NO178201B - Lignin-degrading enzymatic preparation for the treatment of pulp of wood and method for bleaching of pulp - Google Patents
Lignin-degrading enzymatic preparation for the treatment of pulp of wood and method for bleaching of pulp Download PDFInfo
- Publication number
- NO178201B NO178201B NO903924A NO903924A NO178201B NO 178201 B NO178201 B NO 178201B NO 903924 A NO903924 A NO 903924A NO 903924 A NO903924 A NO 903924A NO 178201 B NO178201 B NO 178201B
- Authority
- NO
- Norway
- Prior art keywords
- pulp
- lignin
- preparation
- wood
- bleaching
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 38
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 title claims description 29
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 title claims description 20
- 238000004061 bleaching Methods 0.000 title claims description 14
- 238000011282 treatment Methods 0.000 title description 20
- 239000002023 wood Substances 0.000 title description 16
- 108010054320 Lignin peroxidase Proteins 0.000 claims description 24
- QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N atomic oxygen Chemical compound [O] QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 20
- 239000001301 oxygen Substances 0.000 claims description 20
- 229910052760 oxygen Inorganic materials 0.000 claims description 20
- 241000222393 Phanerochaete chrysosporium Species 0.000 claims description 11
- 229920001131 Pulp (paper) Polymers 0.000 claims description 11
- 150000002978 peroxides Chemical class 0.000 claims description 7
- 239000000706 filtrate Substances 0.000 claims description 5
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 claims description 4
- 239000000287 crude extract Substances 0.000 claims description 3
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 claims description 3
- 238000004362 fungal culture Methods 0.000 claims description 2
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 35
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 35
- 229920005610 lignin Polymers 0.000 description 29
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 24
- MHAJPDPJQMAIIY-UHFFFAOYSA-N Hydrogen peroxide Chemical compound OO MHAJPDPJQMAIIY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 14
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 12
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 12
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 11
- 239000002655 kraft paper Substances 0.000 description 10
- 239000008399 tap water Substances 0.000 description 10
- 235000020679 tap water Nutrition 0.000 description 10
- 239000000523 sample Substances 0.000 description 9
- 108010062085 ligninase Proteins 0.000 description 8
- 241000233866 Fungi Species 0.000 description 7
- 102000003992 Peroxidases Human genes 0.000 description 7
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 7
- VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N Hydrochloric acid Chemical compound Cl VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 108700020962 Peroxidase Proteins 0.000 description 6
- 239000002202 Polyethylene glycol Substances 0.000 description 6
- 229920001223 polyethylene glycol Polymers 0.000 description 6
- 229920002488 Hemicellulose Polymers 0.000 description 5
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 5
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 5
- 229920002684 Sepharose Polymers 0.000 description 4
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 4
- 229920002678 cellulose Polymers 0.000 description 4
- 239000001913 cellulose Substances 0.000 description 4
- 230000000295 complement effect Effects 0.000 description 4
- VHJLVAABSRFDPM-QWWZWVQMSA-N dithiothreitol Chemical compound SC[C@@H](O)[C@H](O)CS VHJLVAABSRFDPM-QWWZWVQMSA-N 0.000 description 4
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 4
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 4
