NO774240L - PROCEDURE FOR DETECTION AND DETERMINATION OF ANTIGENES - Google Patents
PROCEDURE FOR DETECTION AND DETERMINATION OF ANTIGENESInfo
- Publication number
- NO774240L NO774240L NO774240A NO774240A NO774240L NO 774240 L NO774240 L NO 774240L NO 774240 A NO774240 A NO 774240A NO 774240 A NO774240 A NO 774240A NO 774240 L NO774240 L NO 774240L
- Authority
- NO
- Norway
- Prior art keywords
- antibody
- antigen
- sample
- enzyme
- insoluble
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 53
- 238000001514 detection method Methods 0.000 title claims description 4
- 239000000427 antigen Substances 0.000 claims description 76
- 102000036639 antigens Human genes 0.000 claims description 75
- 108091007433 antigens Proteins 0.000 claims description 75
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 claims description 60
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 claims description 60
- 230000000694 effects Effects 0.000 claims description 20
- 239000007790 solid phase Substances 0.000 claims description 12
- 238000005259 measurement Methods 0.000 claims description 9
- 239000002198 insoluble material Substances 0.000 claims description 5
- 239000007788 liquid Substances 0.000 claims description 5
- 239000007791 liquid phase Substances 0.000 claims description 5
- 239000000463 material Substances 0.000 claims description 4
- 238000002965 ELISA Methods 0.000 claims description 3
- 238000000926 separation method Methods 0.000 claims description 2
- 239000002195 soluble material Substances 0.000 claims description 2
- 239000012071 phase Substances 0.000 claims 1
- 229940088598 enzyme Drugs 0.000 description 55
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 30
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 28
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 26
- FTOAOBMCPZCFFF-UHFFFAOYSA-N 5,5-diethylbarbituric acid Chemical compound CCC1(CC)C(=O)NC(=O)NC1=O FTOAOBMCPZCFFF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 20
- 229960002319 barbital Drugs 0.000 description 20
- 108060003951 Immunoglobulin Proteins 0.000 description 18
- 102000018358 immunoglobulin Human genes 0.000 description 18
- 241001494479 Pecora Species 0.000 description 17
- 239000008363 phosphate buffer Substances 0.000 description 17
- 241000283074 Equus asinus Species 0.000 description 16
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 16
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 15
- 108091003079 Bovine Serum Albumin Proteins 0.000 description 14
- 229940098773 bovine serum albumin Drugs 0.000 description 14
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 14
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 13
- 239000000499 gel Substances 0.000 description 11
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 11
- LMDZBCPBFSXMTL-UHFFFAOYSA-N 1-ethyl-3-(3-dimethylaminopropyl)carbodiimide Chemical compound CCN=C=NCCCN(C)C LMDZBCPBFSXMTL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 10
- 230000027455 binding Effects 0.000 description 10
- JYGXADMDTFJGBT-VWUMJDOOSA-N hydrocortisone Chemical compound O=C1CC[C@]2(C)[C@H]3[C@@H](O)C[C@](C)([C@@](CC4)(O)C(=O)CO)[C@@H]4[C@@H]3CCC2=C1 JYGXADMDTFJGBT-VWUMJDOOSA-N 0.000 description 10
- NOESYZHRGYRDHS-UHFFFAOYSA-N insulin Chemical compound N1C(=O)C(NC(=O)C(CCC(N)=O)NC(=O)C(CCC(O)=O)NC(=O)C(C(C)C)NC(=O)C(NC(=O)CN)C(C)CC)CSSCC(C(NC(CO)C(=O)NC(CC(C)C)C(=O)NC(CC=2C=CC(O)=CC=2)C(=O)NC(CCC(N)=O)C(=O)NC(CC(C)C)C(=O)NC(CCC(O)=O)C(=O)NC(CC(N)=O)C(=O)NC(CC=2C=CC(O)=CC=2)C(=O)NC(CSSCC(NC(=O)C(C(C)C)NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(CC=2C=CC(O)=CC=2)NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(C)NC(=O)C(CCC(O)=O)NC(=O)C(C(C)C)NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(CC=2NC=NC=2)NC(=O)C(CO)NC(=O)CNC2=O)C(=O)NCC(=O)NC(CCC(O)=O)C(=O)NC(CCCNC(N)=N)C(=O)NCC(=O)NC(CC=3C=CC=CC=3)C(=O)NC(CC=3C=CC=CC=3)C(=O)NC(CC=3C=CC(O)=CC=3)C(=O)NC(C(C)O)C(=O)N3C(CCC3)C(=O)NC(CCCCN)C(=O)NC(C)C(O)=O)C(=O)NC(CC(N)=O)C(O)=O)=O)NC(=O)C(C(C)CC)NC(=O)C(CO)NC(=O)C(C(C)O)NC(=O)C1CSSCC2NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(NC(=O)C(CCC(N)=O)NC(=O)C(CC(N)=O)NC(=O)C(NC(=O)C(N)CC=1C=CC=CC=1)C(C)C)CC1=CN=CN1 NOESYZHRGYRDHS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 10
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 10
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 10
- 239000008351 acetate buffer Substances 0.000 description 9
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 9
- VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N Hydrochloric acid Chemical compound Cl VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 8
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 8
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 8
- 238000002372 labelling Methods 0.000 description 8
- 125000003396 thiol group Chemical group [H]S* 0.000 description 8
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 7
- 235000010482 polyoxyethylene sorbitan monooleate Nutrition 0.000 description 7
- 229920000053 polysorbate 80 Polymers 0.000 description 7
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 7
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 description 7
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 7
- HZAXFHJVJLSVMW-UHFFFAOYSA-N 2-Aminoethan-1-ol Chemical compound NCCO HZAXFHJVJLSVMW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 6
- 230000021615 conjugation Effects 0.000 description 6
- 239000000839 emulsion Substances 0.000 description 6
- 239000003550 marker Substances 0.000 description 6
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 6
- SXRSQZLOMIGNAQ-UHFFFAOYSA-N Glutaraldehyde Chemical compound O=CCCCC=O SXRSQZLOMIGNAQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 5
- 108010001336 Horseradish Peroxidase Proteins 0.000 description 5
- 102000002265 Human Growth Hormone Human genes 0.000 description 5
- 108010000521 Human Growth Hormone Proteins 0.000 description 5
- 239000000854 Human Growth Hormone Substances 0.000 description 5
- 102000018071 Immunoglobulin Fc Fragments Human genes 0.000 description 5
- 108010091135 Immunoglobulin Fc Fragments Proteins 0.000 description 5
- 102000004877 Insulin Human genes 0.000 description 5
- 108090001061 Insulin Proteins 0.000 description 5
- 229920002684 Sepharose Polymers 0.000 description 5
- 229960000890 hydrocortisone Drugs 0.000 description 5
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 5
- 229940125396 insulin Drugs 0.000 description 5
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 5
- 235000018102 proteins Nutrition 0.000 description 5
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 5
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 5
- 239000000700 radioactive tracer Substances 0.000 description 5
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 5
- SHKUUQIDMUMQQK-UHFFFAOYSA-N 2-[4-(oxiran-2-ylmethoxy)butoxymethyl]oxirane Chemical compound C1OC1COCCCCOCC1CO1 SHKUUQIDMUMQQK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 229920005654 Sephadex Polymers 0.000 description 4
- 239000012507 Sephadex™ Substances 0.000 description 4
- AUYYCJSJGJYCDS-LBPRGKRZSA-N Thyrolar Chemical compound IC1=CC(C[C@H](N)C(O)=O)=CC(I)=C1OC1=CC=C(O)C(I)=C1 AUYYCJSJGJYCDS-LBPRGKRZSA-N 0.000 description 4
- 239000003463 adsorbent Substances 0.000 description 4
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 4
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 4
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 4
- BQJCRHHNABKAKU-KBQPJGBKSA-N morphine Chemical compound O([C@H]1[C@H](C=C[C@H]23)O)C4=C5[C@@]12CCN(C)[C@@H]3CC5=CC=C4O BQJCRHHNABKAKU-KBQPJGBKSA-N 0.000 description 4
- 230000002285 radioactive effect Effects 0.000 description 4
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 4
- 241000283973 Oryctolagus cuniculus Species 0.000 description 3
- MZVQCMJNVPIDEA-UHFFFAOYSA-N [CH2]CN(CC)CC Chemical group [CH2]CN(CC)CC MZVQCMJNVPIDEA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 125000003277 amino group Chemical group 0.000 description 3
- 229960000789 guanidine hydrochloride Drugs 0.000 description 3
- PJJJBBJSCAKJQF-UHFFFAOYSA-N guanidinium chloride Chemical compound [Cl-].NC(N)=[NH2+] PJJJBBJSCAKJQF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 229940127121 immunoconjugate Drugs 0.000 description 3
- 239000007927 intramuscular injection Substances 0.000 description 3
- 238000010255 intramuscular injection Methods 0.000 description 3
- 239000000546 pharmaceutical excipient Substances 0.000 description 3
- 239000000047 product Substances 0.000 description 3
- 241000894007 species Species 0.000 description 3
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 3
- 229940035722 triiodothyronine Drugs 0.000 description 3
- QKNYBSVHEMOAJP-UHFFFAOYSA-N 2-amino-2-(hydroxymethyl)propane-1,3-diol;hydron;chloride Chemical compound Cl.OCC(N)(CO)CO QKNYBSVHEMOAJP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- HVCNXQOWACZAFN-UHFFFAOYSA-N 4-ethylmorpholine Chemical compound CCN1CCOCC1 HVCNXQOWACZAFN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 102100031126 6-phosphogluconolactonase Human genes 0.000 description 2
- 108010029731 6-phosphogluconolactonase Proteins 0.000 description 2
- QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-M Acetate Chemical compound CC([O-])=O QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 108010088751 Albumins Proteins 0.000 description 2
- 102000009027 Albumins Human genes 0.000 description 2
- 229920002134 Carboxymethyl cellulose Polymers 0.000 description 2
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- CEAZRRDELHUEMR-URQXQFDESA-N Gentamicin Chemical compound O1[C@H](C(C)NC)CC[C@@H](N)[C@H]1O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O[C@@H]2[C@@H]([C@@H](NC)[C@@](C)(O)CO2)O)[C@H](N)C[C@@H]1N CEAZRRDELHUEMR-URQXQFDESA-N 0.000 description 2
- 229930182566 Gentamicin Natural products 0.000 description 2
- 102000006395 Globulins Human genes 0.000 description 2
- 108010044091 Globulins Proteins 0.000 description 2
- 108010018962 Glucosephosphate Dehydrogenase Proteins 0.000 description 2
- TWRXJAOTZQYOKJ-UHFFFAOYSA-L Magnesium chloride Chemical compound [Mg+2].[Cl-].[Cl-] TWRXJAOTZQYOKJ-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- CXOFVDLJLONNDW-UHFFFAOYSA-N Phenytoin Chemical compound N1C(=O)NC(=O)C1(C=1C=CC=CC=1)C1=CC=CC=C1 CXOFVDLJLONNDW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- RJKFOVLPORLFTN-LEKSSAKUSA-N Progesterone Chemical compound C1CC2=CC(=O)CC[C@]2(C)[C@@H]2[C@@H]1[C@@H]1CC[C@H](C(=O)C)[C@@]1(C)CC2 RJKFOVLPORLFTN-LEKSSAKUSA-N 0.000 description 2
- UIIMBOGNXHQVGW-UHFFFAOYSA-M Sodium bicarbonate Chemical compound [Na+].OC([O-])=O UIIMBOGNXHQVGW-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- BFNBIHQBYMNNAN-UHFFFAOYSA-N ammonium sulfate Chemical compound N.N.OS(O)(=O)=O BFNBIHQBYMNNAN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229910052921 ammonium sulfate Inorganic materials 0.000 description 2
- 235000011130 ammonium sulphate Nutrition 0.000 description 2
- -1 barbiturates Chemical compound 0.000 description 2
- 239000013060 biological fluid Substances 0.000 description 2
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 2
- 244000309466 calf Species 0.000 description 2
- 239000001768 carboxy methyl cellulose Substances 0.000 description 2
- 235000010948 carboxy methyl cellulose Nutrition 0.000 description 2
- 239000008112 carboxymethyl-cellulose Substances 0.000 description 2
- 239000003431 cross linking reagent Substances 0.000 description 2
- 239000000706 filtrate Substances 0.000 description 2
- 125000000524 functional group Chemical group 0.000 description 2
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 2
- 125000002887 hydroxy group Chemical group [H]O* 0.000 description 2
- DFTAZNAEBRBBKP-UHFFFAOYSA-N methyl 4-sulfanylbutanimidate Chemical compound COC(=N)CCCS DFTAZNAEBRBBKP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229960005181 morphine Drugs 0.000 description 2
- 230000009871 nonspecific binding Effects 0.000 description 2
- 150000002482 oligosaccharides Polymers 0.000 description 2
- 230000003647 oxidation Effects 0.000 description 2
- 238000007254 oxidation reaction Methods 0.000 description 2
- 229960002036 phenytoin Drugs 0.000 description 2
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 description 2
- 125000002924 primary amino group Chemical group [H]N([H])* 0.000 description 2
- 239000011541 reaction mixture Substances 0.000 description 2
- 230000001105 regulatory effect Effects 0.000 description 2
- 230000002787 reinforcement Effects 0.000 description 2
- 238000001179 sorption measurement Methods 0.000 description 2
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 2
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 2
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 2
- DGVVWUTYPXICAM-UHFFFAOYSA-N β‐Mercaptoethanol Chemical compound OCCS DGVVWUTYPXICAM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- DNXHEGUUPJUMQT-UHFFFAOYSA-N (+)-estrone Natural products OC1=CC=C2C3CCC(C)(C(CC4)=O)C4C3CCC2=C1 DNXHEGUUPJUMQT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- SFLSHLFXELFNJZ-QMMMGPOBSA-N (-)-norepinephrine Chemical compound NC[C@H](O)C1=CC=C(O)C(O)=C1 SFLSHLFXELFNJZ-QMMMGPOBSA-N 0.000 description 1
- KWTSXDURSIMDCE-QMMMGPOBSA-N (S)-amphetamine Chemical compound C[C@H](N)CC1=CC=CC=C1 KWTSXDURSIMDCE-QMMMGPOBSA-N 0.000 description 1
- UFFVWIGGYXLXPC-UHFFFAOYSA-N 1-[2-(2,5-dioxopyrrol-1-yl)phenyl]pyrrole-2,5-dione Chemical compound O=C1C=CC(=O)N1C1=CC=CC=C1N1C(=O)C=CC1=O UFFVWIGGYXLXPC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- RMBMWXHVTXYPQN-UHFFFAOYSA-N 1-[3-[(1-hydroxy-2,5-dioxopyrrolidin-3-yl)methyl]phenyl]pyrrole-2,5-dione Chemical compound O=C1N(O)C(=O)CC1CC1=CC=CC(N2C(C=CC2=O)=O)=C1 RMBMWXHVTXYPQN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- VOXZDWNPVJITMN-ZBRFXRBCSA-N 17β-estradiol Chemical compound OC1=CC=C2[C@H]3CC[C@](C)([C@H](CC4)O)[C@@H]4[C@@H]3CCC2=C1 VOXZDWNPVJITMN-ZBRFXRBCSA-N 0.000 description 1
