PL226891B1 - Sposób wytwarzania implantu kostnego iimplant kostny - Google Patents
Sposób wytwarzania implantu kostnego iimplant kostnyInfo
- Publication number
- PL226891B1 PL226891B1 PL412238A PL41223815A PL226891B1 PL 226891 B1 PL226891 B1 PL 226891B1 PL 412238 A PL412238 A PL 412238A PL 41223815 A PL41223815 A PL 41223815A PL 226891 B1 PL226891 B1 PL 226891B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- implant
- hydroxyapatite
- support structure
- suspension
- layer
- Prior art date
Links
- 239000007943 implant Substances 0.000 title claims abstract description 94
- 210000000988 bone and bone Anatomy 0.000 title claims description 42
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 title abstract description 11
- XYJRXVWERLGGKC-UHFFFAOYSA-D pentacalcium;hydroxide;triphosphate Chemical compound [OH-].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O XYJRXVWERLGGKC-UHFFFAOYSA-D 0.000 claims abstract description 70
- 229910052588 hydroxylapatite Inorganic materials 0.000 claims abstract description 66
- 238000000576 coating method Methods 0.000 claims abstract description 28
- 239000000725 suspension Substances 0.000 claims abstract description 23
- 239000011248 coating agent Substances 0.000 claims abstract description 20
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 17
- 239000007788 liquid Substances 0.000 claims abstract description 10
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 82
- 239000000463 material Substances 0.000 claims description 28
- 230000008569 process Effects 0.000 claims description 27
- 239000011575 calcium Substances 0.000 claims description 22
- QORWJWZARLRLPR-UHFFFAOYSA-H tricalcium bis(phosphate) Chemical compound [Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O QORWJWZARLRLPR-UHFFFAOYSA-H 0.000 claims description 15
- OYPRJOBELJOOCE-UHFFFAOYSA-N Calcium Chemical compound [Ca] OYPRJOBELJOOCE-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 13
- 229910052791 calcium Inorganic materials 0.000 claims description 13
- 238000002604 ultrasonography Methods 0.000 claims description 12
- 239000001506 calcium phosphate Substances 0.000 claims description 11
- 235000011010 calcium phosphates Nutrition 0.000 claims description 11
- 239000011574 phosphorus Substances 0.000 claims description 10
- 229910052698 phosphorus Inorganic materials 0.000 claims description 10
- OAICVXFJPJFONN-UHFFFAOYSA-N Phosphorus Chemical compound [P] OAICVXFJPJFONN-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 9
- 229910000389 calcium phosphate Inorganic materials 0.000 claims description 9
- 229910010293 ceramic material Inorganic materials 0.000 claims description 5
- 229920005594 polymer fiber Polymers 0.000 claims description 3
- 239000002002 slurry Substances 0.000 claims description 2
- 239000002245 particle Substances 0.000 abstract description 11
- 239000010410 layer Substances 0.000 description 72
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 description 16
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 16
- 239000000919 ceramic Substances 0.000 description 13
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 12
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 11
- 239000002105 nanoparticle Substances 0.000 description 8
- 230000007547 defect Effects 0.000 description 7
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 description 7
- 239000011148 porous material Substances 0.000 description 7
- 239000000843 powder Substances 0.000 description 7
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 7
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 6
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 6
- 230000010478 bone regeneration Effects 0.000 description 5
- 238000000151 deposition Methods 0.000 description 5
- 230000008021 deposition Effects 0.000 description 5
- 239000003102 growth factor Substances 0.000 description 5
- 229910052751 metal Inorganic materials 0.000 description 5
- 239000002184 metal Substances 0.000 description 5
- 239000011858 nanopowder Substances 0.000 description 5
- 230000000399 orthopedic effect Effects 0.000 description 5
- 229920001610 polycaprolactone Polymers 0.000 description 5
- 239000004632 polycaprolactone Substances 0.000 description 5
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 4
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 4
- 210000003128 head Anatomy 0.000 description 4
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 4
- 239000008188 pellet Substances 0.000 description 4
- 239000004033 plastic Substances 0.000 description 4
- 229920003023 plastic Polymers 0.000 description 4
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 4
- 238000001356 surgical procedure Methods 0.000 description 4
- 102000008186 Collagen Human genes 0.000 description 3
- 108010035532 Collagen Proteins 0.000 description 3
- 238000010171 animal model Methods 0.000 description 3
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 3
- 239000012620 biological material Substances 0.000 description 3
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 3
- 229920001436 collagen Polymers 0.000 description 3
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 3
- 239000000835 fiber Substances 0.000 description 3
- 238000011049 filling Methods 0.000 description 3
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 3
- 230000012010 growth Effects 0.000 description 3
- 238000002513 implantation Methods 0.000 description 3
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 3
- 230000000877 morphologic effect Effects 0.000 description 3
- 238000007491 morphometric analysis Methods 0.000 description 3
- 239000002086 nanomaterial Substances 0.000 description 3
- 238000005240 physical vapour deposition Methods 0.000 description 3
- 238000007750 plasma spraying Methods 0.000 description 3
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 3
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 3
- 230000008929 regeneration Effects 0.000 description 3
- 238000011069 regeneration method Methods 0.000 description 3
- 238000001878 scanning electron micrograph Methods 0.000 description 3
- 230000017423 tissue regeneration Effects 0.000 description 3
- 239000010936 titanium Substances 0.000 description 3
- 229910052719 titanium Inorganic materials 0.000 description 3
- 238000011282 treatment Methods 0.000 description 3
- BVKZGUZCCUSVTD-UHFFFAOYSA-M Bicarbonate Chemical compound OC([O-])=O BVKZGUZCCUSVTD-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- WZUVPPKBWHMQCE-UHFFFAOYSA-N Haematoxylin Chemical compound C12=CC(O)=C(O)C=C2CC2(O)C1C1=CC=C(O)C(O)=C1OC2 WZUVPPKBWHMQCE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 206010028980 Neoplasm Diseases 0.000 description 2
- 241000283977 Oryctolagus Species 0.000 description 2
- RTAQQCXQSZGOHL-UHFFFAOYSA-N Titanium Chemical compound [Ti] RTAQQCXQSZGOHL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000013543 active substance Substances 0.000 description 2
- 229910052586 apatite Inorganic materials 0.000 description 2
- 230000008468 bone growth Effects 0.000 description 2
- 210000001185 bone marrow Anatomy 0.000 description 2
- 230000001413 cellular effect Effects 0.000 description 2
- 230000008859 change Effects 0.000 description 2
- 238000005229 chemical vapour deposition Methods 0.000 description 2
- 239000002131 composite material Substances 0.000 description 2
- 239000013078 crystal Substances 0.000 description 2
- 230000006378 damage Effects 0.000 description 2
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 2
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 2
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 2
- 238000002844 melting Methods 0.000 description 2
- 230000008018 melting Effects 0.000 description 2
- 150000002739 metals Chemical class 0.000 description 2
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 2
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 2
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 2
- 239000002055 nanoplate Substances 0.000 description 2
- VSIIXMUUUJUKCM-UHFFFAOYSA-D pentacalcium;fluoride;triphosphate Chemical compound [F-].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O VSIIXMUUUJUKCM-UHFFFAOYSA-D 0.000 description 2
- 238000007745 plasma electrolytic oxidation reaction Methods 0.000 description 2
- 230000035755 proliferation Effects 0.000 description 2
- 238000004549 pulsed laser deposition Methods 0.000 description 2
- 239000012925 reference material Substances 0.000 description 2
- 230000001172 regenerating effect Effects 0.000 description 2
- 210000004872 soft tissue Anatomy 0.000 description 2
- UCSJYZPVAKXKNQ-HZYVHMACSA-N streptomycin Chemical compound CN[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](CO)O[C@H]1O[C@@H]1[C@](C=O)(O)[C@H](C)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](NC(N)=N)[C@H](O)[C@@H](NC(N)=N)[C@H](O)[C@H]1O UCSJYZPVAKXKNQ-HZYVHMACSA-N 0.000 description 2
- 239000012815 thermoplastic material Substances 0.000 description 2
- LCSKNASZPVZHEG-UHFFFAOYSA-N 3,6-dimethyl-1,4-dioxane-2,5-dione;1,4-dioxane-2,5-dione Chemical group O=C1COC(=O)CO1.CC1OC(=O)C(C)OC1=O LCSKNASZPVZHEG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000010146 3D printing Methods 0.000 description 1
- SPFYMRJSYKOXGV-UHFFFAOYSA-N Baytril Chemical compound C1CN(CC)CCN1C(C(=C1)F)=CC2=C1C(=O)C(C(O)=O)=CN2C1CC1 SPFYMRJSYKOXGV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910014497 Ca10(PO4)6(OH)2 Inorganic materials 0.000 description 1
- BHPQYMZQTOCNFJ-UHFFFAOYSA-N Calcium cation Chemical compound [Ca+2] BHPQYMZQTOCNFJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229920001661 Chitosan Polymers 0.000 description 1
- 102000004127 Cytokines Human genes 0.000 description 1
- 108090000695 Cytokines Proteins 0.000 description 1
- KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N EDTA Chemical compound OC(=O)CN(CC(O)=O)CCN(CC(O)=O)CC(O)=O KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000283973 Oryctolagus cuniculus Species 0.000 description 1
- 229910019142 PO4 Inorganic materials 0.000 description 1
- 229930182555 Penicillin Natural products 0.000 description 1
- JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N Penicillin G Chemical compound N([C@H]1[C@H]2SC([C@@H](N2C1=O)C(O)=O)(C)C)C(=O)CC1=CC=CC=C1 JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N 0.000 description 1
- 208000006735 Periostitis Diseases 0.000 description 1
- NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-N Phosphoric acid Chemical compound OP(O)(O)=O NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000004696 Poly ether ether ketone Substances 0.000 description 1
- 239000004952 Polyamide Substances 0.000 description 1
- 239000004792 Prolene Substances 0.000 description 1
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 229920002125 Sokalan® Polymers 0.000 description 1
- 229910001069 Ti alloy Inorganic materials 0.000 description 1
- 102000004142 Trypsin Human genes 0.000 description 1
- 108090000631 Trypsin Proteins 0.000 description 1
- 208000027418 Wounds and injury Diseases 0.000 description 1
- 230000004913 activation Effects 0.000 description 1
- 230000006978 adaptation Effects 0.000 description 1
- 238000000137 annealing Methods 0.000 description 1
- 230000000844 anti-bacterial effect Effects 0.000 description 1
- 230000003110 anti-inflammatory effect Effects 0.000 description 1
- 239000007900 aqueous suspension Substances 0.000 description 1
- 238000005452 bending Methods 0.000 description 1
- JUPQTSLXMOCDHR-UHFFFAOYSA-N benzene-1,4-diol;bis(4-fluorophenyl)methanone Chemical compound OC1=CC=C(O)C=C1.C1=CC(F)=CC=C1C(=O)C1=CC=C(F)C=C1 JUPQTSLXMOCDHR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000000975 bioactive effect Effects 0.000 description 1
- 230000005540 biological transmission Effects 0.000 description 1
- 230000003592 biomimetic effect Effects 0.000 description 1
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 1
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 1
- 210000004204 blood vessel Anatomy 0.000 description 1
- 210000001124 body fluid Anatomy 0.000 description 1
- 239000010839 body fluid Substances 0.000 description 1
- 229910001424 calcium ion Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000004663 cell proliferation Effects 0.000 description 1
- 239000004020 conductor Substances 0.000 description 1
- 239000000356 contaminant Substances 0.000 description 1
- 238000001816 cooling Methods 0.000 description 1
- 238000005520 cutting process Methods 0.000 description 1
- 239000008367 deionised water Substances 0.000 description 1
- 229910021641 deionized water Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000001419 dependent effect Effects 0.000 description 1
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 1
- 238000007598 dipping method Methods 0.000 description 1
- 238000009826 distribution Methods 0.000 description 1
- 238000001652 electrophoretic deposition Methods 0.000 description 1
- 238000009713 electroplating Methods 0.000 description 1
- 229960000740 enrofloxacin Drugs 0.000 description 1
- YQGOJNYOYNNSMM-UHFFFAOYSA-N eosin Chemical compound [Na+].OC(=O)C1=CC=CC=C1C1=C2C=C(Br)C(=O)C(Br)=C2OC2=C(Br)C(O)=C(Br)C=C21 YQGOJNYOYNNSMM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000011156 evaluation Methods 0.000 description 1
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 1
- 238000001125 extrusion Methods 0.000 description 1
- 239000004744 fabric Substances 0.000 description 1
- 230000002349 favourable effect Effects 0.000 description 1
- 210000001061 forehead Anatomy 0.000 description 1
- 238000004108 freeze drying Methods 0.000 description 1
- 238000007710 freezing Methods 0.000 description 1
- 230000008014 freezing Effects 0.000 description 1
- 239000003517 fume Substances 0.000 description 1
- 239000007789 gas Substances 0.000 description 1
- 238000002695 general anesthesia Methods 0.000 description 1
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 description 1
- 238000007490 hematoxylin and eosin (H&E) staining Methods 0.000 description 1
- 210000001981 hip bone Anatomy 0.000 description 1
- DLINORNFHVEIFE-UHFFFAOYSA-N hydrogen peroxide;zinc Chemical compound [Zn].OO DLINORNFHVEIFE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000010335 hydrothermal treatment Methods 0.000 description 1
- 210000001621 ilium bone Anatomy 0.000 description 1
- 238000010191 image analysis Methods 0.000 description 1
- 239000003112 inhibitor Substances 0.000 description 1
- 238000001746 injection moulding Methods 0.000 description 1
- 208000014674 injury Diseases 0.000 description 1
- 229910052500 inorganic mineral Inorganic materials 0.000 description 1
- 238000010884 ion-beam technique Methods 0.000 description 1
- 150000002500 ions Chemical class 0.000 description 1
- 238000001755 magnetron sputter deposition Methods 0.000 description 1
- 229910044991 metal oxide Inorganic materials 0.000 description 1
- 150000004706 metal oxides Chemical class 0.000 description 1
- 238000010603 microCT Methods 0.000 description 1
- 238000000386 microscopy Methods 0.000 description 1
- 239000004005 microsphere Substances 0.000 description 1
- 239000011707 mineral Substances 0.000 description 1
- 238000012544 monitoring process Methods 0.000 description 1
- 231100000956 nontoxicity Toxicity 0.000 description 1
- 230000006911 nucleation Effects 0.000 description 1
- 238000010899 nucleation Methods 0.000 description 1
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 1
- 201000008968 osteosarcoma Diseases 0.000 description 1
- 230000035515 penetration Effects 0.000 description 1
- 229940049954 penicillin Drugs 0.000 description 1
- 210000003460 periosteum Anatomy 0.000 description 1
- NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K phosphate Chemical compound [O-]P([O-])([O-])=O NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 1
- 239000010452 phosphate Substances 0.000 description 1
- 235000021317 phosphate Nutrition 0.000 description 1
- -1 phosphorus ions Chemical class 0.000 description 1
- 229920002647 polyamide Polymers 0.000 description 1
- 229920006260 polyaryletherketone Polymers 0.000 description 1
- 229920002530 polyetherether ketone Polymers 0.000 description 1
- 239000002861 polymer material Substances 0.000 description 1
- 229920000307 polymer substrate Polymers 0.000 description 1
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 description 1
- 230000001376 precipitating effect Effects 0.000 description 1
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 description 1
- 238000003825 pressing Methods 0.000 description 1
- 230000000770 proinflammatory effect Effects 0.000 description 1
- 230000008439 repair process Effects 0.000 description 1
- 238000012552 review Methods 0.000 description 1
- 239000012890 simulated body fluid Substances 0.000 description 1
- 238000002791 soaking Methods 0.000 description 1
- 238000003980 solgel method Methods 0.000 description 1
- 239000007921 spray Substances 0.000 description 1
- 238000009718 spray deposition Methods 0.000 description 1
- 238000005507 spraying Methods 0.000 description 1
- 238000010186 staining Methods 0.000 description 1
- 238000010561 standard procedure Methods 0.000 description 1
- 230000004936 stimulating effect Effects 0.000 description 1
- 229960005322 streptomycin Drugs 0.000 description 1
- 238000010254 subcutaneous injection Methods 0.000 description 1
- 239000007929 subcutaneous injection Substances 0.000 description 1
- 239000002344 surface layer Substances 0.000 description 1
- 238000001308 synthesis method Methods 0.000 description 1
- 230000001225 therapeutic effect Effects 0.000 description 1
- 238000009210 therapy by ultrasound Methods 0.000 description 1
- 238000007669 thermal treatment Methods 0.000 description 1
- 230000008354 tissue degradation Effects 0.000 description 1
- 230000008467 tissue growth Effects 0.000 description 1
- 150000003608 titanium Chemical class 0.000 description 1
- 238000012546 transfer Methods 0.000 description 1
- 230000007704 transition Effects 0.000 description 1
- 239000012588 trypsin Substances 0.000 description 1
- 238000003826 uniaxial pressing Methods 0.000 description 1
- 238000007740 vapor deposition Methods 0.000 description 1
- 239000011800 void material Substances 0.000 description 1
- 230000004580 weight loss Effects 0.000 description 1
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/28—Materials for coating prostheses
- A61L27/30—Inorganic materials
- A61L27/32—Phosphorus-containing materials, e.g. apatite
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/02—Inorganic materials
- A61L27/10—Ceramics or glasses
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/02—Inorganic materials
- A61L27/12—Phosphorus-containing materials, e.g. apatite
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/14—Macromolecular materials
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/50—Materials characterised by their function or physical properties, e.g. injectable or lubricating compositions, shape-memory materials, surface modified materials
- A61L27/56—Porous materials, e.g. foams or sponges
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L31/00—Materials for other surgical articles, e.g. stents, stent-grafts, shunts, surgical drapes, guide wires, materials for adhesion prevention, occluding devices, surgical gloves, tissue fixation devices
- A61L31/08—Materials for coatings
- A61L31/082—Inorganic materials
- A61L31/086—Phosphorus-containing materials, e.g. apatite
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L2400/00—Materials characterised by their function or physical properties
- A61L2400/12—Nanosized materials, e.g. nanofibres, nanoparticles, nanowires, nanotubes; Nanostructured surfaces
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L2420/00—Materials or methods for coatings medical devices
- A61L2420/02—Methods for coating medical devices
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L2430/00—Materials or treatment for tissue regeneration
- A61L2430/02—Materials or treatment for tissue regeneration for reconstruction of bones; weight-bearing implants
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Public Health (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Oral & Maxillofacial Surgery (AREA)
- Transplantation (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Dermatology (AREA)
- Inorganic Chemistry (AREA)
- Dispersion Chemistry (AREA)
- Heart & Thoracic Surgery (AREA)
- Surgery (AREA)
- Vascular Medicine (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Ceramic Engineering (AREA)
- Materials For Medical Uses (AREA)
- Prostheses (AREA)
Description
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania implantu kostnego mającego postać struktury nośnej pokrytej przynajmniej częściowo syntetycznym hydroksyapatytem oraz implant kostny, znajdujący zastosowanie w ortopedii, chirurgii urazowej (traumatologii), implantologii regeneracyjnej, który umożliwia lub przyspiesza regenerację tkanki kostnej.
