PL206644B1 - Method for the modification of hard coal coatings - Google Patents
Method for the modification of hard coal coatingsInfo
- Publication number
- PL206644B1 PL206644B1 PL375127A PL37512705A PL206644B1 PL 206644 B1 PL206644 B1 PL 206644B1 PL 375127 A PL375127 A PL 375127A PL 37512705 A PL37512705 A PL 37512705A PL 206644 B1 PL206644 B1 PL 206644B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- strain
- distilled water
- agar
- days
- cultivation
- Prior art date
Links
- 238000000576 coating method Methods 0.000 title claims description 19
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 19
- 230000004048 modification Effects 0.000 title description 4
- 238000012986 modification Methods 0.000 title description 4
- 239000003245 coal Substances 0.000 title 1
- 239000002609 medium Substances 0.000 claims description 60
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 54
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 claims description 47
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 claims description 36
- 239000008272 agar Substances 0.000 claims description 36
- 239000007787 solid Substances 0.000 claims description 34
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 29
- 229910021385 hard carbon Inorganic materials 0.000 claims description 23
- VWDWKYIASSYTQR-UHFFFAOYSA-N sodium nitrate Chemical compound [Na+].[O-][N+]([O-])=O VWDWKYIASSYTQR-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 20
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 claims description 18
- 239000008103 glucose Substances 0.000 claims description 18
- 239000007788 liquid Substances 0.000 claims description 16
- 239000001888 Peptone Substances 0.000 claims description 15
- 108010080698 Peptones Proteins 0.000 claims description 15
- 235000019319 peptone Nutrition 0.000 claims description 15
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 12
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 claims description 12
- 239000000284 extract Substances 0.000 claims description 12
- 238000011534 incubation Methods 0.000 claims description 10
- 235000010344 sodium nitrate Nutrition 0.000 claims description 10
- 229940041514 candida albicans extract Drugs 0.000 claims description 9
- ZPWVASYFFYYZEW-UHFFFAOYSA-L dipotassium hydrogen phosphate Chemical compound [K+].[K+].OP([O-])([O-])=O ZPWVASYFFYYZEW-UHFFFAOYSA-L 0.000 claims description 9
- 229910000396 dipotassium phosphate Inorganic materials 0.000 claims description 9
- 235000019797 dipotassium phosphate Nutrition 0.000 claims description 9
- 239000012138 yeast extract Substances 0.000 claims description 9
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims description 8
- 241000228245 Aspergillus niger Species 0.000 claims description 6
- 241001515917 Chaetomium globosum Species 0.000 claims description 6
- 241000306281 Mucor ambiguus Species 0.000 claims description 6
- 241000985514 Penicillium ochrochloron Species 0.000 claims description 6
- 241000589540 Pseudomonas fluorescens Species 0.000 claims description 6
- 239000003599 detergent Substances 0.000 claims description 6
- 235000013372 meat Nutrition 0.000 claims description 6
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 claims description 6
- 239000000243 solution Substances 0.000 claims description 6
- 241000186673 Lactobacillus delbrueckii Species 0.000 claims description 5
- 235000015278 beef Nutrition 0.000 claims description 5
- 238000000527 sonication Methods 0.000 claims description 3
- 238000002604 ultrasonography Methods 0.000 claims description 3
- 239000007900 aqueous suspension Substances 0.000 claims description 2
- 241000186660 Lactobacillus Species 0.000 claims 1
- BNIILDVGGAEEIG-UHFFFAOYSA-L disodium hydrogen phosphate Chemical compound [Na+].[Na+].OP([O-])([O-])=O BNIILDVGGAEEIG-UHFFFAOYSA-L 0.000 claims 1
- 229910000397 disodium phosphate Inorganic materials 0.000 claims 1
- 235000019800 disodium phosphate Nutrition 0.000 claims 1
- 229940039696 lactobacillus Drugs 0.000 claims 1
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N Carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 15
- 229920004890 Triton X-100 Polymers 0.000 description 11
- 239000013504 Triton X-100 Substances 0.000 description 11
- 229910002804 graphite Inorganic materials 0.000 description 8
- 239000010439 graphite Substances 0.000 description 8
- QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N atomic oxygen Chemical compound [O] QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 7
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 description 7
- 229910052760 oxygen Inorganic materials 0.000 description 7
- 239000001301 oxygen Substances 0.000 description 7
- 238000001157 Fourier transform infrared spectrum Methods 0.000 description 6
- 238000001237 Raman spectrum Methods 0.000 description 6
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 2
- 239000012620 biological material Substances 0.000 description 2
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 2
- 230000010349 pulsation Effects 0.000 description 2
- 102220201851 rs143406017 Human genes 0.000 description 2
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 2
- IEQAICDLOKRSRL-UHFFFAOYSA-N 2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-(2-dodecoxyethoxy)ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethanol Chemical compound CCCCCCCCCCCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCO IEQAICDLOKRSRL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 244000215068 Acacia senegal Species 0.000 description 1
- 241000283690 Bos taurus Species 0.000 description 1
- 229920000084 Gum arabic Polymers 0.000 description 1
- 239000000205 acacia gum Substances 0.000 description 1
- 235000010489 acacia gum Nutrition 0.000 description 1
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 1
- 229910003460 diamond Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000010432 diamond Substances 0.000 description 1
- 210000002257 embryonic structure Anatomy 0.000 description 1
- 239000007789 gas Substances 0.000 description 1
- 239000002504 physiological saline solution Substances 0.000 description 1
- 235000010482 polyoxyethylene sorbitan monooleate Nutrition 0.000 description 1
- 229920000053 polysorbate 80 Polymers 0.000 description 1
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 1
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
(22) Data zgłoszenia: 16.05.2005(22) Date of notification: May 16, 2005
Urząd Patentowy Rzeczypospolitej Polskiej (19) PL (11) 206644 (13) B1 (51) Int.Cl.The Patent Office of the Republic of Poland (19) PL (11) 206644 (13) B1 (51) Int.Cl.
