RU2144369C1 - Live cultural antimeasles vaccine - Google Patents

Live cultural antimeasles vaccine Download PDF

Info

Publication number
RU2144369C1
RU2144369C1 RU98123188A RU98123188A RU2144369C1 RU 2144369 C1 RU2144369 C1 RU 2144369C1 RU 98123188 A RU98123188 A RU 98123188A RU 98123188 A RU98123188 A RU 98123188A RU 2144369 C1 RU2144369 C1 RU 2144369C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
vaccine
live
mixture
solution
tcd
Prior art date
Application number
RU98123188A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
В.Д. Трифонов
С.В. Юденко
А.В. Белов
Original Assignee
Трифонов Валерий Дмитриевич
Юденко Сергей Викторович
Белов Андрей Викторович
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Трифонов Валерий Дмитриевич, Юденко Сергей Викторович, Белов Андрей Викторович filed Critical Трифонов Валерий Дмитриевич
Priority to RU98123188A priority Critical patent/RU2144369C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2144369C1 publication Critical patent/RU2144369C1/en

Links

Abstract

FIELD: medicine, pediatrics. SUBSTANCE: invention relates to development of live cultural antimeasles vaccine for immunization of children. Live cultural antimeasles vaccine containing dried vaccine suspension and stabilizing additions has additionally antibiotic (kanamycin monosulfate or gentamycin sulfate) and aminopeptide and stabilizing addition that consists of the mixture of 50-% sorbitol solution and 25-% gelatin solution or the mixture of stabilizing agent LS-18 and 10-% gelatin solution. Vaccine has also viral suspension of the strain (L-16) or (L16-M) or (M-5) at biological activity 2.51 TCD50/0.5 ml, not less. EFFECT: stable vaccine at storage, lasting immunity in vaccination. 2 cl, 2 ex

Description

Изобретение относится к медицине и касается создания живой культуральной вакцины для иммунизации детей. The invention relates to medicine and relates to the creation of a live culture vaccine for immunizing children.

Известна живая культуральная коревая вакцина, содержащая сухую вирусную суспензию штамма Ленинград-16 (Л-16) с биологической активностью вируса 103.5ТЦД50 и стабилизатор сорбит и желатозу (см. Руководство по вакцинному и сывороточному делу. М., "Медицина", 1978 г., стр. 220-223).A live culture measles vaccine is known containing a dry viral suspension of a strain of Leningrad-16 (L-16) with biological activity of the virus 10 3.5 TCD 50 and a stabilizer sorbitol and gelatose (see the Guide to vaccine and serum. M., "Medicine", 1978 g., pp. 220-223).

Технической задачей настоящего изобретения является расширение ассортимента коревых вакцин, создание вакцины стабильной при хранении и обеспечивающей при вакцинации длительный иммунитет. The technical task of the present invention is to expand the range of measles vaccines, the creation of a vaccine stable during storage and provides long-term immunity during vaccination.

Для решения поставленной задачи получена вакцина коревая культуральная живая сухая (Vaccinum morbillorum culturarum vivum sicum), предназначенная для активной профилактики кори. To solve this problem, a live dry culture vaccine (Vaccinum morbillorum culturarum vivum sicum), intended for the active prevention of measles, was obtained.

Вакцина представляет собой вирус кори штамм Ленинград-16 (Л-16) или (Л-16М) или Москва-5 (М-5), полученный в культуре клеток эмбрионов Японских перепелок или перепелов линии "Фараон". The vaccine is a measles virus strain Leningrad-16 (L-16) or (L-16M) or Moscow-5 (M-5) obtained in the culture of cells of embryos of Japanese quail or quail line "Pharaoh".

