RU2001101C1 - "Способ получени основы микробиологических сред и питательна среда "Автофизат" дл культивировани микроорганизмов" - Google Patents

"Способ получени основы микробиологических сред и питательна среда "Автофизат" дл культивировани микроорганизмов"

Info

Publication number
RU2001101C1
RU2001101C1 SU5031795A RU2001101C1 RU 2001101 C1 RU2001101 C1 RU 2001101C1 SU 5031795 A SU5031795 A SU 5031795A RU 2001101 C1 RU2001101 C1 RU 2001101C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
hydrolyzate
internal organs
base
commercial fish
autophysate
Prior art date
Application number
Other languages
English (en)
Inventor
Инна Георгиевна Ермишина
Тать на Федоровна Власова
Владимир Николаевич Савин
Original Assignee
Ermishina Inna G
Vlasova Tatyana F
Savin Vladimir N
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ermishina Inna G, Vlasova Tatyana F, Savin Vladimir N filed Critical Ermishina Inna G
Priority to SU5031795 priority Critical patent/RU2001101C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2001101C1 publication Critical patent/RU2001101C1/ru

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

аммоний цитрат2,0
магний сернокислый0,2
марганец сернокислый0,05
твин-801 мл
воду дистиллированную до 1 л. Питательна  среда Рогозы многокомпонентна , включает нестандартизованное сырье (м сной экстракт, дрожжевой экстракт) и в услови х биотехнологического производства нерентабельна.
Дл  выращивани  лактобацилл известно также использование питательной среды МРС-1, содержащей те же компоненты, что и предыдуща  ПС, но вместо м сного экстракта в ней использован гидролизат молока .
Однако данна  ПС также многокомпонентна , содержит трудноподдающиес  стандартизации пищевые ингредиенты (дрожжевой экстракт, гидролизат молока), что существенно снижает воспроизводимость результатов.
Недостатком ПС  вл етс  сложна  технологи  приготовлени , использование дорогосто щих компонентов, дефицитных пищевых продуктов. В услови х биотехнологического производства, где требуетс  большое количество ПС дл  получени  микробной биомассы, нерентабельна.
Наиболее близкой к предложенной среде  вл етс  ПС Блаурокка дл  выращивани  бифидобактерий, содержаща  в г/л: натрий хлористый5,0
пептон10,0
лактозу10.0
L-цистин0,1
агар0,75
печеночный отвардо 1 л.
Вышеприведенна  ПС также  вл етс  многокомпонентной, содержит печеночный отвар, источник сырь  которого нестандар- тизоваи и  вл етс  дефицитным пищевым продуктом. Технологи  приготовлени  ПС сложна, о услови х биотехнологического производства така  среда нерентабельна.
Сущность объекта изобретени  заключаетс  также в том, что питательна  среда Авгофизат в качестве питательной основы содержит гидролизат внутренних органов промысловых рыб, а также лактозу, натрий хлористый и агар при следующем соотношении компонентов, г/л дистиллированной воды
гилролизат внутренний органов промысловых рыб с конечной концентрацией аминового азо- тг,100-140мг%20,0-25.0
лактоза9,5-10,0
нтгрий хлористый4,5-5.0
агар065-070
Дл  увеличени  размеров колоний предпочтительно использовать модифицированную питательную среду Автофизат, котора  дополнительно содержит пептон в количестве 14,5-15,0 г/л дистиллированной воды. Питательна  среда Автофизат имеет следующие физико-химические характеристики:
-концентраци  водород0ных ионов (рН)6,8-7,0
-аминный азот100-140 мг%
-влажность (сухой
формы)не более 7%
П р и м е р 1. Внутренние органы про5 мысловых рыб (карпа, сома, осетровых и др.) промывают проточной водой, измельчают , развод т дистиллированной водой в массовом соотношении 1:1,5 и провод т гидролиз при 40°С в щелочной зоне рН 7,8