W medycynie, a w szczególności w ortopedii, stomatologii i traumatologii, oraz w leczeniu ubytków kości spowodowanych usunięciem nowotworu, wykorzystuje się implanty, zwane również rusztowaniami dla regeneracji tkanki kostnej (ang. scaffold) w celu przyśpieszenia, lub umożliwienia odtworzenia przez organizm, tkanki kostnej utraconej w wyniku urazu, operacji wycięcia nowotworu, operacji ortopedycznej, chirurgii stomatologicznej, usunięcia zęba, innych przyczyn, lub też poprawienie estetyki. Do wytworzenia takich implantów wykorzystuje się różnego rodzaju biomateriały syntetyczne (metale, ceramiki, tworzywa sztuczne - polimerowe, kompozyty), jak i materiały pochodzenia naturalnego. Muszą one spełniać wiele warunków, m.in. brak toksyczności dla organizmu, zapełnienie objętości po brakującej kości i odpowiednie właściwości mechaniczne. Szczególnie cenną cechą takich materiałów jest ich bio-resorbowalność.
Obecnie istnieje wiele metod leczenia niewielkich ubytków w kości, lecz nadal nie znaleziono rozwiązania w przypadku dużych ubytków tkankowych (tzw. ubytków krytycznych). Aby wypełnić ubytek i ułatwić aktywną regenerację kostną należy wykonać rusztowanie (implant) wypełniający przestrzeń ubytku oraz przenoszący obciążenia mechaniczne, dzięki któremu tkanka kostna stopniowo wypełnia przestrzeń luki. Korzystne jest, aby z czasem implant został zresorbowany, a cała przestrzeń luki wypełniła się nową tkanką kostną. Dodatkowym kryterium jest zapewnienie przepływu substancji odżywczych i komórek wraz z krwią przez materiał rusztowania. Aby przyspieszyć odbudowę znacznego ubytku tkanki stosuje się modyfikacje powierzchni implantu.
Dla skuteczności implantów kostnych istotną rolę pełnią warstwy powierzchniowe zawierające fosforany wapnia. W kości naturalnej nawet 70% (w zależności od rodzaju tkanki kostnej) stanowi część nieorganiczna, w dużej części składająca się z odkładanego w postaci kryształów hydroksyapatytu. Hydroksyapatyt Ca10(PO4)6(OH)2 jest jednym z głównych składników mineralnych w ciele ludzkim. Odpowiada za twardość oraz wytrzymałość kości i zębów. W organizmie hydroksyapatyt występuje w postaci kryształów o strukturze płytkowej o grubości 2 nm, szerokości 25 nm i długości 50 nm [M. Sadat-Shojai, M.-T. Khorasani, E. Dinpanah-Khoshdargi, A. Jamshidi „Synthesis methods for nanosized hydroxyapatite with diverse structures, Acta Biomaterialia, Vol. 9, 2013, str. 7591-7621]. Jest on materiałem szeroko stosowanym w ortopedii, chirurgii szczękowo-twarzowej i implantologicznej, między innymi do wytwarzania warstw na implantach służących regeneracji kostnej.
Nowe możliwości przyśpieszenia lub umożliwienia regeneracji tkanki kostnej stwarza nanotechnologia, w której właściwości znanych materiałów zmieniają się w sposób często zaskakujący wraz ze zmianą rozmiaru materiału w zakresie od 1 do 100 nm.
W publikacji WO2011/022642 ujawniono pokrycia implantów kostnych porowatą warstwą składającą się z hydroksyapatytu i dwutlenku cynku, przy czym mają one rozmiar większy niż 50 nm.
W publikacji WO 2013/112743 opisano implant z wyspami hydroksyapatytu o średniej grubości 45-70 nm, przy czym brak tam informacji o wielkości nanocząstek hydroksyapatytu i jego stosunku molowym wapnia do fosforu.
W opisie patentowym US6129928 przedstawiono warstwy fosforanów wapnia o nieokreślonej nanostrukturze i o grubości 2-30 pm, naniesione na implantach metalicznych. Wadą ujawnionej tam metody pokrywania tych implantów jest wieloetapowość procesu wytwarzania oraz znaczna grubość otrzymywanych warstw.
W opisie patentowym US5441536 ujawniono metodę wytwarzania warstw hydroksyapatytu na implantach medycznych poprzez obróbkę hydrotermalną w temperaturach ponad 100°C, natomiast nie podano struktury powstałych warstw. Wytworzone tą metodą pokrycia charakteryzuje średnia grubość 50 pm i skłonność do delaminacji przy obciążeniu.
W publikacji WO 2002/078759 opisano bioaktywną warstwę złożoną z różnych faz fosforanowowapniowych. W skład tej warstwy wchodzą amorficzne i nanokrystaliczne fosforany wapnia tworzące porowatą warstwę o grubości od 0,1 do 50 pm i o gęstości porów wynoszącej od 104 do 108/mm2. Taka warstwa może być źródłem jonów wapnia potrzebnych do aktywnej odbudowy kości. Stosunek wapnia do fosforu na całej powierzchni podłoża wynosi od 0,5 do 2. Wadą opisanej warstwy jest konieczność wytworzenia w niej porów. Publikacja sygnalizuje obecność w warstwie nanokrystalicznego
PL 226 891 B1 hydroksyapatytu, nie są jednak podane ważne w nanotechnologii dane takie jak wielkość i rozkład wielkości krystalitów oraz ich struktura. Oprócz tego, fosforki wapnia i hydroksyapatyt stanowią jedynie od 1 do 40% pokrycia. Brak też informacji o pokrywaniu rusztowań porowatych. Publikacja numer CN101703798 ujawnia pokrycie wytworzone metodą wyładowania elektrostatycznego. Otrzymana w taki sposób warstwa składa się z nanocząstek hydroksyapatytu w ilości od 70 do 90% oraz dodatku włókien jedwabnych w ilości od 10 do 30% wagowych. Nie podano natomiast ani grubości warstwy, ani jej struktury.
Publikacja US2011/0281127 ujawnia sposób wywarzania warstwy hydroksyapatytu o grubości od 30 do 50 nm. Optymalną biokompatybilność, potwierdzoną w testach komórkowych, wykazują warstwy złożone z cząstek o średnicy poniżej 50 nm, korzystnie 30 nm. Nie pokazano jednak faktycznej skuteczności takich warstw.
Przeglądowy artykuł S.R. Paital i N. Dahore „Calcium phosphate coatings for bioimplant applications: Materials, performance factors, and methodologies, [Materials Science and Engineering R 66 (2009) 1-70] opisuje różne metody wytwarzania warstw fosforanów wapnia na implantach do regeneracji kości, głównie metalowych, szczególnie stopach tytanu. Publikacja ta ujawnia między innymi nanoszenie z fazy gazowej z rodziny metod PVD (ang. Physical Vapour Deposition) lub CVD (ang. Chemical Vapour Deposition), na przykład metoda IBAD (ang. lon Beam Assisted Deposition) wykorzystująca wiązkę jonową. Opisane są tam także procesy natryskiwania plazmowego (ang. Plasma Spray Deposition), technologie laserowe PLD (ang. Pulsed Laser Deposition), nanoszenia elektroforetycznego, obróbki jarzeniowej np. MAO (ang. Micro-arc oxidation), osadzanie rozpylonych atomów/jonów w polu magnetycznym (ang. Magnetron Sputtering Deposition), Direct laser melting, metoda zol-żel, a także wytwarzanie warstw w roztworach symulujących płyny fizjologiczne (ang. Simulated Body Fluid - SBF). Wiele z tych metod można stosować jedynie do wytwarzania warstw na materiałach odpornych na temperatury powyżej 200°C, co wyklucza ich zastosowanie dla większości tworzyw sztucznych. Z wyżej wymienionych jedynie metoda PVD, zol-żel i wykorzystująca płyny SBF mogą być stosowane w temperaturach poniżej 200°C. W przypadku dwóch ostatnich metod wymagana jest dodatkowo aktywacja powierzchni materiału, aby późniejszy proces zarodkowania przebiegał efektywniej, a także aby wzmocnić połączenie między podłożem a hydroksyapatytem.
