RU2230567C2 - Вакцина против аспергиллёза - Google Patents

Вакцина против аспергиллёза Download PDF

Info

Publication number
RU2230567C2
RU2230567C2 RU2002115193/13A RU2002115193A RU2230567C2 RU 2230567 C2 RU2230567 C2 RU 2230567C2 RU 2002115193/13 A RU2002115193/13 A RU 2002115193/13A RU 2002115193 A RU2002115193 A RU 2002115193A RU 2230567 C2 RU2230567 C2 RU 2230567C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
vaccine
antigen
aspergillosis
strain
aspergillus fumigatus
Prior art date
Application number
RU2002115193/13A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2002115193A (ru
Inventor
В.А. Агольцов (RU)
В.А. Агольцов
Original Assignee
Государственное научное учреждение Саратовская научно-исследовательская ветеринарная станция
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Государственное научное учреждение Саратовская научно-исследовательская ветеринарная станция filed Critical Государственное научное учреждение Саратовская научно-исследовательская ветеринарная станция
Priority to RU2002115193/13A priority Critical patent/RU2230567C2/ru
Publication of RU2002115193A publication Critical patent/RU2002115193A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2230567C2 publication Critical patent/RU2230567C2/ru

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

Изобретение относится к ветеринарной микробиологии. Вакцина содержит растворимый антиген из штамма гриба Aspergillus fumigatus №6 с активностью спор 2,5·108-3,0·108 в 1 см3, индексом агломерации лейкоцитов 6-16% и адъювант при следующем соотношении компонентов (мас.%): адъювант 9-10, антиген из штамма Aspergillus fumigatus -остальное. Вакцина обладает высокой иммуногенностью, безвредна. 2 табл.

