RU2059969C1 - Способ получения сорбентов - Google Patents
Способ получения сорбентов Download PDFInfo
- Publication number
- RU2059969C1 RU2059969C1 RU93009346A RU93009346A RU2059969C1 RU 2059969 C1 RU2059969 C1 RU 2059969C1 RU 93009346 A RU93009346 A RU 93009346A RU 93009346 A RU93009346 A RU 93009346A RU 2059969 C1 RU2059969 C1 RU 2059969C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- sorbents
- matrix
- washed
- temperature
- water
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Solid-Sorbent Or Filter-Aiding Compositions (AREA)
Abstract
Использование: в области хроматографии для разделения биологически активных веществ (БАВ). Сущность: способ получения сорбентов, содержащих фосфогруппы, включает обработку гидроксилсодержащих матриц, предварительно обработанных эпихлоргидрином в пристуствии щелочи, (рН больше 12). Процесс фосфорилирования проводят POC1 3 или Na2HPO4 при температуре не более 50oС. Полученные сорбенты сочетают высокие гидродинамические характеристики с более эффективными эксплуатационными характеристиками. 2 з. п. ф-лы, 3 табл.
Description
Изобретение относится к хроматографии, точнее к способам получения сорбентов, содержащих фосфогруппы, для разделения биологически активных веществ (БАВ).
Фосфокатиониты достаточно широко и эффективно используются для выделения и очистки различных БАВ [1] Недостатком их являются, как правило, низкие гидродинамические характеристики.
Прототипом изобретения является способ получения фосфоцеллюлозы [2] заключающийся в диспергировании сухого порошка целлюлозы в сухом пиридине с последующей обработкой POCl3 при температуре 115оС.
Недостатками способа являются:
получение сорбента в виде рыхлого порошка;
проведение реакции фосфорилирования в кипящем пиридине, что приводит к деструкции матрицы и изменению ее состава за счет обогащения более низкомолекулярными фракциями;
обработанная таким образом матрица содержит фосфогруппы различной ионной силы и различной химической породы, т.к. образуются не только моно-, но и ди- и трифосфоэфирные группы, что снижает хроматографическое качество сорбента.
получение сорбента в виде рыхлого порошка;
проведение реакции фосфорилирования в кипящем пиридине, что приводит к деструкции матрицы и изменению ее состава за счет обогащения более низкомолекулярными фракциями;
обработанная таким образом матрица содержит фосфогруппы различной ионной силы и различной химической породы, т.к. образуются не только моно-, но и ди- и трифосфоэфирные группы, что снижает хроматографическое качество сорбента.
Применение сорбента в виде порошка или частиц неправильной формы затрудняет процесс хроматографии, т.к. происходит засорение фильтров колонок и усадка слоя сорбента, что требует их частой перенабивки, кроме того практически исключает возможность масштабирования процессов хроматографии.
Задачей изобретения является упрощение технологии фосфорилирования с одновременным получением сорбентов в виде сферических гранул с целью улучшения их механических и гидродинамических характеристик.
Поставленная задача решается введением предварительной обработки матрицы, полученной в виде сферических гранул, эпихлоргидрином в присутствии щелочи с рН > 12 с последующей обработкой фосфорилирующими агентами при температуре не более 50оС.
Технический уровень заявляемого изобретения обуславливается тем, что авторами было установлено, что в случае обработки гидроксилсодержащей матрицы эпихлоргидрином происходит стабилизация структуры матрицы и активация ее реакционной способности. Это позволяет проводить реакцию фосфорилирования в мягких условиях, получать гранулы сорбента в его метрических (микросферических) размерах при сохранении его эксплуатационных характеристик.
Сочетание процессов гранулирования с поперечной сшивкой эпихлоргидрином и эпоксидирование с последующим фосфорилированием таких полимеров в литературе не описано.
