PL213855B1 - Zestaw do wykrywania albo przeżyciowego izolowania bakterii Clavibacter michiganensis ssp. sepedonicus w analizowanej próbce - Google Patents
Zestaw do wykrywania albo przeżyciowego izolowania bakterii Clavibacter michiganensis ssp. sepedonicus w analizowanej próbceInfo
- Publication number
- PL213855B1 PL213855B1 PL383366A PL38336607A PL213855B1 PL 213855 B1 PL213855 B1 PL 213855B1 PL 383366 A PL383366 A PL 383366A PL 38336607 A PL38336607 A PL 38336607A PL 213855 B1 PL213855 B1 PL 213855B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- bacteria
- colloidal gold
- sephadex
- kit
- solution
- Prior art date
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
Abstract
Zestaw do wykrywania obecności bakterii w analizowanej próbce charakteryzuje się tym, że zawiera zasadniczo ziarnisty immunosorbent posiadający powierzchnię aktywowaną chemicznie ze złotem koloidalnym i immobilizowanymi przeciwciałami specyficznymi wobec wybranego antygenu bakteryjnego. Ujawniono zastosowanie zestawu do wykrywania albo przeżyciowego izolowania wybranych bakterii.
Description
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest zestaw immunosorpcyjny do wykrywania albo przeżyciowego izolowania bakterii Clavibacter michiganensis ssp. sepedonicus w analizowanej próbce mający zastosowanie w przemyśle spożywczym i rolnictwie.
Dekstran, którego przykładem jest popularnie stosowane złoże Sephadex, jest naturalnym hydrożelem, o bardzo mocno rozwiniętej powierzchni. Podobnie jak powierzchnie szklane, dekstran pokrywają grupy hydroksylowe, przez co może być aktywowany chemicznie (Jurado i Jarrett 2003, Karmarkar i in. 2006), bądź też na drodze reakcji fotochemicznej (Kim i in. 1999). Powszechnie stosowanym sposobem aktywacji chemicznej dextranu (Sephadex) jest stosowanie CNBr (Jurado i Jarrett 2003) oraz poprzez aminację środkami takimi jak np. APTES. Znany jest również sposób oksydacji ziaren Sephadex przez stosowanie NaIO4 (Miksa i in. 2004). Jest to bardzo dobre podłoże do immobilizacji i enzymów (Bilkova i in. 1997, Goncalves i in. 1999), pozwalające jednocześnie na oczyszczanie i separację białek oraz innych biomolekuł (Kaseda i in. 2001, Karmarkar i in. 2006). Złoże Sephadex jest również powszechnie wykorzystywane bez dodatkowych modyfikacji powierzchni do oczyszczania różnego rodzaju biomolekuł w filtracji żelowej (Bilkova i in. 1999).
Chitozan, będący deacetylowaną formą chityny jest użytecznym podłożem zarówno dla enzymów (Krajewska 2004, Luo i in. 2005, Yang i in. 2006), DNA (Cai i in. 2002) i przeciwciał (Lei i in. 2003, Deng i in. 2004). Ze względu na obecność pierwszorzędowych grup aminowych i grup hydroksylowych może być modyfikowany chemicznie aldehydem glutarowym (Krajewska 2004) oraz złotem koloidalnym (Huang i Yang 2003, Luo i in. 2004). Ponadto posiada wiele cennych właściwości biologicznych (np. biodegradowalność, biokompatybilność, bioaktywność) i chemicznych (polikation, hydrożel), przez co stanowi środowisko mające korzystny wpływ na trwałość i aktywność związanych białek (Cai i in 2002, Denkbas i in 2002, Borges i in 2005). Celem wynalazku jest uzyskanie czułego immunosorbentu o dużej powierzchni sorpcyjnej do szybkiego wyłapywania komórek bakteryjnych bezpośrednio w ekstrakcie tkankowym.
