PL209609B1 - Sposób wytwarzania lnu o przyspieszonym procesie roszenia - Google Patents

Sposób wytwarzania lnu o przyspieszonym procesie roszenia

Info

Publication number
PL209609B1
PL209609B1 PL381485A PL38148507A PL209609B1 PL 209609 B1 PL209609 B1 PL 209609B1 PL 381485 A PL381485 A PL 381485A PL 38148507 A PL38148507 A PL 38148507A PL 209609 B1 PL209609 B1 PL 209609B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
flax
construct
retting
cells
accelerated
Prior art date
Application number
PL381485A
Other languages
English (en)
Other versions
PL381485A1 (pl
Inventor
Jan Szopa
Magdalena Wróbel-Kwiatkowska
Original Assignee
Univ Wrocławski
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Univ Wrocławski filed Critical Univ Wrocławski
Priority to PL381485A priority Critical patent/PL209609B1/pl
Publication of PL381485A1 publication Critical patent/PL381485A1/pl
Publication of PL209609B1 publication Critical patent/PL209609B1/pl

Links

Landscapes

  • General Factory Administration (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Sposób wytwarzania lnu o przyspieszonym procesie roszenia polega na tym, że do genomu komórek lnu wprowadza się konstrukt zawierający cDNA kodujący grzybowy enzym uczestniczący w degradacji pektyn. Wynalazek znajduje zastosowanie w przemyśle tekstylnym.