0 в присутствии хлороформа (1,5 об.%) при перемешивании в течение 2 сут. В первые сутки гидролиза строго поддерживают рН реакционной смеси. Гидролиз прекращают прогреванием при 90°С в течение 8 мин, при
5 этом коагулируют и выпадают п осадок не- разгидролизованные белки. Оставшиес  в надосадочной жидкости высокомолекул рные соединени  осаждают в изоэлектриче- ской точке белка, надосадочную жидкость
0 фильтруют, затем подвергают высушиванию в потоке гор чего воздуха в аппаратах, используемых дл  получени  сухого молока. Режим высушивани  (на входе 150-160°С и на выходе 90-95°С) обеспечивает получение
5 сухого препарата с остатг ,,;ой влажностью не более 5,0%.
Повышение темпера уры процесса гидролиза до 42°С, уоеличе, . : зоны рН до 8,0 и времени процесса до 2,5 сут не вли ют на
0 конечные физико-химические характеристики целевого продукта.
П р и м е р 2. Подобрана концентраци  полученного по примеру i гидролиза га внутренних органов промысловых рыб, ис5 пользуемого в качестве основы питательной среды, и компонентов среды - лактозы, натри  хлористого и агара, обеспечивающие оптимальные услови  роста бифидобактерий и лактобацилл. Использованы следую0 щие штаммы: B.bifidum-производственныи № 1, 791, ЛВА-3; L-plantarum 8-РЛ-З, L.plantarum 8-PA-3, L.plantarum-38 Lpermentum-39. Результаты исследовани  представлены в табл. 1.
5 Как видно из табл. 1, питательна  среда на основе гидролизата внутренних органов промысловых рыб при его концентрации в среде от 20 до 30 г/л и концентраци х лактозы -9,75 г/л, натри  хлористого-4,75 г/л, агара - 0,68 г/л обеспечивают оптимальные
ус ЮРИЯ дл  культивировани  бифидобакте- рий и лактобацилл.
Ростстимулирующие свойства этой среды наход тс  на уровне ростстимулирую- щих свойств известных питательных сред. Причем при концентрации гидролизата 30 г/л рост бифидобактерий и лактобацилл аналогичен росту бифидобактерий и лактобацилл при добавлении в ПС гидролизата в концентрации 25 г/л. При концентрации гидролизата 15 г/л количество биомассы не уменьшаетс , однако размер колоний мельче , следовательно оптимальна  концентраци  гидролизата внутренних органов промысловых рыб в составе ПС 20-25 г/л.
П р и м е р 3. Подобраны концентрации лактозы, натри  хлористого, агара и пептона в составе ПС дл  культивировани  бифидобактерий и лактобацилл.
Концентрации компонентов отрабатывали на шести вариантах ПС. Использованы штаммы B.blfldum 791 и L plantarum 8-РА- 3.
Из полученных результатов, представленных в табл. 3, видно, что питательна  среда на основе гидролизата внутренних органов промысловых рыб по вариантам ПС с 1 по III обеспечивает оптимальные услови  культивировани  дл  бифидобактерий и лактобацилл, не отличающихс  от контрол , добавление в эту ПС пептона в количествах, указанных в табл. 2 (ПС по вариантам с IV по VI), увеличивает размеры колоний микроорганизмов при том же количестве биомассы . Таким образом, оптимальные соотнош.ни  компонентов в описываемой ПС Автофизат дл  культивировани  бифидобактерий и лактобацилл следующее, г/л дистиллированной воды:
лактоза9,5-10,0
лактоза9,5-10,0
натрий хлористый4,5-5,0
натрий хлористый4,5-5,0
гидролизат внутренних органов промысловых рыб20,0-25,0
гидролизат внутренних органов промысловых рыб 20,0-25,0 агар0,65-0,70
агар0,65-0,70
пептон14,5-15,0
П р и м е р 4. Питательную среду Автофизат приготавливают следующим образом: к 22,5 г гидролизата внутренних органов промыслов рыб добавл ют 9,75 г лактозы, 4,75 г натри  хлористого, смесь раствор ют в 700 мл дистиллированной воды , затем к ней добавл ют 0,68 г агара, растворенного в 200 мл воды, общий объм довод т дистиллированной водой до 1 л,
Тщательно перемешивают, устанавливают рН раствора 7,0-7.2 и подвергают стерилизации при 110°С в течение 20 мин (автокла- вирование). После стерилизации рН