- VXPSQDAMFATNNG-UHFFFAOYSA-N 3-[2-(2,5-dioxopyrrol-3-yl)phenyl]pyrrole-2,5-dione Chemical compound O=C1NC(=O)C(C=2C(=CC=CC=2)C=2C(NC(=O)C=2)=O)=C1 VXPSQDAMFATNNG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229920000936 Agarose Polymers 0.000 description 1
- 102000002260 Alkaline Phosphatase Human genes 0.000 description 1
- 108020004774 Alkaline Phosphatase Proteins 0.000 description 1
- 241000193830 Bacillus <bacterium> Species 0.000 description 1
- 101001011741 Bos taurus Insulin Proteins 0.000 description 1
- WDPFQABQVGJEBZ-MAKOZQESSA-N Bothermon Chemical compound OC1=CC=C2[C@H]3CC[C@](C)([C@H](CC4)O)[C@@H]4[C@@H]3CCC2=C1.O=C1CC[C@]2(C)[C@H]3CC[C@](C)([C@H](CC4)O)[C@@H]4[C@@H]3CCC2=C1 WDPFQABQVGJEBZ-MAKOZQESSA-N 0.000 description 1
- 108010022366 Carcinoembryonic Antigen Proteins 0.000 description 1
- 102100025475 Carcinoembryonic antigen-related cell adhesion molecule 5 Human genes 0.000 description 1
- 241000700198 Cavia Species 0.000 description 1
- 241000700199 Cavia porcellus Species 0.000 description 1
- 241000699800 Cricetinae Species 0.000 description 1
- XUIIKFGFIJCVMT-GFCCVEGCSA-N D-thyroxine Chemical compound IC1=CC(C[C@@H](N)C(O)=O)=CC(I)=C1OC1=CC(I)=C(O)C(I)=C1 XUIIKFGFIJCVMT-GFCCVEGCSA-N 0.000 description 1
- 108020005199 Dehydrogenases Proteins 0.000 description 1
- 229920002307 Dextran Polymers 0.000 description 1
- KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N EDTA Chemical compound OC(=O)CN(CC(O)=O)CCN(CC(O)=O)CC(O)=O KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000283086 Equidae Species 0.000 description 1
- 241000588722 Escherichia Species 0.000 description 1
- 241000588724 Escherichia coli Species 0.000 description 1
- DNXHEGUUPJUMQT-CBZIJGRNSA-N Estrone Chemical compound OC1=CC=C2[C@H]3CC[C@](C)(C(CC4)=O)[C@@H]4[C@@H]3CCC2=C1 DNXHEGUUPJUMQT-CBZIJGRNSA-N 0.000 description 1
- 102000012673 Follicle Stimulating Hormone Human genes 0.000 description 1
- 108010079345 Follicle Stimulating Hormone Proteins 0.000 description 1
- 102000002464 Galactosidases Human genes 0.000 description 1
- 108010093031 Galactosidases Proteins 0.000 description 1
- 108010010803 Gelatin Proteins 0.000 description 1
- 239000004366 Glucose oxidase Substances 0.000 description 1
- 108010015776 Glucose oxidase Proteins 0.000 description 1
- FBOZXECLQNJBKD-ZDUSSCGKSA-N L-methotrexate Chemical compound C=1N=C2N=C(N)N=C(N)C2=NC=1CN(C)C1=CC=C(C(=O)N[C@@H](CCC(O)=O)C(O)=O)C=C1 FBOZXECLQNJBKD-ZDUSSCGKSA-N 0.000 description 1
- 102000009151 Luteinizing Hormone Human genes 0.000 description 1
- 108010073521 Luteinizing Hormone Proteins 0.000 description 1
- 102000013460 Malate Dehydrogenase Human genes 0.000 description 1
- 108010026217 Malate Dehydrogenase Proteins 0.000 description 1
- PEEHTFAAVSWFBL-UHFFFAOYSA-N Maleimide Chemical compound O=C1NC(=O)C=C1 PEEHTFAAVSWFBL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 102000016943 Muramidase Human genes 0.000 description 1
- 108010014251 Muramidase Proteins 0.000 description 1
- 241000699670 Mus sp. Species 0.000 description 1
- 241001467552 Mycobacterium bovis BCG Species 0.000 description 1
- 108010062010 N-Acetylmuramoyl-L-alanine Amidase Proteins 0.000 description 1
- XNPOFXIBHOVFFH-UHFFFAOYSA-N N-cyclohexyl-N'-(2-(4-morpholinyl)ethyl)carbodiimide Chemical compound C1CCCCC1N=C=NCCN1CCOCC1 XNPOFXIBHOVFFH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000004677 Nylon Substances 0.000 description 1
- 108090000854 Oxidoreductases Proteins 0.000 description 1
- 102000004316 Oxidoreductases Human genes 0.000 description 1
- 108090000526 Papain Proteins 0.000 description 1
- 239000004365 Protease Substances 0.000 description 1
- 241000700159 Rattus Species 0.000 description 1
- 239000002262 Schiff base Substances 0.000 description 1
- 150000004753 Schiff bases Chemical class 0.000 description 1
- 102000011923 Thyrotropin Human genes 0.000 description 1
- 108010061174 Thyrotropin Proteins 0.000 description 1
- YZCKVEUIGOORGS-NJFSPNSNSA-N Tritium Chemical compound [3H] YZCKVEUIGOORGS-NJFSPNSNSA-N 0.000 description 1
- 238000010521 absorption reaction Methods 0.000 description 1
- 239000012190 activator Substances 0.000 description 1
- 239000002671 adjuvant Substances 0.000 description 1
- 239000011543 agarose gel Substances 0.000 description 1
- 125000003172 aldehyde group Chemical group 0.000 description 1
- 229940025084 amphetamine Drugs 0.000 description 1
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 1
- 230000000890 antigenic effect Effects 0.000 description 1
- 239000003125 aqueous solvent Substances 0.000 description 1
- 229960000190 bacillus calmette–guérin vaccine Drugs 0.000 description 1
- 229940125717 barbiturate Drugs 0.000 description 1
- 230000001588 bifunctional effect Effects 0.000 description 1
- IXIBAKNTJSCKJM-BUBXBXGNSA-N bovine insulin Chemical compound C([C@@H](C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(=O)N[C@H]1CSSC[C@H]2C(=O)N[C@@H](C)C(=O)N[C@@H](CO)C(=O)N[C@H](C(=O)N[C@H](C(N[C@@H](CO)C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(=O)N[C@@H](CC=3C=CC(O)=CC=3)C(=O)N[C@@H](CCC(N)=O)C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(=O)N[C@@H](CCC(O)=O)C(=O)N[C@@H](CC(N)=O)C(=O)N[C@@H](CC=3C=CC(O)=CC=3)C(=O)N[C@@H](CSSC[C@H](NC(=O)[C@H](C(C)C)NC(=O)[C@H](CC(C)C)NC(=O)[C@H](CC=3C=CC(O)=CC=3)NC(=O)[C@H](CC(C)C)NC(=O)[C@H](C)NC(=O)[C@H](CCC(O)=O)NC(=O)[C@H](C(C)C)NC(=O)[C@H](CC(C)C)NC(=O)[C@H](CC=3NC=NC=3)NC(=O)[C@H](CO)NC(=O)CNC1=O)C(=O)NCC(=O)N[C@@H](CCC(O)=O)C(=O)N[C@@H](CCCNC(N)=N)C(=O)NCC(=O)N[C@@H](CC=1C=CC=CC=1)C(=O)N[C@@H](CC=1C=CC=CC=1)C(=O)N[C@@H](CC=1C=CC(O)=CC=1)C(=O)N[C@@H]([C@@H](C)O)C(=O)N1[C@@H](CCC1)C(=O)N[C@@H](CCCCN)C(=O)N[C@@H](C)C(O)=O)C(=O)N[C@@H](CC(N)=O)C(O)=O)=O)CSSC[C@@H](C(N2)=O)NC(=O)[C@H](CCC(N)=O)NC(=O)[C@H](CCC(O)=O)NC(=O)[C@H](C(C)C)NC(=O)[C@@H](NC(=O)CN)[C@@H](C)CC)C(C)C)NC(=O)[C@H](CCC(N)=O)NC(=O)[C@H](CC(N)=O)NC(=O)[C@@H](NC(=O)[C@@H](N)CC=1C=CC=CC=1)C(C)C)C1=CN=CN1 IXIBAKNTJSCKJM-BUBXBXGNSA-N 0.000 description 1
- 239000007975 buffered saline Substances 0.000 description 1
- 150000001720 carbohydrates Chemical group 0.000 description 1
- 125000003178 carboxy group Chemical group [H]OC(*)=O 0.000 description 1
- 239000000969 carrier Substances 0.000 description 1
- 229920002678 cellulose Polymers 0.000 description 1
- 239000001913 cellulose Substances 0.000 description 1
- 125000003636 chemical group Chemical group 0.000 description 1
- 239000007795 chemical reaction product Substances 0.000 description 1
- 238000004587 chromatography analysis Methods 0.000 description 1
- 238000004140 cleaning Methods 0.000 description 1
- 238000004132 cross linking Methods 0.000 description 1
- UFULAYFCSOUIOV-UHFFFAOYSA-N cysteamine Chemical compound NCCS UFULAYFCSOUIOV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- XUJNEKJLAYXESH-UHFFFAOYSA-N cysteine Natural products SCC(N)C(O)=O XUJNEKJLAYXESH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 235000018417 cysteine Nutrition 0.000 description 1
- 238000000354 decomposition reaction Methods 0.000 description 1
- 235000015872 dietary supplement Nutrition 0.000 description 1
- LOKCTEFSRHRXRJ-UHFFFAOYSA-I dipotassium trisodium dihydrogen phosphate hydrogen phosphate dichloride Chemical compound P(=O)(O)(O)[O-].[K+].P(=O)(O)([O-])[O-].[Na+].[Na+].[Cl-].[K+].[Cl-].[Na+] LOKCTEFSRHRXRJ-UHFFFAOYSA-I 0.000 description 1
- VHJLVAABSRFDPM-QWWZWVQMSA-N dithiothreitol Chemical compound SC[C@@H](O)[C@H](O)CS VHJLVAABSRFDPM-QWWZWVQMSA-N 0.000 description 1
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 1
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 1
- 239000003480 eluent Substances 0.000 description 1
- 238000010828 elution Methods 0.000 description 1
- 229960005309 estradiol Drugs 0.000 description 1
- 229930182833 estradiol Natural products 0.000 description 1
- 229960003399 estrone Drugs 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 229940028334 follicle stimulating hormone Drugs 0.000 description 1
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 1
- 239000008273 gelatin Substances 0.000 description 1
- 229920000159 gelatin Polymers 0.000 description 1
- 235000019322 gelatine Nutrition 0.000 description 1
- 235000011852 gelatine desserts Nutrition 0.000 description 1
- 229940116332 glucose oxidase Drugs 0.000 description 1
- 235000019420 glucose oxidase Nutrition 0.000 description 1
- 230000009931 harmful effect Effects 0.000 description 1
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 1
- 239000004009 herbicide Substances 0.000 description 1
- 229940088597 hormone Drugs 0.000 description 1
- 239000005556 hormone Substances 0.000 description 1
- 230000003301 hydrolyzing effect Effects 0.000 description 1
- 238000003018 immunoassay Methods 0.000 description 1
- 229940072221 immunoglobulins Drugs 0.000 description 1
- 239000003112 inhibitor Substances 0.000 description 1
- 239000002917 insecticide Substances 0.000 description 1
- PGLTVOMIXTUURA-UHFFFAOYSA-N iodoacetamide Chemical compound NC(=O)CI PGLTVOMIXTUURA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 108700041430 link Proteins 0.000 description 1
- 229940040129 luteinizing hormone Drugs 0.000 description 1
- 229960000274 lysozyme Drugs 0.000 description 1
- 239000004325 lysozyme Substances 0.000 description 1
- 235000010335 lysozyme Nutrition 0.000 description 1
- 229910001629 magnesium chloride Inorganic materials 0.000 description 1
- 238000000691 measurement method Methods 0.000 description 1
- 229960003151 mercaptamine Drugs 0.000 description 1
- 229960000485 methotrexate Drugs 0.000 description 1
- 229960002748 norepinephrine Drugs 0.000 description 1
- SFLSHLFXELFNJZ-UHFFFAOYSA-N norepinephrine Natural products NCC(O)C1=CC=C(O)C(O)=C1 SFLSHLFXELFNJZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229920001778 nylon Polymers 0.000 description 1
- 125000000466 oxiranyl group Chemical group 0.000 description 1
- 229940055729 papain Drugs 0.000 description 1
- 235000019834 papain Nutrition 0.000 description 1
- KHIWWQKSHDUIBK-UHFFFAOYSA-N periodic acid Chemical compound OI(=O)(=O)=O KHIWWQKSHDUIBK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000002953 phosphate buffered saline Substances 0.000 description 1
- 229920002401 polyacrylamide Polymers 0.000 description 1
- 235000020004 porter Nutrition 0.000 description 1
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 description 1
- 229960003387 progesterone Drugs 0.000 description 1
- 239000000186 progesterone Substances 0.000 description 1
- NGVDGCNFYWLIFO-UHFFFAOYSA-N pyridoxal 5'-phosphate Chemical compound CC1=NC=C(COP(O)(O)=O)C(C=O)=C1O NGVDGCNFYWLIFO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 235000007682 pyridoxal 5'-phosphate Nutrition 0.000 description 1
- 239000011589 pyridoxal 5'-phosphate Substances 0.000 description 1
- 229960001327 pyridoxal phosphate Drugs 0.000 description 1
- 239000002901 radioactive waste Substances 0.000 description 1
- 239000012266 salt solution Substances 0.000 description 1
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 1
- 229920006395 saturated elastomer Polymers 0.000 description 1
- 239000012047 saturated solution Substances 0.000 description 1
- 239000011734 sodium Substances 0.000 description 1
- 235000017557 sodium bicarbonate Nutrition 0.000 description 1
- 229910000030 sodium bicarbonate Inorganic materials 0.000 description 1
- 229910000033 sodium borohydride Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000012279 sodium borohydride Substances 0.000 description 1
- 238000001228 spectrum Methods 0.000 description 1
- 238000010561 standard procedure Methods 0.000 description 1
- 150000003431 steroids Chemical class 0.000 description 1
- 150000003457 sulfones Chemical class 0.000 description 1
- RTKIYNMVFMVABJ-UHFFFAOYSA-L thimerosal Chemical compound [Na+].CC[Hg]SC1=CC=CC=C1C([O-])=O RTKIYNMVFMVABJ-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 229960004906 thiomersal Drugs 0.000 description 1
- 210000001685 thyroid gland Anatomy 0.000 description 1
- 229940034208 thyroxine Drugs 0.000 description 1
- XUIIKFGFIJCVMT-UHFFFAOYSA-N thyroxine-binding globulin Natural products IC1=CC(CC([NH3+])C([O-])=O)=CC(I)=C1OC1=CC(I)=C(O)C(I)=C1 XUIIKFGFIJCVMT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- DVKJHBMWWAPEIU-UHFFFAOYSA-N toluene 2,4-diisocyanate Chemical compound CC1=CC=C(N=C=O)C=C1N=C=O DVKJHBMWWAPEIU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910052722 tritium Inorganic materials 0.000 description 1
- 238000007039 two-step reaction Methods 0.000 description 1
- 239000011782 vitamin Substances 0.000 description 1
- 229940088594 vitamin Drugs 0.000 description 1
- 229930003231 vitamin Natural products 0.000 description 1
- 235000019195 vitamin supplement Nutrition 0.000 description 1
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/543—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
- G01N33/54306—Solid-phase reaction mechanisms
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Immunology (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Urology & Nephrology (AREA)
- Hematology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Pathology (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Description
Foreliggende oppfinnelse vedrører enzymforbundet immunobestemmelse og gir en ny fremgangsmåte for påvisning og måling av antigener, og reagenser for bruk i denne. Uttrykket "antigen" som her brukt betyr ikke bare substanser som i seg selv kan fremkalle produksjonen av antistoffer i dyr, dvs. immunogener, men.også substanser, noen ganger kalt haptener, som etter konjugering med et bæremolekyl blir i stand til å frembringe produksjonen av og reaksjon med spesifikke antistoffer. The present invention relates to enzyme-linked immunoassay and provides a new method for the detection and measurement of antigens, and reagents for use therein. The term "antigen" as used here means not only substances which in themselves can induce the production of antibodies in animals, i.e. immunogens, but also substances, sometimes called haptens, which after conjugation with a carrier molecule become capable of producing the production of and reaction with specific antibodies.
