NO180419B - Oligonukleotider og anvendelse i oligonukleotidsyntese - Google Patents

Oligonukleotider og anvendelse i oligonukleotidsyntese Download PDF

Info

Publication number
NO180419B
NO180419B NO951911A NO951911A NO180419B NO 180419 B NO180419 B NO 180419B NO 951911 A NO951911 A NO 951911A NO 951911 A NO951911 A NO 951911A NO 180419 B NO180419 B NO 180419B
Authority
NO
Norway
Prior art keywords
group
dansyl
synthesis
hydroxy
ch2c12
Prior art date
Application number
NO951911A
Other languages
English (en)
Other versions
NO951911L (no
NO180419C (no
NO951911D0 (no
Inventor
Wolfgang Pfleiderer
Frank Bergmann
Original Assignee
Hoechst Ag
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority claimed from DE4029244A external-priority patent/DE4029244A1/de
Priority claimed from NO913626A external-priority patent/NO178333C/no
Publication of NO951911L publication Critical patent/NO951911L/no
Application filed by Hoechst Ag filed Critical Hoechst Ag
Priority to NO951911A priority Critical patent/NO180419C/no
Publication of NO951911D0 publication Critical patent/NO951911D0/no
Publication of NO180419B publication Critical patent/NO180419B/no
Publication of NO180419C publication Critical patent/NO180419C/no

Links

Landscapes

  • Saccharide Compounds (AREA)

