RU2179861C2 - Vaccine against streptococcosis in cattle - Google Patents
Vaccine against streptococcosis in cattle Download PDFInfo
- Publication number
- RU2179861C2 RU2179861C2 RU98106650A RU98106650A RU2179861C2 RU 2179861 C2 RU2179861 C2 RU 2179861C2 RU 98106650 A RU98106650 A RU 98106650A RU 98106650 A RU98106650 A RU 98106650A RU 2179861 C2 RU2179861 C2 RU 2179861C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- vaccine
- cattle
- cells
- strain
- streptococcosis
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к ветеринарной микробиологии, а именно к конструированию бактериальных вакцин для профилактики стрептококкоза крупного рогатого скота. The invention relates to veterinary microbiology, namely to the design of bacterial vaccines for the prevention of streptococcosis in cattle.
Стрептококкоз крупного рогатого скота повсеместно регистрируется в скотоводческих хозяйствах и наносит огромный ущерб. У взрослых животных стрептококкоз проявляется абортами, метритами и маститами. Телята болеют с первых дней рождения: пупочный сепсис, поражение суставов, энтерит, пневмония. Летальность молодняка может достигнуть 70%. При этом большие затраты дополняются нарушением технологии выращивания, снижением продуктивности, а также за счет проведения трудоемких и дорогостоящих ветеринарно-санитарных мероприятий при ликвидации этой болезни. Cattle streptococcosis is everywhere registered in livestock farms and causes great damage. In adult animals, streptococcosis is manifested by abortion, metritis and mastitis. Calves are sick from the first days of birth: umbilical sepsis, joint damage, enteritis, pneumonia. Mortality of young animals can reach 70%. At the same time, high costs are supplemented by a violation of growing technology, reduced productivity, as well as through labor-intensive and expensive veterinary and sanitary measures to eliminate this disease.
Известная вакцина против диплококковой инфекции содержит антиген только из патогенных штаммов D. Septicus, относящихся в настоящее время к стрептококкам серологической группы Д и не предохраняет от стрептококков серологических групп В и С, которые часто являются этиологическим фактором заболевания не только телят, но и коров (Биологические и химиотерапевтические ветеринарные препараты, г. Москва, издательство сельскохозяйственной литературы, журналов и плакатов, 1963, с. 221-226). The known vaccine against diplococcal infection contains an antigen only from pathogenic D. Septicus strains, which currently belong to streptococci of serological group D and does not protect against streptococci of serological groups B and C, which are often the etiological factor of the disease not only in calves, but also in cows (Biological and chemotherapeutic veterinary drugs, Moscow, publishing house of agricultural literature, magazines and posters, 1963, pp. 221-226).
Технический результат изобретения заключается в том, что вакцина согласно изобретению предохраняет от стрептококков серологических групп В, С и Д, в результате чего снижается количество заболевших телят, абортов, метритов и маститов у взрослых животных. The technical result of the invention is that the vaccine according to the invention protects against streptococci of serological groups B, C and D, as a result of which the number of diseased calves, abortions, metritis and mastitis in adult animals is reduced.
Сущность изобретения: вакцина дополнительно содержит адъювант из гидроокиси алюминия, а в качестве культурального антигена - инактивированную суспензию клеток патогенных штаммов стрептококков серогрупп В и Д, имеющих степень патогенности не ниже DLМ 10-5 и клеток штамма К серогруппы С в культуральной среде с содержанием каждого штамма по 4•109 кл/мл.The inventive vaccine additionally contains an adjuvant of aluminum hydroxide, and as a culture antigen, an inactivated suspension of cells of pathogenic strains of streptococci of serogroups B and D having a pathogenicity of at least DLM 10 -5 and cells of strain K of serogroup C in a culture medium containing each strain 4 • 10 9 cells / ml.
