PL236172B1 - Radiofarmaceutyk diagnostyczny do obrazowania poziomu cholinoesteraz, sposób jego wytwarzania oraz jego zastosowanie - Google Patents

Radiofarmaceutyk diagnostyczny do obrazowania poziomu cholinoesteraz, sposób jego wytwarzania oraz jego zastosowanie Download PDF

Info

Publication number
PL236172B1
PL236172B1 PL415771A PL41577116A PL236172B1 PL 236172 B1 PL236172 B1 PL 236172B1 PL 415771 A PL415771 A PL 415771A PL 41577116 A PL41577116 A PL 41577116A PL 236172 B1 PL236172 B1 PL 236172B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
tac
nodaga
dotaga
acid
ligand
Prior art date
Application number
PL415771A
Other languages
English (en)
Other versions
PL415771A1 (pl
Inventor
Ewa Gniazdowska
Przemysław Koźmiński
Elżbieta Mikiciuk-Olasik
Paweł Szymański
Original Assignee
Inst Chemii I Techniki Jadrowej
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Inst Chemii I Techniki Jadrowej filed Critical Inst Chemii I Techniki Jadrowej
Priority to PL415771A priority Critical patent/PL236172B1/pl
Publication of PL415771A1 publication Critical patent/PL415771A1/pl
Publication of PL236172B1 publication Critical patent/PL236172B1/pl

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest receptorowy radiofarmaceutyk diagnostyczny posiadający powinowactwo do acetylocholinoesterazy, oparty na pochodnej takryny, sposób jego wytwarzania oraz jego zastosowanie.
Otrzymywanie radiofarmaceutyku według wynalazku polega na zaprojektowaniu połączeń ligandu Hynic (hydrazinonicotinamide, amid kwasu hydrazynonikotynowego) i/lub sfunkcjonalizowanych makrocyklicznych ligandów: DOTA (1,4,7,10-tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetraacetic acid, kwas 1,4,7,10-tetraazacyklododekano-1,4,7,10-tetraoctowy), DOTAGA (1,4,7,10-tetraazacyclododececane,1-(glutaric acid)-4,7,10-triacetic acid, kwas 1,4,7,10-tetraazacyklododekano-1 ,-glutarowo-4,7,10-tetraoctowy), NOTA (1,4,7-triazacyclononane-1,4,7-triacetic acid, kwas 1,4,7-triazacyklononano-trioctowy) i NODAGA (1,4,7-triazacyclononane,(1-glutaric acid)-4,7-acetic acid, kwas 1,4,7-triazacyclononano-1-glutarowo-4,7-octowy) z cząsteczką pochodnej takryny w sposób niezmieniający jej właściwości biologicznych. Otrzymany preparat Hynic-pochodna takryny po wyznakowaniu technetem-99m, i/lub preparat DOTA-pochodna takryny, i/lub DOTAGA-pochodna takryny i/lub NOTA-pochodna takryny, i/lub NODAGA-pochodna takryny po wyznakowaniu radionuklidem diagnostycznym tworzącym kompleksy z Ugandami DOTA, DOTAGA, NOTA i NODAGA, wybranym z grupy obejmującej gal-68, skand-43, skand-44, służy do obrazowania podwyższonego poziomu acetylocholinoesterazy, występującego w przypadku choroby Alzheimera w obszarach mózgu, w których wystąpiła neurodegeneracja.
Takryna - związek wykorzystywany w leczeniu choroby Alzheimera - jest inhibitorem enzymu acetylocholinesterazy rozkładającym acetylocholinę do choliny i kwasu octowego. Takryna hamuje aktywność acetylocholinoesterazy i w ten sposób powoduje zwiększenie się ilości wolnej acetylocholiny w szczelinie synaptycznej. Towarzyszy temu wzrost przekaźnictwa w układzie cholinergicznym ośrodkowego układu nerwowego (OUN), co zmniejsza objawy otępienia występujące w chorobie Alzheimera. Stosowana pochodna takryny to związek N-(1,2,3,4-tetrahydroakrydyno-9-yl)nonan-1,9-diamina, (Tac(9)), posiadający w cząsteczce łańcuch węglowodorowy (zawierający 9 grup CH2) zakończony l-rzędową grupą aminową, jak przedstawiono we wzorze 6, która nie bierze udziału w oddziaływaniu biologicznym z cholinoesterazami.