Det er en betydelig teoretisk og praktisk interesse for å kunne påvise og måle nærvær av antigener. Da slike substanser ofte har en kompleks og hyppig ukjent kjemisk struktur og opptrer i meget lave konsentrasjoner i biologiske og andre materialer, There is considerable theoretical and practical interest in being able to detect and measure the presence of antigens. As such substances often have a complex and frequently unknown chemical structure and appear in very low concentrations in biological and other materials,
er det ikke mulig å anvende konvensjonelle analyseteknikker. Følgelig har i de siste få årene en rekke teknikker blitt ut-viklet basert på antigen-antistoff-reaksjonen, hvori en reak-sjonskomponent markeres med en radio-aktiv "tracer" eller f.eks. med et enzym, slik at reaksjonsproduktene eller i noen. tilfeller det ubrukte reagenset kan påvises og/eller måles. Skjønt metoder basert på bruken av radioaktive markeringer it is not possible to apply conventional analysis techniques. Consequently, in the last few years a number of techniques have been developed based on the antigen-antibody reaction, in which a reaction component is marked with a radio-active "tracer" or e.g. with an enzyme, so that the reaction products or in some. cases the unused reagent can be detected and/or measured. Although methods based on the use of radioactive markers
har visse teoretiske fordeler, særlig det faktum at visse typer markering, spesielt sådanne som anvender tritium eller 14 have certain theoretical advantages, notably the fact that certain types of marking, especially those using tritium or 14
C, interfererer den radioaktive traceren selv ikke med antigen-antistof f reaks j onen , er det visse ulemper forbundet med bruken av denne teknikken, særlig behovet for å tilveiebringe den nødvendige apparatur for å måle radioaktiv tracer, å beskytte operatøren for mulige skadelige virkninger fra radioak-tiviteten og å plassere det radioaktive avfallet etter bruk. Mange radioaktive markeringer må kastes med jevne mellomrom p.g.a. den radiokjemiske dekomponering av den radioaktive isotopen. Videre kan det være vanskelig å radiomarkere anti gener med liten molekylvekt og bibeholde deres viktige antigen-egenskaper. Det er derfor vært vist betydelig interesse for metoder, hvori antigen-antistoffreaksjonen følges ved bruk av et reagens, hvori et enzym virker som tracer. Slike metoder er enkle å utføre og trenger relativt enkelt utstyr, og omfatter ingen helsemessige risiko. Ikke desto mindre har mange av de hittil foreslåtte systemer lidd av den ulempe at det er nødvendig for god funksjonering å fremstille et konjugat mellom det anvendte enzymet som tracer og antigenet som skal påvises. Fremstillingen av disse konjugatene er ikke. alltid lett p.g.a. behovet for å bevare enzymaktiviteten til enzym-delen i konjugatet, og det er særlig tungvint å måtte frem-stillle et separat konjugat for hvert individuelt antigen som er tilsiktet påvist. Ved fremgangsmåten ifølge foreliggende oppfinnelse kan på den annen side et enkelt enzymholdig konjugat brukes på et stort antall antigener. Prinsipielt kan faktisk et enkelt sådant konjugat brukes på alle'antigener. C, the radioactive tracer itself does not interfere with the antigen-antibody reaction, there are certain disadvantages associated with the use of this technique, in particular the need to provide the necessary equipment to measure the radioactive tracer, to protect the operator from possible harmful effects from the radioactivity and to place the radioactive waste after use. Many radioactive markers must be thrown away at regular intervals due to the radiochemical decomposition of the radioactive isotope. Furthermore, it can be difficult to radiolabel low molecular weight antigens and retain their important antigenic properties. Considerable interest has therefore been shown in methods in which the antigen-antibody reaction is followed using a reagent in which an enzyme acts as a tracer. Such methods are easy to perform and require relatively simple equipment, and involve no health risks. Nevertheless, many of the systems proposed so far have suffered from the disadvantage that it is necessary for good functioning to produce a conjugate between the enzyme used as a tracer and the antigen to be detected. The preparation of these conjugates is not. always easy because the need to preserve the enzyme activity of the enzyme part of the conjugate, and it is particularly cumbersome to have to prepare a separate conjugate for each individual antigen that is intended to be detected. In the method according to the present invention, on the other hand, a single enzyme-containing conjugate can be used on a large number of antigens. In principle, a single such conjugate can actually be used on all antigens.
I et tidligere forslag (Engvall et. a_l, J. Immunology 109In an earlier proposal (Engvall et. a_l, J. Immunology 109
(1972) page 129) er antistoffer bestemt ved reaksjon med antigener på et uløselig underlag etterfulgt av reaksjon av antigen-antistoff-konjugat på underlaget med et enzymmarkert anti-immunoglobulin som var kjent for å kunne reagere med antistoffet på konjugatet. Med denne metoden avhenger mengden av enzym som til slutt er knyttet til underlaget av mengden antistoff i prøven som er under behandling da enzymet blir bundet til underlaget ved en kjede, hvorved antistoffet som skal bestemmes utgjør et avgrenset og essensielt ledd. (1972) page 129) antibodies are determined by reaction with antigens on an insoluble substrate followed by reaction of the antigen-antibody conjugate on the substrate with an enzyme-labelled anti-immunoglobulin which was known to be able to react with the antibody on the conjugate. With this method, the amount of enzyme that is finally attached to the substrate depends on the amount of antibody in the sample that is being treated, as the enzyme is bound to the substrate by a chain, whereby the antibody to be determined forms a defined and essential link.
Fremgangsmåte ved foreliggende oppfinnelse for enzymbundet immunobestemmelse består av å bringe i kontakt, samtidig Method of the present invention for enzyme-linked immunoassay consists of bringing into contact, simultaneously
eller trinnvis og i et flytende medium,(1) et antigen (som forut definert) på et uløselig underlag eller i form av et uløselig aggregat, (2) et første antistoff (som i det føl-gende definert)og (3) et enzymmarkert annet antistoff (som or stepwise and in a liquid medium, (1) an antigen (as previously defined) on an insoluble substrate or in the form of an insoluble aggregate, (2) a first antibody (as defined below) and (3) a enzyme-labeled other antibody (eg
i det følgende definert), adskille de uløselige og løselige materialene og måle enzymaktiviteten for én eller flere av dem. hereinafter defined), separate the insoluble and soluble materials and measure the enzyme activity of one or more of them.
Oppfinnelsen erkarakterisert vedat nevnte første antistoff (2) også bringes i kontakt med en prøve som inneholder antigenet som skal påvises eller måles som kan være det samme eller forskjellig fra antigenet (1), det andre antistoff (3) knyttes derved til det uløselige materialet i motsatt forhold til mengden av antigenet i prøven som skal påvises eller måles for å bestemme nærværet eller mengden av antigenet i.prøven. Uttrykket "første antistoff" slik det her er brukt, betyr et antistoff som kan binde både antigenet på det uløselige underlaget og antigenet som skal påvises. Uttrykket "annet antistoff" betyr antistoff som er spesifikt for alle antilegemer i immunoglobulihklassen som det første antistoffet tilhører, f.eks. alle saue IgG, kanin IgG eller kanin IgM. Hvis f.eks. det. første antistoffet er et immunoglobulin som dannes i et spesielt dyr, f.eks. en sau, er det andre antistoffet et antistoff mot immunoglobuliner fra denne arten, uavhengig av deres antistoffspesifisiteter, som dannes i et forskjellig dyr, f.eks. et esel. The invention is characterized in that said first antibody (2) is also brought into contact with a sample containing the antigen to be detected or measured, which may be the same or different from the antigen (1), the second antibody (3) is thereby linked to the insoluble material in inversely proportional to the quantity of the antigen in the sample to be detected or measured to determine the presence or quantity of the antigen in the sample. The term "first antibody" as used herein means an antibody that can bind both the antigen on the insoluble substrate and the antigen to be detected. The term "other antibody" means antibody specific for all antibodies of the immunoglobulin class to which the first antibody belongs, e.g. all sheep IgG, rabbit IgG or rabbit IgM. If e.g. the. the first antibody is an immunoglobulin that is formed in a special animal, e.g. a sheep, the second antibody is an antibody against immunoglobulins of this species, regardless of their antibody specificities, which are formed in a different animal, e.g. a donkey.
Den nye metoden kan lett tilpasses for påvisning og målingThe new method can be easily adapted for detection and measurement
av en rekke antigener. Foruten antigener kan serum med passende innhold og vevsproteiner som a^-foetoprotein, c^-haptoglobulin og karsinoembryonisk antigen, haptener som hormoner, f.eks. trijodtyronin norepinefrin, tyroid-stimulerende hormon, follikel-stimulerende hormon, luteniserende hormon, insulin og tyroksin, steroider, f.eks. kortisol, pro-gesteron, østron, østradiol og testosteron, droger, f.eks. morfin, amfetamin, barbiturater, difenylhydantoin, meto-treksat og gentamycin, vitaminer og næringsmiddeltilset-ninger, f.eks. pyridoksal-5-fosfat og aflotoksin, herbici-der, insekticider og nitrosourinstoffer også brukes. I hvert tilfelle må antigenet først bindes enten kjemisk eller mindre gjerne fysikalsk til et egnet underlag, f.eks. på den måten som nærmere beskrives i det følgende. of a variety of antigens. Besides antigens, serum with appropriate content and tissue proteins such as α^-fetoprotein, c^-haptoglobulin and carcinoembryonic antigen, haptens such as hormones, e.g. triiodothyronine norepinephrine, thyroid-stimulating hormone, follicle-stimulating hormone, luteinizing hormone, insulin and thyroxine, steroids, e.g. cortisol, pro-gesterone, estrone, estradiol and testosterone, drugs, e.g. morphine, amphetamine, barbiturates, diphenylhydantoin, methotrexate and gentamycin, vitamins and nutritional supplements, e.g. pyridoxal-5-phosphate and aflotoxin, herbicides, insecticides and nitrosourinous substances are also used. In each case, the antigen must first be bound either chemically or, less often, physically to a suitable substrate, e.g. in the manner described in more detail below.
Det må bemerkes at det enzymmarkerte andre antistoffets natur på ingen måte avhenger av antigenet som skal påvises. Det er bare nødvendig å fremkalle det første antistoffet i et dyr av samme art som det som fremkalte immunoglobulinet som brukes til å stimulere produksjonen i andre arter av det andre It must be noted that the nature of the enzyme-labeled second antibody in no way depends on the antigen to be detected. It is only necessary to elicit the first antibody in an animal of the same species as that which elicited the immunoglobulin used to stimulate the production in other species of the second
antistoffet. Det er derfor ikke noe behov for å frembringéthe antibody. There is therefore no need to produce
et stort spektrum av enzymmarkerte antistoffer, og vanskelig-hetene som ligger -i å knytte enzymene til antistoffene må derfor bare løses en gang. a large spectrum of enzyme-marked antibodies, and the difficulties involved in linking the enzymes to the antibodies therefore only have to be solved once.
Ethvert enzym kunne anvendes som en markering på det andre antistoffet. Oksydaser som pepperrot-peroksydase, hydrolytiske enzymer som alkalisk fosfatase eller dehydrogenaser som glykose-6-fosfat-dehydrogenase er særlig egnet. Ideelt bør et enzym som bruks som markering ha de følgende egenskaper: (1) det er relativt billig tilgjengelig i høy renhet, (2) det har en høy aktivitet pr. vektenhet, (3) det er lett vannløselig og stabilt under normale lagringsbetingelser, (4) det gjør det mulig å bruke en målemetode som er enkel, rask, sensibel og billig, (5) det bør være fritt for biologiske væsker og (6) biologiske væsker bør ikke inneholde noen substratinhibitorer eller aktivatorer for det, (7) det bør inneholde egnede, kjemiske grupper for konjugering til et annet antistoff som gjør det mulig at konjugering bare har en minimal virkning på både enzym og antistoffaktivitet. 3-galaktosidase tilfreds-stiller disse kravene. Andre mulige, men mindre foretrukne enzymer er glukoseoksydase, acetylcholinesterase-glukoamylase, lysozym, glukose-6-fosfat-dehydrogenase og malatdehydrogenase.. Any enzyme could be used as a label on the second antibody. Oxidases such as horseradish peroxidase, hydrolytic enzymes such as alkaline phosphatase or dehydrogenases such as glucose-6-phosphate dehydrogenase are particularly suitable. Ideally, an enzyme used as a marker should have the following properties: (1) it is relatively cheaply available in high purity, (2) it has a high activity per unit weight, (3) it is readily water-soluble and stable under normal storage conditions, (4) it enables the use of a measurement method that is simple, rapid, sensitive and inexpensive, (5) it should be free from biological fluids and (6) biological fluids should not contain any substrate inhibitors or activators for it, (7) it should contain suitable chemical groups for conjugation to another antibody that enable conjugation to have only a minimal effect on both enzyme and antibody activity. 3-galactosidase satisfies these requirements. Other possible but less preferred enzymes are glucose oxidase, acetylcholinesterase-glucoamylase, lysozyme, glucose-6-phosphate dehydrogenase and malate dehydrogenase.
