RO122298B1 - Secvenţă adn a enzimei fosfolipază a1 din tetrahymena termophila şi utilizarea acesteia - Google Patents

Secvenţă adn a enzimei fosfolipază a1 din tetrahymena termophila şi utilizarea acesteia Download PDF

Info

Publication number
RO122298B1
RO122298B1 ROA200300631A RO200300631A RO122298B1 RO 122298 B1 RO122298 B1 RO 122298B1 RO A200300631 A ROA200300631 A RO A200300631A RO 200300631 A RO200300631 A RO 200300631A RO 122298 B1 RO122298 B1 RO 122298B1
Authority
RO
Romania
Prior art keywords
seq
nucleic acid
proteins
thr
homologous
Prior art date
Application number
ROA200300631A
Other languages
English (en)
Inventor
Marcus Hartmann
Marco Grenningloh
Arno Tiedtke
Original Assignee
Cilian Ag
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Cilian Ag filed Critical Cilian Ag
Publication of RO122298B1 publication Critical patent/RO122298B1/ro

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/11—DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
    • C12N15/52—Genes encoding for enzymes or proenzymes
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14—Hydrolases (3)
    • C12N9/16—Hydrolases (3) acting on ester bonds (3.1)
    • C12N9/18—Carboxylic ester hydrolases (3.1.1)
    • C12N9/20—Triglyceride splitting, e.g. by means of lipase
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Y—ENZYMES
    • C12Y301/00—Hydrolases acting on ester bonds (3.1)
    • C12Y301/01—Carboxylic ester hydrolases (3.1.1)
    • C12Y301/01032—Phospholipase A1 (3.1.1.32)

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

Prezenta invenţie se referă la un acid nucleic care cuprinde regiunile de codificare şi necodificare a fosfolipazei A1 din Tetrahymena thermophila şi regiunile din amontele şi avalul acestei gene, la proteina de fosfolipază A1, acid utilizat într-o metodă de expresie omoloagă sau heterologă a proteinelor şi peptidelor din fosfolipaza A1.