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania lnu o poprawionym procesie roszenia.
Prezentowany jest nowatorski sposób wytwarzania lnu o przyspieszonym procesie roszenia, który polega na utworzeniu nowych roślin transgenicznych z nadekspresją grzybowych enzymów modyfikujących poziom niecelulozowych polisacharydów w ścianie komórkowej (pektyn). Wynalazek znajduje zastosowanie w przemyśle tekstylnym.
Proces roszenia lnu, polegający na oddzieleniu włókien lnianych od epidermy i części korowej łodygi wskutek degradacji pektyn i hemiceluloz przez mikroorganizmy, jest jednym z głównych czynników limitujących efektywną produkcję odpowiedniego włókna.
Roszenie lnu na mokro (ang. water retting) polegające na fermentacji matriks polisacharydowej przez anaerobowe bakterie z powodu wysokich kosztów pracy, suszenia i zanieczyszczenia wywołanego procesem fermentacji jest zastępowane metodą roszenia na sucho (ang. dew retting). W metodzie tej zebrane rośliny lnu rozkłada się w polu, gdzie ulegają kolonizacji przez występujące naturalnie w środowisku grzyby, degradujące polisacharydy w ścianie komórkowej roślin. Zasadniczo dwa czynniki mają istotny wpływ na przebieg procesu roszenia a przez to na jakość włókna, a mianowicie rozmiar lignifikacji ścian komórkowych łodyg oraz warunki klimatyczne podczas roszenia. Optymalny przebieg procesu roszenia jest wtedy, gdy lignifikacja łodyg jest niewielka i w otoczeniu panuje stosunkowo wysoka temperatura i wilgotność. W celu zoptymalizowania procesu roszenia rośliny lnu wyrywa się w 107 dniu ich wegetacji, a zatem przed osiągnięciem dojrzałości i stosuje się suchą metodę roszenia. Postępowanie chociaż skutecznie poprawia jakość włókna jest niekorzystne ze względu na mniejszy plon oraz niedogodność polegającą na konieczności przestrzegania reżimu czasowego wegetacji roślin.
W stanie techniki znane są własności enzymów liazy ramnogalakturonowej oraz poligalakturonazy wykorzystywanych do degradacji i modyfikacji pektyn występujących w ścianach komórkowych roślin. W Carbohydrate Research, Schols et al. Vol. 206, no. 1, 30 Sept 1990 opisano wysoką aktywność ramnogalakturonazy w lizie pektyn występujących w ścianie komórkowej jabłka. W szczególności podkreśla się skuteczność działania enzymów w hydrolizowaniu wysoko- i nisko-estryfikowanych wiązań pektynowych otrzymywanych ze szczepów bakteryjnych np. Bacillus (WO 9902663) i szczepów grzybów Aspergillus w zestawieniu z czystymi przygotowanymi w sposób techniczny preparatami pektynaz i cellulaz (US 06013489).
Przygotowanie preparatów enzymatycznych pochodzących ze szczepu Aspergillus aculeatus obejmujących liazę ramnogalakturonową oraz poligalakturonazę zostało szeroko opisane w literaturze patentowej (WO 92/19728). Ostatnie publikacje patentów ujawniły sposoby izolacji genów poligalakturonazy ze szczepów Aspergillus aculeatus oraz sposób konstrukcji nadprodukujących transformantów (EP 0421919). Transformaty stanowią grupę grzybów (EP 0421919, US 6013489), komórek bakteryjnych oraz komórek roślin (US 6013489). W zgłoszeniu US 6013489 przedstawiono metodę dotyczącą pozyskiwania rekombinowanego materiału DNA zawierającego sekwencję pochodzącą ze szczepu Aspergillus aculeatus kodującą enzym o aktywności ramnogalakturonazy. Polipeptyd izoluje się z zawiesiny komórek gospodarzy ekspresjonują cych rekombinowane DNA. Pozyskane tym sposobem enzymatyczne preparaty wykorzystywane są do macerowania owoców, klarowania owocowych lub warzywnych soków. Wynalazcy nie wspominają jednak o możliwości zastosowania komórek lnu, ani co więcej o stworzeniu z takich komórek transgenicznej rośliny, w której uaktywnia się obecność enzymu liazy ramnogalakturonowej mającej zasadniczy wpływ na poprawę procesu roszenia.
