PL217294B1 - Produkt inżynierii tkankowej (PIT) do rekonstrukcji i regeneracji kości (54) oraz sposób otrzymywania produktu inżynierii tkankowej (PIT) do rekonstrukcji i regeneracji kości - Google Patents
Produkt inżynierii tkankowej (PIT) do rekonstrukcji i regeneracji kości (54) oraz sposób otrzymywania produktu inżynierii tkankowej (PIT) do rekonstrukcji i regeneracji kościInfo
- Publication number
- PL217294B1 PL217294B1 PL385197A PL38519708A PL217294B1 PL 217294 B1 PL217294 B1 PL 217294B1 PL 385197 A PL385197 A PL 385197A PL 38519708 A PL38519708 A PL 38519708A PL 217294 B1 PL217294 B1 PL 217294B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- cells
- calcium carbonate
- scaffold
- medium
- culture
- Prior art date
Links
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 title claims description 41
- 210000000988 bone and bone Anatomy 0.000 title claims description 29
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 25
- 230000008929 regeneration Effects 0.000 title claims description 10
- 238000011069 regeneration method Methods 0.000 title claims description 10
- VTYYLEPIZMXCLO-UHFFFAOYSA-L Calcium carbonate Chemical compound [Ca+2].[O-]C([O-])=O VTYYLEPIZMXCLO-UHFFFAOYSA-L 0.000 claims description 66
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 claims description 56
- 229910000019 calcium carbonate Inorganic materials 0.000 claims description 28
- 239000002609 medium Substances 0.000 claims description 21
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims description 14
- 210000005009 osteogenic cell Anatomy 0.000 claims description 14
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 12
- 239000000758 substrate Substances 0.000 claims description 11
- 229910021532 Calcite Inorganic materials 0.000 claims description 10
- 239000011148 porous material Substances 0.000 claims description 8
- 230000008569 process Effects 0.000 claims description 6
- 239000012620 biological material Substances 0.000 claims description 5
- 230000033001 locomotion Effects 0.000 claims description 4
- 102000010834 Extracellular Matrix Proteins Human genes 0.000 claims description 3
- 108010037362 Extracellular Matrix Proteins Proteins 0.000 claims description 3
- 210000002744 extracellular matrix Anatomy 0.000 claims description 3
- 239000012535 impurity Substances 0.000 claims description 3
- 239000000725 suspension Substances 0.000 claims description 3
- 230000004069 differentiation Effects 0.000 claims description 2
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 claims description 2
- 238000002955 isolation Methods 0.000 claims description 2
- 230000002459 sustained effect Effects 0.000 claims 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 13
- 239000007943 implant Substances 0.000 description 10
- 238000002513 implantation Methods 0.000 description 10
- CURLTUGMZLYLDI-UHFFFAOYSA-N Carbon dioxide Chemical compound O=C=O CURLTUGMZLYLDI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 8
- 235000014653 Carica parviflora Nutrition 0.000 description 7
- 241000243321 Cnidaria Species 0.000 description 7
- JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N Penicillin G Chemical group N([C@H]1[C@H]2SC([C@@H](N2C1=O)C(O)=O)(C)C)C(=O)CC1=CC=CC=C1 JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N 0.000 description 6
- CIWBSHSKHKDKBQ-JLAZNSOCSA-N Ascorbic acid Chemical compound OC[C@H](O)[C@H]1OC(=O)C(O)=C1O CIWBSHSKHKDKBQ-JLAZNSOCSA-N 0.000 description 5
- 239000001569 carbon dioxide Substances 0.000 description 4
- 229910002092 carbon dioxide Inorganic materials 0.000 description 4
- 230000007547 defect Effects 0.000 description 4
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 4
- 230000002188 osteogenic effect Effects 0.000 description 4
- UCSJYZPVAKXKNQ-HZYVHMACSA-N streptomycin Chemical compound CN[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](CO)O[C@H]1O[C@@H]1[C@](C=O)(O)[C@H](C)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](NC(N)=N)[C@H](O)[C@@H](NC(N)=N)[C@H](O)[C@H]1O UCSJYZPVAKXKNQ-HZYVHMACSA-N 0.000 description 4
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 3
- APKFDSVGJQXUKY-INPOYWNPSA-N amphotericin B Chemical compound O[C@H]1[C@@H](N)[C@H](O)[C@@H](C)O[C@H]1O[C@H]1/C=C/C=C/C=C/C=C/C=C/C=C/C=C/[C@H](C)[C@@H](O)[C@@H](C)[C@H](C)OC(=O)C[C@H](O)C[C@H](O)CC[C@@H](O)[C@H](O)C[C@H](O)C[C@](O)(C[C@H](O)[C@H]2C(O)=O)O[C@H]2C1 APKFDSVGJQXUKY-INPOYWNPSA-N 0.000 description 3
- 229910010293 ceramic material Inorganic materials 0.000 description 3
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 3
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 3
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 3
- 238000006467 substitution reaction Methods 0.000 description 3
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 3
- 241000283690 Bos taurus Species 0.000 description 2