Description

Invenția se referă la un acid nucleic care codifică pentru fosfolipaza A1 (PLAJ și la utilizarea acesteia pentru obținerea de sisteme bacteriene pentru producere de proteine bacteriene recombinante.
Este cunoscut faptul că, levurile, bacteriile și celulele de mamifere au o mare importanță pentru prepararea biotehnologicăși producerea substanțelor active recombinante prin expresia heterologă a proteinelor străine. Sistemele de expresie bacteriene pe bază de E.coli sau B. subtilis sunt utilizate la producția de proteine sau peptide recombinante, cum arfi insulina, interleukina-2, activatorul tisular al plasminogenului, proteaze și lipaze. La bacteriile gram negative, sistemele de expresie se bazează în principal pe folosirea elementelor genetice, cum arfi operonul lac sau operonul triptofan. Proteinele străine gazdei sunt produse fie în corpuri de incluziune în interiorul celulei, sau atunci când sunt utilizate sistemele de expresie pe baza genelor de β-lactamază, în spațiul periplasmatic. Producerea de proteine recombinante în mediul de fermentație înconjurător nu a fost stabilită. La bacteriile gram pozitive, până în prezent, sunt introduse în sistemele de expresie și exprimate aproape exclusiv proteine proprii celulelor.
Levurile, cum ar fi S. cerevisae, Hansenula polymorpha, Kluyveromyces lactis sau Pichia pastoris sunt, de asemenea, utilizate pentru expresia heterologă a proteinelor recombinante, cum ar fi factorul uman XIIla, pro-chimozina bovină, fitaza sau antigenii de suprafață. Aici, sistemele de expresie se bazează pe vectori-shuttle (vectori având atât părți de levură cât și părți bacteriene) care se bazează (în funcție de speciile de levuri) pe elementele genetice ale galactokinaz-epimerazei, metanol oxidazei, fosfatazei acide sau alcool-dehidrogenazei. De regulă, proteina recombinantăeste produsăîn citoplasmă celulei. Atunci când sunt utilizate secvențe semnal proprii levurilor, cum arfi factorul alfa, proteinele exprimate pot fi secretate, de asemenea, în mediul de fermentație. Glicozilarea proteinelor secretate are loc conform sistemului high-mannose și frecvent există hiperglicozilări ale proteinei care pot avea ca rezultat formarea de anticorpi la pacient.
Celulele de mamifere, cum ar fi diferite tipuri de celule ale rozătoarelor (celule CHO, celule C127) sau ale maimuțelor (vero, CV-1 sau celule COS) sunt utilizate, de asemenea, pentru expresia heterologă a proteinelor recombinante. în acest caz, sistemele de expresie se bazează pe virusuri recombinanți (vector BPV) sau pe vectori shuttle. Pentru reglarea expresiei sunt utilizate sisteme virale amplificator/promotor SV40. Proteinele recombinante, cum ar fi eritropoietina, sunt secretate în mediul de fermentație, deoarece genele străine își aduc, de regulă, propriile secvențe semnal, care sunt percepute de sistemul de expresie și utilizate pentru țintire.
Mai mult, pentru producerea biotehnologică a enzimelorglicozilate extracelulare, sunt utilizate protozoare ale genului Tetrahymena. Tetrahymena va crește în medii de fermentație ieftine utilizând metode standard de fermentație. Pentru transformarea unor astfel de celule Tetrahymena, sunt disponibili vectori care se bazează pe elemente rADN ale Tetrahymena. Pentru expresia heterologă a proteinelor bacteriene în Tetrahymena, se utilizează proiecții de ADN realizate din gene de Tetrahymena. Atunci când sunt disponibile elemente genetice adecvate pentru reglarea transcrierii, țintirea și glicozilarea proteinelor străine, Tetrahymena este un sistem de expresie ideal pentru producerea ieftină de proteine recombinante terapeutice.
Sistemele de expresie bacteriene gram negative utilizate până acum, conduc, de regulă, la formarea de corpuri de incluziune în interiorul celulei, însoțite de denaturarea proteinelor. Pentru recuperarea proteinelor recombinante, celulele trebuie lizate și proteina inactivă denaturată trebuie să reposede funcția. Aceasta necesită etape de procedeu suplimentare costisitoare și reduc producerea de proteină dorită. Glicozilarea, care este importantă pentru
RO 122298 Β1 proteinele de eucariote, este eliminată complet. Atunci când sunt utilizate sisteme de 1 expresie bacteriene gram-pozitive, degradarea proteinei țintă datorită activităților proteolitice intense din bulionul de fermentație este o problemă suplimentară. 3
Atunci când sunt utilizate levuri pentru expresia heterologă, proteina țintă dorită este, de asemenea, produsă numai în celulă, de unde trebuie eliminată prin liza celulară. Ca și la 5 sistemele de expresie bacteriene, aceasta determină etape de procedeu suplimentare care necesită timp și bani. Atunci când sunt utilizate peptide semnal proprii levurilor, proteinele 7 străine nu sunt despărțite și glicozilate corect pentru secreție.
Dacă se vor utiliza în schimb sisteme celulare de mamifere pentru producerea de 9 proteine recombinate, proteinele dorite sunt găsite în mediul de fermentație într-o stare extracelulară, despărțite și glicozilate corect. Cu toate acestea, ceea ce este dezavantajos 11 aici, este pe de o parte rata de expresie scăzută datorită prelucrării defectuoase și transcrierea ineficientă a genelor care au fost introduse în genomul liniei celulare de pro- 13 ducție prin intermediul vectorilor virali. Pe de altă parte, mediile de fermentație cu conținut de ser pentru celulele de mamifere sunt extrem de costisitoare. în plus, tehnologia de 15 fermentație pentru liniile celulare sensibile la forfecare este complicată și în mod similar costisitoare datorită construcțiilor pentru aerarea fără bule. Probleme suplimentare provin din 17 riscul ridicat de infectare a liniilor celulare prin micoplasme și virusuri. în consecință, utilizarea celulelor de mamifer pentru prepararea biotehnologică a proteinelor recombinante are 19 ca rezultat costuri foarte ridicate, măsuri de siguranță sporită și producții scăzute.
La utilizarea ciliatelor, cum ar fi Tetrahymena, dezavantajele menționate mai sus la 21 producerea de proteine recombinantesunt eliminate. Astfel, de exemplu, anumite hidrolaze acide care sunt implicate în digerarea particulelor de hrană sunt exportate din celulă în 23 cantități ridicate și cu glicozilare complexă.
Alam și colab., descriu în J. Euk. Microbiol. 43(4), 1996, paginile 295-303 donarea 25 unei gene, care codifica pentru alfa-glucozidaza acida a Tetrahymena pyriformis. Cu toate acestea, doar o mică parte din proteină este eliminată din celulă. în plus, cererea internațio- 27 nala de brevet PCT/EP00/01853 descrie gena unei β-hexosaminidaze din Tetrahymena termophila, care este cunoscută, cu toate acestea, este exportată din celulă doar aproximativ 29 80%.