Pierwszym przedmiotem wynalazku jest zestaw do przyżyciowego wykrywania bakterii Clavibacter michiganensis ssp. sepedonicus obecności w analizowanej próbce, charakteryzujący się tym, że zawiera ziarnisty immunosorbent poli węglowodanowy lub mineralny mający postać szklanych mikrokulek o wielkości od 10 do 40 μm, posiadający powierzchnie aktywowaną chemicznie z osadzanym kowalencyjnie złotem koloidalnym i immobilizowanymi przeciwciałami specyficznymi wobec wybranego antygenu bakteryjnego wobec Clavibacter michiganensis ssp. sepedonicus, przy czym przeciwciała specyficzne wobec bakterii uzyskuje się poprzez prowadzenie immunizacji z wykorzystaniem antygenu bakteryjnego otrzymanego z komórek bakterii poprzez przemywanie bakterii roztworem buforowym wybranym spośród roztworu buforowego glicyna - HCl lub roztworu buforowego glicyna - NaOH. Równie korzystnie Zestaw według wynalazku charakteryzuje się tym, że przeciwciała są dodatkowo wyznakowane znacznikiem. W kolejnej korzystnej realizacji wynalazku zestaw według wynalazku charakteryzuje się tym, że znacznik jest wybranym spośród: złota koloidalnego, enzymu, barwnika fluorescencyjnego lub fluorochromu. Korzystniej zestaw według wynalazku charakteryzuje się tym, że zawiera dodatkowo składniki pokarmowe dla immobilizowanych komórek bakteryjnych. Najkorzystniej zestaw według wynalazku charakteryzuje się tym, że składniki pokarmowe wybiera się spośród: pożywek selektywnych, półselektywnych lub mineralnych.
Drugim przedmiotem wynalazku jest zastosowanie zestawu zdefiniowanego w pierwszym przedmiocie wynalazku do wykrywania albo przeżyciowego izolowania wybranych bakterii.
W niniejszym wynalazku uzyskano dogodny immunosorbent poprzez wykorzystanie materiału ziarnistego w postaci złoża Sephadex (lub mikrosfer szklanych), które pokrywano kowalencyjnie chitozanem i złotem koloidalnym uprzednio modyfikując chemicznie (poprzez APTES, aldehyd glutarowy i aminocysteinę). Sam w sobie Sephadex (lub mikrosfery szklane) są materiałami stosunkowo tanimi, łatwo dostępnymi i funkcjonalnymi. Oba złoża mają postać mikrocząsteczek kilku do kilkudziesięciokrotnie większych od wielkości bakterii i są od nich znacznie cięższe. Cecha taka pozwala na wykorzystanie tych zalet do wiązania i ekstrakcji bakterii i innych biomolekuł (wirusów, białek, itd.) z badanego roztworu bez stosowania dodatkowych urządzeń typu wirówka. Istotne zalety jakie uzyskano w niniejszym wynalazku to: możliwość wiązania różnych biomolekuł na powierzchni złota koloidalnego, który jako podłoże sorbcyjne niesie ze sobą wiele korzystnych cech, zwiększona powierzchnia sorbcyjna podłoża, możliwość kowalencyjnego unieruchomienia immunoglobulin i innych biomolekuł, Sephadex jako hydrożel w postaci mikrosfer aktywowanych przeciwciałami na dane bakterie, pozwala
PL 213 855 B1 na łatwy i szybki kontakt niesionych przeciwciał z interesującymi nas bakteriami. Niemodyfikowane cząsteczki złoża Sephadex dosyć długo dekantują. Po „obciążeniu” ich warstewką złota koloidalnego okludującą na powierzchni Sephadex-u, osadzenie na dnie wszystkich mikrocząsteczek zajmuje zaledwie 2-3 minuty. Nie trzeba więc stosować dodatkowych czynności typu odwirowywanie na wirówce, żeby przepłukać i oddzielić mikrosfery z zanieczyszczonego roztworu.
