RU2221868C2 - Gene encoding l-asparaginase in erwinia carotovora and strain escherichia coli vkpm = b-8174 as producer of erwinia caratovora l-asparaginase - Google Patents
Gene encoding l-asparaginase in erwinia carotovora and strain escherichia coli vkpm = b-8174 as producer of erwinia caratovora l-asparaginase Download PDFInfo
- Publication number
- RU2221868C2 RU2221868C2 RU2001123442/13A RU2001123442A RU2221868C2 RU 2221868 C2 RU2221868 C2 RU 2221868C2 RU 2001123442/13 A RU2001123442/13 A RU 2001123442/13A RU 2001123442 A RU2001123442 A RU 2001123442A RU 2221868 C2 RU2221868 C2 RU 2221868C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- lans
- ecar
- asparaginase
- enzyme
- gene
- Prior art date
Links
Images
Abstract
Description
Изобретение относится к биотехнологии и, в частности, к генетической инженерии и представляет собой фрагмент ДНК, кодирующий полную аминокислотную последовательность L-аспарагиназы Erwinia carotovora, и рекомбинантную плазмидную ДНК pBADLANS, обуславливающую синтез L-аспарагиназы Erwinia carotovora (ECAR-LANS) в клетках Escherichia coli. The invention relates to biotechnology and, in particular, to genetic engineering, and is a DNA fragment encoding the complete amino acid sequence of Erwinia carotovora L asparaginase, and pBADLANS recombinant plasmid DNA, which causes the synthesis of Erwinia carotovora L asparaginase (ECAR-LANS) in Escherichia coli cells .
Изобретение может найти применение в микробиологической промышленности и медицине, в частности для создания новых противоопухолевых средств. The invention may find application in the microbiological industry and medicine, in particular for the creation of new antitumor agents.
Бактериальные аспарагиназы - хорошо известные ферментные препараты, которые на протяжении более 30 лет используются в противоопухолевой терапии для лечения острых лимфобластных лейкозов /1/. Эффективность применения аспарагиназ в противоопухолевой терапии ограничена развитием иммунного ответа на вводимые препараты /2/. В этой связи, для проведения необходимых курсов комбинированной химио- и энзимотерапии лейкозов целесообразно располагать набором L-аспарагиназ, обладающих высокой ферментативной активностью, но отличающихся по своим антигенным свойствам. Дополнительные возможности для направленного изменения ферментативных и иммунологических свойств L-аспаргиназ открываются с применением методов генетической инженерии /3/. Этими обстоятельствами определяется интерес к клонированию новых генов бактериальных L-аспарагиназ и их модификации путем сайт-направленного мутагенеза и гетерологичной экспресии. Bacterial asparaginases are well-known enzyme preparations that have been used in antitumor therapy for the treatment of acute lymphoblastic leukemia for more than 30 years / 1 /. The effectiveness of the use of asparaginases in antitumor therapy is limited by the development of the immune response to the administered drugs / 2 /. In this regard, for the necessary courses of combined chemo- and enzyme therapy of leukemia, it is advisable to have a set of L-asparaginases that have high enzymatic activity, but differ in their antigenic properties. Additional opportunities for targeted changes in the enzymatic and immunological properties of L-asparginases are opened using genetic engineering methods / 3 /. These circumstances determine the interest in the cloning of new genes for bacterial L-asparaginases and their modification through site-directed mutagenesis and heterologous expression.
К настоящему времени известны первичные структуры генов бактериальных Erwinia chryzantemi /4/, Escherichia coli /5/, Wolinella succinogenes /6/ и ряда других микроорганизмов, а также описаны рекомбинантные плазмидные ДНК, обеспечивающие синтез L-аспарагиназ в клетках бактерий Escherichia coli /7/ и Erwinia carotovora /8/. Первичная структура гена L-аспарагиназы Erwinia carotovora ранее не была известна, равно как и не описано получение рекомбинантных штаммов, обуславливающих синтез этого фермента. To date, the primary structures of the genes of bacterial Erwinia chryzantemi / 4 /, Escherichia coli / 5 /, Wolinella succinogenes / 6 / and a number of other microorganisms are known, and recombinant plasmid DNAs providing the synthesis of L-asparaginases in Escherichia coli / 7 / bacteria cells have been described. and Erwinia carotovora / 8 /. The primary structure of the Erwinia carotovora L-asparaginase gene was not previously known, nor was the preparation of recombinant strains causing the synthesis of this enzyme described.