Description

Den kjemiske polykondensasjonen av mononukleotider er en viktig metode for fremstilling av desoksyribonukleinsyre (DNA) eller ribonukleinsyre (ENA).
Et grunnleggende problem ved kjemisk syntese av DNA eller RNA er å finne frem til egnede beskyttelsesgrupper for amino- og hydroksygruppene til nukleosidbasene og sukkerrestene. Disse beskyttelsesgruppene må på den ene side være stabil under betingelsene ved polykondensasjonsreaksjoner, dvs. under dannelse av fosfodiesterbinding, og på en annen side må de være tilstrekkelig labile for at de ved slutten av reaksjonen kan spalte fosfodiesterbindingen, for igjen å kunne bli fjernet (H. G. Khorana; Pure Appl. Chem. 17 (1968) 349).
Særlig problematisk er den kjemiske syntese av RNA, da ribosesukkerresten bærer 2 hydroksygrupper, som begge må bli beskyttet. Beskyttelsesgruppen til 5'-hydroksygruppen må derfor før hvert polykondensasjonstrinn bli selektivt avspaltet, dvs. uten avspaltning av 2'-hydroksybeskyttelsesgruppen. Beskyttelsesgruppen til 2'-hydroksygruppen kan først på slutten av RNA-syntesen bli avspaltet, og riktignok under betingelser, som fører til mindre spalting eller isomeriser-ing av fosfodiesterbindingen (C. B. Reese, Nucleic Acids and Molecular Biology, Vol 3 (F. Eckstein & D. M. J. Lilley eds.), Springer forlag, Weinheim).
En mulighet for selektiv avspaltning av 5'-hydroksybeskyttelsesgruppen uten avspaltning av 2'-hydroksybeskyttelsesgruppen er å oppnå en kombinasjon med en baselabil 5'-hydroksybeskyttelsesgruppe med en syrelabil 2'-hydroksybeskyttelsesgruppe (Chr. Lehmann et al. (1989) Nucleic Acids Res. 17, 2379-2390, nr. 7). Anvendelse av en baselabil 5'-hydroksybeskyttelsesgruppe er også fordelaktig ved syntese av DNA, da under de milde betingelsene de ikke-sure hydrolysebetingelsene i syntesen med allerede dannede fosfodi- hhv. triesterbindingene generelt ikke blir spaltet. I tillegg blir det under de milde ikke-sure hydrolysebetingelsene omgått en depurinering av nukleotidet, som beskrevet av E. Sonveaux (E. Sonveaux (1986), Bioorganic Chemistry 14., 286 ). Et ytterligere krav på 5'-hydroksybeskyttelsesgruppen ved DNA- og også ved RNA-syntesen, er en lett og høyømfintlig påvisbarhet av beskyttelsesgruppen. På denne måten kan omsetningsgraden av det enkelte reaksjonstrinn bli fulgt spesielt godt og det kan bli oppnådd en mest mulig fullstendig omsetning. Derigjennom er det mulig å fremstille særlig lange oligonukleotider med høyt utbytte. Dette tillater også gjennom-føring av mindre synteseforsøk i nanomolare til pikomolare områder.
Det er nå overraskende funnet at dansyletoksykarbonylgruppen (Dans-EOC) kan bli anvendt som baselabil 5'-hydroksybeskyttelsesgruppe i kjemisk oligonukleotidsyntese.
Gjenstand for oppfinnelsen er således en forbindelse med formel (Illa) eller (Illb)
der DansEOC betyr en gruppe med formel:R<1> betyr hydrogen eller uavhengig av hverandre en gruppe med formel: B betyr der R<2> betyr uavhengig av hverandre en gruppe med formel
Oppfinnelsen vedrører også anvendelse av en forbindelse med formel (Illa) eller (Illb) i oligonukleotidsyntese.