Для изготовления опытных серий вакцины против стрептококкоза крупного рогатого скота используют ампулы с лиофилизированной культурой стрептококков серогрупп В, Д и С. Содержимое каждой ампулы в отдельности высевают на 3-4 чашки Петри с МПА, содержащим 1% глюкозы, по следующей методике: 0,1-0,2 мл суспензии культуры вносят на поверхность агара и стеклянным шпателем распределяют ее по поверхности агара. Этим же шпателем проводят по поверхности агара последовательно еще 3-х чашек. Посевы на МПА инкубируют 48 часов при температуре 37-37,5oС. Одновременно делают посевы в МПБ, МППБ и на среду Сабуро.For the manufacture of experimental series of vaccines against streptococcosis in cattle, ampoules with a lyophilized culture of streptococcus serogroups B, D and C are used. The contents of each ampoule are individually seeded into 3-4 Petri dishes with MPA containing 1% glucose according to the following procedure: 0.1 -0.2 ml of a suspension of culture is applied to the surface of the agar and distributed with a glass spatula on the surface of the agar. The same spatula is carried out on the surface of the agar sequentially another 3 cups. Crops on MPA are incubated for 48 hours at a temperature of 37-37.5 o C. At the same time, crops are made in MPB, MPPB and on Saburo medium.
По истечении срока инкубации выделяют культуры стрептококков серогрупп В, Д и С, которые далее проверяют на патогенность. At the end of the incubation period, streptococcus cultures of serogroups B, D and C are isolated, which are then checked for pathogenicity.
Для приготовления вакцины используют любые штаммы стрептококков серогрупп В и Д, выделенные из хозяйств, имеющих степень патогенности на белых мышах не ниже DLМ 10-5.For the preparation of the vaccine, any strains of streptococci of serogroups B and D isolated from farms with a degree of pathogenicity in white mice of at least DLM 10 -5 are used .
В качестве стрептококка серогруппы С используют штамм К (патент RU 2097422). As streptococcus serogroup C, strain K is used (patent RU 2097422).
Для приготовления матричной расплодки из флаконов или колб суточную бульонную культуру каждой серии пересевают в подогретый до температуры 37-37,5oС МПБ с глюкозой в 2,5-литровые баллоны из расчета 80-100 мл на 10 литров. Посевы культивируют при температуре 37-37,5oС в течение 18-24 часов. К этому сроку концентрация бактериальной массы должна быть не ниже 4•109 м. к. в 1 мл.To prepare a matrix seedling from vials or flasks, the daily broth culture of each series is subcultured into 2.5-liter cylinders at a temperature of 37-37.5 o С MPB with glucose at a rate of 80-100 ml per 10 liters. Crops are cultivated at a temperature of 37-37.5 o C for 18-24 hours. By this time, the concentration of the bacterial mass should not be lower than 4 • 10 9 m. To. In 1 ml.
Убедившись в чистоте роста стрептококковые биомассы (каждой серогруппы в отдельности) сливают в 20-ти литровые бутыли и добавляют коммерческий формалин. After ascertaining the purity of growth, streptococcal biomass (each serogroup separately) is poured into 20 liter bottles and commercial formalin is added.
Инактивацию культур проводят в течение 48 часов при температуре 16-18oС, подвергая взбалтыванию каждую бутыль до 3-4 раз в течение 60 минут.Inactivation of cultures is carried out for 48 hours at a temperature of 16-18 o C, subjecting to agitation each bottle up to 3-4 times for 60 minutes.
После инактивации отбирают пробы из каждой бутыли в отдельности для контроля полноты инактивации. С этой целью проводят посевы в пробирки с МПА, МПБ, МППБ под вазелиновым маслом. After inactivation, samples are taken from each bottle individually to control the completeness of inactivation. For this purpose, inoculations are carried out in test tubes with MPA, MPB, MPPB under vaseline oil.
По истечении срока инкубации и получения требуемых результатов контроля полноты инактивации в бактериальную массу вносят стерильный адъювант 3% раствор гидроокиси алюминия. After the incubation period has expired and the required results of monitoring the completeness of inactivation have been obtained, a
Адъювант вносят при непрерывном взбалтывании бактериальной массы. The adjuvant is added with continuous agitation of the bacterial mass.