Целью предлагаемого изобретения является клонирование гена ECAR-LANS и получение рекомбинантного штамма бактерий, продуцирующего биологически активную ECAR-LANS с высоким выходом. Поставленная цель достигается тем, что осуществлено выделение фрагмента ДНК штамма Erwinia carotovora, кодирующего полную аминокислотную последовательность гена ECAR-LANS, а также тем, что сконструирована рекомбинантная плазмидная ДНК pBADLANS, обеспечивающая синтез ECAR-LANS в клетках кишечной палочки. The aim of the invention is the cloning of the ECAR-LANS gene and the preparation of a recombinant strain of bacteria producing biologically active ECAR-LANS in high yield. This goal is achieved by the fact that the DNA fragment of the Erwinia carotovora strain that encodes the complete amino acid sequence of the ECAR-LANS gene was isolated, as well as by the fact that the recombinant plasmid DNA pBADLANS was designed to ensure the synthesis of ECAR-LANS in E. coli cells.
Сущность модифицированного гена ECAR-LANS состоит в том, что он имеет нуклеотидную последовательность, указанную на фиг.1, которая кодирует синтез белка ECAR-LANS с аминокислотной последовательностью, указанной на той же фигуре. The essence of the modified ECAR-LANS gene is that it has the nucleotide sequence shown in figure 1, which encodes the synthesis of ECAR-LANS protein with the amino acid sequence indicated in the same figure.
Сущность рекомбинантной плазмиды pBADLANS, чья рестрикционная и генетическая карта представлена на фиг.2, состоит в том, что она содержит фрагмент природного гена ECAR-LANS, встроенный в состав экспрессионного дрожжевого вектора pBAD24. Плазмида pBADLANS состоит из следующих элементов:
- фрагмента EcoRI размером 4,5 тпн плазмиды pBAD24 /9/,
- фрагмента EcoRI размером 1,1 тпн, несущего ген ECAR-LANS.The essence of the recombinant plasmid pBADLANS, whose restriction and genetic map is presented in figure 2, is that it contains a fragment of the natural gene ECAR-LANS, integrated into the expression yeast vector pBAD24. Plasmid pBADLANS consists of the following elements:
a 4.5 kb EcoRI fragment of plasmid pBAD24 / 9 /,
- 1.1 kb EcoRI fragment carrying the ECAR-LANS gene.
Молекулярный вес плазмиды pBADLANS составляет 3,5 Мд, что соответствует размеру в 5,6 тпн. The molecular weight of plasmid pBADLANS is 3.5 Md, which corresponds to a size of 5.6 TPN.
Число копий полученной плазмиды составляет 50-100 на клетку кишечной палочки. The number of copies of the obtained plasmid is 50-100 per E. coli cell.
Плазмида pBADLANS реплицируется в клетках E. coli за счет репликона pUC18. Синтез ECAR-LANS в клетках в трансформированных плазмидой pBADLANS штаммах E. coli осуществляется под контролем регулируемого промотора pBAD и терминатора rrnBTIT Escherichia coli и достигается при культивировании трансформированного штамма на обычных селективных средах при добавлении L-арабинозы до концентрации 0,2%. Plasmid pBADLANS is replicated in E. coli cells due to the replicon pUC18. The synthesis of ECAR-LANS in cells in plasmid pBADLANS transformed with E. coli strains is carried out under the control of the regulated pBAD promoter and the rrnBTIT Escherichia coli terminator and is achieved by culturing the transformed strain on ordinary selective media by adding L-arabinose to a concentration of 0.2%.
