PL102256B1 - A method of producing immobilized penicillin amidase - Google Patents

A method of producing immobilized penicillin amidase Download PDF

Info

Publication number
PL102256B1
PL102256B1 PL19227476A PL19227476A PL102256B1 PL 102256 B1 PL102256 B1 PL 102256B1 PL 19227476 A PL19227476 A PL 19227476A PL 19227476 A PL19227476 A PL 19227476A PL 102256 B1 PL102256 B1 PL 102256B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
amidase
copolymer
acrylamide
solution
penicillin amidase
Prior art date
Application number
PL19227476A
Other languages
English (en)
Other versions
PL192274A1 (pl
Inventor
Apolinary Szewczuk
Marian Mordarski
Maria Wellmanbednawska
Edmund Ziomek
Edward Zukowski
Jerzy Luba
Barbara Borowska
Ewa Bujnowska
Kazimiera Skrzypkowska
Original Assignee
Tarchominskie Zaklad Farma
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Tarchominskie Zaklad Farma filed Critical Tarchominskie Zaklad Farma
Priority to PL19227476A priority Critical patent/PL102256B1/pl
Publication of PL192274A1 publication Critical patent/PL192274A1/pl
Publication of PL102256B1 publication Critical patent/PL102256B1/pl

Links

Landscapes

  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarza¬ nia immobilizowanej amidazy penicylinowej. En¬ zym ten jest stosowany do hydrolizy penicylin w produkcji kwasu 6-aminopeni'Cylanowego.
Z polskiego opisu patentowego nr 79 702 znany jest sposób otrzymywania amidazy penicylinowej, zwiazanej kowalencyjnie na kopolimerze akrylo- amidowym, polegajacy na tym, ze kopolimer akry- lóamidu, N,N'-metyleno-bis-akryloamidu i kwasu maleinowego ogrzewa sie pod zmniejszonym cis¬ nieniem, a otrzymany produkt poddaje sie reakcji z wodnym buforowanym roztworem enzymu. Spo¬ sób ten wymaga przeprowadzenia trzech operacji, a mianowicie wytworzenia kopolimeru, jego ogrze^ wania i reakcji z enzymem. * Okazalo sie, ze amidaze penicylinowa, immobili- zowana na kopolimerze akryloamidu, mozna otrzy¬ mac w sposób prostszy i dogodniejszy, obejmujacy jedynie dwa etapy.- Sposób wedlug wynalazku polega na tym, ze amidaze penicylinowa poddaje sie reakcji z bez¬ wodnikiem nienasyconego kwasu dwukarboksylo- wego, a otrzymany zmodyfikowany enzym przepro¬ wadza sie w kopolimer akryloamidu, ewentualnie w obecnosci substancji o charakterze wypelnia¬ cza.
Reakcji z bezwodnikiem nienasyconego kwasu dwuikarboiksylowe^o mozna poddawac amidaze pe¬ nicylinowa zarówno w postaci czystej, jak i w postaci wstepnie oczyszczonego enzymu o stosun- kowo niskiej aktywnosci. Reakcje prowadzi sie w zbuforowanym srodowisku wodno-organicznym przy wartosci pH od okolo 5 do okolo, 8 i w nliskiej temperaturze (okolo 0—5°C) dla zapobiezenia szyb¬ kiej hydrolizie bezwodnika. Bezwodnik nienasyco¬ nego kwasii dwukarboksylowego stosuje sie ko¬ rzystnie w ilosci do okolo 90 mikromoli/mg bialka, gdyz przy wyzszej ilosci otrzymuje sie preparaty o nizszej aktywnosci enzymatycznej. Jako bez¬ wodnik nienasyconego kwasu dwukarboksylowego korzystnie stosuje sie bezwodnik kwasu maleino¬ wego. Wydajnosc reakcji wynosi okolo 90°/o.