C01B 31/04 (2006.01) C01B 31/06 (2006.01) C12R 1/01 (2006.01) C12R 1/645 (2006.01) (54)C01B 31/04 (2006.01) C01B 31/06 (2006.01) C12R 1/01 (2006.01) C12R 1/645 (2006.01) (54)
Sposób modyfikacji twardych powłok węglowychMethod of modification of hard carbon coatings
PL 206 644 B1PL 206 644 B1
Opis wynalazkuDescription of the invention
Przedmiotem wynalazku jest sposób modyfikacji twardych powłok węglowych, stanowiących mieszaninę grafitu i diamentu.The subject of the invention is a method of modification of hard carbon coatings consisting of a mixture of graphite and diamond.
Dotychczas do modyfikacji twardych powłok węglowych wykorzystuje się gazy i substancje chemiczne, przy czym modyfikację prowadzi się w warunkach podwyższonego ciśnienia i temperatury.Until now, gases and chemicals have been used to modify hard carbon coatings, and the modification is carried out under conditions of increased pressure and temperature.
Sposób modyfikacji twardych powłok węglowych według wynalazku polega na tym, że przedmioty pokryte twardą warstwą węglową, uprzednio wysterylizowane i zroszone płynną pożywką o składzie jak podło ż e stał e do inkubacji szczepu pleś ni Mucor circinelloides, Aspergillus niger, Penicillium ochrochloron lub Chaetomium globosum względnie szczepu bakterii Lactobacillus delbrueckii lub Pseudomonas fluorescens, wyizolowanego ze środowiska naturalnego, umieszcza się na wysterylizowanym podłożu hodowlanym tego szczepu, szczepi podłoże zawiesiną wodną zarodników lub komórek tego szczepu i prowadzi hodowlę powierzchniową w czasie 14-40 dni w temperaturze 20 -40°C przy wilgotności 80-100 %. W celu uniknięcia wysuszenia szczepionej kultury, po 10-15 dniach hodowli modyfikowane przedmioty zrasza się dodatkowo pożywką płynną o składzie jak podłoże stałe do inkubacji. Po zakończeniu hodowli modyfikowane przedmioty poddaje się oczyszczeniu z materiału biologicznego. W tym celu zanurza sieje w wodzie destylowanej, poddaje działaniu ultradźwięków w czasie 10-120 minut, przemywa wodą destylowaną, przenosi do naczynia zawierającego 0,1-2% roztwór wodny detergentu i w tym roztworze poddaje mieszaniu na wytrząsarce z szybkością obrotową 50-350 rpm w czasie 10-120 minut. Następnie zmodyfikowane przedmioty przenosi się do 0,5-5% wodnego roztworu detergentu i poddaje działaniu ultradźwięków lub sonifikacji w czasie 10-120 minut, w końcu przemywa wodą destylowaną i suszy w temperaturze pokojowej. Szczep Mucor circinelloides inkubuje się na podłożu stałym zawierającym 0-30 części wagowych agaru i 1000 części wagowych brzeczki piwowarskiej o stężeniu 7-12°Blg, w temperaturze 20-40°C w czasie 2-7 dni, zaś hodowlę tego szczepu prowadzi się na wysterylizowanym podłożu o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-3 gThe method of modifying the hard carbon coatings according to the invention consists in the objects covered with a hard carbon layer, previously sterilized and sprinkled with a liquid medium of the composition as a solid medium for the incubation of the mold strain Mucor circinelloides, Aspergillus niger, Penicillium ochrochloron or Chaetomium globosum or the strain Lactobacillus delbrueckii or Pseudomonas fluorescens bacteria, isolated from the natural environment, are placed on a sterilized culture medium of this strain, inoculated with an aqueous suspension of spores or cells of this strain, and surface culture is carried out for 14-40 days at a temperature of 20-40 ° C and a humidity of 80 -100%. In order to avoid drying the inoculated culture, after 10-15 days of culture, the modified objects are additionally sprinkled with a liquid medium with the composition as the solid medium for incubation. After the end of cultivation, the modified objects are cleaned of biological material. For this purpose, it is immersed in distilled water, subjected to ultrasound for 10-120 minutes, washed with distilled water, transferred to a vessel containing 0.1-2% detergent aqueous solution and stirred in this solution on a shaker at a rotational speed of 50-350 rpm. in 10-120 minutes. The modified items are then transferred to a 0.5-5% aqueous detergent solution and sonicated or sonicated for 10-120 minutes, finally washed with distilled water and dried at room temperature. The Mucor circinelloides strain is incubated on a solid medium containing 0-30 parts by weight of agar and 1000 parts by weight of brewing broth at a concentration of 7-12 ° Blg at 20-40 ° C for 2-7 days, and the strain is grown on a sterilized medium with the following composition: 1 kg of distilled water, 1-3 g
NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,001-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 10-40 g glukozy, 10-30 g agaru. Szczep pleśni Aspergillus niger inkubuje się na podłożu stałym zawierającym 10-30 części wagowych agaru i 1000 części wagowych brzeczki piwowarskiej o stężeniu 7-12°Blg, w temperaturze 20 -40°C w czasie 2-7 dni, zaś hodowlę tego szczepu prowadzi się na wysterylizowanym podłożu o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,001-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 10-40 g glukozy, 10-30 g agaru. Szczep pleśni Penicillium ochrochloron inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 0,5-3 g K2HPO4, 0,001-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 10-40 g glukozy, 10-30 g agaru, w temperaturze 20-40°C w czasie 2-7 dni, zaś hodowlę tego szczepu prowadzi się na wysterylizowanym podłożu o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-5 g peptonu, 0,2-2 g ekstraktu drożdżowego, 0,5-2 g K2HPO4, 0,001-1 g MgSO4-7H2O, 0,1-2 g glukozy, 10-30 g agaru. Szczep Chaetomium globosum inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,001-0,1 g Fe2(SO4)3, 0,1-1 g MgSO4-7H2O, 10-40 g glukozy i 10-30 g agaru, w temperaturze 20-40°C w czasie 2-7 dni, zaś hodowlę tego szczepu prowadzi się na wysterylizowanym podłożu o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-3 g NaNO3, 0,5-2 g K2HPO4, 0,001-0,1 g Fe2(SO4)3,0,1-1 g MgSO4-7H2O, 10-40 g glukozy, 10 -30 g agaru. Szczep Lactobacillus delbrueckii inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 1-10 g ekstraktu drożdżowego, 1-20 g ekstraktu mięsnego, 1-20 g peptonu, 0,5-5 g NaCl, 10-30 g agaru, w temperaturze 20-40°C w czasie 1-2 dni, zaś hodowlę tego szczepu prowadzi się na wysterylizowanym podłożu o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-10 g ekstraktu drożdżowego, 1-20 g ekstraktu mięsnego, 1-20 g peptonu, 0,5-5 g NaCl, 10-30 g agaru. Szczep Pseudomonas fluorescens inkubuje się na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 1-10 g ekstraktu wołowego, 1-10 g peptonu, 10-30 g agaru, w temperaturze 20-40°C w czasie 1-2 dni, zaś hodowlę tego szczepu prowadzi się na wysterylizowanym podłożu o składzie: 1 kg wody destylowanej, 1-10 g ekstraktu wołowego, 1-10 g peptonu, 10-30 g agaru. Jako detergenty korzystnie stosuje się Triton X-100, Brij 35, gumę arabską, Tween 80, SEKUMATIC®FC lub ich mieszaniny.NaNO 3 , 0.5-2 g K 2 HPO 4 , 0.001-0.1 g Fe 2 (SO 4 ) 3 , 0.1-1 g MgSO 4 -7H 2 O, 10-40 g glucose, 10-30 g agar. The Aspergillus niger mold strain is incubated on a solid medium containing 10-30 parts by weight of agar and 1000 parts by weight of brewing broth at a concentration of 7-12 ° Blg, at a temperature of 20-40 ° C for 2-7 days, and the cultivation of this strain is carried out on on a sterilized medium with the following composition: 1 kg of distilled water, 1-3 g of NaNO3, 0.5-2 g of K2HPO4, 0.001-0.1 g of Fe2 (SO4) 3, 0.1-1 g of MgSO 4 -7H 2 O, 10-40 g of glucose, 10-30 g of agar. Penicillium ochrochloron mold strain is incubated on a solid medium containing: 1 kg of distilled water, 1-3 g of NaNO3, 0.5-3 g of K2HPO4, 0.001-0.1 g of Fe 2 (SO 4 ) 3 , 0.1-1 g MgSO 4 -7H 2 O, 10-40 g of glucose, 10-30 g of agar, at a temperature of 20-40 ° C for 2-7 days, and the cultivation of this strain is carried out in a sterilized medium with the following composition: 1 kg of distilled water, 1-5 g of peptone, 0.2-2 g of yeast extract, 0.5-2 g of K2HPO4, 0.001-1 g of MgSO 4 -7H 2 O, 0.1-2 g of glucose, 10-30 g of agar. The Chaetomium globosum strain is incubated on a solid medium containing: 1 kg of distilled water, 1-3 g of NaNO3, 0.5-2 g of K2HPO4, 0.001-0.1 g of Fe2 (SO4) 3, 0.1-1 g of MgSO 4 - 7H 2 O, 10-40 g of glucose and 10-30 g of agar, at a temperature of 20-40 ° C for 2-7 days, and the cultivation of this strain is carried out in a sterilized medium with the following composition: 1 kg of distilled water, 1-3 g NaNO 3 , 0.5-2 g K 2 HPO 4 , 0.001-0.1 g Fe 2 (SO 4 ) 3 , 0.1-1 g MgSO 4 -7H 2 O, 10-40 g glucose, 10 - 30 g of agar. Lactobacillus delbrueckii strain is incubated on a solid medium containing: 1 kg of distilled water, 1-10 g of yeast extract, 1-20 g of meat extract, 1-20 g of peptone, 0.5-5 g of NaCl, 10-30 g of agar, in temperature of 20-40 ° C for 1-2 days, and the cultivation of this strain is carried out on a sterilized medium with the following composition: 1 kg of distilled water, 1-10 g of yeast extract, 1-20 g of meat extract, 1-20 g of peptone, 0.5-5 g of NaCl, 10-30 g of agar. The Pseudomonas fluorescens strain is incubated on a solid medium containing: 1 kg of distilled water, 1-10 g of beef extract, 1-10 g of peptone, 10-30 g of agar, at the temperature of 20-40 ° C for 1-2 days, and the culture this strain is carried out on a sterilized medium with the following composition: 1 kg of distilled water, 1-10 g of beef extract, 1-10 g of peptone, 10-30 g of agar. The detergents used are preferably Triton X-100, Brij 35, gum arabic, Tween 80, SEKUMATIC®FC or mixtures thereof.