Til innføring av dansyletoksykarbonylgruppen i nukleosidet blir 2-dansyletylklorformiathydroklorid omsatt med et nukleosid, og med dette blir i hvert nukleosid amino- hhv. hydroksy-funksjonen til nukleosidbasen beskyttet med egnede grupper. Som beskyttelsesgrupper egner seg f.eks. for 6-aminogruppen i adenin, t-butylkarbonyl, benzoyl-, 4-(t-butyl)benzoyl- eller para-nitrofenyletyloksykarbonylgruppe, særlig benzoyl- eller para-nitrofenyletyloksykarbonyl-gruppen.
For 2-aminogruppen til guanin egner seg f.eks. isobutyryl-, 4-(t-butyl)fenylacetyl- eller para-nitrofenyletyloksy-karbonyl-gruppen, særlig isobutyryl- eller para-nitrofenyl-etyloksykarbonyl-gruppen. 6-hydroksygruppen til guanin hhv. 4-hydroksygruppen til uracil blir generelt enten ubeskyttet eller de kan bli beskyttet med en para-nitrofenyletylgruppe. Ved cytosin blir 4-aminogruppen f.eks. beskyttet ved en benzoyl-, 4-(t-butyl)benzoyl- eller para-nitrofenyletyloksykarbonylgruppe, særlig benzoyl- eller para-nitroetyloksy-karbonyl-gruppen. Tymidin forblir generelt ubeskyttet. I uridin blir 3-N-gruppen f.eks. beskyttet med en Boe- eller anisoylgruppe.
Istedenfor de naturlige nukleosidbasene kan også modifiserte nukleosidbaser bli anvendt, deres amino- hhv. hydroksygrupper kan på analog måte bli beskyttet med de ovenfor nevnte beskyttelsesgruppene. Eksempler på nukleosider med modifiserte baser er inosin-, 8-aza-7-deazaadenosin-, tubercidin-, nebularin-, xantosin-, 2-aminoadenosin- eller pyridopyrimidin-nukleosid. Nukleosidene kan kjøpes og innføringen av enkelte beskyttelsesgrupper kan f.eks. foregå etter C. Lehmann et al. (1989), C. B. Reese (1989 ) ["The Chemical Synthesis of Oligo and Polyribonucleotides" in Nucleic Acids and Molecular Biology 3, F. Eckstein & D. M. J. Lilley (eds.), Springer forlag Berlin, Heidelberg], E. Sonveaux (1986), Bioorganic Chemistry 14, 274-325 eller E. Uhlmann & A. Peyman (1990), Chemical Reviews 90, 543-584, nr. 4 .
Ved anvendelse av ribonukleotider må ytterligere hydroksy- og aminogruppene til nukleotidbasene også 2'-hydroksygruppene til riboserestene bli beskyttet. Som allerede nevnt er det for RNS-syntesen viktig, ved valg av en egnet kombinasjon av 5'-hydroksy- og 2'-hydroksybeskyttelsesgruppe, selektivt å kunne fjerne 5'-hydroksybeskyttelsesgruppen, dvs. uten avspaltning av 2'-hydroksybeskyttelsesgruppen.
I nærvær av syrelabile 2'-hydroksybeskyttelsesgrupper, kan dansyletoksykarbonylgruppen som 5'-hydroksybeskyttelsesgruppe selektivt bli avspaltet under ikke-syrebetingelser. Som syrelabile 2'-hydroksybeskyttelsesgrupper kan det f.eks. bli anvendt 4-metoksytetrahydropyran-4-yl-, tetrahydropyranyl-, t-butyl-dimetylsilyl-, 2-nitrobenzyl-, l-(2-klor-4-metyl-fenyl)-4-metoksypiperidin-4-yl- eller l-(2-fluorfenyl)-4-metoksypiperidin-4-yl-gruppen. Avspaltingen av dansyletoksykarbonylgruppen blir fortrinnsvis gjennomført i et aprotisk polart oppløsningsmiddel, særlig acetonitril eller pyridin med hjelp av 1 til 3, fortrinnsvis 1,5 til 2,5 mol ekvivalenter DBU (= 1,5-diazobicyklo-[5.4.0]-undec-5-en ). Alterna-tivt kan andre baser som TMG (= N<1>N<1>N<2>N<2->tetrametylguanidin) eller C^-C4-trialkylamin, som f.eks. trietylamin, bli anvendt til avspaltning.
