PL56331B1 - - Google Patents

Download PDF

Info

Publication number
PL56331B1
PL56331B1 PL107817A PL10781765A PL56331B1 PL 56331 B1 PL56331 B1 PL 56331B1 PL 107817 A PL107817 A PL 107817A PL 10781765 A PL10781765 A PL 10781765A PL 56331 B1 PL56331 B1 PL 56331B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
cephalosporium
mycelium
strain
diameter
strains
Prior art date
Application number
PL107817A
Other languages
English (en)
Inventor
Wieslawa Kotula mgr
inz. Wieslaw Le-wenstein mgr
Jadwiga Golonka mgr
IrenaEysymontt mgr
Original Assignee
Instytut Farmaceutyczny
Filing date
Publication date
Application filed by Instytut Farmaceutyczny filed Critical Instytut Farmaceutyczny
Publication of PL56331B1 publication Critical patent/PL56331B1/pl

Links

Description

Opublikowano: 25.XI.1968 56331 KI. 12 o, 25/04 MKP C 07 c UKD «ll Wspóltwórcy wynalazku: mgr Wieslawa Kotula, mgr inz. Wieslaw Le- wenstein, mgr Jadwiga Golonka, mgr Irena Eysymontt Wlasciciel patentu: Instytut Farmaceutyczny, Warszawa (Polska) Sposób wytwarzania zwiazków ^1'4-3-ketosterydowych Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania zwiazków ^M-3-ketosterydowych szeregu androsta- nu przez odwodornienie na drodze mikrobiologicz¬ nej odpowiednich substratów sterydowych. Sa to zwiazki o dzialaniu leczniczym, albo tez produkty posrednie do ich wytwarzania.Znane sposoby otrzymywania tych zwiazków me¬ toda mikrobiologiczna polegaja na zastosowaniu szczepów takich jak Pseudomonas testosteroni, Di- dymella lycopersici, niektórych szczepów Nocardia i innych.*Odwodornienie przy uzyciu tych szczepów przebiega dosc wolno. Tak wiec np. w przypadku szczepów z rodzaju Nocardia, np. Nocardia opaca lub Nocardia globorula, czas przygotowania ho¬ dowli i transformacji wynosi lacznie okolo 96 go¬ dzin i w niektórych tylko przypadkach moze byc skrócony do 72 godzin (opis patentowy brytyjski 789 363), a przy uzyciu szczepu Didymella lycopersi- ci samo tylko przygotowanie hodowli wymaga 6 dni, a transformacja 3—6 dni (opis patentowy USA 2 929 763).Okazalo sie, ze czas przygotowania hodowli i transformacji mozna jeszcze bardziej skrócic, je¬ zeli w znanym procesie dehydrogenacji mikrobio¬ logicznej zamiast wymienionych szczepów zastosuje sie nowe, nieznane dotad i nie opisane szczepy z ro¬ dzaju Cephalosporium, a mianowicie Cephalospo- rium sp. C-5 i Cephalosporium sp. C-9, uzyskane na drodze selekcji z dwóch dzikich szczepów macie¬ rzystych wyizolowanych z ziemi kompostowej. Do 20 25 30 tej pory nie stwierdzono obecnosci dehydrogenaz zli-sterydowych w szczepach z rodzaju Cephalospo¬ rium i w zwiazku z tym zaden ze znanych szcze¬ pów nalezacych do tego rodzaju nie byl stosowany do wytwarzania zwiazków zlM-3-ketosterydowych.Wedlug wynalazku zwiazek zl4-3-ketosterydowy szeregu androstanu poddaje sie dzialaniu hodowli szczepu Cephalosporium sp. C-5 lub Cephalospo¬ rium sp. C-9, lub zawiesiny grzybni tych mikroor¬ ganizmów w wodzie z ewentualnym dodatkiem substancji buforowych, lub otrzymanych z tych mikroorganizmów preparatów enzymatycznych w obecnosci tlenu powietrza sposobem konwencjonal¬ nym, po czym otrzymany zwiazek ZlM-3-ketostery- dowy szeregu androstanu wyodrebnia sie i oczyszcza w znany sposób.Hodowle szczepu Cephalosporium C-5 i Cepha¬ losporium C-9 mozna przygotowac np. w pozywce plynnej, przy czym juz po uplywie 18—24 godzin hodowle mozna uzyc do transformacji. Zamiast ho¬ dowli mikroorganizmów mozna uzyc odsaczonej