PL97723B1 - Sposob wytwarzania rekombinanta szczepu wirusa grypy - Google Patents
Sposob wytwarzania rekombinanta szczepu wirusa grypy Download PDFInfo
- Publication number
- PL97723B1 PL97723B1 PL1974176013A PL17601374A PL97723B1 PL 97723 B1 PL97723 B1 PL 97723B1 PL 1974176013 A PL1974176013 A PL 1974176013A PL 17601374 A PL17601374 A PL 17601374A PL 97723 B1 PL97723 B1 PL 97723B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- strain
- virus
- virulent
- recombinant
- strains
- Prior art date
Links
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 title claims description 9
- 241000700605 Viruses Species 0.000 claims description 56
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 48
- 235000013601 eggs Nutrition 0.000 claims description 41
- 230000000890 antigenic effect Effects 0.000 claims description 15
- 206010022000 influenza Diseases 0.000 claims description 14
- 230000035931 haemagglutination Effects 0.000 claims description 12
- 230000010076 replication Effects 0.000 claims description 10
- 238000011534 incubation Methods 0.000 claims description 9
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 claims description 9
- 210000001161 mammalian embryo Anatomy 0.000 claims description 8
- 239000000427 antigen Substances 0.000 claims description 7
- 102000036639 antigens Human genes 0.000 claims description 7
- 108091007433 antigens Proteins 0.000 claims description 7
- 241000712461 unidentified influenza virus Species 0.000 claims description 7
- 241000287828 Gallus gallus Species 0.000 claims description 6
- 238000002955 isolation Methods 0.000 claims description 6
- 230000008569 process Effects 0.000 claims description 6
- 208000037797 influenza A Diseases 0.000 claims description 5
- 230000005764 inhibitory process Effects 0.000 claims description 5
- 238000011109 contamination Methods 0.000 claims description 3
- 241000283973 Oryctolagus cuniculus Species 0.000 claims description 2
- 238000003556 assay Methods 0.000 claims description 2
- 210000003743 erythrocyte Anatomy 0.000 claims description 2
- 101710154606 Hemagglutinin Proteins 0.000 claims 1
- 101710093908 Outer capsid protein VP4 Proteins 0.000 claims 1
- 101710135467 Outer capsid protein sigma-1 Proteins 0.000 claims 1
- 101710176177 Protein A56 Proteins 0.000 claims 1
- 238000003113 dilution method Methods 0.000 claims 1
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 claims 1
- 239000000185 hemagglutinin Substances 0.000 claims 1
- 210000004201 immune sera Anatomy 0.000 claims 1
- 229940042743 immune sera Drugs 0.000 claims 1
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 claims 1
- 238000002604 ultrasonography Methods 0.000 claims 1
- 229960005486 vaccine Drugs 0.000 description 17
- 230000001018 virulence Effects 0.000 description 14
- 210000002257 embryonic structure Anatomy 0.000 description 13
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 12
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 8
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 8
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 7
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 6
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 5
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 5
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 5
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 5
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 4
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 4
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 description 4
- UCSJYZPVAKXKNQ-HZYVHMACSA-N streptomycin Chemical compound CN[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](CO)O[C@H]1O[C@@H]1[C@](C=O)(O)[C@H](C)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](NC(N)=N)[C@H](O)[C@@H](NC(N)=N)[C@H](O)[C@H]1O UCSJYZPVAKXKNQ-HZYVHMACSA-N 0.000 description 4
- 101001126084 Homo sapiens Piwi-like protein 2 Proteins 0.000 description 3
- 102100029365 Piwi-like protein 2 Human genes 0.000 description 3
- GYMWQLRSSDFGEQ-ADRAWKNSSA-N [(3e,8r,9s,10r,13s,14s,17r)-13-ethyl-17-ethynyl-3-hydroxyimino-1,2,6,7,8,9,10,11,12,14,15,16-dodecahydrocyclopenta[a]phenanthren-17-yl] acetate;(8r,9s,13s,14s,17r)-17-ethynyl-13-methyl-7,8,9,11,12,14,15,16-octahydro-6h-cyclopenta[a]phenanthrene-3,17-diol Chemical compound OC1=CC=C2[C@H]3CC[C@](C)([C@](CC4)(O)C#C)[C@@H]4[C@@H]3CCC2=C1.O/N=C/1CC[C@@H]2[C@H]3CC[C@](CC)([C@](CC4)(OC(C)=O)C#C)[C@@H]4[C@@H]3CCC2=C\1 GYMWQLRSSDFGEQ-ADRAWKNSSA-N 0.000 description 3
- 230000009471 action Effects 0.000 description 3
- 239000003242 anti bacterial agent Substances 0.000 description 3
- 229940088710 antibiotic agent Drugs 0.000 description 3
- LOKCTEFSRHRXRJ-UHFFFAOYSA-I dipotassium trisodium dihydrogen phosphate hydrogen phosphate dichloride Chemical compound P(=O)(O)(O)[O-].[K+].P(=O)(O)([O-])[O-].[Na+].[Na+].[Cl-].[K+].[Cl-].[Na+] LOKCTEFSRHRXRJ-UHFFFAOYSA-I 0.000 description 3
- 230000002068 genetic effect Effects 0.000 description 3
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 3
- 239000002953 phosphate buffered saline Substances 0.000 description 3
- 238000003892 spreading Methods 0.000 description 3
- 230000007480 spreading Effects 0.000 description 3
- XEEYBQQBJWHFJM-UHFFFAOYSA-N Iron Chemical compound [Fe] XEEYBQQBJWHFJM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241001494479 Pecora Species 0.000 description 2
- 229930182555 Penicillin Natural products 0.000 description 2
- JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N Penicillin G Chemical compound N([C@H]1[C@H]2SC([C@@H](N2C1=O)C(O)=O)(C)C)C(=O)CC1=CC=CC=C1 JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N 0.000 description 2
- 206010037660 Pyrexia Diseases 0.000 description 2
- 235000017304 Ruaghas Nutrition 0.000 description 2
- 241000554738 Rusa Species 0.000 description 2
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 2
- 238000009395 breeding Methods 0.000 description 2
- 230000001488 breeding effect Effects 0.000 description 2
- 244000309466 calf Species 0.000 description 2
- 230000001413 cellular effect Effects 0.000 description 2
- 210000000991 chicken egg Anatomy 0.000 description 2
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 2
- 230000000977 initiatory effect Effects 0.000 description 2
- 230000000670 limiting effect Effects 0.000 description 2
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 2
- 230000001717 pathogenic effect Effects 0.000 description 2
- 229940049954 penicillin Drugs 0.000 description 2
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 2
- 230000000644 propagated effect Effects 0.000 description 2
- 230000006798 recombination Effects 0.000 description 2
- 230000002829 reductive effect Effects 0.000 description 2
- 230000000717 retained effect Effects 0.000 description 2
- 229960005322 streptomycin Drugs 0.000 description 2
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 2
- 210000002700 urine Anatomy 0.000 description 2
- 238000002255 vaccination Methods 0.000 description 2
- 230000029812 viral genome replication Effects 0.000 description 2
- 230000003612 virological effect Effects 0.000 description 2
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 2
- 241001143500 Aceraceae Species 0.000 description 1
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 1
- 241000288673 Chiroptera Species 0.000 description 1
- 235000010523 Cicer arietinum Nutrition 0.000 description 1
- 244000045195 Cicer arietinum Species 0.000 description 1
- FBPFZTCFMRRESA-FSIIMWSLSA-N D-Glucitol Natural products OC[C@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)CO FBPFZTCFMRRESA-FSIIMWSLSA-N 0.000 description 1
- 241000196324 Embryophyta Species 0.000 description 1
- 241000283074 Equus asinus Species 0.000 description 1
- 108010010803 Gelatin Proteins 0.000 description 1
- 206010019233 Headaches Diseases 0.000 description 1