2-dansyletylklorformiat-hydroklorid som utgangsforbindelse til 5'-hydroksybeskyttelsesgruppen i ribose hhv. desoksy-riboserestene blir ved omsetning av 2-dansyletanol fremstilt med en klorkarbonyldonor, som f.eks. triklormetylklorformiat (difosgen) og/eller fosgen, fortrinnsvis triklormetylklorformiat i nærvær av et polart, aprotisk oppløsningsmiddel. I en foretrukket utførelsesform blir reaksjonen gjennomført i nærvær av et enkelt polart, aprotisk oppløsningsmiddel, særlig i nærvær av acetonitril. Molforholdet av 2-dansyletanol til klorkarbonyldonor er 0,5-1 til 1-2, fortrinnsvis 1 til 1-2, særlig 1 til 1,5-2. Reaksjonstemperaturen ligger i området fra -20°C til kokepunktet av reaksjonsblandingen, fortrinnsvis fra -5"C til +20°C, særlig fra 0°C til 5°C.
Prinsipielt er det to muligheter for å syntetisere oligonukleotider. For det første kan syntesen foregå i oppløsning, f.eks. etter den beskrevne måten til C. B. Reese (C. B. Reese
(1989) "The Chemical Synthesis of Oligo- and Poly-ribonucleo-tides" i Nucleic Acids and Molecular Biology (F. Eckstein & D. M. J. Lilley, eds.) 3, 164-181).
For det andre kan oligonukleotidsyntesen foregå på fastfase, f.eks. på nukleosid-funksjonalisert glass (K. P. Stengele & W. Pfleiderer (1989) Nucleic Acids Res. Symp. Ser. 21, 101, K. P. Stengele & W. Pfleiderer (1990) Tetrahedron Lett. 31, 2549 eller Chr. Lehmann et al. (1989) Nucleic Acids Res. 17, 2379-2390, nr. 7). Generelt er fastfasesyntesen den foretrukkede metoden.
Fordelene med oligonukleotidsyntesen av dansylerte mononukleotider etter fosforamidit- eller etter H-fosfonat-metoden er: a) lett påvisbarhet av dansylgruppen pga. dens sterke fluorescens ved 550 nm,
b) poly- hhv. oligonukleotidsyntese til pikomolområdet,
c) Fjerning av 5'-hydroksy-dansylbeskyttelsesgruppen uten avspaltning av andre hydroksybeskyttelsesgrupper på
nukleotidbasen eller på sukkerresten,
d) syntese av oligoribonukleotider og oligodesoksyribo-nukleotider, særlig av oligoribonukleotider, e) Fastfasesyntese av oligonukleotider i høyt utbytte og i stor kjedelengde.
En ytterligere fordel med anvendelse av 5'-hydroksydansyl-beskyttelsesgruppen ved RNA-syntese er at på slutten av syntesen kan 2'-hydroksygruppen i riboserestene bli beskyttet. Det således modifiserte oligoribonukleotidet er derfor generelt beskyttet mot hydrolyse av RNaser, men også mot mulige isomeriseringsreaksjoner og kan derfor bli stabilt lagret over lengre tidsrom. 2'-hydroksybeskyttelsesgruppen blir deretter avspaltet kort før bruk av RNA.
Avspaltningen fra bærer, så vel som spalting av amino- og hydroksy-beskyttelsesgruppen på de syntetiske oligo-nukleotidene, foregår etter generelt kjente metoder som f.eks. beskrevet av M. Gait (Hrsg.): 01igonucleotide Synthesis, a practical approach; IRL Press; Oxford 1984.
Følgende eksempler vil forklare oppfinnelsen nærmere. Det blir anvendt følgende forkortelser:
Eksempel 1
Omsetting av 2- dansyletanol med triklormetylklorformiat
Under isavkjøling og omrøring pipetteres 0,8 ml (1,32 g = 6,64 mmol) triklormetylklorformiat i 10 ml absolutt CH3CN. Deretter dryppes under isavkjøling og omrøring gjennom en serumkappe med en sprøyte 1 g (3,58 mmol) 2-dansyletanol oppløst i 5 ml absolutt CH3CN. Det omrøres i isbad ytterligere 5 timer. Det utfelte fargeløse faststoffet avsuges, vaskes med absolutt tetrahydrofuran og tørkes i høyvakuum. Det oppnås 1,135 g (3,00 mmol = 84 %) av et fargeløst faststoff med smeltepunkt 154-55°C.
Elementæranalyse gir:
Eksempel 2