В результате при использовании предварительно гранулированных матриц (3, 4) предлагаемый способ получения сферических фосфосорбентов для хроматографии биопрепаратов позволяет создать хроматографический материал повышенного качества: сорбенты не только имеют форму сферических гранул, но и:
содержат только химически эквивалентные фосфомоноэфирные группы что исключает дополнительные неспецифические взаимодействия матриц сорбентов с биополимерами, снижающие эффективность хроматографии;
имеют крупные поры, что позволяет проводить одновременно гельфильтрацию биополимеров;
обладают повышенными гидродинамическими характеристиками;
позволяют проводить процессы очистки биопрепаратов с высокой эффективностью.
содержат только химически эквивалентные фосфомоноэфирные группы что исключает дополнительные неспецифические взаимодействия матриц сорбентов с биополимерами, снижающие эффективность хроматографии;
имеют крупные поры, что позволяет проводить одновременно гельфильтрацию биополимеров;
обладают повышенными гидродинамическими характеристиками;
позволяют проводить процессы очистки биопрепаратов с высокой эффективностью.
П р и м е р 1 (прототип). 100 г сухой целлюлозы суспендировали в 1 л сухого пиридина, вводили 170,0 мл (285 г) РОCl3, кипятили в течение трех часов (t 115oC). Смесь отфильтровывали, и осадок трижды промывали пиридином. Осадок гидролизовали колотым льдом, фильтровали, промывали водой, 4 раза 1% -ным NaOH, отмывали водой остатки щелочи, 4 раза промывали 5%-ным HCl с последующей обработкой водой до нейтральной рН, сушили. Процент моно-, ди- и трифосфатов 70, 20 и 10 соответственно.
П р и м е р 2.
2.1. 100 мл сферически гранулированной целлюлозы, полученной по способу [3] поместили в колбу с мешалкой, добавили смесь 65 мл 0,5 М раствора NaOH с 3 мл эпихлоргидрина и перемешивали в течение 1 ч при t 60oC. Затем температуру повысили до 95оС и перемешивали еще в течение 1 ч. Охладили до комнатной температуры и промыли гранулы до нейтральной реакции водой на фильтре. Предел эксклюзии сорбента по декстранам (метод ГПХ) составляет 4•107 д. Плотность по D-глюкозным звеньям от 0,2 до 1,0 мг•экв/мл, размер гранул 80-120 мкм.
2.2. 100 мл гранул целлюлозы (по 2.1) поместили в емкость с фильтром, промыли последовательно двумя объемами ацетона (или спирта), затем хлороформа (или толуола) и ввели 9,5 мл POCl3, затем добавили 10 мл сухого пиридина или триэтиламина. Смесь оставили на 1 ч при температуре 25-30о. Матрицу промыли последовательно хлороформом, диоксаном, затем 50%-ным водным пиридином, 1%-ным водным NaOH и водой до нейтральной рН.
П р и м е р 3. 1 л нейтрального геля (Биохром-Н), полученного по способу [4] и подготовленного по примеру 2.1, суспендировали в 0,5 л воды при t 45-50oC, при перемешивании вводили 0,1-0,15 л эпихлоргидрина и 0,1 л 10-15 М водного раствора NaOH в течение 2-3 ч, фильтровали, матрицу промывали водой до нейтрального рН.
1 л подготовленной матрицы выдерживали в 1 л 0,5-1,0N раствора Na2HPO4 в течение 6-8 ч при температуре 40-50оС. Результаты сведены в табл. 1.
П р и м е р 4. 100 мл нейтрального геля (Биохром-Н 1000), полученного по способу [4] и подготовленного по способу 2.1, поместили в стеклянную емкость с пористым фильтром, промыли последовательно двумя объемами ацетона (или этанола), толуола (или хлороформа) и ввели 9,5 мл POCl3, затем 10 мл безводного пиридина или триэтиламина. Смесь оставили на 1 ч при температуре 25-30оС. Далее матрицу промыли последовательно по два объема соответственно хлороформом, диоксаном, 50% -ным водным раствором пиридина, 1%-ным водным раствором NaOH и водой до нейтрального рН. Свойства сорбента аналогичны представленным в табл. 2.
