PL219067B1 - Sposób biokatalitycznego wytwarzania chiralnych, nieracemicznych kwasów (54) i estrów kwasów karboksylowych oraz zastosowanie ortoestrów kwasów aromatycznych w tym sposobie - Google Patents

Sposób biokatalitycznego wytwarzania chiralnych, nieracemicznych kwasów (54) i estrów kwasów karboksylowych oraz zastosowanie ortoestrów kwasów aromatycznych w tym sposobie

Info

Publication number
PL219067B1
PL219067B1 PL394723A PL39472311A PL219067B1 PL 219067 B1 PL219067 B1 PL 219067B1 PL 394723 A PL394723 A PL 394723A PL 39472311 A PL39472311 A PL 39472311A PL 219067 B1 PL219067 B1 PL 219067B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
aryl
group
reaction
formula
lipase
Prior art date
Application number
PL394723A
Other languages
English (en)
Other versions
PL394723A1 (pl
Inventor
Ryszard Ostaszewski
Małgorzata Ćwiklak
Anna Wóltańska
Szymon Kłossowski
Original Assignee
Inst Chemii Organicznej Pan
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Inst Chemii Organicznej Pan filed Critical Inst Chemii Organicznej Pan
Priority to PL394723A priority Critical patent/PL219067B1/pl
Publication of PL394723A1 publication Critical patent/PL394723A1/pl
Publication of PL219067B1 publication Critical patent/PL219067B1/pl

Links

Landscapes

  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania estrów kwasów karboksylowych, zwłaszcza kwasu octowego, o wzorze ogólnym I, w którym R1 oznacza prostą lub rozgałęzioną grupę C1-C10 alkilową, benzylową, -CH2-C6-10 aryl a R2, R3, oznaczają niezależnie od siebie atom wodoru, podstawioną lub nie grupę hydroksylową, podstawioną lub nie grupę aminową, lub C1-C30 alkil, grupę (CH2)nCOOH, gdzie n oznacza 1-5, C1-C30 alken posiadający, co najmniej jedno wiązanie podwójne, aryl, w obecności jednego, dwóch lub większej ilości mieszaniny natywnych i/lub immobilizowanych enzymów w środowisku rozpuszczalnika organicznego lub bez rozpuszczalnika w nadmiarze reagenta.