Det brukte enzymet' kobles fortrinnsvis til det andre antistoffet ved å bruke koblingsmetoden som nedenfor er beskrevet, The enzyme used is preferably linked to the second antibody using the linking method described below,
som kan anvendes på enhver kombinasjon av antistoff og enzym forutsatt at sistnevnte inneholder en merkaptogruppe eller kan modifiseres slik at det vil inneholde en slik gruppe. Imidlertid kan om nødvendig andre koblingsmetoder brukes. Disse innbefatter which can be applied to any combination of antibody and enzyme provided that the latter contains a mercapto group or can be modified so that it will contain such a group. However, if necessary, other connection methods can be used. These include
a) Ett-trinns glutaraldehydbinding hvori glutaraldehydet brukes til å knytte proteiner i en komplisert reaksjon som gir a) One-step glutaraldehyde binding in which the glutaraldehyde is used to link proteins in a complicated reaction that gives
heterogene konjugater med høy molekylvekt, (se Avrameas, S., Immunochemistry 6^43 (1969)). high molecular weight heterogeneous conjugates, (see Avrameas, S., Immunochemistry 6^43 (1969)).
b) To-trinns glutaraldehydbinding hvori enzymet pepperrot-peroksydase reagerer med bare ett molekyl glutaraldehyd. Dette begrenser enzym-enzymkonjugering og er enforbedring av én-trinns-metoden. Imidlertid kan denne metoden sannsynligvis ikke anvendes på mange enzymer foruten pepperrot-peroksydase, da disse vil reagere med mer enn ett molekyl-glutaraldehyd. b) Two-step glutaraldehyde binding in which the enzyme horseradish peroxidase reacts with only one molecule of glutaraldehyde. This limits enzyme-enzyme conjugation and is an improvement over the one-step method. However, this method probably cannot be applied to many enzymes besides horseradish peroxidase, as these will react with more than one molecule of glutaraldehyde.
(se Avrameas. S and Ternynck, Immunochemistry £5 1175 (1971)). c) Oksydasjon av sakkaridrester i enzymet fulgt av Schiff-basedannelse. Pepperrot-peroksydase har flere oligosakkaraid-grupper, og oksydasjonen av dem til aldehydgrupper (ved bruk av perjodat) som kan reagere med aminogrupper er basert på denne bindingsmetoden. Andre enzymer kan også inneholde oligo-sakkaridgrupper og kan i prinsippet også brukes. Imidlertid, dannes konjugater med høy molekylvekt ved denne fremgangsmåten. (Nakane P.K. + Kawaoki, A. J. Histochem. Cytochem. 2_2 108.4 (1974)). d) Dimaleimid-binding ved bruk av N,N<1->o-fenylendimaleimid etter innføring av -SH-grupper i antistoffet ved bruk av 2-merkaptoetylamin som reduserer forut eksisterende -S-S- broer til to -SH-grupper. (Kato et .al European J. Biochem. 6_2 285 (see Avrameas. S and Ternynck, Immunochemistry £5 1175 (1971)). c) Oxidation of saccharide residues in the enzyme followed by Schiff base formation. Horseradish peroxidase has several oligosaccharide groups, and their oxidation to aldehyde groups (using periodate) which can react with amino groups is based on this binding method. Other enzymes can also contain oligo-saccharide groups and can in principle also be used. However, high molecular weight conjugates are formed by this method. (Nakane P.K. + Kawaoki, A.J. Histochem. Cytochem. 2_2 108.4 (1974)). d) Dimaleimide binding using N,N<1->o-phenylenedimaleimide after introduction of -SH groups in the antibody using 2-mercaptoethylamine which reduces previously existing -S-S- bridges to two -SH groups. (Kato et al European J. Biochem. 6_2 285
(1976)). e) Andre bifunksjonelle reagenser som kan brukes omfatter toluen-2 , 4-diisocyanat, p_' ,p-dif luor-m,m' -dinitrof enylsulfon, l-cykloheksyl-3-(2-morfolinoetyl)-karbodiimid, men disse gir generelt dårligere resultater enn de foran beskrevne. f) Binding kan også oppnås med hetero-bifunksjonelle reagenser, dvs. reagenser som inneholder to forskjellige funksjo-nelle ' grupper i hvert molekyl, f.eks. m-maleimidobenzyl N-hydroksy-succinimidester, som har vært brukt i en to-trinns reaksjon for å koble insulin til 3-galaktosidase. (T. Kita-gawa + T. Aikawa J. Biochem. 1_ 9 233 - 236 (1976)). g) Ikke-kovalent kryssbinding ved f.eks. å koble antistoffer til pepperrot-peroksydase for å danne et konjugat som er ikke-kovalent, men relativt stabilt av natur. Denne metoden har de ulemper at (i) Ved lagring kan enzymantistoffkonjugatet dissosiere lang-<!>somt. (1976)). e) Other bifunctional reagents that can be used include toluene-2,4-diisocyanate, p_',p-difluoro-m,m'-dinitrofenyl sulfone, 1-cyclohexyl-3-(2-morpholinoethyl)carbodiimide, but these give generally worse results than those described above. f) Binding can also be achieved with hetero-bifunctional reagents, i.e. reagents containing two different functional groups in each molecule, e.g. m-maleimidobenzyl N-hydroxy-succinimide ester, which has been used in a two-step reaction to couple insulin to 3-galactosidase. (T. Kitagawa + T. Aikawa J. Biochem. 1_9 233-236 (1976)). g) Non-covalent cross-linking by e.g. to link antibodies to horseradish peroxidase to form a conjugate that is non-covalent but relatively stable in nature. This method has the disadvantages that (i) During storage, the enzyme-antibody conjugate can dissociate slowly.
(ii) Antistoffene kan inhibere enzymene de er fremkalt mot.(ii) The antibodies can inhibit the enzymes they are raised against.
(ii) Det tar flere måneder å fremstille antistoffene og antistoffer som er frembrakt av forskjellige fremstillere har forskjellige egenskaper. (ii) It takes several months to produce the antibodies and antibodies produced by different manufacturers have different properties.
Grunnet større hastighet og letthet som er forbundet medDue to the greater speed and ease associated with
arbeid med relativt store mengder antistoffer, er det ofte lettere hvis de første og andre antistoffer fremstilles i relativt store dyr som hest, esel eller sau fremfor små dyr som rotte, mus, guinea-gris eller hamstere selv om bruk av sådanne ikke er utelukket. Som allerede antydet må det første og andre antistoff frembringes i forskjellige typer dyr. Man har funnet det lett å frembringe det første antistoffet hos sau og det andre antistoffet hos et esel, men et hvilket som helst annet par forskjellig typer kan anvendes om ønsket. work with relatively large amounts of antibodies, it is often easier if the first and second antibodies are produced in relatively large animals such as horses, donkeys or sheep rather than small animals such as rats, mice, guinea pigs or hamsters, although the use of such is not excluded. As already indicated, the first and second antibodies must be produced in different types of animals. It has been found easy to raise the first antibody in a sheep and the second antibody in a donkey, but any other pair of different types can be used if desired.
Muligheten for interferens ved det andre stoffet i antigen-, første-antistoffreaksjonen nedsettes hvis det andre antistoff ikke frembringes mot alt av det første antistoffet, men bare mot Fc-fragmentet av immunoglobulinet som utgjør det første antistoffet. The possibility of interference by the second substance in the antigen-first-antibody reaction is reduced if the second antibody is not produced against all of the first antibody, but only against the Fc fragment of the immunoglobulin that constitutes the first antibody.
De andre antistoffene kan hovedsakelig fremstilles på kjentThe other antibodies can mainly be produced in a known manner
måte, men den foretrukne metoden er å 'prime" dyrene etter-way, but the preferred method is to 'prime' the animals after
fulgt av fremstilling av antistoffer og å gi"booster-dose-ringer når serum-antistoffnivåene har passert toppen. Blodet inneholder normalt maksimale antistoffnivåer kort.etter"boos-ting. Når et passende høyt nivå (eller et maksimalt nivå) followed by production of antibodies and giving "booster dose" rings when serum antibody levels have passed the peak. The blood normally contains peak antibody levels shortly after "boost" things. When a suitably high level (or a maximum level)
av anti-immunoglobulin har akkumulert i blodstrømmen hos dyret tappes sistnevnte for blod og serumet som inneholder anti-immunoglobulinet fraskilles. of anti-immunoglobulin has accumulated in the bloodstream of the animal, the latter is bled and the serum containing the anti-immunoglobulin is separated.
Det andre antistoffet renses fortrinnsvis ved å inkubere esel-antiserum med en egnet immunoadsorbent, f.eks. sefarose eller annen uløselig bærer som har blitt aktivert først ved reaksjon \ The second antibody is preferably purified by incubating donkey antiserum with a suitable immunoadsorbent, e.g. sepharose or other insoluble carrier that has been activated first by reaction \
i med et egnet bifunksjonelt reagens, eksempelvis l,4-bis(2,3-epoksypropoksy)butan og så med en løsning av immunoglobulinet . (eller Fc-fragment av dette) som brukes for å fremkalle det andre antistoffet. Dette gir en immuno-adsorbent som er spesifikk for det andre antistoffet, og sistnevnte kan renses ved adsorpsjon på immunoadsorbenten fulgt av eluering, før eller etter markering med et enzym. i with a suitable bifunctional reagent, for example 1,4-bis(2,3-epoxypropoxy)butane and then with a solution of the immunoglobulin. (or Fc fragment thereof) used to raise the second antibody. This provides an immunoadsorbent that is specific for the second antibody, and the latter can be purified by adsorption onto the immunoadsorbent followed by elution, before or after labeling with an enzyme.
For å fremstille det markerte andre antistoffet foretrekkes det å behandle immunoadsorbenten med det andre antistoffet adsorbert på dette med et reagens som metylmerkaptobutyrimidathydroklorid for å modifisere aminogruppene i antistoffet og innføre fra 3-5 'tiolgrupper i hvert antistoffmolekyl. Det andre antistoffet med innebygde merkaptogrupper elueres så fra immunoab-sorbenten og. behandles slik at enzymet bindes til dette. Fortrinnsvis behandles det med N,N'-o-fenylen-bis-maleimid og omsettes så med renset (3-galaktosidase som normalt stammer fra Escherichia coil. Enzym-sekundær-antistoffkonjugatet renses To prepare the labeled second antibody, it is preferred to treat the immunoadsorbent with the second antibody adsorbed thereon with a reagent such as methyl mercaptobutyrimidate hydrochloride to modify the amino groups in the antibody and introduce from 3-5' thiol groups into each antibody molecule. The second antibody with embedded mercapto groups is then eluted from the immunoabsorbent and. is treated so that the enzyme binds to it. Preferably, it is treated with N,N'-o-phenylene-bis-maleimide and then reacted with purified (3-galactosidase which normally originates from Escherichia coil. The enzyme-secondary-antibody conjugate is purified
så til slutt ved kromatografi på en dietylaminoetylagarose-gel eller annen egnet adsorbent for å adskille konjugatet fra uomsatt enzym og uomsatt annet antistoff. then finally by chromatography on a diethylaminoethyl agarose gel or other suitable adsorbent to separate the conjugate from unreacted enzyme and unreacted other antibody.
Det første antistoffet fremkalles i et egnet dyr ved hjelp av kjente teknikker. Der hvor, som ofte tilfellet er, antigenet som skal påvises eller måles er et hapten med relativt enkel kjemisk struktur f.eks. trijodtyronin, østradiol, gentamycin, fenytoin eller morfin, er det ikke i stand til i seg selv å frembringe dannelsen av det første antistoffet. Det er derfor nødvendig å konjugere antigenet med et bæremolekyl for å The first antibody is raised in a suitable animal using known techniques. Where, as is often the case, the antigen to be detected or measured is a hapten with a relatively simple chemical structure, e.g. triiodothyronine, estradiol, gentamycin, phenytoin or morphine, it is not capable by itself of producing the formation of the first antibody. It is therefore necessary to conjugate the antigen with a carrier molecule in order to
gi et konjugert molekyl som er i stand til å frembringe produksjonen av antistoffet. For dette formål er det hensikts-messig å konjugere antigenet med et lett tilgjengelig protein som er fremmed for dyret som det første antistoffet skal fremkalles i,' f.eks. bovinserumalbumin (BSA). Konjugeringen kan utføres ved omsetning av albuminet eller annet protein med f.eks. l-etyl-3-(3-dimetylaminopropyl)-karbodiimid, fulgt av omsetning av produktet med antigenet som for denne reaksjonen må inneholde en amino eller karboksylgruppe. Andre kjente konjugasjonsmetoder kan brukes om ønsket, og ideelt provide a conjugated molecule capable of eliciting the production of the antibody. For this purpose, it is appropriate to conjugate the antigen with an easily accessible protein which is foreign to the animal in which the first antibody is to be elicited, e.g. bovine serum albumin (BSA). The conjugation can be carried out by reacting the albumin or other protein with e.g. 1-ethyl-3-(3-dimethylaminopropyl)-carbodiimide, followed by reaction of the product with the antigen which for this reaction must contain an amino or carboxyl group. Other known conjugation methods can be used if desired, and ideally
sett skulle ca. 3-30 antigenmolekyler innebygges i hvert albuminmolekyl eller andre proteiner med høy molekylvekt. set should approx. 3-30 antigen molecules are built into each albumin molecule or other proteins with a high molecular weight.
Det første antistoffet kan frembringes ved å injisere antigenet eller antigen-konjugatet i et egnet dyr, f.eks. en sau, gjentatt The first antibody can be produced by injecting the antigen or antigen-conjugate into a suitable animal, e.g. a sheep, repeated
over en periode på uker eller måneder inntil et tilstrekkelig høyt antistoffinnhold med de ønskede bindingsegenskaper har akkumulert seg i dyrets blodstrøm. Dyret tappes så for blod og antiserumet fraskilles. over a period of weeks or months until a sufficiently high antibody content with the desired binding properties has accumulated in the animal's blood stream. The animal is then bled and the antiserum separated.
Det første antistoffet renses 'Så fortrinnsvis ved kontakt med antigenet som antistoffet ble fremstilt mot eller en beslektet forbindelse på en uløselig bærer. Etter absorpsjon kan antistoffene elueres, f.eks. med guanidinhydrokloridløsning ved høy eller lav pH med løsninger med høy saltkonsentrasjon eller med ikke-vandige løsningsmidler og deretter dialyseres mot en passende puffer for å fjerne elueringsmidlet. The first antibody is purified 'So preferably by contact with the antigen against which the antibody was raised or a related compound on an insoluble support. After absorption, the antibodies can be eluted, e.g. with guanidine hydrochloride solution at high or low pH with solutions of high salt concentration or with non-aqueous solvents and then dialyzed against an appropriate buffer to remove the eluent.