Коревая вакцина содержит сухую вирусную суспензию указанных штаммов с биологической активностью не ниже 2.51gТЦД50/0.5 мл; стабилизатор, представляющий собой смесь 50% раствора сорбита и 25% раствора желатозы или смесь стабилизатора ЛС-18 и 10% раствора желатина; антибиотик канамицина моносульфат или гентамицина сульфат до 20 ед. в дозе вакцины и аминопептид.The measles vaccine contains a dry viral suspension of these strains with a biological activity of at least 2.51 g TCD 50 /0.5 ml; a stabilizer, which is a mixture of 50% sorbitol solution and 25% gelatine solution or a mixture of stabilizer LS-18 and 10% gelatin solution; antibiotic kanamycin monosulfate or gentamicin sulfate up to 20 units. at the dose of the vaccine and aminopeptide.

Препарат не содержит интактных клеток. Вакцина представляет собой однородную массу желто-розового или розового цвета. Готовая вакцина в сухом виде запаяна в ампулах или флаконах по одной, две или пять доз в объеме 0.1±0.012 мл или 0.2±0.02 мл и содержит не менее 1000 ТЦД. The preparation does not contain intact cells. The vaccine is a homogeneous mass of yellow-pink or pink. The finished vaccine in dry form is sealed in ampoules or vials in one, two or five doses in a volume of 0.1 ± 0.012 ml or 0.2 ± 0.02 ml and contains at least 1000 TCD.

Непосредственно перед употреблением вакцину растворяют в растворе 0.5±0.1 мл на одну прививочную дозу. Immediately before use, the vaccine is dissolved in a solution of 0.5 ± 0.1 ml per vaccination dose.

Растворенная вакцина представляет собой прозрачную или слегка опалесцирующую, розовую или бесцветную жидкость, не содержащую взвешенных частиц. The dissolved vaccine is a clear or slightly opalescent, pink or colorless liquid that does not contain suspended particles.

Пример 1. Example 1

Для производства культуральной, живой, сухой, коревой вакцины используют вакцинные штаммы вируса кори Л-16, М-5 и Л-16 М. For the production of culture, live, dry, measles vaccine, vaccine strains of measles virus L-16, M-5 and L-16 M are used.

Вакцинный штамм вируса кори Л-16 выведен в 1960 г. в Ленинградском НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Пастера из крови больного корью ребенка на первичной культуре клеток почек новорожденных морских свинок (ПМС), в которой прошел 21 пассаж, после чего дополнительно аттенуирован в культуре клеток эмбрионов японских перепелок (2 пассажа). The vaccine strain of measles virus L-16 was launched in 1960 at the Leningrad Research Institute of Epidemiology and Microbiology named after Pasteur from the blood of a child with measles in a primary culture of kidney cells of newborn guinea pigs (PMS), in which 21 passages passed, after which it was additionally attenuated in the culture of embryo cells of Japanese quail (2 passages).

Вакцинный штамм вируса кори М-5 получен в лаборатории коревых и паротитных вакцин Московского НИИ вирусных препаратов в 1978 году из штамма Л-16 путем троекратного клонирования клеток эмбрионов японских перепелов при температуре 35oC.The vaccine strain of measles virus M-5 was obtained in the laboratory of measles and mumps vaccines of the Moscow Research Institute of Viral Preparations in 1978 from strain L-16 by triple cloning cells of Japanese quail embryos at a temperature of 35 o C.

Из вакцинного штамма готовят сухие производственные штаммы, которые хранят в лиофилизированном состоянии при температуре минус 50±10oC, он имеет активность не ниже 31gТЦД50/0.5 мл.Dry production strains are prepared from the vaccine strain, which are stored in a lyophilized state at a temperature of minus 50 ± 10 o C, it has an activity of at least 31 g TCD 50 /0.5 ml.

Из производственного штамма получают промежуточный пассаж со специфической активностью не ниже 105.0ТЦД50/0.5 мл.An intermediate passage with a specific activity of not less than 10 5.0 TCD 50 /0.5 ml is obtained from the production strain.