P r z y k ł a d 1. Sephadex lub mikrosfery szklane ze złotem koloidalnym
Porcję oczyszczonych mikrosfer aktywowano chemicznie w temperaturze w zakresie 4-37°C każdorazowo traktując przez 15-60 minut trzykrotną objętością odpowiedniego roztworu modyfikującego i płucząc pięciokrotnie dziesięcioma objętościami 2 x dest. H2O po każdym z etapów modyfikacji. Stosowano kolejno 0,5-25% roztwór APTES w 96% etanolu, 0,06-25% wodny roztwór aldehydu glutarowego, 0,001-1% roztwór chitozanu w 0,01% kwasie octowym, 0,0001-1 M wodny roztwór cysteaminy oraz roztwór złota koloidalnego o gęstości optycznej OD = 0,05-10,0. Mikrosfery szklane aktywowano chemicznie, osadzono złotem koloidalnym, i immobilizowano przeciwciałami j.w.
P r z y k ł a d 2. Wykrywanie bakterii przez immunosorpcję na ziarnach Sephadex (lub mikrosferach szklanych).
Mikrosfery Sephadex ze złotem koloidalnym pokrywano przeciwciałami IgG anty-Cms (0,0005-5 mg/ml) w 0,001-2 M buforze boranowym pH 9,2 i inkubowano 30 minut do 2 godzin w temperaturze w zakresie 4-37°C. Po usunięciu nadmiaru niezwiązanych przeciwciał, w celu zablokowania pozostałej powierzchni mikrosfer dodano dwie objętości 0,1-15% roztworu albuminy wołowej, przepłukano trzykrotnie 10-cioma objętościami roztworu TBS-BSA pH 8,2 i umieszczono w temperaturze 4°C.
Sporządzano ekstrakt z tkanki bulw ziemniaka podejrzanych o infekcję bakteriami Cms i dodano bufor 1xPBS pH 7,4 w stosunku 1:1. Do oddzielnych probówek Eppendorf wpipetowano po 2 ml roztworu i dodano po 10-50 μΐ ziaren immunosorbenta (Sephadex ze złotem koloidalnym pokrytych przeciwciałami anty-Cms przygotowanych jak w przykładzie 1). Całość inkubowano 15 minut - 2 godzin w temperaturze pokojowej łagodnie kołysząc, aby utrzymać mikrosfery w roztworze. Po zatrzymaniu mieszania i samoistnej sedymentacji, usunięto roztwór znad ziaren Sephadex i płukano przy pomocy buforu 1xPBS pH 7,4 z 0,05% Tween 20 usuwając w ten sposób nadmiar niezwiązanych bakterii. Czynność powtarzano ponownie dwukrotnie, a następnie bakterie pułapkowane na ww. immunosorbentach oceniano dwoma sposobami:
testem przyżyciowym przez wysianie mikrosfer bezpośrednio na pożywkę półselektywną lub immunoenzymatycznie stosując jako znacznik koniugat IgG anty-Cms z enzymem alkaliczną fosfatazą i inkując z roztworem substratowym z substratem dla AP - pNPP dokonując pomiarów absorbancji przy λ = 405 nm po 1, 2 i 4 godzinach inkubacji.
Test z użyciem mikrosfer szklanych przeprowadza się analogicznie jak dla ziaren Sephadex.
Zalety opisanego testu:
- szybki kontakt mikrosfer z bakteriami
- test umożliwia ocenę przyżyciową bakterii Cms poprzez bezpośrednie wysianie bakterii wyłapanych na powierzchni immunosorbenta na podłożu selektywnym
- uzyskane w ten sposób bakterie są pozbawione obecności innych drobnoustrojów obecnych w tkance, które przy bezpośrednim powiewie rosnąc o wiele szybciej niż interesujące nas bakterie, tłumią ich wzrost. Na podstawie uzyskanych wyników mogę stwierdzić jedynie nieznaczny udział obcych bakterii w stosunku wykrywanych (Tabela 1).
- czułość wykrywania osiągnięta przy pomocy tak wytworzonego podłoża metodą przyżyciową jest równa czułości metod molekularnych, ponieważ pozwala na wykrywanie ok. 50 jtk/ml bez zbędnego sprzętu i czasu w przypadku metod molekularnych.
T a b e l a 1. Detekcja bakterii Cms testem przyżyciowym z wykorzystaniem mikrosfer szklanych i Sephadex. Wynik po 10 dniach inkubacji mikrosfer na pożywce.