Badania na temat efektywności enzymów degradujących polisacharydy znajdujące się w ścianie komórkowej rośliny mające praktyczne zastosowanie w procesie roszenia lnu przedstawiono w opisie patentowym EP 0673447. Wynalazek dotyczy metody kontrolowanego enzymatycznego roszenia włókien lnu obejmującej zewnętrzne działanie roztworem do enzymatycznego roszenia zawierającym mieszaninę enzymów poligalaktoturonazy na włókna lnu. Publikacja ta ujawnia wyłącznie metodę wykorzystania gotowego preparatu enzymatycznego do traktowania włókien lnu w warunkach in vitro. Podobne wykorzystanie preparatów enzymatycznych do zraszania i obróbki włókien lnu zostało ujawnione w zgłoszeniu WO9902663. We wzmiankowanym zgłoszeniu preparaty zawierały mieszaninę liazy ramnogalakturonowej i poligalakturonazy wyizolowanych ze szczepów grzybów i bakterii, preferencyjnie ze szczepu Bacillus.
Celem wynalazku jest dostarczenie sposobu pozwalającego uzyskać rośliny lnu o poprawionym procesie roszenia.
PL 209 609 B1
Dla przyspieszenia i usprawnienia procesu roszenia utworzono transgeniczne rośliny lnu z nadekspresją grzybowych enzymów niezbędnych do degradacji pektyn.
Sposób wytwarzania lnu o poprawionym procesie roszenia według wynalazku polega na tym, że do genomu komórek lnu wprowadza się konstrukt zawierający cDNA, który koduje poligalakturonazę I z Aspergillus aculeatus, PGI, (GenBank Acc no AF054893) przedstawiony jako Seq Id Nr: 1 lub konstrukt zawierający cDNA kodujący liazę ramnogalaturonową z A. aculeatus RHA (GenBank Acc no S80208) przedstawiony jako Seq Id Nr: 2 (cDNA pochodziło od Dr Urte Schluter). Konstrukt wytwarza się przez wprowadzenie do wektora pBinAR genów zawierających cDNA kodujący poligalakturonazę I z A. aculeatus pod kontrolą silnego, konstytutywnego promotora 35S CaMV oraz wyposażony w terminator OCS (Rys.).
W alternatywnym sposobie według wynalazku do genomu komórek lnu wprowadza się konstrukt cDNA kodujący liazę ramnogalaturonową z A. aculeatus. Konstrukt wytwarza się przez wprowadzenie do wektora pBinAR genów zawierających cDNA kodujący liazę ramnogalaturonową z A. aculeatus pod kontrolą silnego, konstytutywnego promotora 35S CaMV oraz wyposażony w terminator OCS (Rys. 2).
Obydwa konstrukty wprowadza się do genomu komórek lnu przez inkubację z kulturą Agrobacterium tumefaciens, zawierającą ten konstrukt.
P r z y k ł a d 1. Wprowadzenie konstruktów genowych do komórek bakterii
Obydwa konstrukty wprowadza się do komórek Agrobacterium tumefaciens linii C58C1: pGV2260 metodą elektroporacji przy użyciu urządzenia „gene pulser firmy BioRad przy napięciu 2500 V. Wprowadzenie konstruktu do bakterii sprawdza się przez analizę restrykcyjną enzymami EcoR I i Sal I. Uzyskuje się produkty o wielkości 14 kb, 1240 bp, 500 bp w przypadku transformacji konstruktem PGI oraz produkty o wielkości 14 kb, 1,2 kb, 940 bp, 100 bp w przypadku transformacji konstruktem RHA. Obecność powyższych produktów świadczy o prawidłowości konstruktu wprowadzonego do bakterii.
P r z y k ł a d 2. Wprowadzenie konstruktów genowych do komórek lnu
Wprowadzenie do komórek roślinnych obydwu konstruktów dokonuje się przez inkubację (przez dni w ciemności) liścieni i hypokotyli lnu z 50 μΐ kultury Agrobacterium tumefaciens zawierających konstrukt PGI lub RHA. Po inkubacji i odpłukaniu w sterylnej wodzie liścienie i hypokotyle przenosi się na stałe podłoże (pożywka indukująca kallus i zawierająca antybiotyk, jako marker selekcyjny, kanamycynę) w celu uzyskania niezróżnicowanej tkanki kallusowej. Uzyskaną tkankę kallusową hoduje się na podłożu regeneracyjnym (pożywka indukująca pęd i zawierająca kanamycynę) które stymuluje różnicowanie się komórek i uzyskuje się wykształcone łodygi. Otrzymane pędy hoduje się do osiągnięcia odpowiedniej wielkości i przenosi na podłoże indukujące tworzenie korzeni i nie zawierające antybiotyków, finalnie ukorzenione rośliny przenosi się do ziemi.
Wbudowanie konstruktów do genomu lnu i stabilność ich ekpresji sprawdza się technikami PCR z użyciem specyficznych starterów, wykrywających gen oporności na kanamycynę (nptll) oraz metodą RT-PCR (real-time PCR). Wpływ konstruktów na wydajność procesu roszenia dokonano na podstawie modyfikowanego testu Fried'a.
P r z y k ł a d 3. Analiza wydajności roszenia lnu zmodyfikowanym testem Fried'a (Henriksson et al. 1997)
