PL94983B1 - - Google Patents
Download PDFInfo
- Publication number
- PL94983B1 PL94983B1 PL16863774A PL16863774A PL94983B1 PL 94983 B1 PL94983 B1 PL 94983B1 PL 16863774 A PL16863774 A PL 16863774A PL 16863774 A PL16863774 A PL 16863774A PL 94983 B1 PL94983 B1 PL 94983B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- solution
- sodium
- glycogen
- mercaptoethanol
- phosphate
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/48—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving transferase
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Immunology (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Description
Opis patentowy opublikowano: 31.12.1977
94983
MKP
GO In 33/16
Int. Cl2.
G01N 33/16
CZYTELNIA
Urzedu Potewtewego
PuUuj Szeczypospoliiej LiKfewti
Twórcawynalazku:
Uprawniony z patentu: VEB Arzneimittelwerk Dresden,
Radebeul (Niemiecka Republika Demokratyczna)
Sposób oznaczania aktywnosci fosforylaz glikogenu we krwi
Wynalazek dotyczy sposobu oznaczania aktywnosci fosforylaz glikogenu w zwenatrzkomórkowych ply¬
nach ustrojowych ludzi i zwierzat, a zwlaszcza w surowicy krwi.
Sposób ten umozliwiajacy zwlaszcza wykrywanie uszkodzen miesnia sercowego dotychczas nie byl znany.
Sposoby ilosciowego oznaczania fosforylazy glikogenu sa znane i polegaja one na wykrywaniu najrozmaitszych
produktów reakcji katalizowanej przez enzym, jak wydzielenie nieorganicznego fosforanu, przedluzenie glikozy-
lowych lancuchów czasteczki glikogenu wzglednie wytworzenie 1-fosforanu glikozy, Istnieje wiele sposobów
wykrywania kazdego z wyzej wymienionych produktów reakcji, jednak sposoby te pod wzgledem czulosci róznia
sie bardzo nieznacznie. Te znane sposoby sa wiec mniej lub bardziej odpowiednie do jakosciowego okreslenia
aktywnosci enzymu ale nie nadaja sie do przeprowadzenia ilosciowego rozróznienia najrozmaitszych izoenzymów
tej fosforylazy.
Okreslenie aktywnosci fosforylazy, zwlaszcza specyficznej dla serca fosforylazy miesniowej; w surowicy
krwi ludzkiej, ma duze znaczenie diagnostyczne, poniewaz w przypadku uszkodzenia komórek (np. zawalu serca)
enzym ten ukazuje sie w surowicy krwi.
Celem wyYialazkujest wiec ulepszenie dotychczasowych sposobów oznaczania fosforylazy glikogenu i uzys¬
kanie mozliwosci bardziej dokladnych okreslen ilosciowych aktywnosci tego enzymu, tj. uzyskanie takiej metody
okreslenia aktywnosci fosforylazy glikogenu, aby mozna bylo oznaczyc zarówno calkowita ilosc fosforylaz jak
i poszczególnych izofosforylaz.
Cel ten osiagnieto przez poddanie surowicy wstepnej obróbce, zastosowanie odpowiednich substratów
i inhibitorów aktywnosci poszczególnych fosforylaz oraz metod rozdzialu.
Sposób wedlug wynalazku polega na tym, ze surowice krwi po wstepnej obróbce miesza sie z roztworem
odpowiedniego substratu i efektora, poddaje inkubacji i w znany sposób oznacza ilosc produktu powstalego
w wyniku enzymatycznej reakcji, takiego jak fosforan lub pochodne glikogenu o bocznych lancuchach typu
amylozy.2 94983
Surowice krwi poddaje sie wstepnej obróbce za pomoca filtracji membranowej prowadzonej do zageszcze¬
nia w proporcji jak 2:1 do 3:1 lub za pomoca nierozpuszczalnej skrobii przez naniesienie surowicy w temperatu¬
rze 4°C na kolumne wypelniona skrobia i doprowadzona do stalej wartosci pH 6,1 za pomoca roztworu fluorku
sodu, 0-glicerofosforanu sodu i merkaptoetanolu, przemycie kolumny tym roztworem ale o wartosci pH 6,8
i wyeluowanie fosforylazy w temperaturze 30°C przy Wartosci pH 6,8 za pomoca roztworu zlozonego z (3-glicero-
fosforanu sodu, kwasu etylenodwuaminoczterooctowego i merkaptoetanolu.