Otrzymana zmodyfikowana amidaza penicylino¬ wa jest nierozpuszczalna w srodowisku kwasnym (wartosc pH okolo 3,0), co mozna wykorzystac do jej wyodrebnienia. Charakteryzuje sie ona zmniej¬ szona iloscia wolnych grup aminowych (oznaczo¬ nych przez reakcje z TNBS), zwiekszona ruchli¬ woscia elektroforetyczna (zbadana za pomoca ele¬ ktroforezy dyskowej) i wyzsza stabilnoscia termicz¬ na w porównaniu z enzymem niezmodyfikowanym.
Wlasciwosci te przedstawione sa w tablicach 1 i 2.
Otrzymana zmodyfikowana amidaze penicylinowa przeprowadza sie nastepnie w jeden z kopolimerów, stosowanych zazwyczaj do otrzymywania immobi- lizowanych enzymów. Ze wzgledu na warunki prowadzenia procesu kopolimeryzacji szczególnie przydatne sa kopolimery, otrzymywane z mono¬ merów rozpuszczalnych w wodzie, zwlaszcza ko¬ polimery akryloamidu. Korzystnie stosuje sie ko- 102 2563 polimery otrzymane z akryloamidu i N,N'-dwu- allilodwuamidów kwasów dwukarboksylowych zwlaszcza N,N'-dwuallilodwuamidów kwasu malo- nowego lub kwasu winowego. Kopolimery te od¬ znaczaja sie duza elastycznoscia i mozna je liofili¬ zowac i przechowywac w stanie suchym przez dluzszy okres czasu bez zmniejszenia aktywnosci immobilizowanej amidazy penicylinowej. Zamiast tych dwuallilodwuamidów mozna stosowac takze metyleno-bis-akryloamid, znany czynnik usieciowu- jacy poliakrylóamid, lecz w tym przypadku uzy¬ skane kopolimery nie posiadaja wymaganej ela¬ stycznosci, sa kruche i latwo sie scieraja.
Proces kopolimeryzaeji prowadzi sie w obecnosci ukladu: kafaiizator-inicjator. Sa to substancje za¬ zwyczaj stosowane w tego typu reakcjach, na przy¬ klad nadsiarczany, ryboflawina, N,N,N',N'-tetrame- tyloktylenodwuamina iab ^-dwumetyloamino-pro- pioaitryl.
Proces kopolimeryzacji mozna prowadzic w obec¬ nosci substancji o charakterze wypelniacza. Ko¬ rzystnie stosuje sie niskoczasteczkowe substancje rozpuszczalne w wodzie, takie jak na przyklad sacharoza, które zwiekszaja porowatosc otrzymane-" go kopolimeru i podnosza jego aktywnosc enzy¬ matyczna.
Reakcje kopolimeryzaeji prowadzi sie w zbu- forowanym roztworze wodnym w atmosferze gazu obojetnego. Otrzymany kopolimer granuluje sie w zwykly sposób i dokladnie przemywa roztwo¬ rem buforu o odczynie zblizonym do obojetnego, otrzymujac preparat immobilizowanej amidazy pe¬ nicylinowej o wysokiej aktywnosci enzymatycznej (kilka j/ml). Reakcje kopolimeryzaeji mozna tez prowadzic w rozpuszczalniku organicznym w obec¬ nosci rozpuszczonego w nim srodka powierzchnio¬ wo czynnego przy energicznym mieszaniu. Jako rozpuszczalnik organiczny korzystnie stosuje sie roztwór czterochlorku wegla lub chloroformu w toluenie, a jako srodek powierzchniowo czynny — oleinian sorbitolu, znany w handlu pod nazwa Spfan 88. W tym przypadku uzyskuje sie kopoli¬ mer w postaci sferycznych granulek. Srednica tych granulek maleje wraz ze wzrostem ilosci srodka powierzchniowo czynnego, dodanego do rozpuszczalnika organicznego. Przy uzyciu srodka Span 80 w ilosci okolo l°/o mozna uzyskac gra* nulki o srednicy do 0,4 mm. Wydajnosc procesu wynosi zazwyczaj okolo 50% w przeliczeniu na enzym uzyty do immobilizacji. taraobilizowana amidaza penicylinowa, otrzymy¬ wana sposobem wedlug wynalazku, zachowuje