Znana jest w stanie techniki z Fizyki Medycznej, ZFBM: studia II stopnia, Tematy prac magisterskich w roku akademickim 2014/2015, pkt 6, dr Ewa Gniazdowska (ICHTJ) „Synteza i badanie radiobiokoniugatu 68Ga-pochodna takryny dla diagnostyki PET w chorobie Alzheimera” pochodna takryny.
W publikacji Aleksandra Bilewicza i współpr. „Badania chemiczne w Instytucie Chemii i Techniki Jądrowej nad projektowaniem i syntezą nowych radiofarmaceutyków” ujawniono także takrynę i jej działanie w leczeniu choroby Alzheimera.
Pochodna takryny N-(1,2,3,4-tetrahydroakrydyno-9-yl)nonan-1,9-diamina, (Tac(9)) znana jest także z publikacji Pawła Szymańskiego i współpr. “Synthesis and biological activity of deratives of tetrahydroacridine as acetylcholinesterase inhibitors”.
Nieoczekiwanie, okazało się, iż koniugaty ligandu Hynic i/lub makrocyklicznych ligandów DOTA, DOTAGA, NOTA i NODAGA z cząsteczką pochodnej takryny po wyznakowaniu odpowiednim radionuklidem diagnostycznym, przy wprowadzeniu do organizmu pełnią rolę sondy diagnostycznej w wyniku kumulowania się w miejscach, gdzie znajdują się cholinoesterazy (głównie w ośrodkowym układzie nerwowym, a także w wątrobie i jelitach). Dzięki temu możliwe jest określenie poziomu neuroprzekaźnika, a tym samym określenie rejonu w mózgu, w którym doszło do neurodegeneracji. Acetylocholinoesteraza występuje także w wątrobie i jelitach, a więc otrzymane preparaty mogą być markerami do określania stanu fizjologicznego tych narządów.
PL236 172 Β1
Diagnostyczny radiofarmaceutyk do obrazowania poziomu cholinoesteraz, który stanowi pochodna takryny, o wzorze 6,
wzór 6 charakteryzuje się tym, że jest ona przyłączona do ligandu amidu kwasu hydrazynonikotynowego (Hynic) lub do makrocyklicznego ligandu kwasu 1,4,7,10-tetraazacyklododekano-1,4,7,10-tetraoctowego (DOTA), kwasu 1,4,7,10-tetraazacyklododekano-1 ,-glutarowo-4,7,10-tetraoctowego (DOTAGA), kwasu 1,4,7-triazacyklononano-trioctowego (NOTA) lub kwasu 1,4,7-triazacyclononano-1-glutarowo-4,7-octowego (NODAGA), wiązaniem amidowym pomiędzy grupą karboksylową ligandu bezpośrednio lub po sfunkcjonalizowaniu jej grupą NHS, lub wiązaniem tioamidowym pomiędzy wcześniej wprowadzoną do cząsteczki używanego ligandu grupą funkcyjną izotiocyjanianu fenylu (SCN), a w przypadku ligandów kwasu 1,4,7,10-tetraazacyklododekano-1 ,-glutarowo-4,7,10-tetraoctowego (DOTAGA) i kwasu 1,4,7-triazacyclononano-1-glutarowo-4,7-octowego (NODAGA) także przy użyciu bezwodników kwasu 1,4,7,10-tetraazacyklododekano-1 ,-glutarowo-4,7,10-tetraoctowego (DOTAGA) bezwodnik i kwasu 1,4,7-triazacyclononano-1-glutarowo-4,7-octowego (NODAGA), a l-rzędową grupą aminową położoną na końcu łańcucha węglowodorowego pochodnej takryny, jak przedstawiono we wzorach 1, 2, 3, 4 i 5,
PL236 172 Β1
wyznakowany technetem-99m w przypadku ligandu Hynic lub radionuklidem diagnostycznym tworzącym kompleksy z ligandem DOTA, DOTAGA, NOTA lub NODAGA, wybranym z grupy obejmującej gal-68, skand-43 lub skand-44.