Sposobem według wynalazku uzyskuje się na modyfikowanych przedmiotach twarde powłoki węglowe wykazujące pomniejszoną zawartość fazy grafitowej oraz/lub obecność na ich powierzchni połączeń polarnych węgla i tlenu, dzięki czemu poprawione zostają właściwości aplikacyjne powierzchni.By the method according to the invention, hard carbon coatings are obtained on modified objects, showing a reduced content of graphite phase and / or the presence of polar connections of carbon and oxygen on their surface, thanks to which the application properties of the surface are improved.
Sposób według wynalazku ilustrują bliżej podane niżej przykłady nie ograniczając jego zakresu.The process according to the invention is illustrated by the following non-limiting examples.
PL 206 644 B1PL 206 644 B1
P r z y k ł a d I.P r z x l a d I.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep pleśni Mucor circinelloides T45 poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym 20 części wagowych agaru i 1000 części wagowych brzeczki piwowarskiej, o stężeniu 8,5°Blg, w temperaturze 30°C w czasie 3 dni, po czym otrzymane w wyniku inkubacji zarodki pleśni zmywano solą fizjologiczną i przeszczepiono na, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C, podł o ż e hodowlane o skł adzie: 1 kg wody destylowanej, 2 gThe Mucor circinelloides T45 mold strain isolated from the natural environment was incubated on a solid medium containing 20 parts by weight of agar and 1000 parts by weight of brewing broth, at a concentration of 8.5 ° Blg, at a temperature of 30 ° C for 3 days, then obtained by incubation mold spores were washed with physiological saline and transplanted onto, previously sterilized for 30 minutes at 121 ° C, a culture medium composed of: 1 kg of distilled water, 2 g
NaNO3, 1 g K2HPO4, 0,01 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 30 g glukozy, 20 g agaru, na powierzchni którego umieszczono, wysterylizowane w czasie 15 minut w temperaturze 121°C, przedmioty pokryte twardą warstwą węglową, zroszone płynną pożywką o składzie jak podłoże stałe i prowadzono hodowlę w czasie 24 dni w przestrzeni zamkniętej w temperaturze 30°C przy wilgotności 80-100%. Po 10 dniach od rozpoczęcia hodowli, w celu uniknięcia wysuszenia szczepionej kultury, powierzchnię modyfikowanych przedmiotów dodatkowo zroszono płynną pożywką o składzie jak podłoże stałe. Następnie modyfikowane przedmioty poddano procedurze oczyszczania z materiału biologicznego. W tym celu przedmioty te zanurzono w wodzie destylowanej i poddano działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut, po czym przemyto wodą i przeniesiono do innego naczynia wypełnionego 0,1% roztworem wodnym Tritonu X-100, w którym mieszano je na wytrząsarce z szybkością obrotową 210 rpm przez 45 minut. Następnie przedmioty pokryte twardą warstwą węglową przenoszono do 1% roztworu wodnego Tritonu X-100 i poddawano działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut, w końcu zmodyfikowane przedmioty przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.NaNO 3 , 1 g K 2 HPO 4 , 0.01 g Fe 2 (SO 4 ) 3 , 0.5 g MgSO 4 -7H 2 O, 30 g glucose, 20 g agar on the surface of which it was placed, sterilized for 15 minutes at 121 ° C, objects covered with a hard carbon layer, sprinkled with a liquid medium composed as a solid medium, and cultivation was carried out for 24 days in a closed space at 30 ° C and 80-100% humidity. After 10 days from the start of cultivation, in order to avoid drying the inoculated culture, the surface of the modified objects was additionally sprinkled with a liquid medium with the composition as a solid medium. Subsequently, the modified objects were subjected to the procedure of purification from biological material. For this purpose, the items were immersed in distilled water and sonicated for 45 minutes, then washed with water and transferred to another vessel filled with 0.1% aqueous solution of Triton X-100, where they were mixed on a shaker at 210 rpm. for 45 minutes. Then the hard carbon coated articles were transferred to a 1% aqueous solution of Triton X-100 and sonicated for 45 minutes, finally the modified articles were washed with distilled water and dried at room temperature.
W wyniku analizy widm Ramana i FT-IR twardych powłok węglowych zmodyfikowanych przedmiotów stwierdzono, iż po działaniu pleśni Mucor circinelloides T45 powłoki te wykazywały pomniejszoną zawartość fazy grafitowej oraz obecność na powierzchni połączeń polarnych węgla i tlenu.As a result of the Raman and FT-IR spectra analysis of hard carbon coatings of the modified objects, it was found that after the action of the Mucor circinelloides T45 mold, these coatings showed a reduced content of graphite phase and the presence of polar connections of carbon and oxygen on the surface.