П р и м е р 5. 100 мл сферически гранулированной целлюлозы, полученной по способу [3] и подготовленной для модификации по примеру 2.1, суспендировали в 50 мл воды при температуре 50-60о и при перемешивании вводили 10-15 мл эпихлоргидрина и 10 мл 15 мл водного раствора NaOH в течение 2-3 ч. Матрицу промывали на фильтре водой до нейтрального рН, выдерживали в 100 мл 0,5-1,0 н. раствора Na2HPO4 в течение 6-8 ч при температуре 40-50оС, промывали водой до нейтральной рН.
Свойства опытов приведены в табл. 2.
Размер гранул в ходе реакции не изменился. Полученные таким образом сорбенты содержат только монофосфоэфирные группы.
Физико-химические характеристики сорбентов в сравнении с прототипом и аналогом (фосфокатинит Р-11 фирмы Ватман, Англия) сопоставляли, пропуская через колонку 10 х 100 мм 0,1 н. раствор NaCl при давлении, равном 1 (в см водяного столба (см высоты колонки).
Эффективность сорбентов испытывали в процессе очистки лактадегидрогеназы (аналог Р-11) и инсулина.
П р и м е р 6. На колонку 10 х 100 мм наносили раствор смеси белков, содержащий лактодегидрогеназу 2 мл в 0,03 н. Na-фосфатном буфере (рН 7,5) при скорости потока 20 мл/ч. Колонку промывали тем же буфером, v 15 мл, элюировали белки в линейном градиенте 0-0,5 н. NaCl в том же буфере. Фракции по 4,4 мл собирали и определяли содержание белка и активность фермента. Результаты сведены в табл. 3.
П р и м е р 7. Хроматографическая очистка реакционной смеси после ферментативного превращения проинсулина и инсулин на колонке, заполненной сорбентом фосфо-Биохром.
Реакционную смесь объемом 2,3 л, содержащую 3 л фосфо-Биохром и уравновешенную исходным буфером, 50 мМ ацетат натрия рН 4,0 и 3,5 М мочевины. После нанесения смеси колонку промывали 7,2 л исходного буфера (2 ч) со скоростью протока 3,6 л/ч. При этом С-пептид, не задерживаясь на колонке, выходит первым, за ним элюируются примеси, которые в стартовых условиях не сорбируются на колонке. Далее элюирует белок в режиме линейного градиента от 0 до 100%-ного буфера 50 мМ ацетат натрия рН 4,0, 5 М мочевина и 0,5 М NaCl против исходного буфера в течение 7 ч (общий объем элюента 25 л). По окончании элюции колонка уравновешивается 9 л исходного буфера для следующего хроматографического цикла. Фракции, содержащие С-пептид без примесей, собирают в объеме 2,5-12 г. Фракции, содержащие инсулин без примесей, собирают в объеме 7,5 л 14 г. Чистота получаемого таким способом С-пептида составляет 85-95% Чистота получаемого таким образом инсулина составляет 95%
На сорбенте SP-Тойоперл 550 С фирмы Toson Corp, Япония, позволяющем выделять инсулин с чистотой не менее 95% белок С в чистом виде за одну хроматографическую стадию получить не удалось, т.к. вместе с белком С выходят все примеси, в результате фракции, содержащие С-белок, сильно загрязнены.
На сорбенте SP-Тойоперл 550 С фирмы Toson Corp, Япония, позволяющем выделять инсулин с чистотой не менее 95% белок С в чистом виде за одну хроматографическую стадию получить не удалось, т.к. вместе с белком С выходят все примеси, в результате фракции, содержащие С-белок, сильно загрязнены.
Как показали проведенные эксперименты, использование изобретения позволяет получать сорбенты, сочетающие высокие гидродинамические характеристики с более эффективными эксплуатационными характеристиками.