W przypadku uzycia surowicy zageszczonej przez filtracje membranowa miesza sie te surowice z roztwo¬
rem zlozonym z glicyloglicyny, merkaptoetanolu i kwasu etylenodwuaminoczterooctowego, o wartosci pH 6,8.
Otrzymana mieszanine lub eluat z kolumny skrobiowej laczy sie z roztworem zawierajacym glikogen i z roztwo¬
rem 1-fosforanu glikozy i monofosforanu adenozyny jak i ewentualnie z innymi czynnikami hamujacymi aktyw-
nosc fosforylaz odpowiednio w proporcji, jak 5:3:2, po czym poddaje sie inkubacji w ciagu 60 minut w tempera¬
turze 37°C, a nastepnie denaturacji kwasem trójchlorooctowym i oznacza zawartosci fosforanu w znany sposób.
Wprowadzenie specyficznych czynników hamujacych aktywnosc poszczególnych fosforylaz jak np. 6-fosfo-
ranu glikozy i 6-fosforanu dezoksyglikozy moze spowodowac zahamowanie aktywnosci enzymu specyficznego
dla serca co umozliwia zróznicowanie fosforylaz i rozróznienie izofosforylaz jak i oznaczenie aktywnosci poszcze¬
gólnych izofosforylaz. Rozdzielenie poszczególnych izofosforylaz mozna przeprowadzic metoda elektroforetycz-
nego rozdzialu izofosforylaz wydzielonych za pomoca wyzej opisanej obróbki surowicy na kolumnie wypelnio¬
nej skrobia.
Eluat z kolumny rozciencza sie w proporcji 2:1 za pomoca 1,2 m roztworu sacharozy i rozdziela izofosfory-
lazy metoda krazkowa na zelu zlozonym z 5% akryloamidu, 0,2% N^-metylodwuakryloamidu, zawierajacym
0,1% glikogenu i zbuforowanym roztworem o pH 8,2 zlozonym z tris-/hydroksymetylo/-aminometanu, kwasu
etylenodwuaminoczterooctowego i kwasu borowego. Wymieniony roztwór równoczesnie spelnia role buforu
elektrodowego. Zel z rozdzielonymi izofosforylazami inkubuje sie w roztworze o wartosci pH 6,8 zawierajacym
1-fosforan glikozy, monofosforan adenozyny, 0-glicerofosforan sodu, kwas etylenodwuaminoczterooctowy, mer¬
kaptoetanol i fluorek sodu, po czym okresla sie zawartosc pochodnych glikogenu o bocznych lancuchach typu
arnylozy za pomoca reakcji barwnej z roztworem jodu w jodku potasu.
Sposób wedlug wynalazku stanowi szczególnie przydatna metode do bezblednej diagnozy zawalu miesnia
sercowego, co dotychczas nie bylo mozliwe ze wzgledu na stosowanie metod polegajacych na oznaczaniu enzy-
rpów niespecyficznych dla serca. W surowicy krwi osób zdrowych nie mozna stwierdzic aktywnosci fosforylaz
w zakresie dajacym sie zmierzyc. Z powyzszego powodu mozliwosc stwierdzenia obecnosci fosforylazy w surowi¬
cy krwi osoby, u której podejrzewa sie wystapienie zawalu ma istotne znaczenie diagnostyczne.
Wynalazek ilustruja nizej podane przyklady, z których przyklad I objasnia sposób oznaczania fosforylazy,
która pojawia sie we krwi przy zawale, przyklad II objasnia sposób oznaczania specyficznej dla serca izofosfory-
lazy miesniowej.
Przyklad la. Sposób oznaczania fosforylazy. Stosuje sie nastepujace odczynniki w postaci pieciu
roztworów:
Roztwór1: 0,1 m fluorek sodu
0,001 m 0-glicerofosforan sodu, pH 6,1
0,015 m merkaptoetanol
Roztwór2: 0,04 m Pglicerófosforan sodu, pH 6,8
0,001 m kwas etylenodwuaminoczterooctowy
0,015 m merkaptoetanol
Roztwór 3: 0,04 m glicyloglycyna, pH 6,8
0,01 m merkaptoetanol
0,008 m kwas etylenodwuaminoczterooctowy
Roztwór4: 3,3% glikogen
Roztwór 5: 0,083 m fosforan glikozy
0,005 m monofosforan adenozyny
Surowice zateza sie za pomoca filtracji przez membrane do stezenia jak 2:1 do 3:llub poddaje traktowa¬
niu nierozpuszczalna skrobia, tj. w tym drugim przypadku 3-4 ml surowicy, w temperaturze 4°C, przepuszcza
sie przez kolumne skrobiowa (2X1 cm) uprzednio doprowadzona do stalej wartosci pH roztworem 1. Kolumne
przemywa sie 3-krotnie 3 ml porcjami roztworu 1, a nastepnie w temperaturze 30°C eluuje fosforylaze 2 ml
roztworu 2.
