PL206641B1 - Method for the modification of graphite - Google Patents
Method for the modification of graphiteInfo
- Publication number
- PL206641B1 PL206641B1 PL375124A PL37512405A PL206641B1 PL 206641 B1 PL206641 B1 PL 206641B1 PL 375124 A PL375124 A PL 375124A PL 37512405 A PL37512405 A PL 37512405A PL 206641 B1 PL206641 B1 PL 206641B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- days
- distilled water
- mgso
- glucose
- graphite
- Prior art date
Links
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N Carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 title claims description 55
- 229910002804 graphite Inorganic materials 0.000 title claims description 41
- 239000010439 graphite Substances 0.000 title claims description 41
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 27
- 230000004048 modification Effects 0.000 title claims description 6
- 238000012986 modification Methods 0.000 title claims description 6
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 63
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 claims description 55
- VWDWKYIASSYTQR-UHFFFAOYSA-N sodium nitrate Chemical compound [Na+].[O-][N+]([O-])=O VWDWKYIASSYTQR-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 28
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 claims description 24
- 239000008103 glucose Substances 0.000 claims description 24
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 claims description 23
- 239000002609 medium Substances 0.000 claims description 21
- 239000002028 Biomass Substances 0.000 claims description 18
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims description 18
- 239000007787 solid Substances 0.000 claims description 18
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 17
- 239000011324 bead Substances 0.000 claims description 16
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 claims description 15
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 claims description 15
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 claims description 15
- 239000008272 agar Substances 0.000 claims description 15
- 235000010344 sodium nitrate Nutrition 0.000 claims description 14
- ZPWVASYFFYYZEW-UHFFFAOYSA-L dipotassium hydrogen phosphate Chemical compound [K+].[K+].OP([O-])([O-])=O ZPWVASYFFYYZEW-UHFFFAOYSA-L 0.000 claims description 11
- 229910000396 dipotassium phosphate Inorganic materials 0.000 claims description 11
- 235000019797 dipotassium phosphate Nutrition 0.000 claims description 11
- 239000012531 culture fluid Substances 0.000 claims description 8
- 239000011521 glass Substances 0.000 claims description 8
- 238000001914 filtration Methods 0.000 claims description 7
- 241000228245 Aspergillus niger Species 0.000 claims description 6
- 241001515917 Chaetomium globosum Species 0.000 claims description 6
- 241000223261 Trichoderma viride Species 0.000 claims description 6
- 241000223221 Fusarium oxysporum Species 0.000 claims description 5
- 241000222393 Phanerochaete chrysosporium Species 0.000 claims description 5
- 241000589540 Pseudomonas fluorescens Species 0.000 claims description 5
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 claims description 4
- 239000003599 detergent Substances 0.000 claims description 4
- 239000001888 Peptone Substances 0.000 claims description 3
- 108010080698 Peptones Proteins 0.000 claims description 3
- JZRWCGZRTZMZEH-UHFFFAOYSA-N Thiamine Natural products CC1=C(CCO)SC=[N+]1CC1=CN=C(C)N=C1N JZRWCGZRTZMZEH-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 3
- NGPGDYLVALNKEG-UHFFFAOYSA-N azanium;azane;2,3,4-trihydroxy-4-oxobutanoate Chemical compound [NH4+].[NH4+].[O-]C(=O)C(O)C(O)C([O-])=O NGPGDYLVALNKEG-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 3
- 235000015278 beef Nutrition 0.000 claims description 3
- 239000006916 nutrient agar Substances 0.000 claims description 3
- 235000019319 peptone Nutrition 0.000 claims description 3
- KYMBYSLLVAOCFI-UHFFFAOYSA-N thiamine Chemical compound CC1=C(CCO)SCN1CC1=CN=C(C)N=C1N KYMBYSLLVAOCFI-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 3
- 229960003495 thiamine Drugs 0.000 claims description 3
- 235000019157 thiamine Nutrition 0.000 claims description 3
- 239000011721 thiamine Substances 0.000 claims description 3
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 claims description 2
- 239000012620 biological material Substances 0.000 claims description 2
- 230000001954 sterilising effect Effects 0.000 claims description 2
- 238000004659 sterilization and disinfection Methods 0.000 claims description 2
- UHPMCKVQTMMPCG-UHFFFAOYSA-N 5,8-dihydroxy-2-methoxy-6-methyl-7-(2-oxopropyl)naphthalene-1,4-dione Chemical compound CC1=C(CC(C)=O)C(O)=C2C(=O)C(OC)=CC(=O)C2=C1O UHPMCKVQTMMPCG-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims 1
- 241000223218 Fusarium Species 0.000 claims 1
- 241000589516 Pseudomonas Species 0.000 claims 1
- QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N atomic oxygen Chemical compound [O] QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 7
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 description 7
- 229910052760 oxygen Inorganic materials 0.000 description 7
- 239000001301 oxygen Substances 0.000 description 7
- 238000001157 Fourier transform infrared spectrum Methods 0.000 description 6
- 229920004890 Triton X-100 Polymers 0.000 description 6
- 239000013504 Triton X-100 Substances 0.000 description 6
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 6
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 6
- 230000009144 enzymatic modification Effects 0.000 description 5
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 5
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 2
- 210000002257 embryonic structure Anatomy 0.000 description 2
- 102220201851 rs143406017 Human genes 0.000 description 2
- IEQAICDLOKRSRL-UHFFFAOYSA-N 2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-(2-dodecoxyethoxy)ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethanol Chemical compound CCCCCCCCCCCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCO IEQAICDLOKRSRL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000123346 Chrysosporium Species 0.000 description 1
- 229920000084 Gum arabic Polymers 0.000 description 1
- 241000978776 Senegalia senegal Species 0.000 description 1
- 239000000205 acacia gum Substances 0.000 description 1
- 235000010489 acacia gum Nutrition 0.000 description 1
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 1
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 1
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 description 1
- 229910021385 hard carbon Inorganic materials 0.000 description 1
- 238000011197 physicochemical method Methods 0.000 description 1
- 235000010482 polyoxyethylene sorbitan monooleate Nutrition 0.000 description 1
- 229920000053 polysorbate 80 Polymers 0.000 description 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 1
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
(12) OPIS PATENTOWY (19) PL (11) 206641 (13) B1 (21) Numer zgłoszenia: 375124 (51) Int.Cl. (12) PATENT DESCRIPTION (19) PL (11) 206641 (13) B1 (21) Application number: 375124 (51) Int.Cl.