Description

Изобретение относится к ветеринарной микробиологии, в частности к микологии, и может быть использовано для получения вакцин для профилактики аспергиллеза сельскохозяйственных животных.
Аспергиллез - инфекционное заболевание сельскохозяйственных животных, преимущественно молодняка, вызываемое патогенными грибами из рода Aspergillus (в основном A. fumigatus), характеризующееся язвенно-некротическими и гранулематозными поражениями пищеварительного тракта (рубца, книжки, сычуга у телят и ягнят и желудка у поросят) и казеозными гранулемами в легких. У взрослых животных отмечают и аборты. Болеют также птицы всех видов и человек.
Известна вакцина против аспергиллеза птиц (см. Yearoum D.R.Aspergillosus: diagnosis treatment and prevention / Lessons of the past-pathways to the fumure. - 1988. - p. 143-151), содержащая антиген из аттенуированных штаммов грибов A. fumigatus и A. flavus.
Однако данная вакцина используется только для профилактики аспергиллеза птиц, а наличие в составе вакцины дополнительного гриба А. flavus, не играющего ведущую роль в этиологии аспергиллеза животных, вызывает иммунный ответ у телят и поросят на антигены и этого гриба. Поэтому использование данной вакцины на животных не имеет перспективы. Кроме того, использование “живой” вакцины приводит к возникновению осложнений и даже заболеваний у вакцинируемых животных с ослабленной иммунной системой, поскольку аттенуированные штаммы имеют склонность к реверсии своих изначальных вирулентных свойств. Использование данной вакцины предусматривает аэрогенный способ иммунизации с использованием струйных аэрозольных генераторов (САГ), не нашедших в животноводстве широкого применения.
Известна также вакцина против аспергиллеза птиц (см. A.Richard T.L., Thurston L.R. et. al. Vaccination studies of aspergillatis in turkeys: subcutanes inoculation with several vaccine preparations Jollowed by aerosol challenge exposure. Am. J. Vet. Res., 1982. - Mai, 43(3). - p.488-492), содержащая антиген из штамма гриба Aspergillus fumigatus, полученный из мицелиальной стадии гриба. Вакцина “живая”, способ введения - подкожный.
Однако профилактическая эффективность такой вакцины при профилактике аспергиллеза птиц, в частности индеек, невелика и составляет всего 50%. Сведения об использовании данной вакцины для профилактики аспергиллеза животных отсутствуют.
Наиболее близкой к заявляемой является вакцина против аспергиллеза (см. патент Японии №10234379, по кл. А 61 К 39/00, опуб. 08.09.98г.), содержащая водорастворимые антигены из штамма гриба Aspergillus fumigatus, представляющие собой цитоплазматическую фракцию гриба, полученные при разрушении клеточных мембран.
Однако данная вакцина предназначена для использования только в медицинской практике. Кроме того, приготовление вакцины из культур гриба без учета его стадии роста может приводить к нежелательным аллергическим реакциям у вакцинированных людей. При этом стоимость такой вакцины высока, поскольку она получена методом генной инженерии.
Изобретение направлено на решение задачи создания эффективной, безопасной и дешевой вакцины против аспергиллеза сельскохозяйственных животных, обладающей высокоиммуногенными и низкоаллергенными свойствами.
Для решения поставленной задачи вакцина против аспергиллеза, содержащая растворимый антиген из штамма гриба Aspergillus fumigatus, представляющий собой цитоплазматическую фракцию гриба, и адьювант содержит согласно изобретению в качестве растворимого антигена - антиген из штамма Aspergillus fumigatus №6 с активностью спор 2,5·108-3,0·108 в 1 см3, индексом агломерации лейкоцитов 6-16% при следующем соотношении компонентов (мас.%):
Адьювант 9-10
Антиген из штамма
Aspergillus fumigatus №6 остальное
В известных авторам источниках патентной и научно-технической литературы не описано эффективной и безопасной вакцины против аспергиллеза сельскохозяйственных животных, содержащей в качестве растворимого антигена антиген из штамма Aspergillus fumigatus №6, представляющий собой цитоплазматическую фракцию гриба с активностью спор 2,5·108-3,0·108 в 1 см3, индексом агломерации лейкоцитов 6-16%. Подобранные экспериментальным путем соотношения компонентов вакцины обеспечивают ее высокоиммуногенные и низкоаллергенные свойства.
Штамм Aspergillus fumigatus №6, предназначенный для изготовления вакцины, характеризуется следующими свойствами.
Морфологические признаки.