Bakterie | Mikrosfery szklane ze złotem koloidalnym | Sephadex ze złotem koloidalnym |
1 | 2 | 3 |
[CFU/ml] | Suma kolonii/liczbę powtórzeń | Suma kolonii/liczbę powtórzeń |
0 | 0 (2 obce kolonie)/2 | 0/2 |
5*101 | 4/3 | 7/3 |
PL 213 855 B1 cd. tabeli 1
1 | 2 | 3 |
102 | 10/3 | 18 (4 obce kolonie)/3 |
5*102 | 39 (3 obce kolonie)/3 | 48 (2 obce kolonie)/3 |
103 | 87/3 | 165/3 |
- czułość wykrywania osiągnięta przy pomocy tak wytworzonego podłoża metodą immunoenzymatyczną pozwala na wykrywanie ok. 500 jtk/ml bez zbędnego sprzętu i czasu w przypadku metod molekularnych. Poniżej podano porównanie przed i po modyfikacji ziaren Sephadex mikrosfer szklanych.
T a b e l a 2. Detekcja bakterii Cms testem ELISA z wykorzystaniem mikrosfer szklanych i Sephadex. Wynik po 1 godz. inkubacji z substratem dla AP - pNPP. Wartości istotnie różniące się od tła zaznaczono pogrubioną czcionką.
Bakterie | Mikrosfery szklane modyfikowane standartowo | Sephadex modyfikowany standartowo | Mikrosfery szklane ze złotem koloidalnym | Sephadex ze złotem koloidalnym | ||||
[CF U/ml] | E 405 | SD | E 405 | SD | E 405 | SD | E 405 | SD |
0 | 0,043 | 0,004 | 0,123 | 0,015 | 0,044 | 0,004 | 0,156 | 0,019 |
102 | 0,028 | 0,003 | 0,012 | 0,001 | 0,024 | 0,002 | 0,102 | 0,012 |
5*102 | 0,042 | 0,004 | 0,123 | 0,015 | 0,218 | 0,022 | 0,458 | 0,055 |
103 | 0,111 | 0,011 | 0,225 | 0,027 | 0,604 | 0,060 | 0,658 | 0,079 |
104 | 0,166 | 0,017 | 0,492 | 0,059 | 0,835 | 0,083 | 0,973 | 0,117 |
105 | 0,215 | 0,021 | 0,702 | 0,084 | 0,865 | 0,086 | 1,302 | 0,156 |
Inne realizacje testu przewidują jego zastosowanie w stosunku do innych bakterii.
P r z y k ł a d 3
Mikrosfery Sephadex ze złotem koloidalnym pokrywano przeciwciałami IgG anty-Cms 0,05 mg/ml w 0,01 buforze boranowym pH 9,2 i inkubowano 30 minut w temperaturze w zakresie 37°C. Po usunięciu nadmiaru niezwiązanych przeciwciał, w celu zablokowania pozostałej powierzchni mikrosfer dodano dwie objętości 10% roztworu albuminy wołowej, przepłukano trzykrotnie 10-cioma objętościami roztworu TBS-BSA pH 8,2 i umieszczono w temperaturze 4°C.
Sporządzano ekstrakt z tkanki bulw ziemniaka podejrzanych o infekcję bakteriami Cms i dodano bufor 1xPBS pH 7,4 w stosunku 1:1. Do oddzielnych probówek Eppendorf wpipetowano po 2 ml roztworu i dodano po 30 μΐ ziaren immunosorbenta Sephadex ze złotem koloidalnym pokrytych przeciwciałami anty-Cms. Całość inkubowano 30 minut w temperaturze pokojowej łagodnie kołysząc, aby utrzymać mikrosfery w roztworze. Po zatrzymaniu mieszania i samoistnej sedymentacji, usunięto roztwór znad ziaren Sephadex i płukano przy pomocy buforu 1xPBS pH 7,4 z 0,05% Tween 20 usuwając w ten sposób nadmiar niezwiązanych bakterii. Czynność powtarzano ponownie dwukrotnie, a następnie bakterie pułapkowane na ww. immunosorbentach oceniano immunoenzymatycznie stosując jako znacznik koniugat IgG anty-Cms z enzymem alkaliczną fosfatazą i inkubując z roztworem substratowym z substratem dla AP - pNPP dokonując pomiarów absorbancji przy λ = 405 nm po 1, 2 i 4 godzinach inkubacji.