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N Glycerine Chemical compound OCC(O)CO PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- ZMXDDKWLCZADIW-UHFFFAOYSA-N N,N-Dimethylformamide Chemical compound CN(C)C=O ZMXDDKWLCZADIW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 102000004316 Oxidoreductases Human genes 0.000 description 3
- 108090000854 Oxidoreductases Proteins 0.000 description 3
- 239000008351 acetate buffer Substances 0.000 description 3
- 239000013068 control sample Substances 0.000 description 3
- 230000001419 dependent effect Effects 0.000 description 3
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 3
- 239000013505 freshwater Substances 0.000 description 3
- 108010002430 hemicellulase Proteins 0.000 description 3
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 description 3
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 3
- LSNNMFCWUKXFEE-UHFFFAOYSA-L sulfite Chemical compound [O-]S([O-])=O LSNNMFCWUKXFEE-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 3
- 230000000930 thermomechanical effect Effects 0.000 description 3
- OEGPRYNGFWGMMV-UHFFFAOYSA-N (3,4-dimethoxyphenyl)methanol Chemical compound COC1=CC=C(CO)C=C1OC OEGPRYNGFWGMMV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- RYHBNJHYFVUHQT-UHFFFAOYSA-N 1,4-Dioxane Chemical compound C1COCCO1 RYHBNJHYFVUHQT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- CSCPPACGZOOCGX-UHFFFAOYSA-N Acetone Chemical compound CC(C)=O CSCPPACGZOOCGX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229920000936 Agarose Polymers 0.000 description 2
- ZAMOUSCENKQFHK-UHFFFAOYSA-N Chlorine atom Chemical compound [Cl] ZAMOUSCENKQFHK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 108010090665 Mannosyl-Glycoprotein Endo-beta-N-Acetylglucosaminidase Proteins 0.000 description 2
- CDBYLPFSWZWCQE-UHFFFAOYSA-L Sodium Carbonate Chemical compound [Na+].[Na+].[O-]C([O-])=O CDBYLPFSWZWCQE-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- VMHLLURERBWHNL-UHFFFAOYSA-M Sodium acetate Chemical compound [Na+].CC([O-])=O VMHLLURERBWHNL-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- XSQUKJJJFZCRTK-UHFFFAOYSA-N Urea Chemical compound NC(N)=O XSQUKJJJFZCRTK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 2
- 239000004202 carbamide Substances 0.000 description 2
- 150000001720 carbohydrates Chemical group 0.000 description 2
- 230000015556 catabolic process Effects 0.000 description 2
- 239000000460 chlorine Substances 0.000 description 2
- 229910052801 chlorine Inorganic materials 0.000 description 2
- 230000022811 deglycosylation Effects 0.000 description 2
- OSVXSBDYLRYLIG-UHFFFAOYSA-N dioxidochlorine(.) Chemical compound O=Cl=O OSVXSBDYLRYLIG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000000284 extract Substances 0.000 description 2
- 238000001914 filtration Methods 0.000 description 2
- 238000004128 high performance liquid chromatography Methods 0.000 description 2
- WQYVRQLZKVEZGA-UHFFFAOYSA-N hypochlorite Chemical compound Cl[O-] WQYVRQLZKVEZGA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 230000001533 ligninolytic effect Effects 0.000 description 2
- 229910000402 monopotassium phosphate Inorganic materials 0.000 description 2
- 230000007935 neutral effect Effects 0.000 description 2
- 239000008188 pellet Substances 0.000 description 2
- 229920001451 polypropylene glycol Polymers 0.000 description 2
- 238000004076 pulp bleaching Methods 0.000 description 2
- 239000011541 reaction mixture Substances 0.000 description 2
- 230000035484 reaction time Effects 0.000 description 2
- 239000001632 sodium acetate Substances 0.000 description 2
- 235000017281 sodium acetate Nutrition 0.000 description 2
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 2
- GRVFOGOEDUUMBP-UHFFFAOYSA-N sodium sulfide (anhydrous) Chemical compound [Na+].[Na+].[S-2] GRVFOGOEDUUMBP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000011122 softwood Substances 0.000 description 2
- 238000010561 standard procedure Methods 0.000 description 2
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 2
- 235000013619 trace mineral Nutrition 0.000 description 2