Omsetning av 2'-0-(4-metoksytetrahydropyranylj-N^-benzoyladenosin med 2- dansylet. ylklorformiat- hydroklorid 2,43 g (5 mmol) 2'-O-Mthp-N^-Bz-adenosin koevaporeres 2 x med 30 ml absolutt pyridin hver gang, og løses deretter i 40 ml absolutt pyridin. Under isavkjøling og omrøring tilsettes deretter 2,46 g (6,5 mmol = 1,3 ekv. ) 2-dansyletyl-klorf ormiat-hydroklor id i fast form. Det omrøres i 1 t på isbad, hvorved etter ca. 0,5 t hydrokloridet er løst. Deretter stoppes det med 0,5 ml (8,8 mmol) glykol, innroteres, fortynnes med 200 ml CH2C12, vaskes med 200 ml mettet NaHC03-oppløsning, den vandige fasen ekstraheres 2 x med 100 ml CH2C12 hver gang, de forenede organiske fasene tørkes med Na2S04, avfiltreres og innroteres. Man koevaporer-er 2 x med hver gang 100 ml toluen og 2 x med hver gang 100 ml CH2C12. Det renses over en Si02-søyle (100 g, 23 x 3,5 cm). Det elueres med 0,5 1 CH2C12, 1 1 CH2Cl2/MeOH 100:1 og 1,5 1 CH2Cl2/lVIeOH 100:2 med f lammekromatograf i. De enkelte produktfraksjonene innroteres og tørkes i høyvakuum. Det oppnås 2,86 g (3,62 mmol = 72 %) 5'- og 0,47 g (0,43 mmol = 9 %) 3' , 5'-di-subst ituert produkt hver gang som et gult, sterkt fluorescerende skum. For elementaeranalyse bli 100, mg av det substituerte produktet ytterligere renset på en Si02-plate (40 x 20 cm) med CH2Cl2/MeOH 100:2.
Analysedata for 2'-0-(4-metoksytetrahydropyranyl)-5'-0-dansyl- etoksykarbonyl- N^- benzoyl- adenosin
a) Tynnsj iktskromatograf i
Tynnsjiktskromatografi ble gjennomført på Schleicher og
Schull kiselgel F 1500/LS 254 i CH2Cl2/Me0H (95:5) og en Rf-verdi ble beregnet til 0,48.
b) UV- spektroskopi i metanol:
c ) Elementæranalyse
d) NMR- spektroskopi i CDCI3 ved 250 MHz
9,03 s bredde (1) NH, 8,81 s (1) H-8, 8,61 d (2) dansyl-H-2, 8,35-8,30 m (2) dansyl-H-4, dansyl-H-8, 8,23 s (1) H-2, 8,03 d (2) 2 H av o-Bz, 7,65-7,50 m (5) 3 H av Bz, dansyl-H-3, dansyl-H-7, 7,20 d (1) dansyl-H-6, 6,20 d (1) H-l', 5,13 t (1) H-2', 4,52-4,32 m (6) CH20C0, H-3', H-4', H-5', H-5'', 3,72 t (2) S02CH2, 3,77-3,43 m (4) CH20CH2 (Mthp), til 2,90 s bredde (1) 3'-0H, 2,89 s (6) NMe2, 2,87 s (3) 0CH3, 1,95-1,55 m (4) CH2CCH2 (Mthp)
Analysedata for 2'-0-(4-metoksytetrahydropyranyl)-3',5'-0-bis- dansyletoksykarbonyl- N^- benzoyl- adenosin
a) Tynns. i iktskromatograf i
Tynnsjiktskromatografi ble gjennomført på kiselgel F
1500/LS 254 (Schleicher & Schiill) i CH2Cl2/MeOH (100:2) og en Rf-verdi ble beregnet til 0,35.
b) UV- spektroskopi i metanol:
c ) Elementæranalyse
d ) NMR- spektroskopi
1 CDCI3 ved 250 MHz
9,05 s bredde (1) NH, 8,83 s (1) H-8, 8,69-8,60 2 d (2)
2 x dansyl-H-2, 8,35-8,29 m (4) 2 x dansyl-H-4, 2 x
dansyl-H-8, 8,22 s (1) H-2, 8,03 d (2) 2 H av o-Bz, 7,68-7,50 m (7) 3 H av Bz, 2 x dansyl-H-3, 2 x dansyl-H-7, 7,24-7,18 2 til t overlagret d (2) 2 x dansyl-H-6, 6,13 d (1) H-l', 5,32 t (1) H-2', 5,13-5,11 m (l) H-3' , 4,60-4,22 m (7) 2 x CH20C0, H-4 ' , H-5', H-5", 3,77-3,26 m (8)
2 x S02CH2, CH20CH2 (Mthp), 2,89 s (6) MMe2, 2,88 s (6) MMe2, 2,63 s (3) 0CH3, 1,78-1,20 m (4) CH2CCH2 (Mthp)
Eksempel 3
Omsetning av 2'-0-(4-metoksytetrahydropyranyl)-5'-0-dansyl-etoksykarbonyl-N^-benzoyl-adenosin med fosforsyreklorid-2-(4-nitrofenyl)- etylester- N, N- di isopropylamid