- 241000282412 Homo Species 0.000 description 1
- 235000003332 Ilex aquifolium Nutrition 0.000 description 1
- 235000002296 Ilex sandwicensis Nutrition 0.000 description 1
- 235000002294 Ilex volkensiana Nutrition 0.000 description 1
- 241000712431 Influenza A virus Species 0.000 description 1
- 241000371980 Influenza B virus (B/Shanghai/361/2002) Species 0.000 description 1
- 206010025421 Macule Diseases 0.000 description 1
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 1
- 206010027940 Mood altered Diseases 0.000 description 1
- 102000005348 Neuraminidase Human genes 0.000 description 1
- 108010006232 Neuraminidase Proteins 0.000 description 1
- 206010068319 Oropharyngeal pain Diseases 0.000 description 1
- 229910019142 PO4 Inorganic materials 0.000 description 1
- 201000007100 Pharyngitis Diseases 0.000 description 1
- 208000035415 Reinfection Diseases 0.000 description 1
- 208000036071 Rhinorrhea Diseases 0.000 description 1
- 206010039101 Rhinorrhoea Diseases 0.000 description 1
- 235000004789 Rosa xanthina Nutrition 0.000 description 1
- 241000109329 Rosa xanthina Species 0.000 description 1
- 241000282898 Sus scrofa Species 0.000 description 1
- XSQUKJJJFZCRTK-UHFFFAOYSA-N Urea Chemical compound NC(N)=O XSQUKJJJFZCRTK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 206010046865 Vaccinia virus infection Diseases 0.000 description 1
- 230000003213 activating effect Effects 0.000 description 1
- 230000006978 adaptation Effects 0.000 description 1
- 239000000443 aerosol Substances 0.000 description 1
- 239000000910 agglutinin Substances 0.000 description 1
- 244000052616 bacterial pathogen Species 0.000 description 1
- 229910052788 barium Inorganic materials 0.000 description 1
- DSAJWYNOEDNPEQ-UHFFFAOYSA-N barium atom Chemical compound [Ba] DSAJWYNOEDNPEQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 1
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 1
- 239000004202 carbamide Substances 0.000 description 1
- 238000005266 casting Methods 0.000 description 1
- 238000004140 cleaning Methods 0.000 description 1
- 239000000470 constituent Substances 0.000 description 1
- 238000005520 cutting process Methods 0.000 description 1
- 239000003085 diluting agent Substances 0.000 description 1
- 230000003292 diminished effect Effects 0.000 description 1
- 230000008030 elimination Effects 0.000 description 1
- 238000003379 elimination reaction Methods 0.000 description 1
- 235000013305 food Nutrition 0.000 description 1
- 229920000159 gelatin Polymers 0.000 description 1
- 239000008273 gelatin Substances 0.000 description 1
- 235000019322 gelatine Nutrition 0.000 description 1
- 235000011852 gelatine desserts Nutrition 0.000 description 1
- 210000004602 germ cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000001492 haemagglutinating effect Effects 0.000 description 1
- 231100000869 headache Toxicity 0.000 description 1
- 230000036541 health Effects 0.000 description 1
- 210000000003 hoof Anatomy 0.000 description 1
- 238000005286 illumination Methods 0.000 description 1
- 230000036039 immunity Effects 0.000 description 1
- 230000002163 immunogen Effects 0.000 description 1
- 230000006872 improvement Effects 0.000 description 1
- 230000002779 inactivation Effects 0.000 description 1
- 230000002458 infectious effect Effects 0.000 description 1
- 230000001524 infective effect Effects 0.000 description 1
- 229960003971 influenza vaccine Drugs 0.000 description 1
- 230000002401 inhibitory effect Effects 0.000 description 1
- 238000011835 investigation Methods 0.000 description 1
- 229910052742 iron Inorganic materials 0.000 description 1
- 210000003734 kidney Anatomy 0.000 description 1
- 210000003292 kidney cell Anatomy 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- 238000010899 nucleation Methods 0.000 description 1
- 230000008520 organization Effects 0.000 description 1
- 244000045947 parasite Species 0.000 description 1
- 230000007918 pathogenicity Effects 0.000 description 1
- NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K phosphate Chemical compound [O-]P([O-])([O-])=O NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 1
- 239000010452 phosphate Substances 0.000 description 1
- 230000007505 plaque formation Effects 0.000 description 1
- 238000007747 plating Methods 0.000 description 1
- 230000005180 public health Effects 0.000 description 1
- 238000005215 recombination Methods 0.000 description 1
- 230000000241 respiratory effect Effects 0.000 description 1
- 210000002345 respiratory system Anatomy 0.000 description 1
- 238000009666 routine test Methods 0.000 description 1
- 230000028327 secretion Effects 0.000 description 1
- 238000007086 side reaction Methods 0.000 description 1
- 239000002002 slurry Substances 0.000 description 1
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 1
- 239000000600 sorbitol Substances 0.000 description 1
- 238000009331 sowing Methods 0.000 description 1
- 239000003381 stabilizer Substances 0.000 description 1
- 231100000331 toxic Toxicity 0.000 description 1
- 230000002588 toxic effect Effects 0.000 description 1
- 208000007089 vaccinia Diseases 0.000 description 1
- 239000005723 virus inoculator Substances 0.000 description 1
- 230000003313 weakening effect Effects 0.000 description 1
- 230000036642 wellbeing Effects 0.000 description 1
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K39/12—Viral antigens
- A61K39/145—Orthomyxoviridae, e.g. influenza virus
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K39/12—Viral antigens
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K2039/51—Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
- A61K2039/525—Virus
- A61K2039/5254—Virus avirulent or attenuated
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K2039/54—Medicinal preparations containing antigens or antibodies characterised by the route of administration
- A61K2039/541—Mucosal route
- A61K2039/543—Mucosal route intranasal
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2760/00—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses negative-sense
- C12N2760/00011—Details
- C12N2760/16011—Orthomyxoviridae
- C12N2760/16111—Influenzavirus A, i.e. influenza A virus
- C12N2760/16134—Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Virology (AREA)
- Mycology (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Immunology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Public Health (AREA)
- Pulmonology (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Description
Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarza¬
nia rekombinanta szczepu wirusa grypy, przezna¬
czonego zwlaszcza do szczepionek przeciwgrypo-
wych.
Grypa jest choroba wirusowa górnych dróg od¬
dechowych, objawiajaca sie goraczka, bólem glowy,
bólami gardla, bólem irniesni oraz zmeczeniem.
W odróznieniu od szeregu chorób wirusowych, wi¬
rus grypy pozostawia tylko krótkotrwala specy¬
ficzna odpornosc u osobnika, dlatego tez notuje
sie ponowne zachorowania, gdy dochodzi do epi¬
demii. W ostatnich latach zaczeto przeto przepro¬
wadzac szczepienia pirzeciwgrypowe w celu wywo¬
lania odpornosci na panujacy szczep wirusa grypy,
a przez to zapobiegac i ograniczac zachorowania
m grype w czasie epidemii.
W latach 40-tych z powodzeniem stosowano in-
aktywowane szczepionki przeciwgrypowe. Szcze¬
pionki te mialy jednak te niedogodnosc, ze wytwa¬
rzane byly w oparciu o zabite wirusy i dlatego tez
dla uzyskania odpowiedniego stezenia przeciwcial
musialy byc stosowane w duzych ilosciach. Ponie¬
waz poszczególne epidemie wywolywane sa anty-
genowo róznymi typami wirusa grypy, nie jest
mozliwe przewidzenie typu wirusa, który wywola
nastepna epidemie, a co za tym idzie wyproduko¬
wanie odpowiedniego zapasu wlasciwej szczepion¬
ki. Wymaga to szybkiego adaptowania sie do no¬
wych epidemii wybuchajacych na swiecie.