C01B 31/04 (2006.01) C12R 1/39 (2006.01) C12R 1/645 (2006.01) (22) Data zgłoszenia: 16.05.2005 (54)C01B 31/04 (2006.01) C12R 1/39 (2006.01) C12R 1/645 (2006.01) (22) Date of notification: 16.05.2005 (54)
Sposób modyfikacji grafitu (73) Uprawniony z patentu:Method of graphite modification (73) The right holder of the patent:
POLITECHNIKA ŁÓDZKA, Łódź, PL (43) Zgłoszenie ogłoszono:University of Lodz, Łódź, PL (43) Application was announced:
27.11.2006 BUP 24/06 (45) O udzieleniu patentu ogłoszono:27.11.2006 BUP 24/06 (45) The following was announced about the grant of the patent:
30.09.2010 WUP 09/10 (72) Twórca(y) wynalazku:30.09.2010 WUP 09/10 (72) Inventor (s):
MIROSŁAWA SZCZĘSNA-ANTCZAK, Łódź, PL TADEUSZ ANTCZAK, Łódź, PL STANISŁAW BIELECKI, Łódź, PL AGATA KACZOROWSKA, Łódź, PL (74) Pełnomocnik:MIROSŁAWA SZCZĘSNA-ANTCZAK, Łódź, PL TADEUSZ ANTCZAK, Łódź, PL STANISŁAW BIELECKI, Łódź, PL AGATA KACZOROWSKA, Łódź, PL (74) Plenipotentiary:
rzecz. pat. Bałczewski Zbigniew Wojciech Ośrodek Wynalazczości Politechniki Łódzkiejitem. stalemate. Bałczewski Zbigniew Wojciech Center for Invention of the Lodz University of Technology
PL 206 641 B1PL 206 641 B1
Opis wynalazkuDescription of the invention
Przedmiotem wynalazku jest sposób modyfikacji grafitu.The present invention relates to a method of modifying graphite.
Dotychczas grafit modyfikuje się metodami chemicznymi i fizyko-chemicznymi w podwyższonej temperaturze i ciśnieniu.So far, graphite has been modified by chemical and physico-chemical methods at elevated temperature and pressure.
Sposób modyfikacji grafitu według wynalazku polega na tym, że grafit, uprzednio wysterylizowany, umieszcza się w preparacie enzymatycznym stanowiącym mieszaninę biomasy pochodzącej z hodowli wyizolowanego ze ś rodowiska naturalnego szczepu pleś ni Trichoderma viride, Aspergillus niger, Phanerochaete chrysosporium, Chaetomium globosum lub Fusarium oxysporum względnie szczepu bakterii Pseudomonas fluorescens, oddzielonej w warunkach sterylnych na przegrodzie filtracyjnej oraz zdezintegrowanej w warunkach sterylnych, z płynem pohodowlanym pochodzącym z tej hodowli, zmieszanych w stosunku objętościowym 1:1, umieszczonym w wysterylizowanym naczyniu i pozostawia w tym preparacie na czas 8-48 dni w temperaturze 10-50°C. Nastę pnie przemywa się grafit kilkakrotnie wodą destylowaną, oczyszcza z materiału biologicznego w łaźni ultradźwiękowej lub sonifikatorze w 0,05-2% roztworze wodnym detergentu w czasie 5-120 minut, po czym znów przemywa wodą destylowaną i suszy w temperaturze pokojowej. Szczep pleśni Trichoderma viride inkubuje się na podłożu stałym zawierającym 15-40 części wagowych agaru i 1000 części wagowych brzeczki piwowarskiej o stężeniu 5-12°Blg, w temperaturze 20-45°C w czasie 2-7 dni i hoduje na wysterylizowanym podłożu hodowlanym o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-4 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4,The method of graphite modification according to the invention consists in placing the graphite, previously sterilized, in an enzyme preparation consisting of a mixture of biomass derived from the cultivation of a mold strain isolated from the natural environment: Trichoderma viride, Aspergillus niger, Phanerochaete chrysosporium, Chaetomium globosum or Fusarium oxysporum or strain Pseudomonas fluorescens bacteria, separated in sterile conditions on the filtering wall and disintegrated in sterile conditions, with the post-culture fluid from this culture, mixed in a 1: 1 volume ratio, placed in a sterilized vessel and left in this preparation for 8-48 days at the temperature 10-50 ° C. Then the graphite is washed several times with distilled water, purified from biological material in an ultrasonic bath or sonicator in 0.05-2% detergent aqueous solution for 5-120 minutes, then washed again with distilled water and dried at room temperature. The mold strain Trichoderma viride is incubated on a solid medium containing 15-40 parts by weight of agar and 1000 parts by weight of brewing broth at a concentration of 5-12 ° Blg, at a temperature of 20-45 ° C for 2-7 days, and cultivated in a sterilized culture medium with composition: 1 kg of distilled water, 1-4 g of NaNO3, 0.5-2 g of K2HPO4,
0,005-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 10-50 g glukozy, w temperaturze 20-45°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 100-350 rpm w czasie 2-7 dni. Szczep pleśni Aspergillus niger inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 1-4 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,005-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,2-1 g MgSO4-7H2O, 10-50 g glukozy i 15-40 g agaru, w temperaturze 20-45°C w czasie0.005-0.1 g Fe 2 (SO 4 ) 3 , 0.1-1 g MgSO 4 -7H 2 O, 10-50 g glucose, at 20-45 ° C on a shaker at 100-350 rpm in time of 2-7 days. The Aspergillus niger mold strain is incubated on a solid medium containing: 1 kg of distilled water, 1-4 g of NaNO3, 0.5-2 g of K2HPO4, 0.005-0.1 g of Fe 2 (SO 4 ) 3 , 0.2-1 g MgSO 4 -7H 2 O, 10-50 g glucose and 15-40 g agar at 20-45 ° C during