- ZZZCUOFIHGPKAK-UHFFFAOYSA-N D-erythro-ascorbic acid Natural products OCC1OC(=O)C(O)=C1O ZZZCUOFIHGPKAK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000006144 Dulbecco’s modified Eagle's medium Substances 0.000 description 2
- ZDXPYRJPNDTMRX-VKHMYHEASA-N L-glutamine Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CCC(N)=O ZDXPYRJPNDTMRX-VKHMYHEASA-N 0.000 description 2
- 229930182816 L-glutamine Natural products 0.000 description 2
- 229930182555 Penicillin Natural products 0.000 description 2
- 241000242732 Scleractinia Species 0.000 description 2
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 102000004142 Trypsin Human genes 0.000 description 2
- 108090000631 Trypsin Proteins 0.000 description 2
- 229930003268 Vitamin C Natural products 0.000 description 2
- 238000013019 agitation Methods 0.000 description 2
- 230000000843 anti-fungal effect Effects 0.000 description 2
- 229940121375 antifungal agent Drugs 0.000 description 2
- 239000002543 antimycotic Substances 0.000 description 2
- 239000011668 ascorbic acid Substances 0.000 description 2
- 229960005070 ascorbic acid Drugs 0.000 description 2
- 230000033228 biological regulation Effects 0.000 description 2
- 125000005587 carbonate group Chemical group 0.000 description 2
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 description 2
- 230000008859 change Effects 0.000 description 2
- 230000029087 digestion Effects 0.000 description 2
- 239000002019 doping agent Substances 0.000 description 2
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 2
- 230000001605 fetal effect Effects 0.000 description 2
- 238000011049 filling Methods 0.000 description 2
- 239000012737 fresh medium Substances 0.000 description 2
- 230000002489 hematologic effect Effects 0.000 description 2
- 229940049954 penicillin Drugs 0.000 description 2
- 229940056360 penicillin g Drugs 0.000 description 2
- 230000035755 proliferation Effects 0.000 description 2
- 230000005855 radiation Effects 0.000 description 2
- 159000000000 sodium salts Chemical class 0.000 description 2
- 230000001954 sterilising effect Effects 0.000 description 2
- 238000004659 sterilization and disinfection Methods 0.000 description 2
- 229960005322 streptomycin Drugs 0.000 description 2
- QTENRWWVYAAPBI-YCRXJPFRSA-N streptomycin sulfate Chemical compound OS(O)(=O)=O.OS(O)(=O)=O.OS(O)(=O)=O.CN[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](CO)O[C@H]1O[C@@H]1[C@](C=O)(O)[C@H](C)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](N=C(N)N)[C@H](O)[C@@H](N=C(N)N)[C@H](O)[C@H]1O.CN[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](CO)O[C@H]1O[C@@H]1[C@](C=O)(O)[C@H](C)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](N=C(N)N)[C@H](O)[C@@H](N=C(N)N)[C@H](O)[C@H]1O QTENRWWVYAAPBI-YCRXJPFRSA-N 0.000 description 2
- 239000012588 trypsin Substances 0.000 description 2
- 230000035899 viability Effects 0.000 description 2
- 239000011718 vitamin C Substances 0.000 description 2
- 235000019154 vitamin C Nutrition 0.000 description 2
- APKFDSVGJQXUKY-KKGHZKTASA-N Amphotericin-B Natural products O[C@H]1[C@@H](N)[C@H](O)[C@@H](C)O[C@H]1O[C@H]1C=CC=CC=CC=CC=CC=CC=C[C@H](C)[C@@H](O)[C@@H](C)[C@H](C)OC(=O)C[C@H](O)C[C@H](O)CC[C@@H](O)[C@H](O)C[C@H](O)C[C@](O)(C[C@H](O)[C@H]2C(O)=O)O[C@H]2C1 APKFDSVGJQXUKY-KKGHZKTASA-N 0.000 description 1
- 102000029816 Collagenase Human genes 0.000 description 1
- 108060005980 Collagenase Proteins 0.000 description 1
- 229920001917 Ficoll Polymers 0.000 description 1
- 241000282412 Homo Species 0.000 description 1
- 241000699670 Mus sp. Species 0.000 description 1
- 241000566512 Orthodes Species 0.000 description 1
- 208000012868 Overgrowth Diseases 0.000 description 1
- 230000001464 adherent effect Effects 0.000 description 1
- 229960003942 amphotericin b Drugs 0.000 description 1
- 239000003242 anti bacterial agent Substances 0.000 description 1
- 230000003115 biocidal effect Effects 0.000 description 1
- 210000001185 bone marrow Anatomy 0.000 description 1
- 210000004271 bone marrow stromal cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000010478 bone regeneration Effects 0.000 description 1
- 239000004068 calcium phosphate ceramic Substances 0.000 description 1
- 230000030833 cell death Effects 0.000 description 1
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 description 1
- 230000003833 cell viability Effects 0.000 description 1
- 230000036755 cellular response Effects 0.000 description 1
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 1
- 239000000919 ceramic Substances 0.000 description 1
- 238000004140 cleaning Methods 0.000 description 1
- 229960002424 collagenase Drugs 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 1
- UREBDLICKHMUKA-CXSFZGCWSA-N dexamethasone Chemical compound C1CC2=CC(=O)C=C[C@]2(C)[C@]2(F)[C@@H]1[C@@H]1C[C@@H](C)[C@@](C(=O)CO)(O)[C@@]1(C)C[C@@H]2O UREBDLICKHMUKA-CXSFZGCWSA-N 0.000 description 1
- 229960003957 dexamethasone Drugs 0.000 description 1
- 238000009826 distribution Methods 0.000 description 1