Den uløselige bæreren som brukes for å holde antigenet eller den beslektede forbindelse både i rensingsprosessen som nett-opp er nevnt og i fremgangsmåten ifølge oppfinnelsen kan være ethvert egnet vann-uløselig materiale som antigenet eller den beslektede forbindelse lett kan bindes tilstrekkelig til for å sikre at det forblir knyttet til dette under reaksjo-nene som inngår i rense- eller prøve-metoden som kommer på tale. Selv om det er mulig å bruke en bærer som ganske enkelt adsorberer antigenet slik tilfellet er i systemet som er beskrevet av Engvall et al i allerede nevnte publikasjon, ' foretrekkes det å binde antigenet kjemisk til bæreren, og dette betyr at det er nødvendig at bæreren inneholder funk-sjonelle grupper som de nødvendige reaksjoner kan finne sted ,med. Bærere bestående av glass, nylon, polyakrylamid, cel-lulose eller dekstran kan brukes. Visse typer immunoadsor-benter som inneholder hydroksylgrupper kan omsettes med 1,4-bis(2,3-epoksypropoksy)butan og produktet omsettes med antigenet. Denne metoden er funnet å være enkel, sikker, effek-tiv og gi en stabil kovalent binding forutsatt at antigenet eller den beslektede forbindelsen inneholder hydroksyl, amino eller tiolgrupper. Kravene til en immunoadsorbent for rensing av antistoffer er ikke nødvendigvis de samme som sådanne for. The insoluble carrier used to hold the antigen or related compound both in the above-mentioned purification process and in the method of the invention may be any suitable water-insoluble material to which the antigen or related compound can be readily bound sufficiently to ensure that it remains linked to this during the reactions included in the cleaning or testing method in question. Although it is possible to use a carrier that simply adsorbs the antigen as is the case in the system described by Engvall et al in the already mentioned publication, it is preferred to bind the antigen chemically to the carrier, and this means that it is necessary that the carrier contains functional groups with which the necessary reactions can take place. Carriers consisting of glass, nylon, polyacrylamide, cellulose or dextran can be used. Certain types of immunoadsorbers containing hydroxyl groups can be reacted with 1,4-bis(2,3-epoxypropoxy)butane and the product is reacted with the antigen. This method has been found to be simple, safe, effective and provide a stable covalent bond provided that the antigen or related compound contains hydroxyl, amino or thiol groups. The requirements for an immunoadsorbent for the purification of antibodies are not necessarily the same as for such.
I I I I
immunoadsorbenten i den virkelige prøven. the immunoadsorbent in the real sample.
Fremgangsmåten ifølge foreliggende oppfinnelse kan utføres på The method according to the present invention can be carried out in
mange forskjellige måter. Mengden av første antistoff og derfor markeringen som er knyttet til det uløselige antigenet står i et inverst forhold til mengden av antigen i prøven som skal bestemmes. Enzymaktiviteten, enten fri eller knyttet til det uløselige eller bårede antigenet måles. Noen av de spesifikke måter.for å utføre den nye fremgangsmåten er som følger. many different ways. The amount of first antibody and therefore the marker associated with the insoluble antigen is inversely related to the amount of antigen in the sample to be determined. The enzyme activity, either free or bound to the insoluble or supported antigen is measured. Some of the specific ways to carry out the new procedure are as follows.
I en første metode inkuberes det første antistoffét med en prøve som inneholder- antigenet som skal bestemmes. Etter at reaksjonen er fullstendig tilsettes det bårede antigenet og blandingen inkuberes igjen. Den faste fasen separeres så fra væskefasen, vaskes og blandes med overskudd av det enzymmarkerte andre antistoffet. Etter inkubering separeres igjen den faste fasen og vaskes. Aktivitetsmengden som ble funnet i den uløselige fraksjonen (faste fase) er omvendt proporsjonal med mengden av antigen som foreligger i prøven, dvs. supernatanten er direkte proporsjonal med den. Begge fraksjonene kan måles. In a first method, the first antibody is incubated with a sample containing the antigen to be determined. After the reaction is complete, the supported antigen is added and the mixture is incubated again. The solid phase is then separated from the liquid phase, washed and mixed with an excess of the enzyme-labelled second antibody. After incubation, the solid phase is separated again and washed. The amount of activity found in the insoluble fraction (solid phase) is inversely proportional to the amount of antigen present in the sample, i.e. the supernatant is directly proportional to it. Both fractions can be measured.
I en annen metode omsettes det første antistoffet med det enzymmarkerte andre antstoff for å danne et kompleks som så settes til overskudd av prøven som inneholder antigenet som skal bestemmes og inkuberes. Den uløselige bæreren som bærer antigenet tilsettes så, og etter inkubering separeres de faste og flytende fasene. Bestemmelsen av enzymaktiviteten til den flytende fase gir et resultat som er direkte proporsjonalt med mengden av antigen i prøven. In another method, the first antibody is reacted with the enzyme-labelled second antibody to form a complex which is then added to the excess of the sample containing the antigen to be determined and incubated. The insoluble carrier carrying the antigen is then added, and after incubation the solid and liquid phases are separated. The determination of the enzyme activity of the liquid phase gives a result that is directly proportional to the amount of antigen in the sample.
I en tredje metode inkuberes komplekset av første og andre antistoffer, prøven som inneholder antigenet som skal bestemmes, og bæreren som bærer antigenet simultant, og etter separasjon av den faste fasen, bestemmes enzymaktiviten i den flytende fasen. Igjen er resultatet direkte proporsjonalt med konsentrasjonen av antigen i prøven. In a third method, the complex of first and second antibodies, the sample containing the antigen to be determined, and the carrier carrying the antigen are incubated simultaneously, and after separation of the solid phase, the enzyme activity in the liquid phase is determined. Again, the result is directly proportional to the concentration of antigen in the sample.
Som allerede antydet må for en kvantitativ bestemmelse ved den; As already indicated, for a quantitative determination by it;
første og andre metoden ovenfor, mengden av første brukte antistoff være i overskudd av hva som kreves for å omsette alt antigenet i prøven, og bæreren som bærer antigenet må tilsettes i et tilstrekkelig overskudd for å sikre fullstendig adsorpsjon av alt det første antistoffet som ikke har reagert med antigenet i prøven. I praksis er den letteste måten å sikre dette å utføre en serie bestemmelser med forskjellige konsentrasjoner av første antistoff i geometriske eller aritmetiske serier. Hvis dette gjøres er det en enkel sak å finne en passende konsentrasjon av det første antistoffet som muliggjør utførelsen av en nøyaktig bestemmelse. first and second methods above, the amount of first antibody used be in excess of what is required to react all the antigen in the sample, and the carrier carrying the antigen must be added in a sufficient excess to ensure complete adsorption of all the first antibody that has not reacted with the antigen in the sample. In practice, the easiest way to ensure this is to perform a series of determinations with different concentrations of first antibody in geometric or arithmetic series. If this is done, it is a simple matter to find a suitable concentration of the first antibody which enables the performance of an accurate determination.
De følgende eksempler illustrerer oppfinnelsen.The following examples illustrate the invention.
i i Eksempel 1 i i Example 1
1. Fremstilling og markering av annet antistoff1. Production and marking of other antibody
(a) Fremstilling av Fc~fragment av saueimmunoglpbulin(a) Preparation of Fc fragment of ovine immunoglobulin
( IgG)(IgG)
Fremgangsmåten som anvendes for fremstilling av sau Fc-fragment er basert påPorters (R.R. Porter, 1959 , Biochem J. 7_3, 119). The method used for the production of sheep Fc fragment is based on Porter's (R.R. Porter, 1959, Biochem J. 7_3, 119).
320 ml serum ble samlet fra 28 sauer. 150 ml serum ble inkubert under røring i et isbad med 30 g fuktig dietylaminoetyl (DEAE) - A 50 Sephadex som forut var ekvilibrert med 10 mM fosfatpuffer ved pH 6,5. Etter 1 time ble gelen filtrert på en grov sintret glasstrakt og vasket med 50 ml av 10 mM fosfatpuffer pH 6,5. Filtratet pluss vask ble inkubert en gang til med 30 g fuktig DEAE-Sephadex, filtrert og vasket med 100 ml fosfatpuffer. Filtrat og vask (300 ml) ble behandlet med 150 ml mettet (NH^^ S0^-løsning som langsomt ble tilsatt den kontinuerlige rørte løsningen. Fellingen ble oppsamlet og vasket med 100 ml 20% (NH^) ^SO^-l.øsning. Den endelige fellingen ble oppløst i 50 ml 50 mM fosfatpuffer ved pH 8,0 320 ml of serum was collected from 28 sheep. 150 ml of serum was incubated with stirring in an ice bath with 30 g of moist diethylaminoethyl (DEAE) - A 50 Sephadex previously equilibrated with 10 mM phosphate buffer at pH 6.5. After 1 hour, the gel was filtered on a coarse sintered glass funnel and washed with 50 ml of 10 mM phosphate buffer pH 6.5. The filtrate plus wash was incubated once more with 30 g of moist DEAE-Sephadex, filtered and washed with 100 ml of phosphate buffer. Filtrate and wash (300 mL) were treated with 150 mL of saturated (NH^^SO^ solution which was slowly added to the continuously stirred solution. The precipitate was collected and washed with 100 mL of 20% (NH^)^SO^-l. The final precipitate was dissolved in 50 ml of 50 mM phosphate buffer at pH 8.0
og dialysert natten over ved 4°C mot 5 1 destillert vann. Løsningen ble så frysetørket. and dialyzed overnight at 4°C against 5 1 of distilled water. The solution was then freeze-dried.
1,, 50 g frysetørket sau IgG som var oppnådd slik ble oppløst i 1.50 g of freeze-dried sheep IgG obtained in this way was dissolved in
50 ml 0,1M tris-HCl-puffer ved pH 7,2 som inneholdt 10 mM cystein og 2 mM EDTA. Pufferen ble fremstilt umiddelbart 50 ml of 0.1 M tris-HCl buffer at pH 7.2 containing 10 mM cysteine and 2 mM EDTA. The buffer was produced immediately
før bruk. 0,6 ml av en krystallinsk suspensjon av Papain (Sigma.to ganger krystallisert) i 50 mM-acetat-puffer ved pH 4,5 ble tilsatt. Løsningen ble inkubert ved 37°C i 4 timer under leilighetsvis rysting. 0,222 g jodacetamid ble så tilsatt og løsningen umiddelbart satt på en kolonne (80 x 5 cm) G.100 Sephadex ekvilibrert med 10 mM-acetat-puffer ved pH 5,6 ved 4°C. before use. 0.6 ml of a crystalline suspension of Papain (Sigma, twice crystallized) in 50 mM acetate buffer at pH 4.5 was added. The solution was incubated at 37°C for 4 hours with occasional shaking. 0.222 g of iodoacetamide was then added and the solution immediately applied to a column (80 x 5 cm) of G.100 Sephadex equilibrated with 10 mM acetate buffer at pH 5.6 at 4°C.
Den andre toppen som ble eluert fra kolonnen med 10 mM-acetat-puf f er ved pH 5,6 inneholder en blanding av Fc"og F tø-fragmenter. Den første toppen inneholder ubrukt IgG.. Den andre toppen ble satt på en kolonne (40 x 2,5 cm) av karboksymetylcellulose (Whatman CM 32) som var ekvilibrert med 10 mM-acetat-puffer ved pH 5,6 ved 4°C. En topp ble eluert fra kolonnen ved vasking med 10 mM-acetat-puffer pH 5,6 og flere små topper og en hovedtopp ble eluert når en gradient fra 10 mM-til 500 mM-acetat pH 5,6 ble påført (1000 ml i hvert rom av en gradientblander). Hovedtoppen ble oppsamlet og rekromato-grafert på karboksymetyl-cellulosekolonnen. Denne gangen ble en gradient fra 10 mM- til 300 mM-acetat-puffer ved pH 5,6 The second peak eluted from the column with 10 mM acetate buffer f is at pH 5.6 contains a mixture of Fc" and F thaw fragments. The first peak contains unused IgG. The second peak was applied to a column (40 x 2.5 cm) of carboxymethyl cellulose (Whatman CM 32) that was equilibrated with 10 mM acetate buffer at pH 5.6 at 4° C. A peak was eluted from the column by washing with 10 mM acetate buffer pH 5.6 and several small peaks and a major peak were eluted when a gradient from 10 mM to 500 mM acetate pH 5.6 was applied (1000 mL in each compartment of a gradient mixer).The major peak was collected and rechromatographed on carboxymethyl cellulose column, this time a gradient from 10 mM to 300 mM acetate buffer at pH 5.6
med 1000 ml i et blandekar påført. Én enkelt topp ble eluert.. Denne ble oppsamlet, fullstendig dialysert mot destillert vann og frysetørket. with 1000 ml in a mixing vessel applied. A single peak was eluted. This was collected, completely dialyzed against distilled water and freeze-dried.
b) Fremstilling av annet antistoff (esel-antisau-immunoglobulin) b) Production of other antibody (donkey-anti-sheep-immunoglobulin)
En stabil emulsjon ble fremstilt ved å blande 1 del saltløs-ning som inneholdt sau Fc~fragment (0,7 5 mg/ml) og Bacillus Calmette-Buerin (1,5 mg/ml) med 2 deler Marcol 52 hjelpestoff. 6 intramuskulære injeksjoner (1 ml) av emulsjonen ble gitt i nedre legg. Fremstillingen av esel-antisau-antistoffer ble regulert og dyret var klart for forsterkning etter 2 måneder. En emulsjon bestående av 2 deler hjelpestoff til 1 del salt-løsning (sau Fc 0,75 mg/ml) ble injisert intramuskulært på 6 steder (0,5 ml) i de nedre leggene. Bloduttakene 10 dager senere og i den neste måned inneholdt store mengder antistoffer. A stable emulsion was prepared by mixing 1 part saline solution containing sheep Fc fragment (0.75 mg/ml) and Bacillus Calmette-Buerin (1.5 mg/ml) with 2 parts Marcol 52 excipient. 6 intramuscular injections (1 ml) of the emulsion were given in the lower leg. The production of donkey-anti-sheep antibodies was regulated and the animal was ready for boosting after 2 months. An emulsion consisting of 2 parts excipient to 1 part saline solution (sheep Fc 0.75 mg/ml) was injected intramuscularly at 6 sites (0.5 ml) in the lower legs. The blood samples 10 days later and in the following month contained large amounts of antibodies.
c) Fremstilling av immunoadsorbent for rensing av esel-anti- sau- immunoglobulin c) Production of immunoadsorbent for purification of donkey anti-sheep immunoglobulin
Sepharose 4B ble aktivertmed 1,4-bis-(2,3-epoksypropoksy)-butan ved å inkubere like volumer av gelen, bisepoksydet og 0,6M NaOH som inneholdt 2 mg pr. ml natriumborhydrid under kontinuerlig røring ved 25°Ci 8 timer og så vasket. Sau IgG ble fremstilt fra et forråd av normalt serum ved felling med 33% ammnoiumsulfatløsning. En løsning av sau IgG i 0,1M NaHCO^-puffer ved pH 10 ble tilsatt ved bruk av 10 mg sau Sepharose 4B was activated with 1,4-bis-(2,3-epoxypropoxy)-butane by incubating equal volumes of the gel, the bisepoxide and 0.6M NaOH containing 2 mg per ml of sodium borohydride with continuous stirring at 25°Ci for 8 hours and then washed. Sheep IgG was prepared from a pool of normal serum by precipitation with 33% ammonium sulfate solution. A solution of sheep IgG in 0.1 M NaHCO 3 buffer at pH 10 was added using 10 mg of sheep
IgG pr. ml gel. Den aktiverte gelen ble inkubert med IgG i 48 timer og immunoadsorbenten til slutt vasket og behandlet IgG per ml of gel. The activated gel was incubated with IgG for 48 h and the immunoadsorbent finally washed and processed
I IN
med 0,1M etanolamin ved pH 10 i 24 timer. with 0.1M ethanolamine at pH 10 for 24 hours.