2
Zaproponowano przeto szczepionki zywych szcze¬
pów wirusa o oslabionej zjadliwosci, w których
szczep wirusa pasazowano w róznych ukladach ko¬
mórkowych, az do uzyskania utraty zdolnosci wy¬
wolywania choroby, a jednoczesnie zachowania
w pelni zdolnosci antygenowych (immunogenicz-
nych) szczepu. Z uwagi na utrzymane zdolnosci
namnazania sie wirusa w organizmie zywym mo¬
zliwe jest stosowanie malej dawki szczepionki, co
w konsekwencji zwalnia od koniecznosci produko¬
wania duzych ilosci szczepionki, oszczedzajac czas
i prace. Dla szczepionek tych wazne jest jednakze,,
zeby odzjadliwione szczepy byly nieszkodliwe i ze¬
by doinfekowanie bylo ograniczone do minimum.
Znana jest genetyczna rekombinacja miedzy róz¬
nymi szczepami grypy w celu uzyskiwania udosko¬
nalonego materialu antygenowego do inaktywowa-
nych lub zywych szczepionek. Oplisano i przebada¬
no na przyklad szczepy hybrydy, pochodzace od
odzjadliwionego oraz od w pelni zjadliwego szcze¬
pu, ale zadna z odmian rekombinanta nie zostala
zaakceptowana do praktycznego stosowania. Przy¬
puszczano, ze korzystne bedzie uzycie szczepu wi¬
rusa grypy, odzjadliwionego przez pasazowanie
w róznych ukladach komórkowych, z róznymi ssa¬
kami wlacznie, ale otrzymane szczepy uznano za
nieprzydatne ze wzgledów bezpieczenstwa, z uwagi
na droge, jaka przeszedl odzjadliwiony szczep ma¬
cierzysty.
97 72397 723
Obecnie stwierdzono, ze odpowiednie i akcepto¬
walne rekombinanty szczepów wirusa grypy mozna
otrzymac z polaczenia wysoce odzjadliwionego
szczepu macierzystego grypy A, zwlaszcza typu
Aj2, ze zjadliwym szczepem macierzystym grypy
A. Jako wysoce odzjadliwiony nalezy stosowac
szczep, który byl pasazowany wylacznie w ho¬
dowlach z jaj kurzych i wykazuje stosunkowo wyso¬
kie namnazanie wirusa w jajach kurzych oraz
zwiekszona zdolnosc tworzenia plytek w komór¬
kach nerkowych cielat. Jako zjadliwy szczep wi¬
rusa grypy A nalezy stosowac szczep, który z dru¬
giej strony wykazuje stosunkowo niskie miano ho¬
dowli, ale pozostaje zasadndczo wolny od zanie¬
czyszczen wirusami ssaków. Tak wyselekcjonowane
szczepy rekomibinanta lacza charakterystyczny
wzrost szczepu wysoce odzjadliwionego z w pelni
zachowanymi wlasnosciami antygenowymi szczepu
zjadliwego. ~
Wysokie odzjadliwienie, wymagane dla szczepu
pierwszego, oznacza, ze ilosc pasazy dla odzjadli-
wienia byla znacznie wieksza od ilosci normalnie
potrzebnej do usuniecia cech patogennych. Otrzy¬
mane wirusy o zmniejszonej zjadliwosci po wielu
pasazach zachowuja w pelni zdolnosc do wytwa¬
rzania przeciwcial, przy czym nie ulega uszkodze¬
niu system antygenowy, powodujacy powstawanie
hemoaglutyniny (H) oraz neuroamidaz (N). T^kie
szczepy nie wykazuja zadnych reakcji ubocznych,
nawet po wprowadzeniu ich do osobników tak
wrazliwych, jakimi sa dzieci i nalezy oczekiwac,
ze odpowiednie próby w pelni wykaza bezpieczne
stosowanie.
Sposobem wedlug wynalazku rekombinant szcze¬
pu wirusa grypy wytwarza sie z odzjadliwionego
szczepu macierzystego wirusa grypy A, który inak-
tywuje sie, pozbawiajac go pierwotnej infektyw-
nosci, zaszczepia pojedyncza hodowle razem ze
zjadliwym szczepem macierzystym, hodowle inku-
buje sie, a nastepnie (rozsiewa klony dla usuniecia
pozostalosci szczepów macierzystych, po. czym po¬
zadany szczep rekombinant izoluje sie.
W sposobie wedlug wynalazku korzystnie stosuje
sie szczep taki, jak wirus A-2, który zostal wyizo¬
lowany 10, a nawet 20 lat temu, aby mogla byc
pewnie .ustalona dostateczna róznica antygenowa
miedzy ostatnio wystepujacym szczepem zjadliwym
a szczepem bezpiecznym. W rzeczywistosci powinna
wystepowac róznica antygenowa miedzy szczepami
macierzystymi o co najmniej 1 antygen, np. wirus
H2 i H8, przy czym wyzsza liczba powinna odpo¬
wiadac ostatnio wystepujacemu szczepowi zjadli¬
wemu.
Oslabienie zjadliwosci szczepu mozna otrzymac
przez pasazowanie, np. na zarodkach jajka kurze¬
go, technika; opisana w japonskim opisie patento¬
wym nr 310.662. W opisie tym przedstawiono wy¬
twarzanie szczepu A/OKUDA)57 (H^N2)> który
otrzymano ze szczepu typu A-2, wyizolowanego
w Osaka, Japonia, w czasie epidemii w roku 1957.
Szczep ten wykazal oslabiona zjadliwosc. W wyzej
wymienionym opisie patentowym opisano ponadto
inny szczep typu A-2, szczep A(KINUQASA)57.
Jeszcze innym odpowiednim szczepem jest szczep
A(JAPAN) 305/57,który zdeponowany zostal w Ame¬
rican Type Culture Collection (ATCC) pod nume¬
rem VR-100.
Szczep OKUDA, o oslabionej zjadliwosci jest
szczepem wirusa, korzystnie stosowanym w spo-
sobie wedlug wynalazku i mozna go ewentualnie
otrzymac z World Health Organisation, WorldInflu-
enza Centre, National Institute of Medical Research,
Mili Hill, gdzie szczep ten, uzyskany w wyniku
280 pasazy na jajach jest zdeponowany i ogólnie
dostepny.
Drugi szczep, potrzebny do rekombinacji sposo¬
bem wedlug wynalazku, moze byc otrzymany droga
selekcji z szeregu szczepów wirusa grypy typu A,
które zachowaly swoja zjadliwosc w stosunku do
czlowieka. Hodowle prowadzi sie na zarodkach jaja
kurzego lub innych, zaakceptowanych przez wladze
kontrolne, np. National Institute for Biological
Standards, Holly Hill, Hampstead. Korzystnie jest,
aby szczep jednak byl mozliwie niedawno wyizolo¬
wany przed okresem produkcji szczepu rekombi-
nanta. Podobienstwo antygenowe miedzy stosowa¬
nymi wirusami grypy do produkcji szczepionek
a wirusami, aktualnie powodujacymi infekcje, daje
mozliwosc uzyskania odpornosci u szczepionych
osobników.
Na przyklad w dacie pierwszenstwa niniejszego
zgloszenia zastosowano z powodzeniem zjadliwy
szczep wirusa A(ENGLAND/42/72) (H8N2). Ostatnio
wyizolowano wirus A(FINLAND)4/74 (H3N2)
i stwierdzono, ze jest on przydatny do wlaczenia
go do replikacji w celu otrzymania szczepionki
aktualnie wystepujacej grypy. Obydwa szczepy zo¬
staly zdeponowane w wyzej wspomnianej miedzy-
narodowej kolekcji w National Institute of Medical
Research w Mili Hill i obecnie sa ogólnie dostepne.
Korzystnie sposobem wedlug wynalazku otrzy¬
muje sie z replikacji szczep wirusa grypy, pocho¬
dzacy z odzjadliwego szczepu A grypy, korzystnie
40 szczepu A-2, takiego jak A(OKUDA)57, który pa-
sazowano wylacznie w hodowlach na zarodkach
jaja kurzego, gdzie stosunkowo silnie namnaza sie,
dajac jednoczesnie zwiekszona zdolnosc tworzenia
plytek w komórkach nerkowych cielaka oraz ze
45 zjadliwego szczepu wirusa A grypy, który wyka¬
zuje stosunkowo niska zdolnosc namnazania w ho¬
dowli wirusa i zasadniczo jest wolny od zanie¬
czyszczajacych wirusów ssaków.