P r z y k ł a d II.P r z x l a d II.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep pleśni Aspergillus niger poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym 20 części wagowych agaru i 1000 części wagowych brzeczki piwowarskiej, o stężeniu 8,5°Blg, w temperaturze 30°C w czasie 3 dni, po czym otrzymane w wyniku inkubacji zarodki pleśni przeszczepiono na, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C, podłoże hodowlane o składzie: 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, 1 g K2HPO4, 0,01 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 30 g glukozy, 20 g agaru, na którym umieszczono, wysterylizowane w czasie 15 minut w temperaturze 121°C, przedmioty pokryte twardą warstwą węglową, zroszone płynną pożywką o składzie jak podłoże stałe i prowadzono hodowlę w czasie 14 dni w przestrzeni zamkniętej w temperaturze 30°C przy wilgotności 80-100%. Po 10 dniach od rozpoczęcia hodowli powierzchnię przedmiotów pokrytych twardą warstwą węglową dodatkowo zroszono płynną pożywką o składzie jak podłoże stałe. Po zakończeniu hodowli modyfikowane przedmioty zanurzono w wodzie destylowanej i poddano działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut, po czym przemyto je wodą, przeniesiono do innego naczynia wypełnionego 0,1% wodnym roztworem Tritonu X-100 i mieszano na wytrząsarce z szybkością obrotową 210 rpm w czasie 45 minut. Następnie zmodyfikowane przedmioty przeniesiono do 1% roztworu wodnego Tritonu X-100 i poddano działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut, w końcu przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.The Aspergillus niger mold strain isolated from the natural environment was incubated on a solid medium containing 20 parts by weight of agar and 1000 parts by weight of brewing broth, at a concentration of 8.5 ° Blg, at a temperature of 30 ° C for 3 days, and then the embryos obtained as a result of incubation mold was transplanted onto a culture medium, previously sterilized for 30 minutes at 121 ° C, with the following composition: 1 kg of distilled water, 2 g of NaNO3, 1 g of K2HPO4, 0.01 g of Fe 2 (SO 4 ) 3 , 0.5 g MgSO 4 -7H 2 O, 30 g of glucose, 20 g of agar on which was placed, sterilized for 15 minutes at 121 ° C, objects covered with a hard carbon layer, sprinkled with a liquid medium composed as a solid medium, and cultivation was carried out for 14 days in a confined space at 30 ° C and 80-100% humidity. After 10 days from the start of cultivation, the surface of objects covered with a hard carbon layer was additionally sprinkled with a liquid medium with the composition as the solid substrate. After completion of the cultivation, the modified items were immersed in distilled water and sonicated for 45 minutes, then washed with water, transferred to another vessel filled with 0.1% aqueous Triton X-100 solution and mixed on a shaker at 210 rpm for 45 minutes. 45 minutes. The modified items were then transferred to a 1% aqueous solution of Triton X-100 and sonicated for 45 minutes, finally washed with distilled water and dried at room temperature.
W wyniku analizy widm Ramana i FT-IR twardych powłok węglowych zmodyfikowanych przedmiotów stwierdzono, iż po działaniu pleśni Aspergillus niger powłoki te wykazywały pomniejszoną zawartość fazy grafitowej oraz obecność na powierzchni połączeń polarnych węgla i tlenu.As a result of the Raman and FT-IR spectra analysis of hard carbon coatings of modified objects, it was found that after the action of Aspergillus niger mold, these coatings showed a reduced content of graphite phase and the presence of polar connections of carbon and oxygen on the surface.
P r z y k ł a d III.P r x l a d III.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep pleśni Penicillium ochrochloron poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, 1 g K2HPO4, 0,01 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 30 g glukozy, 20 g agaru, w temperaturze 30°C w czasie 3 dni, po czym otrzymane w wyniku inkubacji zarodki pleśni przeszczepiono na, uprzednio wysterylizowane przez 30 minut w temperaturze 121°C, podłoże hodowlane o składzie: 1 kg wody destylowanej, 2,5 g peptonu, 0,625 g ekstraktu drożdżowego, 1,25 g Na2HPO4, 0,025 g MgSO4-7H2O, 0,5 g glukozy, 20 g agaru, na którym umieszczono, wysterylizowane w czasie 15 minut w temperaturze 121°C, przedmioty pokryte twardą warstwą węglową zroszone płynną pożywką o składzie jak podłoże stałe i prowadzono hodowlę w czasie 14 dni w przestrzeni zamkniętej w temperaturze 30°C przy wilgotności 80 -100%. Po 10 dniach od rozpoczęcia hodowli powierzchnię przedmiotów pokrytych twardą warstwą węglową dodatkowo zroszono płynną pożywką o składzie jak podłoże stałe. Po zakończeniu hodowli przedmioty zanurzano w wodzie destylowanej i poddano działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut, po czym przemyto wodą przeniesiono do innego naczynia wypełnionego 0,1% wodnym roztworemThe Penicillium ochrochloron mold strain isolated from the natural environment was incubated on a solid medium containing: 1 kg of distilled water, 2 g of NaNO3, 1 g of K2HPO4, 0.01 g of Fe 2 (SO 4 ) 3 , 0.5 g of MgSO 4 -7H 2 O , 30 g of glucose, 20 g of agar, at the temperature of 30 ° C for 3 days, after which the mold spores obtained as a result of incubation were transplanted onto the previously sterilized for 30 minutes at 121 ° C, a culture medium with the following composition: 1 kg of distilled water , 2.5 g of peptone, 0.625 g of yeast extract, 1.25 g of Na 2 HPO 4 , 0.025 g of MgSO 4 -7H 2 O, 0.5 g of glucose, 20 g of agar on which they were placed, sterilized for 15 minutes in at 121 ° C, objects covered with a hard carbon layer, sprinkled with a liquid medium having the composition as a solid medium, and cultivation was carried out for 14 days in a closed space at a temperature of 30 ° C and a humidity of 80-100%. After 10 days from the start of cultivation, the surface of objects covered with a hard carbon layer was additionally sprinkled with a liquid medium with the composition as the solid substrate. After completion of the cultivation, the items were immersed in distilled water and sonicated for 45 minutes, then washed with water and transferred to another vessel filled with 0.1% aqueous solution.