W celu oznaczenia stopnia roszenia lnu pobrano 5 cm fragmenty ze środkowej części łodyg lnu pochodzących z uprawy polowej i umieszczono w 20 ml wody, następnie inkubowano odpowiednio przez 1, 2 i 3 tygodnie w temp. 22°C bez przykrycia, co pozwalało na kontakt z powietrzem i patogenami. Następnie analizowane fragmenty łodyg lnianych umieszczono w probówkach zawierających 30 ml gotującej wody, a probówki mieszano na vorteksie przez 10s. Oceny wyroszenia dokonano przez porównanie do tkanek nieroszonych i roszonych tkanek lnu typu dzikiego (wt) a wyniki wyrażono w trójstopniowej skali: 0-łodygi nienaruszone, 3-włókna całkowicie uwolnione z łodyg. Uzyskane rośliny transgeniczne charakteryzowały się znacznie poprawioną wydajnością roszenia (o 40%) w porównaniu do roślin niemodyfikowanych. Stopień wyroszenia po pierwszym tygodniu inkubacji dla roślin transgenicznych wynosił 65-90%, a dla roślin kontrolnych 35%. Po trzech tygodniach inkubacji wszystkie rośliny transgeniczne były wyroszone w 100%, a rośliny kontrolne w 60%.
Wpływ konstruktów na poziom pektyn dokonano metodą bifenylową na podstawie analizy spektrofotometrycznej. Transgeniczny len wytwarzany wyżej opisanym sposobem zawiera obniżony od 56% do 68% poziom pektyn w porównaniu do roślin kontrolnych.
Analiza zawartości pektyn metodą bifenylową
Do oznaczenia zawartości pektyn wykorzystano ekstrakt roślinny pozostały po oznaczeniu cukrów prostych i skrobi. Do każdej próby dodano 2 ml 0,05 M Na2CO3 zawierającego 10 mM NaBH4, próby inkubowano przez 24 h w temp. pokojowej i delikatnie mieszano. Następnie próby zwirowano (4000 rpm,
PL 209 609 B1 min), a supernatant przemyto dwukrotnie wodą i ponownie zwirowano (4000 rpm, 5 min). Zebrany supernatant zawierał pektyny, które oznaczono metodą bifenylową. Wyizolowane pektyny zneutralizowano kwasem octowym i dializowano (wielkość porów 3500 kDa). Następnie próby zliofilizowano i zawieszono w 1 ml wody oraz 100 μΐ 0,0125 M Na2B4O7 w kwasie siarkowym. Następnie próby wytrząsano i inkubowano w 100°C przez 5 min. Po schłodzeniu do każdej próby dodano 10 μ z m-hydroksy-bifenylu (0,15%) w NaOH (0,5%) i inkubowano w temp. pokojowej przez 10 min. Pektyny oznaczono spektrofotometrycznie w 540 nm. Do sporządzenia krzywej standardowej użyto kwasu galakturonowego.
Wykaz sekwencji
Wykaz sekwencji <110> Uniwersytet Wrocławski <120> Sposób wytwarzania lnu o przyspieszonym procesie roszenia <130> PK/0361/RW <160> 2 <170> Patentln version 3.3 <210> 1 <211> 1344 <212> DNA <213> Aspergillus aculeatus <400> 1 accaagacaa cccgaagctt gaaccctctt ggcccaaatc caacaatgca ccttaacacc accctactcg tctcgctcgc cctcggggcc gcgagcgtcc tcgccagccc agccccacca gcaatcacgg ccccgcccac ggccgaggag atcgcgaagc gcgcgacgac ctgcacgttc tccggatcga acggcgcctc gtcggccagc aagtccaaga cctcgtgctc gaccattgtg ttgtcgaatg tggccgttcc gtcggggacg acgctggacc tgaccaagct gaacgacggg actcatgtga tcttctcagg cgaaaccacc ttcggctaca aggaatggag cggccccctg atctccgtct ccgggagcga cctgaccatc accggggcga gcgggcacag catcaacggg gacggcagcc ggtggtggga cggcgagggc gggaacgggg gcaagacgaa gcccaagttc ttcgcggcgc acagcctgac caactcggtg attagcgggc tgaagatcgt caactcgccg gtgcaggttt tcagcgttgc ggggtcggat tatctgaccc tcaaggatat cacgatcgac aactcggacg gcgacgacaa tggcgggcat aataccgatg cgtttgatat cggcacgagc acgtatgtca cgatctcggg cgccacggtg tataatcagg atgattgcgt ggctgtgaat tcgggggaga atatctactt ctcgggcggc tactgctccg gtggacacgg cttgtccatt ggttcggtgg gcggacgcag tgataatacg gttaagaacg tgacgtttgt ggattcgacg atcattaact cagataatgg cgtccgcatc aaaaccaaca tcgacaccac cggctccgtg tccgacgtca cctacaagga catcacgctc acctccatcg ccaagtacgg gatcgtggtg cagcagaact acggcgacac gtcatcgacg cccacgacgg gggtgccgat cacggacttt gtgctggaca acgtgcacgg ctcggtggtc agctcgggga ccaacatcct catctcgtgc gggtcgggca gttgttcgga ttggacgtgg acggatgtga gtgtcagtgg ggggaagacg agttccaagt gtacgaatgt gccgagtggg gctagttgtt gattctctgg ttgtttgtgg ttgagagggg gagggggggt gatttctcaa gctggaaggg gttcttcgag cttaggaggt ctcaggctta gtttggagag cggaagcggg gtctcttgac tacttaggtt gctcttgttt gaatgggaaa aaaaaaaaaa