grzybni zawieszonej w wodzie w ewentualnej obec¬ nosci substancji buforowych, np. 0,03 molowym bu¬ forze fosforanowym, dzieki czemu eliminuje sie barwniki i inne ciala balastowe powstale podczas przygotowywania hodowli mikroorganizmu i uzys¬ kuje sie produkt mniej zanieczyszczony. Mozna równiez uzyc preparatu enzymatycznego zawiera¬ jacego dehydrogenaze Al -sterydowa otrzymana z grzybni w znany sposób. W procesie transforma- 56 33156 331 4 *cji czas 20—24 godziny przy zastosowaniu szczepu Cephalosporium C-5 lub Cephalosporium C-9 wy¬ starcza najzupelniej dla przeprowadzenia reakcji do konca. Transformacja wedlug wynalazku prze¬ biega w jednym kierunku, bez tworzenia sie pro¬ duktów ubocznych, a wydajnosc procesu wedlug analizy chromatograficznej wynosi blisko 100%.Szczepy Cephalosporium C-5 i Cephalosporium C-9, podobnie jak znane szczepy z rodzaju Cepha- • losporium, charakteryzuja sie brakiem organów rozmnazania plciowego, wystepowaniem grzybni podstawowej i powietrznej. Grzybnia podzielona i rozgaleziona, hialinowa, tworzy sploty synnema- 10 ta. Pojedyncze strzepki lub synnemata moga two¬ rzyc petle. Zarodniki tworzace sie na koncach ko¬ nidioforów stopniowo przemieszczaja sie tworzac glówki. Glówki konidialne sa osadzone na nieroz- detych szczytach konidioforów, zawieraja po kilka zarodników zlepionych substancja kleista — mu- cus — latwo rozpadaja sie. Konidiofory sa proste, niepodzielone lub z jednym podzialem poprzecz¬ nym. Wyrastaja pod katem prostym wokól strzepki i na calej jej dlugosci. Konidia hialinowe jednoko¬ mórkowe moga byc owalne, elipsoidalne, o wymia¬ rach 9—10^ na 3,5—4,0 u i 3,4—10,0^ na 2,4—6,0^.Zdarzaja sie zarodniki o ksztaltach fusariopodob- nych.Nazwa podloza Szczep C-9 Szczep C-5 Agar Czapek Dox z sacha¬ roza Kolonie okragle, lekko wypukle, srednica okolo 5 mm, biale zabarwiajace sie na kolor rózowolososiowy. Grzyb¬ nia powietrzna bialawa, krótka, w postaci wzniesionych prostych ostro zakonczonych igielek, czesto sklejonych z wielu pojedynczych strzepek synnemata o dlugosci 780— 830 /u i srednicy podstawy 18—37 fx lub strzepek pojedyn¬ czych i ich splotów (ropes). Konidiofory w ksztalcie bu¬ telki o srednicy podstawy 3—5 jlc i 2,5—3,5 /u. Na szczycie konidioforów zlepione zarodniki tworza glówki. Konidia hialinowe, jednokomórkowe, owalne, elipsoidalne lub lód- kowato wygiete o wymiarach 3—4 (x X 7—10 p.Kolonie kremowe o srednicy 2—4 mm, grzybnia podstawowa wrasta¬ jaca w podloze. Grzybnia powietrz¬ na biala krótka, splatana, welnista, silnie rozgaleziona, wyzsza na srodku kolonii, wystepuje w po¬ staci pojedynczych strzepek i grub¬ szych splotów. Konidiofory o dlu¬ gosci 10—60 /u, srednicy podstawy 1,5—2,5 \x. Bez podzialu lub z jed¬ nym podzialem poprzecznym. Glów¬ ki konidialne kuliste, spotyka sie zlepione w ksztalcie < tulipana. Ko¬ nidia owalne, elipsoidalne o wy¬ miarach 4—10 ix na 2,3—4 ix zawie¬ raja drobne granulki o charakterze lipoidalnym.Agar ziemn a- czany wedlug Waks- mana Kolonie okragle o srednicy 8,5—10 mm, rózowo-lososiowe, wypukle. Grzybnia podstawowa wrastajaca w podloze.Grzybnia powietrzna lososiowa, gesta krótka w postaci igielek synnemata — o srednicy podstawy okolo 45 /ll lub skreconych welniscie pojedynczych strzepek i ich splotów.Konidiofory o dlugosci 4—24 /u i srednicy podstawy 2,5— 3 [x bez lub z jednym podzialem poprzecznym, spotyka sie niekiedy dwa podzialy. Wystepuja na grzybni powietrznej wzdluz synnemata oraz