Zamieszczone poniżej schematy przedstawiają przykładowo wybrane reakcje otrzymywania koniugatów ligand-pochodna takryny przy użyciu sfunkcjonalizowanych makrocyklicznych ligandów DOTA, DOTAGA, NOTA i NODAGA.
PL236 172 Β1
PL236 172 Β1
Nieoczekiwanie, okazało się, iż przyłączenie makrocyklicznego ligandu Hynic, DOTA, DOTAGA, NOTA lub NODAGA do pochodnej takryny poprzez atom azotu l-rzędowej grupy aminowej cząsteczki takryny nie zmienia jej aktywności biologicznej względem cholinoesteraz.
Sposób wytwarzania diagnostycznego radiofarmaceutyku do obrazowania poziomu cholinoesteraz, opartego na pochodnej takryny oraz diagnostycznym radionuklidzie, według wynalazku, polega na tym, że do cząsteczki pochodnej takryny przyłącza się chelator amidu kwasu hydrazyn on ikotynowego (Hynic) lub makrocykliczny ligand kwasu 1,4,7,10-tetraazacyklododekano-1,4,7,10-tetraoctowego (DOTA), kwasu 1,4,7,10-tetraazacyklododekano-1 ,-glutarowo-4,7,10-tetraoctowego (DOTAGA), kwasu 1,4,7-triazacyklononano-trioctowego (NOTA) lub kwasu 1,4,7-triazacyclononano-1-glutarowo-4,7-octowego (NODAGA) poprzez atom azotu z l-rzędowej grupy aminowej położonej na końcu łańcucha węglowodorowego Tac(9), w taki sposób, że roztwór pochodnej takryny rozpuszczonej w bezwodnym rozpuszczalniku organicznym, wybranym z grupy obejmującej N,N-dimetyloformamid (DMF), dimetylosulfotlenek (DMSO), acetonitryl, miesza się z roztworem chelatora Hynic, DOTA, DOTAGA, NOTA lub NODAGA, w tym samym rozpuszczalniku, a do mieszaniny reakcyjnej dodaje się kilkakrotny nadmiar trietyloaminy (EtsN), całość wysyca azotem i miesza mieszadłem magnetycznym w temperaturze 50°C-60°C przez okres 24 godzin, przy czym postęp reakcji kontroluje się metodą HPLC, aż do uzyskania koniugatu ligandu Hynic lub makrocyklicznego ligandu DOTA, DOTAGA, NOTA lub NODAGA z cząsteczką pochodnej takryny, co potwierdzono analizą spektrometrii mas (MS), z wydajnością reakcji rzędu 78-93%, po czym uzyskany koniugat Hynic-Tac(9), DOTA-Tac(9), DOTAGA-Tac(9), NOTA-Tac(9) lub NODAGA-Tac(9) znakuje się radionuklidem technetem-99m w przypadku koniugatu Hynic-Tac(9), lub radionuklidem diagnostycznym tworzącym kompleksy z ligandem DOTA, DOTAGA, NOTA lub NODAGA, wybranym z grupy obejmującej gal-68, skand-43 lub skand-44, zgodnie ze znaną procedurą, w przypadku koniugatów Hynic-Tac(9), DOTA-Tac(9), DOTAGA-Tac(9) ogrzewanie w temperaturze 85°C-90°C przez 25 min, w przypadku koniugatów NOTA-Tac(9) i NODAGA-Tac(9) w temperaturze pokojowej przez 10 min, a następnie wyizolowuje się z mieszaniny reakcyjnej dany radiobiokoniugat przy użyciu półpreparatywnej metody wysokoprawnej chromatografii cieczowej (HPLC).