- 239000011573 trace mineral Substances 0.000 description 2
- 239000002351 wastewater Substances 0.000 description 2
- HBOMLICNUCNMMY-KJFJCRTCSA-N 1-[(4s,5s)-4-azido-5-(hydroxymethyl)oxolan-2-yl]-5-methylpyrimidine-2,4-dione Chemical compound O=C1NC(=O)C(C)=CN1C1O[C@H](CO)[C@@H](N=[N+]=[N-])C1 HBOMLICNUCNMMY-KJFJCRTCSA-N 0.000 description 1
- QKNYBSVHEMOAJP-UHFFFAOYSA-N 2-amino-2-(hydroxymethyl)propane-1,3-diol;hydron;chloride Chemical compound Cl.OCC(N)(CO)CO QKNYBSVHEMOAJP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- FHVDTGUDJYJELY-UHFFFAOYSA-N 6-{[2-carboxy-4,5-dihydroxy-6-(phosphanyloxy)oxan-3-yl]oxy}-4,5-dihydroxy-3-phosphanyloxane-2-carboxylic acid Chemical compound O1C(C(O)=O)C(P)C(O)C(O)C1OC1C(C(O)=O)OC(OP)C(O)C1O FHVDTGUDJYJELY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 102100031260 Acyl-coenzyme A thioesterase THEM4 Human genes 0.000 description 1
- 235000001674 Agaricus brunnescens Nutrition 0.000 description 1
- 102100032487 Beta-mannosidase Human genes 0.000 description 1
- 241000283690 Bos taurus Species 0.000 description 1
- 108091003079 Bovine Serum Albumin Proteins 0.000 description 1
- UXVMQQNJUSDDNG-UHFFFAOYSA-L Calcium chloride Chemical compound [Cl-].[Cl-].[Ca+2] UXVMQQNJUSDDNG-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 102000005575 Cellulases Human genes 0.000 description 1
- 108010084185 Cellulases Proteins 0.000 description 1
- 229920001661 Chitosan Polymers 0.000 description 1
- 239000004155 Chlorine dioxide Substances 0.000 description 1
- 229910021580 Cobalt(II) chloride Inorganic materials 0.000 description 1
- 229920002271 DEAE-Sepharose Polymers 0.000 description 1
- 101710121765 Endo-1,4-beta-xylanase Proteins 0.000 description 1
- 241000588724 Escherichia coli Species 0.000 description 1
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 108010024636 Glutathione Proteins 0.000 description 1
- 108010053070 Glutathione Disulfide Proteins 0.000 description 1
- 102000003886 Glycoproteins Human genes 0.000 description 1
- 108090000288 Glycoproteins Proteins 0.000 description 1
- 108010031186 Glycoside Hydrolases Proteins 0.000 description 1
- 102000005744 Glycoside Hydrolases Human genes 0.000 description 1
- 101000638510 Homo sapiens Acyl-coenzyme A thioesterase THEM4 Proteins 0.000 description 1
- 108010044467 Isoenzymes Proteins 0.000 description 1
- 239000007836 KH2PO4 Substances 0.000 description 1
- 108010029541 Laccase Proteins 0.000 description 1
- 229910003177 MnII Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000008118 PEG 6000 Substances 0.000 description 1
- 229920002584 Polyethylene Glycol 6000 Polymers 0.000 description 1
- 239000012506 Sephacryl® Substances 0.000 description 1
- QAOWNCQODCNURD-UHFFFAOYSA-L Sulfate Chemical compound [O-]S([O-])(=O)=O QAOWNCQODCNURD-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 239000007983 Tris buffer Substances 0.000 description 1
- 238000002835 absorbance Methods 0.000 description 1
- 238000000862 absorption spectrum Methods 0.000 description 1
- 229940072056 alginate Drugs 0.000 description 1
- 229920000615 alginic acid Polymers 0.000 description 1
- 235000010443 alginic acid Nutrition 0.000 description 1
- 150000008044 alkali metal hydroxides Chemical class 0.000 description 1
- 239000012670 alkaline solution Substances 0.000 description 1
- 108010084650 alpha-N-arabinofuranosidase Proteins 0.000 description 1
- 229910052782 aluminium Inorganic materials 0.000 description 1
- XAGFODPZIPBFFR-UHFFFAOYSA-N aluminium Chemical compound [Al] XAGFODPZIPBFFR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000005349 anion exchange Methods 0.000 description 1
- NGPGDYLVALNKEG-UHFFFAOYSA-N azanium;azane;2,3,4-trihydroxy-4-oxobutanoate Chemical compound [NH4+].[NH4+].[O-]C(=O)C(O)C(O)C([O-])=O NGPGDYLVALNKEG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000002585 base Substances 0.000 description 1
- 108010055059 beta-Mannosidase Proteins 0.000 description 1
- 239000007844 bleaching agent Substances 0.000 description 1
- 229940098773 bovine serum albumin Drugs 0.000 description 1