W pewnych przypadkach przed replikacja zjad-
50 liwych i o oslabionej zjadliwosci szczepów, wska¬
zane jest przeprowadzenie rozsiewu klonów, tak
aby kazdy szczep wywodzil sie z pojedynczego
pierwotnego wirusa. Ponadto ze wzgledu na to, ze
deponowany szczep dostepny jest zwykle w formie
55 zliofilizowanej, na wstepie kazdy szczep wirusa
nalezy odtworzyc w odpowiednim srodowisku, ta¬
kim jak sól fizjologiczna buforowana fosforanem oraz
na pozywce fosforowanej z tryptoza, korzystnie
wobecnosci antybiotyków, które zabijaja ewentual-
60 nieobecne bakterie. Po zaszczepieniu doomoczniowo
zarodka kurzego jaja SPF, tj. pozbawionego spe¬
cyficznych chorobotwórczych bakterii i po inku¬
bacji, plyn omoczniowy mozna ekstrahowac i do
czasu zuzytkowania przechowywac w niskiej tem-
65 peraturze.\
Aby zadawalajaco odtworzyc obydwa szczepy na¬
lezy zwrócic uwage na zróznicowanie ioh zdolnosci
namnazania wirusa w zarodkach jaj kurzych, któ¬
re nie moze byc za. duze. Wirus o oslabionej zjad¬
liwosci z duza zdolnoscia namnazania poddaje sie
dzialaniu promieni ultrafioletowych lub promieni
gamma, ewentualnlie ogrzewa, w ten sposób in-
aktywujac w okolo 99% jego infektywnosc, dopro¬
wadzajac zdolnosc namnazania do równej stosun¬
kowo niskiej zdolnosci namnazania szczepu wi¬
rusa zjadliwego. Opisany wyzej sposób oraz inne
sposoby replikacji, w których próbki szczepów wi¬
rusa sa inkubowane razem w jednej hodowli na
jednym zarodku jaja, zostaly opisane w Post-
graduate Medical Journal, 49, 195^199 (1973).
Nalezy zwrócic uwage, ze tych samych szczepów
Wirusa, które poddano replikacji na tego samego
typu komórkach, w tych samych warunkach, ale
w oddzielnych hodowlach, nie mozna calkowicie
odtworzyc, bowiem wykazuja nieco rózne wlasci¬
wosci, takie jak np. zdolnosc namnazania wirusa.
Jednakze ilosc mozliwych replikacji jest ograni¬
czona i przy wlasciwym sposobie postepowania
mozna uzyskac odpowiednie szczepy wirusa.
Jesli zastosuje sie szczep Okuda jako szczep wi¬
rusa macierzystego o oslabionej zjadliwosci,
stwierdzono, ze prawie wszystkie mozliwe szczepy
rekombinanty sa odpowiednie do wytwarzania
szczepionek.
W sposobie wytwarzania rekombinantów szcze¬
pów wedlug wynalazku, szczep macierzysty o osla¬
bionej zjadliwosci poddaje sie dzialaniu promieni
ultrafioletowych, a nastepnie replikuje ze zjad¬
liwym szczepem macierzystym z równoczesnym
zaszczepieniem doomoczniowo hodowli (AOS),
otrzymanych z dziesieciodniowych zarodków jaj
SPF. Po inkubacji do kazdej hodowli dodaje sie
odpornosciowo surowice, korzystnie surowice kró¬
lika lub lasicy lesnej, przygotowana przeciw szcze¬
powi wirusa, o wysokim stopniu czystosci, którego
hemoaglutynina jest antygenowe bardzo zblizona
albo identyczna ze szczepem macierzystym o osla¬
bionej zjadliwosci. Tym sposobem namnazanie wi¬
rusa szczepu macierzystego o zmniejszonej zjadli¬
wosci moze byc tak zmniejszone, ze po replikacji
pozostaje bardzo malo szczepu macierzystego. Ze
wzgledu na to, ze zdolnosc namnazania wirusa
szczepu macierzystego wirusa zjadliwego jest sto¬
sunkowo mala, tym samym nie zachodzi potrzeba
zmniejszania jego zdolnosci namnazania.
Po dalszej inkubacji, hodowle, w których zacho¬
dzi hemoaglutynacja, zbiera sie i porcjami poddaje
badaniu nia hamowanie hemoaglutyniny i neuroaimi-
nidazy w celu wybrania tych rekombinantów, któ¬
re maja antygenowy skladnik zjadliwego szczepu
macierzystego A grypy i sa potencjalnie przydatne
do szczepionek. Tak wybrane hodowle nastepnie
rozsiewa sie i izoluje klony w celu usuniecia pozo¬
stalosci wirusów macierzystych. Rekombinanty
z pozostaloscia wirusów macierzystych odrzuca sie
jako nieodpowiednie do dalszego badania. Roz¬
siewanie klonów prowadzi sie metoda ograniczo¬
nego rozcienczania sposobem, opisanym w Post-
graduate Medlical Journal (patrz wyzej). Kazdy
723
6
wybrany szczep rekombinant mozna nastepnie pa-
sazowac w odpowiedniej hodowli na jaju, takim
jak zarodki jaja SPF lub z niej wywodzonych ho¬
dowli AOS. Prowadzi sie jeden lub dwa pasaze,
w czasie których zwieksza sie namnazanie szczepu
rekombinanta, po czym przygotowuje sie do ba¬
dan na ochotnikach sterylnych, bez antybiotyku
zapas, otrzymany z hodowli zarodków jaj kurzych
SPF. Badania te prowadzi sie w celu sprawdzenia
stabilnosci genetycznej i odpornosci szczepu re¬
kombinanta, który ma byc zaszczepiony czlowie¬
kowi.
W sposobie wedlug wynalazku otrzymywania
rekombinanta szczepu do wytwarzania szczepionki
przeciwgrypowej w pierwszym etapie inaktywuje
sie odzjadliwiony szczep macierzysty dla zasadni¬
czego zmniejszenia jego poczatkowej infekcyjnosci,
zaszczepia tym szczepem razem z macierzystymi
szczepami zjadliwymi jedna hodowle, inkubuje, na-
stepnie rozsiewa klony dla usuniecia szczepów ma¬
cierzystych, po czym izoluje pozadany szczep re¬
kombinant. Eliminowanie szczepu macierzystego
o oslabionej zjadliwosci mozna wygodnie przepro¬
wadzic, dodajac do hodowli odpowiednia surowice
odpornosciowa. Wlasciwe rekombinanty nastepnie
selekcjonuje sie, stosujac rutynowe metody testo¬
wania tak otrzymanych hodowli na hemoagluty-
nacje i wlasnosci antygenowe, po czym pozadany
rekombinant izoluje sie przez rozsiewanie klonów.
Sterylny zapas, otrzymany z wyselekcjonowanego
szczepu rekombinanta jest .ponownie izolowany, np.
przez podanie ochotnikom do nosa i zbieranie po¬
pluczyn. Tak otrzymany posiew ponownie pasazuje
sie, korzystnie dwukrotnie, na hodowli zarodka
jaja i stosuje do przygotowania z niego szczepionki
w rozcienczalniku, takim jak sól fizjologiczna, bu¬
forowana fosforanem w obecnosci stabilizatorów,
korzystnie hydrolizowanej zelatyny i sorbitolu.
Otrzymana szczepionke, która mozna liofilizowac
40 i w razie potrzeby odtworzyc, podaje sie ludziom,
korzystnie donosowo.
Nastepujace przyklady ilustruja wynalazek, nie
ograniczajac jego zakresu.
45 Przyklad I. Rekombinant szczepu A(OKUDA)
57 (H^Nj) ze szczepem A(ENiGIiAND) 42/72 (H8N2).
