ККБСМП) Способ профилактики пострезекционной печеночной недостаточности

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
KOBAYASHI N. et al. Transplantation of highly differentiated immortalized human hepatocytes to treat acute liver failure. Transplantation, 2000, №2, р.202-207. *
ЛЕПЕХОВА С.Н. и др. Трансплантация криопреципитированных клеток при острой печеночной недостаточности. Новые направления в клинической медицине. - Ленинск-Кузнецкий, 2000, с.94-95. *

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2556609C1 (ru) * 2014-06-10 2015-07-10 Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Курский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации Способ стимуляции регенерации резецированной печени l-норвалином
RU2610361C2 (ru) * 2015-06-03 2017-02-09 Игорь Иванович Бабич Способ экспериментального моделирования аутотрансплантации селезеночной ткани в печень
RU2601160C1 (ru) * 2015-07-09 2016-10-27 государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Омский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ГБОУ ВПО ОмГМУ Минздрава России) Способ резекции печени у мелких лабораторных животных
RU2636194C1 (ru) * 2016-11-23 2017-11-21 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Курский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации Способ стимуляции репаративной регенерации печени после ее резекции
RU2798133C1 (ru) * 2022-09-15 2023-06-15 государственное автономное учреждение здравоохранения "Кузбасская клиническая больница скорой помощи им. М.А.Подгорбунского" (ГАУЗ ККБСМП) Способ профилактики пострезекционной печеночной недостаточности

Also Published As

Publication number Publication date
RU2002119986A (ru) 2004-02-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Rafael et al. Intramuscular autotransplantation of pancreatic islets in a 7-year-old child: a 2-year follow-up
Baumgartner et al. Effects of intrasplenic injection of hepatocytes, hepatocyte fragments and hepatocyte culture supernatants on D-galactosamine-induced liver failure in rats
Lakey et al. Technical aspects of islet preparation and transplantation
Kriz et al. A novel technique for the transplantation of pancreatic islets within a vascularized device into the greater omentum to achieve insulin independence
Hiller et al. Progressive deterioration of endocrine function after intraportal but not kidney subcapsular rat islet transplantation
RU2232550C2 (ru) Способ пострезекционной регенерации печени в эксперименте
Laconi et al. Principles of hepatocyte repopulation
Singh et al. Omentum facilitates liver regeneration
JP2000508651A (ja) 虚血を原因とする合併症を治療する医薬を製造するためのオスモライトの使用
JPWO2004073701A1 (ja) Lfa−1抑制剤、及びその用途
JP5579270B2 (ja) 膵島と脂肪組織由来幹細胞を利用した膵島移植
EP1915904B1 (en) Method of treating mouse carrying human hepatocytes
WO2014151229A1 (en) Cell therapy: a method and a composition for treating diabetes
Jiroutová et al. Expression of cytoskeletal proteins in hepatic stellate cells isolated from normal and cirrhotic rat liver
Karl et al. Transplantation of insulin-secreting tissues.
Prochorov et al. Long-term normalization of diabetes mellitus after xenotransplantation of fetal pancreatic islet cells into the blood stream without immunosuppresive therapy
Leishman et al. Targeted mapping and utilization of the perihepatic surface for therapeutic beta cell replacement and retrieval in diabetic non-human primates
Itoh et al. Establishment of a prolonged pancreas preservation model for islet isolation research in mice
WO2012014911A1 (ja) 細胞分離用酵素溶液及び細胞分離方法、並びに膵島分離方法
US20060246043A1 (en) Cellular preparation
CN101496815B (zh) 一种治疗肝衰竭的药物及其制备方法
JP3964278B2 (ja) 肝硬変モデル動物およびその作製方法
Sakata et al. Spleen, as an optimal site for islet transplantation 2
Langers et al. Evaluation of limited sampling strategy of ciclosporin-monitoring after liver transplantation using an individualized population pharmacokinetic model.
EP3578180A1 (en) Modulators of seryl-trna synthase and pharmaceutical compositions comprising the same for increasing cell hypoxic tolerance

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20040723