- 239000001110 calcium chloride Substances 0.000 description 1
- 235000011148 calcium chloride Nutrition 0.000 description 1
- 229910001628 calcium chloride Inorganic materials 0.000 description 1
- HJMZMZRCABDKKV-UHFFFAOYSA-N carbonocyanidic acid Chemical compound OC(=O)C#N HJMZMZRCABDKKV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 1
- 238000001311 chemical methods and process Methods 0.000 description 1
- 238000007385 chemical modification Methods 0.000 description 1
- 239000007795 chemical reaction product Substances 0.000 description 1
- 239000003638 chemical reducing agent Substances 0.000 description 1
- 238000005660 chlorination reaction Methods 0.000 description 1
- 150000001805 chlorine compounds Chemical class 0.000 description 1
- 235000019398 chlorine dioxide Nutrition 0.000 description 1
- 239000011365 complex material Substances 0.000 description 1
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 1
- 239000013256 coordination polymer Substances 0.000 description 1
- 238000006731 degradation reaction Methods 0.000 description 1
- 239000008367 deionised water Substances 0.000 description 1
- 229910021641 deionized water Inorganic materials 0.000 description 1
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 1
- 239000003599 detergent Substances 0.000 description 1
- 150000002013 dioxins Chemical class 0.000 description 1
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 1
- 239000003480 eluent Substances 0.000 description 1
- 230000007613 environmental effect Effects 0.000 description 1
- 230000009144 enzymatic modification Effects 0.000 description 1
- 239000011536 extraction buffer Substances 0.000 description 1
- 239000012467 final product Substances 0.000 description 1
- 238000011010 flushing procedure Methods 0.000 description 1
- 230000002538 fungal effect Effects 0.000 description 1
- 108010066429 galactomannanase Proteins 0.000 description 1
- 238000005227 gel permeation chromatography Methods 0.000 description 1
- 239000006481 glucose medium Substances 0.000 description 1
- RWSXRVCMGQZWBV-WDSKDSINSA-N glutathione Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CCC(=O)N[C@@H](CS)C(=O)NCC(O)=O RWSXRVCMGQZWBV-WDSKDSINSA-N 0.000 description 1
- YPZRWBKMTBYPTK-BJDJZHNGSA-N glutathione disulfide Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CCC(=O)N[C@H](C(=O)NCC(O)=O)CSSC[C@@H](C(=O)NCC(O)=O)NC(=O)CC[C@H](N)C(O)=O YPZRWBKMTBYPTK-BJDJZHNGSA-N 0.000 description 1
- 238000000227 grinding Methods 0.000 description 1
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 description 1
- 150000003278 haem Chemical class 0.000 description 1
- 238000011065 in-situ storage Methods 0.000 description 1
- 230000001939 inductive effect Effects 0.000 description 1
- 239000012978 lignocellulosic material Substances 0.000 description 1
- 239000006166 lysate Substances 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- 230000007246 mechanism Effects 0.000 description 1
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 1
- 125000000956 methoxy group Chemical group [H]C([H])([H])O* 0.000 description 1
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 description 1
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 1
- 235000019796 monopotassium phosphate Nutrition 0.000 description 1
- 238000005457 optimization Methods 0.000 description 1
- 150000002894 organic compounds Chemical class 0.000 description 1
- 239000007800 oxidant agent Substances 0.000 description 1
- YPZRWBKMTBYPTK-UHFFFAOYSA-N oxidized gamma-L-glutamyl-L-cysteinylglycine Natural products OC(=O)C(N)CCC(=O)NC(C(=O)NCC(O)=O)CSSCC(C(=O)NCC(O)=O)NC(=O)CCC(N)C(O)=O YPZRWBKMTBYPTK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 108040007629 peroxidase activity proteins Proteins 0.000 description 1
- 229920002401 polyacrylamide Polymers 0.000 description 1
- 238000006116 polymerization reaction Methods 0.000 description 1