Промежуточный пассаж используют для приготовления серий посевного вируса, специфическая активность которого не ниже 105.0ТЦД50/0.5 мл и который хранят в замороженном состоянии при температуре 55±5oC в течение 18 месяцев.An intermediate passage is used to prepare a series of seed virus, the specific activity of which is not lower than 10 5.0 TCD 50 /0.5 ml and which is stored in a frozen state at a temperature of 55 ± 5 o C for 18 months.

Пассивирование производственных штаммов и получение из них посевных вирусов проводят с таким расчетом, чтобы число дополнительных пассажей не превышало 10. Passivation of production strains and obtaining seed viruses from them is carried out in such a way that the number of additional passages does not exceed 10.

Для приготовления промежуточного пассажа 2-3 суточный монослой культуры клеток эмбрионов перепелов заражают вакцинным штаммом вируса кори Л-16. Множественность заражения от 0.001 до 0.02 ТЦД50 на клетку.To prepare the intermediate passage, a 2-3-day monolayer of quail embryo cell culture is infected with a vaccine strain of measles virus L-16. The multiplicity of infection from 0.001 to 0.02 TCD 50 per cell.

С клеточного монослоя с выраженной специфической дегенерацией собирают вирусные сборы, которые после добавления в них 10% сыворотки крупного рогатого скота (СКРС) контролируют на стерильность. Viral collections are collected from a cell monolayer with severe specific degeneration, which, after adding 10% of cattle serum (SCRS) to them, is monitored for sterility.

До окончания контролей индивидуальные вирусные сборы хранят при температуре 4±2oC. Стерильные вирусные сборы с титром не ниже 3.51gТЦД50/0.5 мл объединяют в одну емкость, разливают по флаконам и хранят при температуре (-55±5)oC.Until the end of the control, individual viral collections are stored at a temperature of 4 ± 2 o C. Sterile viral collections with a titer of at least 3.51 g TCD 50 /0.5 ml are combined in one container, poured into vials and stored at a temperature of (-55 ± 5) o C.

Полученный промежуточный пассаж, каждый в отдельности, контролируют на стерильность и специфическую активность. The resulting intermediate passage, each individually, is monitored for sterility and specific activity.

Из 9-10 дневных эмбрионов перепелов готовят культуру клеток и двух-трех суточный монослой заражают промежуточным пассажем. Множественность заражения от 0.001 до 0.01 ТЦД50 на клетку.From a 9-10 day old quail embryo, a cell culture is prepared and a two to three day old monolayer is infected with an intermediate passage. The multiplicity of infection from 0.001 to 0.01 TCD 50 per cell.

Клеточную взвесь с вирусом разливают по емкостям и инкубируют при температуре (35±1)oC в роллерной установке со скоростью вращения 28±1 об/час. Через 3 суток роллерные бутыли с хорошо сформированным монослоем подвергают 6-и кратному отмыванию раствором Хенкса pH 7.4±2.The cell suspension with the virus is poured into containers and incubated at a temperature of (35 ± 1) o C in a roller unit with a rotation speed of 28 ± 1 rpm. After 3 days, roller bottles with a well-formed monolayer are subjected to 6-fold washing with Hanks solution pH 7.4 ± 2.

Из роллерных бутылей удаляют питательную среду, вносят от 120 до 150 мл солевого раствора, помещают в роллерную установку и вращают не менее 3 минут со скоростью вращения 10±1 об/мин. Операцию отмывания монослоя повторяют 6 раз. The nutrient medium is removed from the roller bottles, 120 to 150 ml of saline solution is introduced, placed in the roller unit and rotated for at least 3 minutes at a rotation speed of 10 ± 1 rpm. The operation of washing the monolayer is repeated 6 times.

После отмывания монослоя в роллерные бутыли вносят до 300 мл поддерживающей среды 199 с добавлением канамицина моносульфата или гентамицина сульфата до 100 ед./мл, 5% аминопептида и продолжают инкубировать в роллере при (35±1)oC.After washing the monolayer, up to 300 ml of support medium 199 is added to the roller bottles with the addition of kanamycin monosulfate or gentamicin sulfate up to 100 units / ml, 5% aminopeptide and continue to incubate in the roller at (35 ± 1) o C.

