PL218693B1 - Sposób wytwarzania preparatu peptydowego - Google Patents

Sposób wytwarzania preparatu peptydowego

Info

Publication number
PL218693B1
PL218693B1 PL388408A PL38840809A PL218693B1 PL 218693 B1 PL218693 B1 PL 218693B1 PL 388408 A PL388408 A PL 388408A PL 38840809 A PL38840809 A PL 38840809A PL 218693 B1 PL218693 B1 PL 218693B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
colostrum
mixture
minutes
cooled
acetone
Prior art date
Application number
PL388408A
Other languages
English (en)
Inventor
Antoni Polanowski
Tadeusz Wilusz
Włodzimierz Dobrzyński
Stanisław Bodzicz
Original Assignee
Geo Poland Spółka Z Ograniczoną Odpowiedzialnością
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Geo Poland Spółka Z Ograniczoną Odpowiedzialnością filed Critical Geo Poland Spółka Z Ograniczoną Odpowiedzialnością
Priority to PL388408A priority Critical patent/PL218693B1/pl
Publication of PL218693B1 publication Critical patent/PL218693B1/pl

Links

Landscapes

  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania preparatu peptydowego z siary ssaków hodowlanych, wykazującego aktywność immunostymulacyjną, zawierającego głównie peptydy o masach cząsteczkowych nie przekraczających 10 kDa i charakteryzujących się wysoką zawartością proliny (ok. 20%) oraz aminokwasów kwaśnych (ok. 18%). Peptydy i białka o wysokiej zawartości proliny występują powszechnie zarówno w organizmach zwierzęcych jak i roślinnych. Siara jest gęstym płynem wydzielanym przez matki ssacze przez kilka dni po porodzie i stanowi pierwszy pokarm noworodka. Grupą peptydów bogatych w prolinę jest kompleks kilkudziesięciu peptydów po raz pierwszy wyizolowany z siary owczej i scharakteryzowany w 1974 r. przez zespół Janusz M., Lisowski J., Franek F. (Isolation and characterization of a prolin-rich polypeptide from ovine Colostrums, FEBS Lett. 1974, 49, 276-279). Stwierdzono później, że analogi tego polipetydu są składnikiem siary także innych ssaków, który wraz z laktoferyną, glikomakropeptydem, a-laktoalbuminą, β-laktoglobuliną i lizozymem oraz laktoperoksydazą tworzy w mleku, ważny dla oseska, zespół białek aktywnych biologicznie. Kompleks peptydów bogatych w prolinę występuje w siarze w formie związanej z frakcją immunoglobulin IgG2 wskazując na jego immunotropowe właściwości. Stężenie kompleksu zależy od okresu laktacji i największe jest w pierwszych godzinach po porodzie.
Z patentu amerykańskiego nr US 6268487 pt: „Purification of biologically active peptides from milk” znany jest sposób izolacji składników mleka w wyniku filtracji.
Zastosowanie ultrafiltracji na selektywnych błonach filtracyjnych, w warunkach ustalonego odczynu pH w granicach 6,3 - 7,0 i w temperaturze 30-60°C do izolacji białek serwatkowych ujawniono w patencie amerykańskim nr US 4485040 pt.: „Process for obtaining on alpha-lakctalbumin enriched product from whey, and uses thereof”.
W amerykańskim patencie nr US 4816563 pt.: „Process for obtaining transfer factor from colostrum, transer faktor so obtained and use thereof” ujawniono metodę izolacji składników siary lub mleka przy zastosowaniu ultrafiltracji lub dializy.