Cu toate acestea, până acum nu a fost posibilă determinarea expresiei proteinelor 31 glicozilate de eucariote în Tetrahymena, care să fie, de asemenea, secretate exclusiv în mediul de fermentație. Motivul este faptul ca secvențele de ADN ale proteinelor extracelulare 33 proprii Tetrahymena care sunt necesare pentru construcția vectorilor de expresie și care exportă exclusiv proteina străină în mediul de fermentație înconjurător au fost necunoscute 35 până acum. Cunoscute sunt secvențele de ADN ale unei proteine care codifică pentru β-hexosaminidaza de Tetrahymena thermophila. O astfel de secvență a fost înregistrată de 37 cerere de brevet DE 199 58 979.8, DE 199 09189.7 precum și PCT/EP00/01853. Dezavantajul acestor secvențe este totuși, ca pre/pro-peptidele care le conțin vor ținti o proteină 39 străină gazdei în mediul de fermentație înconjurător doar în proporție de aproximativ 80%.
Acest lucru se datorează faptului că enzima β-hexosaminidaza este prezentă în proporție de 41 aproximativ 20% în membrană în condiții naturale și doar în proporție de aproximativ 80% din enzima produsă în mod natural este exportată din celulă. Din acest motiv pre/pro- 43 peptidele β-hexosaminidazei, atunci când sunt poziționate în fața unei proteine străine gazdei prin metode de inginerie genetică, vor ținti doar aproximativ 20% din această proteină 45 străină gazdei în membrana citoplasmatică pe suprafața Tetrahymena thermophila. Aceasta este asociată cu un dezavantaj tehnologic considerabil la prelucrarea substanțelor active re- 47 combinante. Pe de o parte se diminuează producția deoarece o parte din proteina exprimată
RO 122298 Β1 rămâne în celula legată de membrană și atfel nu este posibilă purificarea în întregime a proteinei exprimate din bulionul de fermentație. Pe de altă parte, proteina străină gazdei din membrana celulară poate exercita efecte toxice asupra celulelor gazdă, încetinind astfel creșterea celulară.
Până astăzi nu sunt cunoscuți promotori constitutivi ai Tetrahymena care să determine o transcripție corespunzătoare sau continuă a proteinelor heterologe. Până acum sunt cunoscuți doar promotori ai genelor histona și tubulina (Bannon și colab., 1984, Gaertig și colab., 1993). Cu toate acestea, un dezavantaj critic al acestor promotori este faptul că activarea lor este dependentă de ciclul celular. Expresia genelor proteinelor heterologe care sunt legate de astfel de promotori dependenți de ciclul celular se determină numai în celule care cresc și se divid. Aceasta are dezavantaje tehnologice considerabile de prelucrare, deoarece proteina dorită este produsă astfel numai în faza logaritmică de creștere. în faza de creștere staționară, în care se atinge cea mai mare densitate celulară și astfel cea mai ridicată performanță a organismului de expresie (Tetrahymena), cu greu mai există celule crescute rămase și astfel are loc doar o expresie redusă a proteinei heterologe.
Problema pe care o rezolvă invenția este de a prezenta un acidul nucleic, secvența semnal N-terminală respectiv proteina fosfolipaza Ai din ciliate, metoda de expresie omoloagă sau heteroloagă a proteinelor și peptidelor prin intermediul vectorilor, plasmidelor, cosmidelor, cromozomilor sau minicromozomilor, transpozonilor, elementelor IS, rADN sau alte tipuri circulare sau liniare de ADN sau ARN.
Acidul nucleic conform invenției cuprinde regiuni de codificare și ne-codificare având SECV. ID. NR 4, în care respectiva regiune codifică fosfolipaza A! (PLA1) din Tetrahymena thermophila și respectivele regiuni de ne-codificare reprezintă regiunile în amontele și în avalul acestei gene.
Secvența semnal N-terminală aPLA., conform invenției are SECV. ID NR. 6.
Proteina de fosfolipază At (PLAJ conform invenției are secvența aminoacizi conform SECV. ID NR. 7.
Metoda pentru expresia omoloagă sau heterologă a proteinelor și peptidelor și pentru recombinarea omoloagă sau heterologă (knock-out, înlocuire genică) conform invenției, în care ciliatele sunt transfectate cu un acid nucleic sau părți ale acestora care sunt combinați cu amplificatori, promotori, operatori, origini, terminatori, gene de rezistență la antibiotice, uzuale pentru expresia omoloagă sau heterologă a proteinelor sau cu alți acizi nucleici sau fragmente de ADN sau alte tipuri de secvențe de viroizi, virusuri, bacterii, arheozoare, protozoare, fungi, plante, animale sau oameni.
Prin aplicarea invenției se obține avantajului că recuperarea proteinelor recombinante și a proteinei inactive denaturate care trebuie să reposede funcția nu are loc în etape de procedeu suplimentare costisitoare și nu se reduce producerea de proteină dorită.
Un obiect al invenției este asigurarea unui sistem care să permită producerea de proteine heteroloage într-un sistem de expresie, după transformarea în Tetrahymena, din celule în mediul de fermentație.
Obiectul este realizat printr-un sistem în care se utilizează un acid nucleic având secvența SECV. ID NR. 1 care codifică pentru o fosfolipază Al (SECV. ID NR. 7). în mod avantajos, produsul de expresie al acestui ADN este exportat în cantități mari din celulă în condiții de cultură. Proteina exprimată este exportată în cantități mari în mediul de cultură înconjurător și nu este conținută în membrană. Secvența de acid nucleic conform invenției conține un promotor care determină o transcripție constitutivă, adică independența de ciclul celular, a genelor din aval a proteinelor heterologe. O asemenea transcripție constitutivă are ca avantaj faptul că proteinele sunt exprimate continuu prin expresie heterologă în organismul
RO 122298 Β1 gazdă, nefiind afectate de ciclul celular. Astfel, poate fi efectuată transcripția genei străine 1 și expresia proteinei heterologe și în timpul fazei staționare de creștere, cu o creștere celulară redusă. 3
Secvența de ADN a fosfolipazei ΑΊ în conformitate cu invenția, include de preferință o regiune amonte a PLA! (SECV. ID NR. 2), care poartă elementele promotoare pentru iniție- 5 rea transcripției, o peptidă semnal și o pro-peptidă, elemente genetice suplimentare pentru țintirea proteinelor și în particular, o regiune aval a PL·^ (SECV. ID NR. 3) care conține 7 elemente genetice pentru terminarea transcripției. Utilizarea acestor acizi nucleici într-un vector permite expresia proteinelor exprimate heterolog independent de ciclul celular și 9 transportarea lor selectiv afară din celulă și în mediul de cultură înconjurător fără ca proteinele exprimate să devină încorporate în membrana citoplasmatică, prin aceasta, 11 putând fi izolate asemenea proteine din bulionul de fermentație fără liza celulară.