Плазмида PBADLANS содержит гены:
- модифицированный природный ген ECAR-LANS, который кодирует синтез этого белка в бактериальной клетке. Этот ген, введенный по месту расщепления EcoRI, имеет нуклеотидную последовательность, показанную на фиг.2. Эта последовательность кодирует полноразмерный предшественник ECAR-LANS с собственным сигнальным пептидом для экспорта белка в периплазму и последующего процессинга;
- blа-ген, обеспечивающий синтез b-лактамазы и влияющий на устойчивость штаммов E.coli, несущих плазмиду, к ампициллину;
- аrаС-ген, являющийся регулятором промотора pBAD.Plasmid PBADLANS contains the genes:
- A modified natural ECAR-LANS gene that encodes the synthesis of this protein in a bacterial cell. This gene, introduced at the EcoRI cleavage site, has the nucleotide sequence shown in FIG. This sequence encodes a full-sized precursor ECAR-LANS with its own signal peptide for export of protein into the periplasm and subsequent processing;
- bla-gene, providing synthesis of b-lactamase and affecting the resistance of E. coli strains carrying the plasmid to ampicillin;
- araC gene, which is a regulator of the pBAD promoter.
Штамм-продуцент ECAR-LANS получают трансформацией клеток Escherichia coli BL21(DE3) /10/ [F-, ompT, hsdSB (rв-, mв-), dcm, gal, λ (DE3), AmpR] предложенной рекомбинантной плазмидной ДНК. Выбор штамма обусловлен тем, что он несет, а также тем, что он дефектен по синтезу протеаз, что существенно влияет на выход синтезируемых гетерологичных белков.The producer strain ECAR-LANS is obtained by transformation of Escherichia coli cells BL21 (DE3) / 10 / [F-, ompT, hsdS B (r in- , m in- ), dcm, gal, λ (DE3), Amp R ] of the proposed recombinant plasmid DNA. The choice of strain is due to the fact that it carries, as well as the fact that it is defective in the synthesis of proteases, which significantly affects the yield of synthesized heterologous proteins.
Полученный после селекции трансформированный клон BL21/pBADLANS способен при культивировании продуцировать ECAR-LANS. Уровень синтеза ECAR-LANS в сконструированном штамме составляет мг/л при титре культуры 1х109 кл/мл, что следует из данных определения ECAR-LANS в образцах биомассы штамма-продуцента с помощью специфической ферментативной реакции.The transformed BL21 / pBADLANS clone obtained after selection is capable of producing ECAR-LANS upon cultivation. The level of synthesis of ECAR-LANS in the constructed strain is mg / L with a culture titer of 1 × 10 9 cells / ml, which follows from the data of the determination of ECAR-LANS in biomass samples of the producer strain using a specific enzymatic reaction.
Полученный штамм бактерий, несущий плазмиду PBADLANS, характеризуется следующими общими признаками. The resulting bacterial strain carrying the plasmid PBADLANS is characterized by the following general characteristics.
Морфологические признаки: Клетки имеют продолговатую палосковидную форму, при делении не почкуются. Morphological signs: Cells have an oblong, palatoid shape, do not bud during division.
Культуральные признаки: Клетки хорошо растут на обычно используемых питательных средах. Время генерации около 30 мин в жидкой LB-среде. На 2-2,5% питательном агаре "Difco" образуются круглые, гладкие, желтоватые колонии с ровными краями. При выращивании на жидких LB- и YT-средах образуется интенсивная ровная мутность. Cultural traits: Cells grow well on commonly used culture media. The generation time is about 30 minutes in a liquid LB medium. On 2-2.5% nutrient agar "Difco" round, smooth, yellowish colonies with smooth edges are formed. When grown on liquid LB and YT media, intense even turbidity forms.
Физиолого-биохимические признаки: Оптимальная температура культивирования - от 35 до 37oС, оптимум рН 7,6.Physiological and biochemical characteristics: The optimum cultivation temperature is from 35 to 37 o C, the optimum pH is 7.6.
Источником азота служат органические соединения (в виде триптона, дрожжевого экстракта). The source of nitrogen is organic compounds (in the form of tryptone, yeast extract).
Штамм депонирован во Всероссийской коллекции промышленных микроорганизмов под номером ВКПМ. The strain is deposited in the All-Russian collection of industrial microorganisms under the number VKPM.