(d) Rensing og markering av esel- anti- sau annet antistoff (d) Purification and labeling of donkey anti-sheep other antibody
Esel-anti-sau-immunoglobulin ble renset ved å inkubere esel-anti-serum (fremstilt som ovenfor beskrevet) med immunoadsorbenten. Tiolgrupper ble innført i immunoglobulinet' mens det var adsorbert i immunoadsorbenten ved bruk av metyl-4-merkapto-butyr.imidat/HCl for å modifsere immunoglobulinets aminogrupper. Innføringsgraden ble begrenset til å gi mellom 3 og 5 tiolgrupper pr. globulinmolekyl. Donkey anti-sheep immunoglobulin was purified by incubating donkey anti-serum (prepared as described above) with the immunoadsorbent. Thiol groups were introduced into the immunoglobulin while it was adsorbed to the immunoadsorbent using methyl-4-mercapto-butyrimidate/HCl to modify the amino groups of the immunoglobulin. The degree of introduction was limited to give between 3 and 5 thiol groups per globulin molecule.
Immunoadsorbent-atnistoffkomplekset ble vasket og supenderti 0,1M N-etylmorfolin/HC1 ved pH 7,5 ved en konsentrasjon på 1 ml. immunoadsorbent i et totalvolum på 10 ml. En løsning av metyl-4-merkaptobutyrimidat/HCl i 0,2M Na2C03(10 mg/ml) ble fremstilt umiddelbart før bruk. 0,1 ml av denne løsning ble så tilsatt for hver 10 ml av suspensjonen. Suspensjonen ble rørt 30 min. ved romtemperatur og så vasket med 0,1M N-etylmor-folin/HCl ved pH 7,5 som inneholdt 1 mg ditiotreitol pr. 10 ml puffer. Gelen ble så grundig vasket med HC1 som inneholdt 0,1M NaCl til pH 3,5.. The immunoadsorbent-antigen complex was washed and suspended in 0.1 M N-ethylmorpholine/HCl at pH 7.5 at a concentration of 1 ml. immunoadsorbent in a total volume of 10 ml. A solution of methyl 4-mercaptobutyrimidate/HCl in 0.2M Na 2 CO 3 (10 mg/ml) was prepared immediately before use. 0.1 ml of this solution was then added for every 10 ml of the suspension. The suspension was stirred for 30 min. at room temperature and then washed with 0.1 M N-ethylmorpholine/HCl at pH 7.5 which contained 1 mg of dithiothreitol per 10 ml puff. The gel was then thoroughly washed with HCl containing 0.1 M NaCl to pH 3.5.
Immunoglobulinet som inneholdt innebygde tiolgrupper som var fremstilt slik ble. eluert med HC1 som inneholdt 0,1M NaCl ved pH 2,5. Den greieste metoden for å oppnå dette var å pakke immunoadsorbenten i en liten kolonne og samle effluenten i rør som inneholdt puffer. Da det neste fremstillingstrinnet utføres i 0,1M acetatpuffer ved pH 5,0, ble effluenten oppsamlet i tilstrekkelig 0,1M acetat ved pH 6,0 til "å gi en endelig pH på 5,0. The immunoglobulin containing embedded thiol groups thus prepared was eluted with HCl containing 0.1 M NaCl at pH 2.5. The simplest method to achieve this was to pack the immunoadsorbent in a small column and collect the effluent in tubes containing puffs. As the next preparation step is carried out in 0.1M acetate buffer at pH 5.0, the effluent was collected in sufficient 0.1M acetate at pH 6.0 to give a final pH of 5.0.
2 ml av 0,1M acetatpuffer ved pH 5,0 som * inneholdt 2,5 mg av immunoglobulinet som var modifsert med tiolgrupper ble kjølt i et isbad. Denne løsning ble så langsomt satt dråpe for dråpe til en 1 ml mettet løsning av N,N<1->o-fenylen-bis-maleimid i 0,1M acetatpuffer ved pH 5,0 på et isbad. Blandingen ble deretter inkubert ved 30°C i 20 min.. Immunoglobulinet ble så adskilt fra overskuddet N,N-o-fenylen-bis- 2 ml of 0.1 M acetate buffer at pH 5.0 containing 2.5 mg of the immunoglobulin modified with thiol groups was cooled in an ice bath. This solution was then slowly added dropwise to a 1 ml saturated solution of N,N<1->o-phenylene-bis-maleimide in 0.1M acetate buffer at pH 5.0 on an ice bath. The mixture was then incubated at 30°C for 20 min. The immunoglobulin was then separated from the excess N,N-o-phenylene-bis-
I IN
maleimid ved å føre løsningen gjennom en kolonne (20 x 1,5 cm) '• med G. 25 Sephadex ekvilibrert ved romtemperatur med 0,01M fosfatpuffer som inneholdt 0,01 MgCl2ved pH 6,0. maleimide by passing the solution through a column (20 x 1.5 cm) of G. 25 Sephadex equilibrated at room temperature with 0.01 M phosphate buffer containing 0.01 MgCl 2 at pH 6.0.
5,0 mg ammoniumsulfat felt 3-galaktosidase fra Escherichia coli ble oppløst i deri rensede aktiverte immunoglobulinløsning og inkubert ved 30°C i 4 timer. Tilstrekkelig. N NaOH til å ju-stere pH i reaksjonsblandingen til 7,5 og tilstrekkelig 2M 2-merkapto-etanol til å gi en endelig konsentrasjon på 10 mM ble tilsatt. 5.0 mg of ammonium sulfate field 3-galactosidase from Escherichia coli was dissolved in purified activated immunoglobulin solution and incubated at 30°C for 4 hours. Sufficient. N NaOH to adjust the pH of the reaction mixture to 7.5 and sufficient 2M 2-mercaptoethanol to give a final concentration of 10 mM was added.
Immunoglobulin-enzymkonjugatløsningen ble satt på en kolonne (60 x 0,9 cm) av DEAE-Agarose (Biogel) ekvilibrert ved 4°C med 10 mM tris-HCl-puffer ved pH 7,5 som inneholdt 10 mM 2-merkapto-etanpl, 10 mM MgCl2og 50 mM natriumklorid. Løsningen ble vasket på kolonnen med den ekvilibrerende puffer. En gradient fra 50 mM til 200 mM natriumklorid i den samme puffer ble på-ført med 250 ml i blandekarene. Immunoglobulinet som ikke er konjugert med enzymet adsorberer ikke på kolonnen og elueres før gradient pålegges. Når gradienten er pålagt elueres immunoglobulinet som er markert med enzym før fritt enzym. Den eluerte fraksjonen som inneholder det markerte immunoglobulinet frysetørkes og gir det enzym-markerte andre antistoffet for bruk ifølge oppfinnelsen. The immunoglobulin-enzyme conjugate solution was applied to a column (60 x 0.9 cm) of DEAE-Agarose (Biogel) equilibrated at 4°C with 10 mM Tris-HCl buffer at pH 7.5 containing 10 mM 2-mercapto-ethanepl , 10 mM MgCl2 and 50 mM sodium chloride. The solution was washed on the column with the equilibrating buffer. A gradient from 50 mM to 200 mM sodium chloride in the same buffer was applied with 250 ml in the mixing vessels. The immunoglobulin that is not conjugated with the enzyme does not adsorb on the column and is eluted before the gradient is applied. When the gradient is applied, the immunoglobulin that is labeled with enzyme is eluted before free enzyme. The eluted fraction containing the labeled immunoglobulin is freeze-dried and provides the enzyme-labeled second antibody for use according to the invention.
2. Fremstilling av første antistoff2. Preparation of first antibody
(a) Fremstilling av tri jodtyronin ( T^ )- kon jugat (a) Preparation of tri iodothyronine ( T^ )- cone jugate
250 mg bovinserumalbumin (BSA) ble oppløst i 25 ml destillert vann og 1000 mg l-etyl-3-(3-dimetylaminopropyl)-karbodiimid (EDC) ble oppløst i 50 ml destillert vann. Begge løsninger ble kjølt til 4°C og 2/3 av EDC-løsningen langsomt blandet med BSA-løsningen. 150 mg renset T3ble oppløst i 25 ml etanol:2M-NH40H (25:1, vol./vol.) og løsningen kjølt til 4°C ble satt dråpevis til blandingen under kontinuerlig røring mens pH ble holdt ved 7,0 ved dråpevis tilsetning av 0/25M-HC1. Reaksjonsblandingen ble rørt ytterligere 10 min. og den øvrige EDC-løsningen tilsatt dråpevis mens pH ble holdt på 7,0. 250 mg of bovine serum albumin (BSA) was dissolved in 25 ml of distilled water and 1000 mg of 1-ethyl-3-(3-dimethylaminopropyl)-carbodiimide (EDC) was dissolved in 50 ml of distilled water. Both solutions were cooled to 4°C and 2/3 of the EDC solution slowly mixed with the BSA solution. 150 mg of purified T3 was dissolved in 25 ml of ethanol:2M-NH4OH (25:1, vol./vol.) and the solution cooled to 4°C was added dropwise to the mixture with continuous stirring while maintaining the pH at 7.0 by dropwise addition of 0/25M-HC1. The reaction mixture was stirred for a further 10 min. and the other EDC solution added dropwise while the pH was kept at 7.0.
Blandingen ble rørt natten over ved 4°C. Om morgenen ble løs-ningen sentrifugert og supernatanten dialysert mot 3 satser 0,1M_Na C03/NaHC03 ved pH 11,0 og deretter.destillert vann. Produktet ble til slutt frysetørket. Innføringen av T3i BSA ble funnet å være 4,3 mol T3 pr., mol BSA. The mixture was stirred overnight at 4°C. In the morning, the solution was centrifuged and the supernatant dialyzed against 3 batches of 0.1M NaCO3/NaHCO3 at pH 11.0 and then distilled water. The product was finally freeze-dried. The introduction of T3i BSA was found to be 4.3 mol T3 per mol BSA.
(b) Fremstilling av første antistoff (T3~antistoffer)(b) Preparation of first antibody (T3~antibodies)
En stabil emulsjon ble fremstilt ved å blande 1 del saltløsning inneholdende Tween 80 (50%), T3-bovinserumalbumin (2 mg/ml) A stable emulsion was prepared by mixing 1 part saline solution containing Tween 80 (50%), T3 bovine serum albumin (2 mg/ml)
og Bacillus Calmette-Guerin (BCG 1 mg/ml) med 2 deler mareol S2 hjelpestoff. 6 doser (1 ml hver) av emulsjonen ble injisert subkutant i ryggen og 4 intramuskulære injeksjoner (0,75 ml) ble gitt i leggene. Antistofftitrene ble regulert og etter 36 uker ble dyrene forsterket. For forsterkning ble 6 intramuskulære injeksjoner (0,5 ml) gitt i leggene. Emulsjonen bestod av deler hjelpestoff til 1 del saltløsning inneholdende T3~BSA konjugat (2 mg/ml). Bloduttakene 10 dager etter forsterkning og de neste 2 måneder inneholdt store mengder T3~antistoffer. and Bacillus Calmette-Guerin (BCG 1 mg/ml) with 2 parts mareol S2 adjuvant. 6 doses (1 ml each) of the emulsion were injected subcutaneously in the back and 4 intramuscular injections (0.75 ml) were given in the calves. Antibody titers were regulated and after 36 weeks the animals were boosted. For reinforcement, 6 intramuscular injections (0.5 ml) were given in the calves. The emulsion consisted of parts excipient to 1 part salt solution containing T3~BSA conjugate (2 mg/ml). The blood samples 10 days after reinforcement and the following 2 months contained large amounts of T3~antibodies.
Ce) Fremstilling av immunoadsorbent for rensing av første Ce) Preparation of immunoadsorbent for purification of first
antistoff antibody
Sepharose 4B ble aktivert med 1,4-bis-(2,3-epoksypropoksy)-butan som forut beskrevet. Den aktiverte Sepharose (4 ml) Sepharose 4B was activated with 1,4-bis-(2,3-epoxypropoxy)-butane as previously described. The activated Sepharose (4 ml)
ble satt til fosfatpuffer (pH 12,0, 0,025M, 20 ml) inneholdende T3(50 mg). Pufferen ble rørt i 45 timer ved romtemperatur. Gelen ble så vasket med fosfatpuffer (pH 12,0, 0,025M, 250 ml), natriumkloridløsning (150 ml, 0,1M) og destillert vann (100 ml). 9 mg T3 ble tilført pr.. ml av svellet gel. Alle gjenværende oksirangrupper ble blokkert ved å suspendere gelen i 4 ganger volumet vandig etanolåmin (IM, was added to phosphate buffer (pH 12.0, 0.025M, 20 ml) containing T3 (50 mg). The buffer was stirred for 45 hours at room temperature. The gel was then washed with phosphate buffer (pH 12.0, 0.025M, 250 ml), sodium chloride solution (150 ml, 0.1M) and distilled water (100 ml). 9 mg of T3 was added per ml of swollen gel. All remaining oxirane groups were blocked by suspending the gel in 4 times the volume of aqueous ethanolamine (IM,
pH 11) og ryste i 4 timer. Gelen ble så uttømmende vasketpH 11) and shake for 4 hours. The gel was then exhaustively washed
med destillert vann for å fjerne overskudd etanolåmin.with distilled water to remove excess ethanolamine.
l i i
(d) Rensing av første antistoff (d) Purification of first antibody
Anti-T^-serum (fremstilt som ovenfor beskrevet, 20 ml) ble blandet 1 time ved romtemperatur med T^-substituert Sepharose (1 ml). Ikke-spesifikt adsorberte proteiner ble fjernet fra immunoadsorbenten ved grundig vask med fosfatpufret saltløs-ning (0,05M, pH 7,0, 0,2H NaCl). Gelen ble pakket i en sprøyte som tidligere beskrevet og vasket med saltsyre (pH 3) for å fjerne fosfatpufferen. T^-antistoffer ble eluert ved å vaske med guanidinhydroklorid (4 ml, 6M,, pH 2) og oppsamlet i barbitonpuf f er (1 ml, 0,0511, pH 8,6, 0,1% bovinserumalbumin) . T^-antistoffene ble uttømmende dialysert mot denne puffer for Anti-T₂ serum (prepared as described above, 20 ml) was mixed for 1 hour at room temperature with T₂-substituted Sepharose (1 ml). Non-specifically adsorbed proteins were removed from the immunoadsorbent by thorough washing with phosphate-buffered saline (0.05M, pH 7.0, 0.2H NaCl). The gel was packed into a syringe as previously described and washed with hydrochloric acid (pH 3) to remove the phosphate buffer. T₂ antibodies were eluted by washing with guanidine hydrochloride (4 ml, 6M, pH 2) and collected in barbitone buffer (1 ml, 0.051, pH 8.6, 0.1% bovine serum albumin). The T^ antibodies were exhaustively dialyzed against this buffer for
å fjerne guanidinhydrokloridet.to remove the guanidine hydrochloride.
3. Fremstilling av påført antigen ( T-,) for bruk i målingen 3. Preparation of applied antigen (T-,) for use in the measurement
Fremgangsmåten er som beskrevet i fremstillingen av immuno-adsorbent for rensingen av det første antistoffet (2 c ovenfor) med unntagelse av at konsentrasjonen av T., er mindre. Dette nedsetter konsentrasjonen av substituert i gelen. The procedure is as described in the preparation of immuno-adsorbent for the purification of the first antibody (2 c above) with the exception that the concentration of T., is less. This lowers the concentration of substituted in the gel.