în particular, invenția se referă, de asemenea, la secvența semnal (SECV. ID NR. 6) 13 a proteinei conform invenției. De preferință, acestea sunt aminoacizii 1 - 110 ai proteinei conform invenției (SECV. ID NR. 5). Invenția se referă, de asemenea, la un acid nucleic care 15 codifică fragmentul N-terminal (SECV. ID NR. 3). Acesta este, de preferință, un fragment al acizilor nucleici conform invenției (SECV. ID NR. 4) având în special secvența acidului 17 nucleic 1 până la 155 conform Fig. 1.
Secvența acidului nucleic al regiunii netranslatate (regiunea amonte) 19 (SECV. ID NR. 2) în amonte de regiunea secvenței de codificare a ΡΙ_ΑΊ din Tetrahymena este poziționată între poziția -275 și poziția -1 (reprezentată prin litere mici). Regiunea 21 netranslatată stabilită cuprinde 275 baze. Ca elemente ale unui promotor, în pozițiile -49 până la -55 (tipărite cu litere îngroșate) se găsește o casetă TATA, iar între baza -133 23 și baza -136 (tipărite cu litere îngroșate) se găsește o casetă CAAT putativă. Domeniul secvenței de codificare a cADN este reprezentat cu majuscule. Numerotarea secvenței 25 începe cu codonul start ATG. Regiunile cunoscute din secvențarea proteică sunt încasetate iar codonul stop este subliniat. Proteina matură este codificată de la baza 331. Listarea 27 secvenței de la baza 1 la baza 330 reprezintă pre/pro-secvența (SECV. ID NR. 8) al PLA^
Listarea secvenței de la baza 331 până la baza 963 reprezintă secvența PLA! 29 (SECV. ID NR. 9) matură. La poziția 961 se găsește sfârșitul translației TGA, iar la poziția 1039, semnalul de poliadenilare AAT AAA. Secvența acidului nucleic din poziția 964 până 31 la poziția 1134, ce se găsește sub secvența de codificare a PLA! a Tetrahymena, reprezintă regiunea aval a PLA! (SECV. ID NR. 3) care nu este translatată (reprezentată de asemenea 33 cu litere mici). De la poziția 964 până la poziția 1101 se află regiunea cunoscută din secvențarea cADN-ului, care a fost de asemenea confirmată cu PCR inversă. După 35 transcripție, coada poli-A este atașată de ultimul codon al mARN (ttt, pozițiile 1098-1101).
Un alt aspect al invenției este utilizarea unei secvențe de acid nucleic din hidrolaze 37 acide conform invenției, sau părți din acestea pentru expresia omoloagă sau heterologă a peptidelor și proteinelor recombinante și pentru recombinarea omoloagă sau heterologă 39 (knock-out, înlocuire genică).
Invenția se referă, de asemenea, la o metodă pentru expresia heterologă sau 41 omoloagă a proteinelor și peptidelor și pentru recombinarea heterologă sau omoloagă (knock out, înlocuire genică) în care sunt transfectate ci liate cu un acid nucleic conform 43 invenției.
Acizii nucleici sau părțile lor pot fi combinați în special cu enhanceri, promotori 45 operatori, origini, terminatori, rezistente la anitibiotice uzuale pentru expresia omoloagă sau heterologă a proteinelor, sau cu alți acizi nucleici sau fragmente de ADN ale altor secvențe 47 de orice fel de viroizi, virusuri, bacterii, arheozoare, protozoare, fungi, plante, animale sau oameni. 49
RO 122298 Β1 în particular, acidul nucleic conform invenției este conținut într-un vector, o plasmidă, o cosmidă, un cromozom, un minicromozom, un transpozon, un element IS, un rADN sau oricare altă formă circulară sau liniară de ADN sau ARN.
Invenția se referă, de asemenea, la o metodă în care acidul nucleic conform invenției sau părți din acesta, care codifică fosfolipaza Αή sunt combinate cu amplificatori, în expresia omoloagă sau heterologă, cum ar fi regiunea NF-1 (un enhancercitomegalovirus) promotori, cum ar fi promotori lac, trc, tic sau tac, promotori din clasa II și III ai sistemului T7 RNAP, promotori bacteriofagi T7 și SP6, promotori aprE, amilază sau spac pentru sisteme de expresie cu Bacillus, promotori A0X1, AUG1 și 2 sau GAPp (Pichia) pentru sisteme de expresie cu levuri, promotor RSV (virus-SV40), promotor CMV (citomegalovirus), promotor AFP (adenovirusuri) sau promotori metalotionină pentru sisteme de expresie cu celule de mamifere, promotori virus Sindbis sau promotori virus de pădure Semlike pentru celule de insecte, promotori pentru sisteme de expresie cu celule de insecte, cum ar fi hsp70, DS47, actina 5C sau copia, promotori specifici plantelor cum ar fi promotor 35S (virusul mozaic al conopidei), promotori amilaza sau promotori patatina clasa I, operatori cum ar fi operator tet, peptide semnal cum ar fi secvențe semnal pre-pro a-MF (Saccharomyces), origini, terminatori, antibiotice și rezistente la medicamente, cum ar fi ampicilina, kanamicina, streptomicina, cloramfenicol, penicilina, amfotericina, cicloheximida, 6-metilpurina, paromomicina, higromicina, α-amanatina, markeri auxotrofi cum ar fi gena dihidrofolat reductazei sau alți acizi nucleici sau fragmente de ADN, sau orice fel de secvențe din viroizi, virusuri, bacterii, arheozoni, protozoare, fungi, plante, animale sau oameni.
în particular, acidul nucleic conform invenției sau părți ale acestuia sunt introduse întrun vector, o plasmidă, o cosmidă, un cromozom sau minicromozom, un transpozon, un element IS, un rADN, sau orice alt fel de ADN sau ARN circular sau liniar.
Persoana de specialitate va înțelege că acizii nucleici având omologie de cel puțin 40% cu acidul nucleic conform SECV. ID NR. 1. potfi utilizați, de asemenea, în conformitate cu invenția. Proteina conform SECV. ID NR. 2 poate fi modificată, de asemenea, fără să își piardă funcția. Astfel, pot fi realizate așa-numitele schimburi conservative de aminoacizi. Astfel, potfi interschimbați, de exemplu, aminoacizii hidrofobi.
în continuare, se prezintă un exemplu de realizare a invenției în care se descrie purificarea și izolarea fosfolipazei At din Tetrahymena și determinarea secvenței acesteia în legătură cu cele fig. 1 și 2, care reprezintă:
- fig. 1, un acid nucleic ce codifică regiunea în amonte (SECV. ID NR. 2), regiunea de codificare (SECV. ID NR. 1) și pentru regiunea aval (SECV. ID NR. 3) a fosfolipazei A! din ciliate;
- fig. 2, un produs de expresie corespunzător al acidului nucleic conform SECV. ID NR. 1. Invenția se referă, de asemenea, la proteina conform SECV. ID NR. 7.
Exemplul 1. Recuperarea PLA1
PLA, a fost obținută din supranatanți de cultură fără celule de la Tetrahymena thermophyia. Astfel, celulele au fost fermentate într-un fermentator de 2 litri (Biostat MD, Braun Diessel Biotech, Melsungen, Germania) care a fost controlat de o unitate digitală de control (DCU). Fermentatorul a funcționat mai întâi 24 de ore secvențial și apoi continuu. Recoltarea supranatantului de cultură fără celule a fost asigurată printr-un modul de perfuzie având dimensiunea porilor de aproximativ 0,3 pm (S6/2, Enka, Wuppertal).
Fermentarea a fost realizată după următorii parametri:
- volumul de lucru a fost 2 I;
- rata perfuziei a fost 2 l/zi;
- turația agitatorului a fost limitată la 800 rpm ;
RO 122298 Β1
- temperatura a fost constantă la 30°C; 1