Способ клонирования гена ECAR-LANS и получения рекомбинантной плазмиды pBADLANS иллюстрируется следующими примерами. The method for cloning the ECAR-LANS gene and producing the recombinant plasmid pBADLANS is illustrated by the following examples.
Пример 1. Выделение центрального фрагмента гена ECAR-LANS
Для клонирования гена ECAR-LANS использовали стратегию, основанную на методе инвертированной полимеразной цепной реакции" ("инвертированной ПЦР, 1) и схематически приведенную на фиг.3.Example 1. Isolation of the central fragment of the ECAR-LANS gene
For cloning the ECAR-LANS gene, a strategy based on the method of inverted polymerase chain reaction "(" inverted PCR, 1) and schematically shown in figure 3 was used.
На первом этапе проводили сравнение аминокислотных и нуклеотидных последовательностей бактериальных L-аспарагиназ с использованием информации, доступной с помощью Интернет на сайте Сэнгер Центра в Великобритании /11/, а также на сайте Национального Центра Биотехнологической Информации США /12/. С помощью программы CLUSTAL Х /13/ были выявлены наиболее консервативные участки L-аспарагиназ бактериального происхождения (фиг.4) и синтезированы два синтетических олигонуклеотида Mot3 и Mot4, структура и свойства которых приведены в таблице 1. Эти олигонуклеотиды использовали в качестве праймеров в ПЦР с образцами геномной ДНК, выделенными общепринятым способом /14/ из различных штаммов ервиний, находившихся в лабораторной коллекции. ПЦР проводили с помощью Taq-ДНК полимеразы производства Fermentas (Вильнюс) в соответствии с инструкциями фирмы-изготовителя на приборе MJ-Research в следующих условиях: первоначальный прогрев - 2 мин, 94, затем 25 циклов амплификации - 94, 40". 50, 40". 72, 40". Объем реакционной смеси составлял 50 мкл, концентрация праймеров - 0,5 мкм, концентрация ДНК - 20 нг/мкл. В образцах ДНК, выделенных из штаммов ервиний, условно обозначенных 1А, 2А, 204, идентифицировали продукт реакции размером около 300 пн. ПЦР фрагмент, полученный на ДНК штамма 204, использовали в дальнейшей работе. Фрагмент был клонирован в вектор pT-Adv (Clontech, USA) в соответствии с инструкциями фирмы-изготовителя и его нуклеотидная последовательность определена путем автоматического секвенирования на приборе ABI 373 DNA Sequencer с использованием набора Perkin-Elmer "fluorescent dye Cycle sequencing kit". Сравнение полученной нуклеотидной последовательности с последовательностью ДНК гена LANS Erw. chrysanthemi (GenBank Acc# A 14577, ECRY-LANS) показало, что уровень гомологии между выделенным фрагментом и соответствующим центральным фрагментом гена ECRY-LANS составляет 85% (фиг.4). Таким образом, полученный фрагмент с высокой вероятностью соответствует центральной части искомого гена ECAR-LANS. At the first stage, the amino acid and nucleotide sequences of bacterial L-asparaginases were compared using information available on the Internet at the Sanger Center website in the UK / 11 /, as well as at the website of the US National Center for Biotechnological Information / 12 /. Using the CLUSTAL X / 13 / program, the most conserved regions of L-asparaginases of bacterial origin were identified (Fig. 4) and two synthetic oligonucleotides Mot3 and Mot4 were synthesized, the structure and properties of which are shown in Table 1. These oligonucleotides were used as primers in PCR with genomic DNA samples isolated in a conventional manner / 14 / from various strains of nervinia found in the laboratory collection. PCR was performed using Taq-DNA polymerase manufactured by Fermentas (Vilnius) in accordance with the manufacturer's instructions on an MJ-Research instrument under the following conditions: initial heating - 2 min, 94, then 25 amplification cycles - 94, 40 ". 50, 40 " 72, 40 ". The volume of the reaction mixture was 50 μl, the concentration of primers was 0.5 μm, the DNA concentration was 20 ng / μl. In the DNA samples isolated from strains of nervinia, conventionally designated 1A, 2A, 204, a reaction product with a size of about The 300 bp PCR fragment obtained on the DNA of