1. Otrzymywanie szczepów macierzystych. Otrzy¬
mywanie szczepu wirusa A(OKUDA) 57 (H2N2)
o oslabionej zjadliwosci. Szczep OKUDA A-2, któ-
50 ry pasazowano tylko na hodowlach jaja i poda¬
wano w formie aerozolu dziesiatkom tysiecy dzieci
w Japonii bez skutków dzialania toksycznego,
otrzymano po 280 pasazach z mianem w odczynie
hemoglutyniny 1:1280, w postaci zliofilizowanej.
55 Szczep ten namnazano w 1,5 ml mieszaniny roz¬
tworu soli fizjologicznej, buforowanej fosforanem,
pozywki z zawartoscia 10% tryptozy oraz penicy¬
liny i streptomycyny w ilosci po 1500 jednostek
miedzynarodowych, po czym wszczepiono doomocz-
60 niowo do trzech dziesieciodniowych zarodków jaj
SPF, a nastepnie inkubowano w temperaturze 35°C
w czasie 3 dni. Z jednego jaja pobrano plyn omocz-
niowy i przechowywano w malej ilosci w tempe¬
raturze —60°C. Do replikacji odmrazano mala ilosc
65 i rozcienczano w soli fizjologicznej w stosunku97 723
8
1:100, a nastepnie dzialano promieniami ultrafio¬
letowymi w ciagu 30 sekund, co wystarczalo dla
inaktywacji w przyblizeniu 99% calkowitej infek-
tywnosci wirusa.
Otrzymywanie szczepu A(ENGLAND)4272 (H8N2)
wirusa zjadliwego. Szczep w postaci' zliofilizowanej
próbki plynu omoczniowego otrzymano z National
Institute of Medical Research, Mili Hill. Wyizo¬
lowany z zarodnika jaja szczep wirusa pasazo-
wano trzykrotnie na jaju z mianem w odczynie
hemoaglutyniny 1:128. Liofilizat namnazano w mie¬
szaninie soli fizjologicznej, buforowanej fosfo¬
ranem, pozywki z zawartoscia 10% fosforanu tryp-
tozy oraz penicyliny i streptomycyny w ilosci po
1000 jednostek miedzynarodowych. Nastepnie 0,2
ml mieszaniny wszczepiono doomocznioiwo,do trzech
dziesieciodniowych zarodników jaj SPF, po czym
inkubowano w temperaturze 35°C przez okres 3
dni. Z jednego jaja pobrano plyn omoczniowy
i przechowywano w malej objetosci w tempera¬
turze ^60°C.
2. Replikacja oraz izolowanie szczepów rekombi-
nantów. Z dziesieciodniowych jaj SPF otrzymano
hodowle AOS i przygotowano próbe na hemoa-
glutynacje. Do kazdej hodowli dodano 0,03 ml
kazdego ze szczepów wirusa, przy czym szczep A
Okuda przed poddaniem dzialaniu promieniami,
rozcienczono w stosunku 1:100, natomiast zywy
szczep A England rozcienczono w soli fizjolo*
gicznej w stosunku 1:30. Próbe umieszczono w pla¬
stikowym ipojemniczku i inkubowano na trzesawce
(okolo 100 wahan na minute) w temperaturze 37°C.
Po 4 godzinach inkubacji do kazdego pojemniczka
dodano odpornosciowa surowice królika do konco¬
wego rozcienczania 1:3000, w celu zmniejszenia
namnazania szczepu macierzystego o oslabionej
zjadliwosci i dalej inkubowano.
Surowice o duzym stopniu czystosci, która przy¬
gotowano przeciw szczepowi wirusa ACSINGAPO-
RE)57 i(H^N2)> który byl antygenowo zblizony bar¬
dzo do szczepu Okuda, przed uzyciem rozcienczono
stukrotnie w soli fizjologicznej i poddano dzialaniu
promieniami ultrafioletowymi w czasie 2 minut.
Naswietlanie traktowano jako srodek ostroznosci
dla zniszczenia ewentualnie obecnych czynników
z zewnatrz. Po zakonczonej 48^godzinnej inkubacji
w temperaturze 3|7°C, do kazdego pojemniczka do¬
dano 5% zawiesine czerwonych cialek krwd zarod¬
ników jaj SPF do koncowego stezenia 0,5%.
sposród 77 hodowli 22 dawaly hemoaglutynacje
i te indywidualnie zbierano jako przypuszczalne
szczepy rekombinanty. 0,1 ml kazdego przypusz¬
czalnego szczepu rekombinanta wszczepiano do
dziesieciodniowych zarodników jaj SPF, po czym
inkubowano w temperaturze 37°C w czasie 3 dni.
Przy koncu inkubacji zarodki jaj badano na
obecnosc hemoaglutyniny i jej rodzaj identyfiko¬
wano w testach hamowania hemoaglutyniny.
Wstepne badania 4 wyizolowanych szczepów wy¬
kazaly wysoka zdolnosc namnazania wirusa i jak
oczekiwano, skladnik hemoaglutyniny zjadliwego
szczepu wirusa A England. Niektóre z nich odrzu¬
cono, jesli testy hamowania neuroaminidazy wyka¬
zywaly, ze szczep rekomibinant mial jako skladnik
neuroaminidaze macierzystego, o oslabionej zjad¬
liwosci, szczepu A Okuda, a nie pozadanego zjadli¬
wego szczepu A England. Tak wyselekcjonowane
wszystkie pozostale hodowle AOS rozsiewano trzy¬
krotnie i izolowano klony w celu usuniecia pozo-
stalosci wirusów macierzystych oraz tych szczepów
rekombinantów, które wedlug powyzszego testu
byly nieodpowiednie do testowania klinicznego.
Na wstepie hodowle wirusa rozmnazano, dziala¬
jac ponaddzwiekami (moc wejsciowa 80 kH/se-
io kunde) w ciagu 30 sekund. Nastepnie rozsiewanie
klonów prowadzono przy dwu lub trzykrotnym
rozcienczeniu, po czym wszczepiano 10-dniowym
zarodnikujacym jajom lub hodowli AOS, stosujac
na kazde rozcienczenie najmniej 8 replikacji ho-
dowli. Posiewy klonów o ograniczonym rozcien¬
czeniu izolowano z hodowli, w której stosowane
rozcienczenie wirusa infekowalo tylko 10% repli¬
kacji, jak wskazywala dodatnia hemoaglutynacja
w badaniach czerwonych cialek krwi zarodników
jaj kurzych SPF. Kazdy wyselekcjonowany roz¬
siew klonów pasazowano raz albo dwukrotnie na
9—fJ.2ndniiowych zarodnikach jaj SPF, natomiast
sterylny zapas kazdego wyselekcjonowanego szcze¬
pu rekombinanta przygotowano na 10-dniowych za-
rodnikach jaj SPF (bez stosowania antybiotyków).
Zapas ten badano w testach na hamowanie hemo¬
aglutyniny i neuroaminidazy dla skontrolowania
skladu antygenowego i wlasciwe przekazywano do
. badan klinicznych.
Przyklad II. Rekombinant szczepu A(OKU-
DA)57 (HZN2) ze szczepem A(FINLAND)4/74 (H3N2).
1. Otrzymywanie szczepów macierzystych. Otrzy¬
mywanie szczepu wirusa A(OKUDA) 57 (H2N2)
o oslabionej zjadliwosci
Rozmrozona niewielka ilosc plynu omoczniowego
zaszczepionego szczepem Okuda z przykladu I,
rozsiewano dwukrotnie i izolowano klony na ho¬
dowli z jaj SPF. Pozywke rozcienczono sola fizjo¬
logiczna w stosunku 1:100 i dzialano promieniami
ultrafioletowymi przez 30 sekund.