- valoarea pH-ului a fost menținută constantă la pH 7;
- titrul de inoculare a fost de 50 000 celule/ml. 3
Pentru fermentație a fost utilizată tulpină SB 1868 VII. Aceasta este un tip de tulpină sălbatică a Tetrahymena thermophila. 5
Fermentația a fost realizată pe o perioadă de 264 de ore, iar recoltele au fost testate pentru activitate PLA,. 7
Purificarea PLA1
Pentru purificarea PLA, s-a utilizat 1 I de supranatant de cultură fără celule din 9 fermentație. Acesta a fost amestecat cu 140 g sulfat de amoniu și concentrat printr-o unitate de ultrafiltrare (Pellikon XL, dimensiunea de eliminare 3kDa, Millipore) până la un volum de 11 50 ml. Ulterior, eșantionul a fost purificat prin cromatografie cu interacțiune hidrofobă (20 x 1,6 Fractogel EMD Phenyl I 650, Merck, Darmstadt). Debitul a fost de 5 ml/min, iar 13 eluatul a fost colectat în fracțiuni de 5 ml. Activitatea enzimatică a fost măsurată după deacilarea unei fosfolipide radiomarcate (L-3-fosfatidilcolina, 1-palmitoil-2-[1-14C]linoleoil). 15 Fig. 3 arată profilul de eluare obținut, gradientul de acetat de sodiu și avtivitățile enzimatice în fracțiuni individuale. 17
Cele trei fracțiuni cu activitatea enzimatică cea mai ridicată au fost combinate și retamponate în soluția tampon de pornire (Bis-Tris 20mM, pH 6,5) pentru cromatografia cu 19 schimb de anioni (AEC). Ulterior, eșantionul a fost introdus într-o coloană (Q-SepharoseHiload-16/10, Pharmacia, Sweden) și PLA! a fost eluată cu un gradient liniar de NaCl (debitul 21 -3 ml/min) din coloană și colectat în fracțiuni de 5 ml. Fig. 4 arată profilul de eluare obținut, gradientul de NaCl și activitățile enzimatice ale fracțiunilor individuale. 23
Din fracțiunea cu cea mai mare activitate PLA.,, au fost eliminați 200 pl și separați prin cromatografie de excludere dimensională (SEC). în acest scop, a fost utilizată o coloană 25 Superdex HR 75 30/10 (Pharmacia, Sweden). Debitul în această cromatografie a fost 0,6 ml/min, eluatul a fost colectat în fracțiuni de 200 μΙ. Fig. 5 arată profilul eluatului obținut și 27 activitățile enzimatice ale fracțiunilor individuale.
Fracțiunile obținute au fost examinate pentru puritate utilizând electroforeză pe gel 29 unidimensională. Astfel, au fost stabilite două benzi la -26 și -28 kDa. Separarea acestor două benzi printr-o electroforeză pe gel bidimensională a avut ca rezultat separarea celor 31 două benzi în 2 și respectiv 3 pete, având puncte izoelectrice diferite.
Pentru proteinele de 26 kDa, acestea au fost la pH 6,3 și 5,7 iar pentru proteinele de 28 kDa 33 acestea au fost la pH 6,3, 5,7 și 5,3.0 examinare finală a acestor pete prin analiza de masă a amprentelor a arătat ca aceste pete au fost izoforme cu aceeași proteină. 35
Examinarea molecular-biologică a PLA1
După ce s-a demonstrat puritatea proteinei, au fost blotate eșantioane din proteină 37 pe o membrană PVDF și supuse secvențierii inițiale din capătul N. în plus, un eșantion suplimentar a fost digerat în triplicat și supus de asemenea secvențierii inițiale. Utilizând 39 secvențele de proteină obținute în felul acesta, au fost preparați primeri de oligonucleotidă, care au fost apoi utilizați în revers transcriptaza PCR (3' RACE, amplificarea rapidă a 41 capetelor cADN). Utilizând această tehnică de PCR, a fost amplificat cu succes cADN de fosfolipaza A, și secvențiat ulterior. Secvența obținută a avut o lungime de 633 baze și 43 respectiv 729 baze, iar greutatea moleculară a proteinei mature derivată din acestea este de aproximativ 22,4 kDa. în secvența derivată, au fost găsite din nou la 100% oligopeptide 45 de 22 aminoacizi (N-terminal) și 18 aminoacizi (în proteină) stabilite din secvențierea proteinei. în plus față de secvența proteinei mature, a pututfi de asemenea stabilită secvența 47 pre/pro peptidei prin intermediul 5' RACE (amplificarea rapidă a capetelor cADN) (fig. 2).
RO 122298 Β1
Aceasta este o peptidă având o lungime de 110 aminoacizi care poartă atât secvența semnal cât și prop peptida care inactivează enzimă și este cilvată doar în locul final al activității enzimei. Comparațiile secvențelor nu au produs homologii cu fosfolipazele A! cunoscute anterior, în afară de o secvență consens de 5 aminoacizi (GxSxG), care este găsită în toate lipazele și fosfolipazele și este discutată ca un situs de legare pentru lipide sau fosfolipide. Mai departe, secvențele amonte și aval ale PLA, au fost stabilite prin PCR invers (fig. 1).
Astfel, ADN-ul genomic a fost tăiat cu endonucleaze de restricție, ligat cu T4 ligaza și amplificat în final cu primeri inversi. Pentru amplificarea regiunii amonte a PLA1 prin PCR inversă, a fost utilizat ADN genomic tăiat cu endonucleaza de restricție Sspl. Astfel, a putut fi stabilită o regiune amonte de 275 baze și identificate elemente promotori. La poziția -136, există o casetă CAAT, care are o distanță similară față de startul translației ca și casetele CCAAT ale genelor histonei (-141 și -151) ale Tetrahymena găsite de Brunk și Sadler (1990).
A fost identificată la poziția -55 o casetă TATA, care stabilește punctul exact de pornire al transcripției în genele eucariote. Secvența acesteia corespunde secvențelor consens găsite la eucariote. Pentru amplificarea regiunii avală, care conține terminatorul pentru transcripția PLA! din Tetrahymena, prin PCR invers, s-a utilizat ADN genomic tăiat cu BamHI. Astfel, în plus față de regiunea aval cunoscută din 3'-RACE, au putut fi stabilite alte 222 baze (fig. 3).
RO 122298 Β1
LISTA SECVENȚELOR <I10> Cilian AG <120> SECVENȚA ADN A ENI2MEI FOSFOLIPAZA Αχ DE TETRAHYMENA CILIATE SI UTILIZAREA ACESTEIA <130> 020414wo MB/BM <140> PCT/EP02/00578 <141> 2002-01-22 <160> 9 <17O> Patentii» Ver. 2.1 <210> 1 <211> 963 <212> ADN <213> Tetrahymena therraophila <400> 1 atgaacaaga ctctcatctt agctttagtt gttgttttgg ctttaactgc caccaccttg 60 gttgctttcc acaaccactc tcacaacatc agagttgact aagaccccgc cactetcttc 120 aagcaattca agcaaactta caataagaag tatgctgatg ctactttcga aacctacaga 180 ttcggtgtct tcacccaaaa cttagaaatc gtcaagactg actctacttt cggtgtcacc 240 taattcatgg acttaactcc tgctgaattc gctcaacaat tcctcacttt acacgaaaag 300 gttaacagca ccgaagttta cagagcttaa ggtgaagcta ccgaagttga ctggactgcc 360 aagggtaagg tcacccctgt taagaactaa ggttcttgtg gttcctgctg ggctttctcc 420 accattggtg ccgttgaatc tgctctttgg attgctggtc aaggtgaata aaacactctt 480 aaccttgctg aataagaata agttgactgt gctaagtccc ccaagtacga ctctgaaggt 540 tgcaacggtg gttggatggt tgaaggtttc aagtacatca tcgacaacaa gatctcctaa 600 actgctaact atccctacac tgctaaggat ggtaagtgca aggacacctc ttccttcaag 660 aagttetcta tttctaagta cgctgaaatc ccctaaggtg actgcaactc cctcaâctct 720 gccttagaac aaggtcctat ctccgttgct gttgatgcca ccaacttcta attctacact 780 tctggtgtct ttaaaaactg caaggccaac ctcaaccacg gtgtcctctt agttgccaac 840 gttgactctt ctctcaagat caagaactcc tggggtcctt cttggggtga aaagggtttc 900 atcagattag ctgccggtaa cacttgcggt gtctgcaatg ctgcctctta ccctattgtt 960 tga 963 <210> 2 <211> 275 <212> ADN <213> Tetrahymena thermophila <400> 2 aatatttatc aatgctactt ataattcttt tagtatgaga tatgatatgc tctttctctg 60 ctagacttaa cttatgacat ttgaactttt aataaaagaa ttttttttat taaaaagcag 120 agatttttaa tagaagaatc aatgactcat gaatttaata aagattttca agtgttttct 180 aataccgact agctttataa attcacttat taatcaacga tataaaaatt atattaacaa 240 atcaataaat aaaaaaataa ataaaaacaa aacaa 275 <210> 3 <211> 171 <212> ADN <213> Tetrahymena thermophila