2- 8 dni i hoduje na wysterylizowanym podłożu hodowlanym o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-4 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,005-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,2-1 g MgSO4-7H2O, 10-50 g glukozy, w temperaturze 20-45°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 100-340 rpm w czasie 2-8 dni. Szczep pleśni Phamerochaete chrysosporium inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 10-50 g bacto malt ekstraktu, 0,01-0,2 g płatków owsianych, 10-40 g bacto agaru, o pH 5-7, w temperaturze 20-45°C w czasie 2-8 dni i hoduje na wysterylizowanym podłożu hodowlanym o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-4 g K2HPO4, 0,2-2 g MgSO4-7H2O, 0,05-0,5 g CaCl2-2H2O, 0,05-0,5 g winianu amonu, 5-20 g glukozy, 1-10 g malt ekstraktu, 0,1-3 mg tiaminy dodawanej po sterylizacji podłoża, w temperaturze 20-45°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 100-340 rpm w czasie 2-8 dni. Szczep pleśni Chaetomium globosum inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,005-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 20-40 g glukozy i 10-30 g agaru, w temperaturze 20-45°C w czasie 3-8 dni i hoduje na wysterylizowanym podłożu hodowlanym o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,005-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 20-40 g glukozy, w temperaturze 20-45°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 100-340 rpm w czasie 3-8 dni. Szczep pleśni Fusarium oxysporum inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,005-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 20-40 g glukozy i 10-30 g agaru, w temperaturze 20-45°C w czasie2-8 days and grown on a sterilized culture medium composed of: 1 kg of distilled water, 1-4 g of NaNO 3 , 0.5-2 g of K 2 HPO 4 , 0.005-0.1 g of Fe 2 (SO 4 ) 3 , 0.2-1 g MgSO 4 -7H 2 O, 10-50 g glucose, at 20-45 ° C on a shaker at 100-340 rpm for 2-8 days. The mold strain Phamerochaete chrysosporium is incubated on a solid medium containing: 1 kg of distilled water, 10-50 g of bacto malt extract, 0.01-0.2 g of oat flakes, 10-40 g of bacto agar, pH 5-7, at a temperature of 20-45 ° C during 2-8 days and grown on a sterilized culture medium with the following composition: 1 kg of distilled water, 1-4 g K 2 HPO 4 , 0.2-2 g MgSO 4 -7H 2 O, 0.05 -0.5 g CaCl 2 -2H 2 O, 0.05-0.5 g ammonium tartrate, 5-20 g glucose, 1-10 g malt extract, 0.1-3 mg thiamine added after sterilization of the medium at the temperature 20-45 ° C on a shaker at 100-340 rpm for 2-8 days. The Chaetomium globosum mold strain is incubated on a solid medium containing: 1 kg of distilled water, 1-3 g of NaNO 3 , 0.5-2 g of K 2 HPO 4 , 0.005-0.1 g of Fe 2 (SO 4 ) 3 , 0, 1-1 g MgSO 4 -7H 2 O, 20-40 g glucose and 10-30 g agar at 20-45 ° C for 3-8 days and grown on sterilized culture medium with the following composition: 1 kg of distilled water, 1-3 g of NaNO3, 0.5-2 g of K2HPO4, 0.005-0.1 g of Fe 2 (SO 4 ) 3 , 0.1-1 g of MgSO 4 -7H 2 O, 20-40 g of glucose at a temperature of 20 -45 ° C on a shaker at 100-340 rpm for 3-8 days. The Fusarium oxysporum mold strain is incubated on a solid medium containing: 1 kg of distilled water, 1-3 g of NaNO3, 0.5-2 g of K2HPO4, 0.005-0.1 g of Fe 2 (SO 4 ) 3 , 0.1-1 g MgSO 4 -7H 2 O, 20-40 g glucose and 10-30 g agar at 20-45 ° C during
3- 8 dni i hoduje na wysterylizowanym podłożu hodowlanym o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,005-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 20-40 g glukozy, w temperaturze 20-45°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 100-340 rpm w czasie 3-8 dni. Szczep bakterii Pseudomonas fluorescens inkubuje się na podłożu stałym zawierającym 1 kg wody destylowanej i 15 -30 g nutrient agaru, o pH=6-7, w temperaturze 20-45°C w czasie 1-3 dnia i hoduje na wysterylizowanym podłożu hodowlanym o składzie: 1 kg wody destylowanej, 2-6 g ekstraktu wołowego, 3-8 g peptonu, w temperaturze 20-45°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 100-340 rpm w czasie 2-5 dni. Biomasę poddaje się dezintegracji w temperaturze nieprzekraczającej 0-4°C, korzystnie przy użyciu kulek szklanych nie zawierających ołowiu, stosując korzystnie 1-3 g kulek na 100 g odciśniętej biomasy i 50 ml wody destylowanej, w homogenizatorze przy szybkości obrotów 5000-18000 min-1, w czasie nie dłuższym niż 5 minut. Jako detergenty korzystnie stosuje się Triton X-100, Brij 35, gumę arabską, Tween 80, SEKUMATIC®FC lub ich mieszaniny.3-8 days and grown on a sterilized culture medium composed of: 1 kg of distilled water, 1-3 g of NaNO 3 , 0.5-2 g of K 2 HPO 4 , 0.005-0.1 g of Fe 2 (SO 4 ) 3 , 0.1-1 g MgSO 4 -7H 2 O, 20-40 g glucose, at 20-45 ° C on a shaker at 100-340 rpm for 3-8 days. The Pseudomonas fluorescens bacterial strain is incubated on a solid medium containing 1 kg of distilled water and 15-30 g nutrient agar, pH = 6-7, at a temperature of 20-45 ° C for 1-3 days and grown on a sterilized culture medium with the composition : 1 kg of distilled water, 2-6 g of beef extract, 3-8 g of peptone, at 20-45 ° C on a shaker at 100-340 rpm for 2-5 days. The biomass is disintegrated at a temperature not exceeding 0-4 ° C, preferably using lead-free glass beads, preferably using 1-3 g of beads per 100 g of pressed biomass and 50 ml of distilled water, in a homogenizer at a rotation speed of 5000-18000 min - 1 , in no more than 5 minutes. The detergents used are preferably Triton X-100, Brij 35, gum arabic, Tween 80, SEKUMATIC®FC or mixtures thereof.