Начиная с 4-6-и суток от момента культивирования инфицированных клеток и с появлением и нарастанием специфической дегенерации каждые сутки удаляют всю среду и заменяют ее новой. Вируссодержащую жидкость сливают во флаконы различной емкости (индивидуальные вирусные сборы). В роллерные бутыли добавляют свежую среду по объему, равному объему слитой вируссодержащей жидкости. Сбор вируссодержащей жидкости и замену ее свежей поддерживающей средой проводят многократно до тех пор, пока на поверхности стенок сохраняется не менее 50% клеток. Starting from 4-6 days after the cultivation of infected cells and with the appearance and increase of specific degeneration, the whole medium is removed every day and replaced with a new one. Virus-containing liquid is poured into vials of various capacities (individual viral fees). Fresh medium is added to the roll bottles in a volume equal to the volume of the drained virus-containing liquid. The collection of virus-containing fluid and its replacement with fresh support medium is carried out repeatedly until at least 50% of the cells are stored on the surface of the walls.

Индивидуальные вирусные сборы хранят при (4±2)oC.Individual viral collections are stored at (4 ± 2) o C.

Все стерильные индивидуальные вирусные сборы во флаконах со специфической активностью не ниже 4.51gТЦД50/0.5 мл после осаждения клеток (от 5 до 14 суток) помещают в слой сухого льда для замораживания осадка.All sterile individual viral collections in vials with a specific activity of at least 4.51 g TCD 50 /0.5 ml after cell precipitation (from 5 to 14 days) are placed in a layer of dry ice to freeze the sediment.

Надосадочную жидкость из флаконов объединяют в бутыль. К объединенному вирусному сбору добавляют 25%-ную желатозу и 50% сорбит в соотношениях: на 700 мл вирусного сбора (17.5% сухой вирусной суспензии) добавляют 200 мл желатозы и 100 мл сорбита. Объем вирусной жидкости в 5,0 л бутыли должен быть 2,5 л с содержанием аминопептида 2.5 - 3.5%. The supernatant from the vials is combined into a bottle. 25% gelatose and 50% sorbitol are added to the combined viral collection in proportions: 200 ml of gelatose and 100 ml of sorbitol are added per 700 ml of viral collection (17.5% dry virus suspension). The volume of viral fluid in a 5.0 L bottle should be 2.5 L with an aminopeptide content of 2.5 - 3.5%.

В бутыль с вирусной жидкостью сначала в условиях вакуума вносят желатозу, а затем сорбит. При использовании стабилизатора ЛС-18 и желатина 10%-ного к объединенному вирусному сбору добавляют ЛС-18 и желатин 10% в соотношениях: на 500 мл вирусного сбора (16.5% сухой вирусной суспензии) добавляют 400 мл ЛС-18 и 100 мл желатина 10%-ного. In a bottle with viral liquid, gelatose is first introduced under vacuum and then sorbitol. When using the stabilizer LS-18 and gelatin 10%, LS-18 and gelatin 10% are added to the combined viral collection in ratios: for 500 ml of viral collection (16.5% dry virus suspension), 400 ml of LS-18 and 100 ml of gelatin are added 10 % of.

Жидкий полуфабрикат хранят до 25 суток при (4±2)oC и не более 1 года при температуре (40±2)oC.The liquid semi-finished product is stored up to 25 days at (4 ± 2) o C and not more than 1 year at a temperature of (40 ± 2) o C.

Жидкий полуфабрикат, хранящийся при (-55±5)oC, за 24-48 часов до разлива оттаивают при температуре (4±2)oC и тщательно перемешивают с жидким полуфабрикатом, хранящимся при (4±2)oC.The liquid semi-finished product stored at (-55 ± 5) o C is thawed at a temperature of (4 ± 2) o C 24-48 hours before the spill and mixed thoroughly with the liquid semi-finished product stored at (4 ± 2) o C.