pionowo na grzybni podstawowej.Glówki konidialne o srednicy 7,5—25 /a w ksztalcie tulipa¬ na z wysunietym jednym konidium. Konidia elipsoidalne lub lódkowate jednokomórkowe, w starszych kulturach staja sie wrzecionowate lub fusariopodobne, czesto z jed¬ nym podzialem poprzecznym. Cytoplazma konidii drobno granulowana. Konidia oblepiaja nici grzybni powietrznej lub leza na podlozu. Grzybnia podstawowa tworzy petle.Kolonie biale, okragle, wypukle, o srednicy 8—9 mm. Grzybnia pod¬ stawowa bezbarwna tworzy obrze¬ zenie kolonii, strzepki zagiete w kierunku przeciwnym do ruchu wskazówek zegara. Grzybnia po¬ wietrzna biala w ksztalcie rzad¬ kich, dlugich prostych, wniesionych igielek — synnemata — skladaja¬ cych sie z wielu pojedynczych strzepek, dlugosci 1010—1380 p i srednicy podstawy 11—83 \x. Koni¬ diofory o dlugosci 5—25 fx i o sred¬ nicy podstawy 2,5—3 fx bez lub z jednym podzialem poprzecznym wyrastaja wokól i na calej dlugo¬ sci synnemata oraz pionowo z grzybni podstawowej. Glówki ko¬ nidialne kuliste, konidia owalne, i elipsoidalne o wymiarach 2—3 \x na 4—11 \x. Zawieraja po kilka drobnych lipoidalnych granulek.56 331 5 6 Nazwa podloza Szczep 09 Szczep C-5 Agar o wsiany Kolonie okragle o srednicy 5 mm brudno-rózowe, plaskie z wyraznie zaznaczonym srodkiem. Grzybnia podstawowa rózowawa, nieregularnie rozgaleziona. Grzybnia powietrz¬ na w postaci kilku strzepek tylko na srodku kolonii. Ko- nidiofory o dlugosci 0,75—5,5 \i bez lub z jednym podzia¬ lem poprzecznym wyrastaja pionowo z grzybni podstawo¬ wej. Glówki konidialne nieregularne o srednicy 7,5—22,5 pi.Konidia owalne, elipsoidalne lub zóltkowate. W starszych hodowlach sa wrzecionowate lub fusariopodobne. Czesto z jednym, niekiedy z dwoma podzialami poprzecznymi.Wymiary: 7—17 ^ na 2,5—4 (x. Cytoplazma konidii drobno granulowana.Kolonie okragle o srednicy 2—4 mm, bezbarwne, plaskie z wyraz¬ nie zaznaczonym srodkiem. Grzyb¬ nia podstawowa bezbarwna, niere¬ gularnie rozgaleziona, o srednicy 1—2,5 pi. Grzybnia powietrzna jest slabo rozwinieta i wystepuje tylko na srodku kolonii. Konidiofory wy¬ rastaja pionowo z grzybni podsta¬ wowej, posiadaja jeden podzial lub nie posiadaja zadnego. Wymiary: dlugosc 7,5—2,5 \i i srednica pod¬ stawy 1—1,2 ia. Glówki konidialne kuliste o srednicy 5—15 //, w star¬ szych kulturach zlepiaja sie two¬ rzac nieregularna glowe na kilku konidioforach. Konidia owalne, elipsoidalne o wymiarach 6—12 \i na 2—3 /u. Cytoplazma w równych granulkach.Przyklad I. Zarodniki szczepu Cephalospo- Tium sp. C-5 uzyskane z 10-dniowej hodowli na agarze skosnym Czapek Doxa zawieszono w 5 ml jalowej wody. Zawiesina ta posiano kolbe o po¬ jemnosci 1 1 wypelniona 100 ml pozywki o skladzie: 5 g ekstraktu drozdzowego, 5 g hydrolizatu enzy¬ matycznego krwi bydlecej i 500 ml brzeczki bro¬ warnianej o gestosci 8,7° Big. i woda do 1 000 ml.Kolbe umieszczono na trzesawce wahadlowej (100 ud./min., dlugosc wychylenia 8,5 cm) na 23 godziny w temperaturze 28°C do uzyskania obfitego wzro¬ stu. Hodowli tej uzyto do posiania 5 kolb jednoli- trowych wypelnionych po 200 ml pozywki o skla¬ dzie: 5 g ekstraktu drozdzowego, 5 g hydrolizatu enzymatycznego krwi bydlecej, 250 ml brzeczki browarnianej o gestosci 8,7° Big. i woda do 1000 ml. Kolby umieszczono na trzesawce i inkubowano w tych samych warunkach co pierwsze stadium.Po 23 godzinach, gdy wzrost byl obfity, dodano do kazdej kolby po 60 mg 17a-metylptestoteronu roz¬ puszczonego w 2,5 