W sposobie według wynalazku, w którym modyfikacja grafitu zachodzi pod działaniem preparatów enzymatycznych, otrzymuje się zmodyfikowany grafit zawierający na powierzchni polarne połączenia węgla i tlenu czyli grafit o poprawionych właściwościach aplikacyjnych powierzchni.In the method according to the invention, in which the modification of graphite takes place under the action of enzymatic preparations, a modified graphite is obtained containing polar combinations of carbon and oxygen on the surface, i.e. graphite with improved surface application properties.
Sposób według wynalazku ilustrują bliżej podane niżej przykłady nie ograniczając jego zakresu.The process according to the invention is illustrated by the following non-limiting examples.
PL 206 641 B1PL 206 641 B1
P r z y k ł a d I.P r z x l a d I.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep pleśni Trichoderma viride poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym 20 części wagowych agaru i 1000 części wagowych brzeczki piwowarskiej o stężeniu 8,5°Blg, w temperaturze 30°C w czasie 7 dni. Otrzymane w wyniku inkubacji zarodki pleśni przeszczepiono na podłoże hodowlane o składzie: 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, g K2HPO4, 0,01 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 30 g glukozy, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C. Następnie prowadzono hodowlę w temperaturze 30°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 240 rpm w czasie 3 dni. Wytworzoną w ten sposób biomasę oddzielono na przegrodzie filtracyjnej w warunkach sterylnych, po czym prowadzono jej dezintegrację w warunkach sterylnych, za pomocą kulek szklanych nie zawierających ołowiu, w homogenizatorze przy szybkości obrotów 12000 min-1, w czasie 5 minut w temperaturze nieprzekraczającej 4°C, stosując 1 g kulek na 100 g odciśniętej biomasy i 50 ml wody destylowanej. Do tak otrzymanego preparatu enzymatycznego, zawierającego fragmenty komórkowe, dodano płyn pohodowlany w ilości 1 część objętościowa na 1 część objętościową preparatu i całość przeniesiono do sterylnego naczynia, w którym znajdowały się próbki grafitu, uprzednio wysterylizowane w czasie 15 minut w temperaturze 121°C. Proces modyfikacji enzymatycznej grafitu prowadzono w czasie 14 dni w temperaturze 30°C. Po tym czasie wyjęto próbki z naczynia, przemyto trzykrotnie wodą destylowaną i przeniesiono do innego naczynia, zawierającego 0,1% roztwór Tritonu X-100 w wodzie, w którym poddano je działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut. Następnie zmodyfikowane próbki grafitu przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.The Trichoderma viride mold strain isolated from the natural environment was incubated on a solid medium containing 20 parts by weight of agar and 1000 parts by weight of brewing broth at a concentration of 8.5 ° Blg at the temperature of 30 ° C for 7 days. The mold embryos obtained as a result of incubation were transplanted onto a culture medium with the following composition: 1 kg of distilled water, 2 g of NaNO3, g of K 2 HPO 4 , 0.01 g of Fe 2 (SO 4 ) 3 , 0.5 g of MgSO 4 -7H 2 O , 30 g of glucose, previously sterilized for 30 minutes at 121 ° C. Thereafter, it was cultivated at 30 ° C on a shaker at 240 rpm for 3 days. The biomass produced in this way was separated on a filtering wall under sterile conditions, and then disintegrated under sterile conditions, using lead-free glass beads, in a homogenizer at a speed of 12000 min -1 , for 5 minutes at a temperature not exceeding 4 ° C , using 1 g of beads per 100 g of pressed biomass and 50 ml of distilled water. To the enzyme preparation obtained in this way, containing cell fragments, the post-culture fluid was added in the amount of 1 part by volume to 1 part by volume of the preparation, and the whole was transferred to a sterile vessel with graphite samples previously sterilized for 15 minutes at 121 ° C. The process of enzymatic modification of graphite was carried out for 14 days at the temperature of 30 ° C. After this time, the samples were removed from the vessel, washed three times with distilled water, and transferred to another vessel containing a 0.1% solution of Triton X-100 in water, where they were sonicated for 45 minutes. The modified graphite samples were then washed with distilled water and dried at room temperature.
Wykonano widma FT-IR grafitu po obróbce preparatem enzymów pleśni Trichoderma viride, z analizy których wynikało, iż na powierzchni grafitu występują polarne połączenia węgla i tlenu.The graphite FT-IR spectra were made after treatment with the Trichoderma viride mold enzyme preparation, the analysis of which showed that there are polar combinations of carbon and oxygen on the graphite surface.