Жидкий полуфабрикат вакцины разливают по (0,1±0,02) мл или (0,2±0,02) мл в стерильные ампулы или флаконы. The liquid prefabricated vaccine is poured into (0.1 ± 0.02) ml or (0.2 ± 0.02) ml into sterile ampoules or vials.

Полуфабрикат вакцины, содержащий сорбит и желатозу, разливают при температуре (4±2)oC, а со стабилизатором ЛС-18 при комнатной температуре.The semi-finished vaccine containing sorbitol and gelatose is poured at a temperature of (4 ± 2) o C, and with a stabilizer LS-18 at room temperature.

Ампулы с вакциной хранят при (6±2)oC не более 5 часов.Vaccine ampoules are stored at (6 ± 2) o C for no more than 5 hours.

Далее осуществляют замораживание разлитой в ампулы вакцины при температуре -30oC и сублимационное высушивание.Next, freezing of the vaccine poured into ampoules is carried out at a temperature of -30 ° C. and freeze-drying.

При этом серии вакцины со стабилизатором сорбит-желатоза по окончании процесса замораживания камеру вакуумируют до остаточного давления не выше 10 Па (75 мкм рт. ст.). Высушивание производится без циркуляции теплоносителя. Длительность 2 часа. In this case, a series of vaccines with a stabilizer of sorbitol-gelatose at the end of the freezing process, the chamber is vacuumized to a residual pressure of not higher than 10 Pa (75 μm Hg). Drying is carried out without circulation of the heat carrier. Duration 2 hours.

Температура препарата на стадии сублимации не должна превышать -40oC. Общая длительность процесса сушки 40-44 часа.The temperature of the drug at the sublimation stage should not exceed -40 o C. The total duration of the drying process is 40-44 hours.

Сушка предварительно замороженной вакцины со стабилизатором ЛС-18 проводится при давлении не выше 10 Па (75 мкм рт. ст.) без циркуляции теплоносителя, при температуре препарата на стадии сублимации не выше -40oC, длительность процесса сушки 46-54 часа.Drying of the pre-frozen vaccine with the stabilizer LS-18 is carried out at a pressure of no higher than 10 Pa (75 μm Hg) without circulation of the coolant, at a preparation temperature of sublimation not higher than -40 o C, the drying process takes 46-54 hours.

За счет присутствия стабилизатора ЛС-18 вакцина приобретает термостабильность и имеет биологическую активность не ниже 2.5 ед. ТЦД50/0.5 мл.Due to the presence of the stabilizer LS-18, the vaccine acquires thermal stability and has a biological activity of at least 2.5 units. TCD 50 /0.5 ml.

Готовую вакцину хранят при (6±2)oC и относительной влажности не более 60%.The finished vaccine is stored at (6 ± 2) o C and relative humidity not more than 60%.

Срок годности 15 месяцев с момента лиофилизации. Shelf life 15 months from the date of lyophilization.

Пример 2. Example 2

Испытание вакцины
Специфическая активность вакцин определялась следующим образом. Титр вируса определяли по цитопатическому действию вируса на чувствительность клетки (культуры клеток Vero). Все полевые испытания вакцины проводились в рамках плановой вакцинопрофилактики на базе детских поликлиник. В работах принимали участие 4 детских поликлиники Центрального округа г.Москвы, детские поликлиники Московской области (г. г. Ивантеевка, Одинцово, Жуковский, Реутов), а также детские поликлиники Могилевской, Гомельской, Николаевской и Мурманской областей. За время испытания 448 детей было вакцинировано отечественной живой вакциной из штамма Лениград-16 и 220 детей живыми коревыми вакцинами зарубежного производства.
Vaccine test
The specific activity of the vaccines was determined as follows. Virus titer was determined by the cytopathic effect of the virus on cell sensitivity (Vero cell culture). All field trials of the vaccine were carried out as part of the planned vaccine prophylaxis on the basis of children's clinics. Four children's clinics of the Central District of Moscow, children's clinics of the Moscow Region (Ivanteevka, Odintsovo, Zhukovsky, Reutov), as well as children's clinics of the Mogilev, Gomel, Nikolaev and Murmansk regions took part in the work. During the test, 448 children were vaccinated with a domestic live vaccine from the strain Leningrad-16 and 220 children with live measles vaccines of foreign production.