PL236 172 Β1
W sposobie według wynalazku, korzystnie roztwór pochodnej takryny rozpuszczonej w bezwodnym rozpuszczalniku organicznym miesza się z roztworem chelatora bezpośrednio, lub po wcześniejszym wprowadzeniu do cząsteczki chelatora grupy funkcyjnej NHS lub SCN, a w przypadku ligandów DOTAGA i NODAGA także przy użyciu bezwodników DOTAGA-bezwodnik i NODAGA-bezwodnik, rozpuszczonych w tym samym rozpuszczalniku.
Zastosowanie radiofarmaceutyku diagnostycznego, według wynalazku, do obrazowania podwyższonego poziomu acetylocholinoesterazy występującego w stanach chorobowych wątroby i jelit, a zwłaszcza w obszarach mózgu, w których na skutek choroby Alzheimera doszło do neurodegeneracji.
Wyizolowane z mieszaniny reakcyjnej radiobiokoniugaty wykazują niezmienioną aktywność biologiczną do cholinoesteraz, porównywalną z aktywnością biologiczną takryny.
Przedmiot wynalazku zilustrowano w podanych niżej przykładach.
Przykład I
W probówce eppendorfa do roztworu 0,55 mg (1,63-103 mmola) Tac(9) rozpuszczonej w 100 μί acetonitrylu dodano 0,6 mg (2,1-10 3 mmola) ligandu Hynic-NHS rozpuszczonego również w 100 μί acetonitrylu oraz 1,15 μΙ_ (8,22-10 3 mmola) EtsN. Mieszaninę reakcyjną wysycono argonem i pozostawiono w temperaturze 55°C, na mieszadle magnetycznym na okres 24 h. Postęp reakcji kontrolowano za pomocą metody HPLC. Produktem reakcji był koniugat ligandu Hynic z cząsteczką Tac(9), Hynic-Tac(9), (wydajność reakcji była rzędu 80%), co zostało potwierdzone analizą MS. Ligand Hynic został przyłączony do cząsteczki Tac(9) poprzez atom azotu l-rzędowej grupy aminowej położonej na końcu łańcucha węglowodorowego cząsteczki pochodnej takryny.
Proces znakowania koniugatu Hynic-Tac(9) radionuklidem technet-99m przeprowadzono zgodnie ze znaną już procedurą (w obecności 20 mg trycyny, 5 mg EDDA, 80 μg SnCb i eluatu z generatora Mo/99mTc, ogrzewanie w temp. 90°C przez 25 min), a następnie stosując wyizolowany (przy użyciu półpreparatywnej metody HPLC) z mieszaniny reakcyjnej radiobiokoniugat [99mTc]Tc-Hynic-Tac(9), (wzór 1a), zbadano jego aktywność biologiczną względem enzymów acetylocholinoesterazy i butylocholinoesterazy. Wyniki badań wykazały aktywność biologiczną radiobiokoniugatu porównywalną z aktywnością biologiczną takryny.
Przykład II
W probówce eppendorf do roztworu 0,38 mg (1,12-10 3 mmola) Tac(9) rozpuszczonej w 100 μί DMF wlano roztwór 1,30 mg (1,71-103 mmola) chelatora DOTA-NHS rozpuszczonego również w 100 μί DMF. Do mieszaniny reakcyjnej dodano 0,67 μί (4,78-10 3 mmola) EtsN, całość wysycono azotem i pozostawiono na mieszadle magnetycznym w temperaturze 50°C przez okres 24 godzin. Postęp reakcji kontrolowano za pomocą metody HPLC. Produktem reakcji był koniugat makrocyklicznego ligandu DOTA z cząsteczką Tac(9), DOTA-Tac(9), (wydajność reakcji była rzędu 80%), co zostało potwierdzone analizą MS. Makrocykliczny ligand DOTA został przyłączony do cząsteczki Tac(9) poprzez atom azotu l-rzędowej grupy aminowej położonej na końcu łańcucha węglowodorowego cząsteczki pochodnej takryny.