Аспергиллы представлены ветвящимися переплетающимися гифами 3-5 мкм ширины с поперечными перегородками. Органы плодоношения имеют фляжкообразные утолщения на концах гиф с цепочками спор по периферии. В окрашенных по Граму мазках аспергиллы представлены в виде грамположительных гиф и их фрагментов.
Культуральные признаки.
На пластинчатом агаре Сабуро через 24-48 часов роста при температуре 37°С образуется беловатый пушистый налет. Через 72-96 часов вырастает массивная колония круглой формы с зеленовато-голубоватым оттенком в центре и белой каймой по периферии. В бульоне Сабуро на 3 сутки культивирования отмечается поверхностный рост культуры бархатистого вида темно-зеленого цвета.
Активность штамма - начало спорообразования - на 2 сутки культивирования. К пятнадцатым суткам культивирования количество спор в питательном бульоне, описанном в патенте РФ №2093569 и содержащем (мас.%): глюкозу 4-5; гидролизат лактальбумина 0,45-0,55; сыворотку крови крупного рогатого скота 9-11; солевой раствор Хенкса - остальное, составляет 2,9·108 спор/см3.
Антигенные свойства. Антигены штамма - липополисахариды и комплекс токсинов: фумагиллин, фумигатин, глиотоксин и треморген.
Для получения антигенов штамма Aspergillus fumigatus №6, представляющих собой цитоплазматическую фракцию гриба, используют метод разрушения клеточных мембран микроорганизмов с помощью ультразвуковой дезинтеграции аппаратами типа У.Ф.А. - 11 (Польша), “Solana” (Brian industries) или малогабаритным лабораторным дезинтегратором (МЛ - 1) производства НПО “Биоприбор” АН СССР.
Для этого из авирулентного штамма Aspergillus fumigatus №6 через определенные промежутки культивирования отбирают пробы. Пробы разводят физиологическим раствором в соотношении 1:5, после чего смесь подвергают воздействию ультразвукового дезинтегратора в течение 2 минут, получая таким образом цитоплазматическую фракцию.
Освобождение от разрушенных и не разрушенных клеток проводят методом фильтрации через мембрану “Владипор” МФА - МА №3.
Отбор иммуногенной стадии антигенов проводят с использованием реакции агломерации лейкоцитов (РАЛ) по способу, описанному в патенте РФ №2176392, в соответствии с которым антигены смешивают с комплементом морской свинки, добавляют стабилизированную кровь кролика, смесь инкубируют, готовят мазки, подсчитывают фиксированное количество лейкоцитов и отмечают число агломерированных клеток белой крови. По величине индекса агломерации оценивают пригодность полученных антигенов для создания вакцины. Экспериментальным путем была подобрана величина индекса агломерации лейкоцитов, при которой антиген считается иммуногенным. Для антигена штамма Aspergillus fumigatus №6 в виде цитоплазматической фракции величина индекса агломерации составляет 6-16%.
К выявленным вышеописанным методом растворимым антигенам с индексом агломерации лейкоцитов 6-16% добавляют для обезвреживания и повышения иммуногенных свойств формалин 0,3-0,4%-ной концентрации. После чего в полученный комплекс добавляют для повышения синтеза антител и замедления всасывания антигенов адьювант (например, 6%-ный раствор гидроокиси алюминия, неполный масляный адьвант Фрейнда, сапонин) в соотношении 10:1.
Антигенный комплекс помещают в термостат и инкубируют при температуре 37°С в течение 21 суток.
Проверку вакцины на стерильность и безвредность проводят общепринятыми методами, а оценку иммуногенных свойств - на лабораторных животных.
Пример 1. Способ изготовления вакцины против аспергиллеза сельскохозяйственных животных заключается в следующем.
1. Выделяют из штамма Aspergillus fumigatus №6 культуру клеток микроорганизма с активностью спор 2,5·108-3,0·108 в 1 см.
Для этого штамм Aspergillus fumigatus №6 засевают в пробирки с агаром Сабуро и культивируют в термостате при 37°С в течение 3 суток. Количество пробирок зависит от объема питательной среды, в которую в дальнейшем будет внесен посевной материал штамма из расчета 1 пробирка на 1 литр среды. Выросшую культуру смывают стерильным физиологическим раствором, высевают в бактериологические бутыли с питательным бульоном с использованием солевого раствора Хенкса по патенту РФ №2093569. Проводят культивирование в термостате при 37°С в течение 15 суток. В полученной культуре определяют концентрацию спор методом подсчета в камере Горяева с использованием фазоконтрастного устройства. Урожай спор обычно колеблется в пределах от 2,5·108 до 3,0·108 спор/см3.
2. Выделяют цитоплазматическую фракцию полученной суспензии клеток, используя метод разрушения клеточных мембран микроорганизмов с помощью ультразвукового дезинтегратора “Solana” (Erian industries). Воздействие дезинтегратором осуществляют в течение 2 минут. Освобождение от разрушенных и не разрушенных клеток проводят методом фильтрации через мембрану “Владипор” МФА - МА №3 при помощи вакуум-насоса. Полученный фильтрат представляет собой комплекс липополисахаридных и токсических антигенов.