P r z y k ł a d 4
Mikrosfery Sephadex ze złotem koloidalnym pokrywano przeciwciałami skierowanymi na bakterie Erwinia carotovora subsp. carotovora 0,05 mg/ml w 0,01 buforze boranowym pH 9,2 i inkubowano 30 minut w temperaturze w zakresie 37°C. Po usunięciu nadmiaru niezwiązanych przeciwciał, w celu zablokowania pozostałej powierzchni mikrosfer dodano dwie objętości 10% roztworu albumin wołowej, przepłukano trzykrotnie 10-cioma objętościami roztworu TBS-BSA pH 8,2 i umieszczono w temperaturze 4°C.
PL 213 855 B1
Sporządzano ekstrakt z tkanki bulw ziemniaka podejrzanych o infekcję bakteriami Ecc i dodano bufor 1xPBS pH 7,4 w stosunku 1:1. Do oddzielnych probówek Eppendorf wpipetowano po 2 ml roztworu i dodano po 30 μΐ ziaren immunosorbenta Sephadex ze złotem koloidalnym pokrytych przeciwciałami anty-Cms. Całość inkubowano 30 minut w temperaturze pokojowej łagodnie kołysząc, aby utrzymać mikrosfery w roztworze. Po zatrzymaniu mieszania i samoistnej sedymentacji, usunięto roztwór znad ziaren Sephadex i płukano przy pomocy buforu 1xPBS pH 7,4 z 0,05% Tween 20 usuwając w ten sposób nadmiar niezwiązanych bakterii. Czynność powtarzano ponownie dwukrotnie, a następnie bakterie pułapkowane na ww. immunosorbentach oceniano immunoenzymatycznie stosując jako znacznik koniugat IgG anty-Cms z enzymem alkaliczną fosfatazą i inkubując z roztworem substratowym z substratem dla AP - pNPP dokonując pomiarów absorbancji przy λ = 405 nm po 1, 2 i 4 godzinach inkubacji.
Claims (6)
1. Zestaw do przyżyciowego wykrywania bakterii Clavibacter michiganensis ssp. sepedonicus obecności w analizowanej próbce, znamienny tym, że zawiera ziarnisty immunosorbent poliwęglowodanowy lub mineralny mający postać szklanych mikrokulek o wielkości od 10 do 40 μm posiadający powierzchnie aktywowaną chemicznie z osadzanym kowalencyjnie złotem koloidalnym i immobilizowanymi przeciwciałami specyficznymi wobec wybranego antygenu bakteryjnego wobec Clavibacter michiganensis ssp. sepedonicus, przy czym przeciwciała specyficzne wobec bakterii uzyskuje się poprzez prowadzenie immunizacji z wykorzystaniem antygenu bakteryjnego otrzymanego z komórek bakterii poprzez przemywanie bakterii roztworem buforowym wybranym spośród roztworu buforowego glicyna - HCl lub roztworu buforowego glicyna - NaOH.
2. Zestaw według zastrz. 1, znamienny tym, że przeciwciała są dodatkowo wyznakowane znacznikiem.
3. Zestaw według zastrz. 2, znamienny tym, że znacznik jest wybranym spośród: złota koloidalnego, enzymu, barwnika fluorescencyjnego lub fluorochromu.
4. Zestaw według zastrz. 1, znamienny tym, że zawiera dodatkowo składniki pokarmowe dla immobilizowanych komórek bakteryjnych.
5. Zestaw według zastrz. 4, znamienny tym, że składniki pokarmowe wybiera się spośród: pożywek selektywnych, półselektywnych lub mineralnych.
6. Zastosowanie zestawu jak określono w jakimkolwiek zastrz. od 1 do 5 do wykrywania albo przeżyciowego izolowania wybranych bakterii.