RO 122298 Β1 <212> ADN <213> Tetrahyroena thermophiia <400> 4 aatatttate aatgctactt ataattcttt tagtatgaga tatgatatgc tctttctctg ctagacttaa cttatgaeat ttgaactttt aataaaagaa ttttttttat taaaaagcag agatttttaa tagaagaatc aatgactcat gaatttaata aagattttca agtgttttct aataccgact agctttataa attcacttat taatcaacga tataaaaatt atattaacaa atcaataaat aaaaaaataa ataaaaacaa aacaaatgaa caagactctc atcttagctt tagttgttgt tttggcttta actgccacca ccttggttgc tttccacaac cactctcaca acatcagagt tgactaagac cccgccactc tcttcaagca attcaagcaa acttacaata agaagtatgc tgatgctact ttcgaaacct acagattcgg tgtcttcacc caaaacttag aaatcgtcaa gactgactct actttcggtg tcacctaatt catggactta actcctgctg aattcgctca acaattcctc actttcacga aaaggttaac agcaccgaag tttacagagc ttaaggtgaa gctaccgaag ttgactggac tgccaagggt aaggtcaccc ctgttaagaa ctaaggttct tgtggttcct gctgggcttt ctccaccatt ggtgccgttg aatctgctct ttggattgct ggtcaaggtg aataaaacac tcttaacctt gctgaataag aataagttga ctgtgctaag tcccccaagt acgactctga aggttgcaac ggtggttgga tggttgaagg tttcaagtac atcatcgaca acaagatctc ctaaactgct aactatccct acactgctaa ggatggtaag tgcaaggaca cctcttcctt caagaagttc tctatttcta agtacgctga aatcccctaa ggtgactgca actcectcaa ctctgcctta gaacaaggtc ctatctccgt tgctgttgat gccaccaact tctaattcta cacttctggt gtctttaaaa actgcaaggc caacctcaac cacggtgtcc tcttaqttgc caacgttgac tcttctctca agatcaagaa ctcctggggt ccttcttggg gtgaaaaggg tttcatcaga ttagctgccg gtaacacttg cggtgtctgc aatgctgcct cttaccctat tgtttgaaaa aacataatcc aaattaaaaa aaattactca aaactgataa tataaaaaat taattttcat aattttaatg taaataaata cctttatatt tgacgttttg tactcaaaat aaattaaagt taacaaacca tatttattta attctacttt tcaattttta aaaatata <210> 5 <211> 320 <212> PRT <213> Tetrahyroena thermophiia <400> 5
Met 1 Asn Lys Thr Leu 5 Ile Leu Ala Leu Val 10 Gly Val Leu Ala Leu 15 Thr
Ala Thr Thr Leu 20 Val Ala Phe His Asn 25 His Ser His Asn Ile 30 Arg Val
Asp Gin Asp 35 Pro Ala Thr Leu Phe 40 Lys Gin Phe Lys Gin 45 Thr Tyr Asn
Lys Lys 50 Tyr Ala Asp Pro Thr 55 Phe Glu Thr Tyr Arg 60 Phe Gly Val Phe
Thr 65 Gin Asn Leu Glu Ile 70 Val Lys Thr Asp Ser 75 Thr Phe Gly Val Thr 80
Gin Phe Met Asp Leu 85 Thr Pro Ala Glu Phe 90 Ala Gin Gin Phe Leu 95 Thr
Leu His Glu Lys 100 val Asn Ser Thr Glu 105 Val Tyr Arg Ala Gin 110 Gly Glu
Ala Thr Glu 115 Val Asp Trp Thr Ala 120 Lys Gly Lys Val Thr 125 Pro Val Lys
Asn Gin 130 Gly Ser Cys Gly Ser 135 Cys Trp Ala Phe Ser 140 Thr Ile Gly Ala
Val 145 Glu Ser Ala Leu Leu 150 Ile Ala Gly Gin Gly 155 Glu Gin Asn Thr Leu 160
Asn Leu Ala Glu Gin Glu Leu Val Asp Cys Ala Lys Ser Pro Lys Tyr
RO 122298 Β1
165 170 175 1
Asp Ser Glu Gly Cys Asn Gly Gly Trp Met Val Glu Gly Phe Lys Tyr
180 185 190 3
Ile Ile Asp Asn Lys Ile Ser Gin Thr Ala Asn Tyr Pro Tyr Thr Ala
195 200 205 5
Lys Asp Gly Lys Cys Lys Asp Thr Ser Ser Phe Lys Lys Phe Ser Ile
210 215 220 7
Ser Lys Tyr Ala Glu Ile Pro Gin Gly Asp Cys Asn Ser Leu Asn Ser
225 230 235 240
Ala Leu Glu Gin Gly Pro Ile Ser Val Ala Val Asp Ala Thr Asn Phe 9
245 250 255
Gin Phe Tyr Thr Ser Gly val Phe Lys Asn Cys Lys Ala Asn Leu Asn 11
260 265 270
His Gly Val Leu Leu Val Ala Asn Val Asp Ser Ser Leu Lys Ile Lys 13
275 280 285
Asn Ser Trp Gly Pro Ser Trp Gly Glu Lys Gly Phe Ile Arg Leu Ala
290 295 300 15
Ala Gly Asn Thr Cys Gly Val Cys Asn Ala Ala Ser Tyr Pro Ile Val
305 310 315 320 17
<210> 6
<21l> 110 <212> PRT <213> Tetrahymena thermophila 21
<400> 6 Met Asn 1 Lys Thr Leu 5 Ile Leu Ala Leu Val 10 Gly Val Leu Ala Leu 15 Thr 23
Ala Thr Thr Leu 20 Val Ala Phe His Asn 25 His Ser His Asn Ile 30 Arg Val 25
Asp Gin Asp 35 Pro Ala Thr Leu Phe 40 Lys Gin Phe Lys Gin 45 Thr Tyr Asn 27
Lys Lys 50 Tyr Ala Asp Pro Thr 55 Phe Glu Thr Tyr Arg 60 Phe Gly Val Phe 29
Thr 65 Gin Asn Leu Glu Ile 70 Val Lys Thr Asp Ser 75 Thr Phe Gly Val Thr 80 31
Gin Phe Met Asp Leu 85 Thr Pro Ala Glu Phe 90 Ala Gin Gin Phe Leu 95 Thr 33
Leu His Glu Lys 100 Val Asn Ser Thr Glu 105 Val Tyr Arg Ala Gin 110
<210> 7 <211> 210 37 <212> PRT <213> Tetrahymena thermophila <400> 7 39
RO 122298 Β1
Gly 1 Glu Ala Thr Glu 5 Val Asp Trp Thr Ala 10 Lys Giy Lys Val Thr 15 Pro
Val Lys Asn Gin 20 Gly Ser Cys Gly Ser 25 Cys Trp Ala Phe Ser 30 Thr Ile
Gly Ala Val 35 Glu Ser Ala Leu Leu 40 Ile Ala dy Gin Gly 45 Glu Gin Asn
Thr Leu 50 Asn Leu Ala Glu Gin 55 Glu Leu Val Asp cys 60 Ala Lys Ser Pro
Lys 65 Tyr Asp Ser Glu Gly 70 Cys Asn Gly Gly Trp 75 Met Val Glu Gly Phe 80
Lys Tyr Ile Ile Asp 85 Asn Lys Ile Ser Gin 90 Thr Ala Asn Tyr Pro 95 Tyr
Thr Ala Lys Asp 100 Gly Lys Cys Lys Asp 105 Thr Ser Ser Phe Lys 110 Lys Phe
Ser Ile Ser 115 Lys Tyr Ala Glu Ile 120 Pro Gin Gly Asp Cys 125 Asn Ser Leu
Asn Ser 130 Ala Leu Glu Gin Gly 135 Pro Ile Ser Val Ala 140 val Asp Ala Thr
Asn 145 Phe Gin Phe Tyr Thr 150 Ser Gly Val Phe Lys 155 Asn Cys Lys Ala Asn 160
Leu Asn His Gly Val 165 Leu Leu Val Ala Asn 170 Val Asp Ser Ser Leu 175 Lys
Ile Lys Asn Ser 180 Trp Gly Pro Ser Trp 185 Gly Glu Lys Gly Phe 190 Ile Arg
Leu Ala Ala 195 Gly Asn Thr Cys Gly 200 Val Cys Asn Ala Ala 20S Ser Tyr Pro
Ile Val 210 <210> 8 <2U> 330 <212> ADU <213> Tetrahymena therroophila <400> 8 atgaacaaga ctctcatctt agctttagtt gttgttttgg ctttaactgc caccaccttg gttgctttcc acaaccactc tcacaacatc agagttgact aagaccccgc cactctcttc aagcaattca agcaaactta caataagaag tatgctgatg ctactttcga aacctacaga ttcggtgtct tcacccaaaa cttagaaatc gtcaagactg actctacttt cggtgtcacc taattcatgg acttaactcc tgctgaattc gctcaacaat tcctcacttt acacgaaaag gttaacagca ccgaagttta cagagcttaa <210> 9 <211> 633 <212> ADN <213> Tetrahymena therroophila <400> 9 ggtgaagcta ccgaagttga ctggactgcc aagggtaagg tcacccctgt taagaactaa ggttcttgtg gttcctgctg ggctttctcc accattggtg ccgttgaatc tgctctttgg attgctggtc aaggtgaata aaacactctt aaccttgctg aataagaata agttgactgt gctaagtccc ccaagtacga ctctgaaggt tgcaacggtg gttggatggt tgaaggtttc
RO 122298 Β1 aagtacatca tcgacaacaa gatctcctaa actgctaact atccctacac tgctaaggat 300 ggtaagtgca aggacacotc ttccttcaag aagttctcta tttctaagta cgctgaaatc 360 ccctaaggtg actgcaactc cctcaactct gccttagaac aaggtcctat ctccgttgct 420 gttgatgcca ccaacttcta attctacact tctggtgtct ttaaaaactg caaggccaac 480 ctcaaccacg gtgtcctctt agttgccaac gttgactctt ctctcaagat caagaactcc 540 tggggtcctt cttggggtga aaagggtttc atcagattag ctgccggtaa cacttgcggt 600 gtctgcaatg ctgcctctta ccctattgtt tga 633