3. Производят оценку полученных растворимых антигенов на иммуногенность и выявляют антигены с индексом агломерации лейкоцитов 6-16%.
Для этого фильтрат разводят физиологическим раствором в соотношении 1:5. В пробирки вносят по 0,04 мл полученной смеси и туда же добавляют по 0,02 мл комплемента морской свинки. Смесь выдерживают 30 минут при 37°С, затем вносят по 0,2 мл цитратной крови кролика-донора. При этом контролем служат пробирки с антигеном, изотоническим раствором хлорида натрия вместо комплемента и стабилизированной кровью кролика. Другим контролем служили пробирки с стабилизированной кровью кролика, комплементом морской свинки и изотоническим раствором хлорида натрия вместо антигена. Содержимое пробирок встряхивают и инкубируют при 37°С в течение 45 минут.
Смесь из пробирок наносят на предметные стекла и делают мазки, которые подсушивают и затем фиксируют метиловым спиртом в течение 20 минут. Окраску мазков проводят 0,1% раствором метиленовой сини в течение 5 минут.
Окрашенные мазки просматривают под микроскопом при увеличении ×450. Для анализа выбирают 100 лейкоцитов и выявляют среди них число агломерированных (склеенных не менее 3-х). При наличии склеенных (агломерированных) лейкоцитов от 6 до 16% от общего числа лейкоцитов - 100 антигены считаются наиболее иммуногенными и соответственно пригодными для конструирования вакцины против аспергиллеза.
4. К растворимым антигенам с индексом агломерации лейкоцитов 6-16% добавляют формалин 0,3-0,4%-ной концентрации.
5. В полученный комплекс добавляют адьювант - 6%-ный раствор гидроокиси алюминия в соотношении 10:1.
6. Комплекс антиген - адьювант помещают в термостат и инкубируют при температуре 37°С в течение 21 суток.
Пример 2. Оценка иммуногенных свойств вакцины.
Вакцину вводят кроликам внутримышечно в дозе 2,5 мл двукратно с 8-10-дневным интервалом. Напряженный иммунитет наступает через 14 дней после ревакцинации.
Учитывая, что при аспергиллезе животных поражаются, в основном, органы пищеварительного тракта, так как в естественных условиях возбудитель проникает в организм алиментарным путем, оценку напряженности иммунитета проводят с использованием перорального способа заражения кроликов, вакцинированных по описанной выше схеме. Для этого с помощью интрагастрального зонда вводят в желудок кроликов культуру вирулентного штамма A. fumigatus с концентрацией возбудителя 1,0-106 спор/см3 и объеме вводимой суспензии клеток гриба - 10 см3.
У вакцинированных животных клинические симптомы заболевания отсутствуют. У невакцинированных животных клинические признаки заболевания (отказ от корма, расстройство пищеварения, явления угнетения нервной системы) проявляются через 3-4 суток после заражения. Гибель интактных кроликов наступает через 3-6 суток после появления первых клинических признаков болезни. Результаты испытаний представлены в таблице 1.
Figure 00000001
Для серологической оценки гуморального иммунитета используют реакцию преципитации (РП) и иммуноферментные тест-системы (ИФТС) производства НПО “Аквапаст” (г.Санкт-Петербург). Кровь для исследований берут от иммунизированных кроликов через 14 суток после ревакцинации. Результаты представлены в таблице 2.
Figure 00000002
Вакцина была испытана на крупном рогатом скоте и свиньях. С целью получения противоаспергиллезного иммунитета вакцину вводят дважды с интервалом 8-10 дней внутримышечно телятам в дозе 1 мл на одно введение с 1-2-месячного возраста, а поросятам - в дозе 1 мл с месячного возраста. При однократном способе введения препарат инъецируют в дозе 2 мл.
У иммунизированных животных через 14 и 90 дней после вакцинации брали пробы крови. В полученных сыворотках крови определяли титры антител к аспергиллезным антигенам в РП и ИФТС, которые были не ниже значений 1:16 и 1:3125, соответственно как при однократной, так и при двукратной вакцинации.
Вакцина опробирована в условиях хозяйств, неблагополучных по аспергиллезу телят и поросят. У животных до применения вакцинации отмечали клинические и патологоанатомические признаки заболевания. Лабораторными исследованиями диагноз на аспергиллез был подтвержден выделением возбудителя. После проведения одно- и двукратной иммунизации в указанных выше дозах клинические признаки заболевания у вакцинированных животных не регистрировались.