P r z y k ł a d II.P r z x l a d II.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep pleśni Aspergillus niger poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, 1 g K2HPO4, 0,01 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 30 g glukozy i 20 g agaru, w temperaturze 30°C w czasie 7 dni. Otrzymane w wyniku inkubacji zarodki pleśni przeszczepiono na podłoże hodowlane o składzie: 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, 1 g K2HPO4, 0,01 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 30 g glukozy, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C i prowadzono hodowlę w temperaturze 30°C na wytrząsarce o szybkości obrotów 240 rpm w czasie 3 dni. Wytworzoną w ten sposób biomasę oddzielono w warunkach sterylnych na przegrodzie filtracyjnej i przeprowadzono jej dezintegrację w warunkach sterylnych, w obecności kulek szklanych nie zawierających ołowiu, w homogenizatorze przy szybkości obrotów 12000 min-1, w czasie 5 minut w temperaturze nieprzekraczającej 4°C, stosując 1 g kulek na 100 g odciśniętej biomasy i 50 ml wody destylowanej. Do tak otrzymanego preparatu enzymatycznego, zawierającego fragmenty komórkowe, dodano płyn pohodowlany w ilości 1 część objętościowa na 1 część objętościową preparatu i całość przeniesiono do sterylnego naczynia, w którym znajdowały się próbki grafitu uprzednio wysterylizowane w czasie 15 minut w temperaturze 121°C i prowadzono proces modyfikacji enzymatycznej grafitu w czasie 8 dni w temperaturze 30°C. Po tym czasie wyjęto próbki grafitu z naczynia, przemyto je trzykrotnie wodą destylowaną i przeniesiono do innego naczynia, zawierającego 0,1% roztwór Tritonu X-100 w wodzie, w którym poddano grafit działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut. W końcu zmodyfikowane próbki grafitu przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.The Aspergillus niger mold strain isolated from the natural environment was incubated on a solid medium containing: 1 kg of distilled water, 2 g of NaNO3, 1 g of K2HPO4, 0.01 g of Fe2 (SO4) 3, 0.5 g of MgSO 4 -7H 2 O, 30 g glucose and 20 g agar at 30 ° C for 7 days. The mold embryos obtained as a result of incubation were transplanted onto a culture medium composed of: 1 kg of distilled water, 2 g of NaNO 3 , 1 g of K 2 HPO 4 , 0.01 g of Fe 2 (SO 4 ) 3 , 0.5 g of MgSO 4 -7H 2 O, 30 g glucose, previously sterilized for 30 minutes at 121 ° C, and cultivated at 30 ° C on a shaker at 240 rpm for 3 days. The biomass produced in this way was separated under sterile conditions on a filtering wall and disintegrated under sterile conditions, in the presence of lead-free glass beads, in a homogenizer at a rotation speed of 12000 min -1 , for 5 minutes at a temperature not exceeding 4 ° C, using 1 g of beads per 100 g of pressed biomass and 50 ml of distilled water. To the enzyme preparation obtained in this way, containing cell fragments, post-culture fluid was added in the amount of 1 part by volume to 1 part by volume of the preparation, and the whole was transferred to a sterile vessel with graphite samples previously sterilized for 15 minutes at 121 ° C, and the process was carried out enzymatic modification of graphite for 8 days at 30 ° C. After this time, the graphite samples were removed from the vessel, washed three times with distilled water, and transferred to another vessel containing a 0.1% solution of Triton X-100 in water, in which the graphite was sonicated for 45 minutes. Finally, the modified graphite samples were washed with distilled water and dried at room temperature.
Wykonano widma FT-IR. grafitu po obróbce preparatem enzymów pleśni Aspergillus niger, z analizy których wynikało, iż na powierzchni grafitu występują polarne połączenia węgla i tlenu.FT-IR spectra were made. graphite after treatment with the Aspergillus niger mold enzyme preparation, the analysis of which showed that there are polar combinations of carbon and oxygen on the graphite surface.
P r z y k ł a d III.P r x l a d III.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep pleśni Phanerochaete chrysosporium poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym. 1 kg wody destylowanej, 30 g bacto malt ekstraktu, 0,05 g płatków owsianych, 15 g bacto agaru, o pH 5,5, w temperaturze 30°C w czasie 7 dni. Otrzymane w wyniku inkubacji zarodki pleśni przeszczepiono na, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C, podłoże hodowlane o składzie. 1 kg wody destylowanej, 2 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 0,1 g CaCl2-2H2O, 0,2 g winianu amonu, 10 g glukozy, 5 g malt ekstraktu, 1 mg tiaminy (dodawana po sterylizacji podłoża) i prowadzono hodowlę w temperaturze 30°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 240 rpm w czasie 3 dni. Wytworzoną w ten sposób biomasę oddzielono w warunkach sterylnych na przegrodzie filtracyjnej, po czym przeprowadzono jej dezintegrację w warunkach sterylnych, w obecności kulek szklanych nie zawierających ołowiu, w homogenizatorze przy szybkości obrotów 12000 min-1, w czasie 5 minut w temperaturze nieprzekraczającej 4°C, stosując 1 g kulek naThe Phanerochaete chrysosporium mold strain isolated from the natural environment was incubated on a solid medium containing. 1 kg of distilled water, 30 g of bacto malt extract, 0.05 g of oat flakes, 15 g of bacto agar, pH 5.5, at 30 ° C for 7 days. The mold spores obtained as a result of incubation were transplanted onto the previously sterilized for 30 minutes at 121 ° C, the culture medium with the following composition. 1 kg of distilled water, 2 g of Fe2 (SO4) 3, 0.5 g of MgSO 4 -7H 2 O, 0.1 g of CaCl 2 -2H 2 O, 0.2 g of ammonium tartrate, 10 g of glucose, 5 g of malt extract , 1 mg of thiamine (added after the medium was sterilized) and grown at 30 ° C on a shaker at 240 rpm for 3 days. The biomass produced in this way was separated under sterile conditions on a filtering wall, and then disintegrated under sterile conditions, in the presence of lead-free glass beads, in a homogenizer at a speed of 12000 min -1 , for 5 minutes at a temperature not exceeding 4 ° C by applying 1 g of beads on