- GNSKLFRGEWLPPA-UHFFFAOYSA-M potassium dihydrogen phosphate Chemical compound [K+].OP(O)([O-])=O GNSKLFRGEWLPPA-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 238000012545 processing Methods 0.000 description 1
- 238000004537 pulping Methods 0.000 description 1
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 1
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 1
- HELHAJAZNSDZJO-OLXYHTOASA-L sodium L-tartrate Chemical compound [Na+].[Na+].[O-]C(=O)[C@H](O)[C@@H](O)C([O-])=O HELHAJAZNSDZJO-OLXYHTOASA-L 0.000 description 1
- 229910000029 sodium carbonate Inorganic materials 0.000 description 1
- 229910052979 sodium sulfide Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000001433 sodium tartrate Substances 0.000 description 1
- 229960002167 sodium tartrate Drugs 0.000 description 1
- 235000011004 sodium tartrates Nutrition 0.000 description 1
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 1
- 238000001179 sorption measurement Methods 0.000 description 1
- 241000894007 species Species 0.000 description 1
- 239000011550 stock solution Substances 0.000 description 1
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 1
- 235000000346 sugar Nutrition 0.000 description 1
- 150000008163 sugars Chemical class 0.000 description 1
- 238000010998 test method Methods 0.000 description 1
- 229960003495 thiamine Drugs 0.000 description 1
- DPJRMOMPQZCRJU-UHFFFAOYSA-M thiamine hydrochloride Chemical compound Cl.[Cl-].CC1=C(CCO)SC=[N+]1CC1=CN=C(C)N=C1N DPJRMOMPQZCRJU-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 235000019190 thiamine hydrochloride Nutrition 0.000 description 1
- 239000011747 thiamine hydrochloride Substances 0.000 description 1
- LENZDBCJOHFCAS-UHFFFAOYSA-N tris Chemical compound OCC(N)(CO)CO LENZDBCJOHFCAS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000007306 turnover Effects 0.000 description 1
- 238000000108 ultra-filtration Methods 0.000 description 1
- 238000000870 ultraviolet spectroscopy Methods 0.000 description 1
- WJUFSDZVCOTFON-UHFFFAOYSA-N veratraldehyde Chemical compound COC1=CC=C(C=O)C=C1OC WJUFSDZVCOTFON-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229920003176 water-insoluble polymer Polymers 0.000 description 1
- 229920003169 water-soluble polymer Polymers 0.000 description 1
- 229910000368 zinc sulfate Inorganic materials 0.000 description 1
Classifications
-
- D—TEXTILES; PAPER
- D21—PAPER-MAKING; PRODUCTION OF CELLULOSE
- D21C—PRODUCTION OF CELLULOSE BY REMOVING NON-CELLULOSE SUBSTANCES FROM CELLULOSE-CONTAINING MATERIALS; REGENERATION OF PULPING LIQUORS; APPARATUS THEREFOR
- D21C9/00—After-treatment of cellulose pulp, e.g. of wood pulp, or cotton linters ; Treatment of dilute or dewatered pulp or process improvement taking place after obtaining the raw cellulosic material and not provided for elsewhere
- D21C9/10—Bleaching ; Apparatus therefor
- D21C9/147—Bleaching ; Apparatus therefor with oxygen or its allotropic modifications
-
- D—TEXTILES; PAPER
- D21—PAPER-MAKING; PRODUCTION OF CELLULOSE
- D21C—PRODUCTION OF CELLULOSE BY REMOVING NON-CELLULOSE SUBSTANCES FROM CELLULOSE-CONTAINING MATERIALS; REGENERATION OF PULPING LIQUORS; APPARATUS THEREFOR
- D21C5/00—Other processes for obtaining cellulose, e.g. cooking cotton linters ; Processes characterised by the choice of cellulose-containing starting materials
- D21C5/005—Treatment of cellulose-containing material with microorganisms or enzymes
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Paper (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Chemical And Physical Treatments For Wood And The Like (AREA)
Description
Den foreliggende oppfinnelse vedrører et ligninnedbrytende enzymatisk preparat for behandling av masse av ved. The present invention relates to a lignin-degrading enzymatic preparation for the treatment of wood pulp.
Videre vedrører den foreliggende oppfinnelse en fremgangsmåte for bleking av masse. Furthermore, the present invention relates to a method for bleaching pulp.
Disse og andre trekk fremgår av de etterfølgende patentkrav. These and other features appear in the subsequent patent claims.