1 czesc zatezonej surowicy miesza sie z 1 czescia roztworu 3; do ^ czesci tej mieszaniny wzglednie eluatu
z kolumny skrobiowej dodaje sie 3 czesci roztworu 4 i 2 czesci roztworu 5, po czym inkubuje w ciagu 60 minut
w temperaturze 37°C, denaturuje kwasem trójchlorooctowym i oznacza fosforan wedlug znanych metod.94983 3
Przyklad Ib. Sposób oznaczania fosforylazy przez okreslenie zawartosci produktu reakcji 1-fosforanu
glikozy powstajacego przy udziale enzymów pomocniczych fosfoglikomutazy i 6-fosforanodehydrogenazy gliko-
zy oraz dwunukleotydodwufosforanu nikotynoamidoadeniny w'sprzezonej próbie enzymatycznej (Tes UV). Sto¬
suje sie nastepujace odczynniki:
Roztwór6: 0,3 m octan magnezowy, pH 6,8
Roztwór7: 0,02 m monofosforan adenozyny
Roztwór8: 0,04 m dwunukleotydodwufosforan nikotynoaminoadeniny, utleniony
Roztwór 9: fosfoglikomutaza w 0,05 octanie sodowym (pH 5,3) 1,1 mg proteiny/ml;
100 jednostek/mg proteiny (oczyszczona przez Sephadex G 25)
Roztwór 10: 6-fosforanodehydrogenaza glikozy w 0,001 m kwasie etylenodwuaminoczteroocto-
wym,
0,01 mNH4OH(pH9),
1,4 mg proteiny/ml;
350 jednostek/mg proteiny (oczyszczona przez Sephadex G 25)
Roztwór 11: 0,5 m kwasny fosforan potasowy, pH 6,8
Roztwór 12: 0,0004 m 1,6-dwufosforan glikozy
Surowice nanosi sie na kolumne skrobiowa w sposób opisany w przykladzie la i po przemyciu roztworem
1, eluuje mieszanina skladajaca sie z 2 czesci roztworu 2 i 1 czesci roztworu 4.
2 ml eluatu umieszcza sie w kuwecie miarowej ze specjalnego szkla optycznego lub kwarcu i miesza sie
z 0,05 ml roztworu 6, 0,15 ml roztworu 7, 0,05 ml roztworu 8, 0,03 ml roztworu 9, 0,02 ml roztworu 10
i 0,52 ml H20, po czym inkubuje w czasie 5-10 minut w temperaturze 37°C, a nastepnie mierzy sie gestosc
optyczna przy 340 nm za pomoca odpowiedniego przyrzadu optycznego. Przez dodanie 0,15 ml roztworu 11
i 0,03 ml roztworu 12 stwierdza sie aktywnosc fosforylazy i na podstawie wyznaczonego podwyzszenia ekstynk¬
cji w czasie od 10 do 60 minut oznacza wytworzony 1-fosforan glikozy, a nastepnie znanym sposobem oblicza
sie aktywnosc fosforylazy.
Przyklad Ic. Postepuje sie wedlug sposobu opisanego w przykladzie la, z tym, ze oznaczenie aktyw¬
nosci enzymu przeprowadza sie w obecnosci specyficznych substancji hamujacych aktywnosc jednej izofosforyla-
zy, co pozwala z róznicy uzyskanej miedzy wynikami oznaczen wedlug przykladu la wyliczyc aktywnosc
specyficznej dla serca fosforylazy miesniowej.
Przyklad H. Sposób rozdzielania izofosforylaz i oznaczania aktywnosci enzymów. Stosuje sie naste¬
pujace odczynniki w postaci trzech roztworów:
Roztwór 1: 0,042 m tris-/hydroksymetylo/-aminometan
0,001 m kwas etylenodwuaminoczterooctowy
0,049 m kwas borowy, pH 8,2
Roztwór2: 0,03 m 1-fosforan glikozy
0,002 m monofosforan adenozyny
0,002 m 0-glicerofosforan sodu, pH 6,8
0,002 m kwas etylenodwuaminoczterooctowy
0,001 m merkaptoetanol
0,1 m fluorek sodu
Roztwór 3: 0,01 mjod
0,014 m jodek potasu
Równe ilosci eluatu zawierajacego fosforylaze uzyskane wedlug przykladu la z kolumny skrobiowej roz¬
ciencza sie w proporcji 2:1 za pomoca 1,2 m roztworu sacharozy i rozdziela izofosforylazy za pomoca elektrofo¬
rezy krazkowej stosujac zel zlozony z 5% akryloamidu, 0,2% N^-metylodwuakryloamidu i zawierajacy 0,1%
glikogenu, zbuforowany roztworem 1, stanowiacym równoczesnie bufor elektrodowy. Zel z rozdzielonymi izo-
fosforylazami poddaje sie inkubacji w roztworze 2, przy czym otrzymuje sie pochodne glikogenu o bocznych
lancuchach typu amylozy, które okresla sie za pomoca reakcji barwnej, wywolanej roztworem 3.