Przykład wykorzystania metody napylania plazmowego do pokrywania implantów z tworzywa sztucznego ujawniono w publikacji WO2012/110816. Metoda ta polega na wytworzeniu warstwy przejściowej, na przykład tytanowej, a następnie naniesieniu kolejnej warstwy z materiału polimerowego lub ceramicznego, na przykład hydroksyapatytu. Materiał podłoża musi być odporny na temperatury powyżej 200-250°C (np. PEEK, PAEK, poliamid). Warstwa zewnętrzna, hydroksyapatytu może być nanoszona metodą napylania plazmowego lub galwanicznie. Zaletą tej metody jest dobra przyczepność warstw do podłoża, natomiast jej wadą jest konieczność użycia pośredniej warstwy metalicznej i temperatura procesu większa niż 200°C. Brak informacji o grubości i strukturze tej warstwy.
Innym sposobem wytwarzania warstwy hydroksyapatytu jest tzw. metoda „warstwa po warstwie” (ang. layer by layer - LBL). Takim sposobem wytworzono warstwy kompozytowe składające się z warstw chitozanu z hydroksyapatytem naprzemiennie z warstwą polikwasu akrylowego (PAA). Taką metodę ujawniono w publikacji N.Shah, J.Hong et al. „Osteophilic multilayer coatings for accelerated bone tissue growth” [Adv Mater. 15 maja 2012; 24(11): str. 1445-50], przy czym dodatkowo stosowano warstwę zawierającą czynniki wzrostu takie jak rhBMP-2. Zaletą tej metody jest możliwość otrzymania homogenicznej warstwy, zawierającej także różnego rodzaju substancje aktywne. Proces jest prowadzony w temperaturze pokojowej. Dla zastosowania w skali przemysłowej istnieje konieczność wielokrotnego zamaczania materiału w roztworach. Wydłuża to znacznie czas trwania procesu i zwiększa możliwości wprowadzania zanieczyszczeń. Publikacja S. Goodman, Z. Yao „The future of biologic coatings for orthopaedic implants [Biomaterials Vol. 34, Issue 13 kwietnia 2013, str. 31743183] ujawnia problem niewystarczającej wytrzymałości mechanicznej połączenia takiej warstwy z podłożem.
W publikacji A. Oyane, C. Choong, J. Triffitt „Simple surface modification of poly(s-caprolactone) for apatite deposition from simulated body fluid [Biomaterials, Vol. 26, Issue 15 maja 2005, str. 24072413] opisano sposób wytwarzania warstwy hydroksyapatytu przez jej wytrącanie w roztworze symulującym płyny fizjologiczne ludzkiego ciała. Materiałem pokrywanym jest rusztowanie z polikaprolaktonu (PCL), wytworzone techniką drukowania trójwymiarowego (ang. Fused Deposition Modeling, FDM). Rusztowanie zostało zanurzone dodatkowo w roztworze SBF na 14 dni, w czasie których narastała warstwa fosforanu wapnia. Uzyskana warstwa składa się z hydroksyapatytu. Podobną technikę opisa4
PL 226 891 B1 no w pracy T. Kokubo „Formation of biologically active bone-like apatite on metals and polymers by a biomimetic process, [Thermochimica Acta, Vol. 280-281, lipiec 1996, str. 479-490]. Wadą tej metody jest długi czas procesu, a także słabe wiązanie pomiędzy polimerem a ceramiką. Na mikrofotografii SEM widoczne są pęknięcia warstwy i jej ubytki w miejscu odpadnięcia warstwy od podłoża.
Wykorzystanie tej samej metody ujawnia opis patentowy US8075562. Przedstawiono tam otrzymywanie warstw na podłożu polimerowym za pomocą zamaczania materiału przeznaczonego do pokrycia w roztworze symulującym płyny fizjologiczne (SBF) z dodatkiem substancji stymulujących wzrost kości (ang. growth factors), na przykład proteiny e-BMP 2, oraz gotowy implant w postaci polimerowej śruby pokrytej warstwą hydroksyapatytu. Ujawniona technologia daje homogeniczną warstwę, która zawiera chemicznie związane z hydroksyapatytem czynniki wzrostu. Niedogodnością tej technologii jest konieczność zamaczania materiału pokrywanego w kilku różnych roztworach i długi czas otrzymywania warstwy. Brak informacji strukturze nanocząstek i warstw.
Publikacja EP2251049 ujawnia sposób wytwarzania na metalowym podłożu warstwy hydroksyapatytu, która składa się z kolagenu, fosforanu wapnia (hydroksyapatytu) oraz ewentualnie czynników wzrostu. Według tego sposobu przeznaczone do pokrycia metalowe podłoże wkłada się do cieczy zawierającej kolagen, lub pokrywa się kroplami takiej cieczy. Następnie usuwa się nadmiar kolagenu i zanurza podłoże w metastabilnym roztworze zawierającym jony wapniowe i fosforanowe, w wyniku czego wytrącają się fosforany wapnia. Niedogodnością tego rozwiązania jest długi czas wytwarzania powłoki, czyli minimum 12 godzin zamaczania w roztworze z jonami wapnia i fosforu, dwie godziny mrożenia i kilkugodzinny etap liofilizacji. Także tutaj brak informacji o strukturze warstwy i cząsteczek.
Zbliżoną technologię ujawnia opis patentowy US6280789. Przedstawiono w nim wytwarzanie pokryć hydroksyapatytowych na powierzchni implantów metalicznych i ceramicznych. Materiał podłoża zanurzany jest w roztworze zawierającym jony wapnia, fosforanowe i wodorowęglanowe, o odczynie pH w zakresie od 6,8 do 8. Roztwór ten podgrzewany jest do temperatury pomiędzy 50 a 80°C, co wywołuje wzrost odczynu pH i wytrącanie się hydroksyapatytu z domieszką jonów wodorowęglanowych. Wytrącone krystality hydroksyapatytu mają długość od 10 do 40 nm i szerokość od 3 do 10 nm. Zaletą tej metody jest krótki czas trwania procesu, natomiast stosunkowo wysoka jest temperatura procesu, która uniemożliwia zastosowanie tej metody do podłoży polimerowych, szczególnie tych o niskiej temperaturze mięknięcia i słabej odporności chemicznej.
Znane są także technologie wytwarzania warstw wykorzystujące energię ultradźwięków. Opis patentowy US7896539 ujawnia pokrywanie lekami lub polimerami stentów (implantów przywracających drożności naczyń krwionośnych) przy użyciu dyszy ultradźwiękowej służącej do rozpylania materiału pokryciowego. Brak natomiast możliwości jednolitego pokrycia podłoży o strukturze porowatej i brak nawet sugestii o możliwości pokrywania nanocząstkami hydroksyapatytu.
W publikacji WO2007/127193 opisano otrzymywanie warstw na powierzchni implantów medycznych za pomocą elektrostatycznego nanoszenia rozpylanego materiału. Jednakże ograniczone jest ono jedynie do pokrywania materiałów przewodzących prąd lub pokrytych wstępnie dodatkową warstwą przewodzącą. Dodatkowo trudne lub niemożliwe jest pokrycie tym sposobem całej objętości materiału o małym rozmiarze porów i o skomplikowanej geometrii. Brak też nawet sugestii o możliwości pokrywania nanocząstkami hydroksyapatytu.
Wiele z tworzyw sztucznych używanych jako implanty do regeneracji tkanki kostnej to materiały termoplastyczne, co umożliwia ich formowanie przez wytłaczanie lub wtryskiwanie. Temperatury, w których można formować takie materiały są często w granicach 100°C, a nawet niższe. Na przykład temperatura mięknięcia polikaprolaktonu wynosi około 60°C. Z tego powodu proces nanoszenia warstwy na implant z takiego materiału wymaga temperatur niższych od temperatury mięknięcia, aby zapobiec jego zniekształceniu lub zniszczeniu. Publikacja US2011/097957 opisuje metodę ultradźwiękowego nanoszenia tlenków metali (CuO, ZnO, MgO) na tkaniny, w celu nadania im właściwości antybakteryjnych, zaś publikacja US 2011/300767 ujawnia sposób ultradźwiękowego przyczepiana do tkanin proteinowych mikrosfer zawierających substancję, np. leczniczą, która następnie uwalnia się do otoczenia. Obie publikacje nie zawierają natomiast żadnych wskazówek dotyczących pokrywania implantów kostnych hydroksyapatytem.
W publikacji JP2013022234 ujawniono wytworzenie warstwy hydroksyapatytu na podłożu z materiału termoplastycznego poprzez naniesienie na to podłoże cząstek hydroksyapatytu, które wtapiają się w nie po podgrzaniu całości powyżej temperatury mięknięcia. Skuteczność pokrycia sprawdza się poddając pokrycie działaniu ultradźwięków o częstotliwości 38 kHz przez okres 10 minut, czyli w tym
PL 226 891 B1 rozwiązaniu ultradźwięki nie są elementem procesu pokrywania. Brak informacji o nanostrukturze stosowanego hydroksyapatytu.