pel- n% aktywnosc enzymatyczna przy wieJotygodiniowym przechowywaniu w chlodni w temperaturze 4°C a w temperaturze 37°C w ciagu miesiaca traci —40% aktywnosci, co przedstawia tablica 2. Im- mobilizowana amidaza jest stosowana do enzyma¬ tycznego rozszczepiania penicylin, zwlaszcza benzy- lopenicyliny, przy -czym otrzymuje sie kwas 6- -aa»inopenicylanowy z wydajnoscia powyzej 90% wydajnosci teoretycznej. Hydrolize penicylin przy uzyciu immobilizowanej amidazy penicylinowej, o- trzymanej sposobem wedlug wynalazku, prowadzi sie w zbuforowanym srodowisku wodnym o wartos¬ ci pH 7—8, przy czym korzystnie stosuje sie bufor 2 256 4 fosforanowy. Podczas przebiegu reakcji wartosc pH utrzymuje sie na stalym poziomie przez dodawanie roztworów substancji zasadowych.
Hydrolize prowadzi sie w temperaturze okolo 25—45°C, korzystnie 35—38°C. Czas trwania reak¬ cji jest zalezny od temperatury, stezenia i rodzaju uzytej penicyliny oraz od stosunku aktywnosci immobilizowanego enzymu do ilosci penicyliny. Hy¬ drolize mozna prowadzic przy stosunkowo wyso- w kich stezeniach penicyliny (do okolo 10%), przy czym korzystnie stosuje sie penicyline w postaci soli. Sposób wedlug wynalazku jest objasniony ponizszymi przykladami, które jednakze nie ogra¬ niczaja jego zakresu.
Przyklad I. a) Otrzymywanie zmodyfikowa¬ nej amidazy penicylinowej.
Do 12,4 ml oziebionego roztworu czesciowo oczy¬ szczonej amidazy penicylinowej, pochodzacej z ko¬ mórek Escherichia coli, w buforze fosforanowym 29 o wartosci pH 5,8 o stezeniu bialka 25 mg/ml i aktywnosci swoistej 1,5 j/mg wkrapla sie po¬ woli, mieszajac, 1,2 ml 4,5 M roztworu bezwodnika maleinowego w suchym acetonie.
Podczas reakcji wartosc pH utrzymuje sie na po- ziomie wyjsciowym przez dodawanie 0,8 M roz¬ tworu Weglanu sodu. Nastepnie chlodzony roz¬ twór, miesza sie przez 15 minut i pozostawia na 2 godziny w temperaturze pokojowej. Po odsacze¬ niu powstalego osadu przesacz dializuje sie w ciagu 16 godzin do 1 litra 0,01 M buforu fosforanowego o wartosci pH 5,8, otrzymujac okolo 18 mf roz¬ tworu zmodyfikowanej amidazy penicylinowej o aktywnosci swoistej 1,3 j/mg. b) Otrzymyiwanie immobilizowanej amidazy peni- cylinowej przez kopolimeryzacje w bloku.
W 5 ml roztworu zmodyfikowanej amidazy peni¬ cylinowej, otrzymanej sposobem opisanym w przy¬ kladzie la, rozpuszcza sie 0,75 g akryloamidu, 0,038 g N,N'-dwuallilodwuamidu kwasu malonowe- *° go i 1 g sproszkowanej sacharozy, a nastepnie dodaje sie 0,05 ml 5% roztworu nadsiarczanu amonowego i 0,05 ml 5% roztworu N,N,N',N'-tetra- metyloetylenodwuaminy i uzyskany roztwór szybko wysyca sie azotem. Dla dalszej polimeryzacji roz- *s twór pozostawia sie w atmosferze azotu na okres godzin w temperaturze 25°C.
Otrzymany zel przeciera sie przez sito o prze¬ kroju oczek 0,3 mm, a granulki przemywa sie ko¬ lejno 0,1 M buforem fosforanowym o wartosci W pH 7,5, nastepnie tym samym buforem z dodat¬ kiem 0,5 M roztworu chlorku sodu, a wreszcie samym buforem. Otrzymuje sie okolo 17 ml upa¬ kowanego, granulowanego zelu o aktywnosci okolo 3,5 j/ml. Wydajnosc procesu immoibilizacji wynosi W okolo 60% w przeliczeniu na uzyta amidaze. c) Otrzymyiwainle immobilizowanej amidazy peni¬ cylinowej przez kopolimeryzacje w sferycznych gra¬ nulkach.