Description

Opis wynalazku
Wynalazek dotyczy sposobu wytwarzania estrów kwasów karboksylowych, zwłaszcza kwasu octowego, o wzorze ogólnym I, w którym R1 oznacza prostą lub rozgałęzioną grupę C1-C10 alkilową, benzylową, -CH2-C6-10 aryl a R2, R3, oznaczają niezależnie od siebie atom wodoru, grupę hydroksylową, grupę aminową, lub C1-C30 alkil, grupę (CH2)nCOOH gdzie n oznacza 1-5, C1-C30 alken posiadający, co najmniej jedno wiązanie podwójne, aryl.
W tradycyjnych metodach wytwarzania chiralnych α-podstawionych lub α,α'-dipodstawionych kwasów lub estrów kwasu octowego niezbędne jest zastosowanie chiralnych, nieracemicznych alkoholi, których estryfikacja prowadzi do mieszaniny diastereoizomerycznych estrów. Rozdzielenie tych związków na diastereoizomery i poddanie ich hydrolizie prowadzi do uzyskania enancjomerycznie czystych lub wzbogaconych odpowiednich kwasów. Metody te generują znaczne ilości uciążliwych dla środowiska produktów ubocznych. Dogodna metoda syntezy tej klasy związków wykorzystuje enzymy jako biokatalizatory reakcji estryfikacji lub reakcji hydrolizy racemicznych kwasów, co zostało pokazane na Schemacie 1 [P. Kiełbasiński, R. Ostaszewski, W. Szymański, „Enzymatic Catalysis Today and tomorrow, in Novel Concepts in Catalysis and Chemical Reactors edited by A. Cybulski, J. A. Moulijn, A. Stankiewicz, WILEY-VCH 2010, str. 95-120].
Zastosowanie enzymów, jako biokatalizatorów reakcji estryfikacji kwasów karboksylowych jest dobrze udokumentowane w literaturze [Lortie R., Biotechnology Advances, 1997, 15, 1-15]. Rozdział kinetyczny racemicznych kwasów (I) w reakcjach katalizowanych enzymami prowadzi do uzyskania enancjomerycznie wzbogaconych estrów (I) i kwasów (II) z bardzo dobrymi wydajnościami, ale zastosowanie wody jako rozpuszczalnika nie jest dogodne w procesach przemysłowych. Inną metodą syntezy jest zastosowanie enzymów jako biokatalizatorów reakcji enzymatycznej estryfikacji z wykorzystaniem alkoholi, jako donorów grup alkoksylowych [Da Graca Nascimento M., Rezende M. C, Vecchia R. D., De Jesus P. C, Aguiar L. M. Z. Tetrahedron Lett., 1992, 33, 5891]. Poważnym ograniczeniem tej metody jest problem związany z usuwaniem wody ze środowiska reakcji. Przesuwanie równowagi reakcji w kierunku produktu możliwe jest poprzez zastosowanie dodatkowych czynników odciągających wodę. Mogą to być sole nieorganiczne, które silnie wiążą wodę [Kvittingen, J., Sjursens, B., Anthorsen, T. Tetrahedron, 1992, 48, 2793-2802] lub sita molekularne [Fonteyn, F., Becker, C, Lognay, G., Marliner, M., Severin, M., Biotechnology Letters, 1994, 16, 693-696]. Możliwe jest zastosowanie innych odczynników, jako donorów grup alkoksylowych, takich jak węglany alifatyczne [Pioch D., Lozano, P., Grille J., Biotechnology Letters, 1991, 13, 633-636]. W tym przypadku, rozpad tworzącego się jako produkt uboczny w reakcji węglanu alifatycznego jest dodatkową siłą napędową całego procesu. Analogiczny efekt można uzyskać w przypadku zastosowania, jako donora grup alkoksylowych ortoestrów kwasów alifatycznych [Morrone, R., D'Antona, N. Lambusta, D., Nicolosi, G., J. Mol. Catalysis B, 2010, 65 49-51; Morrone, R., Nicolosi, G., Piattelli, US Patent 6,953,678 B1 Use of Orthoesters for the Synthesis of Chiral Acids in Biocatalyzed Irreversible Esterification Processes]. Niestety, w szeregu przypadków zastosowanie ortoestrów kwasów alifatycznych jako substratów do tej reakcji prowadzi do uzyskania odpowiednich enancjomerycznie wzbogaconych kwasów i estrów z niskimi wydajnościami oraz niewielką enancjoselektywnością.
Istotnym problemem jest więc, zaproponowanie nowych metod syntezy estrów i kwasów karboksylowych, w których produkty reakcji uzyskiwane są z wysokimi wydajnościami, w łagodnych warunkach i spełniających wymagania narzucane przez zasady zielonej chemii [Anastas P. T., Warner J. C. Green Chemistry: Theory and Practice, 1998, Oxford University Press, Oxford].