Priority Applications (4)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
PL383366A PL213855B1 (pl) | 2007-09-16 | 2007-09-16 | Zestaw do wykrywania albo przeżyciowego izolowania bakterii Clavibacter michiganensis ssp. sepedonicus w analizowanej próbce |
EP08830138.7A EP2205735B1 (en) | 2007-09-16 | 2008-09-16 | Immunological tests for the presence of bacteria which make use of antibodies obtained using a specific method |
US12/676,671 US8642275B2 (en) | 2007-09-16 | 2008-09-16 | Immunological tests for the presence of bacteria which make use of antibodies obtained using a specific method |
PCT/PL2008/050015 WO2009035357A2 (en) | 2007-09-16 | 2008-09-16 | Immunological tests for the presence of bacteria which make use of antibodies obtained using a specific method |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
PL383366A PL213855B1 (pl) | 2007-09-16 | 2007-09-16 | Zestaw do wykrywania albo przeżyciowego izolowania bakterii Clavibacter michiganensis ssp. sepedonicus w analizowanej próbce |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
PL383366A1 PL383366A1 (pl) | 2009-03-30 |
PL213855B1 true PL213855B1 (pl) | 2013-05-31 |
Family
ID=42984844
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
PL383366A PL213855B1 (pl) | 2007-09-16 | 2007-09-16 | Zestaw do wykrywania albo przeżyciowego izolowania bakterii Clavibacter michiganensis ssp. sepedonicus w analizowanej próbce |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
PL (1) | PL213855B1 (pl) |
-
2007
- 2007-09-16 PL PL383366A patent/PL213855B1/pl unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
PL383366A1 (pl) | 2009-03-30 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
JP7048564B2 (ja) | 微生物の検出のための方法およびシステム | |
JP4758341B2 (ja) | クロマトグラフィー式検出装置、検査法及びこれを応用したキット | |
US10551379B2 (en) | Methods and compositions for improving detection and/or capture of a target entity | |
CN106995496B (zh) | 用于去除抗a和/或抗b抗体的新型亲和层析介质 | |
ES2683822T3 (es) | Procedimiento para detectar sustancias específicas en la leche | |
US4818687A (en) | Affinity column and process for detection of low molecular weight toxic substances | |
JPS62501233A (ja) | 免疫精製における細胞に適用しうる分離のための製品 | |
JP2004309494A (ja) | 病原性微生物の分類学的同定及び病原性微生物の毒性タンパク質 | |
JP2011516824A (ja) | 全細胞捕捉及びatp分析を用いた細菌試料の分析方法 | |
JPH0531109B2 (pl) | ||
US9766237B2 (en) | Method of capturing bacteria on polylysine-coated microspheres | |
JPS60188847A (ja) | 連鎖球菌aの検出用試験セット及び検出方法 | |
CN103276087B (zh) | 高灵敏度的蛋白检测方法 | |
JP6770805B2 (ja) | 検体中の特定の細菌を検出する方法 | |
CN106198962B (zh) | 用于封闭生物磁珠的方法 | |
WO2018190357A1 (ja) | レクチンの固定化方法 | |
JP6676387B2 (ja) | 特定の細菌を検出するイムノクロマト方法及びそれに用いるキット | |
PL213855B1 (pl) | Zestaw do wykrywania albo przeżyciowego izolowania bakterii Clavibacter michiganensis ssp. sepedonicus w analizowanej próbce | |
CN109001453B (zh) | 一种基于胶乳免疫比浊法检测人体液样本中溶菌酶含量的试剂盒 | |
JP2017207333A (ja) | 細菌を検出する方法及びキット | |
JP2017207332A (ja) | クラミジア・ニューモニエを検出する方法及びキット | |
Sardinha et al. | Enzyme-linked immunofiltration assay used in the screening of solid supports and immunoreagents for the development of an azinphos-methyl flow immunosensor | |
EP4212875A1 (en) | Biochip, method for producing same, and use of same | |
JP5163883B2 (ja) | B型肝炎ウイルスコア抗原又はそれに対する抗体の測定方法 | |
JP6198110B2 (ja) | 植物ウイルスの検出方法と植物ウイルス検出キット |