PL 206 644 B1PL 206 644 B1
Tritonu X-100 i mieszano na wytrząsarce z szybkością obrotową 210 rpm w czasie 45 minut. Następnie zmodyfikowane przedmioty przeniesiono dol% roztworu wodnego Tritonu X-100 i poddano działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut, w końcu przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.Triton X-100 and mixed on a shaker at 210 rpm for 45 minutes. The modified items were then transferred to a lower% aqueous solution of Triton X-100 and sonicated for 45 minutes, finally washed with distilled water and dried at room temperature.
Analizując widma Ramana i FT-IR twardych powłok węglowych zmodyfikowanych przedmiotów stwierdzono, iż po działaniu pleśni Penicillium ochrochloron powłoki te wykazywały pomniejszoną zawartość fazy grafitowej oraz obecność na powierzchni połączeń polarnych węgla i tlenu.Analyzing the Raman and FT-IR spectra of hard carbon coatings of modified objects, it was found that after the action of Penicillium ochrochloron mold, these coatings showed a reduced content of graphite phase and the presence of polar connections of carbon and oxygen on the surface.
P r z y k ł a d IV.P r x l a d IV.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep pleśni Chaetomium globosum poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, 1 g K2HPO4, 0,01 gThe Chaetomium globosum mold strain isolated from the natural environment was incubated on a solid medium containing: 1 kg of distilled water, 2 g of NaNO3, 1 g of K2HPO4, 0.01 g
Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 30 g glukozy, 20 g agaru, w temperaturze 30°C w czasie 3 dni, po czym otrzymane w wyniku inkubacji zarodki pleśni przeszczepiono na, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C, podłoże hodowlane o składzie: 1 kg wody destylowanej, 2 g NaNO3, 1 g K2HPO4 0,01 g Fe2(SO4)3, 0,5 g MgSO4-7H2O, 30 g glukozy, 20 g agaru, na którym umieszczono, wysterylizowane w czasie 15 minut w temperaturze 121°C, przedmioty pokryte twardą warstwą węglową, zroszone płynną pożywką o składzie jak podłoże stałe i prowadzono hodowlę w czasie 14 dni w przestrzeni zamkniętej w temperaturze 30°C przy wilgotności 80-100%. Po 10 dniach od rozpoczęcia hodowli powierzchnię modyfikowanych przedmiotów dodatkowo zroszono płynną pożywką o składzie jak podłoże stałe. Po zakończeniu hodowli modyfikowane przedmioty zanurzono w wodzie destylowanej i poddano działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut, po czym przemyto wodą, przeniesiono do innego naczynia wypełnionego 0,1% roztworem wodnym Tritonu X-100 i mieszano na wytrząsarce z szybkością obrotową 210 rpm w czasie 45 minut. Następnie zmodyfikowane przedmioty przeniesiono do 1% roztworu wodnego Tritonu X-100 i poddano działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut, w końcu przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.Fe 2 (SO 4 ) 3 , 0.5 g MgSO 4 -7H 2 O, 30 g glucose, 20 g agar at 30 ° C for 3 days, after which the mold spores obtained as a result of incubation were transplanted onto previously sterilized during 30 minutes at 121 ° C, the culture medium with the following composition: 1 kg of distilled water, 2 g of NaNO 3 , 1 g of K 2 HPO 4, 0.01 g of Fe 2 (SO 4 ) 3 , 0.5 g of MgSO 4 - 7H 2 O, 30 g of glucose, 20 g of agar on which was placed, sterilized for 15 minutes at 121 ° C, objects covered with a hard carbon layer, sprinkled with a liquid medium composed as a solid medium, and cultivation was carried out for 14 days in space closed at 30 ° C and 80-100% humidity. After 10 days from the start of cultivation, the surface of the modified objects was additionally sprinkled with a liquid medium with the composition as a solid medium. After completion of the cultivation, the modified items were immersed in distilled water and sonicated for 45 minutes, then washed with water, transferred to another vessel filled with 0.1% Triton X-100 aqueous solution and mixed on a shaker at 210 rpm for 45 minutes. minutes. The modified items were then transferred to a 1% aqueous solution of Triton X-100 and sonicated for 45 minutes, finally washed with distilled water and dried at room temperature.
Analizując widma Ramana i FT-IR twardych powłok węglowych zmodyfikowanych przedmiotów stwierdzono, iż po działaniu pleśni Chaetomium globosum powłoki te wykazywały pomniejszoną zawartość fazy grafitowej oraz obecność na powierzchni połączeń polarnych węgla i tlenu.Analyzing the Raman and FT-IR spectra of hard carbon coatings of modified objects, it was found that after the action of Chaetomium globosum mold, these coatings showed a reduced content of graphite phase and the presence of polar connections of carbon and oxygen on the surface.