Ved fremgangsmåten i samsvar med oppfinnelsen for bleking av masse av ved kan rå ligninperoksydase anvendes i nærvær av oksygen i stedet for hydrogenperoksyd som kosubstrat for å redusere lignininnholdet av massen av tre. Ligninperoksydasen kan anvendes i en modifisert form. In the method according to the invention for bleaching pulp of wood, raw lignin peroxidase can be used in the presence of oxygen instead of hydrogen peroxide as cosubstrate to reduce the lignin content of the pulp of wood. The lignin peroxidase can be used in a modified form.
Ved/virke er et komplekst material sammensatt av cellulose, hemicellulose og lignin sammen med andre mindre vesentlige komponenter. Ligninet er assosiert med og endog kovalent bundet til en matriks av cellulose og hemicellulose. Ved papirfremstillingsprosesser bør ligninet fjernes fra massen av ved ettersom det reduserer styrken, medfører en brunaktig farge og meddeler andre uønskede egenskaper til sluttproduk-tet. Konvensjonelt blir flis først behandlet med natriumsulfid (Na2S) og natriumhydroksyd (NaOH) for i vesentlig grad å nedbryte ligninet. Dette benevnes sulfatprosessen eller Kraft-prosessen. Alternativt kan andre behandlinger anvendes, f.eks. sulfittprosessen. Massene oppnådd derfra benevnes "kjemiske masser". Wood is a complex material composed of cellulose, hemicellulose and lignin together with other less significant components. The lignin is associated with and even covalently bound to a matrix of cellulose and hemicellulose. In papermaking processes, the lignin should be removed from the pulp of wood as it reduces strength, causes a brownish color and imparts other undesirable properties to the final product. Conventionally, wood chips are first treated with sodium sulphide (Na2S) and sodium hydroxide (NaOH) to significantly break down the lignin. This is called the sulfate process or the Kraft process. Alternatively, other treatments can be used, e.g. the sulphite process. The masses obtained therefrom are called "chemical masses".
Kjemisk masse som f.eks. Kraft-masse inneholder vanligvis omtrent 4-12 vekt% restlignin som gir massen en karakteristisk brun farge. Ved dette trinn av delignifiseringen er Kappa-tallet, som reflekterer lignininnholdet av massen, vanligvis fra 10 til 45, oftest fra 12 til 30. For å oppnå en masse med høy lyshet og lyshetsstabilitet bør lignininnholdet ytterligere reduseres ved hjelp av én eller flere behandlinger eller trinn som vanligvis benevnes bleking. Mange industrielle blekeprosesser foreligger allerede, men de fleste av dem er oppdelt i to hoveddeler, nemlig en komplementær delignifisering etterfulgt av "ekte bleking" for å forbedre lyshets-nivået. Den komplementære delignifisering starter typisk med et oksygentrinn eller et klorerings-ekstraksjonstrinn (C-E) eller begge deler. Klorering og ekstråksjon gjennomføres vanligvis i sekvens, hvor det først dannes klorerte ligninfor-bindelser som så oppløseliggjøres ved det etterfølgende ekstråksjonstrinn. Formålet er utelukkende å delignifisere massen ettersom meget liten lyshetsøkning oppnås ved C-E-trinnet. En komplementær prosess for lyshetsgjøring av ligninet kan ytterligere inkludere bruken av andre komponenter enn klor som f.eks. klorholdige kjemikalier som hypokloritt og klordioksyd eller oksygen og hydrogenperoksyd. Chemical mass such as Kraft pulp usually contains approximately 4-12% by weight of residual lignin, which gives the pulp a characteristic brown colour. At this stage of delignification, the Kappa number, which reflects the lignin content of the pulp, is usually from 10 to 45, most often from 12 to 30. To obtain a pulp with high lightness and lightness stability, the lignin content should be further reduced by means of one or more treatments or step which is usually referred to as bleaching. Many industrial bleaching processes already exist, but most of them are divided into two main parts, namely a complementary delignification followed by "true bleaching" to improve the lightness level. The complementary delignification typically starts with an oxygen stage or a chlorination-extraction (C-E) stage or both. Chlorination and extraction are usually carried out in sequence, where chlorinated lignin compounds are first formed which are then made soluble in the subsequent extraction step. The purpose is exclusively to delignify the pulp as very little lightness increase is achieved at the C-E stage. A complementary process for lightening the lignin can further include the use of components other than chlorine such as e.g. chlorine-containing chemicals such as hypochlorite and chlorine dioxide or oxygen and hydrogen peroxide.