PL 206 641 B1PL 206 641 B1
100 g odciśniętej biomasy i 50 ml wody destylowanej. Do tak otrzymanego preparatu enzymatycznego, zawierającego fragmenty komórkowe, dodano płyn pohodowlany w ilości 1 część objętościowa na 1 część objętościową preparatu i cało ść przeniesiono do sterylnego naczynia, w którym znajdowały się próbki grafitu, uprzednio wysterylizowane w czasie 15 minut w temperaturze 121°C i prowadzono proces modyfikacji enzymatycznej grafitu w czasie 14 dni w temperaturze 30°C. Następnie wyjęto próbki grafitu z naczynia, przemyto trzykrotnie wodą destylowaną i przeniesiono do innego naczynia, zawierającego 0,1% roztwór Tritonu X-100 w wodzie, w którym poddano je działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut. W końcu zmodyfikowane próbki grafitu przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.100 g of pressed biomass and 50 ml of distilled water. To the enzyme preparation obtained in this way, containing cell fragments, post-culture fluid was added in the amount of 1 part by volume to 1 part by volume of the preparation, and the whole was transferred to a sterile vessel with graphite samples previously sterilized for 15 minutes at 121 ° C and the process of enzymatic modification of graphite was carried out for 14 days at the temperature of 30 ° C. The graphite samples were then removed from the vessel, washed three times with distilled water, and transferred to another vessel containing a 0.1% solution of Triton X-100 in water, where they were sonicated for 45 minutes. Finally, the modified graphite samples were washed with distilled water and dried at room temperature.
Analizując widma FT-IR grafitu po obróbce preparatem enzymów pleśni Phanerochaete chrysosporium stwierdzono, iż na powierzchni grafitu występują polarne połączenia węgla i tlenu.Analyzing the graphite FT-IR spectra after treatment with the Phanerochaete chrysosporium mold enzyme preparation, it was found that on the graphite surface there are polar combinations of carbon and oxygen.
P r z y k ł a d IV.P r x l a d IV.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep pleśni Chaetomium globosum poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, 1 g K2HPO4, 0,01 gThe Chaetomium globosum mold strain isolated from the natural environment was incubated on a solid medium containing: 1 kg of distilled water, 2 g of NaNO3, 1 g of K2HPO4, 0.01 g
Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 30 g glukozy i 20 g agaru, w temperaturze 30°C w czasie 7 dni. Otrzymane w wyniku inkubacji zarodki pleśni przeszczepiono na, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C, podłoże hodowlane o składzie: 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, 1 g K2HPO4, 0,01 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 30 g glukozy i prowadzono hodowlę w temperaturze 30°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 240 rpm w czasie 3 dni. Wytworzoną w ten sposób biomasę oddzielono w warunkach sterylnych na przegrodzie filtracyjnej i prowadzono jej dezintegrację w warunkach sterylnych, w obecności kulek szklanych nie zawierających ołowiu, w homogenizatorze przy szybkości obrotów 12000 min-1 w czasie 5 minut w temperaturze nieprzekraczającej 4°C, stosując 1 g kulek na 100 g odciśniętej biomasy i 50 ml wody destylowanej. Do tak otrzymanego preparatu enzymatycznego, zawierającego fragmenty komórkowe, dodano płyn pohodowlany w ilości 1 część objętościowa na 1 część objętościową preparatu i całość przeniesiono do sterylnego naczynia, w którym znajdowały się, uprzednio wysterylizowane w czasie 15 minut w temperaturze 121°C, próbki grafitu i prowadzono proces modyfikacji enzymatycznej grafitu w czasie 8 dni w temperaturze 30°C. Następnie wyjęto próbki grafitu z naczynia, przemyto trzykrotnie wodą destylowaną i przeniesiono do innego naczynia, zawierającego 0,1% roztwór Tritonu X-100 w wodzie, w którym poddawano je działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut. W końcu zmodyfikowane próbki grafitu przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.Fe 2 (SO 4 ) 3 , 0.5 g MgSO 4 -7H 2 O, 30 g glucose and 20 g agar at 30 ° C for 7 days. The mold spores obtained as a result of incubation were transplanted onto a culture medium, previously sterilized for 30 minutes at 121 ° C, with the following composition: 1 kg of distilled water, 2 g of NaNO3, 1 g of K 2 HPO 4 , 0.01 g of Fe 2 (SO 4 ) 3.5 g MgSO 4 -7H 2 O, 30 g glucose and cultivated at 30 ° C on a shaker at 240 rpm for 3 days. The biomass produced in this way was separated under sterile conditions on a filtering wall and disintegrated under sterile conditions, in the presence of lead-free glass beads, in a homogenizer at a rotation speed of 12000 min -1 for 5 minutes at a temperature not exceeding 4 ° C, using 1 g of beads per 100 g of pressed biomass and 50 ml of distilled water. To the enzyme preparation obtained in this way, containing cell fragments, the post-culture fluid was added in the amount of 1 part by volume to 1 part by volume of the preparation, and the whole was transferred to a sterile vessel containing previously sterilized for 15 minutes at 121 ° C, graphite samples and the process of enzymatic modification of graphite was carried out for 8 days at the temperature of 30 ° C. The graphite samples were then removed from the vessel, washed three times with distilled water, and transferred to another vessel containing a 0.1% solution of Triton X-100 in water, where they were sonicated for 45 minutes. Finally, the modified graphite samples were washed with distilled water and dried at room temperature.