питательной среды снижаетс  и становитс  равным 6,8-7,0.
П р и м е р 5. Модифицированную среду Автофизат готов т следующим образом: к 22,5 г гидролизата внутренних органов про0 мысловых рыб добавл ют 9,75 г лактазы, 4,75 г натри  хлористого, 14,5 г пептона, смесь раствор ют в 700 мл дистиллированной воды, затем к ней добавл ют 0,68 г агара , растворенного в 200 мл воды, общий
5 объем довод т дистиллированной водой до 1 л. Тщательно перемешивают, устанавливают рН раствора, равное 7,0-7,2, и подвергают стерилизации при 110°С в течение 20 мин (автоклавирование). После стерилиза0 ции рН питательной среды 6,8-7,0.
П р и м е р 6. Проведено изучение вли ни  ПС Автофизат, состав которой представлен в примере 4, на культурально-морфологические признаки
5 производчтвенных штаммов B.bifidum Ms 1, 791, ЛВА-3. В мазках культур, выросших в высоком столбике ПС Автофизат, микробы представл ют собой грамположительные палочки, характерным признакам которых
0  вл етс  раздвоение концов. Часто палочки образуют скоплени , напоминающие китайские иероглифы или оленьи рога. При выра- щивании на ПС Автофизат при температуре 37,5-38,0°С в первые сутки не
5 обнаруживаетс  роста, через 2-3 сут формируютс  колонии бифидобактерий в виде гвоздиков или комет, наход щихс  во взвешенном состо нии. При испытании модифицированной ПС Автофизат (добавление
0 пептона) обнаружено, что размер регистрируемых колоний бифидобактерий более крупный (пример 5).
Изучено также вли ние ПС Автофизат (состав указан в примере 4) на культураль5 но-морфологические особенности лактобацилл (Lplantarum 8-PA-3). Показано, что сохран ютс  типичные культурально-морфологические признаки данного штамма: грамположительные, в основном, пр мые
0 палочки с закругленными концами, расположенные беспор дочными скоплени ми и отдельными цепочками по 3-5. При выращивании в ПС Автофизат при температуре 37,5-38,0°С в первые сутки наблюдаетс  по5  вление точечных колоний, через 2-3 сут организмы образуют кометообразные колонии .
Таким образом, описываемый способ получени  основы микробиологических сред (на основе гидролизата внутренних орг;жов промысловых рыб) предусматривает использование дешевого отечественного сырь  - (Зелоксодержащих неутилизируемых непищевых отходов рыболовных промыслов , имеющихс  в стране в больших количествах (тыс чи тонн), процесс технологически прост, так как исключает использование дорогосто щих ферментов, предусмотренных способом-прототипом.
Описываема  питательна  среда Авто- физат проста в изготовлении, содержит доступные отечественные компоненты, не требует дорогосто щего оборудовани  дл  своего изготовлени , обладает свойствами
эталонных питательных сред дл  выращивани  бифидобактерийилакгоСацилл. (56) Справочник по микробиологическим питательным средам. Под редакцией М.М.Меджидова, Махачкала, 1989, с. 104.
Авторское свидетельство № 1513029, кл. С 12 11 1/20, 1988.
De Man P.S.Rogosa, M.Sharpe M.E.. J.Appl. Bacterlol, 1960, N 23, p. 130-135.
Ленцнер А.А., Лабораторное дело. 1967, №5, с. 301-302.
Лизько Н.Н., Шилов В.М., Лабораторное дело, 1979, № 7. с. 430-423.
Количество биомассы бифидобактерий и лактобацилл в ПС на основе гидролизата внутренних органов промысловых рыб в сравнении с контрольной ПС
Таблица 1
Таблица 2
Составы ПС, использованные дл  выбора оптимальных концентраций при выращивании бифидобактерий и лактобацилл
- Концентраци  гидролизата внутренних органов промысловых рыб в составе ПС представлена в средних значени х, полученных на основании данных примера 2.
Продолжение табл. 1
Таблица 3
Количество биомассы бифидобактерий и лактобацилл в ПС Автофизат в сравнении с эталонными ПС