P r z y k ł a d V.P r z k ł a d V.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep Lactobacillus delbrueckii poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym 1 kg wody destylowanej, 5 g ekstraktu drożdżowego, 10 g ekstraktu mięsnego, 10 g peptonu, 3 g NaCl, 20 g agaru, w temperaturze 30°C w czasie 1 dnia, po czym otrzymane w wyniku inkubacji komórki przeszczepiono na, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C, podłoże hodowlane o składzie: 1 kg wody destylowanej, 5 g ekstraktu drożdżowego, 10 g ekstraktu mięsnego, 10 g peptonu, 3 g NaCl, 20 g agaru, na którym umieszczono, wysterylizowane w czasie 15 minut w temperaturze 121°C, przedmioty pokryte twardą warstwą węglową, zroszone płynną pożywką o składzie jak podłoże stałe i prowadzono hodowlę w czasie 14 dni w przestrzeni zamkniętej w temperaturze 30°C przy wilgotności 80-100%. Po 10 dniach od rozpoczęcia hodowli powierzchnię modyfikowanych przedmiotów dodatkowo zroszono płynną pożywką o składzie jak podłoże stałe. Po zakończeniu hodowli modyfikowane przedmioty zanurzono w wodzie destylowanej i poddano działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut, po czym przemyto wodą i przeniesiono do innego naczynia wypełnionego 0,1% wodnym roztworem Tritonu X-100, w którym mieszano je na wytrząsarce z szybkością obrotową 210 rpm w czasie 45 minut. Następnie zmodyfikowane przedmioty przeniesiono do innego naczynia zawierającego 0,1% roztwór wodny detergentu SEKUMATIC®FC i poddano 50 minutowej sonifikacji przy amplitudzie 40 i pulsacji 4, po czym zmodyfikowane przedmioty przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.The Lactobacillus delbrueckii strain isolated from the natural environment was incubated on a solid medium containing 1 kg of distilled water, 5 g of yeast extract, 10 g of meat extract, 10 g of peptone, 3 g of NaCl, 20 g of agar at 30 ° C during 1 day, then the cells obtained as a result of incubation were transplanted onto the culture medium, previously sterilized for 30 minutes at 121 ° C, with the following composition: 1 kg of distilled water, 5 g of yeast extract, 10 g of meat extract, 10 g of peptone, 3 g of NaCl, 20 g of agar on which was placed, sterilized for 15 minutes at 121 ° C, objects covered with a hard carbon layer, sprinkled with a liquid medium composed as a solid medium, and cultured for 14 days in a closed space at 30 ° C and humidity 80-100%. After 10 days from the start of cultivation, the surface of the modified objects was additionally sprinkled with a liquid medium with the composition as a solid medium. After completion of the cultivation, the modified items were immersed in distilled water and sonicated for 45 minutes, then washed with water and transferred to another vessel filled with 0.1% aqueous Triton X-100 solution, where they were mixed on a shaker at 210 rpm. in 45 minutes. The modified items were then transferred to another vessel containing 0.1% SEKUMATIC®FC detergent aqueous solution and subjected to 50 minutes sonication at amplitude 40 and pulsation 4, after which the modified items were washed with distilled water and dried at room temperature.
Analizując widma Ramana i FT-IR twardych powłok węglowych zmodyfikowanych przedmiotów stwierdzono, iż po działaniu bakterii Lactobacillus delbrueckii powłoki te wykazywały pomniejszoną zawartość fazy grafitowej oraz obecność na powierzchni połączeń polarnych węgla i tlenu.Analyzing the Raman and FT-IR spectra of hard carbon coatings of modified objects, it was found that after the action of Lactobacillus delbrueckii bacteria, these coatings showed a reduced content of graphite phase and the presence of polar connections of carbon and oxygen on the surface.
P r z y k ł a d VI.P r x l a d VI.
Wyodrębniony ze środowiska naturalnego szczep bakterii Pseudomonas fluorescens poddano inkubacji na podłożu stałym zawierającym: 1 kg wody destylowanej, 3 g ekstraktu wołowego, 5 g peptonu, 20 g agaru, w temperaturze 30°C w czasie 1 dnia, po czym otrzymane w wyniku inkubacji komórki przeszczepiono na, uprzednio wysterylizowane w czasie 30 minut w temperaturze 121°C, podłoże hodowlane o składzie: 1 kg wody destylowanej, 3 g ekstraktu wołowego, 5 g peptonu, 20 g agaru, na którym umieszczono, wysterylizowane w czasie 15 minut w temperaturze 121°C, przedmioty pokryte twardą warstwą węglową, zroszone płynną pożywką o składzie jak podłoże stałe i prowadzonoThe Pseudomonas fluorescens bacterial strain isolated from the natural environment was incubated on a solid medium containing: 1 kg of distilled water, 3 g of bovine extract, 5 g of peptone, 20 g of agar at 30 ° C for 1 day, and then the cells obtained as a result of incubation was transplanted onto a culture medium, previously sterilized for 30 minutes at 121 ° C, with the following composition: 1 kg of distilled water, 3 g of beef extract, 5 g of peptone, 20 g of agar on which they were placed, sterilized for 15 minutes at 121 ° C, objects covered with a hard carbon layer, sprinkled with a liquid medium composed as a solid medium and conducted
PL 206 644 B1 hodowlę w czasie 14 dni w przestrzeni zamkniętej w temperaturze 30°C przy wilgotności 80-100%. Po 10 dniach od rozpoczęcia hodowli powierzchnię modyfikowanych przedmiotów dodatkowo zroszono płynną pożywką o składzie jak podłoże stałe. Po zakończeniu hodowli modyfikowane przedmioty zanurzono w wodzie destylowanej i poddano działaniu ultradźwięków w czasie 45 minut, po czym przemyto wodą przeniesiono do innego naczynia wypełnionego 0,1% wodnym roztworem Tritonu X-100 i mieszano na wytrząsarce z szybkością obrotową 210 rpm w czasie 45 minut. Następnie zmodyfikowane przedmioty przeniesiono do innego naczynia zawierającego 0,1% roztwór wodny SEKUMATIC®FC i poddano 50 minutowej sonifikacji przy amplitudzie 40 i pulsacji 4, w końcu przemyto wodą destylowaną i suszono w temperaturze pokojowej.Cultivation for 14 days in a confined space at 30 ° C and 80-100% humidity. After 10 days from the start of cultivation, the surface of the modified objects was additionally sprinkled with a liquid medium with the composition as a solid medium. After completion of the cultivation, the modified items were immersed in distilled water and sonicated for 45 minutes, then washed with water, transferred to another vessel filled with 0.1% aqueous Triton X-100 solution and mixed on a shaker at 210 rpm for 45 minutes. . Then the modified items were transferred to another vessel containing 0.1% SEKUMATIC®FC aqueous solution and subjected to 50 minutes sonication at amplitude 40 and pulsation 4, finally washed with distilled water and dried at room temperature.