W brytyjskim opisie patentowym GB 1179384 pt.: „Extraction of a Therapeutically Active Glycoprotein and Compositions containing it” opublikowano metodę ekstrakcji glikoproteinowych substancji aktywnych ze śliny zwierzęcej lub gruczołów ślinowych zwierząt przy użyciu acetonu.
W międzynarodowym zgłoszeniu patentowym PCT/GB2004/001014 pt.: „Purification of peptides from colostrum” ujawniono sposób wyodrębniania peptydów z siary przy zastosowaniu ekstrakcji alkoholem w tym głównie alkoholem metylowym lub etylowym.
Istotą sposobu wytwarzania preparatu peptydowego z siary ssaków hodowlanych, wykazującego aktywność immunostymulacyjną, zawierającego głównie peptydy o masach cząsteczkowych nie przekraczających 10 kDa i charakteryzujących się wysoką zawartością proliny oraz aminokwasów kwaśnych jest to, że płynną siarę ssaków hodowlanych, świeżą lub mrożoną lub też uzyskaną z rozpuszczenia suszonej siary, chłodzi się i wiruje przez 20 minut przy prędkości obrotowej 8000 obr./min. w celu oddzielenia tłuszczu. Siarę rozcieńcza się dwukrotnie roztworem EDTA o stężeniu od 0,05M do 0,25M, najkorzystniej 0,1M i pozostawia na 30 minut. Mieszaninę następnie doprowadza się do temperatury w zakresie od 0°C do 25°C, korzystnie 5-10°C, a następnie mieszając, dodaje się aceton o tej samej temperaturze. Końcowe stężenie acetonu wynosi od 55% do 80%, najkorzystniej 65%. Mieszaninę ekstrahuje się mieszając przez okres od 5 do 60 minut, najkorzystniej 10 minut. Po ekstrakcji mieszaninę klaruje się poprzez wirowanie w temperaturze od 0°C do 25°C, najkorzystniej 5° przez 10 do 20 minut i prędkości obrotowej ok. 8000 obr./min. Ewentualnie do supernatantu dodaje się octanu amonu w takiej ilości by powstał układ dwóch faz: fazy acetonowej i fazy wodno-białkowej. Oddziela się fazę wodną od fazy acetonowej. Fazę wodno-białkową ogrzewa się, najkorzystniej pod zmniejszonym ciśnieniem, w celu odparowania zawartego w roztworze wodnym acetonu. Po oddzieleniu acetonu roztwór wstępnie klaruje się oddzielając zawiesinę cząstek stałych jednym ze znanych sposobów jak sączenie lub wirowanie i poddaje się procesowi ultrafiltracji przez membranę o granicznej przepuszczalności 1000 Da do uzyskania retentatu w ilości stanowiącej 1/5 objętości początkowej. Retentat przemywa się trzykrotnie równą objętością wody. Alternatywnie fazę wodno-białkową, po oddzieleniu acetonu, poddaje się dializie wobec wody. Dializat klaruje się oddzielając zawiesinę cząstek stałych jednym ze znanych sposobów jak sączenie lub wirowanie. Permeat z ultrafiltracji lub dializy odrzuca się, a retentat (dializat) zagęszcza się przez odparowanie części wody pod zmniejszonym ciśnieniem i suszy rozpyłowo lub suszy bez wstępnego zagęszczania lub suszy w procesie liofilizacji. Uzyskuje się preparat peptydowy z około 20% zawartością proliny i około 18% zawartością aminokwasów kwaśnych.
PL 218 693 B1