Пример 2. Определение кодирующей последовательности гена ECAR-LANS
Для выделения и определения первичной структуры фланкирующих участков гена ECAR-LANS, перекрывающих кодирующую аминокислотную последовательность данного белка, использовали стратегию "инвертированной ПЦР". На основании данных секвенирования центральной части гена ECAR-LANS штамма 204 провели дизайн двух праймеров - 204F и 204R, структура и положение которых указаны в таблице 2 и на фиг.5.Example 2. Determination of the coding sequence of the ECAR-LANS gene
To isolate and determine the primary structure of flanking regions of the ECAR-LANS gene that overlap the coding amino acid sequence of this protein, the “inverted PCR” strategy was used. Based on the sequencing data of the central part of the ECAR-LANS gene of
Препараты геномной ДНК штамма 204 в количестве 2-4 мкг гидролизовали различными рестрикционными эндонуклеазами - BamHI, BglII, Bspl201, EcoRI, НаеIII, HindIII, KpnI, PstI, SalI, Sau3A, SpeI, Xba, XhoI по отдельности либо в комбинации двух ферментов, образующих после расщепления ДНК с идентичными "липкими концами", например BamHI+BglII, SalI+XhoI, XbaI+SpeI. После инкубации в течение 10-16 часов при нужной температуре присутствующие в смеси рестрикционные эндонуклеазы инактивировали прогреванием (10-15 мин при 65 градусах), добавляли 1/10 объема раствора, содержащего 100 мМ ДТТ и 10 мМ АТФ, 1-2 единицы Т4 ДНК-лигазы и инкубировали еще 10-12 часов при +4 градусах. Полученные образцы депротеинизировали обработкой смесью фенола с хлороформом (1: 1) и осаждали спиртом по общепринятым методикам /14/. ДНК растворяли в объеме 50 мкл и 10-15 мкл использовали в реакции ПЦР с праймерами 204F/204R, которую проводили с использованием Taq-полимеразы, либо набора Expand Long Template PCR system (Roche Diagnostics GmBh, Mannheim, Германия). Условия ПЦР и характеристики полученных продуктов приведены в таблице 2. Genomic DNA preparations of
Образцы, полученные на матрицах Sau3A, HaeIII, EcoRI, SalI выделяли из агарозного геля с помощью набора "Wizard PCR prep purification system" производства Promega (США) в соответствии с инструкцией фирмы изготовителя и определяли их нуклеотидную последовательность путем автоматического секвенирования на приборе ABI 373. DNA Sequencer. В качестве праймеров использовали синтетические олигонулеотиды 204F и 204R. Полная последовательность была восстановлена путем построения "контига" с использованием программы Oligo /15/. Сравнение полученной последовательности со структурой гена ECRY-LANS показало, что уровень гомологии между данными последовательностями составляет 85% (фиг.6). На фиг.1 приведены нуклеотидная последовательность и выведенная из нее полная аминокислотная последовательность гена ECAR-LANS. Сравнение аминокислотных последовательностей ECAR-LANS и ECRY-LANS (фиг.7) подтвердило высокую степень гомологии между двумя белками. Степень идентичности составила 72%, степень сходства - 87%. Samples obtained on Sau3A, HaeIII, EcoRI, SalI matrices were isolated from agarose gel using the Wizard PCR prep purification system kit manufactured by Promega (USA) in accordance with the manufacturer's instructions and their nucleotide sequence was determined by automatic sequencing on an ABI 373 instrument. DNA Sequencer.
Пример 3. Выделение и клонирование фрагмента нуклеотидной последовательности гена ECAR-LANS, кодирующего полную аминокислотную последовательность этого белка. Example 3. Isolation and cloning of a fragment of the nucleotide sequence of the ECAR-LANS gene encoding the complete amino acid sequence of this protein.