W 2 ml roztworu zmodyfikowanej amidazy peni- $o cylinowej, otrzymanej sposobem opisanym w przy¬ kladzie la, rozpuszcza sie 0,2 g akryloamidu, 0,01 g N,N'-dwuallilodwuamidu kwasu L-winowego i 0,4 g sacharozy. Nastepnie dodaje sie 0,02 ml 1,5 % roztworu nadsiarczanu amonu i taka sama ilosc 65 roztworu N,N,N',N'-tetrametyk)etylienodwi*aj]toy,5 102 256 6 po czym roztwór wysyca sie szybko azotem i wkra- pla do intensywnie mieszanej fazy organicznej o temperaturze 25°C, takze uprzednio wysyconej a- zoftem, o skladzie nastepujacym: 8 ml toluenu i 2 ml czterochlorku wegla z dodatkiem 0,6°/o deter-"- gentu Span 80 i 0,01% N,N,N^N'ntetrametyloetyle- nodrwaiairnny.
Polimeryzacja rozpoczyna sie po kilku minutach, a konczy po uplywie 15 godzin. Utworzone sfery¬ czne granulki odsacza sie na lejku Buchnera, przemywa toluenem, 0,1 M buforem fosforanowym o wartosci pH 7,5 z dodatkiem Tweenu 80, a wreszcie samym buforem. Uzyskuje sie okolo 7 ml upakowanych, okraglych granulek ó srednicy od 0,15 do 0„45 mm, wyikazujacych aktywnosc amidazy okolo 2 j/ml. Wydajnosc procesu wynosi okolo 50% w przeliczeniu na enzym uzyty do immobilizacji. d) Otrzymywanie iimmobilizowanej amidazy peni¬ cylinowej przez kopolimeryzacje w bloku.
W roztworze zmodyfikowanej amidazy penicyli¬ nowej, otrzymanym sposobem opisanym w przy¬ kladzie la, rozpuszcza sie Zfi g sacharozy, 1,8 g akryloamidu i 0,18 g N,N'-metyleno-bis-akryloamidu, po czym dodaje sie 0,75 ml 1% roztworu nadsiar¬ czanu amonu i 0,75 ml 0,l°/o roztworu N,N,N',N'- -tetrametyloetylenodwuaminy. Uzyskany roztwór pozostawia sie w temperaturze 25°C w atmosferze azotu na .Okres 15 godzin. Otrzymany zel przeciera sie przez sito o przekroju oczek 0,5 mm, a uzy¬ skane granulki przemywa sie trzykrotnie 0,1 M buforem fosforanowym o wartosci pH 7,8. Otrzymu¬ je sie 40" ml zelu o aktywnosci enzymatycznej 3,5 j/ml. Aktywnosc amidazy penicylinowej okresla sie metoda kalorymetryczna wedlug Balasinghan et al., Biochem. Biophys. Acta 1972, 276, 250—256.
Przyklad II. Wytwarzanie kwasu 6-amino- penicylanowego.
Do 10 ml immobilizowanej amidazy penicylinowej, otrzymanej sposobem opisanym w przykladzie I, dodaje sie 2 g soli potasowej penicyliny G, roz¬ puszczonej w 40 ml 0,1 M buforu fosforanowego, i miesza sie w temperaturze 37°C przez 6 godzin.
J*5 *0 Wartosc pH utrzymuje sie na poziomie 7,5—7,8 przez wkraplanie 0,8 M roztworu weglanu sodu.
Po uplywie tego czasu w mieszaninie reakcyjnej stwierdza sie obecnosc kwasu 6-aminopenicylano- wego. (96% ilosci teoretycznej). Zawiesine saczy sie, przemywa 0,1 M buforem fosforanowymi o war¬ tosci pH 7,8 i z przesaczu wyodrebnia sie kwas 6-aminopenicylanowy znanymi metodami. Zel im- mobilizowanej amidazy penicylinoweij mozna po¬ nownie uzyc do hydrolizy penicyliny. ^ •o «0 0 chh s ^ I c ^ J> Ci) £ •£ ^ * CU -3 a c^ "8102 256 O c Tabi i ca 2 Wplyw ocrzeuania w 0,1 M buf fosf. pH 75 w 37c na ciklywnosc aojlazij penicylinowej. actflaza / i mmobilizowana f0 12 14 16 f8 20 22 24 26 2 dni ogrzewania DN-3, z. 61/71 Cena 45 zl