1 g (1,264 mmol) 2'-O-Mthp-5'-0-DansE0C-N<6->Bz-adenosin oppløses i 6 ml absolutt CH2C12, deretter tilsettes 0,86 ml (0,65 g = 5,03 mmol = 4 ekv.) Hunigs-base og 0,84 g (2,528 mmol = 2 ekv.) fosforsyreklorid-2-(4-nitrofenyl )-etylester-N,N-diisopropylamid. Under en nitrogenatmosfære, avskjermet med en alufolie, omrøres forsøket ved romtemperatur. Etter 1 1/4 t tilsettes ytterligere 0,42 g (1,264 mmol = 1 ekv.) fosfittyleringsreagens. Etter samlet 2,5 timers omrøring ved romtemperatur fortynnes det med 75 ml CH2C12, vaskes med 75 ml mettet NaHC03-oppløsning, den vandige fasen tilbakeekstraheres 4 x med 50 ml CH2C12 hver gang, de forenede organiske fasene tørkes over Na2S04, filtreres av og innroteres. Man renser over en Si02-søyle (30 g, 12 x 3 cm) med flammekromatografi: det elueres med 250 ml CH2C12, 100 ml CH2C12/EE 100:1, 100 ml CH2C12/EE 100:2, 100 ml CH2C12/EE 100:3, 100 ml CH2C12/EE 100:5, 100 ml CH2C12/EE 100:7, 100 ml CH2C12/EE 9:1, 350 ml CH2C12/EE 4:1 (reagens), 100 ml CH2C12/EE 2:1 (produkt), 100 ml CH2C12/EE 1:1 (produkt), 100 ml CH2C12/EE 1:2 (produkt) og 100 ml EE (produkt).
Produktfraksjonen innroteres og tørkes i høyvakuum. Det oppnås 0,955 g (0,878 mmol = 70 56) av et gult, fluorescerende skum.
Analysedata
a) Tynnsj iktskromatograf i
Tynnsjiktskromatografi hie gjennomført på Schleicher og
Schull F 1500/LS 254 kiselgel i toluen/EE (1:6) og en Rf-verdi ble beregnet til 0,50.
b) UV- spektroskopi i metanol:
c) Elementæranal<y>se
d) NMR- spektroskopi
1. 31P- NMR i CDClq ved 161, 70 MHz
2. ^- H- NMR i CDClq ved 25 0 MHz 9,07 s bredt (1) NH, 8,83 u. 8,82 2 s (1) H-8, 8,61 d (1) dansyl-H-2, 8,35-8,29 m (2) dansyl-H-4, dansyl-H-8, 8,24 u. 8,22 2 s (1) H-2, 8,18-8,13 2 d (2) 2 H o til fenyl-N02, 8,03 d (2) 2 H av o-Bz, 7,64-7,49 m (5) 3 H av Bz, dansyl-H-3, dansyl-H-7, 7,45-7,38 2 d (2) 2 H m til fenyl-N02, 7,19 d (1) dansyl-H-6, 6,23
u. 6,15 2 d (1) H-l', 5,20 u. 5,11 2 t (1) H-2', 4,48 t (2) CH20C0, 4,44-4,18 m (4) H-3', H-4 ' , H-5', H-5'', 4,10-3,88 m (2) CH20P, 3,84-3,25 m (6) 2 x CH (i-Pr). CH20CH2 (Mthp), 3,71 t (2) S02<C>H2, 3,06 t (2) CH2-fenyl-N02, 2,88 s (6) NMe2, 2,66 u. 2,61 2 s (3) 0CH3, 2,00-1,45 m (4) CH2CCH2 (Mthp), 1,26-1,12 overlagret d (12) 2 x C(CH3)2 (i-Pr)
Eksempel 4
Automatisk oligoribonukleotidsyntese med 2 '- 0-( 4- metoksy-tetrahydropyranyl ) - 5 ' - 0 - dan syletoksykarbonylf osf i tt amider .
Fremstilling av dekanukleotider ( rAp)gT
Syntesene blir gjennomført med en 380 B DNA-syntetiserer (Applied Biosystems).
Anvendt søyle: ABI-standardsøyle
Anvendt bærermateriale: LCAMA-CPG-bærer, som er forbundet med nukleosidet over 3'-hydroksygruppen.
(Litteratur: K. P. Stengele, W. Pfleiderer Nucleic Acids Res. Symp. Ser. 21, 101 (1989 ); K. P. Stengele, W. Pfleiderer Tetrahedron Lett. 31, 2549 (1990)).
Belastning med tymidin, som er bundet over 3'-hydroksygruppen til bæreren: 19 jjmol/g
Forsøksstørrelse: ca. 0,6 umol (bestemmelse ved trityl-avspalting).
Syntesesyklus:
1. Kondensasjon med 0,5 M tetrazol og 0,1 M 2'-0-(4-metoksy-tetrahydropyranyl )-5 ' -O-dansyletoksy-karbonyl-N^-benzoyladenosin-3'-0-fosfittamid i absolutt acetonitril etter følgende pulsrekkefølge: 2. Kapping av ikke-omsatt nukleotid med acetanhydrid/- lutidin/THF (1:1:3) og 6,5 £ dimetylaminopyridin (DMAP) i TEF 3. Oksidasjon med ^-oppløsning (1,269 g I2/2O ml HgO/lO ml pyridin/100 ml THF) 4. Dansyletoksykarbonylavspalting med 0,1 M DBU i acetonitril i 2 x 30 s og 8 x 10 s. pulsstrøm med mellom-sjaltet 1 s "reverse flushes".