Claims (3)
1. Sposób oznaczania aktywnosci fosforylaz glikogenu we krwi, znamienny tym, ze surowice za¬ geszczona w proporcji od 2:1 do 3:1 przez filtracje membranowa miesza sie z roztworem zlozonym z glicylogli- cyny, merkaptoetanolu i kwasu etylenodwuaminoczterooctowego, o wartosci pH 6,8 i otrzymana mieszanine laczy sie z roztworem glikogenu i roztworem 1-fosforanu glikozy i monofosforanu adenozyny, w proporcji 5:3:2,4 94983 po czym poddaje inkubacji w ciagu 60 minut w temperaturze 37°C, a nastepnie denaturacji kwasem trójchloro- octowym i oznacza zawartosc fosforanu w znany sposób.
2. Sposób oznaczania aktywnosci fosforylaz glikogenu we krwi, znamienny tym, ze surowice nanosi sie w temperaturze 4°C na kolumne wypelniona skrobia i doprowadzona do stalej wartosci pH 6,1 za pomoca roztworu zlozonego z fluorku sodu, (3-glicerofosforanu sodu i merkaptoetanolu, przemywa kolumne tym roztwo¬ rem, eluuje fosforylazy w temperaturze 30°C przy pH 6,8, za pomoca roztworu zlozonego z 0-glicerofosforanu sodu, kwasu etylenodwuaminoczterooctowego i merkaptoetanolu i otrzymany eluat laczy sie z roztworem gliko¬ genu i roztworem 1-fosforanu glikozy i monofosfcranu adenozyny, w proporcji 5:3:2, po czym poddaje inkubacji w ciagu 60 minut w temperaturze 37°C, a nastepnie denaturacji kwasem trójchlorooctowym i oznacza zawartosc fosforanu w znany sposób.
3. Sposób oznaczania aktywnosci fosforylaz glikogenu we krwi, znamienny tym, ze surowice nanosi sie w temperaturze 4°C na kolumne wypelniona skrobia i doprowadzona do stalej wartosci pH 6,1 za pomoca roztworu zlozonego z fluorku sodu,/3-glicerofosforanu sodii i merkaptoetanolu, przemywa kolumne tym roztwo¬ rem, eluuje fosforylazy w temperaturze 30°C przy pH 6,8 za pomoca roztworu zlozonego z (3-glicerofosfanu sodu, kwasu etylenodwuaminoczterooctowego i merkaptoetanolu i otrzymany eluat rozciencza 1,2 m roztworem sacharozy odpowiednio w proporcji 2:1 i rozdziela izofosforylazy metoda elektroforezy krazkowej na zelu akry¬ lowym, zawierajacym 0,1% glikogenu i zbuforowanym roztworem zawierajacym tris-/hydroksymetylo/-aminomc- tan, kwas etylenodwuaminoczterooctowy i kwas borowy, po czym zel z rozdzielonymi izofosforylazami inkbuje w roztworze wodnym zawierajacym 1-fosforan glikozy, monofosforan adenozyny, 0-glicerofosforan sodu, kwas etylenodwuaminoczterooctowy, merkaptoetanol i fluorek sodu, a otrzymany produkt, stanowiacy pochodna gli¬ kogenu o bocznych lancuchach typu amylozy, oznacza sie w znany sposób po zabarwieniu za pomoca odczynni¬ ka jod-jodek potasu. Prac. Poligraf. UP PRL naklad 120+18 Cena 10 zl
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DD16876573A DD101986A1 (pl) | 1973-02-07 | 1973-02-07 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
PL94983B1 true PL94983B1 (pl) | 1977-09-30 |
Family
ID=5490033
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
PL16863774A PL94983B1 (pl) | 1973-02-07 | 1974-02-07 |
Country Status (9)
Country | Link |
---|---|
BG (1) | BG20730A1 (pl) |
CS (1) | CS195756B1 (pl) |
DD (1) | DD101986A1 (pl) |
DE (1) | DE2401484A1 (pl) |
FR (1) | FR2327545A1 (pl) |
GB (1) | GB1451004A (pl) |
HU (1) | HU169957B (pl) |
PL (1) | PL94983B1 (pl) |
SU (1) | SU976958A1 (pl) |
-
1973
- 1973-02-07 DD DD16876573A patent/DD101986A1/xx unknown
-
1974
- 1974-01-12 DE DE19742401484 patent/DE2401484A1/de not_active Withdrawn
- 1974-01-29 GB GB406174A patent/GB1451004A/en not_active Expired