Effluentene som skriver seg fra den komplementære behandling (benevnt E-l-effluenter) inneholder et meget stort antall klorerte organiske forbindelser som er skadelige for omgivel-sene, f.eks. dioksiner. Også på grunn av deres meget korro-derende natur er det ganske vanskelig å resirkulere effluentene. Fra et miljøsynspunkt er det således klart at nye metoder for bleking som kan redusere forurensningen er meget ønskelige. The effluents resulting from the complementary treatment (referred to as E-1 effluents) contain a very large number of chlorinated organic compounds which are harmful to the environment, e.g. dioxins. Also due to their highly corrosive nature, it is quite difficult to recycle the effluents. From an environmental point of view, it is thus clear that new methods of bleaching that can reduce pollution are highly desirable.
I naturen forekommer et antall mikroorganismer som delignifiserer ved og nedbryter og modifiserer lignin. De enzymer som er involvert ved en slik nedbrytning fører til klassene av oksydaser, peroksydaser og hemicellulaser. En enzymatisk behandling kan derfor fordelaktig erstatte minst én av de blekebehandlinger som involverer klorforbindelser ved masse-bleking. In nature, a number of microorganisms occur that delignify wood and break down and modify lignin. The enzymes involved in such a breakdown lead to the classes of oxidases, peroxidases and hemicellulases. An enzymatic treatment can therefore advantageously replace at least one of the bleaching treatments that involve chlorine compounds in pulp bleaching.
Ligninperoksydaser (også benevnt ligninaser) og MnlI-avhengig peroksydase er enzymer av særlig interesse og som utskilles av mange mikrobestammer, spesielt filamentære fungi. Phanerochaete chrysosporium er en sopp som frembringer hovedsakelig begge typer av peroksydaser. Disse enzymer er i stand til å modifisere lignininnholdet i ved slik at ligninet frigis fra hemicellulosematriksen eller gjøres utløsbart etter vasking eller ekstraksjon. Lignin peroxidases (also called ligninases) and MnlI-dependent peroxidase are enzymes of particular interest and which are secreted by many strains of microbes, especially filamentous fungi. Phanerochaete chrysosporium is a fungus that produces mainly both types of peroxidases. These enzymes are able to modify the lignin content of wood so that the lignin is released from the hemicellulose matrix or made releasable after washing or extraction.
Optimaliseringen av forsøksbeskrivelsene ved en enzymatisk blekeprosess har imidlertid ennå ikke blitt oppnådd. Dette har forblitt en vesentlig utfordring ettersom en enzymatisk prosess må være i stand til å konkurrere med en kjemisk prosess i industriell målestokk. However, the optimization of the experimental descriptions by an enzymatic bleaching process has not yet been achieved. This has remained a significant challenge as an enzymatic process must be able to compete with a chemical process on an industrial scale.
Ligninperoksydaser er hittil beskrevet som enzymer som krever nærvær av H202 for å være effektive ved nedbrytning av lignin med eventuelt nærvær av oksygen. I EP 345715 Al angis at dette system virker uten bruk av oksygen, men i nærvær av oc-hydroksysyrer og detergenter. Det angis samtidig at peroksydet må fremstilles enzymatisk in situ. I DE 3636208 Al angis at visse oksydasjonsmidler og reduksjonsmidler må være tilstede og redokspotensialet må opprettholdes ved et visst nivå under hele reaksjonsforløpet. De prosesser som er beskrevet i disse to patentskrifter er ikke kommersielt gjennomførbare på grunn av de høye omkostninger med de kosubstrater som trenges. Ved en senere publikasjon (Holzforschung 1989, 43(6), 375-384) vises at ligninperoksydaser i nærvær av hydrogenperoksyd alene ikke nedbryter lignin. Ved ennå en ytterligere publikasjon (Enzyme Microbiol. Technol. 1985, 7(11), 564-566) vises at immobiliserte ligninperoksydaser i kombinasjon med hydrogenperoksyd alene ikke delignifiserer lignocelluloseholdig material. Lignin peroxidases have so far been described as enzymes that require the presence of H 2 O 2 to be effective in breaking down lignin with the eventual presence of oxygen. In EP 345715 A1 it is stated that this system works without the use of oxygen, but in the presence of oc-hydroxy acids and detergents. It is also stated that the peroxide must be produced enzymatically in situ. In DE 3636208 Al it is stated that certain oxidizing agents and reducing agents must be present and the redox potential must be maintained at a certain level throughout the course of the reaction. The processes described in these two patents are not commercially feasible due to the high costs of the cosubstrates that are needed. A later publication (Holzforschung 1989, 43(6), 375-384) shows that lignin peroxidases in the presence of hydrogen peroxide alone do not degrade lignin. In yet another publication (Enzyme Microbiol. Technol. 1985, 7(11), 564-566) it is shown that immobilized lignin peroxidases in combination with hydrogen peroxide alone do not delignify lignocellulosic material.