Proces znakowania koniugatu makrocyklicznego ligandu DOTA z cząsteczką Tac(9) radionuklidem gal-68 przeprowadzono zgodnie ze znaną już procedurą (ogrzewanie w temp. 90°C przez 25 min), a następnie radiobiokoniugat [68Ga]Ga-DOTA-Tac(9), (wzór 2a), wyizolowano z mieszaniny reakcyjnej stosując półpreparatywną metodę HPLC. Stosując ‘zimny’ związek referencyjny Ga-DOTA-Tac(9) zbadano jego aktywność biologiczną względem enzymów acetylocholinoesterazy i butylocholinoesterazy. Wyniki badań wykazały aktywność biologiczną preparatu Ga-DOTA-Tac(9), a więc także radiobiokoniugatu [68Ga]Ga-DOTA-Tac(9) porównywalną z aktywnością biologiczną takryny.
PL236 172 Β1
Przykład III
Do probówki typu eppendorf zawierającej 1,27 mg (2,21 -10 3 mmola) chelatora DOTAGA-NHS, rozpuszczonego w 120 μί bezwodnego DMF (lub 0,98 mg tj. 2,14-10 3 mmola chelatora DOTAGA-bezwodnik, wlano roztwór 0,88 mg (2,18-10 3 mmola) Tac(9) rozpuszczonej również w 120 μΙ_ DMF oraz, w przypadku użycia chelatora DOTAGA-NHS, 1,3 μΙ_ (9,33-10 3 mmola) EtsN. Całość wysycono azotem i pozostawiono na mieszadle magnetycznym w temperaturze 50°C przez okres 24 godzin. Postęp reakcji kontrolowano za pomocą metody HPLC. Produktem reakcji był koniugat makrocyklicznego ligandu DOTAGA z cząsteczką Tac(9), DOTAGA-Tac(9), (wydajność reakcji w przypadku użycia chelatora DOTAGA-NHS była rzędu 93%, natomiast w przypadku chelatora DOTAGA-bezwodnik 78%), co zostało potwierdzone analizą MS. Makrocykliczny ligand DOTAGA został przyłączony do cząsteczki Tac(9) poprzez atom azotu l-rzędowej grupy aminowej położonej na końcu łańcucha węglowodorowego cząsteczki pochodnej takryny.
Proces znakowania koniugatu makrocyklicznego ligandu DOTAGA z cząsteczką Tac(9) radionuklidem diagnostycznym gal-68 przeprowadzono zgodnie ze znaną już procedurą (w temperaturze pokojowej przez 25 min), a następnie radiobiokoniugat [68Ga]Ga-DOTAGA-Tac(9), (wzór 3a), wyizolowano z mieszaniny reakcyjnej stosując półpreparatywną metodę HPLC.
Przykład IV
Do probówki typu eppendorf zawierającej 1,12 mg (1,54-10 3 mmola) chelatora NODAGA-NHS (lub 0,58 mg tj. 1,62-10 3 mmola chelatora NODAGA-bezwodnik), rozpuszczonego w 110 μί bezwodnego DMSO, wlano roztwór 0,78 mg (1,93-10 3 mmola) Tac(9) rozpuszczonej również w 110 μί DMSO oraz, w przypadku użycia chelatora NODAGA-NHS, 1,3 μί (9,33-103 mmola) EtsN. Całość wysycono azotem i pozostawiono na mieszadle magnetycznym w temperaturze 50°C przez okres 24 godzin. Postęp reakcji kontrolowano za pomocą metody HPLC. Produktem reakcji był koniugat makrocyklicznego ligandu NODAGA z cząsteczką Tac(9), NODAGA-Tac(9), (wydajność reakcji w przypadku użycia chelatora NODAGA-NHS była rzędu 90%, natomiast w przypadku chelatora NODAGA-anhydride 82%), co zostało potwierdzone analizą MS. Makrocykliczny ligand NODAGA został przyłączony do cząsteczki Tac(9) poprzez atom azotu l-rzędowej grupy aminowej położonej na końcu łańcucha węglowodorowego cząsteczki pochodnej takryny.