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 1
- 230000006862 enzymatic digestion Effects 0.000 description 1
- 238000000227 grinding Methods 0.000 description 1
- 230000012010 growth Effects 0.000 description 1
- 230000006872 improvement Effects 0.000 description 1
- 238000012606 in vitro cell culture Methods 0.000 description 1
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 description 1
- 229910052500 inorganic mineral Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000007774 longterm Effects 0.000 description 1
- 238000012423 maintenance Methods 0.000 description 1
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 1
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 description 1
- 230000007246 mechanism Effects 0.000 description 1
- 229940126601 medicinal product Drugs 0.000 description 1
- 239000011707 mineral Substances 0.000 description 1
- -1 penicillin G Chemical class 0.000 description 1
- 230000000704 physical effect Effects 0.000 description 1
- 238000000053 physical method Methods 0.000 description 1
- 238000007747 plating Methods 0.000 description 1
- 230000001172 regenerating effect Effects 0.000 description 1
- 230000008439 repair process Effects 0.000 description 1
- 238000011160 research Methods 0.000 description 1
- 238000003757 reverse transcription PCR Methods 0.000 description 1
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 1
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 1
- 230000003068 static effect Effects 0.000 description 1
- 230000004936 stimulating effect Effects 0.000 description 1
- 238000007920 subcutaneous administration Methods 0.000 description 1
- 230000004083 survival effect Effects 0.000 description 1
- 238000002560 therapeutic procedure Methods 0.000 description 1
- 238000012800 visualization Methods 0.000 description 1
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 1
Landscapes
- Materials For Medical Uses (AREA)
Description
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest produkt inżynierii tkankowej (PIT) do rekonstrukcji i regeneracji kości oraz sposób otrzymywania produktu inżynierii tkankowej (PIT) do rekonstrukcji i regeneracji kości.
Zgodnie z Rozporządzeniem (We) Nr 1394/2007 Parlamentu Europejskiego i Rady z dnia 13 listopada 2007 r. w sprawie produktów leczniczych terapii zaawansowanej, „produkt inżynierii tkankowej” oznacza produkt, który:
- zawiera zmodyfikowane komórki lub tkanki lub składa się z takich komórek lub tkanek, oraz jest przedstawiany jako produkt posiadający właściwości regeneracji, naprawy lub zastępowania tkanki ludzkiej lub jest stosowany lub podawany ludziom w takim celu. Produkt inżynierii tkankowej może zawierać komórki lub tkanki pochodzenia ludzkiego lub zwierzęcego, lub pochodzące z obu tych źródeł. Komórki lub tkanki mogą być żywotne lub nieżywotne. Może on także zawierać dodatkowe substancje, takie jak produkty komórkowe, biomolekuły, biomateriały, substancje chemiczne, podłoża lub matryce.
Potrzeba regulacji prawnej dotyczącej produktów inżynierii tkankowej wynikła z postępu w badaniach nad nowymi możliwościami substytucji tkanek posiadającymi dodatkowo walor stymulowania tkanki biorcy do regeneracji. Klasyczna definicja inżynierii tkankowej, najczęściej cytowana w piśmiennictwie naukowym z tego zakresu, sformułowana przez R. Langera i J.P. Vacantiego brzmi następująco: interdyscyplinarna dziedzina angażująca wiedzę z zakresu nauk przyrodniczych oraz inżynierską metodologię w celu uzyskania biologicznych substytutów służących odtworzeniu, podtrzymaniu lub ulepszeniu funkcji tkanek. Produkt inżynierii tkankowej (nazywany dalej w skrócie: PIT) stanowi nową możliwość substytucji tkanek, stanowiącą alternatywę dla autograftów, allograftów i biomateriałów, tj. rozwiązań stosowanych obecnie w medycynie rekonstrukcyjnej. Najczęściej pod pojęciem PIT rozumiany jest produkt składający się z rusztowania (ang.: scaffold) wykonanego z materiału pochodzenia naturalnego bądź wytworzonego przez człowieka, stanowiącego wypełnienie dla brakujących fragmentów tkanki będącego jednocześnie podłożem dla żywych komórek lub tkanek, które stanowią drugi element składowy PIT.
Jeśli chodzi o materiały ceramiczne, z jakich wykonuje się dotychczas implanty z przeznaczeniem do rekonstrukcji kości przygotowywane są one głównie w oparciu o ceramiki fosforanowowapniowe. Jest to podyktowane największym podobieństwem składu chemicznego tych materiałów do naturalnego minerału kostnego. Niestety, wbrew oczekiwaniom, przebudowa takich materiałów w tkance kostnej postępuje bardzo wolno. Doniesienia w czasopismach fachowych wskazują na to, że materiały ceramiczne tego typu pozostają niezresorbowane nawet po okresie dłuższym niż pięć lat od implantacji PIT do tkanek biorcy (Mastrogiacomo, M., A. Muraglia, et al. (2005). “Tissue engineering of bone: search for better scaffold.” Orthod Craniofac Res 8(4):277-84).