Claims (9)

  1. Revendicări
    1. Acid nucleic care cuprinde regiunile de codificare și necodificare, caracterizat prin aceea că are SECV. ID. NR 4, în care respectiva regiune codifică fosfolipaza At din Tetrahymena thermophila având SECV. ID. NR. 5 iar respectivele regiuni de necodificare reprezintă regiunile în amontele și în avalul acestei gene.
  2. 2. Acidul nucleic conform revendicării 1, în care respectivele regiuni de necodificare din amonte și în aval au SECV. ID NR. 2 și 3, iar acidul nucleic al regiunii de codificare are SECV. IDNR. 1,8 și/sau 9.
  3. 3. Secvență semnal N-terminală a PLA., având SECV. ID. NR. 5 conform revendicării 1, care are SECV. ID NR. 6.
  4. 4. Proteină de fosfolipază A, având secvența aminoacidă conform SECV. ID NR. 7.
  5. 5. Utilizarea unui acid nucleic conform revendicărilor 1 la 3, sau părți ale acestuia pentru expresia omoloagă sau heterologă a peptidelor și proteinelor recombinante și pentru recombinarea omoloagă sau heterologă de tip knock-out sau înlocuire genică.
  6. 6. Metodă pentru expresia omoloagă sau heterologă a proteinelor și peptidelor, și pentru recombinarea omoloagă sau heterologă de tip knock-out sau înlocuire genică, în care ciliatele sunt transfectate cu un acid nucleic conform oricăreia dintre revendicările 1 la 3.
  7. 7. Metodă conform revendicării 6, în care acizii nucleici menționați sau părți ale acestora sunt combinați cu amplificatori, promotori, operatori, origini, terminatori, gene de rezistență la antibiotice, uzuale pentru expresia omoloagă sau heterologă a proteinelor sau cu alți acizi nucleici sau fragmente de ADN sau alte tipuri de secvențe de viroizi, virusuri, bacterii, arheozoare, protozoare, fungi, plante, animale sau oameni.
  8. 8. Metodă conform revendicării 6 și/sau 7, în care un acid nucleic este conținut într-un vector, o plasmidă, o cosmidă, un cromozom sau minicromozom, un transpozon, un element IS, un ADNr, sau oricare altă formă circulară sau liniară de ADN sau ARN.
  9. 9. Vectori, plasmide, cosmide, cromozomi sau minicromozomi, transpozoni, elemente IS, ADNr sau alte tipuri circulare sau liniare de ADN sau ARN, conținând cel puțin unul dintre acizii nucleici conform cu cel puțin una din revendicările de la 1 la 3.
ROA200300631A 2001-01-22 2002-01-22 Secvenţă adn a enzimei fosfolipază a1 din tetrahymena termophila şi utilizarea acesteia RO122298B1 (ro)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE10105152A DE10105152A1 (de) 2001-01-22 2001-01-22 Eine DNA-Sequenz des Enzyms Phospholipase A1 aus Ciliaten und die Verwendung dieser
PCT/EP2002/000578 WO2002057459A2 (de) 2001-01-22 2002-01-22 Eine dna-sequenz des enzyms phospholipase a1 aus dem ciliaten tetrahymena und die verwendung dieser