Sposób według wynalazku pozwala wyizolować z siary kompleks peptydów bogatych w prolinę o wysokiej aktywności biologicznej, z dużą wydajnością. Sposób może być stosowany do otrzymywania kompleksu peptydów bogatych w prolinę bez względu na gatunkowe pochodzenie siary. Sposób pozwala stosować siarę zgromadzoną i przechowywaną przez dłuższy czas w formie proszku lub zamrożoną. Kompleksy peptydów bogatych w prolinę wykazują właściwości immunoregulatorowe. Mogą indukować dojrzewanie i różnicowanie tymocytów mysich i tworzenie limfocytów. Są mocnym induktorem wydzielania kluczowych dla układu immunologicznego cytokin mianowicie: interferonu INF-γ, TNF -a jak również interleukiny IL-6 i IL-Ιβ w hodowli komórek pełnej krwi obwodowej. Powyższe właściwości biologiczne w zestawieniu z wiadomościami dotyczącymi patogenezy choroby Alzheimera, a szczególnie potwierdzony hamujący wpływ cytokin oraz interleukin na powstawanie złogów amyloidu β, pozwoliły na sformułowanie hipotezy o terapeutycznych zdolnościach tego kompleksu wobec schorzeń o podłożu neurodegeneracyjnym. Nie poznano dokładnego neuroprotekcyjnego mechanizmu działania peptydów bogatych w prolinę w chorobie Alzheimera. Choroba Alzheimera jest demencją, pod pojęciem której kryje się wiele symptomów towarzyszących chorobom i zaburzeniom, prowadzącym do pogorszenia funkcji mózgu (m.in. pamięć, racjonalność, rutyna). 50 - 70% przypadków demencji jest wynikiem choroby degeneracyjnej wywoływanej neurologicznymi zmianami w strukturze mózgu, takimi jak powstawanie amyloidowych płytek starczych z fragmentów β-amyloidu 1-42 (Αβ1-42) proteolitycznie zwolnionego z białka prekursorowego APP pod wpływem sekretaz oraz tworzenie się splotów neurofibrylarnych (NFT, Neurofibrillary Tangles) na skutek hiperfosforylacji białka TAU.
Udowodniona została aktywność psychotropowa kompleksów bogatych w prolinę in vivo. Podawanie starym szczurom kompleksu peptydów bogatych w prolinę prowadziło do usprawnienia funkcji pamięciowych charakterystycznych dla osobników młodych, a w szczególności polepszenia pamięci przestrzennej i incydentalnej.
Sposób według wynalazku przedstawiono w przykładach.
Na rysunku Fig. 1 przedstawia schemat postępowania według wynalazku.
Kompleks peptydów bogatych w prolinę o ciężarze cząsteczkowym do 10000 Da, otrzymany z siary krowiej sposobem według wynalazku, posiada następujący skład aminokwasowy:
T a b e l a 1
Skład aminokwasowy kompleksów bogatych w prolinę otrzymanych z siary krowiej w porównaniu z kompleksem z siary owczej wg Janusz et. al. (FEBS LETTERS 1974. 49, 276-279) produkt referencyjny
Reszty amino-kwasowe Siara owcza wg Janusz et. al. (FEBS LETTERS 1974. 49, 276-279) produkt referencyjny /%/ Kompleks peptydów bogatych w prolinę otrzymany sposobem według wynalazku /%/
1 2 3
Asp/Asn 2.56 4.81
Ser 5.27 6.57
Glu/Gln 14.90 14.01
Gly 2.32 3.76
His 1.94 2.78
Arg 1.80 2.96
Thr 6.55 4.28
Ala 1.38 3.27
Pro 22.90 20.68
Tyr 1.62 2.18
Val 12.85 9.85
Met 3.93 3.24
PL 218 693 B1 cd. tabeli 1
1 2 3
Lys 7.16 4.47
Ile 2.48 6.36
Leu 9.60 8.24
Phe 4.72 4.31
Trp N.D. N.D.
Cys 1.05 N.D.
P r z y k ł a d I