ml metalu. Zawartosc kolb in¬ kubowano w tych samych warunkach przez 23 godziny, to jest do chwili, gdy chromatografia bi¬ bulowa wykazala wylacznie jedna plame zli-po- chodnej 17cc-metylotestosterenu, po czym zawartosc kolb ekstrahowano kilkakrotnie po 40 ml chloro¬ formu. Ekstrakt osuszono bezwodnym siarczanem sodowym i odparowano pod zmniejszonym cisnie¬ niem. Pozostalosc po rozpuszczeniu w mieszaninie cykloheksan — benzen 1:1 oczyszczono na kolumnie chromatograficznej z tlenku glinowego o aktyw¬ nosci III stosujac do elucji benzen z wzrastajacym dodatkiem etanolu. Sklad frakcji kontrolowano za pomoca chromatografii cienkowarstwowej. Frakcje zawierajace czysta Zli^pochodna odparowano do su¬ cha, uzyskujac 270 mg l-dehydro-17a-metylotesto- steronu. Po krystalizacji z etanolu produkt wyka¬ zywal temperature topnienia 159—161°C, E = 15200 iprzy ;max = 243, [a] JJ= + 2,0° (chloroform, c = 1).Przyklad II. Do hodowli szczepu Cephalospo- 45 50 rium sp. C-9, uzyskanej w sposób analogiczny do sposobu opisanego w przykladzie I dla Cephalospo- rium sp. C-5, dodano do kazdej z 5 kolb po 60 mg 17a-metylotestosteronu rozpuszczonego w 2 ml me¬ tanolu, po czym zawartosc kolb inkubowano po¬ nownie w ciagu 24 godzin w warunkach podanych w przykladzie I. Po kilkakrotnej ekstrakcji chloro¬ formem polaczone ekstrakty osuszono za pomoca bezwodnego siarczanu sodowego i odparowano pod zmniejszonym cisnieniem, po czym pozostalosc oczyszczono chromatograficznie w sposób opisany w przykladzie I, uzyskujac 274 mg 1-dehydro- -17a-metylotestosteronu. Po krystalizacji z etanolu produkt wykazywal temperature topnienia 160— 161°C, E = 15250 przy (chloroform, C = 1). ^max = 243, [a]^°=+l,9 65 Przyklad III. Do hodowli szczepu Cephalo- sporium sp. C-9, uzyskanej w sposób analogiczny do sposobu opisanego w przykladzie I dla Cepha- losporium sp. C-5, dodano do kazdej z 5 kolb po 40 mg androsten-4-dionu-3,17 rozpuszczonego w 2 ml metanolu, po czym zawartosc kolb inkubowa¬ no ponownie w ciagu 24 godzin w warunkach po¬ danych w przykladzie I. Po kilkakrotnej ekstrakcji chloroformem polaczone ekstrakty osuszono za po¬ moca bezwodnego siarczanu sodowego i odparowa¬ no pod zmniejszonym cisnieniem, po czym pozo¬ stalosc oczyszczono chromatograficznie w sposób opisany w przykladzie I, uzyskujac androstadien- -l,4-dion-3,17 z wydajnoscia 78%. Po krystalizacji z metanolu produkt wykazywal temperature top¬ nienia 137—139°C, E = 15200 przy Xmax = 243, M]5= + 116° (chloroform, c = 1).Przyklad IV. Przygotowano hodowle podpo- wierzchniowa szczepu Cephalosporium sp. C-5 w sposób opisany w przykladzie I, po czym grzybnie oddzielono od brzeczki przez odwirowanie przy 3000 obr./min. w ciagu 20 minut i plyn znad grzyb¬ ni zlano. Grzybnie z kazdej kolby zawieszono w7 56 331 8 100 ml 0,03 molarnego buforu fosforanowego o war¬ tosci pH = 7 i do zawiesiny dodano po 60 mg 17a-metylotestosteronu w 2 ml metanolu. Zawar¬ tosc kolb inkubowano na trzesawce w temperatu¬ rze 28°C w ciagu 18 godzin, to jest do chwili, gdy chromatogram na bibule nie wykazal obecnosci substratu, lecz jedynie plame produktu. Po ekstrak¬ cji chloroformem, odparowaniu rozpuszczalnika i oczyszczeniu chromatograficznym w sposób opi¬ sany w przykladzie I otrzymano zli-pochodna 17a-metylotestosteronu z wydajnoscia 92°/o. Po krystalizacji z etanolu produkt wykazywal tempe¬ rature topnienia 160,5—162°C, E = 15350 przy 2max = 243, [a]^°= + 2,0° (chloroform, c = 1). PL