Celem wynalazku jest zapewnienie alternatywnego sposobu wytwarzania chiralnych, nieracemicznych estrów pochodnych kwasu octowego.
Cel ten został osiągnięty dzięki opracowaniu sposobu według wynalazku.
Przedmiotem wynalazku jest zatem sposób wytwarzania estrów kwasów karboksylowych, zwłaszcza kwasu octowego, o wzorze ogólnym I,
PL 219 067 B1
w którym R1 oznacza prostą lub rozgałęzioną grupę C1-C10 alkilową, benzylową, -CH2-C6-10 aryl a R2, R3, oznaczają niezależnie od siebie atom wodoru, grupę hydroksylową, grupę aminową, lub C1-C30 alkil, grupę (CH2)nCOOH, gdzie n oznacza 1-5, C1-C30 alken posiadający co najmniej jedno wiązanie podwójne, aryl, charakteryzujący się tym, że kwas o wzorze ogólnym II
w którym R2 i R3 posiadają określone powyżej znaczenie, poddaje się reakcji z ortoestrami o wzorze ogólnym III
w którym R1 posiada określone powyżej znaczenie, a R4 oznacza grupę fenylową, grupę arylową, naftylową, -CH2-C6-10 aryl w obecności jednego lub mieszaniny enzymów, korzystnie hydrolaz, korzystnie posiadających aktywność lipazy, esterazy, proteazy, korzystnie w środowisku rozpuszczalnika organicznego lub w nadmiarze ortoestru.
Korzystnie, w sposobie według wynalazku stosuje się enzymy wybrane z grupy obejmującej hydrolazy pochodzenia mikrobiologicznego, roślinnego lub zwierzęcego, zwłaszcza wybrane z grupy obejmującej: lipazę z kiełków pszenicy, lipazę z Penicillium roqueforti, rekombinowaną lipazę z Candida antarctica, Amano lipazę AK, proszki acetonowe z organów zwierzęcych.
W sposobie według wynalazku korzystnie stosuje się razem enzymy natywne lub immobilizowane wybrane z grupy lipaz, esteraz, proteaz, niezależnie od zastosowanych ilości.
Korzystnie, w powyższym sposobie donorem grupy alkoksylowej jest ortoester podstawionego lub nie kwasu arylowego, przy czym grupa R1 wybrana jest spośród prostych lub rozgałęzionych grup alkilowych C1-C10, benzylowej, -CH2-C6-10 arylowej.
Korzystnie, w sposobie według wynalazku reakcję prowadzi się w rozpuszczalniku organicznym.
Sposób według wynalazku charakteryzuje się tym, że reakcję prowadzi się w rozpuszczalniku organicznym, zwłaszcza wybranym spośród toluenu, acetonitrylu, eteru etylowego lub tert-butylometylowego lub ich mieszaniny.
W jednej z realizacji wynalazku, reakcję prowadzi się bez rozpuszczalnika, w nadmiarze odpowiedniego ortoestru.
Korzystnie, reakcję prowadzi się w temperaturze od 0 do 80 stopni Celsjusza, korzystnie w temperaturze od 20 do 55 stopni Celsjusza.
W sposobie według wynalazku jako substrat stosuje się chiralny kwas o powyższym wzorze II.
Korzystnie, jako substrat stosuje się chiralny, racemiczny kwas o powyższym wzorze II, natomiast po reakcji nieprzereagowany kwas jest substancją zawierającą nieidentyczne ilości enancjomerów.
W sposobie według wynalazku, korzystnie uzyskuje się enancjomerycznie wzbogacony ester o powyższym wzorze I.
Innym przedmiotem wynalazku jest zastosowanie w sposobie według wynalazku związku o wzorze III
w którym R1 oznacza prostą lub rozgałęzioną grupę C1-C10 alkilową, benzylową, -CH2-C6-10 aryl, aR4 oznacza grupę fenylową, grupę arylową, naftylową, -CH2-C6-10 aryl.
Zastosowanie racemicznych kwasów karboksylowych oraz przerwanie reakcji przed uzyskaniem konwersji 50% umożliwia uzyskanie enancjomerycznie wzbogaconych estrów oraz uzyskanie enancjomerycznie wzbogaconych kwasów.
PL 219 067 B1
Nieoczekiwanie stwierdzono, że możliwe jest uzyskanie znacznie większych wydajności reakcji estryfikacji a uzyskiwane produkty posiadają znacznie wyższy nadmiar enancjomeryczny, gdy jako donory grupy alkoksylowej zastosuje się ortoestry kwasów aromatycznych. W badaniach modelowych wykonanych na kwasie 3-fenylo-4-pentenowym oraz na kwasie 3-(4-flurofenylo)-penten-4-owym i ortoestrach kwasu benzoesowego (Przykład 1) stwierdzono, że zastosowanie do reakcji ortoestrów kwasów alifatycznych nie pozwala na uzyskanie produktów z wydajnościami przewyższającymi 19% a enancjoselektywności poszczególnych reakcji są niższe niż 22. W przypadku procesów przemysłowych parametr ten powinien być większy niż 100, a zatem uzyskane wyniki były niezadowalające.