Вакцинации подлежали дети в возрасте от 12 месяцев до 4 лет, не имеющие противопоказаний, не привитые против кори ранее и не болевшие корью. Требования к отбору детей для включения их в состав опытных и контрольной групп (возраст и состояние здоровья) были идентичны, т.е. по количеству, возрасту и анамнезу детей все группы были репрезентативны. Все группы детей были сформированы методом случайной выборки. Children from 12 months to 4 years of age who had no contraindications, who had not been vaccinated against measles before, and who had no measles, were vaccinated. The requirements for the selection of children for inclusion in the experimental and control groups (age and state of health) were identical, i.e. by the number, age, and history of children, all groups were representative. All groups of children were formed by random sampling.

В каждой поликлинике все дети перед вакцинацией тщательно осматривались педиатрами. Заключение осмотра регистрировалось в индивидуальной карте ребенка. Ежедневное клиническое наблюдение за привитыми осуществлялось в течение 21 дня с момента вакцинации специально проинструктированным персоналом поликлиник (врачами-педиатрами и патронажными медицинскими сестрами). Кроме того, после специальной беседы родители получали дневник наблюдения за отклонения в состоянии здоровья ребенка. После окончания сроков наблюдения дневники дополнялись и исправлялись работниками поликлиник и, за личной подписью лечащего врача, централизованно переправлялись в ГИСК им. Тарасовича. Анализ реактогенности живых коревых вакцин проводился по учету сведений. Во время проведения всех клинических испытаний эпидобстановка среди наблюдаемых контингентов была благополучной. In each clinic, all children were thoroughly examined by pediatricians before vaccination. The inspection report was recorded on the child’s individual card. Daily clinical monitoring of vaccinated was carried out for 21 days from the moment of vaccination by specially instructed personnel of polyclinics (pediatricians and patronage nurses). In addition, after a special conversation, parents received a diary for monitoring deviations in the child’s health status. After the end of the observation period, the diaries were supplemented and corrected by the employees of the clinics and, with the personal signature of the attending physician, were centrally transported to the GISK named after Tarasovich. The reactogenicity analysis of live measles vaccines was carried out to record information. During all clinical trials, the epidemiological situation among the observed contingents was favorable.

Оценка реактогенных свойств
При учете реактогенности в дневниках наблюдения регистрировались как местные, так и общие реакции в течение 21 дня после вакцинации. Под местными реакциями подразумевается гиперемия, уплотнение, боль, жжение в месте введения. При регистрации общих реакций учитывались температура, сыпь, катаральные явления, расстройства желудочно-кишечного тракта и др. Температурные реакции условно разделялись на три группы: слабые (37.1 - 37.5), средние (37.6 -38.5) и сильные (38.6 и выше). Наивысшая температура за весь период наблюдения определяла, к какой группе интенсивности ее следует отнести.
Assessment of reactogenic properties
When reactogenicity was taken into account in the observation diaries, both local and general reactions were recorded within 21 days after vaccination. Local reactions mean hyperemia, tightening, pain, burning at the injection site. When recording general reactions, temperature, rash, catarrhal phenomena, disorders of the gastrointestinal tract, etc. were taken into account. Temperature reactions were conditionally divided into three groups: weak (37.1 - 37.5), medium (37.6 -38.5) and strong (38.6 and higher). The highest temperature for the entire observation period determined to which intensity group it should be assigned.