Claims (1)

1. Zastrzezenie patentowe Sposób wytwarzania zwiazków zlM-3-ketostery-- dowych szeregu androstanu metoda mikrobiolo¬ giczna, znamienny tym, ze zwiazek Zl4-3-ketostery- dowy szeregu androstanu poddaje sie dzialaniu ho¬ dowli szczepu Cephalosporium sp. C-5 lub Cepha- losporium sp. C-9, lub zawiesiny grzybni tych mi¬ kroorganizmów w wodzie z ewentualnym dodat¬ kiem substancji buforowych lub otrzymanych z niej preparatów enzymatycznych, w obecnosci tlenu powietrza w warunkach konwencjonalnych, po czym otrzymany produkt wyodrebnia sie-* i oczyszcza w znany sposób. 5 10 Bltk 3:67/68 310 egz. A4 PL
PL107817A 1965-03-08 PL56331B1 (pl)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL56331B1 true PL56331B1 (pl) 1968-10-25

Family

ID=

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Moyer et al. Penicillin: X. The effect of phenylacetic acid on penicillin production
DE2314076C3 (de) Verfahren zur Herstellung von karzinoembyonischem Antigen
US3892629A (en) Process for growing a fungus
IL24529A (en) Process for preparing cephalosporin derivatives
Karow et al. An antibiotic substance from species of Gymnoascus and Penicillium
Raper Dictyostelium minutum, a second new species of slime mold from decaying forest leaves
US3432598A (en) Antibiotic sl 2266
EP0088637B1 (en) A method for producing ursodeoxycholic acid
US2709705A (en) 16alpha-hydroxyprogesterone, 16alpha-hydroxydihydroprogesterone and esters thereof
Tzean et al. Spore germination and the life cycle of Frankia in vitro
PL56331B1 (pl)
Rykard et al. Development of the conidial state of Myriogenospora atramentosa
Misawa et al. Production of a plasmin inhibitory substance by Scopolia japonica suspension cultures
Greenawalt et al. [27] Preparation and properties of Neurospora mitochondria
JPH04261153A (ja) 抗ウイルス剤
US3847742A (en) Process for deacetoxycephalosporin c
Gleason Alcohol dehydrogenase in Mucorales
Duddridge et al. A cytochemical study of lipolytic activity in Bremia lactucae Regel. during germination of the conidium and penetration of the host
Woodward Jr Production of aspergillic acid by surface cultures of Aspergillus flavus
Kato et al. Choline stimulates the synthesis and accumulation of acetate in a cholinergic neuroblastoma clone
JP2797331B2 (ja) 新規微生物及びジベレリン類の製造方法
US3658653A (en) Process for the preparation of ergotamine and ergocryptine
US2914543A (en) Synthesis of steroids
SU1631070A1 (ru) Штамм гриба ASpeRGILLUS FоетIDUS - продуцент инулиназы
US3316157A (en) Synthesis of steroids