Примечание: 3% раствор гидроокиси алюминия на физиологическом растворе стерилизуют в автоклаве при температуре 120oС в течение 30 минут.Note: a 3% solution of aluminum hydroxide in physiological saline is sterilized in an autoclave at a temperature of 120 o C for 30 minutes.
Через трое суток после внесения адъюванта формируют серию вакцины, рН готовой вакцины должен быть в пределах 7,0-7,2. Three days after the adjuvant is introduced, a series of vaccines is formed, the pH of the finished vaccine should be in the range of 7.0-7.2.
Расфасовку вакцины производят в стерильные флаконы, которые закрывают алюминиевыми колпачками, обеспечивая герметичность укупорки содержимого флакона. The vaccine is packaged in sterile vials, which are sealed with aluminum caps, ensuring tightness of the corking of the contents of the vial.
В полученной вакцине содержатся патогенные штаммы стрептококков серологических групп В и Д, имеющих степень патогенности не ниже DLМ 10-5 и серологической группы С (штамм К) в культуральной среде.The resulting vaccine contains pathogenic streptococcal strains of serological groups B and D having a pathogenicity of at least DLM 10-5 and serological group C (strain K) in the culture medium.
Для определения качества формолгидроокись алюминевой вакцины делают выборку из разных мест серии в количестве 10 флаконов по 200 мл, из которых 5 используют для проведения испытаний, 5 хранят в архиве в течение 12 месяцев. To determine the quality of the aluminum hydroxide formaldehyde, a sample is taken from various places in the series in the amount of 10 200 ml bottles, of which 5 are used for testing, 5 are stored in the archive for 12 months.
Для определения внешнего вида, цвета, наличия посторонней примеси, хлопьев, плесени, не разбивающегося осадка, флаконы с вакциной тщательно встряхивают и просматривают визуально в проходящем свете. Одновременно флаконы проверяют на герметичность укупорки и правильности этикетирования. To determine the appearance, color, presence of impurities, flakes, mold, non-breaking sediment, the vaccine vials are thoroughly shaken and viewed visually in transmitted light. At the same time, the vials are checked for tightness of the corking and the correct labeling.
Концентрацию водородных ионов определяют электрометрическим методом, используя потенциометр марки ЛПУ-01 или другой прибор того же класса точности. Для испытания используют 3 флакона с вакциной. Содержимое каждого флакона испытывают отдельно. Определение рН вакцины проводят по инструкции, приложенной к потенциометру. Вакцина должна иметь рН в пределах 7,0-7,2. The concentration of hydrogen ions is determined by the electrometric method using a potentiometer brand LPU-01 or another device of the same accuracy class. For testing, use 3 bottles of vaccine. The contents of each vial are tested separately. Determination of the pH of the vaccine is carried out according to the instructions attached to the potentiometer. The vaccine should have a pH in the range of 7.0-7.2.
Для проведения испытания на стерильность используют 5 флаконов с вакциной. Посевы проводят из каждого флакона в две пробирки с МПБ, МПА, МППБ и среду Сабуро. Посевы проводят в объеме 0,2-0,3 мл вакцины. Питательные среды с посевами выдерживают в течение 10 дней, при этом не должно быть наличие роста. To carry out a sterility test, 5 vaccine bottles are used. Crops are carried out from each bottle in two test tubes with MPB, MPA, MPPB and Saburo medium. Crops are carried out in a volume of 0.2-0.3 ml of the vaccine. Culture media with crops can withstand for 10 days, while there should be no growth.
Безвредность вакцины проверяют на морских свинках массой 300-350 г и на белых мышах - 16-18 г. Три флакона с вакциной встряхивают и из каждого с соблюдением стерильности отбирают 20-30 мл препарата, переносят в стерильный флакон, общую пробу используют для определения безвредности и иммуногенной активности. The safety of the vaccine is tested on guinea pigs weighing 300-350 g and on white mice - 16-18 g. Three vials of the vaccine are shaken and 20-30 ml of the drug are taken from each, sterilized, transferred to a sterile vial, and the total sample is used to determine the safety and immunogenic activity.