Kompleks peptydów bogatych w prolinę uzyskano z siary krowiej pobieranej w ciągu 24 godzin po porodzie. Siarę wirowano w temp. 4°C przez 20 min przy 8000 obr./min celem usunięcia tłuszczu. Następnie rozcieńczano równą objętością 0,1M roztworu EDTA, i pozostawiono 30 min w temperaturze pokojowej. Następnie roztwór ochłodzono do temperatury 5°C i dodawano do niego, przy ciągłym mieszaniu, aceton o temperaturze 5°C do końcowego stężenia 65%. Mieszaninę ekstrahowano 10 minut po czym odwirowywano w temp. 5°C przez 20 min przy 8000 obr./min. Osad odrzucono. Supernatant odparowywano pod próżnią do całkowitego pozbycia się acetonu, zakwaszano 1M roztworem kwasu solnego do pH 6 i dializowano w 5°C przez membranę o przepuszczalności granicznej 1 kDa wobec 5 krotnie zmienianej wody. Dializat klarowano poprzez filtrację przez sączek bibułowy. Permeat odrzucano. Retentat (dializat) zawierający peptydy i polipeptydy o masach powyżej 1000 Da po liofilizacji stanowił finalny produkt o zawartości proliny 20,6%.
P r z y k ł a d II
Siarę krowią mrożoną odtłuszczoną jak w przykładzie I rozcieńczano równą objętością 0,05M roztworu EDTA i pozostawiono 30 min w temp. pokojowej. Następnie temperaturę roztworu ustalano na 5°C i dodawano do niego, przy ciągłym mieszaniu, aceton o temperaturze 5°C do końcowego stężenia 75%. Mieszaninę ekstrahowano 60 min, po czym odwirowywano w temp. 4°C przez 10 min przy 8000 obr./min. Osad odrzucono. Celem wydzielenia frakcji wodnej białek do roztworu acetonowego dodawano octanu amonu in substantia do stężenia 8%. Po utworzeniu układu dwufazowego, wodny roztwór białek oddzielano w rozdzielaczu i poddano odparowaniu celem usunięcia resztek acetonu.
Supernatant pozbawiony acetonu zakwaszono 1M roztworem HCl do pH 6, klarowano przez filtrację na sączku bibułowym i poddano ultrafiltracji w temperaturze 5°C, przez membranę o przepuszczalności granicznej 1 kDa (YM1) do uzyskania około 1/5 objętości początkowej, przemywając retentat trzykrotnie równą objętością wody. Permeat odrzucano. Retentat zawierający peptydy i polipeptydy o masach powyżej 1000 Da po wysuszeniu stanowił finalny. Uzyskano produkt o zawartości proliny 21%.
P r z y k ł a d III
Siarę krowią mrożoną, odtłuszczoną jak w przykładzie I rozcieńczano równą objętością 0,25M roztworu EDTA i pozostawiono 30 min w temperaturze pokojowej. Następnie temperaturę roztworu ustalano na 25°C i dodawano do niego, przy ciągłym mieszaniu, aceton o temperaturze 25°C do końcowego stężenia 55%. Mieszaninę ekstrahowano 5 min, po czym odwirowywano w temp. 4°C przez 20 min przy 8000 obr./min. Osad odrzucono. Supernatant poddano odparowaniu pod zmniejszonym ciśnieniem celem usunięcia acetonu.
Do supernatantu pozbawionego acetonu dodano 1M roztworu kwasu solnego do uzyskania pH 6 i klarowano przez filtrację na sączku bibułowym, po czym poddano ultrafiltracji w temperaturze 5°C, przez membranę o przepuszczalności granicznej 1 kDa (YM1), do uzyskania około 1/5 objętości początkowej przemywając retentat trzykrotnie równą objętością zimnej wody. Permeat odrzucano. Retentat zawierający peptydy i polipeptydy o masach powyżej 1000 Da po wysuszeniu stanowił finalny. Uzyskano produkt o zawartości proliny 20,3%.