Zastosowanie ortobenzoesanów trialkilowych umożliwiło uzyskanie znacznie wyższych wydajności w poszczególnych reakcjach oraz podniesienie enancjoselektywności co najmniej o jeden rząd wielkości.
Poniższe przykłady ilustrują, jak można realizować sposób według wynalazku, nie ograniczając jego zakresu.
P r z y k ł a d I
Enzymatyczna synteza nieracemicznych estrów kwasów 3-arylo-penten-4-owych z zastosowaniem ortoestrów
Do roztworu kwasu 1 (1 mmol) w toluenie (1.21 ml) wkroplono odpowiedni ortoester 2, (3 eq; 3 mmol) i dodano enzym (5 mg). Mieszaninę reakcyjną ogrzewano w temperaturze 50°C przez 2 dni. Po schłodzeniu do temperatury pokojowej mieszaninę reakcyjną przemyto nasyconym wodorowęglanem sodu do usunięcia kwasu, następnie solanką (1 ml) i suszono bezwodnym siarczanem magnezu. Po podarowaniu rozpuszczalnika pod zmniejszonym ciśnieniem uzyskano odpowiedni ester.
Otrzymane wyniki przedstawiono w Tabeli 1.
T a b e l a 1 Enzymatyczna estryfikacja kwasów 3-arylo-penten-4-owego ortoestrami
Lp. Enzym R R4C(OR1)3 Wydajność [%] eea [%] Eb
1 Bez enzymu 0 - -
2 Lipaza z kiełków pszenicy H MeC(OMe)3 17 0.5 1.01
3 Lipaza z kiełków pszenicy H HC(OMe)3 0 - -
4 Lipaza z kiełków pszenicy H PhC(OMe)3 51 >99 (1) 1057
5 Lipaza z kiełków pszenicy H PhC(OEt)3 50 >99 (1) 1057
6 Lipaza z Penicillium roqueforti H MeC(OMe)3 9 82 (1) 11.20
7 Lipaza z Penicillium roqueforti H HC(OMe)3 9.2 82 (1) 11.13
8 Lipaza z Penicillium roqueforti H PhC(OEt)3 50 99 (1) 1057
9 GLAP H MeC(OMe)3 5.8 1.5 (1) 1.03
11 GLAP H HC(OMe)3 18.5 16 (2) 1.43
12 GLAP H PhC(OMe)3 52 99 (1) 9967
13 GLAP H PhC(OEt)3 50 99 (1) 1057
14 GLAP F MeC(OMe)3 32 88 22
15 GLAP F PhC(OMe)3 47 97 183
aobliczono przy użyciu HPLC ze wzoru ee = (P-Q)/(P+Q) bobliczono ze wzoru E = 1n[1-c(1+eep)]/1n[1-c(1-eep)] cproszek acetonowy z wątroby gęsiej
PL 219 067 B1
P r z y k ł a d II
Enzymatyczna synteza nieracemicznych estrów z zastosowaniem ortoestrów
Do roztworu kwasu (1 mmol) w toluenie (1.21 ml) wkroplono odpowiedni ortoester (3 eq; 3 mmol) i dodano 5 enzymów (lipaza z kiełków pszenicy, acylaza I z Aspergillus melleus, papaina, NOVO SP 435A, Amano lipase AK) po 5 mg każdego. Mieszaninę reakcyjną ogrzewano do temperatury 50°C przez 2 dni, schłodzono do temperatury pokojowej (20°C). Warstwę organiczną przemyto nasyconym wodorowęglanem sodu do usunięcia kwasu, solanką (1 ml) i suszono bezwodnym siarczanem magnezu. Po usunięciu rozpuszczalnika pod zmniejszonym ciśnieniem otrzymano odpowiedni ester.
Otrzymane wyniki przedstawiono w Tabeli 2.
Tabela 2 Enzymatyczna estryfikacja kwasów ortoestrami
Lp. Kwas Ortoester Wydajność (%) eea [%]
1 θΧ-Η PhC(OMe)3 15 >90
PhC(OEt)3 34 >90
2 o/. PhC(OMe)3 25 >90
PhC(OEt)3 21 >90
aobliczono przy użyciu HPLC ze wzoru ee = (P-Q)/(P+Q)
P r z y k ł a d III
Enzymatyczna desymetryzacja kwasu 3-fenyloglutarowego z zastosowaniem ortobenzoesanu trietylowego
Do roztworu kwasu 3-fenyloglutarowego (1 mmol) w odpowiednim rozpuszczalniku organicznym (10 ml) wkroplono ortobenzoesan trimetylu (1 eq; 1 mmol) i dodano 10 mg enzymu. Mieszaninę reakcyjną ogrzewano do temperatury 50°C przez 2 dni, schłodzono do temperatury pokojowej (20°C). Po usunięciu rozpuszczalnika pod zmniejszonym ciśnieniem produkt oczyszczono za pomocą chromatografii kolumnowej na żelu krzemionkowym kładem heksan/octan etylu.
Otrzymane wyniki przedstawiono w Tabeli 4.
PL 219 067 B1
T a b e l a 4 Enzymatyczna desymetryzacja kwasu 3-fenyloglutarowego z zastosowaniem ortobenzoesanu trietylowego
Lp. Rozpuszczalnik Enzym Wydajność [%] eea [%]
1 Toluen Novozym 435 28 >90%
2 Toluen Amano PS 21 >90%
3 Acetronitryl Novozym 435 27 >90%
4 Acetronitryl Amano PS 25 >90%
aobliczono przy użyciu HPLC ze wzoru ee = (P-Q)/(P+Q)
Skład enancjomeryczny uzyskanych produktów badano metodą chromatografii HPLC stosując kolumnę chiralną Chiracel OD-H i mieszaninę heksanu oraz izopropanolu (9:1; v/v).