aaaa <210> 2 <211> 3250 <212> DNA <213> Aspergillus aculeatus <400> 2 ggatccctgc agaatcgctg tggagtatac ctcgctttct aggactgctg atgggtgaaa taccgcgtcc tgagagatga cgagaatggc tatgggccac ggggtaaagg gttcattgat catgtcgata ttccagagag cgttgagcga gcgtttcatg gcttagagcg cgggatacta ggatcggaac tagccaagag atgactctga ttggtcaaag cttgctcttt agattatctt caagactatt tcgactcttc ataatatggt agtccccagg atagtacagc tatcgtaggc agagtgccct gacgaaacga tgacgacatt ctgtattact cggttatcaa atgcggacac aggcgtcaaa tatcaagcga ctttggcgtc gcgaatgtga tgctgggccg tcttggtagg gcctgagcgc tgggtgcaac acgaagaaca caaccggcac gtaacccact gggtactcgg ccgtcactca cccgacagct gctcttgaac aatgtcttct ttcctgctcg catcaaatca acccggaatt tcagggcaga agctttatgg tgattgcttg ttgcatgcat caccccgccg cacgtacccc acaaagtcat caggcgatgc atctagctga gggggatgag ttcctgtttg acatttgccg agatgaaccc tcctagccgc ccctggaact aaatccttcg cagaaatcac tatcaatttg ggatgtgatc agcgcttcaa gcctcgagac ggatgctcaa gtagtgctga caccggcttg cgtggcggta taatcaatca gaattctcca tgaataagga gaagcttggg gtttgaagcc tcgatgaaga agcttgactc cggtcactcc actgagcttc tgagcgaaag cagtagagat catcatcgaa aggggttctg acacttaatg tcacaaggca ggaagccaca atcaacatcc gacaggacgg agaatcttca gcctgcttga gtctcagcgc ctggcggggg
120
180
240
300
360
420
480
540
600
660
720
780
840
900
960
1020
1080
1140
1200
1260
1320
1344
120
180
240
300
360
420
480
540
600
660
720
780
840
900
960
1020
PL 209 609 B1 tggaggatga gtatacgttg tagattctcc ggtggacatg agcccttgac cataatcacc 1080 atgaaggctc cttactgcga tataaaagct gcagtttctg cgtaggttct tgaggagaat 1140 cccaagaatc aagcaaatcg aggttgctcc cattgattca agtgaatcat gcgtgctctt 1200 ttccttcttg cgctgggttc tatcccggcg ctcgtcagcg gtcaactctc tggcagtgtt 1260 ggccccttga cctctgcttc caccaaaggt gcgacaaaaa catgcaatat cctcagctac 1320 ggcgcagtgg ccgacaactc gaccgatgtt gggcctgcca ttacatcggc ctgggctgca 1380 tgcaagagcg gaggtcttgt ctacatccca tctggcaact atgccttaaa cacctgggtc 1440 accctgactg gaggcagtgc gaccgcaatc cagctggatg gtatcattta tcgcacaggt 1500 accgccagtg ggaacatgat tgcagtcact gacaccaccg acttcgagct gttcagtagc 1560 acctccaaag gtgctgtgca gggattcggc tatgtgtacc atgcggaggg aacctacgga 1620 gcacggattc tgcgcttgac tgatgtgacc catttctctg tgcatgatgt gatcttggtg 1680 gatgcgcctg ctttccactt taccatggat acctgctccg atggggaggt gtacaacatg 1740 gcgattcgtg gtggcaatga gggcggcttg gacgggattg atgtctgggg aagcaacatc 1800 tgggttcacg atgtaagtca cgcccgagtg gcaatatgct acttctctgt cgctcacgag 1860 atgtgcactc atttaggttg aagtgaccaa caaggatgaa tgtgtaacag tcaaggtaag 1920 gctttccctt gcaagcacga attgacgcgc tcgagccttg attgacagac ggaccgcaga 1980 gcccggccaa caatattctg gtggagagca tctattgcaa ctggagtggt ggttgcgcaa 2040 tggggtcgct cggggccgac accgacgtca ccgatattgt ctaccgcaat gtttacacct 2100 ggtcatcgaa ccagatgtac atgatcaaga gcaatggcgg tagtggaacg gtgtcgaatg 2160 ttttgctgga aaatttcatc ggtcagtgct gctgcctatg cccccacctt tctggcttga 2220 aactgttaac tgatcccctt tatttagggc acggtaatgc gtactcgctc gacatcgacg 2280 gctactggag cagcatgact gcggtggccg gggacggggt gcagctgaac aacatcacgg 2340 tgaagaactg gaagggcacc gaggcgaacg gagcgacccg accaccgatc cgagtggtgt 2400 gtagtgacac ggcgccttgc acggacttga cgctggaaga cattgccatc tggaccgaaa 2460 gcggctcgag tgaactgtac ctgtgccgtt ccgcttacgg atcgggatac tgtttgaagg 2520 acagctcttc gcacacatcc tacaccacaa ccagcactgt cacggcggct ccctcaggat 2580 attcggcgac aaccatggca gccgacttgg caaccgcatt tggtctcact gcttccattc 2640 ccattccgac catcccgacc tcgttttatc ccgggttgac cccgtacagt gccttggcag 2700 gctagtaggt gtgaaagcaa ggtgggattg atgtgtcacc gtcgcagtgg aaggaatgtc 2760 gggagaagga gaaggagaag gagaaggaga aggaggagag atcgttgaat cgttgagtcg 2820 ttgagtcgtt gagatcatgg atcaggctgg taatcgttac ctcacgattc cgtaggtgtt 2880 tgtaagtaag tatgtatgtt atatcaatca aaaggaagat cctccttcgt atctcgagat 2940 ttctttcatg caggactggg aaggaggaag tttgaggagt tcatgtgagc tgcagtcgtc 3000 agtttctcag tcactcattg tccgatcgcg ccatcccttc ctggtcactt ctagtgcgct 3060 tccttgccct ttttttacct ttctctccca tcatcgttct ctttctcttt ctctcactcc 3120 tctcgcaggt tctgactctt tgatcccatt gcaaatatac cacctgcatc tttctggaag 3180 cgattgagga gatggtgaag tgatcaagtg gagaagaggt gaaagtggaa gctgcaccga 3240 gaataagctt 3250