Z drugiej strony bardzo zachęcające są wyniki implantacji do tkanki kostnej wszczepów z szkieletu koralowców madreporowych (chemicznie - węglan wapnia) wskazujące, że resorpcja materiału po implantacji śródkostnej jest obserwowana po kilku-kilkunastu miesiącach i, co ważniejsze, stwierdzano po tym czasie obecność tkanki kostnej odtworzonej na podłożu zanikającego w wyniku resorpcji tego rodzaju wszczepu. Efekt ten był jeszcze bardziej zadowalający, gdy na rusztowaniu z koralowca osadzano przed implantacją żywe komórki o potencjale osteogennym (Zhu, L., W. Liu, et al. (2006). Tissue- engineered bone repair of goat-femur defects with osteogenically induced bone marrow stromal cells. Tissue Enq 12(3): 423-33).
Żywe komórki osadzane były na rusztowaniu w warunkach statycznych, czyli przez zwykłe nanoszenie i wypełnianie porów koralowca komórkami. Komórki te wykazywały po naniesieniu na rusztowanie zdolność do przeżycia. Nie jest znany mechanizm podtrzymywania żywotności komórek przez rusztowanie z koralowca. Być może specyficzny skład koralowców madreporowych, które zbudowane są głównie, ale nie jedynie, z węglanu wapnia, sprzyjał podtrzymaniu życia komórek.
Poważnym ograniczeniem w stosowaniu szkieletu koralowca, jako materiału implantacyjnego jest, po pierwsze, ograniczona dostępność tego materiału, będącego produktem koralowców, po drugie zaś, słaba powtarzalność charakterystyki materiałowej, właściwa materiałom pochodzenia naturalnego.
Znany jest z polskiego zgłoszenia patentowego nr P-352601 sposób wytwarzania implantu ceramicznego wykonanego z syntetycznego węglanu wapnia. Zgłaszający odwołują się do doświadczeń wykonanych na zwierzętach potwierdzających dobrą tolerancję tkanek względem otrzymanych materiałów po implantacji in vivo.
PL 217 294 B1
Znany jest z polskiego zgłoszenia patentowego nr P-352600 sposób wytwarzania porowatego tworzywa ceramicznego, zwłaszcza na implanty, którego zarówno właściwości fizyczne jak i struktura porowata umożliwiają przerośnięcie tkanką kostną po implantacji.
Oba cytowane powyżej zgłoszenia doprowadziły do opracowania sposobu otrzymania materiału opartego w co najmniej 90% na węglanie wapnia, czyli materiale bardzo zbliżonym zarówno składem jak i strukturą do szkieletu koralowców. Implant otrzymany takim sposobem doskonale zastępuje ubytki kości i jest resorbowalny w zadawalającym czasie. Wykorzystuje się tu naturalną zdolność organizmu do odbudowy ubytków kości. A odbudowana tkanka wypełnia miejsca po resorbowalnym implancie. Aby tego typu syntetyczny węglan wapnia mógł być zaliczony do kategorii produktu inżynierii tkankowej musiałby zawierać naniesione żywe komórki osteogenne. Komórki te w znaczący sposób przyspieszają rekonstrukcję ubytków kości. Oprócz sił własnych organizmu implant dostarczałby dodatkowe żywe komórki zdolne do proliferacji, a co za tym idzie przyspieszałby proces regeneracji kości. Materiał ten został zbadany pod kątem możliwości zastosowania go jako produktu inżynierii tkankowej. Przeprowadzone wstępne doświadczenia nad możliwością zasiedlania porowatych rusztowań z syntetycznego węglanu wapnia żywymi komórkami o potencjale osteogennym pokazały, że proces ten, prowadzony w warunkach standardowej hodowli komórek in vitro, prowadzi do śmierci komórek. Okazało się, że mimo wysokiego podobieństwa do naturalnego koralowca zbudowanego również głównie z węglanu wapnia, komórki o potencjale osteogennym obumierają na syntetycznym węglanie wapnia. Jest prawdopodobne, że otrzymany w znany sposób syntetyczny węglan wapnia, który zawiera nie więcej niż 10% domieszek, posiada, właśnie przez obecność tych domieszek, właściwości niszczące żywe komórki. Prawdopodobnie z tych właśnie powodów dotychczas nie opisano zastosowania klinicznego syntetycznego węglanu wapnia w rekonstrukcji tkanki kostnej. Nie opisano także próby zastosowania rusztowania wykonanego z syntetycznego węglanu wapnia do otrzymania PIT kości.
Celem wynalazku jest opracowanie produktu inżynierii tkankowej (PIT) do rekonstrukcji i regeneracji kości oraz sposobu otrzymywania produktu inżynierii tkankowej (PIT) do rekonstrukcji i regeneracji kości opartego o rusztowanie z węglanu wapnia otrzymanego według znanych sposobów a równocześnie dostarczającego do organizmu żywe komórki o potencjale osteogennym.