Claims (12)

1. Sposób wytwarzania związków o wzorze I
R2 w którym R1 oznacza prostą lub rozgałęzioną grupę C1-C10 alkilową, benzylową, -CH2-C6-10 aryl a R2, R3, oznaczają niezależnie od siebie atom wodoru, grupę hydroksylową, grupę aminową, lub C1-C30 alkil, grupę (CH2)nCOOH gdzie n oznacza 1-5, C1-C30 alken posiadający, co najmniej jedno wiązanie podwójne, aryl, znamienny tym, że związek o wzorze II
Ο
R2 w którym R2, R3 posiadają określone powyżej znaczenie, poddaje się reakcji ze związkiem o wzorze III
R4
RK X .R1 OH)
R1 Oo z O w którym R1 posiada określone powyżej znaczenie, a R4 oznacza grupę fenylową, grupę arylową, naftylową, -CH2-C6-10 aryl, w obecności pojedynczego lub mieszaniny enzymów, korzystnie hydrolaz, korzystnie posiadających aktywność lipazy, esterazy, proteazy, korzystnie w środowisku rozpuszczalnika organicznego lub nadmiarze ortoestru.
2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stosuje się enzymy wybrane z grupy obejmującej hydrolazy pochodzenia mikrobiologicznego, roślinnego lub zwierzęcego, zwłaszcza wybrane z grupy obejmującej: lipazę z kiełków pszenicy, lipazę z Penicillium roqueforti, rekombinowaną lipazę z Candida antarctica, Amano lipazę AK, proszki acetonowe z organów zwierzęcych.
3. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stosuje się razem enzymy natywne lub immobilizowane wybrane z grupy lipaz, esteraz, proteaz.
4. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że donorem grupy alkoksylowej jest ortoester podstawionego lub nie kwasu arylowego, przy czym grupa R1 wybrana jest spośród prostych lub rozgałęzionych grup alkilowych C1-C10, benzylowej, -CH2-C6-10 arylowej.
5. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że reakcję prowadzi się w rozpuszczalniku organicznym.
6. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że reakcję prowadzi się w rozpuszczalniku organicznym zwłaszcza wybranym spośród toluenu, acetonitrylu, eteru etylowego lub tert-butylometylowego lub ich mieszaniny.
PL 219 067 B1
7. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że reakcję prowadzi się bez rozpuszczalnika, w nadmiarze odpowiedniego ortoestru.
8. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że reakcję prowadzi się w temperaturze od 0 do 80 stopni Celsjusza, korzystnie w temperaturze od 20 do 55 stopni Celsjusza.
9. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że jako substrat stosuje się chiralny kwas o wzorze II.
10. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że jako substrat stosuje się chiralny, racemiczny kwas o wzorze II, natomiast po reakcji nieprzereagowany kwas jest substancją zawierającą nieidentyczne ilości enancjomerów.
11. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że uzyskuje się enancjomerycznie wzbogacony ester o wzorze I.
12. Zastosowanie związku o wzorze III w którym R1 oznacza prostą lub rozgałęzioną grupę C1-C10 alkilową, benzylową, -CH2-C6-10 aryl, R4 oznacza grupę fenylową, grupę aryIową, naftylową, -CH2-C6-10 aryl, w sposobie określonym w zastrz. 1.
PL394723A 2011-05-03 2011-05-03 Sposób biokatalitycznego wytwarzania chiralnych, nieracemicznych kwasów (54) i estrów kwasów karboksylowych oraz zastosowanie ortoestrów kwasów aromatycznych w tym sposobie PL219067B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL394723A PL219067B1 (pl) 2011-05-03 2011-05-03 Sposób biokatalitycznego wytwarzania chiralnych, nieracemicznych kwasów (54) i estrów kwasów karboksylowych oraz zastosowanie ortoestrów kwasów aromatycznych w tym sposobie