W publikacji KR101005499 ujawniono sposób utwardzania powierzchni trójwymiarowych stentów oraz nanoszenia na ich powierzchnię substancji leczniczych poprzez ultradźwiękowe wytwarzanie kawitacji w cieczy, w której zanurzony jest stent. Także w tym rozwiązaniu brak jest wskazówek dotyczących wykorzystania ultradźwięków do wywarzania warstw hydroksyapatytowych.
Polskie zgłoszenie patentowe numer P.396906 ujawnia nanopłytki z syntetycznego hydroksyapatytu o strukturze heksagonalnej i o średniej wielkości ziarna mieszczącym się w zakresie od 3 do 30 nm. Stosunek molowy wapnia do fosforu (Ca/P) w tych nanopłytkach mieści się w przedziale od 1,55 do 1,65. Ujawniony nanoproszek przeznaczony jest do wypełniania niepożądanych luk w tkance kostnej, brak jest natomiast we wspomnianym zgłoszeniu jakichkolwiek wskazówek do zastosowania takiego nanoproszku do wytwarzania implantów oraz warstw na implantach.
Polskie zgłoszenie patentowe numer P.399701 ujawnia implant kostny utworzony ze sprasowanego pod wysokim ciśnieniem nanoproszku z syntetycznego hydroksyapatytu o strukturze heksagonalnej, którego średni rozmiar ziarna wynosi od 3 do 30 nm a powierzchnia właściwa jest większa niż 2
200 m2/g. Zgłoszenie to nie zawiera natomiast żadnych wskazówek dotyczących trwałego pokrywania tym proszkiem przestrzennych implantów kostnych, zwłaszcza o dużej elastyczności. W publikacji
I. Salma i wsp. „First results of the bone tissue morphological evaluation after implantation of new polymer and tricalcium phosphate scaffolds coated with resorbable nano hydroxyapatite. [Journal of Tissue Engineering and Regenerative Medicine 8, 409-410] ujawniono efekty prób pokrywania nanohydroksyapatytem porowatych scaffoldów z wykorzystaniem ultradźwięków. Jednakże publikacja ta nie ujawnia żadnych szczegółów tego pokrywania oraz właściwości uzyskanego pokrycia, podczas gdy powszechnie wiadomo, że w nanotechnologii właściwości nanocząstek bardzo silnie zależą od ich rozmiaru, kształtu, składu chemicznego molekuł przymocowanych do ich powierzchni oraz ich wewnętrznej struktury.
W publikacji A. Kędzierskiej i wsp. „Ultrasonic coating technique of a polymer scaffold for bone implant applications [European Cells and Materials, Vol. 26, Suppl. 2, 2013, str. 17] opisane są rusztowania do regeneracji tkanki kostnej wykonane przez naniesienie na polimerowe rusztowanie warstwy nanohydroksyapatytu o strukturze płytkowej i rozmiarach od 5 do 30 nm, z wykorzystaniem ultradźwięków. Publikacja ta nie zawiera natomiast informacji dotyczących składu chemicznego wykorzystanego hydroksyapatytu i zjawisk fizycznych zachodzących podczas działania ultradźwięków oraz ewentualnego wpływu uzyskanej struktury na proces regeneracji tkanki kostnej. Jest to o tyle istotne, że przeciętny specjalista zajmujący się procesami jakie zachodzą, gdy rozmiar cząstek materii jest mniejszy niż 100 nm, wie że zjawiska te są bardzo trudno przewidywalne i bardzo silnie zależą od rozmiaru nanostruktur, gdyż ta sama z punktu widzenia chemicznego i fizycznego substancja przy rozmiarze cząstek wynoszącym 70 nm może mieć właściwości diametralnie różne od tych obserwowanych dla cząstek o rozmiarze 20 nm.
Celem wynalazku było uzyskanie implantu kostnego efektywnie stymulującego wzrost tkanki kostnej oraz szybkiego i prostego sposobu wytwarzania takich implantów.
Cel ten realizuje sposób według wynalazku polegający na nanoszeniu na strukturę nośną syntetycznego hydroksyapatytu w wyniku zanurzenia tej struktury w cieczy będącej źródłem tego hydroksyapatytu. Charakteryzuje się tym, że najpierw strukturę nośną implantu zanurza się w zawiesinie, którą tworzą ciekła faza rozpraszająca, korzystnie woda, oraz faza rozpraszana w postaci ziaren syntetycznego hydroksyapatytu, przy czym średni rozmiar tych ziaren jest nie większy niż 100 nm, korzystnie nie większy niż 30 nm. Następnie w części zawiesiny kontaktującej się ze strukturą nośną implantu wywołuje się zjawisko kawitacji.
W jednym z wariantów sposobu według wynalazku do wytworzenia fazy rozpraszanej zawiesiny stosuje się ziarna hydroksyapatytu zawierające wodę strukturalną w ilości od 2 do 6% wagowych.
W innym wariancie sposobu według wynalazku stosunek molowy wapnia do fosforu (Ca/P) w ziarnach hydroksyapatytu tworzących fazę rozpraszaną zawiesiny jest większy niż 1,55 i mniejszy niż 1,67.
W innym wariancie sposobu według wynalazku stan kawitacji wywołuje się przy pomocy obiektu zanurzanego w zawiesinie w pobliżu struktury nośnej implantu i wprawianego w drgania o częstotliwości z zakresu od 18 do 40 kHz, korzystnie o częstotliwości 20 kHz.
W innym wariancie sposobu według wynalazku obiekt zanurzany w zawiesinie ma wprawianą w drgania powierzchnię czołową. W trakcie wytwarzania stanu kawitacji odległość powierzchni czoło6
PL 226 891 B1 wej tego obiektu od powierzchni struktury nośnej implantu wynosi nie więcej niż 200% średnicy jego powierzchni czołowej, korzystnie około 100% tej średnicy.
W innym wariancie sposobu według wynalazku udział wagowy fazy rozpraszanej w zawiesinie wynosi od 0,01% do 2%, korzystnie wynosi od 0,1% do 0,5%.
W innym wariancie sposobu według wynalazku temperatura zawiesiny nie przekracza 100°C, korzystnie nie przekracza 40°C.
W jeszcze innym wariancie sposobu według wynalazku czas trwania stanu kawitacji mieści się w zakresie od 1 minuty do 30 minut i korzystnie nie przekracza 15 minut.
Implant według wynalazku ma strukturę nośną pokrytą przynajmniej częściowo syntetycznym hydroksyapatytem. Charakteryzuje się tym, że syntetyczny hydroksyapatyt tworzący pokrycie struktury nośnej ma postać ziaren o średnim rozmiarze nie większym niż 100 nm, korzystnie nie większym niż 30 nm, poddanych działaniu kawitacji, korzystnie ultradźwiękowej. Grubość tego pokrycia wynosi od 50 nm do 1000 nm, korzystnie od 50 nm do 300 nm.
W jednym z wariantów implantu według wynalazku ziarna hydroksyapatytu tworzące pokrycie struktury nośnej zawierają wodę strukturalną w ilości od 2% do 6% wagowych.
W innym wariancie implantu według wynalazku stosunek molowy wapnia do fosforu (Ca/P) w ziarnach hydroksyapatytu jest większy niż 1,55 i mniejszy niż 1,67.
W innym wariancie implantu według wynalazku pokrycie ziarnami hydroksyapatytu zajmuje co najmniej 50% powierzchni struktury nośnej implantu.
W innym wariancie implantu według wynalazku jego struktura nośna wykonana jest z materiału polimerowego lub ceramicznego.
W innym wariancie implantu według wynalazku jego struktura nośna wykonana z materiału polimerowego ma porowatość wynoszącą od 40% do 80% i może być wykonana z włókien polimerowych.
W jeszcze innym wariancie implantu według wynalazku jego struktura nośna wykonana z materiału ceramicznego charakteryzuje się mikroporowatością strukturalną mieszczącą się w zakresie od 25% do 75%, korzystnie wynoszącą 50%. Ceramiczna struktura nośna implantu może być wykonana z fosforanu wapnia β-TCP.
Implant według wynalazku może być wytworzony opisanym wyżej sposobem według wynalazku.