Препарат геномной ДНК штамма 204 использовали в ПЦР реакции с олигонуклеотидами N204 и С204, структура и специфичность которых приведены в таблице 1. Использованные праймеры ограничивают фрагмент гена ECAR-LANS, включающий инициаторный кодон трансляции ATG, расположенный в положении + 1 последовательности, указанной на фиг.6, и терминаторный кодон ТАА, расположенный в положении + 1045 той же последовательности. Таким образом, полноразмерный специфичный продукт реакции амплификации должен включать полную кодирующую последовательность гена ECAR-LANS. Использовали следующие условия амплификации: начальная денатурация - 94, 2 мин, затем 30 циклов амплификации - 94, 40 с, 50, 40 с, 72,1 мин 30 с. Реакционную смесь разделяли электрофорезом в 1% агарозном геле и выявляли продукт реакции - единичный фрагмент размером около 1100 пн. Фрагмент выделяли из геля с помощью набора "Wizard PCR preps Purification System" (Promega, США) и клонировали в вектор pT-AdV (Clontech, США), как описано в примере 1. Из полученных индивидуальных клонов трансформантов выделяли плазмидную ДНК по стандартной методике и анализировали ее путем гидролиза рестриктазой EcoRI и разделения продуктов реакции в 1% агарозном геле. Поскольку сайты рестриктазы EcoRI фланкируют с двух сторон место клонирования ПЦР-фрагмента в векторе pT-AdV, то появление в EcoRI-гидролизатах исследуемых плазмидных ДНК фрагмента размером около 1 тпн свидетельствует о наличии в рекомбинантных клонах нужной вставки. Всего отобрали 12 клонов, "положительных" по этому тесту, и использовали их в дальнейшей работе. Для доказательства того, что полученные клоны содержат фрагмент гена ECAR-LANS плазмидную ДНК использовали в "проверочных ПЦР-реакциях" с использованием комбинаций праймеров, указанных в таблице 3. Наличие продуктов ПЦР-реакции с характерными размерами, указанным в таблице 3, подтвердило, что полученные клоны содержат искомый фрагмент. The genomic DNA preparation of
Пример 4. Конструирование рекомбинантной плазмиды pBADLANS для экспрессии ECAR-LANS в клетках Escherichia coli. Example 4. Construction of a recombinant plasmid pBADLANS for the expression of ECAR-LANS in Escherichia coli cells.
Для доказательства того, что клонированные в п.3. фрагменты ДНК способны направлять синтез функционально-активной ECAR-LANS в клетках кишечной палочки, осуществляли конструирование плазмид, содержащих фрагмент гена ECAR-LANS под контролем промотора PBAD вектора pBAD24. Для получения "вставки" по 2 мкг ДНК каждого из 12 "положительных" клонов, отобранных согласно процедуре, описанной в п. 3., объединяли в одной пробирке и проводили гидролиз суммарной ДНК рестриктазой EcoRI. Выделяли из агарозного геля "суммарный" EcoRI-фрагмент размером около 1 тпн, соответствующий фрагменту гена ECAR-LANS. Для получения "вектора" 2 мкг плазмидной ДНК pBAD24 линеаризовали по сайту EcoRI, обрабатывали фосфатазой кишки теленка для предотвращения замыкания вектора "сам на себя" и выделяли из агарозного геля фрагмент размером 4,5 тпн. 20 нг "вектора" лигировали с 50 нг "фрагмента" с помощью Т4 ДНК лигазы в стандартных условиях и смесью трансформировали компетентные клетки штамма E.coli XL1. Индивидуальные клоны трансформантов анализировали на способность направлять синтез функционально-активной ECAR-LANS. Для этого отдельные колонии (30 штук) выращивали на LB-среде, содержащей 100 мкг/мл ампициллина до ОП600 ~ 1,0 в объеме 5 мл. После этого в культуры вносили L-арабинозу до конечной концентрации 0,2% для индукции промотора pBAD и продолжали инкубацию в течение 2 часов. Аликвоты суспензии клеток выросших индивидуальных культур трансформантов использовали для определения L-аспарагиназной активности с помощью разработанного для этой цели микрометода. В основе данного метода лежит периплазматическая локализация экспрессируемой