Eluatet fra 4. trinn blir samlet og kondensasjonsutbyttet bestemt på bakgrunn av dannet 5-dimetylamino-naftyl-1-vinylsulfon ved hjelp av fluorescensmikroskopi (impuls: 368 nm; emisjon: 526 nm).
Det gjennomsnittlige trinnvise utbyttet utgjør ca. 98 %.
Mellom de enkelte trinnene 1-4 foregår de vanlige vaske-trinnene med acetonitril så vel som "blokk- hhv. reverse flushes".
Eksempel 5
Syntese av 5'- O- dansyletoksykarbonylbeskyttede H- fosfonater 10,75 ekvivalenter imidazol oppløses i 5 ml absolutt metylenklorid, avkjøles deretter med is/koksalt og deretter blandes den avkjølte oppløsningen med 3,5 ekvivalenter PCI3 og 11,25 ekvivalenter trietylamin. Det omrøres 15 min under avkjøling og tilsettes 0,25 mmol (1 ekvivalent) 2'-0-(4-metoksytetrahydropyranyl)-5'-0-dansyl-etoksykarbonyl-N^-benzoyladenosin eller 0,25 mmol 2'-0-(4-metoksytetrahydro-pyranyl )-5 ' -O-dansyletoksykarbonyl-N^-para-nitrofenyletyl-oksykarbonyladenosin (koevaporeres 1 x med acetonitril) i 5 ml absolutt metylenklorid i løpet av 10 min dråpevis under omrøring.
Deretter fjernes isbadet og det omrøres ytterligere 15 min ved romtemperatur. Deretter ristes reaksjonsoppløsningen med 10 ml 1 M trietylammonium-bikarbonat. Fasene skilles, den vandige fasen ekstraheres med 10 ml CHgClg, de forenede organiske fasene tørkes over Na2S04, avfiltreres og roteres til et gult, fluorescerende skum. Man renser over en kort kiselgelsøyle (flammekronratografi) med en CHgClg/MeOH-gradient.
Eksempel 6
Automatisk oligoribonukleotidsyntese med 2'- 0-( 4- metoksy-tetrahvdropyranyl)- 5'- O- dansyletoksykarbonylribonukleosid- 3'-0- H- fosfonater. Fremstilling av ( rAp)gT
Syntesen gjennomføres med en 380 B DNA-syntetiserer (Applied Biosystems).
Anvendt søyle: ABI-standardsøyle
Anvendt bærermateriale: LCAMA-CPG-bærer
(Litteratur: K. P. Stengele, W. Pfleiderer Nucleic Acids Res. Symp. Ser. 21, 101 (1989 ); K. P. Stengele, W. Pfleiderer Tetrahedron Lett. 31, 2549 (1990)).
Belastning med tymidin, som er bundet over 3'-hydroksygruppen til bæreren: 19 umol/g
Forsøksstørrelse: ca. 0,6 jjmol (bestemmelse ved trityl-avspalting).
Syntesesyklus:
1. Vasking med absolutt pyridin/acetonitril (1:1)
2. Omsetning med 2'-0-(4-metoksytetrahydropyranyl)-5'-0-dansyletoksykarbonyl-H-fosfonat (10 mM) og pivaloylklorid (50 mM) i absolutt pyridin/acetonitril (1:1)
3. Vasking med absolutt acetonitril (45 s)
4. Dansyletoksykarbonylavspalting med 0,1 M DBU i acetonitril (2 min) 5. Gjentakelse av trinn 1 til 4 til ønsket kjedelengde blir oppnådd. 6. Dansyletoksykarbonylavspalting med 0,1 M DBU i acetonitril (2 min) og samling av eluatet 7. Oksidasjon med J2 (0,1 M) i pyridin/N-metylimidazol/- vann/THF (5/1/5/90) (2,5 min) eller med J2 (0,1 M) i trietylamin/vann/THF (5/5/90) (2,5 min)
Oksidasjonen til tiofosfat eller fosforamidat blir også gjennomført som beskrevet i Uhlmann & Peyman (1990). Eluatet fra det 6. trinnet blir samlet og kondensasjons-utbyttene på bakgrunn av dannet 5-dimetylamino-naftyl-1-vinylsulfoner blir bestemt ved hjelp av fluorescensmikroskopi (impuls: 368 nm; emisjon: 526 nm).
Det gjennomsnittlige trinnvise utbyttet utgjør ca. 98 %.