Produkt inżynierii tkankowej (PIT) do rekonstrukcji i regeneracji kości składa się z rusztowania wykonanego w postaci trójwymiarowej, wykonanej z syntetycznego węglanu wapnia kształtki o porowatości otwartej, na którym w warunkach hodowli dynamicznej osadzone są żywe komórki osteogenne, korzystnie komórki biorcy PIT i ewentualnie elementy macierzy pozakomórkowej wytworzone przez te komórki w przedłużonej hodowli. Stosuje się syntetyczny węglan wapnia o zawartości domieszek nie większej niż 10% i o porowatości otwartej, korzystnie o porowatości otwartej od 40% do 95%, przy czym pory mają wielkość od 100 do 500 pm i są połączone między sobą. Węglan wapnia, z którego wykonane jest rusztowanie ma dowolną postać krystalograficzną, korzystnie postać kalcytu lub aragonitu.
Sposób według wynalazku polega na tym, że sporządza się rusztowanie, tj. trójwymiarową, wykonaną z węglanu wapnia kształtkę o porowatości otwartej, na którym w warunkach hodowli dynamicznej osadza się żywe komórki z możliwością kontynuowania tej hodowli uzyskując w ten sposób produkt inżynierii tkankowej, który może być zastosowany do substytucji tkanki kostnej. Stosuje się syntetyczny węglan wapnia o zawartości domieszek nie większej niż 10% i o porowatości otwartej, korzystnie o porowatości otwartej od 40% do 95%, przy czym pory mają wielkość od 100 do 500 pm i są połączone między sobą. Węglan wapnia, z którego wykonane jest rusztowanie ma dowolną postać krystalograficzną, korzystnie postać kalcytu lub aragonitu. Komórki osteogenne są otrzymywane z materiału biologicznego pochodzącego od dawcy, korzystnie będącego równocześnie biorcą PIT tj. mające pochodzenie autogenne. Po izolacji, namnażaniu i ewentualnym różnicowaniu w hodowli in vitro odrywane są od podłoża a następnie w warunkach dynamicznych, tj. z zastosowaniem urządzenia zapewniającego przepływ pożywki przez urządzenie w obiegu zamkniętym, osadzane są na podłożu rusztowania. W tym celu rusztowanie zostaje umieszczone w urządzeniu, zaś komórki dodawane są w postaci zawiesiny w dużej objętości medium hodowlanego o składzie dostosowanym do typu komórek tak, że rusztowanie jest omywane pozostającym w ruchu medium zawierającym komórki. Po osadzeniu komórek w rusztowaniu, tj. po czasie niezbędnym do rozpłaszczenia się komórek na podłożu rusztowania z węglanu wapnia uzyskany produkt hybrydowy może być poddany implantacji do tkanek biorcy, lub utrzymywany w hodowli o stale podtrzymywanym ruchu medium przez dłuższy czas w celu zwiększenia populacji komórek przez ich proliferację na podłożu rusztowania i ewentualną produkcję przez te komórki elementów macierzy pozakomórkowej. Korzystnie jest po uzyskaniu osa4
PL 217 294 B1 dzenia się komórek na rusztowaniu z węglanu wapnia usunąć stosowaną dotychczas pożywkę i zastąpić ją świeżą. Etap wymiany pożywki może być stosowany kilkukrotnie. Uzyskana konstrukcja hybrydowa złożona z rusztowania, osadzonych w nim komórek i ewentualnie elementów macierzy pozakomórkowej wytworzonych przez te komórki w przedłużonej hodowli, stanowi gotowy do implantacji produkt inżynierii tkankowej do rekonstrukcji tkanki kostnej o potencjale w kierunku pobudzenia tkanki kostnej biorcy do regeneracji.
Zastosowanie dynamicznych warunków hodowli zmienia zupełnie odpowiedz komórek. Okazało się, że komórki poddane hodowli w dynamicznych warunkach zachowują swoją żywotność, co potwierdzono w ilościowych testach przeżywalności komórek. W podobnych testach wykazano, że liczba komórek zwiększa się z czasem trwania dynamicznej hodowli na podłożu rusztowania z węglanu wapnia. Stwierdzono również, że dzięki zastosowaniu dynamicznych warunków hodowli możliwe jest równomierne rozmieszczenie komórek w całej objętości dużego rusztowania (np. o średnicy 15 mm i wysokości 5 mm). Rozmieszczenie komórek w rusztowaniu zostało określone i potwierdzone dzięki użyciu technik fluorescencyjnych i uwidocznieniu komórek w mikroskopie fluorescencyjnym.
Komórki osteogenne osadzone w dynamicznych warunkach na podłożu z węglanu wapnia zachowują swój fenotyp (tj. charakterystykę właściwą dla komórek osteogennych), który nie ulega zmianie w czasie hodowli. Charakterystyczny fenotyp komórek został potwierdzony nowoczesnymi metodami biologii molekularnej (RT-PCR).
Stwierdzono, że komórki osteogenne poddane długoterminowej hodowli w warunkach dynamicznych tworzą nową tkankę wewnątrz porów rusztowania. Fakt ten został potwierdzony dzięki obserwacjom wykonanym w skaningowym mikroskopie elektronowym. Ponadto stwierdzono, że nowo powstały produkt zbudowany z rusztowania z węglanu wapnia oraz powstałej w jego wnętrzu tkanki ma nowe właściwości mechaniczne. Mianowicie, nowo-otrzymany produkt ma wyższą wytrzymałość mechaniczną na ściskanie w porównaniu do pustego (niezasiedlonego komórkami) rusztowania. Wynik taki został potwierdzony mechanicznymi testami wytrzymałościowymi przeprowadzonymi na dużych próbkach wykonanych z węglanu wapnia i zilustrowany na rysunku.