- 1974-02-05 BG BG2570174A patent/BG20730A1/xx unknown
- 1974-02-06 SU SU741999385A patent/SU976958A1/ru active
- 1974-02-06 HU HUAE000406 patent/HU169957B/hu unknown
- 1974-02-07 PL PL16863774A patent/PL94983B1/pl unknown
- 1974-02-07 FR FR7404148A patent/FR2327545A1/fr active Granted
- 1974-02-07 CS CS85674A patent/CS195756B1/cs unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
DE2401484A1 (de) | 1974-08-29 |
DD101986A1 (pl) | 1973-11-20 |
CS195756B1 (en) | 1980-02-29 |
BG20730A1 (pl) | 1975-12-20 |
FR2327545A1 (fr) | 1977-05-06 |
SU976958A1 (ru) | 1982-11-30 |
FR2327545B1 (pl) | 1978-02-17 |
HU169957B (pl) | 1977-03-28 |
GB1451004A (en) | 1976-09-29 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Anderson et al. | A specific enzymatic assay for the diagnosis of congenital galactosemia: I. The consumption test | |
Glickman et al. | Nature of rate-limiting steps in the soybean lipoxygenase-1 reaction | |
Helmreich et al. | The role of adenylic acid in the activation of phosphorylase | |
Farron et al. | Fetal-type isoenzymes in hepatic and nonhepatic rat tumors | |
Mannherz et al. | Synthesis of ATP from ADP and inorganic phosphate at the myosin‐subfragment 1 active site | |
England et al. | A rapid method for the measurement of [γ-32P] ATP specific radioactivity in tissue extracts and its application to the study of 32Pi uptake in perfused rat heart | |
JPH0417640B2 (pl) | ||
Luzzatto et al. | Genetic variants of human erythrocyte glucose 6-phosphate dehydrogenase. I. Regulation of activity by oxidized and reduced nicotinamide-adenine dinucleotide phosphate | |
Cartron et al. | Study of the α‐N‐acetylgalactosaminyltransferase in sera and red cell membranes of human A subgroups | |
Niedel et al. | Nicotinate Phosphoribosyltransferase of Human Erythrocytes: PURIFICATION AND PROPERTIES | |
US4818690A (en) | Method for the determination of plasminogen activators (PA) | |
Darrow et al. | Subunit association and catalytic activity of uridine diphosphate galactose-4-epimerase from yeast. | |
Van Haeringen et al. | Amylase in human tear fluid: Origin and characteristics, compared with salivary and urinary amylases | |
PL94983B1 (pl) | ||
Moudrianakis et al. | Synthesis of bound adenosine triphosphate from bound adenosine diphosphate by the purified coupling factor 1 of chloroplasts. Evidence for direct involvement of the coupling factor in this" adenylate kinase-like" reaction | |
Dunnick et al. | Effect of detergents and sodium fluoride on the enzyme activities of the rat liver plasma membrane | |
Jones et al. | Cellulases released during the germination of Dictyostelium discoideum spores | |
EP0440775B1 (en) | Factor ix chromogenic assay | |
Roisin et al. | Nucleosidediphosphate kinase of Escherichia coli, a periplasmic enzyme | |
Turnquist et al. | Uridine diphosphate glucose pyrophosphorylase: differential heat inactivation and further characterization of human liver enzyme | |
Måhlén | Properties of 2‐Decylcitrate Synthase from Penicillium spiculisporum Lehman | |
Philo et al. | Comparison of antithrombin III assays using biological and chromogenic substrates | |
Wüst | Adenosine deaminase in lymphocytes and its electrophoretic separation | |
Uno et al. | The effect of sucrose and other carbohydrates on human alkaline phosphatase isoenzyme activity | |
Kirchgesser et al. | A colorimetric assay for the determination of acid nucleoside triphosphatase activity |