Måling av T-. som bruker reagenser hvis fremstilling er beskrevet ovenfor utføres på den allerede beskrevne måte. Measurement of T-. which use reagents whose preparation is described above is carried out in the manner already described.
"Universal Reagens" kan brukes i flere forskjellige etiketter for å bestemme antigener. Disse omfatter: "Universal Reagent" can be used in several different labels to determine antigens. These include:
Etikett laLabel la
Inkubering av første antistoff og fritt antigen fulgt av tilsetning av immunoadsorbent, og etter vask tilsetning av markeringen. Incubation of first antibody and free antigen followed by addition of immunoadsorbent, and after washing addition of the marker.
Etikett lbLabel lb
En samtidig inkubering av første antistoff, fritt antigenA simultaneous incubation of first antibody, free antigen
og immunoadsorbent. Markeringen tilsettes til den vaskede immunoadsorbenten. and immunoadsorbent. The label is added to the washed immunoadsorbent.
i in
Etikett 2a Label 2a
En inkubering av det første antistoff, fritt antigen og markering. Denne følges etter en passende tid av tilsetningen av immunoadsorbenten. An incubation of the first antibody, free antigen and labeling. This is followed after a suitable time by the addition of the immunoadsorbent.
Etikett 2a kan modifiseres ved å inkubere det første antistoffet med enzymmarkeringen før tilsetning av fritt antigen (Etikett 2b) . Label 2a can be modified by incubating the first antibody with the enzyme label before adding free antigen (Label 2b).
Etikett 3Label 3
Etikett 3 innbefatter samtidig tilsetning av første antistoff, markering, fritt antigen og immunoadsorbent. Denne etiketten kan også modifiseres noe ved forutdannelse av markering-første antistoffkompleks. Label 3 includes simultaneous addition of first antibody, labelling, free antigen and immunoadsorbent. This label can also be modified somewhat by pre-forming the label-first antibody complex.
De følgende eksempler beskriver resultatene av prøvene som utføres ved å bruke "Universal Reagens" fulgt av ovenfor beskrevne etiketter. The following examples describe the results of the tests performed using the "Universal Reagent" followed by the labels described above.
Enzym- immunomåling av trijodtyronin ( T3) ved bruk av Universal Reagens Enzyme immunomeasurement of triiodothyronine (T3) using Universal Reagents
Målingen av T3"ble utført ved bruk av flere forskjellige metoder. The measurement of T3" was carried out using several different methods.
Eksempel 2 Example 2
Etikett laLabel la
T3 antiserum (sau, 1:2000 fortynning) i barbitonpufferT3 antiserum (sheep, 1:2000 dilution) in barbitone buffer
(0,1 ml, 0,05M, pH 8,6, 0,1% vekt/volum) ble blandet med T3-standarder fremstilt i barbitonpuffer (0,1 ml) og holdt ved 4°C i 24 timer. Barbitonpuffer (0,1 ml, 0,3% vekt/volum Tween 80) som inneholdt T3 immunoadsorbent (50 ug) ble tilsatt, blandet, holdt ved 4°C i 1 time, vasket to ganger med barbitonpufret saltløsning (5% vekt/volum NaCl) og én gang med barbitonpuffer. Enzymmarkering (100 ul, esel-anti-sau IgG-galaktosidase) ble blandet med den vaskede immunoadsor- (0.1 ml, 0.05M, pH 8.6, 0.1% w/v) was mixed with T3 standards prepared in barbitone buffer (0.1 ml) and kept at 4°C for 24 hours. Barbitone buffer (0.1 ml, 0.3% w/v Tween 80) containing T3 immunoadsorbent (50 µg) was added, mixed, kept at 4°C for 1 h, washed twice with barbitone-buffered saline (5% w/v volume of NaCl) and once with barbitone buffer. Enzyme labeling (100 µl, donkey anti-sheep IgG-galactosidase) was mixed with the washed immunoadsor-
I I I I
I IN
bent, holdt ved 4°C i 24 timer, vasket som forut beskrevet og enzymaktiviteten som var knyttet til immunoadsorbenten ble målt ved vanlige metoder. bent, kept at 4°C for 24 hours, washed as previously described and the enzyme activity associated with the immunoadsorbent was measured by standard methods.
ResultaterResults
Ikke-spesifikk binding av markering til immunoadsorbent = 0,05<x>Binding beregnet etter subtrahering av NSB. Non-specific binding of marker to immunoadsorbent = 0.05<x>Binding calculated after subtracting NSB.
En lignende måling ble utført ved å bruke esel-antisau Fc-galaktosidase som markering. Fremgangsmåten var som ovenfor beskrevet med unntagelse av at (1) antiserumet og standardene ble holdt sammen i 8 timer, (2) antiserumfortynningen var 1:1600. A similar measurement was performed using donkey anti-sheep Fc-galactosidase as a marker. The procedure was as described above with the exception that (1) the antiserum and standards were kept together for 8 hours, (2) the antiserum dilution was 1:1600.
Eksempel 3 Example 3
Etikett 2aLabel 2a
Renset T3 antiserum (sau, 1:1500 fortynning, 0,1 ml) og T3-standarder (0,1 ml) i barbitonpuffer (0,05M, pH 8,6, 0,1% vekt/volum BSA) ble blandet med markering (25 ul, esel-anti-sau IgG-enzym) og holdig ved 4°C i 24 timer,. Barbitonpuf f er I Purified T3 antiserum (sheep, 1:1500 dilution, 0.1 ml) and T3 standards (0.1 ml) in barbitone buffer (0.05 M, pH 8.6, 0.1% w/v BSA) were mixed with marking (25 µl, donkey anti-sheep IgG enzyme) and kept at 4°C for 24 hours. Barbiton pouf f is I
I I I I
(0,1 ml, 0,3% vekt/volum Tween 80) som inneholdt T3-immuno-\adsorbent (50 ug) ble tilsatt under blanding cg holdt ved 4°C i 1 time. Immunoadsorbenten ble vasket og den bundne enzymaktivitet ble målt som beskrevet i eksempel 2. (0.1 mL, 0.3% w/v Tween 80) containing T3 immunoadsorbent (50 µg) was added with mixing and kept at 4°C for 1 hour. The immunoadsorbent was washed and the bound enzyme activity was measured as described in Example 2.
ResultaterResults
Eksempel 4 - Example 4 -
Etikett 2bLabel 2b
Rensede T3-antistoffer (1:1500 fortynning) i barbitonpuffer (0,05M, pH 8,6, 0,1% vekt/volum BSA, 8,5 ml) ble blandet med enzymmarkeringen (esel-anti-sau IgG-galaktosidasekonjugat, 5,1 ml) og lagret ved 4°C til bruk. Purified T3 antibodies (1:1500 dilution) in barbitone buffer (0.05M, pH 8.6, 0.1% w/v BSA, 8.5 ml) were mixed with the enzyme label (donkey anti-sheep IgG-galactosidase conjugate, 5.1 ml) and stored at 4°C until use.
T3-standarder i barbitonpuffer (50 ul) ble blandet med markering-første antistoffkomplekset (200 ul) og ytterligere barbitonpuffer (0,5 ul), og deretter holdt ved 4°C i 4 timer. T3-immunoadsorbent (50 ug) i barbitonpuffer som inneholdt Tween 80 (0,4%) ble satt til rørene og inkubert ved 4°C i 1 time. Immunoadsorbenten ble vasket igjen med barbitonpuffer som inneholdt 5%, deretter 1% natriumklorid. Enzymaktiviteten knyttet til immunoadsorbenten bie målt ved de vanlige metoder. T3 standards in barbitone buffer (50 µl) were mixed with the label-first antibody complex (200 µl) and additional barbitone buffer (0.5 µl), then kept at 4°C for 4 hours. T3 immunoadsorbent (50 µg) in barbitone buffer containing Tween 80 (0.4%) was added to the tubes and incubated at 4°C for 1 hour. The immunoadsorbent was washed again with barbitone buffer containing 5%, then 1% sodium chloride. The enzyme activity linked to the immunoadsorbent bee measured by the usual methods.
I i Resultater In i Results
Dette eksperimentet ble gjentatt med en esel-antisau F - enzymmarkering. Resultatene lignet dem som er vist ovenfor. This experiment was repeated with a donkey anti-sheep F - enzyme label. The results were similar to those shown above.
Eksempel 5Example 5
Etikett 3Label 3
T3-stadarder i barbitonpuffer (100 ul) ble blandet med markering-første antistoff komplekset (200 ul) og T3-immuno-adsorbent (25 ug) i barbitonpuffer (100 ul) som inneholdt Tween 80 (0,4% vekt/volum), og inkubert ved 4°C i 2 timer. Immunoadsorbenten ble vasket og det bundne enzym ble målt som beskrevet for eksempel 4. T3 standards in barbitone buffer (100 µl) were mixed with the label-first antibody complex (200 µl) and T3 immuno-adsorbent (25 µg) in barbitone buffer (100 µl) containing Tween 80 (0.4% w/v) , and incubated at 4°C for 2 hours. The immunoadsorbent was washed and the bound enzyme was measured as described for Example 4.
ResultaterResults
Eksempel 6 Example 6
Etikett 2bLabel 2b
Fremgangsmåten var som forut beskrevet for eksempel 4 bortsett fra at standardene ble fremstilt i strippet plasma. Tyroid-bindende globulin ble ødelagt ved å varme opp plasmaprøvene i et vannbad ved 70°C i 1 time. De erholdte resultater var lignende det som forut er beskrevet i eksempel 4. The procedure was as previously described for example 4 except that the standards were prepared in stripped plasma. Thyroid-binding globulin was destroyed by heating the plasma samples in a water bath at 70°C for 1 hour. The results obtained were similar to those previously described in example 4.
Eksempel 7Example 7
Enzym- immunomåling av humant veksthormon ( HGH) ved bruk av Universal- reagens Enzyme immunomeasurement of human growth hormone (HGH) using Universal reagent
Etikett laLabel la
HGH-antiserum (kanin, 1:20000 fortynning) i barbitonpuffer (0,1 ml, 0,05M, pH 8.,6, 0,65M NaCl, 0,5% vekt/volum BSA) ble blandet med HGH-standarder oppløst i barbitonpuffer (0,1 ml) og holdt ved 4°C i 24 timer. HGH-immunoadsorbent i barbitonpuf f er (0,1 ml, 10 ug) ble. så tilsatt, blandet, holdt ved 4°C i 1 time og vasket én gang med barbitonpuffer (2 ml, 0,05M, pH 8,6) som inneholdt 5% NaCl og én gang med puffer som inneholdt 1% NaCl. Enzymmarkering (50 pl, esel-anti-kanin F c-galaktosidase) ble tilsatt den vaskede immunoadsorbenten, blandet, holdt ved romtemperatur i 2 4 timer, vasket som ovenfor beskrevet, og enzymaktiviteten som var knyttet til immunoadsorbenten ble målt ved de vanlige metoder. HGH antiserum (rabbit, 1:20000 dilution) in barbitone buffer (0.1 ml, 0.05M, pH 8.6, 0.65M NaCl, 0.5% w/v BSA) was mixed with HGH standards dissolved in barbitone buffer (0.1 ml) and kept at 4°C for 24 hours. HGH immunoadsorbent in barbitone puff f is (0.1 ml, 10 ug) was. then added, mixed, kept at 4°C for 1 hour and washed once with barbitone buffer (2 ml, 0.05M, pH 8.6) containing 5% NaCl and once with buffer containing 1% NaCl. Enzyme label (50 µl, donkey anti-rabbit F c-galactosidase) was added to the washed immunoadsorbent, mixed, kept at room temperature for 24 hours, washed as described above, and the enzyme activity associated with the immunoadsorbent was measured by the usual methods.
Ikke-spesifikk markeringsbinding til immunoadsorbent = Non-specific marker binding to immunoadsorbent =
0,08 0.08
<x>Binding beregnet etter subtrahering av NSB.<x>Binding calculated after subtracting NSB.
Eksempel 8Example 8
Enzym- immunomåling for insulin ved bruk av Universal- reagens Etikett la Enzyme immunoassay for insulin using Universal reagent Label la
Insulin-antiserum (guinea-gris, 1:10000 eller 1:40000 fortynning) i fosfatpuffer (0,1 ml, 0,0411, pH 7,4, 0,5% vekt/ volum BSA) ble blandet med bovininsulinstandarder fremstilt i fosfatpuffer (0,1 ml) og holdt ved 4°C i 24 timer. Insulin-immunoadsorbent i fosfatpuffer (0,1 ml, 25 pg) ble tilsatt, blandet og rørene holdt ved 4°C i 30 min.. Immunoadsorbenten ble så vasket med fosfatpuffer (2 ml) som inneholdt 5% og så 1% natriumklorid. Enzymmarkering (50 pl, esel-anti-guinea-gris IgG-galaktosidasekonjugat) ble tilsatt rørene, blandet og holdt ved romtemperatur i 24 timer. Immunoadsorbenten ble vasket som forut beskrevet og galaktosidasaktiviteten som var knyttet til immunoadsorbenten ble målt ved de vanlige metoder. Insulin antiserum (guinea pig, 1:10000 or 1:40000 dilution) in phosphate buffer (0.1 ml, 0.0411, pH 7.4, 0.5% w/v BSA) was mixed with bovine insulin standards prepared in phosphate buffer (0.1 ml) and kept at 4°C for 24 hours. Insulin immunoadsorbent in phosphate buffer (0.1 ml, 25 µg) was added, mixed and the tubes kept at 4°C for 30 min. The immunoadsorbent was then washed with phosphate buffer (2 ml) containing 5% and then 1% sodium chloride. Enzyme labeling (50 µl, donkey anti-guinea pig IgG-galactosidase conjugate) was added to the tubes, mixed and kept at room temperature for 24 hours. The immunoadsorbent was washed as previously described and the galactosidase activity associated with the immunoadsorbent was measured by the usual methods.
i in
I IN
I IN
i Resultater in Results
Antiserumfortynning 1:10000.Antiserum dilution 1:10000.
Ikke-spesifikk binding =0,05 av enzymmarkering i immuno-adsorbent. Non-specific binding =0.05 of enzyme labeling in immuno-adsorbent.