Implant według wynalazku pokryty jest warstwą hydroksyapatytu bardzo skutecznie stymulującą proliferację komórek oraz wzrost tkanki kostnej w środowisku tkanek organizmu. Wyniki testów in vivo przeprowadzonych na królikach wskazują, że co najmniej 25% porów takiego implantu oraz co najmniej 10% objętości ubytku kości zostaje wypełnione nowo wytworzoną tkanką kostną po trzech miesiącach od implantacji. Tkanka ta narasta równomiernie oraz charakteryzuje się dobrą jakością określoną przez podstawowe białka kości, aktywność komórkową i czynniki wzrostu kości, współczynniki rozkładu tkanek i ich inhibitory oraz pro- i przeciwzapalne cytokiny. Trwałość pokrycia hydroksyapatytowego naniesionego sposobem według wynalazku nawet na podatną strukturę nośną implantu, ułatwia dopasowywanie kształtu implantu, np. poprzez docinanie lub uginanie, już w trakcie operacji, bez utraty korzystnych właściwości powierzchniowych. Wytworzenie implantu sposobem według wynalazku daje także wymierne oszczędności, dzięki krótkiemu czasowi (poniżej 60 min.) i niskiej temperaturze procesu (poniżej 100°C) oraz możliwości stosowania zawiesiny o niskiej zawartości hydroksyapatytu. Niska temperatura procesu radykalnie poszerza dostępność materiałów, z których można wykonać strukturę nośną implantu, w szczególności materiałów o niskiej temperaturze topnienia, dotychczas nie nadających się do takich celów.
Przykłady realizacji wynalazku zostały uwidocznione na rysunku, na którym fig. 1 przedstawia schemat przykładowego stanowiska do pokrywania struktury nośnej implantu hydroksyapatytem. Fig. 2 przedstawia obrazy mikroskopowe (SEM) implantu z pierwszego przykładu w trzech różnych powiększeniach. Fig. 3 przedstawia obraz SEM niepokrytej polimerowej struktury nośnej z pierwszego przykładu po teście in vivo, zaś fig. 4 przedstawia obraz mikroskopowy implantu z taką strukturą nośną pokrytą GoHAP po analogicznym teście na modelu zwierzęcym. Fig. 5 przedstawia obrazy mikroskopowe (SEM) implantu z drugiego przykładu w trzech różnych powiększeniach. Fig. 6 przedstawia obraz mikroskopowy ceramicznej struktury nośnej z przykładu drugiego po teście in vivo, zaś fig. 7 przedstawia obraz mikroskopowy implantu z taką strukturą nośną pokrytą GoHAP po analogicznym teście in vivo. Fig. 8 przedstawia obrazy mikroskopowe (SEM) implantu z trzeciego przykładu w trzech różnych powiększeniach.
PL 226 891 B1
Wynalazek zostanie bardziej szczegółowo przedstawiony w poniższych przykładach realizacji. W przykładach tych użyto hydroksyapatytowego nanoproszku o nazwie handlowej GoHAP, mającego następujące właściwości:
- cząstki nanoproszku mają postać płytek o średnim rozmiarze nie większym niż 30 nm, wyznaczonym na podstawie analizy obrazu uzyskanego na elektronowym mikroskopie transmisyjnym (TEM) metodą ciemnego pola dla co najmniej 200 cząstek, gdzie średnim rozmiarem jest średnica okręgu obrysowującego kształt ziarna;
- stosunek wapnia do fosforu (Ca/P) jest większy niż 1,55 ale mniejszy niż 1,67;
- zawiera wodę strukturalną w ilości od 2 do 6% wagowych, przy czym ilość tej wody określa utrata wagi nanoproszku podczas wygrzewania powyżej 200°C;
- rozpuszczalność określana na podstawie procedury normy ISO 10993-14 wynosi od 5 do mg/dm3.
P r z y k ł a d 1
Porowaty implant polimerowy
Strukturę nośną 1 implantu wytworzono z biodegradowalnego polikaprolaktonu (PCL). Miała ona postać przestrzennego rusztowania o wymiarach 4x6 mm wytworzonego z włókien polimerowych metodą druku przestrzennego w technologii „rapid prototyping”, które opisano w publikacji W. Święszkowski i wsp. „Repair and regeneration of ostechondral defects in the articular joints [Biomolecular Engineering, 2007, 24(5): str. 489-95]. Struktura nośna 1 charakteryzowała się porowatością na poziomie ok. 41%. Jako materiał pokryciowy struktury nośnej zastosowano nanoproszek hydroksyapatytowy GoHAP o stosunku molowym (Ca/P) wynoszącym 1,65, zawierający 5% wagowych wody strukturalnej. Proszek ten w naczyniu 2 o pojemności 50 ml, wymieszano (zawartość wagowa 0,1%) z wodą dejonizowaną, tworząc jednorodną zawiesinę 3, w której fazą rozpraszającą jest woda, a fazą rozpraszaną jest hydroksyapatyt. Strukturę nośną 1 obmyto wodą destylowaną, a następnie zamocowano w statywie unieruchamiającym 4. Statyw 4 umieszczono w naczyniu 2 z zawiesiną 3, którą podgrzano do temperatury 30°C. Głowicę ultradźwiękową 5 z powierzchnią czołową (emitującą) o średnicy wynoszącej 13 mm, będącą źródłem ultradźwięków podłączono do urządzenia zasilającego 6 i zanurzono w zawiesinie 3. Odległość powierzchni czołowej głowicy 5 od struktury nośnej 1 powinna wynosić nie więcej niż 200% średnicy tej powierzchni, przy czym optymalne jest utrzymywanie odległości równej 100% tej średnicy. Następnie przez 15 minut głowica 5 generowała ultradźwięki o częstotliwości 20 kHz. Generowane ultradźwięki o tej częstotliwości wywoływały zjawisko kawitacji ultradźwiękowej, czyli formowania się i aktywności pęcherzyków gazu w cieczy poddanej działaniu pola ultradźwiękowego. Kawitacja zachodziła przede wszystkim w tej części zawiesiny 3, która kontaktowała się z powierzchnią struktury nośnej 1, w tym w zawiesinie 3 wypełniającej pory struktury nośnej 1. Występowanie kawitacji potwierdziła obserwacja cieczy oraz monitorowanie temperatury układu. W celu utrzymywania stabilnej temperatury zawiesiny 3 zastosowano przepływowy układ chłodzący 7. Po wyłączeniu zasilania głowicy 4 pokryty implant 1 wydobyto z naczynia 2 i obmyto wodą destylowaną, a następnie wysuszono pod wyciągiem w szafie laminarnej o wysokiej czystości. Czynności te powtarzano kilkunastokrotnie aby otrzymać liczbę implantów dostateczną do badań in vitro i in vivo. Na podstawie analizy obrazów SEM ustalono, że warstwa GoHAP naniesiona na strukturę nośną 1 wykazuje cechy morfologiczne charakterystyczne dla wyjściowego proszku GoHAP (rozmiar, kształt drobin). Uzyskano pokrycie o grubości 200 nm, pokrywające jednolicie ponad 85% powierzchni struktury nośnej 1 implantu (fig. 2).
Otrzymano implanty najpierw do przeprowadzenia testów komórkowych in vitro. Do badania wykorzystano linię komórkową MG-63 (osteosarcoma) oraz w postaci D-MEM z dodatkiem 10% FBS. Dodatkowo do utworzenia medium komórkowego do wyżej podanych próbek dodano penicylinę/streptomycynę. Proces inkubacji odbywał się na płytkach 24-dołkowych w temperaturze 37°C i w środowisku 5% CO2. Komórki zostały oderwane od podłoża inkubacyjnego przy użyciu 0,25% roztworu trypsyny/EDTA. Implanty (rusztowania) do badań opłukano PBS (roztwór soli fizjologicznej o pH=7,4). Następnie wykonano posiew na tak przygotowanych rusztowaniach. Na każdy materiał posiano ok. 105 komórek w 200 pl medium hodowlanego oraz umieszczono w inkubatorze na półtorej godziny. Po upływie tego czasu dołki zostały dopełnione medium w celu całkowitego przykrycia próbki. Proces inkubacji trwał następnie 5 dni. Wyniki badań wykazały, że proliferacja komórek na rusztowaniu polimerowym z warstwą GoHAP jest wyższa niż na analogicznym rusztowaniu polimerowym pozbawionym takiej warstwy. Analiza liczebności komórek jednoznacznie wykazała, iż rusztowanie polimerowe z warstwą GoHAP posiada lepsze właściwości stymulujące proliferację komórek. Po pię8
PL 226 891 B1 ciu dniach hodowli gęstość komórek na rusztowaniu polimerowym z taką warstwą jest trzy razy wyższa niż na rusztowaniu polimerowym bez pokrycia. Po pięciu dniach hodowli na mikroskopie inwersyjnym zauważono, że konfluencja komórek we wszystkich studzienkach wokół badanego materiału wynosi > 95%. Implanty otrzymane w tym przykładzie przebadano także in vivo na modelu zwierzęcym. Dziesięciomiesięczne męskie króliki nowozelandzkie otrzymały w znany sposób znieczulenie ogólne i w tym stanie w ich kości biodrowej wykonano otwory, które zostały wypełnione wspomnianymi implantami. Jako materiał odniesienia wykorzystano czyste rusztowanie polimerowe opisane wyżej, którymi wypełniono otwory w kości biodrowej osobników z grupy kontrolnej. Po zakończeniu implant acji okostna u wszystkich osobników została zszyta i tkanka miękka została zamknięta warstwa po warstwie przy pomocy 5-0 szwów Vicryl. Skóra została zaszyta za pomocą przerywalnych szwów 4-0 Prolene. Zastosowano podskórne wstrzyknięcie roztworu antybiotyku Enrobioflox 5% (50 mg/ml roztworu), który zawiera aktywną substancje Enrofloxacin w dawce 5 mg na kilogram wagi jednorazowo na dzień przez 5 dni. Po trzech miesiącach dokonano w znany sposób eutanazji wszystkich biorących udział w badaniu osobników, których twarde i miękkie próbki tkanek zostały zebrane i ocenione pod względem histologicznym i zdolności wspomagania regeneracji kości. Rutynowe barwienie hematoksyliną i eozyną przeprowadzono dla każdego przypadku. Wydobyte rusztowanie polimerowe bez warstwy hydroksyapatytu przedstawiono w przekroju na fig. 3, na której widoczna jest przestrzeń do przenikania czerwonego szpiku kostnego (BM) wokół włókien (S) czystego rusztowania. Na fig. 4 widoczna jest nowa kość (NB) wypełniająca przestrzenie pomiędzy pozostałościami włókien (S) implantu według wynalazku. Analiza morfometryczna obrazu z fig. 4 wykazała, że udział nowych tkanek w porowatej przestrzeni implantu z warstwą GoHAP wynosi ok. 33% z czego 35% stanowi nowa tkanka kostna (NB), natomiast w przypadku rusztowania (S) bez warstwy jej przyrost był znikomy.