Otrzymywanie szczepu A(FINLAND)4/74 (H8N2)
wirusa zjadliwego
Namnazano na jajach szczep z rozmazu gardla,
45 otrzymany z Central Public Health Laboratory,
Helsinki, Finlandia, którego miano w odczynie he¬
moaglutyniny wynosilo 1:!2560. Szczep wirusa pa¬
sazowano fraz na wydzielinie ludzkiej i raz na ja¬
jach SPF, a nastepnie rozsiewano dwukrotnie i izo-
50 lowano klony na zarodkach jaj. Plyn omoczniowy,
pobrany z jednego jaja, przechowywano w malej
objetosci w temperaturze —60°C.
2. Replikacja i izolowanie szczepów rekombinantów
Szczep macierzysty A Okuda mieszano ze
55 szczepem A Finland w rozcienczeniu 1:30 w ho¬
dowlach AOS do próby na odczyn hemoagluty-
nacji, która w ipojemniczku plastikowym inkubo¬
wano na trzesawce w temperaturze 36°C. Po
uplywie 1 godziny, do kazdego pojemniczka
60 dodano przeciwsurowice, doprowadzajac do kon¬
cowego rozcienczenia 1:2000 w celu oslabienia
namnazania szczepu macierzystego o oslabionej
zjadliwosci i inkubowano dalej. Przeciwsurowice
otrzymano z wysoce odpornosciowej na szczep
65 A(OKUDA)57, surowicy lasicy. Surowice przed
4097 723
9 10
uzyciem poddano dzialaniu promieni ultrafioleto¬
wych w ciagu 2 minut.
iPo 31 godzinnej inkubacja do kazdego pojem-
niczka dodano 0,5% zawiesiny czerwonych cialek
krwi zarodków kurzych SPF dla stwierdzenia
aktywnosci hemoaglutynaoji. Z 64 hodowli 19 wy¬
kazalo hemoaglutynacje i te zbierano osobno. 0,1
ml kazdego z przypuszczalnych szczepów rekombi-
nantów wszczepiono do zarodków jaj SPF i inku-
bowano w temperaturze 37°C przez okres 3 dni.
Rodzaj hemoaglutyniiny badano na zarodkach jaj
w testach hamowania hemoaglutynacji dla spraw¬
dzenia infekcyjnosci w hodowlach zarodków jaj
AOiS oraz miana w odczynie hemoaglutyniny. Na
podstawie wyników, 11 sposród 19 zebranych ho¬
dowli, rozsiewano dwukrotnie i izolowano klony
na hodowlach AOS i raz na zarodkach jaj SPF,
zgodnie ze sposobem, opisanym w przykladzie I.
Sterylny, bez antybiotyków zapas kazdego wyse¬
lekcjonowanego szczepu rekombinanta, otrzymane¬
go z dziesieciodniowych zarodków jaj SPF badano
dla skontrolowania skladu antygenowego. 8 próbek
wykazalo antygeny A(FIMLAND)4/74, a 3 podobne
byly do szczepu A(OKUDA)57 pod wzgledem
wlasciwosci namnazania. Te ostatnie poddano ba-
dianioin klinicznym.
Badania kliniczne przeprowadzono, stosujac 3
wybrane szczepy rekombinanty, oznaczone nume¬
rami WRL 55, 65 oraz 68, z przykladu I oraz 3
szczepy WRL 94, 100 i 105 których odpowiednie
zdolnosci do replikacji podano w tablicy 1 i 2 od¬
powiednio.
Wybrany szczep wirusa pasazowano 1 raz na
jajach kurzych i rozcienczano do wlasciwego mia¬
na odczynu. Kazdemu z ochotników podawano 1,0
ml szczepu wirusa do nosa. W trzecim i czwartym
dniu po zaszczepieniu wirusa popluczyny zebrano
i wszczepiono do jamy omoczniiowej 11-dniowych
embrionów jaj kurzych. Po dwu dniach inkubacji
w temperaturze 33°C badano na odczyn hemoaglu¬
tyniny szczepu wirusa. Zebrane przed próba su¬
rowice badano 14 dni po zaszczepieniu na przeciw¬
ciala, hamujace hemoaglutynacje (HAI) znanym
sposobem, np. opisanym w Br. Med. J. IV, 36, 385
(1968).
W tablicach 3 14 podano nastepujace dane: za¬
stosowany szczep wirusa rekombinanta, dawke in-
fektywnosci szczepionki wirusa E.IJ350, ilosc ochot¬
ników poddanych badaniom, poczatkowe miano
odczynu HI w surowicy, reakcje (wskazano przez
wystepowanie i trwanie goraczki, kataru, zlego sa¬
mopoczucia, zwiekszonego zaipotrzebowania na
chusteczki do nosa), ilosc ochotników, w których
obserwowano obecnosc wirusa w popluczynach no¬
sa w 3-cim i 4-tym dniu po zaszczepieniu, ponadto
ilosc ochotników, u których surowica wykazala
wzrost miana w odczynie HAI, zasadniczy wzrost
miana w odczynie HAI,* t.j. przynajmniej cztero¬
krotny.
Tablica 1
Ir
|j Szczep wirusa
I1
i Skczepy wirusa
macierzystego
Szczepy
1 rekombinanty
[ Wirusa
A
A|(ENGLAiND)42/72
WRL 55
WRL 65
WEL 68
Antygeny
Hemoaglutynina
H2
H8
H,
H8
H8
Neuroaminiidaza
Na(1957)
N2(1972)
^1972)
N2(1972)
N2(1972)
Zdolnosc do
replikacji wirusa
(HAU/0,25 ml)
1000
96
256
512
512
HAU = Jednostki hemoaglutyniny
Tablica 2
(Szczep wirusa
Szczepy wirusa
macierzystego
Szczepy
rekombinanty
wirusa
AKOKUDA)57
A(FI[NLAiND)4/74
WRL 105
WIRU 100
'WRL 94
Antygeny
Hemoaglutynina
H2
H,
H,
H8
H8
Neuroaminiidaza
N2(1957)
^,1974)
N*C1974)
Ng
Ng
Zdolnosc do
replikacji wirusa
(HAU/0,25 ml)
941
445
920
1080
903
HAU = Jednostki hemoaglutyniny97 723
11 12
Tablica 3
Próba
1
2
3
4
6
7
Szczep
rekom-
binant
iWRD 55
(WaD 55
WRD55
WRL 55
WRL/65
.WRL 68
WRL 68
cd ^h
.aa
cd*H "-i
A .5 w
107'5
107,5
106'5
105>5
106>5
107.6
107,6
Nr ochotnika
/6
7—1
8
4
z11
13\
3
/5
9-3
Inicjuja
odczyi
w sur
<24
1
0
7
2
3
3
1
2
1
1
1
ce miano
iuHAI
owicy
>24
0
0
1
1
2
0
8
1
1
4
2
0
Reakcje
brak
1 lagodna
1 umiar¬
kowana
8 brak
4 brak
2 brak
1 umiar¬
kowana
11 brak
2 lagodna
3 brak
brak
3 lagodna
1 umiar¬
kowana
Uwalniacie
wirusa w
¦3-cim 4-tym
dniu dniu
1/5
1/1
0/1
4/8
1/4
0/2
0/1
1/11
2/2
0/3
2/5
1/3
0/1
0/5
1/1
0/1
4/8
1/4
0/2
0/1
1/11
¦ 2/2
0/3
3/5
1/3
0/1
Wzrost miana w odczynie
/5
1/1
0/1
8/8
1/4
1/2
1/1
7/11
2/2
2/3
3/5
2/3
1/1
> 4-krotny wzrost miana w odczynie HAI
/5
1/1
0/1
7/8
1/4
1/2
1/1
4/11
2/2
1/3
2/5
1/3
0/1
Tablica 4
Próba
1
1
2
Bzczep
re^kom-
binant
2
WRL. 105
aaa/1
WRL 105
/1/74
Dawka infekcyjna
3
7,0
7,5
Nr ochotnika
4
/4
7
\3
9
/
\
6
Inicjuja
odczyi
w sur
<24
4 -
—
9
ce miano
iuHAI
owicy
> 24
6
—
3
f
6
Reakcje
7
3 brak
1 lagodna
3 b. la¬
godna
b. la¬
godna
1 brak
2 umiar¬
kowana
1 NS
3 brak
2 b. la¬
godna
1 NS
Uwal
win
i3-cim
dniu
8
1/3
1/1
2/3
0/5
0/1
1/2
0/1
0/3
1/2
0/1
nianie
isa w
4-tym
dniu
9
1/3
1/1
2/3
0/5
0/1
1/2
1/1
0/3 ^
1/2
0/1
Wzrost miana odczynu HAI
3/3
1/1
3/3
3/4*
1/1
2/2
0/1
2/3
2/2
1/1
> 4-krotny wzrost mia¬ na odczynu HAI
11 1
1/3
0/1"
2/3
2/4*
1/1
2/2
0/1
1/3
2/2
0/1
WRL105aaa/l — Szczep rekombinant po trzykrotnym kolejnym rozsiewie i izolacji klonów
WRL 105/1/74 — Szczep rekombinant izolowany z popluczyn nosa i pasazowany na hodowli jaj APF,
przeznaczony do przygotowania zapasu szczepionki
* — Próba surowicy poinkulacyjnej niedostepna
NS — niemozliwa do okreslenia97 723
13 14
Tablica 4 c.d.