P r z y k ł a d IV
Kompleksy peptydów bogatych w prolinę wykazują właściwości immunoregulatorowe. Są mocnym induktorem wydzielania kluczowych dla układu immunologicznego cytokin.
Indukcję cytokin in vitro przez kompleks peptydów bogatych w prolinę otrzymany sposobem według wynalazku opisanym w przykładzie I przeprowadzono na próbkach krwi pobranych od zdrowych ochotników. Pełną krew zawierającą 10 jednostek na 1 ml heparyny bez konserwantów rozcieńPL 218 693 B1 czono 1:10 na pożywce hodowlanej. Inkubację prowadzono na tej samej pożywce bez induktorów kontrola, w obecności kompleksu referencyjnego, w obecności kompleksu otrzymanego sposobem według wynalazku, albo w obecności 2 |ig/ml krwi fitohemaglutyniny (PHA) i 2 μο/ml krwi lipopolisacharydu (LPS). Próbki PHA i LPS są kontrolą dodatnią, ponieważ mogą stymulować maksymalną ilość cytokin.
W tabelach 2 i 3 przedstawiono wyniki badań wpływu kompleksu peptydów bogatych w prolinę otrzymanego sposobem według wynalazku na wydzielanie cytokin IL-6 i IL-1 β przez komórki pełnej krwi obwodowej w porównaniu z wpływem kompleksu otrzymanego znanym sposobem wg Janusz et. al. (FEBS LETTERS 1974. 49, 276-279) jako produktem referencyjnym.
T a b e l a 2
Wpływ kompleksu peptydów bogatych w prolinę otrzymanego sposobem według wynalazku, opisanym w przykładzie I, na wydzielanie cytokin IL-1 β przez komórki pełnej krwi obwodowej w porównaniu z wpływem kompleksu otrzymanego znanym sposobem wg Janusz et. al.
(FEBS LETTERS 1974. 49, 276-279) jako produktem referencyjnym.
Próba Stężenie ^-1β*
Dawka [pg/ml]
kontrola 4
LPS+PHA >1000
(2 μg + 2 μg)
Produkt referencyjny
1 μg >1000
10 μg >1000
100 μg >1000
Kompleks peptydów bogatych w prolinę otrzymany sposobem wg wynalazku 1 μg >1000
10 μg >1000
100 μg >1000
Medium hodowlane 0
* Wartość średnia z oznaczeń na 5 próbach krwi obwodowej
T a b e l a 3
Wpływ kompleksu peptydów bogatych w prolinę otrzymanego sposobem według wynalazku, opisanym w przykładzie I, na wydzielanie cytokin IL-6 przez komórki pełnej krwi obwodowej w porównaniu z wpływem kompleksu otrzymanego znanym sposobem wg Janusz et. al. (FEBS LETTERS 1974. 49, 276-279) jako produktem referencyjnym.
Próba Stężenie IL-6*
Dawka [pg/ml]
kontrola 0
LPS+PHA
(2 μg + 2 μg) >1700* (1500-2500)
Produkt referencyjny
1 μg >1500
10 μg >1500
100 μg >1500
Kompleks peptydów bogatych w prolinę otrzymany sposobem wg wynalazku 1 μg >1500
10 μg >1500
100 μg >1500
Medium hodowlane 0
* Wartość średnia z oznaczeń na 5 próbach krwi obwodowej
PL 218 693 B1
Zdolność do indukowania cytokin IL-1 β i IL-6 przez kompleks peptydów bogatych w prolinę, otrzymany sposobem według wynalazku, jest równie wysoki jak w przypadku produktu referencyjnego. Stężenie cytokin indukowanych we krwi obwodowej przez kompleks peptydów osiąga poziom maksymalny, równy stężeniu indukowanemu przez LPS+PHA, który stanowi próbę pozytywną, jako indukującą maksymalną liczbę cytokin. Stężenie indukowanych cytokin IL-1 β i IL-6 jest maksymalne już przy najniższej dawce 1 μg.