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RO122298B1 true RO122298B1 (ro) 2009-03-30

Family

ID=7672908

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ROA200300631A RO122298B1 (ro) 2001-01-22 2002-01-22 Secvenţă adn a enzimei fosfolipază a1 din tetrahymena termophila şi utilizarea acesteia

Country Status (17)

Country Link
US (1) US7045330B2 (ro)
EP (1) EP1360306B1 (ro)
JP (1) JP4295508B2 (ro)
KR (1) KR100855645B1 (ro)
AT (1) ATE346155T1 (ro)
AU (1) AU2002250842B2 (ro)
CA (1) CA2435323C (ro)
CY (1) CY1106337T1 (ro)
CZ (1) CZ20031991A3 (ro)
DE (2) DE10105152A1 (ro)
DK (1) DK1360306T3 (ro)
ES (1) ES2277615T3 (ro)
HU (1) HUP0302801A3 (ro)
PL (1) PL206037B1 (ro)
PT (1) PT1360306E (ro)
RO (1) RO122298B1 (ro)
WO (1) WO2002057459A2 (ro)

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR100774367B1 (ko) * 2005-08-31 2007-11-08 인하대학교 산학협력단 섬모충류 특이적 프라이머 및 이를 이용한 섬모충류 검출방법
KR101038914B1 (ko) * 2008-10-22 2011-06-10 김세준 앨범대지 접착용 테이프
TR201813880A2 (tr) 2018-09-25 2020-04-21 Anadolu Üniversitesi̇ TETRAHYMENA THERMOPHILA YAPAY KROMOZOMU (TtAC1) VE REKOMBINANT PROTEIN ÜRETIMI IÇIN KULLANIMI

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH10155493A (ja) * 1996-10-04 1998-06-16 Sankyo Co Ltd アスペルギルス属由来のホスホリパーゼa1をコードする遺伝子

Also Published As

Publication number Publication date
EP1360306B1 (de) 2006-11-22
HUP0302801A2 (hu) 2003-11-28
JP4295508B2 (ja) 2009-07-15
WO2002057459A2 (de) 2002-07-25
ATE346155T1 (de) 2006-12-15
PT1360306E (pt) 2007-02-28
CZ20031991A3 (cs) 2004-03-17
JP2004525622A (ja) 2004-08-26
DK1360306T3 (da) 2007-03-19
DE10105152A1 (de) 2002-07-25
EP1360306A2 (de) 2003-11-12
PL206037B1 (pl) 2010-06-30
WO2002057459A3 (de) 2002-12-12
KR20030087627A (ko) 2003-11-14
DE50208775D1 (de) 2007-01-04
CY1106337T1 (el) 2011-10-12
US20040115673A1 (en) 2004-06-17
CA2435323C (en) 2008-09-02
US7045330B2 (en) 2006-05-16
AU2002250842B2 (en) 2007-11-22
KR100855645B1 (ko) 2008-09-03
PL362475A1 (en) 2004-11-02
HUP0302801A3 (en) 2011-01-28
CA2435323A1 (en) 2002-07-25
ES2277615T3 (es) 2007-07-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN102239183B (zh) 大量分泌的蛋白的筛选和它们作为融合配偶体在重组蛋白制备中应用
ES2370657T3 (es) Escisión de precursores de insulinas mediante una variante de tripsina.
US7276605B2 (en) Method for producing recombinant trypsin
CZ304969B6 (cs) Způsob přípravy rekombinantní proteinázy K, vektor obsahující DNA kódující zymogenní prekurzor proteinázy K a kvasinková hostitelská buňka transformovaná tímto vektorem
HUE030279T2 (en) Cloning, expression and use of acid lysophospholipases
CA2435323C (en) Dna sequence of the enzyme phospholipase a1 of ciliate tetrahymena, and the use of the same
CN108251401B (zh) 脂肪酶及其应用
KR100714116B1 (ko) 췌장의 프로카복시펩티다제 b를 사용한 인슐린의 제조
Zavalova et al. Destabilase-lysozyme of medicinal leech. Multifunctionality of recombinant protein
US20060127973A1 (en) Dna sequences of major secreted proteins from the ciliate tetrahymena and use thereof
ES2763650T3 (es) Proteasas aspárticas
Salvi et al. Cloning and characterization of the gene encoding an esterase from Spirulina platensis
AU781876B2 (en) Beta-hexosaminidase, DNA sequence from ciliates for coding the same and use thereof
CN108103045B (zh) 脂肪酶及其应用
Yoshigi et al. Structure of barley β-amylase and expression in Escherichia coli of cDNA
JP2011167117A (ja) 耐熱性リパーゼ遺伝子、耐熱性リパーゼ、耐熱性リパーゼ発現ベクター、組み換え生物、耐熱性リパーゼの発現方法、耐熱性リパーゼの反応方法、および耐熱性組成物
HK1124341B (en) Cleavage of precursors of insulins by a variant of trypsin
KR20140144356A (ko) 밍크고래의 유전체로부터 분리된 신규의 당화 효소 및 이의 제조방법