Claims (2)

1. Forbindelse, karakterisert ved formel (Illa) eller (Illb) der DansEOC betyr en gruppe med formel: R<1> betyr hydrogen eller uavhengig av hverandre en gruppe med formel: B betyr der R<2> betyr uavhengig av hverandre en gruppe med formel
2. Anvendelse av en forbindelse med formel (Illa) eller (Illb) ifølge krav 1 i oligonukleotidsyntese.
NO951911A 1990-09-14 1995-05-15 Oligonukleotider og anvendelse i oligonukleotidsyntese NO180419C (no)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
NO951911A NO180419C (no) 1990-09-14 1995-05-15 Oligonukleotider og anvendelse i oligonukleotidsyntese

Applications Claiming Priority (4)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE4029244A DE4029244A1 (de) 1990-09-14 1990-09-14 Verfahren zur chemischen synthese von oligonukleotiden
DE4111363 1991-04-09
NO913626A NO178333C (no) 1990-09-14 1991-09-13 Fremgangsmåte for fremstilling av mellomprodukter ved kjemisk syntese av oligonukleotider
NO951911A NO180419C (no) 1990-09-14 1995-05-15 Oligonukleotider og anvendelse i oligonukleotidsyntese

Publications (4)

Publication Number Publication Date
NO951911L NO951911L (no) 1992-03-16
NO951911D0 NO951911D0 (no) 1995-05-15
NO180419B true NO180419B (no) 1997-01-06
NO180419C NO180419C (no) 1997-04-16

Family

ID=27435006

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
NO951911A NO180419C (no) 1990-09-14 1995-05-15 Oligonukleotider og anvendelse i oligonukleotidsyntese

Country Status (1)

Country Link
NO (1) NO180419C (no)

Also Published As

Publication number Publication date
NO951911L (no) 1992-03-16
NO180419C (no) 1997-04-16
NO951911D0 (no) 1995-05-15

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP0466773B1 (en) Coumarin derivatives for use as nucleotide crosslinking reagents
EP0219342B1 (en) Method and reagents for in vitro oligonucleotide synthesis
CA2372085C (en) L-ribo-lna analogues
US6222030B1 (en) Solid phase synthesis of oligonucleotides using carbonate protecting groups and alpha-effect nucleophile deprotection
CA2089668A1 (en) Oligo (alpha-arabinofuranosyl nucleotides) and alpha-arabinofuranosyl precursors thereof
EP0767657A1 (en) Novel method of preparation of known and novel 2&#39;-modified nucleosides by intramolecular nucleophilic displacement
Wu et al. N-Phenoxyacetylated guanosine and adenosine phosphoramidites in the solid phase synthesis of oligoribonucleotides: Synthesis of a ribozyme sequence
US5606049A (en) Method of preparing 2&#39;-O-methyl cytidine monomers useful in oligomer synthesis
NO178333B (no) Fremgangsmåte for fremstilling av mellomprodukter ved kjemisk syntese av oligonukleotider
NO180419B (no) Oligonukleotider og anvendelse i oligonukleotidsyntese
JP6853265B2 (ja) 核酸に組み込むための5−(n−保護−トリプタミノカルボキシアミド)−2’−デオキシウリジンホスホロアミダイトの化合物及び合成方法
EP2053054A1 (en) Method for introducing nucleic-acid-protecting group
US6048975A (en) Process for the chemical synthesis of oligonucleotides
DE4029244A1 (de) Verfahren zur chemischen synthese von oligonukleotiden
Agrawal et al. Synthesis of [15 N]-Labeled DNA Fragments