Proces znakowania koniugatu makrocyklicznego ligandu NODAGA z cząsteczką Tac(9) radionuklidem diagnostycznym gal-68 przeprowadzono zgodnie ze znaną już procedurą (w temperaturze pokojowej przez 25 min), a następnie radiobiokoniugat [®8Ga]Ga-NODAGA-Tac(9), (wzór 5a), wyizolowano zmie
PL236 172 Β1 szaniny reakcyjnej stosując półpreparatywną metodę HPLC. Stosując ‘zimny’ związek referencyjny Ga-NODAGA-Tac(9) zbadano jego aktywność biologiczną względem enzymów acetylocholinoesterazy i butylocholinoesterazy. Wyniki badań wykazały aktywność biologiczną preparatu Ga-NODAGA-Tac(9) (a więc także radiobiokoniugatu [®8Ga]Ga-NODAGA-Tac(9) porównywalną z aktywnością biologiczną takryny.

Claims (4)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Radiofarmaceutyk diagnostyczny do obrazowania poziomu cholinoesteraz, który stanowi pochodna takryny N-(1,2,3,4-tetrahydroakrydyno-9-yl)nonan-1,9-diamina, (Tac(9)), znamienny tym, że pochodna ta jest przyłączona do ligandu amidu kwasu hydrazynonikotynowego (Hynic) lub do makrocyklicznego ligandu kwasu 1,4,7,10-tetraazacyklododekano-1,4,7,10-tetraoctowego (DOTA), kwasu 1,4,7,10-tetraazacyklododekano-1,-glutarowo-4,7,10-tetraoctowego (DOTAGA), kwasu 1,4,7-triazacyklononano-trioctowego (NOTA) lub kwasu 1,4,7-triazacyclononano-1-glutarowo-4,7-octowego (NODAGA), wiązaniem amidowym pomiędzy grupą karboksylową ligandu bezpośrednio lub po sfunkcjonalizowaniu jej grupą NHS, lub wiązaniem tioamidowym pomiędzy wcześniej wprowadzoną do cząsteczki używanego ligandu grupą funkcyjną izotiocyjanianu fenylu (SCN), a w przypadku ligandów kwasu 1,4,7,10-tetraazacyklododekano-1,-glutarowo-4,7,10-tetraoctowego (DOTAGA) i kwasu 1,4,7-triazacyclononano-1-glutarowo-4,7-octowego (NODAGA) także przy użyciu bezwodników kwasu 1,4,7,10-tetraazacyklododekano-1,-glutarowo-4,7,10-tetraoctowego (DOTAGA) bezwodnik i kwasu 1,4,7-triazacyclononano-1-glutarowo-4,7-octowego (NODAGA), a l-rzędową grupą aminową położoną na końcu łańcucha węglowodorowego pochodnej takryny, jak przedstawiono we wzorach 1,2, 3, 4 i 5,
    PL236 172 Β1
    wyznakowany radionuklidem - technetem-99 tworzącym kompleks z ligandem Hynic lub radionuklidem diagnostycznym tworzącym kompleksy z ligandem DOTA, DOTAGA, NOTA lub NODAGA, wybranym z grupy obejmującej gal-68, skand-43 lub skand-44.