P r z y k ł a d 2
Porowaty implant ceramiczny
W celu wytworzenia implantu ceramicznego pokrytego warstwą nanocząstek hydroksyapatytu zastosowano strukturę nośną w postaci porowatych pastylek ceramicznych. Do wytworzenia pastylek wykorzystano metodę jednoosiowego prasowania proszku β-TCP przy sile nacisku 15 kN. Na potrzeby wykonania jednej próbki zużywano 3,06 g proszku. W celu uzyskania mikroporowatości strukturalnej zastosowano metodę obróbki termicznej wspomnianych pastylek w temperaturze 1200°C przez okres dwóch godzin. Następnie pastylki zbadano pod kątem oznaczenia porowatości metodami mikrotomografii komputerowej i Archimedesa. Według obliczeń μ-CT uzyskano porowatość równą 49%, podczas gdy wynik z analizy metodą Archimedesa wyniósł 52% (+/- 2,6%). Proces pokrywania GoHAP tak przygotowanej ceramicznej struktury nośnej implantu przeprowadzono w sposób analogiczny jak w przykładzie pierwszym, przy czym zastosowano nanoproszek o zawartości wody wynoszącej 5% wagowych. Uzyskano pokrycie o grubości 250 nm, pokrywające jednolicie ponad 80% powierzchni struktury nośnej 1 implantu (fig. 5). Jako materiał będący źródłem tego pokrycia zastosowano nanoproszek hydroksyapatytowy GoHAP o stosunku molowym (Ca/P) wynoszącym 1,66.
Ceramiczne implanty z warstwą GoHAP przebadano in vivo na modelu zwierzęcym (królik nowozelandzki). Procedurę wszczepiania implantu ceramicznego, zastosowany materiał porównawczy, pobranie próbek do badań oraz barwienie hematoksyliną i eozyną przeprowadzono analogicznie jak w pierwszym przykładzie. Wydobyte ceramiczne struktury nośne bez warstwy GoHAP po trzech miesiącach zostały znacznie wypełnione tkanką kostną (NB na fig. 6). Analiza morfometryczna obrazów takich struktur wykazała prawie 50%-owe wypełnienie porów implantu (rusztowania) tkanką kostną. Analiza morfometryczna obrazu rusztowania ceramicznego z warstwą GoHAP dokonana dla obrazu z fig. 7 wykazała wypełnienie porów rusztowania tkanką kostną prawie w 70%.
P r z y k ł a d 3
Monolityczny implant metaliczny
W celu wytworzenia monolitycznego implantu metalicznego zastosowano strukturę nośną w postaci tytanowego wkrętu o średnicy 5 mm i długości 150 mm, przeznaczonego do artroskopii. Wkręt ten pokryto warstwą nanocząstek GoHAP poprzez ultradźwiękowe oddziaływanie na wodną zawiesinę tych cząstek w sposób opisany szczegółowo w pierwszym przykładzie, przy czym zastosowano proszek o rozmiarze nie większym niż 6 nm, o zawartości wody strukturalnej wynoszącej 3% wagowych, o stosunku molowym wapnia do fosforu (Ca/P) wynoszącym 1,60. Na podstawie analizy obrazów SEM ustalono, że uzyskane pokrycie wykazuje cechy morfologiczne charakterystyczne dla wyjściowego proszku GoHAP. Tytanowa śruba została pokryta jednolitą warstwą hydroksyapatytu o grubości 200 nm zajmującą 85% jej powierzchni (fig. 8).
Claims (18)
- Zastrzeżenia patentowe1. Sposób wytwarzania implantu kostnego polegający na nanoszeniu na strukturę nośną syntetycznego hydroksyapatytu w wyniku zanurzenia tej struktury w cieczy będącej źródłem tego hydroksyapatytu, znamienny tym, że strukturę nośną (1) zanurza się w zawiesinie (3), którą tworzą ciekła faza rozpraszająca, korzystnie woda, oraz faza rozpraszana w postaci ziaren syntetycznego hydroksyapatytu o średnim rozmiarze nie większym niż 100 nm, korzystnie nie większym niż 30 nm, a następnie w części zawiesiny (3) kontaktującej się ze strukturą nośną (1) wywołuje się zjawisko kawitacji.
- 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że do wytworzenia fazy rozpraszanej zawiesiny (3) stosuje się ziarna hydroksyapatytu zawierające wodę strukturalną w ilości od 2 do 6% wagowych.
- 3. Sposób według zastrz. 2, znamienny tym, że stosunek molowy wapnia do fosforu (Ca/P) w ziarnach hydroksyapatytu jest większy niż 1,55 i mniejszy niż 1,67.
- 4. Sposób według zastrz. 1 albo 2 albo 3, znamienny tym, że stan kawitacji wywołuje się przy pomocy obiektu (5) zanurzanego w zawiesinie (3) w pobliżu struktury nośnej (1) implantu i wprawianego w drgania o częstotliwości z zakresu od 18 do 40 kHz, korzystnie o częstotliwości 20 kHz.
- 5. Sposób według zastrz. 4, znamienny tym, że obiekt (5) zanurzany w zawiesinie (3) ma wprawianą w drgania powierzchnię czołową, przy czym w trakcie wytwarzania stanu kawitacji odległość powierzchni czołowej tego obiektu (5) od powierzchni struktury nośnej (1) wynosi nie więcej niż 200% średnicy jego powierzchni czołowej, korzystnie około 100% tej średnicy.
- 6. Sposób według zastrzeżenia 4 albo 5, znamienny tym, że udział wagowy fazy rozpraszanej w zawiesinie (3) wynosi od 0,01% do 2%, korzystnie od 0,1% do 0,5%.
- 7. Sposób według zastrz. 6, znamienny tym, że temperatura zawiesiny (3) nie przekracza 100°C, korzystnie nie przekracza 40°C.
- 8. Sposób według zastrz. 7, znamienny tym, że czas trwania stanu kawitacji mieści się w zakresie od 1 minuty do 30 minut i korzystnie nie przekracza 15 minut.
- 9. Implant kostny mający strukturę nośną pokrytą przynajmniej częściowo syntetycznym hydroksyapatytem, znamienny tym, że syntetyczny hydroksyapatyt tworzący pokrycie ma postać ziaren o średnim rozmiarze nie większym niż 100 nm, korzystnie nie większym niż 30 nm, poddanych działaniu kawitacji, korzystnie ultradźwiękowej, zaś grubość tego pokrycia wynosi od 50 nm do 1000 nm, korzystnie od 50 nm do 300 nm.
- 10. Implant według zastrz. 9, znamienny tym, że ziarna hydroksyapatytu zawierają wodę strukturalną w ilości od 2% do 6% wagowych.
- 11. Implant według zastrz. 10, znamienny tym, że stosunek molowy wapnia do fosforu (Ca/P) w ziarnach hydroksyapatytu jest większy niż 1,55 i mniejszy niż 1,67.
- 12. Implant według zastrz. 10 albo 11, znamienny tym, że pokrycie zajmuje co najmniej 50% powierzchni struktury nośnej (1).
- 13. Implant według zastrz. 9 albo 10 albo 11 albo 12, znamienny tym, że jego struktura nośna (1) wykonana jest z materiału polimerowego lub ceramicznego.
- 14. Implant według zastrz. 13, znamienny tym, że jego struktura nośna (1) wykonana z materiału polimerowego ma porowatość wynoszącą od 40% do 80%.
- 15. Implant według zastrz. 14, znamienny tym, że jego struktura nośna (1) wykonana jest z włókien polimerowych.
- 16. Implant według zastrz. 13, znamienny tym, że jego struktura nośna (1) wykonana z materiału ceramicznego charakteryzuje się mikroporowatością strukturalną mieszczącą się w zakresie od 25% do 75%, korzystnie wynoszącą 50%.
- 17. Implant według zastrz. 16, znamienny tym, że struktura nośna (1) wykonana jest z fosforanu wapnia β-TCP.