Analizując widma FT-IR grafitu po obróbce preparatem enzymów pleśni Chaetomium globosum stwierdzono, iż na powierzchni grafitu występują polarne połączenia węgla i tlenu.By analyzing the FT-IR spectra of graphite after treatment with the Chaetomium globosum mold enzyme preparation, it was found that on the graphite surface there are polar combinations of carbon and oxygen.
P r z y k ł a d V.P r z k ł a d V.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep pleśni Fusarium oxysporum poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, 1 g K2HPO4, 0,01 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 30 g glukozy i 20 g agaru, w temperaturze 30°C w czasie 7 dni. Otrzymane w wyniku inkubacji zarodki pleśni przeszczepiono na, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C, podłoże hodowlane o składzie: 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, 1 g K2HPO4, 0,01 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 30 g glukozy i prowadzono hodowlę w temperaturze 30°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 240 rpm w czasie 3 dni. Wytworzoną biomasę oddzielono w warunkach sterylnych na przegrodzie filtracyjnej i następnie poddano dezintegracji w warunkach sterylnych w obecności kulek szklanych nie zawierających ołowiu, w homogenizatorze przy szybkości obrotów 12000 min-1 w czasie 5 minut w temperaturze nieprzekraczającej 8°C, stosując 1 g kulek na 100 g odciśniętej biomasy i 50 ml wody destylowanej. Do tak otrzymanego preparatu enzymatycznego, zawierającego fragmenty komórkowe, dodano płyn pohodowlany w ilości 1 część objętościowa na 1 część objętościową preparatu i całość przeniesiono do sterylnego naczynia, w którym znajdowały się próbki grafitu wysterylizowane w czasie 15 minut w temperaturze 121°C i prowadzono proces modyfikacji enzymatycznej grafitu w czasie 8 dni w temperaturze 30°C. Następnie próbki grafitu wyjęto z naczynia, przemyto trzykrotnie wodą destylowaną i przeniesiono do naczynia zawierającego 0,1% roztwór Tritonu X-100 w wodzie, w którym poddano je działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut. W końcu zmodyfikowane próbki grafitu przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.The Fusarium oxysporum mold strain isolated from the natural environment was incubated on a solid medium containing: 1 kg of distilled water, 2 g of NaNO3, 1 g of K2HPO4, 0.01 g of Fe 2 (SO 4 ) 3 , 0.5 g of MgSO 4 -7H 2 O , 30 g glucose and 20 g agar at 30 ° C for 7 days. The mold spores obtained as a result of incubation were transplanted onto a culture medium, previously sterilized for 30 minutes at 121 ° C, with the following composition: 1 kg of distilled water, 2 g of NaNO3, 1 g of K 2 HPO 4 , 0.01 g of Fe 2 (SO 4 ) 3.5 g MgSO 4 -7H 2 O, 30 g glucose and cultivated at 30 ° C on a shaker at 240 rpm for 3 days. The biomass produced was separated under sterile conditions on a filtering wall and then disintegrated under sterile conditions in the presence of lead-free glass beads, in a homogenizer at a rotation speed of 12000 min -1 for 5 minutes at a temperature not exceeding 8 ° C, using 1 g of beads per 100 g of pressed biomass and 50 ml of distilled water. To the enzyme preparation obtained in this way, containing cell fragments, post-culture fluid was added in the amount of 1 part by volume to 1 part by volume of the preparation, and the whole was transferred to a sterile vessel with graphite samples sterilized for 15 minutes at 121 ° C, and the modification process was carried out. graphite enzyme during 8 days at 30 ° C. The graphite samples were then removed from the vessel, washed three times with distilled water, and transferred to a vessel containing a 0.1% solution of Triton X-100 in water, where they were sonicated for 45 minutes. Finally, the modified graphite samples were washed with distilled water and dried at room temperature.
Analizując widma FT-IR grafitu po obróbce preparatem enzymów pleśni Fusarium oxysporum stwierdzono, iż na powierzchni grafitu występują polarne połączenia węgla i tlenu.By analyzing the FT-IR spectra of graphite after treatment with the Fusarium oxysporum mold enzyme preparation, it was found that on the graphite surface there are polar combinations of carbon and oxygen.