Claims (7)

Zastrzezenia patentowe
1. Sposób wytwarzania amidazy penicylinowej immbilizowanej na kopolimerze akryloamidu, zna¬ mienny tym, ze amidaze penicylinowa poddaje sie reakcji z bezwodnikiem nienasyconego kwasu dwu- karboksylowego, a otrzymany zmodyfikowany en¬ zym przeprowadza sce w kopolimer, ewentualnie w obecnosci substancji o charakterze wypelniacza.
2. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze jako bezwodnik nienasyconego kwiaisu dwukarbo- ksylowego stosuje sie bezwodnik kwasu maleino¬ wego.
3. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze zmodyfikowany enzym przeprowadza sie w kopo¬ limer akryloamidu i N,N'-dwuallilodwuamidu kwa¬ su dwukarboksylowego.
4. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze zmodyfikowany enzym przeprowadza sie w kopo¬ limer akryloamidu i metyleno-bis-akryloamidu.
5. Sposób wedlug zastrz. 3, znamienny tym, ze jako N,N'-dwuallilodwuamid kwasu dwukarboksy- lowegp stosuje sie N,N'-dwuallilodwuamid kwasu malonowego lub kwiaisu winowego.
6. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze zmodyfikowany enzym przeprowadza sie w kopo¬ limer w obecnosci ukladu: katalizator — inicjator polimeryzacji.
7. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze jako substancje o charakterze wypelniajacym sto¬ suje sie sacharoze, Tablica 1 :> £ O cl 3 3 5 10 20 50 60 mikromok uzytego bezwodnika, rna/e/nonego Imq bialke^ ^ Rm 0.8 0,5 0? ^ Cl c « -^
PL19227476A 1976-09-08 1976-09-08 A method of producing immobilized penicillin amidase PL102256B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL19227476A PL102256B1 (pl) 1976-09-08 1976-09-08 A method of producing immobilized penicillin amidase

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL19227476A PL102256B1 (pl) 1976-09-08 1976-09-08 A method of producing immobilized penicillin amidase

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL192274A1 PL192274A1 (pl) 1978-03-28
PL102256B1 true PL102256B1 (pl) 1979-03-31

Family

ID=19978477

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL19227476A PL102256B1 (pl) 1976-09-08 1976-09-08 A method of producing immobilized penicillin amidase

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL102256B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL192274A1 (pl) 1978-03-28

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Betigeri et al. Immobilization of lipase using hydrophilic polymers in the form of hydrogel beads
US4266029A (en) Enzyme immobilization
Bibi et al. Agar–agar entrapment increases the stability of endo-β-1, 4-xylanase for repeated biodegradation of xylan
JPH0412952B2 (pl)
Mostafa et al. Immobilization of xylanase on modified grafted alginate polyethyleneimine bead based on impact of sodium cation effect
JPH0416156B2 (pl)
DK150549B (da) Katalysator til biokemiske omdannelsesreaktioner med samtidigt immobiliserede enzymer og mikroorganismer samt fremgangsmaade til fremstilling heraf
Tor et al. Enzyme stabilization by bilayer “encagement”
Hamerska-Dudra et al. Immobilization of glucoamylase and trypsin on crosslinked thermosensitive carriers
CN109182324B (zh) 一种壳-核结构固定化酶及其制备方法和应用
PL102256B1 (pl) A method of producing immobilized penicillin amidase
Beddows et al. Immobilization of BSA, enzymes and cells of Bacillus stearothermophilus onto cellulose, polygalacturonic acid and starch based graft copolymers containing maleic anhydride
Krajewska Chitosan membrane-immobilized urease. Kinetic behavior in phosphate buffer in the pH range 5.76-8.19
Jaworek et al. [15] Preparation and properties of enzymes immobilized by copolymerization
Sato et al. Fabrication of enzyme-entrapped composite and macroporous gel beads by suspension gelation combined with sedimentation polymerization
US4767707A (en) Immobilization of enzymes with a water-soluble glycidyl ether
Simon et al. Immobilization of pig muscle 3-phosphoglycerate kinase
Zhang et al. Immobilization of β-galactosidase on tamarind gum and chitosan composite microspheres
RU2054481C1 (ru) Способ получения иммобилизованных ферментов
JP3266607B2 (ja) 生体触媒固定化ゲル
JPH03133386A (ja) 固定化微生物を用いた酵素反応方法
RO122364B1 (ro) Procedeu de imobilizare a tripsinei pe suport biopolimeric
PL79702B1 (pl)
JPS60160885A (ja) 固定化した微生物、植物細胞および/または酵素
JPH0517835B2 (pl)