в клетках E.coli ECAR-LANS, благодаря чему субстрат (аспарагин) свободно проникает в клетку и взаимодействует с ферментом. Суспензии клеток (50 мкл) помещали в ячейку 96-луночной плашки и инкубировали (37oС; 20 мин) с 50 мкл L-аспарагина (30 мг/мл в 0,0125 М боратном буфере, рН 9,5). По окончании инкубации в лунки добавляли 50 мкл реактива Несслера. Активность аспарагиназы оценивается визуально по интенсивности развивающегося окрашивания. Контрольные пробы содержат либо бактериальные клетки, либо раствор L-аспарагина. Таким образом, из 30 проанализированных клонов было выявлено 5 "положительных". Отобранные положительные клоны дополнительно анализировали на наличие вставки с фрагментом гена ECAR-LANS. Для этого выделяли плазмидную ДНК, гидролизовали ее рестриктазой EcoRI и выявляли наличие продуктов гидролиза размером 4.5 тпн ("вектор") и 1.1 тпн ("фрагмент"). Один из отобранных клонов вводили путем трансформации в штамм E.coli BL21(DE3). Для количественного определения уровня экспрессии ECAR-LANS в полученных рекомбинантных штаммах отдельные клоны трансформантов BL21(DE3)/pBADLANS выращивали на LB среде в объеме 50 мл в колбах объемом 500 мл при температуре 37oС А600 = 0,6-0,7 ОЕ. Далее вносили индуктор - L-арабинозу до концентрации 0,2% и проводили инкубацию еще в течение 22 часов, отбирая периодически пробы культуральной жидкости для определения роста культуры и активности фермента в бактериальных клетках /16/. Полученные данные обобщены в таблице 4. Как видно из представленных данных, удельная активность фермента достигает максимума около 55 МЕ/мг белка через 4 часа инкубации, что примерно в 50-60 раз выше, чем у исходного дикого штамма Erw.carotovora 204. Таким образом, в этих экспериментах был достигнут достаточно высокий уровень экспрессии рекомбинантной аспарагиназы Erw.carotovora (8-10%) от тотального белка клетки. Сопоставление полученных данных с известными ранее литературными сведениями о характеристиках рекомбинантных штаммов E.coli, продуцирующих бактериальные аспарагиназы, позволяет утверждать, что уровень продукции рекомбнантной ECAR-LANS в созданном нами штамме примерно в 1,5 раза превышает продуктивность лучших из ранее разработанных образцов /8/. Физическая и генетическая карта полученной плазмиды приведена на фиг.2.To prove that cloned in
Claims (2)
Priority Applications (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2001123442/13A RU2221868C2 (en) | 2001-08-22 | 2001-08-22 | Gene encoding l-asparaginase in erwinia carotovora and strain escherichia coli vkpm = b-8174 as producer of erwinia caratovora l-asparaginase |
PCT/RU2002/000405 WO2003018742A2 (en) | 2001-08-22 | 2002-08-21 | Recombinant l-asparaginase erwinia caratovora |
AU2002332371A AU2002332371A1 (en) | 2001-08-22 | 2002-08-21 | Recombinant l-asparaginase less thanigreater thanerwinia caratovoraless than/igreater than |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2001123442/13A RU2221868C2 (en) | 2001-08-22 | 2001-08-22 | Gene encoding l-asparaginase in erwinia carotovora and strain escherichia coli vkpm = b-8174 as producer of erwinia caratovora l-asparaginase |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2001123442A RU2001123442A (en) | 2003-08-10 |
RU2221868C2 true RU2221868C2 (en) | 2004-01-20 |
Family
ID=32090335
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2001123442/13A RU2221868C2 (en) | 2001-08-22 | 2001-08-22 | Gene encoding l-asparaginase in erwinia carotovora and strain escherichia coli vkpm = b-8174 as producer of erwinia caratovora l-asparaginase |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2221868C2 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2560597C2 (en) * | 2010-07-14 | 2015-08-20 | Нестек С.А. | Asparaginase obtained from basidiomycetes |
-
2001