Claims (3)

1. Способ получени  основы микробиологических сред, предусматривающий измельчение белоксодержащего сырь  промысловых рыб. гидролиз полученного гомогената о щелочной зоне в присутствии хлороформа при нагревании, последующее прогревание биомассы, осаждение нерэз- гидролизооанных белков и высушивание, отличающийс  тем, что в качестве белоксо- держэщего сырь  используют внутренние органы промысловых рыб. гомогенат которых смешивают с водой в массовом соотношении 1 : 1,5, и гидролиз ведут при 40 - 42 С в течение 2 - 2,5 сут. а прогревание - при 90 С в течение 5-10 мин.
2. Питательна  среда дл  культивиро- плни  микроорганизмов, содержаща  пи
тательную основу, лактозу, натрий хлористый, агар и водную основу, отличающа с  тем, что в качестве питательной основы она содержит гидролизат внутренних органов промысловых рыб с содержанием аминного азота 100 - 140 мг%, а в качестве водной основы - воду дистиллированную при следующем соотношении компонентов , г/л:
Гидролизат внутренних органов промысловых рыб с содержанием аминного азота 100-140 мг %20,0-25,0
Лактоза9,5-10,0
Натрий хлористый4,5 - 5,0
Агар0.65-0.70
Вода дистиллированна Остальное
3. Питательна  среда по п.2, отличающа с  тем, что она дополнительно содержит пептон в количестве 14,5 - 15,0 г/л.
SU5031795 1992-03-11 1992-03-11 "Способ получени основы микробиологических сред и питательна среда "Автофизат" дл культивировани микроорганизмов" RU2001101C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU5031795 RU2001101C1 (ru) 1992-03-11 1992-03-11 "Способ получени основы микробиологических сред и питательна среда "Автофизат" дл культивировани микроорганизмов"

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU5031795 RU2001101C1 (ru) 1992-03-11 1992-03-11 "Способ получени основы микробиологических сред и питательна среда "Автофизат" дл культивировани микроорганизмов"

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2001101C1 true RU2001101C1 (ru) 1993-10-15

Family

ID=21599086

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU5031795 RU2001101C1 (ru) 1992-03-11 1992-03-11 "Способ получени основы микробиологических сред и питательна среда "Автофизат" дл культивировани микроорганизмов"

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2001101C1 (ru)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN102583771B (zh) 难分解性废水的生物处理方法及废水处理剂
AU683231B2 (en) Fermented bagasse feed, and its preparation and uses
US8592198B2 (en) Method for culturing microorganisms on a growth substrate comprising biomass obtained from methanotrophic bacteria
BG98875A (en) Strain monascus purpureus 94-25, producent of pigment and accompanying products
CA1208579A (en) Microorganisms of the genus hyphomicrobium and process for degrading compounds which contain methyl groups in aqueous solutions
RU2001101C1 (ru) "Способ получени основы микробиологических сред и питательна среда "Автофизат" дл культивировани микроорганизмов"
RU2763052C1 (ru) Штамм бактерий Methylococcus capsulatus ВКПМ B-13554 - источник кормового белка
KR20230150357A (ko) 세포 성장 배지를 생산하는 방법
RU2040539C1 (ru) Питательная среда для культивирования бифидобактерий и лактобации "гидроселат"
RU2518282C1 (ru) Питательная среда для глубинного культивирования туляремийного микроба
Taillandier et al. Influence of medium composition, pH and temperature on the growth and viability of Lactobacillus acidophilus
JP3957132B2 (ja) 低濁性醤油乳酸菌の分離用培地、同培地を用いる低濁性醤油乳酸菌の分離法及び同乳酸菌を用いる清澄度の高い醤油の製造法
Kannan et al. Single cell protein (scp) production from Marine Lactobacillus spp.
RU2039814C1 (ru) Питательная среда для культивирования бифидобактерий и лактобацилл"эпидермат"
JPH01157395A (ja) 微生物の培養法
CN110669685B (zh) 一株可降解羽毛角蛋白的益生菌及其应用
JPH0775563A (ja) ムコールの培養方法
RU2025482C1 (ru) Способ получения белковой кормовой добавки
JPS62257383A (ja) 天然ミネラルを豊富に含む乳酸菌の製造法
RU2081166C1 (ru) Способ получения белкового продукта из крахмал и целлюлозосодержащего растительного сырья
RU2002801C1 (ru) "Питательна среда "Бактофет" дл культивировани бифидобактерий"
RU2207019C1 (ru) Биологически активная добавка к пище и способ ее приготовления
RU2103349C1 (ru) Способ обогащения растительного сырья микробным белком
Йимер et al. The cultivation of microorganisms using rye grain residue as media
Iscandar et al. PREPATION TOW PROTEIN HYDROLYSATES FROM CHICKEN LEGS AND RAW SHRIMP WASTE BY USING ACIDIC DIGESTION AND TEST THEIR EFFICIENCY IN MICROBIAL GROWTH