Для определения безвредности содержимое флакона тщательно встряхивают и вводят пяти морским свинкам подкожно в области спины в объеме 2 мл и десяти белым мышам подкожно в области спины в объеме 0,5 мл. Вакцина не вызывает заболевания и гибели морских свинок и белых мышей в течение 10-ти дневного срока наблюдения. To determine the safety, the contents of the vial are thoroughly shaken and five guinea pigs are injected subcutaneously in the back in a volume of 2 ml and ten white mice subcutaneously in the back in a volume of 0.5 ml. The vaccine does not cause disease and death of guinea pigs and white mice during the 10-day observation period.
Для определения иммуногенной активности общую пробу вакцины во флаконе встряхивали и вводили 60-ти белым мышам массой 16-18 г подкожно с наружной стороны бедра в дозе 0,2 мл. Через 14 дней после иммунизации 20 вакцинированных и 20 контрольных белых мышей аналогичной массы заражали подкожно в области бедра подтитрованной пятикратной дозой вакцинных штаммов стрептококков серологических групп В, Д и С в отдельности. Срок наблюдения 10 дней. To determine the immunogenic activity, the total vaccine sample in the vial was shaken and administered to 60 white mice weighing 16-18 g subcutaneously from the outside of the thigh at a dose of 0.2 ml. 14 days after immunization, 20 vaccinated and 20 control white mice of the same mass were infected subcutaneously in the thigh with a five-fold dose of vaccine streptococcus vaccine strains of serological groups B, D and C separately. The observation period is 10 days.
Вакцину считают иммуногенной, если она предохраняет заболевание и гибель не менее 18 иммунизированных мышей, при заболевании всех и гибели не менее 19 белых мышей в контроле при заражении вакцинными штаммами стрептококков серогрупп В, Д и С в отдельности. A vaccine is considered immunogenic if it protects the disease and the death of at least 18 immunized mice, with the disease of all and the death of at least 19 white mice in control when infected with vaccine strains of streptococci of serogroups B, D and C separately.
Полученную нами серию вакцины против стрептококкоза крупного рогатого скота мы испытывали в производственных условиях (см. таблицу). We tested a series of vaccines against streptococcosis in cattle, we tested in a production environment (see table).
Для лечения телят первой группы применяли коммерческие антибиотики. Животным второй и третьей группы вводили биопрепараты внутримышечно согласно наставлению по применению вакцины. В таблице представлены результаты испытаний эффективности разработанной вакцины для профилактики стрептококкоза крупного рогатого скота по сравнению с известной вакциной и медикаментозным лечением. Commercial antibiotics were used to treat calves of the first group. The animals of the second and third groups were administered biologics intramuscularly according to the instructions for the use of the vaccine. The table shows the results of tests of the effectiveness of the developed vaccines for the prevention of streptococcosis in cattle compared with the known vaccine and drug treatment.