1 1
3
4
2
WRL 100
aaa/1
WRL 100
/1/74
WRL 94
aa/l
3
7,3
¦ 7,0
4
3
/
\
2
8
/
18
\
<
X13
3
8
1
6
2
7
2 brak
1 b. la¬
godna
2 brak
1 brak
1 b. la¬
godna
2 lagodna
4 ostra
3 brak
3 b. la¬
godna
1 lagodna
1 umiar.
2 ostra
0 brak
8 brak
bardzo
8
0/2
1/1
0/2
0/1
0/1
2/2
4/4
1/3
3/3
1/1
1/1
2/2
0/1
1/8
1/5
9
0/2
1/1*
0/2
0/1
0/1
2/2
4/4
0/3
1/3
1/1
1/1
2/2
0/1
1/8
0/5
2/2
1/1
1/2
1/1
0/1
2/2
4/4
3/3
3/3
1/1
1/1
2/2
0/1
6/8
4/5
11 |
1/2
1/1
1/2
1/1 1
0/1 ]
2/2
4/4
1/3
2/3
0/1
1/1
2/2
o/i
4/8
4/5
WRL 100 aaa/i — Szczep rekombinant po trzykrotnym kolejnym rozsiewie i izolacji klonów
WRL 100/1/74 — Szczep rekombinant WRL 100/1 ponownie izolowany z popluczyn nosa d pasazowany
dwukrotnie na hodowli jej SFF do przygotowania zapasu szczepionki. Szczepionke inko-
lowano bezposrednio bez dalszych pasazy
WRL 94 aa/ll — Szczep rekombinant po dwukrotnym kolejnym rozsiewie i izolacja klonów
Dalsze badania prowadzono dla oznaczenia ge- 35
netycznej stabilnosci szczepów rekombinanta. Np.
pierwsze popluczyny z nosa ochotnika szczepione
szczepem irekombinanta WRL 55 rozcienczono, w sto¬
sunku 1:5 i podano donosowo ochotnikom. Otrzymane
wyniki wykazaly, ze wydzielaja sie rzeczywiscie male *o
ilosci WRL 55. Badania prowadzono równiez ze szcze¬
pem WRL 105 oraz 100, w których szczep rekombi¬
nant izolowany byl z popluczyn nosa, uprzednio
szczepionych trzykrotnym posiewem klonów szcze¬
pu rekombinanta, a nastepnie pasazowany na ja- 45
jach iSPF w celu przygotowania duzej ilosci szcze¬
pionki. Zapas taki mozna bylo nastepnie przeba¬
dac na duzej ilosci ochotników i w ten sposób
ustalona zostala genetyczna stabilnosc szczepu re¬
kombinanta. Okazalo sie, ze szczep WRL 105 wy- 50
kazuje wieksza stabilnosc genetyczna niz szczep
WRL 100 i dlatego tez jest korzystniejszy.
Claims (19)
1. Zastrzezenia patentowe 55 1. Sposób wytwarzania rekombinanta szczepu wirusa grypy, znamienny tym, ze odzjadliwiony szczep macierzysty wirusa grypy A inaktywuje sie, pozbawiajac go pierwotnej infekcyjnosci, zaszcze- 60 pia pojedyncza hodowle razem ze zjadliwym szcze¬ pem macierzystym, hodowle inikubuje, a nastepnie rozsiewa klony dla usuniecia pozostalosci szczepów macierzystych, po czym izoluje pozadany szczep rekombinant. 65
2. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze jako odzjadliwiony szczep grypy stosuje sie szczep A-a.
3. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze jako zjadliwy szczep grypy stosuje sie szczep, pa¬ sazowany tylko na hodowli jaj lub innych ho¬ dowlach uznanych przez wladze sanitarne.
4. Sposób wedlug zastrz. 3, znamienny tym, ze jako szczep zjadliwy stosuje sie szczep swiezo izo¬ lowany w czasie replikacji.
5. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze stosuje sie szczepy, których róznica antygenowa hemoaglutyniny szczepów macierzystych wynosi przynajmniej 1 antygen.
6. Sposób wedlug zastrz. 1, albo 2, albo 5, zna¬ mienny tym, ze stosuje sie odzjadliwiony szczep, który zawiera antygenowy HgN2.
7. Sposób wedlug zastrz. 6, znamienny tym, ze jako odzjadliwiony szczep stosuje sie szczep A(OKUDA)57.
8. Sposób wedlug zastrz. 1, albo 3, albo 5, zna¬ mienny tym, ze stosuje sie szczep zjadliwy, który zawiera skladnik antygenowy HsN2.
9. Sposób wedlug zastrz. 8, znamienny tym, ze jako zjadliwy szczep stosuje sie szczep A(ENG- LAND)42/72.
10. Sposób wedlug zastrz. 8, znamienny tym, ze jako szczep zjadliwy stosuje sie szczep A{FIN- LAND)4/74.97 723 15 16 11.
Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze odzjadliwiony szczep inaktywuje sie, poddajac dzialaniu promieni ultrafioletowych lub gamma, lub na drodze ogrzewania. 1,2.
Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze w czasie inkubacji dodaje sie odpornosciowa su¬ rowice, otrzymana na antygenowym szczepie wi¬ rusa bliskiego lub identycznego ze szczepem od- zjadliwionym dla zmniejszenia namnazania szcze¬ pu macierzystego. 18.
Sposób wedlug zastrz. 12, znamienny tym, ze surowice odpornosciowa rozciencza sie w soli fi¬ zjologicznej i poddaje dzialaniu promieni ultrafio¬ letowych w celu unikniecia zakazen.
14. Sposób wedlug zastrz. 12, znamienny tym, ze jako surowice odpornosciowa stosuje sie surowice królika lub lasicy.
15. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze przypuszczalny szczep rekombinant izoluje sie sprawdzajac uprzednio przez hemoaglutynacje w ho¬ dowli z dodatkiem czerwonych cialek krwi za¬ rodków kurzych.
16. Sposób wedlug zastrz. 15, znamienny tym, ze szczep rekombinant o wlasciwosciach antygeno¬ wych selekcjonuje sie w testach hamowania he- moaglutyniny i neuroaminidazy.
17. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze przed rozsiewem klonów hodowle wirusa poddaje sie dzialaniu ultradzwieków.
18. Sposób wedlug zastrz. 17, znamienny tym, ze hodowle rozsiewa sie i izoluje klony metoda ogra¬ niczonego rozcienczania.