Claims (1)

  1. Вакцина против аспергиллеза, содержащая растворимый антиген из штамма гриба Aspergillus fumigatus, представляющий собой цитоплазматическую фракцию гриба, и адъювант, отличающаяся тем, что она содержит в качестве растворимого антигена - антиген из штамма Aspergillus fumigatus № 6 с активностью спор 2,5·108-3,0·108 в 1 см3, индексом агломерации лейкоцитов 6-16% при следующем соотношении компонентов, мас.%:
    Адъювант 9-10
    Антиген из штамма Aspergillus
    fumigatus № 6 Остальное
RU2002115193/13A 2002-06-06 2002-06-06 Вакцина против аспергиллёза RU2230567C2 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2002115193/13A RU2230567C2 (ru) 2002-06-06 2002-06-06 Вакцина против аспергиллёза

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2002115193/13A RU2230567C2 (ru) 2002-06-06 2002-06-06 Вакцина против аспергиллёза

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2002115193A RU2002115193A (ru) 2004-04-27
RU2230567C2 true RU2230567C2 (ru) 2004-06-20

Family

ID=32845719

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2002115193/13A RU2230567C2 (ru) 2002-06-06 2002-06-06 Вакцина против аспергиллёза

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2230567C2 (ru)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
YEAROUM D.R., Aspergillosus: diagnosis treatment and prevention / Lessons of the past-pathways to the fumure. - 1988. - p.143-151. RICHARD T.L., THURSTON L.R. et al. Vaccination studies of aspergillatis in turkeys: subcutanes inoculation with several vaccine preparations Jollowed by acrosol challenge exposure. Am. J. Vet. Res., 1982, Mai, 43 (3), p.488-492. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP0749319A1 (en) Immortalized cells and uses therefor
Arko An immunologic model in laboratory animals for the study of Neisseria gonorrhoeae
UA121193C2 (uk) Спосіб одержання імуногенної композиції проти мікоплазми
JP3601602B2 (ja) 無毒性微生物及びその使用:サルモネラ
CN104981252B (zh) 包含支原体抗原的免疫原性组合物
JP3856345B2 (ja) 腸原生動物のワクチン類
JPH03128328A (ja) 白癬ワクチン
RU2230567C2 (ru) Вакцина против аспергиллёза
Marmion Eaton agent—science and scientific acceptance: a historical commentary
RU2311197C1 (ru) Способ получения протективной белоксодержащей фракции бактерий
RU2217163C2 (ru) Вакцина против кандидоза сельскохозяйственных животных
RU2521651C1 (ru) ШТАММ БАКТЕРИЙ, Moraxella bovoculi "СХ-Ч6 N-ДЕП" ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ ДЛЯ ИЗГОТОВЛЕНИЯ ДИАГНОСТИКУМОВ И ВАКЦИН ПРОТИВ ИНФЕКЦИОННОГО КЕРАТОКОНЪЮКТИВИТА КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА
RU2270694C1 (ru) Вакцина против висцеральных микозов сельскохозяйственных животных, вызываемых грибом рода mucor racemosus
WO1983000017A1 (en) Anaplasma antigen
RU2145353C1 (ru) Штамм бактерий moraxella bovis "г97-вниви", используемый для изготовления диагностикумов и вакцин против инфекционного кератоконъюнктивита крупного рогатого скота
RU2026081C1 (ru) Вакцина против бруцеллеза сельскохозяйственных животных
RU2054293C1 (ru) Способ получения вакцины против бруцеллеза
US2998349A (en) Vaccine against avian respiratory infection
RU2108110C1 (ru) Вакцина против бруцеллеза крупного рогатого скота
RU2026343C1 (ru) Вакцина против бруцеллеза сельскохозяйственных животных
RU2130068C1 (ru) Штамм brucella abortus, используемый для изготовления диагностических и профилактических биопрепаратов против бруцеллеза животных
RU2043406C1 (ru) Штамм бактерий listeria monocytogenes, используемый для изготовления листериозных диагностикумов
US6036961A (en) Intestinal protozoal vaccines
RU2043407C1 (ru) Штамм бактерий listeria monocytogenes, используемый для изготовления листериозных диагностикумов
RU2043408C1 (ru) Штамм бактерий listeria monocytogenes, используемый для изготовления дистериозных диагностикумов

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20050607