Rysunek. Wykres przedstawia wytrzymałość na ściskanie 3D próbek kalcytowych oraz hybrydowego materiału zbudowanego w 3D kalcytu i osadzonych na nim komórek osteogennych.
Dobre właściwości nowego produktu zbudowanego z rusztowania węglanowego oraz osadzonych na nim komórek potwierdzono również w doświadczeniach wykonanych na zwierzętach. Stwierdzono, że po zaimplantowaniu podskórnie u myszy produktu zbudowanego z rusztowania węglanowego oraz osadzonych na nim komórek, dochodzi do powstania w jego wnętrzu tkanki kostnej. Natomiast w przypadku implantacji samych rusztowań efektu tego nie stwierdzono. Obserwacje te zostały potwierdzone metodami histologicznymi oraz fizycznymi.
P r z y k ł a d I. Komórki są izolowane z małych fragmentów tkanki kostnej biorcy (eksplantów) poprzez oczyszczenie mechaniczne w celu usunięcia wszelkich innych poza kostną rodzajów tkanki, rozdrobnienie tych fragmentów na kawałki o wielości ok. 1 mm a następnie poddanie trawieniu enzymatycznemu w roztworze kolagenazy w temp. 37°C przez noc. Tkanki, które uległy strawieniu są następnie usuwane, fragmenty kości zostają przepłukane w roztworze PBS a następnie umieszczone w butelkach hodowlanych w medium hodowlanym o następującym składzie: podłoże DMEM (GIBCO BRL nr katalogowy 22320) wzbogacone inaktywowanym płodowym osoczem bydlęcym (FCS) w stęPL 217 294 B1 żeniu 10%, z dodatkiem antybiotyku w postaci preparatu Antibiotic-Antimycotic (Preparat firmy GIBCO, nr kat.: 15240096, zawierający 10,000 jedn. penicyliny - z wykorzystaniem soli sodowej, tj. peniciliny G, 10,000 pg streptomycyny- z wykorzystaniem siarczanu streptomycyny) i 25 pg amfoteryczny B/ml - w postaci przeciwgrzybiczego preparatu Fungizone® w 0.85% roztworze soli) w stężeniu 1%, L-glutaminy w stężeniu 2 mM (GIBCO BRL), oraz witaminy C w stężeniu 100 pM w postaci kwasu L-fosfo-askorbinowego (SIGMA). Wszystkie elementy procedury prowadzone są w warunkach jałowych. Hodowla prowadzona jest następnie w inkubatorze o stałej wilgotności powyżej 95%, temperaturze 37°C i obecności 5% dwutlenku węgla. Po uzyskaniu konfluencji, komórki są odrywane od podłoża przez trawienie trypsyną a następnie wirowane, liczone w kamerze hematologicznej i zawieszane w pożywce j.w. Jałowe (w wyniku sterylizacji radiacyjnej dawką 25 kGy) rusztowanie w postaci kształtki o porowatości otwartej 75% i średniej wielkości porów ok. 200 pm wykonane z węglanu wapnia w postaci krystalograficznej kalcytu jest inkubowane w pożywce hodowlanej o składzie j.w. przez 48 godzin z lekkim mieszaniem, celem ew. odpłukania resztek-pozostałości procesu technologicznego oraz zwilżenia rusztowania świeżą pożywką hodowlaną bezpośrednio przed założeniem na jego podłożu hodowli komórek. Następnie rusztowanie umieszczane jest w koszyczku w urządzeniu o wymuszonym ciągłym przepływie medium hodowlanego, po czym do urządzenia dodawana jest zawiesina komórek w medium hodowlanym (w dużej objętości medium, korzystnie w 500 ml) w gęstości wg pro3 porcji - 400 tys. komórek na rusztowanie o kubaturze 125 mm3. Następnie cały układ zostaje umieszczony w inkubatorze o stałej wilgotności powyżej 95%, temperaturze 37°C i obecności 5% dwutlenku węgla. Hodowla trwa 14 dni, cały czas w warunkach ciągłego ruchu medium hodowlanego, przy czym po 7 dniach pożywka zostaje wymieniona na świeże medium o tym samym składzie. Po 14 dniach od momentu założenia hodowli uzyskuje się gotowy do implantacji produkt inżynierii tkankowej w postaci kalcytowego rusztowania zasiedlonego komórkami osteogennymi biorcy.