Eksempel 9Example 9
Enzymimmunomåling av kortisol ved bruk av Universal- reagens Etikett la Enzyme immunomeasurement of cortisol using Universal reagent Label la
Kortisolantiserum (sau, 1:20000 fortynning) i fosfatpuffer (0,1 ml, 0,1M, pH 7,4, 0,1% vekt/volum gelatin, 0,83% vekt/ volum NaCl, 0,1% tiomersal) ble blandet med kortisolstan-darder fremstilt i fosfatpuffer (0,1 ml), og holdt ved 4°C Cortisol antiserum (sheep, 1:20000 dilution) in phosphate buffer (0.1 ml, 0.1M, pH 7.4, 0.1% w/v gelatin, 0.83% w/v NaCl, 0.1% thiomersal) was mixed with cortisol standards prepared in phosphate buffer (0.1 ml), and kept at 4°C
i 24.timer. Fosfatpuffer (0,3% vekt/volum Tween 80) som inneholdt kortisol-immunoadsorbent (0,1 ml, 25 pg) ble for 24 hours. Phosphate buffer (0.3% w/v Tween 80) containing cortisol immunoadsorbent (0.1 ml, 25 µg) was
så tilsatt, blandet, holdt ved 4°C i 1 time, vasket én gang med fosfatpuffer-saltløsning (3% vekt/volum) og én gang med fosfatpuffer. Enzymmarkering (25 pl, esel-anti-sau IgG-galaktosidasekonjugat, 0,5% vekt/volum Tween 80) ble satt til den vaskede immunoadsorbent, blandet, holdt ved 4°C i 24 timer, vasket som ovenfor og målt (som vanlig) for enzymaktivitet bundet til den faste fasen. then added, mixed, kept at 4°C for 1 hour, washed once with phosphate buffer saline (3% w/v) and once with phosphate buffer. Enzyme labeling (25 µl, donkey anti-sheep IgG-galactosidase conjugate, 0.5% w/v Tween 80) was added to the washed immunoadsorbent, mixed, kept at 4°C for 24 h, washed as above and measured (as usual ) for enzyme activity bound to the solid phase.
Resultater Results
Det er greit å bruke sett av materialer ved utførelse av fremgangsmåten ifølge foreliggende oppfinnelse på spesielle antigener som et sett omfattende en uløselig bærer hvortil er bundet et antigen som kan være samme eller forskjellig . It is good to use sets of materials when carrying out the method according to the present invention on special antigens such as a set comprising an insoluble carrier to which an antigen is bound which may be the same or different.
fra det som settet er ment for å påvise eller måle, et egnet første antistoff, og et egnet enzymmarkert annet antistoff, from what the kit is intended to detect or measure, a suitable first antibody, and a suitable enzyme-labelled second antibody,
og midler for å påvise enzymaktivitene som kreves i utførelsen av metoden, og fortrinnsvis for kalibreringsformål innbefattet en løsning som inneholder en kjent mengde av antigenet som settet er ment for å påvise eller måle.. and means for detecting the enzyme activities required in the performance of the method, and preferably for calibration purposes included a solution containing a known quantity of the antigen which the kit is intended to detect or measure.
Det kan være fordelaktig å ha den faste fasen knyttet tilIt can be advantageous to have the solid phase attached
en stav som kan innføres i og fjernes fra de andre kompo-nentene i måleblandingen. Dette ville lette vasking av den faste fasen og øke målingens nøyaktighet. a rod that can be introduced into and removed from the other components in the measuring mixture. This would facilitate washing of the solid phase and increase the accuracy of the measurement.
F.eks. kan et sett for T^-måling bestå av de følgende kompo-nenter: 1. en uløselig bærer, enten som en suspensjon i en puffer (f.eks. barbiton) eller i en lyofilisert. form med dertil bundet antigen . E.g. a set for T^ measurement can consist of the following components: 1. an insoluble carrier, either as a suspension in a buffer (eg barbitone) or in a lyophilized one. form with antigen bound to it.
I IN
2. det første antistoffet (anti-T^ frembrakt i sau) sammen med det andre antistoffet (frembarkt i esel-anti-sau IgG Fc, det andre antistoffet markert med 3-galaktosidase, idet denne komponenten fortrinnsvis foreligger i en lyofilisert form. 3. et substrat (f.eks. nitrofenyl-galaktosid) ved en slutt-konsentrasjon på ca. 10-3 Mi en puffer (f.eks. barbiton) fortrinnsvis med en pH fra 7 - 9 og en molaritet på 0,010 - 0,200, idet denne komponenten fortrinnsvis foreligger i en lyofilisert form. 4. en løsning som inneholder en kjent mengde antigen T_. 2. the first antibody (anti-T^ produced in sheep) together with the second antibody (produced in donkey-anti-sheep IgG Fc, the second antibody labeled with 3-galactosidase, this component preferably being in a lyophilized form. 3 a substrate (e.g. nitrophenyl-galactoside) at a final concentration of about 10-3 Mi a buffer (e.g. barbitone) preferably with a pH of 7 - 9 and a molarity of 0.010 - 0.200, this component is preferably in a lyophilized form 4. a solution containing a known amount of antigen T_.
(f.eks. 10 nanomol pr. liter), idet denne komponenten fortrinnsvis foreligger i en lyofilisert form. (e.g. 10 nanomoles per litre), this component preferably being in a lyophilized form.
Claims (1)
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
GB51709/76A GB1549069A (en) | 1976-12-10 | 1976-12-10 | Enzyme linked immunoassay |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
NO774240L true NO774240L (en) | 1978-06-13 |
Family
ID=10461077
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
NO774240A NO774240L (en) | 1976-12-10 | 1977-12-09 | PROCEDURE FOR DETECTION AND DETERMINATION OF ANTIGENES |
Country Status (26)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS53101522A (en) |
AR (1) | AR226805A1 (en) |
AU (1) | AU517266B2 (en) |
BE (1) | BE861711A (en) |
BR (1) | BR7708181A (en) |
CA (1) | CA1110165A (en) |
CH (1) | CH628739A5 (en) |
CS (1) | CS208739B2 (en) |
DE (1) | DE2755008A1 (en) |
DK (1) | DK550077A (en) |
ES (2) | ES464929A1 (en) |
FI (1) | FI773718A (en) |
FR (1) | FR2373795A1 (en) |
GB (1) | GB1549069A (en) |
GR (1) | GR63580B (en) |
HK (1) | HK13881A (en) |
HU (1) | HU179956B (en) |
IL (1) | IL53576A (en) |
IT (1) | IT1109485B (en) |
MY (1) | MY8100367A (en) |
NL (1) | NL7713692A (en) |
NO (1) | NO774240L (en) |
NZ (1) | NZ185927A (en) |
PT (1) | PT67384B (en) |
SE (1) | SE7714034L (en) |
TR (1) | TR20650A (en) |
Families Citing this family (13)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS576363A (en) * | 1980-06-13 | 1982-01-13 | Takeda Chem Ind Ltd | Production of specific antibody |
CA1160566A (en) * | 1980-04-25 | 1984-01-17 | Harald Gallati | Immunological determination method |
ES511156A0 (en) * | 1981-04-13 | 1983-08-01 | Hoechst Co American | A METHOD OF DETERMINING THE PRESENCE OF AN ANTIGEN IN A LIQUID MEDIUM SUSPECTED TO CONTAIN IT. |
EP0084531B1 (en) * | 1981-07-31 | 1987-05-20 | Mount Sinai School Of Medicine Of The City University Of New York | Assay for viruses |
EP0072902B1 (en) * | 1981-08-21 | 1985-04-24 | F. HOFFMANN-LA ROCHE & CO. Aktiengesellschaft | Method for the determination of carcinoembryonic antigen (cea) and suitable antibody solution for the determination |
JPS58151559A (en) * | 1982-03-05 | 1983-09-08 | Takeda Chem Ind Ltd | Immunochemical measuring method of human villous gonadotropin and reagent therefor |
US4704356A (en) * | 1984-03-27 | 1987-11-03 | Rush-Presbyterian-St. Luke's Medical Center | Method of diagnosing cartilage tissue abnormalities |
US4734362A (en) * | 1986-02-03 | 1988-03-29 | Cambridge Bioscience Corporation | Process for purifying recombinant proteins, and products thereof |
CH670709A5 (en) * | 1986-04-24 | 1989-06-30 | Univ Moskovsk | |
AT388618B (en) * | 1987-05-05 | 1989-08-10 | Binder Bernd Dr | METHOD FOR QUANTITATIVE DETERMINATION OF FUNCTION AND ANTIGENT CONCENTRATION OF A SUBSTANCE CONTAINED IN A BIOLOGICAL LIQUID |
DE3807440A1 (en) * | 1988-03-07 | 1989-09-21 | Progen Biotechnik Gmbh | Method for the immunological detection of substances, and a composition and a test kit |
DE19508264C1 (en) * | 1995-03-08 | 1996-02-01 | Klose Werner Dipl Ing Fh | Measuring contours, esp. in road surface |
US6808902B1 (en) * | 1999-11-12 | 2004-10-26 | Amgen Inc. | Process for correction of a disulfide misfold in IL-1Ra Fc fusion molecules |
Family Cites Families (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
NL154600B (en) * | 1971-02-10 | 1977-09-15 | Organon Nv | METHOD FOR THE DETERMINATION AND DETERMINATION OF SPECIFIC BINDING PROTEINS AND THEIR CORRESPONDING BINDABLE SUBSTANCES. |
NL154599B (en) * | 1970-12-28 | 1977-09-15 | Organon Nv | PROCEDURE FOR DETERMINING AND DETERMINING SPECIFIC BINDING PROTEINS AND THEIR CORRESPONDING BINDABLE SUBSTANCES, AND TEST PACKAGING. |
US4002532A (en) * | 1974-10-21 | 1977-01-11 | Weltman Joel K | Enzyme conjugates |
US3951748A (en) * | 1974-11-11 | 1976-04-20 | Medical Products, Inc. | Sensitized matrix for detection of disease |
DK140815B (en) * | 1975-06-10 | 1979-11-19 | Weeke Bengt | A method for detecting or determining antibodies in body fluids by known antigens or for determining antigens by known antibodies from body fluids and a means for use in practicing the method. |
-
1976
- 1976-12-10 GB GB51709/76A patent/GB1549069A/en not_active Expired
-
1977
- 1977-12-09 PT PT67384A patent/PT67384B/en unknown
- 1977-12-09 JP JP14733977A patent/JPS53101522A/en active Pending
- 1977-12-09 TR TR20650A patent/TR20650A/en unknown
- 1977-12-09 IT IT30554/77A patent/IT1109485B/en active
- 1977-12-09 BE BE183341A patent/BE861711A/en not_active IP Right Cessation
- 1977-12-09 DE DE19772755008 patent/DE2755008A1/en not_active Ceased
- 1977-12-09 CH CH1516677A patent/CH628739A5/en not_active IP Right Cessation
- 1977-12-09 HU HU77EA179A patent/HU179956B/en unknown
- 1977-12-09 CA CA292,743A patent/CA1110165A/en not_active Expired
- 1977-12-09 FR FR7737194A patent/FR2373795A1/en active Granted
- 1977-12-09 NZ NZ185927A patent/NZ185927A/en unknown
- 1977-12-09 NL NL7713692A patent/NL7713692A/en not_active Application Discontinuation
- 1977-12-09 CS CS778265A patent/CS208739B2/en unknown
- 1977-12-09 AR AR270301A patent/AR226805A1/en active
- 1977-12-09 SE SE7714034A patent/SE7714034L/en not_active Application Discontinuation
- 1977-12-09 AU AU31395/77A patent/AU517266B2/en not_active Expired
- 1977-12-09 ES ES464929A patent/ES464929A1/en not_active Expired
- 1977-12-09 NO NO774240A patent/NO774240L/en unknown
- 1977-12-09 BR BR7708181A patent/BR7708181A/en unknown
- 1977-12-09 IL IL53576A patent/IL53576A/en unknown
- 1977-12-09 FI FI773718A patent/FI773718A/en not_active Application Discontinuation
- 1977-12-09 DK DK550077A patent/DK550077A/en not_active Application Discontinuation
- 1977-12-09 GR GR54943A patent/GR63580B/en unknown
-
1978
- 1978-04-19 ES ES468934A patent/ES468934A1/en not_active Expired
-
1981
- 1981-04-09 HK HK138/81A patent/HK13881A/en unknown
- 1981-12-30 MY MY367/81A patent/MY8100367A/en unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CS208739B2 (en) | 1981-09-15 |
FR2373795A1 (en) | 1978-07-07 |
DE2755008A1 (en) | 1978-06-15 |
PT67384B (en) | 1979-05-18 |
NZ185927A (en) | 1980-02-21 |
DK550077A (en) | 1978-06-11 |
BE861711A (en) | 1978-03-31 |
NL7713692A (en) | 1978-06-13 |
BR7708181A (en) | 1978-07-11 |
FR2373795B1 (en) | 1982-09-10 |
TR20650A (en) | 1982-03-24 |
GR63580B (en) | 1979-11-22 |
IL53576A0 (en) | 1978-03-10 |
HU179956B (en) | 1983-01-28 |
AR226805A1 (en) | 1982-08-31 |
ES468934A1 (en) | 1978-12-16 |
IL53576A (en) | 1981-07-31 |
ES464929A1 (en) | 1979-01-01 |
SE7714034L (en) | 1978-06-11 |
AU3139577A (en) | 1979-06-14 |
PT67384A (en) | 1978-01-01 |
CA1110165A (en) | 1981-10-06 |
JPS53101522A (en) | 1978-09-05 |
FI773718A (en) | 1978-06-11 |
IT1109485B (en) | 1985-12-16 |
HK13881A (en) | 1981-04-16 |
CH628739A5 (en) | 1982-03-15 |
GB1549069A (en) | 1979-08-01 |
MY8100367A (en) | 1981-12-31 |
AU517266B2 (en) | 1981-07-16 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
EP0111211B1 (en) | Immunoassay for nonenzymatically glucosylated proteins and protein fragments - an index of glycemia | |
CA1341592C (en) | Ion capture reagents and methods for performing binding assays | |
US4298685A (en) | Diagnostic reagent | |
NO774240L (en) | PROCEDURE FOR DETECTION AND DETERMINATION OF ANTIGENES | |
JPS6343711B2 (en) | ||
JPS58117456A (en) | Reagent set detecting and determining one component of reaction between protein having specified binding activity and substance binding in response to said protein | |
Kabakoff | Chemical aspects of enzyme-immunoassay | |
JPS63289001A (en) | Novel labeling design for bond analysis reagent | |
Haning et al. | The evolution of titer and specificity of aldosterone binding antibodies in hyperimmunized sheep | |
NO155968B (en) | PROCEDURE FOR THE PREPARATION OF THERAPEUTIC EFFECTIVE IMMUNOSUPPRESSIVE CONJUGATES OF D-GLUTAMIC ACID-D-LYSIN COPOLYMERS WITH THE ANTIGEN. | |
EP0119767B1 (en) | Method of measuring ligands | |
JP3103379B2 (en) | Receptor: free ligand (Reland) complex and assays and kits based thereon | |
Stalla et al. | The development of a direct homologous radioimmunoassay for serum cortisol | |
CN103421072A (en) | Dexamethasone semi-antigen, preparation method and applications thereof | |
EP1425578A2 (en) | Materials and methods for the determination of an analyte | |
CN103376316B (en) | A kind of test strips detecting streptomycin and method | |
NO790252L (en) | SPECIFIC BINDING TEST TECHNIQUES | |
CN100476439C (en) | ELISA kit for detecting quinolones in animal derived food | |
Wilkinson et al. | Immunological analysis of mycotoxins | |
EP0088974A2 (en) | Homogeneous immunoassay with labelled monoclonal anti-analyte | |
US4801726A (en) | Repetitive hit-and-run immunoassay and stable support-analyte conjugates; applied to T-2 toxin | |
WO1997016727A1 (en) | Assay background reduction using glycoproteins with oxidized carbohydrates | |
GB1591204A (en) | Preparation of immobilised antigens and antibodies | |
JPH038512B2 (en) | ||
GB2109931A (en) | Enzyme immunoassay |