Особое внимание, с учетом сроков развития вакцинального процесса, было уделено реакциям в период между 4-5 и 18 днями от момента прививки. Поэтому, по срокам возникновения общие реакции условно были разделены нами на "ранние" (с 1 по 4 сутки), "истинные" (с 5 по 18 сутки) и "запоздалые" (начиная с 19 дня после вакцинации). Particular attention, given the timing of the development of the vaccination process, was given to reactions between 4-5 and 18 days from the moment of vaccination. Therefore, according to the timing of occurrence, the general reactions were conditionally divided by us into “early” (from 1 to 4 days), “true” (from 5 to 18 days) and “belated” (starting from 19 days after vaccination).

В ходе исследований регистрировались все отклонения в состоянии здоровья детей в течение 21 дня после вакцинации, однако, при анализе связь реакций с вакцинацией оценивалась индивидуально. During the studies, all deviations in the children's health status were recorded within 21 days after vaccination, however, in the analysis, the relationship of reactions with vaccination was evaluated individually.

В результате проведенных исследований выявлено, что живая коревая вакцина новой посевной серии характеризуется 100% сероконверсией привитых и, практически, ареактогенностью, вызывая легкие вакцинальные реакции лишь у 4.2% привитых. As a result of the studies, it was revealed that the live measles vaccine of the new seed series is characterized by 100% seroconversion of the vaccinated and, practically, areactogenicity, causing mild vaccine reactions in only 4.2% of the vaccinated.

Claims (1)

1. Живая культуральная коревая вакцина, содержащая сухую вирусную суспензию и стабилизирующие добавки, отличающаяся тем, что вакцина дополнительно содержит антибиотик и аминопептид, а в качестве стабилизирующей добавки смесь 50% раствора сорбита и 25% раствора желатозы или смесь стабилизатора ЛС-18 и 10% раствора желатина, при этом содержит вирусную суспензию штамма Ленинград-16 (Л-16), или (Л16-М), или Москва-5 (М-5) с биологической активностью не ниже 2,5 lg ТЦД50/0,5 мл при следующем соотношении компонентов, об.%:
Сухая вирусная суспензия штамма (Л-16), или (Л16-М), или (М-5) с биологической активностью не ниже 2,5 lg ТЦД50/0,5 мл - 16,5 - 17,5
Антибиотик - До 20 ед. в дозе вакцины
Аминопептид - 2,5 - 3,5
Смесь 50% раствора сорбита и 25% раствора желатозы - 30
или
Смесь стабилизатора ЛС-18 и 10% раствора желатина - 50
2. Живая культуральная коревая вакцина по п.1, отличающаяся тем, что в качестве антибиотика она содержит канамицина моносульфат или гентамицина сульфат.
1. Live culture measles vaccine containing a dry viral suspension and stabilizing additives, characterized in that the vaccine additionally contains an antibiotic and aminopeptide, and as a stabilizing additive a mixture of 50% sorbitol solution and 25% gelatose solution or a mixture of stabilizer LS-18 and 10% gelatin solution, while containing a viral suspension of the strain Leningrad-16 (L-16), or (L16-M), or Moscow-5 (M-5) with a biological activity of at least 2.5 lg TCD 50 / 0.5 ml in the following ratio of components, vol.%:
Dry viral suspension of strain (L-16), or (L16-M), or (M-5) with a biological activity of at least 2.5 lg TCD 50 / 0.5 ml - 16.5 - 17.5
Antibiotic - Up to 20 units. in a dose of a vaccine
Aminopeptide - 2.5 - 3.5
A mixture of 50% sorbitol solution and 25% gelatose solution - 30
or
A mixture of stabilizer LS-18 and 10% gelatin solution - 50
2. Live culture measles vaccine according to claim 1, characterized in that it contains kanamycin monosulfate or gentamicin sulfate as an antibiotic.
RU98123188A 1998-12-28 1998-12-28 Live cultural antimeasles vaccine RU2144369C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU98123188A RU2144369C1 (en) 1998-12-28 1998-12-28 Live cultural antimeasles vaccine

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU98123188A RU2144369C1 (en) 1998-12-28 1998-12-28 Live cultural antimeasles vaccine