P r z y k ł a d II. Komórki izolowane są ze szpiku kostnego biorcy, przy czym rozdział komórek przeprowadza się metodą wirowania w Ficollu. Uzyskaną populację komórek umieszcza się w butelkach hodowlanych w medium hodowlanym o następującym składzie: podłoże DMEM (GIBCO BRL) wzbogacone inaktywowanym płodowym osoczem bydlęcym (FCS) w stężeniu 20%, z dodatkiem antybiotyku w postaci preparatu Antibiotic-Antimycotic (Preparat firmy GIBCO, nr kat.: 15240096, zawierający 10,000 jedn. penicyliny - z wykorzystaniem soli sodowej, tj. peniciliny G, 10,000 pg streptomycyny-z wykorzystaniem siarczanu streptomycyny) i 25 pg amfoterycynyB/ml - w postaci przeciwgrzybiczego preparatu Fungizone® w 0,85% roztworze soli) w stężeniu 1%, L-glutaminy w stężeniu 2 mM (GIBCO BRL). Hodowlę prowadzi się w inkubatorze o stałej wilgotności powyżej 95%, temperaturze 37°C i obecności 5% dwutlenku węgla aż do uzyskania konfluencji wymieniając pożywkę co 2-3 dni, za każdym razem odpłukując nieprzylegające komórki. Po uzyskaniu konfluencji, komórki są odrywane od podłoża przez trawienie trypsyną a następnie wirowane, liczone w kamerze hematologicznej i zawieszane w pożywce o składzie j.w. wzbogaconej obecnością witaminy C w stężeniu 100 pM w postaci kwasu L-fosfo-askorbinowego (SIGMA), oraz dexametazonu (Sigma) w stężeniu 10 nM. Wszystkie elementy procedury prowadzone są w warunkach jałowych. Jałowe (w wyniku sterylizacji radiacyjnej dawką 25 kGy) rusztowanie w postaci kształtki o porowatości otwartej 82% i średniej wielkości porów ok. 350 pm wykonane z węglanu wapnia w postaci krystalograficznej kalcytu jest inkubowane w pożywce hodowlanej o składzie j.w. przez 48 godzin z lekkim mieszaniem, celem ew. odpłukania resztek-pozostałości procesu technologicznego oraz zwilżenia rusztowania świeżą pożywką hodowlaną bezpośrednio przed założeniem na jego podłożu hodowli komórek. Następnie rusztowanie umieszczane jest w koszyczku w urządzeniu o wymuszonym ciągłym przepływie medium hodowlanego, po czym do urządzenia dodawana jest zawiesina komórek w medium hodowlanym (w dużej objętości medium, korzystnie w 500 ml) w gęstości wg proporcji - 400 tys. komórek na rusztowanie o kuba3 turze 125 mm3. Następnie cały układ zostaje umieszczony w inkubatorze o stałej wilgotności powyżej 95%, temperaturze 37°C i obecności 5% dwutlenku węgla. Hodowla trwa 14 dni, cały czas w warunkach ciągłego ruchu medium hodowlanego, przy czym po 7 dniach pożywka zostaje wymieniona na świeże medium o tym samym składzie. Po 14 dniach od momentu założenia hodowli uzyskuje się gotowy do implantacji produkt inżynierii tkankowej w postaci kalcytowego rusztowania zasiedlonego komórkami osteogennymi biorcy.
Claims (6)
- Zastrzeżenia patentowe1. Produkt inżynierii tkankowej (PIT) do rekonstrukcji i regeneracji kości, składający się z trójwymiarowego rusztowania na bazie węglanu wapnia z osadzonymi żywymi komórkami osteogennymi, znamienny tym, że stosuje się syntetyczny węglan wapnia o zawartości domieszek nie większej niż 10% i o porowatości otwartej, korzystnie o porowatości otwartej od 40% do 95%, przy czym pory mają wielkość od 100 do 500 pm i są połączone między sobą, na którym w warunkach hodowli dynamicznej osadzone są żywe komórki osteogenne, korzystnie otrzymane z materiału biologicznego pochodzącego od dawcy będącego równocześnie biorcą PIT i ewentualnie elementy macierzy pozakomórkowej wytworzone przez te komórki w przedłużonej hodowli.
- 2. Produkt według zastrz. 1, znamienny tym, że jako węglan wapnia stosuje się kalcyt lub aragonit.
- 3. Sposób otrzymywania produktu inżynierii tkankowej (PIT) do rekonstrukcji i regeneracji kości, polegający na osadzeniu żywych komórek osteogennych na rusztowaniu na bazie węglanu wapnia, znamienny tym, że sporządza się trójwymiarowe rusztowanie wykonane z syntetycznego węglanu wapnia, na którym w warunkach hodowli dynamicznej osadza się żywe komórki osteogenne, przy czym stosuje się syntetyczny węglan wapnia o zawartości domieszek nie większej niż 10% i o porowatości otwartej, korzystnie o porowatości otwartej od 40% do 95%, przy czym pory mają wielkość od 100 do 500 pm i są połączone między sobą a komórki osteogenne korzystnie są otrzymywane z materiału biologicznego pochodzącego od dawcy będącego równocześnie biorcą PITa po izolacji, namnażaniu i ewentualnym różnicowaniu w hodowli in vitro odrywane są od podłoża a następnie w warunkach dynamicznych z zastosowaniem urządzenia zapewniającego przepływ pożywki przez urządzenie w obiegu zamkniętym, osadzane są na podłożu rusztowania, przy czym komórki dodawane są w postaci zawiesiny w dużej objętości medium hodowlanego o składzie dostosowanym do typu komórek tak, że rusztowanie jest omywane pozostającym w ruchu medium zawierającym komórki, po czym po osadzeniu komórek w rusztowaniu, tj. po czasie niezbędnym do rozpłaszczenia się komórek na podłożu rusztowania z węglanu wapnia uzyskany produkt hybrydowy może być poddany implantacji do tkanek biorcy, lub utrzymywany w hodowli o stale podtrzymywanym ruchu medium przez dłuższy czas.