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL394723A PL219067B1 (pl) 2011-05-03 2011-05-03 Sposób biokatalitycznego wytwarzania chiralnych, nieracemicznych kwasów (54) i estrów kwasów karboksylowych oraz zastosowanie ortoestrów kwasów aromatycznych w tym sposobie

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL394723A1 PL394723A1 (pl) 2012-11-05
PL219067B1 true PL219067B1 (pl) 2015-03-31

Family

ID=47263863

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL394723A PL219067B1 (pl) 2011-05-03 2011-05-03 Sposób biokatalitycznego wytwarzania chiralnych, nieracemicznych kwasów (54) i estrów kwasów karboksylowych oraz zastosowanie ortoestrów kwasów aromatycznych w tym sposobie

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL219067B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL394723A1 (pl) 2012-11-05

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Röschenthaler et al. Asymmetric synthesis of phosphonotrifluoroalanine and its derivatives using N-tert-butanesulfinyl imine derived from fluoral
CZ132286A3 (en) Process of enzymatic preparation of optical isomers of 2-halogenpropionic acids
SG183344A1 (en) Method for producing 1-amino-1-alkoxycarbonyl-2-vinylcyclopropane
Shimojo et al. Enzyme-mediated preparation of optically active 1, 2-diols bearing a long chain: enantioselective hydrolysis of cyclic carbonates
Hammerschmidt et al. Enzymes in organic chemistry. Part 9: chemo-enzymatic synthesis of phosphonic acid analogues of L-valine, L-leucine, L-isoleucine, L-methionine and L-α-aminobutyric acid of high enantiomeric excess
Strübing et al. Dynamic kinetic resolution of primary alcohols with an unfunctionalized stereogenic center in the β‐position
Jin et al. Enzymatic production of enantiopure ketoprofen in a solvent-free two-phase system
Matsumoto et al. Highly enantioselective preparation of C2-symmetrical diols: microbial hydrolysis of cyclic carbonates
Yuan et al. Enzymatic synthesis of optically active 1-and 2-aminoalkanephosphonates
WO2004003001A1 (en) Process for the enzymatic resolution of 1,3-dioxolane-4-carboxylates
PL219067B1 (pl) Sposób biokatalitycznego wytwarzania chiralnych, nieracemicznych kwasów (54) i estrów kwasów karboksylowych oraz zastosowanie ortoestrów kwasów aromatycznych w tym sposobie
Shi-Hui et al. Synthesis of enantiomerically pure cycloalkenols via combination strategy of enzyme-catalyzed reaction and RCM reaction
Skrobo et al. On the lipase-catalyzed resolution of functionalized biaryls
KR20070076549A (ko) 광학적으로 활성인 사이클로펜텐온의 제조방법 및 그로부터제조된 사이클로펜텐온
Bora et al. First example of hydrolytic kinetic resolution of acrylate of secondary alcohols by lipase Amano AK
Majewska Biocatalytic hydrolysis of diethyl 1-butyryloxy-1-carboxymethylphosphonate and determination of the absolute configuration of obtained products
EP2817412B1 (en) Process for resolving cyclopropyl diesters
PL218577B1 (pl) Sposób wytwarzania achiralnych i chiralnych, nieracemicznych estrów kwasów karboksylowych
JP2002171994A (ja) 光学活性なテトラヒドロフラン−2−カルボン酸またはその対掌体エステルの製造方法
Laı̈b et al. Horse liver esterase catalyzed enantioselective hydrolysis of N, O-diacetyl-2-amino-1-arylethanol
PL219066B1 (pl) Sposób wytwarzania estrów kwasów karboksylowych oraz zastosowanie mieszaniny enzymów w tym sposobie
Kataoka et al. Enzyme-Mediated Enantioselective Hydrolysis of Dicarboxylic Acid Monoesters
JP2003299495A (ja) 光学活性3−メチルグルタル酸モノエステルの製造方法
JP5506658B2 (ja) 好熱性古細菌由来エステラーゼを用いた光学活性カルボン酸の製造方法
JPWO2013094499A1 (ja) 光学活性なα−置換−β−アミノ酸の製造方法