Claims (24)

1. Sposób wytwarzania preparatu peptydowego z siary ssaków hodowlanych, wykazującego aktywność immunostymulacyjną, zawierającego głównie peptydy o masach cząsteczkowych nie przekraczających 10 kDa i charakteryzujących się wysoką zawartością proliny oraz aminokwasów kwaśnych, znamienny tym, że płynną siarę ssaków hodowlanych chłodzi się i wiruje przez 20 minut w celu oddzielenia tłuszczu po czym rozcieńcza się roztworem EDTA i pozostawia na 30 minut, następnie mieszaninę chłodzi się, a do ochłodzonej mieszaniny, podczas mieszania, dodaje się ochłodzony aceton i ekstrahuje się mieszając, po czym mieszaninę klaruje się w obniżonej temperaturze, a ewentualnie do supernatantu dodaje się octanu amonu do powstania układu dwufazowego i oddziela się fazę wodno-białkową od fazy acetonowej, a następnie fazę wodno-białkową supernatantu ogrzewa się pod zmniejszonym ciśnieniem w celu usunięcia acetonu, zakwasza i poddaje się procesowi filtracji przez membranę o selektywności 1000 Da, po czym retentat ewentualnie zagęszcza się i/lub suszy, przy czym uzyskuje się preparat peptydowy z około 20% zawartością proliny i około 18% zawartością aminokwasów kwaśnych.
2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że płynną siarę ssaków hodowlanych chłodzi się do temperatury 4°C.
3. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że ochłodzoną, płynną siarę wiruje się przez 20 minut przy prędkości obrotowej 8000 obr./min.
4. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że do rozcieńczania siary stosuje się wodny roztwór EDTA o stężeniu od 0,05M do 0,25M.
5. Sposób według zastrz. 4, znamienny tym, że do rozcieńczania siary stosuje się wodny roztwór EDTA najkorzystniej o stężeniu 0,1M.
6. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że siarę rozcieńcza się roztworem EDTA dwukrotnie.
7. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że rozcieńczoną siarę chłodzi się do temperatury w zakresie od 0°C do 25°C.
8. Sposób według zastrz. 7, znamienny tym, że rozcieńczoną siarę chłodzi się do temperatury najkorzystniej w zakresie od 5°C do 10°C.
9. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że końcowe stężenie acetonu mieści się w zakresie od 55% do 80%.
10. Sposób według zastrz. 9, znamienny tym, że końcowe stężenie acetonu najkorzystniej wynosi 65%.
11. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że mieszaninę ekstrahuje się mieszając przez okres od 5 do 60 minut.
12. Sposób według zastrz. 11, znamienny tym, że mieszaninę ekstrahuje się mieszając przez okres najkorzystniej 10 minut.
13. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że mieszaninę po ekstrakcji klaruje się poprzez wirowanie.
14. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że mieszaninę po ekstrakcji klaruje się w temperaturze od 0° do 25°C.
15. Sposób według zastrz. 14, znamienny tym, że wirowanie mieszaniny po ekstrakcji wykonuje się w temperaturze 5°C.
16. Sposób według zastrz. 13, znamienny tym, że czas wirowania mieszaniny po ekstrakcji wynosi od 10 do 20 minut.
17. Sposób według zastrz. 13, znamienny tym, że prędkość obrotowa wirowania mieszaniny po ekstrakcji wynosi 8000 obr./min.
PL 218 693 B1
18. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że końcowe stężenie octanu amonu w mieszaninie wynosi od 4% do 8%.
19. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że fazę wodno-białkową zakwasza się 1 roztworem kwasu chlorowodorowego (1M HCl) do pH 6.
20. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że proces filtracji wodnego roztworu stanowi proces dializy w temperaturze 5°C, przez membranę 1000 Da wobec wody, po czym dializat klaruje się oddzielając zawiesinę cząstek stałych jednym ze znanych sposobów.
21. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że proces filtracji wodnego roztworu stanowi proces ultrafiltracji w temperaturze 5°C gdzie roztwór wstępnie klaruje się oddzielając zawiesinę cząstek stałych jednym ze znanych sposobów, a następnie filtruje się przez membranę o granicznej przepuszczalności 1000 Da do uzyskania około 1/5 objętości początkowej i retentat przemywa się równą objętością wody trzykrotnie.
22. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że retentat z filtracji zagęszcza się przez odparowanie wody pod zmniejszonym ciśnieniem i suszy się rozpyłowo.
23. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że retentat filtracji suszy się rozpyłowo.
24. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że retentat z filtracji liofilizuje się.
PL 218 693 B1
Rysunek
SIARA
Odwirować 8000 obr./min, 30 min., 4°C warstwa tłuszczu ▼
supernatant dodać równą objętość 0, 1 M EDTA, pozostawić 30 minut w temp, pokojowej, następnie dodać acetonu (5-10°C) do końcowego stężenia 65% i po 10 min Odwirować 8000 obr./min
PL388408A 2009-06-29 2009-06-29 Sposób wytwarzania preparatu peptydowego PL218693B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL388408A PL218693B1 (pl) 2009-06-29 2009-06-29 Sposób wytwarzania preparatu peptydowego