- 2001-08-22 RU RU2001123442/13A patent/RU2221868C2/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
MINTON et al. Gene, 46, 25-35, 1986. TIWARI et al. Jndian Journal of Biochem. and Biophys, 33, 371-376, 1996. GILBERT et al. J. Gen. Microbiol, 132, 151-160, 1986. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2560597C2 (en) * | 2010-07-14 | 2015-08-20 | Нестек С.А. | Asparaginase obtained from basidiomycetes |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Castle et al. | Cloning and sequencing of an Agrobacterium tumefaciens beta-glucosidase gene involved in modifying a vir-inducing plant signal molecule | |
KR20000075076A (en) | A method for production of foreign protein using transformed microalgae | |
KR100312456B1 (en) | Gene Derived from Pseudomonas fluorescens Which Promotes the Secretion of Foreign Protein in Microorganism | |
CN107287171A (en) | A kind of enzyme and its application | |
CN111117942B (en) | Genetic engineering bacterium for producing lincomycin and construction method and application thereof | |
CN113430181A (en) | Bacterial laccase derived from Asian elephant intestinal metagenome and gene thereof | |
RU2221868C2 (en) | Gene encoding l-asparaginase in erwinia carotovora and strain escherichia coli vkpm = b-8174 as producer of erwinia caratovora l-asparaginase | |
JP2004313074A (en) | NEW alpha-1,2-MANNOSIDASE AND GENE ENCODING THE SAME, AND METHOD FOR PRODUCING alpha-MANNOSYL SUCCHARIDE COMPOUND USING THE ENZYME | |
Tarragona-Fiol et al. | Production of mature bovine pancreatic ribonuclease in Escherichia coli | |
KR102026836B1 (en) | Novel lipase gene Lip-1420 derived from soil metagenome and use thereof | |
WO2008047936A1 (en) | LYTIC ENZYME INHIBITOR, LYSIS INHIBITOR, INHIBITOR OF DEGRADATION OF POLY-γ-GLUTAMIC ACID, AND METHOD FOR PRODUCTION OF POLY-γ-GLUTAMIC ACID | |
JPH02457A (en) | Structural gene of isoamulase | |
CN110878293A (en) | Application of bacillus licheniformis with deletion of yceD gene in production of heterologous protein | |
JPH062050B2 (en) | Microorganism forming constitutive creatine amidinohydrolase and process for producing the same | |
EP1097990B1 (en) | A mutant kanamycin nucleotidyltransferase and a method of screening thermophilic bacteria using the same | |
US5660999A (en) | P0438, a new calcium-regulated promoter | |
CN110066814B (en) | beta-D-glucosidase gene and encoding protein thereof | |
KR100270508B1 (en) | Novel cephalosporin deacetylase gene and preparation method of protein using the same | |
JPH07203976A (en) | Dna fragment coding for enzyme for fragmenting n-acetylheparosan, recombinant enzyme, and method of fragmenting n-acetylheparosan using said enzyme | |
RU2441916C1 (en) | RECOMBINANT PLASMID DNA pACYC-LANS(KM), STRAINS OF Escherichia coli BL21(DE3), TRANSFORMED RECOMBINANT DNA pACYC-LANS(KM) AND METHOD FOR PRODUCING A SUBSTANCE OF THE RECOMBINANT L-ASPARAGINASE FROM Erwinia carotovora | |
RU2136754C1 (en) | Recombinant dna plasmid pgsde1 encoding tick-borne encephalitis virus protein e and strain of escherichia coli - producer of tick-borne encephalitis virus protein e | |
RU2140453C1 (en) | Recombinant plasmid dna puabc 22 encoding modified activator of uricase type plasminogen, nontranslated dna-element - artificial intergene sequence mgp-14 and strain of bacterium escherichia coli - producer of modified activator of uricase type plasminogen | |
CN116949025A (en) | Phenylalanine ammonia lyase mutant derived from candida nodosa and application thereof | |
JP3330670B2 (en) | Alkene monooxygenase, gene encoding the same, transformed microorganism and alkene epoxidation method | |
WO1992002625A1 (en) | Pharmaceutical compositions containing superoxide dismutase from bacillus stearothermophilus and bacillus caldotenax |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20140823 |