Claims (3)

1. Sposób wytwarzania lnu o poprawionym procesie roszenia, znamienny tym, że do genomu komórek lnu wprowadza się konstrukt zawierający cDNA kodujący grzybowy enzym uczestniczący w degradacji pektyn wybrany z grupy zawieraj ą cej: cDNA poligalakturonazy I z Aspergillus aculeatus (PGI) przedstawiony jako SEQ ID No 1 oraz cDNA liazy ramnogalaturonowej z Aspergillus aculeatus (RHA) przedstawiony jako SEQ ID No 2.
2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że konstrukt wytwarza się przez wprowadzenie do wektora pBinAR cDNA kodującego grzybowy enzym uczestniczący w degradacji pektyn pod kontrolą promotora 35S CaMV i terminatora OCS.
3. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że konstrukt wprowadza się do genomu komórek lnu przez inkubację z kulturą Agrobacterium tumefaciens zawierającą ten konstrukt.
PL381485A 2007-01-05 2007-01-05 Sposób wytwarzania lnu o przyspieszonym procesie roszenia PL209609B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL381485A PL209609B1 (pl) 2007-01-05 2007-01-05 Sposób wytwarzania lnu o przyspieszonym procesie roszenia

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL381485A PL209609B1 (pl) 2007-01-05 2007-01-05 Sposób wytwarzania lnu o przyspieszonym procesie roszenia