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2144369C1 true RU2144369C1 (en) 2000-01-20

Family

ID=20213736

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU98123188A RU2144369C1 (en) 1998-12-28 1998-12-28 Live cultural antimeasles vaccine

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2144369C1 (en)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EA002387B1 (en) * 2000-03-10 2002-04-25 Унитарное Государственное "Московское Предприятие По Производству Бактерийных Препаратов" Method of production of a combined mumps measles vaccine
RU2717769C1 (en) * 2019-02-21 2020-03-25 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток им. И.И. Мечникова" (ФГБНУ НИИВС им. И.И. Мечникова) Method of producing four-component live culture vaccine against measles, varicella, mumps, and rubella

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Руководство по вакцинному и сывороточному делу./Под ред. П.Н.Бургасова. - М.: Медицина, 1978, с.220-223. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EA002387B1 (en) * 2000-03-10 2002-04-25 Унитарное Государственное "Московское Предприятие По Производству Бактерийных Препаратов" Method of production of a combined mumps measles vaccine
RU2717769C1 (en) * 2019-02-21 2020-03-25 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток им. И.И. Мечникова" (ФГБНУ НИИВС им. И.И. Мечникова) Method of producing four-component live culture vaccine against measles, varicella, mumps, and rubella

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR100702086B1 (en) Lyophilized attenuated hepatitis A live vaccine and stabilizer thereof
Bern et al. Rotavirus diarrhea in Bangladeshi children: correlation of disease severity with serotypes
EP1129723B1 (en) Combined vaccine against both hav and measle virus and method of producing it
Vershilova The use of live vaccine for vaccination of human beings against brucellosis in the USSR
CN105797164B (en) A kind of heat resisting protective, preparation method and application for TGEV, PEDV bigeminy freeze-dried live vaccine
RU2144369C1 (en) Live cultural antimeasles vaccine
RU2378014C2 (en) Emulsion inactivated associated vaccine against cattle paragrippe-3, rednose and coronoviral infection
CN114904006B (en) Foot-and-mouth disease antigen thermal stability protective agent and preparation method and application thereof
CN111110839B (en) Goose astrovirus bivalent inactivated vaccine for preventing gosling gout
CN1911445B (en) Grippe primary generation susliks kidney cell multivalent vaccine and its preparation method
US3470294A (en) Vaccine for immunization of dogs and foxes against distemper,hepatitis contagiosa and leptospirosis and process for preparing it
CN102114243B (en) Method for preparing polyvalent vaccine of primary hamster kidney cells of flu
CA2913662C (en) Methods for preparing inactivated rotavirus
US3143474A (en) Preparation of duck-embryo modified infectious canine hepatitis virus vaccine
RU2806164C1 (en) Associated vaccine against canine distemper, parvovirus and coronavirus enteritis, adenovirus infection of dogs
US3318775A (en) Production of viral antigens with n-acetyl-ethyleneimine
US3098011A (en) Process of producing a vaccine against distemper
CN104388394A (en) Mink parvovirus attenuated vaccine strain and application of mink parvovirus attenuated vaccine strain in preparation of mink parvovirus attenuated vaccine
RU2817255C1 (en) Associated vaccine against distemper, parvovirus and coronavirus enteritis, adenovirus infection and canine rabies
RU2204599C1 (en) Foot-and-mouth virus strain "primorsky-2000" 1734 of type o1 for diagnostic and vaccine preparation preparing
CN108703952A (en) A kind of swine fever takes orally weak malicious freeze dried vaccine freeze drying protectant and application
JPS5879929A (en) Mixed vaccine of japanese encephalitis and swine parvo
RU2182495C1 (en) Viral vaccine against classic hog cholera
Khan et al. Development of a Robust Freeze-drying Process for Long-Term Stability of rVSV-SARS-CoV-2 Vaccine
CA1120856A (en) Living virus culture vaccine against canine distemper and method of preparing same