  2. 2. Sposób wytwarzania diagnostycznego radiofarmaceutyku do obrazowania poziomu cholinoesteraz, opartego na pochodnej takryny N-(1,2,3,4-tetrahydroakrydyno-9-yl)nonan-1,9-diamina, Tac(9), i diagnostycznym radionuklidzie, znamienny tym, że do cząsteczki pochodnej takryny przyłącza się chelator amidu kwasu hydrazynonikotynowego (Hynic) lub makrocykliczny ligand kwasu 1,4,7,10-tetraazacyklododekano-1,4,7,10-tetraoctowego (DOTA), kwasu 1,4,7,10-tetraazacyklododekano-1,-glutarowo-4,7,10-tetraoctowego (DOTAGA), kwasu 1,4,7-triazacyklononano-trioctowego (NOTA) lub kwasu 1,4,7-triazacyclononano-1-glutarowo-4,7-octowego (NODAGA) poprzez atom azotu z l-rzędowej grupy aminowej położonej na końcu łańcucha węglowodorowego Tac(9), w taki sposób, że roztwór pochodnej takryny rozpuszczonej w bezwodnym rozpuszczalniku organicznym, wybranym z grupy obejmującej Ν,Ν-dimetyloformamid (DMF), dimetylosulfotlenek (DMSO), acetonitryl, miesza się z roztworem chelatora Hynic, DOTA, DOTAGA, NOTA lub NODAGA, w tym samym rozpuszczalniku, a do mieszaniny reakcyjnej dodaje się kilkakrotny nadmiar trietyloaminy (EtsN), całość wysyca azotem i miesza mieszadłem magnetycznym w temperaturze 50°C-60°C przez okres 24 godzin, przy czym postęp reakcji kontroluje się metodą HPLC, aż do uzyskania koniugatu ligandu Hynic lub makrocyklicznego ligandu DOTA, DOTAGA, NOTA lub NODAGA z cząsteczką pochodnej takryny, co potwierdzono analizą spektrometrii mas (MS), z wydaj
    PL 236 172 B1 nością reakcji rzędu 78-93%, po czym uzyskany koniugat Hynic-Tac(9), DOTA-Tac(9), DOTAGA-Tac(9), NOTA-Tac(9) lub NODAGA-Tac(9) znakuje się radionuklidem technetem-99m w przypadku koniugatu Hynic-Tac(9), lub radionuklidem diagnostycznym tworzącym kompleksy z ligandem DOTA, DOTAGA, NOTA lub NODAGA, wybranym z grupy obejmującej gal-68, skand-43 lub skand-44, zgodnie ze znaną procedurą, w przypadku koniugatów Hynic-Tac(9), DOTA-Tac(9), DOTAGA-Tac(9) ogrzewanie w temperaturze 85°C-90°C przez 25 min, w przypadku koniugatów NOTA-Tac(9) i NODAGA-Tac(9) w temperaturze pokojowej przez 10 min, a następnie wyizolowuje się z mieszaniny reakcyjnej dany radiobiokoniugat przy użyciu półpreparatywnej metody wysokoprawnej chromatografii cieczowej (HPLC).
  3. 3. Sposób według zastrz. 2, znamienny tym, że roztwór pochodnej takryny rozpuszczonej w bezwodnym rozpuszczalniku organicznym, miesza się z roztworem chelatora Hynic, DOTA, DOTAGA, NOTA lub NODAGA, bezpośrednio lub po wcześniejszym wprowadzeniu do cząsteczki chelatora grupy funkcyjnej estru imidobursztynianowego (NHS) lub izotiocyjanianu fenylu (SCN), a w przypadku ligandów DOTAGA i NODAGA także przy użyciu bezwodników kwasu 1,4,7,10-tetraazacyklododekano-1,-glutarowo-4,7,10-tetraoctowego (DOTAGA) bezwodnik i kwasu 1,4,7-triazacycIononano-1-glutarowo-4,7-octowego (NODAGA), w tym samym rozpuszczalniku.