Claims (3)
1. СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ СОРБЕНТОВ, содержащих фосфогруппы, включающий обработку гидроксилсодержащих матриц фосфорилирующим агентом, отличающийся тем, что матрицы предварительно обрабатывают эпихлоргидрином в присутствии щелочи (pH > 12), а процесс фосфолирования производят при температуре не более 50oС.
2. Способ по п. 1, отличающийся тем, что фосфорилирование проводят обработкой матрицы POCl3.
3. Способ по п. 1, отличающийся тем, что фосфорилирование проводят обработкой матрицы Na2HPO4.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU93009346A RU2059969C1 (ru) | 1993-02-17 | 1993-02-17 | Способ получения сорбентов |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU93009346A RU2059969C1 (ru) | 1993-02-17 | 1993-02-17 | Способ получения сорбентов |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2059969C1 true RU2059969C1 (ru) | 1996-05-10 |
RU93009346A RU93009346A (ru) | 1996-10-27 |
Family
ID=20137521
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU93009346A RU2059969C1 (ru) | 1993-02-17 | 1993-02-17 | Способ получения сорбентов |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2059969C1 (ru) |
-
1993
- 1993-02-17 RU RU93009346A patent/RU2059969C1/ru active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
1. А.А.Лурье. Хроматографические материалы. М.: Химия, 1978, с.160-165. 2. J. Red etal, Jnd. Eng. Chem, 1949, т.41, с.2828. 3. S. Kuga, I. Chromatogr. 1980, т.195, с.221-230. Авторское свидетельство СССР N 138902, кл. G 01N 30/48, 1961. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US8496123B2 (en) | Process for cross-linking cellulose ester membranes | |
US3959251A (en) | Stabilized agar product and method for its stabilization | |
Porath | [2] General methods and coupling procedures | |
US5092992A (en) | Polyethyleneimine matrixes for affinity chromatography | |
JPH032560A (ja) | 新規なクロマトグラフィー用固定担体 | |
DK1577324T3 (en) | Three-branched sugar chain asparagine derivatives, sugar chain asparagines, sugar chains and processes for their preparation | |
DE69007006T2 (de) | Ligand enthaltendes Medium für chromatographische Trennung, Verfahren zur dessen Herstellung und dessen Verwendung zur Isolierung von synthetischen oder natürlichen Molekülen von einer Fluidmischung. | |
JPS6356501A (ja) | アフイニテイークロマトグラフイー用カラム充填剤及びその製造方法 | |
RU2059969C1 (ru) | Способ получения сорбентов | |
EP0434354B1 (en) | Separation material for blood coagulation factor, preparation and use thereof | |
EP0136087B1 (en) | Starch hydrolysis | |
KR100457546B1 (ko) | 폴리프럭토오스 또는 그 유도체를 이용한 미소구 및 그제조방법 | |
EP0320849B1 (en) | Apatite packing for liquid chromatography and process for producing the same | |
CN100387320C (zh) | 一种螯合型中空纤维亲和膜色谱及其制造方法和用途 | |
US3095410A (en) | Deae substituted balsa wood ion-exchange material | |
EP0186347A2 (en) | Method for producing high-active biologically efficient compounds immobilized on a carrier | |
US4072667A (en) | Process for recovering microbial cellular proteins | |
JPS596883A (ja) | 人尿カリクレインの濃縮精製法 | |
EP0320998A1 (en) | Apatite packing for liquid chromatography and process for producing the same | |
JP2739232B2 (ja) | 生物学的親和性を有するセルロースゲルの使用方法 | |
SU1478112A1 (ru) | Способ получени сорбента дл разделени биологических жидкостей жидкостной хроматографией | |
Pirotta | Ion exchangers in pharmacy, medicine and biochemistry | |
RU2076870C1 (ru) | Диэтиламиноэтиловый эфир целлюлозы в качестве сорбента для выделения и очистки ферментных препаратов и способ очистки стрептокиназы | |
Cherkasov | Affinity chromatography of enzymes | |
RU2081122C1 (ru) | Способ выделения и очистки инсулина или его биотехнологических предшественников |