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL381485A1 PL381485A1 (pl) 2008-07-07
PL209609B1 true PL209609B1 (pl) 2011-09-30

Family

ID=43035693

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL381485A PL209609B1 (pl) 2007-01-05 2007-01-05 Sposób wytwarzania lnu o przyspieszonym procesie roszenia

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL209609B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL381485A1 (pl) 2008-07-07

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Quesada et al. Antisense down-regulation of the FaPG1 gene reveals an unexpected central role for polygalacturonase in strawberry fruit softening
CN110157719B (zh) 核盘菌SsMAS3基因及其在植物菌核病抗性育种中的应用
Perini et al. Overexpression of the carbohydrate binding module from Solanum lycopersicum expansin 1 (Sl-EXP1) modifies tomato fruit firmness and Botrytis cinerea susceptibility
WO2007102346A1 (ja) グルカン量を低減させることなくリグニン量およびセルロース量を低減させた植物体およびその生産方法、並びにこれらの利用
CN110713529B (zh) VvDUF642基因引起植物种子败育的用途
US20190136332A1 (en) Methods and Compositions for Increasing Storage-Life of Fruit
CN112876550A (zh) 梨PbrSTONE基因及其应用
JP3538428B2 (ja) 植物プロモーターおよび該プロモーターを用いた遺伝子発現方法
AU2020100459A4 (en) THE IAA-LEUCINE RESISTANT1-LIKE HYDROLASE GENE PpIAAH1 IN PEACH AND APPLICATIONS THEREOF
CN111454967B (zh) 一种油菜BnMAN7基因及其应用
WO2011160050A2 (en) Systems to reduce recalcitrance of cellulosic biomass and increase yields of fermentable sugars
PL209609B1 (pl) Sposób wytwarzania lnu o przyspieszonym procesie roszenia
Tateishi et al. Heterologous expression of tomato glycoside hydrolase family 3 α‐L‐arabinofuranosidase/β‐xylosidases in tobacco suspension cultured cells and synergic action of a family 51 isozyme under antisense suppression of the enzyme
CN118440956A (zh) Pgip2基因在调控作物耐渍性中的应用
HUP0300811A2 (en) Pear genes codifying for betha-galactosidase, pectin methylesterase, polygalacturonase, expansins and their use
Hrazdina et al. Down regulation of ethylene production in'Royal Gala'apples
CN117088954A (zh) 来源于谷子的蛋白质及其调控其表达的物质的应用
US20090158472A1 (en) Transformant plant
CN118185980A (zh) 大豆免疫负调控基因海藻糖酶GmTRE、其编码蛋白及应用
KR102038481B1 (ko) 레스퀘렐라 유래 PfFAD3-1 유전자로 형질전환된 수확량이 증가된 콩 식물체 및 이의 제조방법
TW200407424A (en) Genetically modified plants with enhanced resistance to fungal diseases and a method of production thereof
CN119307521B (zh) 一种酚胺和水杨酸生物合成的双功能基因簇及其应用
CN118792343B (zh) 一种木葡聚糖内转糖苷酶/水解酶基因的应用
JP2016214218A (ja) 転写抑制因子を利用した植物の二次細胞壁の量的形質を改変する方法
CN104561040A (zh) 植物抗热基因htt3及其应用