  4. 4. Zastosowanie radiofarmaceutyku diagnostycznego, według zastrz. 1, do obrazowania podwyższonego poziomu acetylocholinoesterazy występującego w stanach chorobowych wątroby i jelit, a zwłaszcza w obszarach mózgu, w których na skutek choroby Alzheimera doszło do neurodegeneracji.
PL415771A 2016-01-12 2016-01-12 Radiofarmaceutyk diagnostyczny do obrazowania poziomu cholinoesteraz, sposób jego wytwarzania oraz jego zastosowanie PL236172B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL415771A PL236172B1 (pl) 2016-01-12 2016-01-12 Radiofarmaceutyk diagnostyczny do obrazowania poziomu cholinoesteraz, sposób jego wytwarzania oraz jego zastosowanie

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL415771A PL236172B1 (pl) 2016-01-12 2016-01-12 Radiofarmaceutyk diagnostyczny do obrazowania poziomu cholinoesteraz, sposób jego wytwarzania oraz jego zastosowanie

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL415771A1 PL415771A1 (pl) 2017-07-17
PL236172B1 true PL236172B1 (pl) 2020-12-14

Family

ID=59298058

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL415771A PL236172B1 (pl) 2016-01-12 2016-01-12 Radiofarmaceutyk diagnostyczny do obrazowania poziomu cholinoesteraz, sposób jego wytwarzania oraz jego zastosowanie

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL236172B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL415771A1 (pl) 2017-07-17

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Nolting et al. Molecular imaging probe development: a chemistry perspective
AU2009220244B2 (en) Contrast agents for applications including perfusion imaging
Toretsky et al. Preparation of F-18 labeled annexin V: a potential PET radiopharmaceutical for imaging cell death
CA2881001C (en) Compositions, methods, and systems for the synthesis and use of imaging agents
AU2010271097B2 (en) N-alkoxyamide conjugates as imaging agents
Verhoeven et al. New fluoroethyl phenylalanine analogues as potential LAT1-targeting PET tracers for glioblastoma
BR112012030935B1 (pt) método para a produção de ligantes de beta-amiloide marcados com f-18
CN109641900A (zh) 螯合化合物
CA2764366C (en) Imaging of myelin basic protein
Jain et al. 68Ga labeled Erlotinib: A novel PET probe for imaging EGFR over-expressing tumors
BRPI0808503B1 (pt) Composto, uso de um composto, e, composição farmacêutica
Kiviniemi et al. Solid-supported NOTA and DOTA chelators useful for the synthesis of 3′-radiometalated oligonucleotides
WO2021034924A1 (en) Trans-cyclooctene labeled antisense oligonucleotides, radio labeled tetrazine and methods
KR20120101073A (ko) 아이오딘 표지된 호모글루탐산 및 글루탐산 유도체
KR101315152B1 (ko) 신규 유기화합물 및 상기 화합물을 이용한 방사성 할로겐표식 유기화합물의 제조 방법
Wilson et al. A one‐pot radiosynthesis of [18F] PARPi
PL236172B1 (pl) Radiofarmaceutyk diagnostyczny do obrazowania poziomu cholinoesteraz, sposób jego wytwarzania oraz jego zastosowanie
Beuché et al. Design, Radiosynthesis, and Evaluation of New Fluorinated Analogs of MeDAS for Myelin PET Imaging
AU2013324636B2 (en) Radiopharmaceutical products for diagnosis and therapy of adrenal carcinoma
Fuge et al. Comparison and systematic optimization of synthetic protocols for DOTA–hydrazide generation
Milicevic Sephton et al. Synthesis and biological evaluation of quinoxaline derivatives for PET imaging of the NMDA receptor
Nabuurs et al. Bis-pyridylethenyl benzene as novel backbone for amyloid-β binding compounds
JPWO2006107106A1 (ja) 小胞アセチルコリントランスポーターに対するリガンド
JP7664650B2 (ja) グアノシン誘導体及びその製造法
JPWO2019026797A1 (ja) 凝集タンパク質の検出に適した化合物