- 4. Sposób według zastrz. 3, znamienny tym, że po uzyskaniu osadzenia się komórek na rusztowaniu z węglanu wapnia usuwa się stosowaną dotychczas pożywkę i zastępuje ją świeżą.
- 5. Sposób według zastrz. 4, znamienny tym, że wymianę pożywki stosuje się kilkukrotnie.
- 6. Sposób według któregokolwiek z zastrz. od 3 do 5, znamienny tym, że jako węglan wapnia stosuje się kalcyt lub aragonit.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL385197A PL217294B1 (pl) | 2008-05-15 | 2008-05-15 | Produkt inżynierii tkankowej (PIT) do rekonstrukcji i regeneracji kości (54) oraz sposób otrzymywania produktu inżynierii tkankowej (PIT) do rekonstrukcji i regeneracji kości |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL385197A PL217294B1 (pl) | 2008-05-15 | 2008-05-15 | Produkt inżynierii tkankowej (PIT) do rekonstrukcji i regeneracji kości (54) oraz sposób otrzymywania produktu inżynierii tkankowej (PIT) do rekonstrukcji i regeneracji kości |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL385197A1 PL385197A1 (pl) | 2009-11-23 |
| PL217294B1 true PL217294B1 (pl) | 2014-07-31 |
Family
ID=42987283
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL385197A PL217294B1 (pl) | 2008-05-15 | 2008-05-15 | Produkt inżynierii tkankowej (PIT) do rekonstrukcji i regeneracji kości (54) oraz sposób otrzymywania produktu inżynierii tkankowej (PIT) do rekonstrukcji i regeneracji kości |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL217294B1 (pl) |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| PL223475B1 (pl) | 2010-06-11 | 2016-10-31 | Centrum Badań Molekularnych i Makromolekularnych Polskiej Akademii Nauk | Sposób otrzymywania produktu inżynierii tkankowej do rekonstrukcji i regeneracji tkanki kostnej i produkt inżynierii tkankowej |
-
2008
- 2008-05-15 PL PL385197A patent/PL217294B1/pl unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL385197A1 (pl) | 2009-11-23 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Kim et al. | Synergistic effects of beta tri‐calcium phosphate and porcine‐derived decellularized bone extracellular matrix in 3D‐printed polycaprolactone scaffold on bone regeneration | |
| Cunniffe et al. | Porous decellularized tissue engineered hypertrophic cartilage as a scaffold for large bone defect healing | |
| Chen et al. | Decellularized bone matrix scaffold for bone regeneration | |
| US11648336B2 (en) | Preparation and applications of 3D bioprinting bioinks for repair of bone defects, based on cellulose nanofibrils hydrogels with natural or synthetic calcium phosphate particles | |
| AU2014373966B2 (en) | Tissue grafts and methods of making and using the same | |
| PT2117617E (pt) | Uma estrutura de base de compósito de colagénio/hidroxiapatite e processo para a sua produção | |
| WO2018078130A1 (en) | Preparation and applications of 3d bioprinting bioinks for repair of bone defects, based on cellulose nanofibrils hydrogels with natural or synthetic calcium phosphate particles | |
| EP2644695B1 (en) | Cultured cartilage tissue material | |
| US20220347348A1 (en) | Customized hybrid bone-implant grafts | |
| CN114867501A (zh) | 用于骨组织工程的生物材料 | |
| EP3169268B1 (en) | Dental ring | |
| Wang et al. | Repair of segmental bone defect using totally vitalized tissue engineered bone graft by a combined perfusion seeding and culture system | |
| Sohier et al. | Hydrogel/calcium phosphate composites require specific properties for three-dimensional culture of human bone mesenchymal cells | |
| US10994050B2 (en) | High yield and high precision bone graft substitute from stem cells | |
| PL217294B1 (pl) | Produkt inżynierii tkankowej (PIT) do rekonstrukcji i regeneracji kości (54) oraz sposób otrzymywania produktu inżynierii tkankowej (PIT) do rekonstrukcji i regeneracji kości | |
| WO2016161311A1 (en) | In vitro methods for assessing tissue compatibility of a material | |
| Li et al. | A novel biomimetic scaffold with hUCMSCs for lumbar fusion | |
| Jung et al. | Tissue engineered bone formation with polymer/ceramic composites by press-and-baking method | |
| KR101847655B1 (ko) | 조직 재생 재료의 제작 방법 및 조직 재생 재료 | |
| Hwang et al. | Cai Wen, Heemin Kang, Yu-Ru V. Shih | |
| PL247202B1 (pl) | Biologiczny implant oraz sposób jego otrzymywania | |
| Kolos et al. | Biomimetic hydroxyapatite micro-tube tissue scaffold | |
| US20140341859A1 (en) | Method for treatment of damaged site of bone | |
| Degat et al. | A Perfusion Bioreactor for Engineering Bone Constructs: An In Vitro and In Vivo Study | |
| HK40044912A (en) | Decellularized bone biomaterial enriched with a hydrogel containing decellularized extracellular bone matrix |