PL 206 641 B1PL 206 641 B1
P r z y k ł a d VI.P r x l a d VI.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep bakterii Pseudomonas fluorescens poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym 1 kg wody destylowanej i 23 g nutrient agaru (Difco), o pH=6,3, w temperaturze 30°C w czasie 1 dnia. Uaktywnione komórki bakterii przeszczepiono na, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C, podłoże hodowlane o składzie: 1 kg wody destylowanej, 3 g ekstraktu woł owego, 5 g peptonu i prowadzono hodowlę w temperaturze 30°C na wytrząsarce przy szybkości obrotów 240 rpm w czasie 3 dni. Wytworzoną biomasę oddzielono w drodze wirowania (10000xg) w warunkach sterylnych, po czym poddano ją dezintegracji w warunkach sterylnych, w obecności kulek szklanych nie zawierających ołowiu, w homogenizatorze przy szybkości obrotów 12000 min-1, w temperaturze nieprzekraczającej 4°C w czasie 5 minut, stosując 1 g kulek na 20 g odciśniętej biomasy i 50 ml wody destylowanej. Do tak otrzymanego preparatu enzymatycznego, zawierającego fragmenty komórkowe, dodano płyn pohodowlany w ilości 1 część objętościowa na 1 część objętościową preparatu, całość przeniesiono do sterylnego naczynia, w którym znajdowały się, wysterylizowane w czasie 15 minut w temperaturze 121°C, próbki grafitu i prowadzono proces modyfikacji enzymatycznej tych próbek w czasie 8 dni w temperaturze 30°C. Próbki grafitu pokryte twardymi warstwami węglowymi wyjęto z naczynia, przemyto trzykrotnie wodą destylowaną i przeniesiono do innego naczynia zawierającego 0,1% roztwór detergentu SEKUMATIC®FC w wodzie, w którym poddawano je 50 minutowej sonifikacji przy amplitudzie 40 i pulsacji 4. Nast ę pnie zmodyfikowane próbki grafitu przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.The Pseudomonas fluorescens bacterial strain isolated from the natural environment was incubated on a solid medium containing 1 kg of distilled water and 23 g of nutrient agar (Difco), pH = 6.3, at the temperature of 30 ° C for 1 day. The activated bacterial cells were transplanted onto the culture medium, previously sterilized for 30 minutes at 121 ° C, with the following composition: 1 kg of distilled water, 3 g of beef extract, 5 g of peptone, and cultivation was carried out at 30 ° C on a shaker at the speed of rotation 240 rpm for 3 days. The biomass produced was separated by centrifugation (10,000 x g) under sterile conditions, and then disintegrated under sterile conditions, in the presence of lead-free glass beads, in a homogenizer at the rotation speed of 12,000 min -1 , at a temperature not exceeding 4 ° C for 5 minutes. , using 1 g of beads per 20 g of pressed biomass and 50 ml of distilled water. To the enzyme preparation obtained in this way, containing cell fragments, post-culture fluid was added in the amount of 1 part by volume to 1 part by volume of the preparation, the whole was transferred to a sterile vessel in which there were graphite samples sterilized for 15 minutes at 121 ° C and conducted the process of enzymatic modification of these samples during 8 days at 30 ° C. The graphite samples covered with hard carbon layers were removed from the vessel, washed three times with distilled water and transferred to another vessel containing a 0.1% solution of SEKUMATIC®FC detergent in water, where they were sonicated for 50 minutes at amplitude 40 and pulsed 4. Then modified graphite samples were washed with distilled water and dried at room temperature.
Analizując widma FT-IR grafitu po obróbce preparatem enzymów bakterii Pseudomonas fluorescens stwierdzono, iż na powierzchni grafitu występują polarne połączenia węgla i tlenu.Analyzing the graphite FT-IR spectra after treatment with the enzyme preparation of Pseudomonas fluorescens bacteria, it was found that on the graphite surface there are polar combinations of carbon and oxygen.
Claims (8)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL375124A PL206641B1 (en) | 2005-05-16 | 2005-05-16 | Method for the modification of graphite |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL375124A PL206641B1 (en) | 2005-05-16 | 2005-05-16 | Method for the modification of graphite |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL375124A1 PL375124A1 (en) | 2006-11-27 |
| PL206641B1 true PL206641B1 (en) | 2010-09-30 |
Family
ID=40561348
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL375124A PL206641B1 (en) | 2005-05-16 | 2005-05-16 | Method for the modification of graphite |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL206641B1 (en) |
-
2005
- 2005-05-16 PL PL375124A patent/PL206641B1/en not_active IP Right Cessation
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL375124A1 (en) | 2006-11-27 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Abdel-Nasser et al. | Evaluation of the efficiency of nanoparticles for increasing α-amylase enzyme activity for removing starch stain from paper artifacts | |
| CN104508118A (en) | Microbial fermentation methods and compositions | |
| US4476881A (en) | Microbial digestion of tobacco materials using mixed cultures | |
| Abd El-Rahim et al. | Highly efficient fungal pectinase and laccase producers among isolates from flax retting liquor | |
| CN107475154A (en) | The bacterial strains of SMXP 03 and its application for protein in tobacco leaf of degrading | |
| CN104388351A (en) | Preparation method of natural colorless biological mildew-proof anticorrosive bactericide | |
| CN104080732B (en) | Thermophilic enzyme and generation thereof and using method | |
| CN106690395A (en) | Bacterium enzyme mixed preparation containing bacillus subtilis bacterial strain SMXP-58 | |
| Bera et al. | Optimization of the conditions for immobilization of crude pectinase on chitin using ultrasound and glutaraldehyde and its application in grape juice clarification | |
| PL206641B1 (en) | Method for the modification of graphite | |
| CN102146348A (en) | Homoserinelactone-producing acinetobacter calcoaceticus and application thereof | |
| CN106399184B (en) | A kind of alkalophilic bacillus NTT33C6 producing constitutive mannanase and its application | |
| AU2917602A (en) | Gel | |
| PL206643B1 (en) | Method for the modification of hard coal coatings | |
| JP6108331B2 (en) | Hydrocarbon high-yield alga bodies and method for producing the same | |
| Mojsov | Experimental investigations of submerged fermentation and synthesis of pectinolytic enzymes by Aspergillus niger: effect of inoculums size and age of spores | |
| Dabai et al. | Cassava starch as an alternative to agar-agar in microbiological media | |
| Singh et al. | Chitinase production by Serratia marcescens GG5 | |
| CN101580825A (en) | New application of producing high-activity cellulase by taking sclerotium rolfsii as strain | |
| Guleria et al. | Optimization of cultural conditions for cellulase-free xylanase production by mutant strain of alkalophilic Cellulosimicrobium sp | |
| CN106434476A (en) | High-yield strain for alkaline pectinase and application of high-yield strain | |
| PL206642B1 (en) | Method for the modification of graphite | |
| PL206644B1 (en) | Method for the modification of hard coal coatings | |
| CN104585011A (en) | Method for promoting porphyra haitanensis conchospore adhesion and germination | |
| JP2014088548A (en) | Clarifier of oil contaminated soil |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| LAPS | Decisions on the lapse of the protection rights |
Effective date: 20080516 |