19. Sposób wedlug zastrz. 18, znamienny tym, ze wybrane klony pasazuje sie dalej na jajach. LDA — Zaklad 2 — Typo, zam. 1146/78 — 100 egz. Cena zl 45.—
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| GB55469/73A GB1488800A (en) | 1973-11-29 | 1973-11-29 | Influenza vaccines |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL97723B1 true PL97723B1 (pl) | 1978-03-30 |
Family
ID=10474009
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL1974176013A PL97723B1 (pl) | 1973-11-29 | 1974-11-28 | Sposob wytwarzania rekombinanta szczepu wirusa grypy |
Country Status (19)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US3991179A (pl) |
| JP (1) | JPS5094115A (pl) |
| AT (1) | AT331980B (pl) |
| AU (1) | AU498810B2 (pl) |
| BE (1) | BE822736A (pl) |
| CA (1) | CA1044138A (pl) |
| CH (1) | CH616959A5 (pl) |
| CS (1) | CS199569B2 (pl) |
| DE (1) | DE2456636A1 (pl) |
| DK (1) | DK139807B (pl) |
| ES (1) | ES432385A1 (pl) |
| FR (1) | FR2253535B1 (pl) |
| GB (1) | GB1488800A (pl) |
| HU (1) | HU173548B (pl) |
| IE (1) | IE40221B1 (pl) |
| NL (1) | NL7415614A (pl) |
| PL (1) | PL97723B1 (pl) |
| SE (1) | SE422154B (pl) |
| ZA (1) | ZA747602B (pl) |
Families Citing this family (9)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS6042209B2 (ja) * | 1974-05-31 | 1985-09-20 | 北里研究所(社団法人) | インフルエンザウイルスの新鮮分離株を発育鶏卵へ短期間で順化させる方法 |
| US4318903A (en) * | 1978-07-12 | 1982-03-09 | Smithkline-Rit | Live influenza virus vaccine and the preparation thereof |
| US4278662A (en) * | 1979-10-16 | 1981-07-14 | Smith Kline - Rit | Attenuated influenza type A virus vaccine |
| US4338296A (en) * | 1979-10-16 | 1982-07-06 | Smithkline-Rit | Influenza virus and process of producing a vaccine therefrom |
| US4554159A (en) * | 1981-11-12 | 1985-11-19 | Institute Merieux | Vaccine and method of immunizing against herpes simplex virus (types 1 and 2) |
| US4743553A (en) * | 1984-07-18 | 1988-05-10 | W. R. Grace & Co. | Synthetic genes for bovine parainfluenza virus |
| US4783411A (en) * | 1984-10-22 | 1988-11-08 | Janis Gabliks | Influenza-A virus vaccine from fish cell cultures |
| CN101433091A (zh) * | 2004-05-19 | 2009-05-13 | 阿尔扎公司 | 用于透皮传递免疫活性剂的方法和制剂 |
| US7468187B2 (en) | 2005-10-18 | 2008-12-23 | Iowa State University Research Foundation, Inc. | Canine influenza virus and related compositions and methods of use |
-
1973
- 1973-11-29 GB GB55469/73A patent/GB1488800A/en not_active Expired
-
1974
- 1974-11-28 AU AU75876/74A patent/AU498810B2/en not_active Expired
- 1974-11-28 ES ES432385A patent/ES432385A1/es not_active Expired
- 1974-11-28 SE SE7414918A patent/SE422154B/xx unknown
- 1974-11-28 CS CS748153A patent/CS199569B2/cs unknown
- 1974-11-28 DK DK618274AA patent/DK139807B/da not_active IP Right Cessation
- 1974-11-28 BE BE150978A patent/BE822736A/xx not_active IP Right Cessation
- 1974-11-28 IE IE2447/74A patent/IE40221B1/xx unknown
- 1974-11-28 CA CA214,815A patent/CA1044138A/en not_active Expired
- 1974-11-28 HU HU74WE514A patent/HU173548B/hu unknown
- 1974-11-28 ZA ZA00747602A patent/ZA747602B/xx unknown
- 1974-11-28 PL PL1974176013A patent/PL97723B1/pl unknown
- 1974-11-28 AT AT953774A patent/AT331980B/de not_active IP Right Cessation
- 1974-11-29 US US05/528,555 patent/US3991179A/en not_active Expired - Lifetime
- 1974-11-29 NL NL7415614A patent/NL7415614A/xx not_active Application Discontinuation
- 1974-11-29 JP JP49137613A patent/JPS5094115A/ja active Pending
- 1974-11-29 CH CH1590874A patent/CH616959A5/de not_active IP Right Cessation
- 1974-11-29 DE DE19742456636 patent/DE2456636A1/de not_active Ceased
- 1974-12-26 FR FR7442881A patent/FR2253535B1/fr not_active Expired
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| ATA953774A (de) | 1975-12-15 |
| DE2456636A1 (de) | 1975-06-05 |
| ES432385A1 (es) | 1977-06-16 |
| US3991179A (en) | 1976-11-09 |
| FR2253535B1 (pl) | 1978-07-21 |
| AU7587674A (en) | 1976-06-03 |
| ZA747602B (en) | 1976-07-28 |
| AU498810B2 (en) | 1979-03-29 |
| SE7414918L (pl) | 1975-05-30 |
| BE822736A (fr) | 1975-05-28 |
| FR2253535A1 (pl) | 1975-07-04 |
| DK618274A (pl) | 1975-07-28 |
| CH616959A5 (pl) | 1980-04-30 |
| CS199569B2 (en) | 1980-07-31 |
| HU173548B (hu) | 1979-06-28 |
| DK139807B (da) | 1979-04-23 |
| IE40221L (en) | 1975-05-29 |
| AT331980B (de) | 1976-09-10 |
| CA1044138A (en) | 1978-12-12 |
| DK139807C (pl) | 1979-09-24 |
| NL7415614A (nl) | 1975-06-02 |
| GB1488800A (en) | 1977-10-12 |
| IE40221B1 (en) | 1979-04-11 |
| SE422154B (sv) | 1982-02-22 |
| JPS5094115A (pl) | 1975-07-26 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Yamaguchi et al. | Characterization of a picornavirus isolated from broiler chicks | |
| Hinshaw et al. | Swine influenza-like viruses in turkeys: potential source of virus for humans? | |
| Waterson | Measles virus | |
| Pensaert et al. | Characteristics of a coronavirus causing vomition and wasting in pigs | |
| Clark | Systems for assay and growth of rhabdoviruses | |
| PL97723B1 (pl) | Sposob wytwarzania rekombinanta szczepu wirusa grypy | |
| US5149531A (en) | Method of using cold-adapted live influenza virus vaccine as an antiviral agent against influenza | |
| Wagner | Cellular resistance to viral infection, with particular reference to endogenous interferon | |
| US3518347A (en) | Vaccine for equine influenza | |
| Bell | An introduction to general virology | |
| Appleby | The isolation and properties of a modified strain of neurotropic influenza A virus | |
| CN101099864B (zh) | 预防鸡新城疫、传染性支气管炎的二联灭活疫苗的制备方法 | |
| Finter | Interferon production and sensitivity of Semliki Forest virus variants | |
| US3105011A (en) | Antigens and process of producing same | |
| Price | Vaccine for the prevention in humans of coldlike symptoms associated with the JH virus | |
| Rawls et al. | Virus carrier cells and virus-free cells in fetal rubella | |
| Jackson et al. | Viruses causing common respiratory infections in man. II. Enteroviruses and paramyxoviruses | |
| Crick | The vaccination of man and other animals against rabies | |
| Della-Porta et al. | Bovine ephemeral fever virus | |
| King | Studies of the antigenic relationships of rabies and rabies-related viruses using anti-nucleoprotein monoclonal antibodies | |
| Brown | Some factors affecting plaque size of western equine encephalomyelitis virus. | |
| Renis | Influenza virus infection of hamsters. A model for evaluating antiviral drugs | |
| Shishido et al. | GROWTH OF MEASLES VIRUS IN NERVOUS TISSUES 1. NEUROTROPIC PROPERTIES OF MEASLES VIRUS IN NEWBORN HAMSTERS | |
| Schloer et al. | Virulence and in-vitro characteristics of four mutants of Newcastle disease virus | |
| 澤田章 et al. | Hemagglutinins of Haemophilus paragallinarum serotype 1 organisms. |