- 18. Implant kostny, znamienny tym, że wytworzony jest sposobem według dowolnego z zastrzeżeń od 1 do 8.
Priority Applications (8)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL412238A PL226891B1 (pl) | 2015-05-05 | 2015-05-05 | Sposób wytwarzania implantu kostnego iimplant kostny |
| PCT/IB2016/052566 WO2016178174A1 (en) | 2015-05-05 | 2016-05-05 | Method for manufacturing bone implants and bone implant |
| CA2985182A CA2985182C (en) | 2015-05-05 | 2016-05-05 | Method for manufacturing bone implant and bone implant |
| EP16731655.3A EP3291850B8 (en) | 2015-05-05 | 2016-05-05 | Method for manufacturing bone implants and bone implant |
| DK16731655.3T DK3291850T3 (da) | 2015-05-05 | 2016-05-05 | Fremgangsmåde til fremstilling af knogleimplantater samt knogleimplantat |
| US15/571,825 US11260148B2 (en) | 2015-05-05 | 2016-05-05 | Method for manufacturing bone implants and bone implant |
| ES16731655T ES2799449T3 (es) | 2015-05-05 | 2016-05-05 | Método para fabricar un implante óseo e implante obtenido |
| PT167316553T PT3291850T (pt) | 2015-05-05 | 2016-05-05 | Método para fabricar implantes ósseos e implante ósseo |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL412238A PL226891B1 (pl) | 2015-05-05 | 2015-05-05 | Sposób wytwarzania implantu kostnego iimplant kostny |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL412238A1 PL412238A1 (pl) | 2016-11-07 |
| PL226891B1 true PL226891B1 (pl) | 2017-09-29 |
Family
ID=56194524
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL412238A PL226891B1 (pl) | 2015-05-05 | 2015-05-05 | Sposób wytwarzania implantu kostnego iimplant kostny |
Country Status (8)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US11260148B2 (pl) |
| EP (1) | EP3291850B8 (pl) |
| CA (1) | CA2985182C (pl) |
| DK (1) | DK3291850T3 (pl) |
| ES (1) | ES2799449T3 (pl) |
| PL (1) | PL226891B1 (pl) |
| PT (1) | PT3291850T (pl) |
| WO (1) | WO2016178174A1 (pl) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| PL425049A1 (pl) * | 2018-03-27 | 2019-10-07 | Instytut Podstawowych Problemów Techniki Polskiej Akademii Nauk | Sposób obróbki powierzchni oraz implant wytworzony z wykorzystaniem obróbki powierzchni |
Families Citing this family (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2017218545A1 (en) * | 2016-06-13 | 2017-12-21 | Lifenet Health | Demineralized bone fibers and preparation thereof |
| GB201615972D0 (en) | 2016-09-20 | 2016-11-02 | Raft Entpr Ltd | Extracellular matrix material |
| PL240082B1 (pl) * | 2018-10-26 | 2022-02-14 | Inst Wysokich Cisnien Polskiej Akademii Nauk | Biologiczna membrana separacyjna |
| PL438209A1 (pl) | 2021-06-20 | 2022-12-27 | Instytut Wysokich Ciśnień Polskiej Akademii Nauk | Hydroksyapatytowa warstwa biobójczo-osteoindukcyjna i sposób wytwarzania takiej warstwy |
| CN118750236B (zh) * | 2024-08-09 | 2025-04-18 | 苏州中科生物医用材料有限公司 | 植入物假体及其制备方法 |
Family Cites Families (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5626861A (en) * | 1994-04-01 | 1997-05-06 | Massachusetts Institute Of Technology | Polymeric-hydroxyapatite bone composite |
| WO2009155328A2 (en) * | 2008-06-18 | 2009-12-23 | Boston Scientific Scimed, Inc. | Endoprosthesis coating |
| JP5725489B2 (ja) * | 2008-06-27 | 2015-05-27 | 公立大学法人大阪市立大学 | 医療用組成物および医療用キット |
| KR101091589B1 (ko) * | 2009-06-18 | 2011-12-13 | 오스템임플란트 주식회사 | 망상 또는 섬 형상의 저결정 수산화아파타이트로 코팅된 임플란트 및 이의 코팅 방법 |
| RU2455086C1 (ru) * | 2011-05-03 | 2012-07-10 | Андрей Александрович Геталов | Способ ультразвуковой кавитационной обработки жидких сред и расположенных в среде объектов |
| WO2013112743A1 (en) * | 2012-01-24 | 2013-08-01 | The Penn State Research Foundation | Biomimetic surfaces for enhancing musculoskeletal regeneration |
-
2015
- 2015-05-05 PL PL412238A patent/PL226891B1/pl unknown
-
2016
- 2016-05-05 DK DK16731655.3T patent/DK3291850T3/da active
- 2016-05-05 ES ES16731655T patent/ES2799449T3/es active Active
- 2016-05-05 US US15/571,825 patent/US11260148B2/en active Active
- 2016-05-05 EP EP16731655.3A patent/EP3291850B8/en active Active
- 2016-05-05 WO PCT/IB2016/052566 patent/WO2016178174A1/en not_active Ceased
- 2016-05-05 PT PT167316553T patent/PT3291850T/pt unknown
- 2016-05-05 CA CA2985182A patent/CA2985182C/en active Active
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| PL425049A1 (pl) * | 2018-03-27 | 2019-10-07 | Instytut Podstawowych Problemów Techniki Polskiej Akademii Nauk | Sposób obróbki powierzchni oraz implant wytworzony z wykorzystaniem obróbki powierzchni |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| US11260148B2 (en) | 2022-03-01 |
| PL412238A1 (pl) | 2016-11-07 |
| EP3291850A1 (en) | 2018-03-14 |
| US20180311407A1 (en) | 2018-11-01 |
| EP3291850B1 (en) | 2019-11-13 |
| DK3291850T3 (da) | 2020-02-24 |
| CA2985182C (en) | 2024-01-02 |
| ES2799449T3 (es) | 2020-12-17 |
| CA2985182A1 (en) | 2016-11-10 |
| PT3291850T (pt) | 2020-02-21 |
| WO2016178174A1 (en) | 2016-11-10 |
| EP3291850B8 (en) | 2020-02-26 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Liu et al. | Role of implants surface modification in osseointegration: A systematic review | |
| Buck et al. | Surface modification strategies to improve the osseointegration of poly (etheretherketone) and its composites | |
| Wu et al. | Biomimetic porous scaffolds for bone tissue engineering | |
| Heimann | Plasma-sprayed hydroxylapatite-based coatings: chemical, mechanical, microstructural, and biomedical properties | |
| Surmenev et al. | Significance of calcium phosphate coatings for the enhancement of new bone osteogenesis–a review | |
| Wan et al. | Surface modification on biodegradable magnesium alloys as orthopedic implant materials to improve the bio-adaptability: a review | |
| Almasi et al. | Crystalline ha coating on peek via chemical deposition | |
| Nilawar et al. | Surface engineering of biodegradable implants: Emerging trends in bioactive ceramic coatings and mechanical treatments | |
| JP6827960B2 (ja) | コーティングスキャフォールド | |
| Narayanan et al. | Calcium phosphate‐based coatings on titanium and its alloys | |
| US11260148B2 (en) | Method for manufacturing bone implants and bone implant | |
| Jokar et al. | Corrosion and bioactivity evaluation of nanocomposite PCL-forsterite coating applied on 316L stainless steel | |
| US20120270031A1 (en) | Porous materials coated with calcium phosphate and methods of fabrication thereof | |
| Naderi et al. | Improved biocompatible, flexible mesh composites for implant applications via hydroxyapatite coating with potential for 3-dimensional extracellular matrix network and bone regeneration | |
| Cao et al. | Formation of porous apatite layer after immersion in SBF of fluorine-hydroxyapatite coatings by pulsed laser deposition improved in vitro cell proliferation | |
| Shimizu et al. | Bioactive effects of strontium loading on micro/nano surface Ti6Al4V components fabricated by selective laser melting | |
| Suntharavel Muthaiah et al. | Electrophoretic deposition of nanocrystalline calcium phosphate coating for augmenting bioactivity of additively manufactured Ti-6Al-4V | |
| Farshid et al. | Morphology-dependent immunomodulatory coating of hydroxyapatite/PEO for magnesium-based bone implants | |
| Cai et al. | Bioinspired fabrication of calcium-doped TiP coating with nanofibrous microstructure to accelerate osseointegration | |
| CN111526896B (zh) | 制备骨引导性聚合物制品的方法和由此制备的骨引导性聚合物制品 | |
| Juhasz et al. | Surface modification of biomaterials by calcium phosphate deposition | |
| Yang et al. | Advanced engineering and biomimetic materials for bone repair and regeneration | |
| Moreno Turiégano | Surface functionalisation of magnesium alloys for biodegradable implants | |
| Park et al. | Characterization and biostability of HA/Ti6Al4V ACL anchor prepared by simple heat-treatment | |
| Jaiswal et al. | Physico-chemical Modifications of Magnesium and Alloys for Biomedical Applications |