Analizując widma Ramana i FT-IR twardych powłok węglowych zmodyfikowanych przedmiotów stwierdzono, iż po działaniu bakterii Pseudomonas fluorescens powłoki te wykazywały pomniejszoną zawartość fazy grafitowej oraz obecność na powierzchni połączeń polarnych węgla i tlenu.Analyzing the Raman and FT-IR spectra of hard carbon coatings of modified objects, it was found that after the action of Pseudomonas fluorescens bacteria, these coatings showed a reduced content of graphite phase and the presence of polar connections of carbon and oxygen on the surface.
Claims (7)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL375127A PL206644B1 (en) | 2005-05-16 | 2005-05-16 | Method for the modification of hard coal coatings |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL375127A PL206644B1 (en) | 2005-05-16 | 2005-05-16 | Method for the modification of hard coal coatings |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL375127A1 PL375127A1 (en) | 2006-11-27 |
| PL206644B1 true PL206644B1 (en) | 2010-09-30 |
Family
ID=40561351
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL375127A PL206644B1 (en) | 2005-05-16 | 2005-05-16 | Method for the modification of hard coal coatings |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL206644B1 (en) |
-
2005
- 2005-05-16 PL PL375127A patent/PL206644B1/en not_active IP Right Cessation
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL375127A1 (en) | 2006-11-27 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Inbar et al. | Evidence that chitinase produced by Aeromonas caviae is involved in the biological control of soil-borne plant pathogens by this bacterium | |
| Orgaz et al. | Bacterial biofilm removal using fungal enzymes | |
| Schreiber et al. | Plant–microbe interactions: identification of epiphytic bacteria and their ability to alter leaf surface permeability | |
| Lee et al. | Hahella chejuensis gen. nov., sp. nov., an extracellular-polysaccharide-producing marine bacterium. | |
| Bianciotto et al. | Extracellular polysaccharides are involved in the attachment of Azospirillum brasilense and Rhizobium leguminosarum to arbuscular mycorrhizal structures | |
| EP3098303B1 (en) | Microbial fermentation methods and compositions | |
| FR2519022A1 (en) | PREPARATION OF INOCULUMS WITH LONG VIABILITY AND IMPROVED TEMPERATURE RESISTANCE AND PRODUCTS THUS OBTAINED | |
| TW201315807A (en) | Method for inducing germination in spore-forming bacterium | |
| WO2020103668A1 (en) | Strain for producing chitinase and application thereof | |
| Kumari et al. | ACC-deaminase and EPS production by salt tolerant rhizobacteria augment growth in chickpea under salinity stress | |
| CN110734876B (en) | Bacillus megaterium FJW1 biocontrol preparation as well as preparation method and application thereof | |
| Agusti et al. | Biocontrol of root rot of strawberry caused by Phytophthora cactorum with a combination of two Pseudomonas fluorescens strains | |
| CN1154715C (en) | Microbial agricultural chemical | |
| Millsap et al. | Adhesive interactions between voice prosthetic yeast and bacteria on silicone rubber in the absence and presence of saliva | |
| PL206644B1 (en) | Method for the modification of hard coal coatings | |
| JP3652866B2 (en) | Beverages containing spore lactic acid bacteria | |
| Qian et al. | Isolation and characterization of a xanthan‐degrading Microbacterium sp. strain XT11 from garden soil | |
| PL206642B1 (en) | Method for the modification of graphite | |
| PL206643B1 (en) | Method for the modification of hard coal coatings | |
| KR102295345B1 (en) | Mutant strain of gluconacetobacter hansenii having enhanced bacterial nano-cellulose productivity, and method for producing the bacterial nano-cellulose using the same | |
| Pirog et al. | Factors affecting antibiofilm properties of microbial surfactants | |
| Singh et al. | Chitinase production by Serratia marcescens GG5 | |
| PL206641B1 (en) | Method for the modification of graphite | |
| Seesuriyachan et al. | Enhancement and optimization of exopolysaccharide production by Weissella confusa TISTR 1498 in pH controlled submerged fermentation under high salinity stress | |
| Neagu et al. | The functionalization of silica and titanate nanostructures with halotolerant proteases |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| LAPS | Decisions on the lapse of the protection rights |
Effective date: 20080516 |