Разработанная вакцина на основе предложенных штаммов стрептококков серологических групп В, Д и С, обеспечивает изготовление препарата, применение которого позволяет предохранить наибольший процент животных от гибели и заболевания стрептококкозом крупного рогатого скота по сравнению с известной вакциной и медикаментозным лечением. The developed vaccine based on the proposed streptococcal strains of serological groups B, D and C provides the preparation of the preparation, the use of which allows to protect the largest percentage of animals from the death and disease of cattle streptococcosis compared with the known vaccine and drug treatment.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU98106650A RU2179861C2 (en) | 1998-04-09 | 1998-04-09 | Vaccine against streptococcosis in cattle |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU98106650A RU2179861C2 (en) | 1998-04-09 | 1998-04-09 | Vaccine against streptococcosis in cattle |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU98106650A RU98106650A (en) | 2000-02-20 |
RU2179861C2 true RU2179861C2 (en) | 2002-02-27 |
Family
ID=20204543
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU98106650A RU2179861C2 (en) | 1998-04-09 | 1998-04-09 | Vaccine against streptococcosis in cattle |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2179861C2 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2761379C1 (en) * | 2021-04-23 | 2021-12-07 | Общество с ограниченной ответственностью "Ветбиохим" | Polyvalent inactivated vaccine against swine streptococcosis, method for its production and use |
-
1998
- 1998-04-09 RU RU98106650A patent/RU2179861C2/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Биологические и химиотерапевтические ветеринарные препараты. - М.: Изд-во сельскохозяйственной литературы, журналов и плакатов, 1963, с.221-226. Ветеринарные препараты: Справочник/Под ред. Д.Ф.ОСИДЗЕ - М.: Колос, 1981, с.286-290. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2761379C1 (en) * | 2021-04-23 | 2021-12-07 | Общество с ограниченной ответственностью "Ветбиохим" | Polyvalent inactivated vaccine against swine streptococcosis, method for its production and use |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Zhylkaidar et al. | Prevention of bovine mastitis through vaccination | |
Rahman et al. | Development of experimental oil based inactivated HS vaccine from field Isolates of Pasteurella multocida from Cattle in Bangladesh | |
RU2179861C2 (en) | Vaccine against streptococcosis in cattle | |
PILEHCHIAN et al. | Large scale production of Blackleg vaccine by fermenter and enriched culture medium in Iran | |
US4229434A (en) | Vaccine for prophylaxis of trichophytosis in horse and method of preparing same | |
RU2432174C1 (en) | Method for producing colibacillosis anatoxin | |
US4002736A (en) | Porcine bacterin | |
RU2099082C1 (en) | Vaccine for control over streptococcosis in nutria | |
RU2099084C1 (en) | Vaccine for control over streptococcosis and pasteurellosis in nutria | |
RU2348425C2 (en) | Production method of combined streptococcosis and pseudomonosis vaccine for polar foxes and foxes | |
RU2099081C1 (en) | Method of preparing the vaccine for streptococcosis prophylaxis in nutria | |
RU2099083C1 (en) | Method of preparing the vaccine for control over streptococcosis and pasteurellosis in nutria | |
RU2425148C2 (en) | Brucella abortus uf-1 strain for preparing biological preparations for diagnostics and specific prevention of brucellosis in farm animals | |
CN103721254A (en) | Method for preparing swine A-type clostridium perfringens aluminum hydroxide inactivated vaccine | |
Pulotov et al. | Development of polyvalent toxoid Clostridium perfringens against anaerobic enterotoxaemia in young cattle and small ruminants | |
RU2268933C1 (en) | STRAIN Haemophilus parasuis SK-1 AS PATHOGEN OF SWINE HEMOPHILEOUS POLYSEROSITIS FOR PREPARING DIAGNOSTIC AND VACCINE PREPARATIONS | |
RU2086259C1 (en) | Mixed inactivated vaccine for control of chlamydiosis, campylobacteriosis, salmonellosis and leptospirosis in sheep and goats | |
RU2761379C1 (en) | Polyvalent inactivated vaccine against swine streptococcosis, method for its production and use | |
Spiridonov et al. | Clinical trial results of an associated vaccine against cattle clostridiosis and escherichiosis | |
RU2269570C2 (en) | Haemophilus parasuis strain as porcine haemophylic polyserositis agent for production of diagnostic and vaccine preparations | |
RU2723711C1 (en) | Method for preparing vaccine with aluminium hydroxide against mastitis of cows streptococcal aetiology | |
RU2722668C1 (en) | Method of producing inactivated vaccine against pulmonary diseases of young animals of productive animals | |
RU2026081C1 (en) | Brucellosis vaccine for farm animals | |
RU2162340C1 (en) | Method of preparing vaccine against salmonellosis in pigs | |
RU2018322C1 (en) | Vaccine against swine erysipelas |