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL388408A PL218693B1 (pl) 2009-06-29 2009-06-29 Sposób wytwarzania preparatu peptydowego

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL218693B1 true PL218693B1 (pl) 2015-01-30

Family

ID=52395276

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL388408A PL218693B1 (pl) 2009-06-29 2009-06-29 Sposób wytwarzania preparatu peptydowego

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL218693B1 (pl)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2016072871A1 (en) 2014-11-04 2016-05-12 Geo-Poland Sp. Z.O.O. Proline-rich polypeptide complex for use in treatment of bdnf-dependent disorders

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2016072871A1 (en) 2014-11-04 2016-05-12 Geo-Poland Sp. Z.O.O. Proline-rich polypeptide complex for use in treatment of bdnf-dependent disorders
JP2018500284A (ja) * 2014-11-04 2018-01-11 ゲオ−ポーランド スプウカ・ス・オルガニザツィーノン・オトゥポビエジャルノシチョン Bdnf依存性疾患の治療に使用されるプロリンリッチポリペプチド複合体
US20180036347A1 (en) * 2014-11-04 2018-02-08 Geo-Poland Sp. Z.O.O. Proline-rich polypeptide complex for use in treatment of bdnf-dependent disorders
CN110934890A (zh) * 2014-11-04 2020-03-31 地球波兰股份公司 用于治疗bdnf依赖性失调的富含脯氨酸的多肽复合物
JP2021054837A (ja) * 2014-11-04 2021-04-08 ゲオ−ポーランド スプウカ・ス・オルガニザツィーノン・オトゥポビエジャルノシチョン Bdnf依存性疾患の治療に使用されるプロリンリッチポリペプチド複合体

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP4688092B2 (ja) 活性型TGF−βが濃縮されたタンパク質画分を得る方法、タンパク質画分および治療的適用
RU2132199C1 (ru) Способ получения лечебно-профилактического средства из топинамбура, обладающего биологически активным действием на организм
JP5666995B2 (ja) 抗ロタウィルス感染組成物、およびその製法
AU2012222312B2 (en) Method for isolating osteopontin using feeds containing cmp or casein species
CN102746395A (zh) 从原料乳中分离β-乳球蛋白的方法
AU5093200A (en) Peptides
US20030026845A1 (en) Process for preparing protein isolate from milk, whey, colostrum, and the like
US20090234099A1 (en) Purification of Peptides from Colostrum
RU2400106C1 (ru) Способ получения бад "л-пфи" из вторичного молочного сырья и полученная этим способом бад "л-пфи"
PL218693B1 (pl) Sposób wytwarzania preparatu peptydowego
CN108314704A (zh) 一种羊乳清蛋白免疫调节肽、其制备方法及其应用
JPH04330252A (ja) α−ラクトアルブミン含有量の高い組成物の製造方法
CN107022593B (zh) 一种富含脯氨酸多肽的初乳肽及其制备方法
CN106699842B (zh) 一种新的抗炎小分子多肽及其应用
CN119732411A (zh) 一种富含乳铁蛋白的活性乳清粉及其制备和应用
RU2416243C2 (ru) Способ выделения низкомолекулярных пептидов
JPH05269353A (ja) ガングリオシド含有量の高い組成物の製造方法
PL218708B1 (pl) Sposób izolacji kompleksu peptydów i białek serwatkowych
KR101490365B1 (ko) 겨우살이 비스코사이오닌을 유효성분으로 하는 항당뇨 겨우살이 추출물 또는 이로부터 분리된 비스코사이오닌을 포함하는 항당뇨 조성물
EP3177636B1 (en) Process for the preparation of high purity mixtures of protein factors from bovine colostrum
WO2010044095A2 (en) Novel immunologically active peptide fragments of a proline- rich polypeptide isolated from mammalian colostrums for treatment of viral and non-viral diseases or diseased conditions
WO2005041680A2 (en) A novel colostral fractionation process
JPH05271295A (ja) κ−カゼイングリコマクロペプチド含有量の高い組成物の製造方法
JP6258323B2 (ja) 血清タンパク質濃縮物の調製方法
RU2738745C1 (ru) Бактериологически чистый протеиновый продукт с повышенным содержанием минорных белков