Det er nå overraskende funnet at meget gode resultater kan oppnås ved enzymatisk delignifisering av masse av ved når massen behandles med en ligninperoksydase i fravær av et peroksyd og når enzymene først modifiseres kjemisk på en slik måte at de ikke adsorberes til massen. It has now surprisingly been found that very good results can be achieved by enzymatic delignification of wood pulp when the pulp is treated with a lignin peroxidase in the absence of a peroxide and when the enzymes are first chemically modified in such a way that they are not adsorbed to the pulp.
Oppfinnelsen tilveiebringer således et ligninnedbrytende enzymatisk preparat for behandling av masse av ved, som er kjennetegnet ved at det omfatter minst én ligninperoksydase avledet fra en soppkultur som er kjemisk modifisert slik at den ikke kan adsorberes på massen. The invention thus provides a lignin-degrading enzymatic preparation for treating pulp of wood, which is characterized in that it comprises at least one lignin peroxidase derived from a fungal culture that is chemically modified so that it cannot be adsorbed on the pulp.
Oppfinnelsen tilveiebringer videre en fremgangsmåte for bleking av masse, som er kjennetegnet ved at den omfatter å behandle massen med det ligninnedbrytende preparatet i samsvar med oppfinnelsen. The invention further provides a method for bleaching pulp, which is characterized in that it comprises treating the pulp with the lignin-degrading preparation in accordance with the invention.
I en utførelsesform utføres fremgangsmåten i samsvar med oppfinnelsen i vesentlig fravær av tilsatt peroksyd og i nærvær av tilsatt oksygen. In one embodiment, the method according to the invention is carried out in the substantial absence of added peroxide and in the presence of added oxygen.
Med "blekeprosess" som anvendt heri menes en fremgangsmåte for delignifisering av masse av ved eller forbedring av hvitheten eller lysheten av massen av ved eller begge deler. By "bleaching process" as used herein is meant a method for delignifying pulp of wood or improving the whiteness or lightness of the pulp of wood or both.
Med "lignin" som anvendt heri menes ikke bare naturlige, umodifiserte former, men også formene som finnes i kjemisk behandlede masser som helt eller delvis er blitt kjemisk modifisert ved hjelp av forskjellige midler som f.eks. dem som anvendes ved Kraft-, organosolv- eller sulfittmasseprosessen og i effluentene fra disse prosesser. By "lignin" as used herein is meant not only natural, unmodified forms, but also the forms found in chemically treated masses which have been chemically modified in whole or in part by means of various means such as e.g. those used in the Kraft, organosolv or sulphite mass process and in the effluents from these processes.
Med "vesentlig fravær av tilsatt peroksyd" menes fravær av en vesentlig mengde tilsatt peroksyd som ville være effektiv ved å indusere nedbrytningen av ligninet. Ved fremgangsmåten i samsvar med oppfinnelsen kan et peroksyd således tilsettes reaksjonsblandingen i en ikke-effektiv mengde. By "substantial absence of added peroxide" is meant the absence of a substantial amount of added peroxide which would be effective in inducing the degradation of the lignin. In the method according to the invention, a peroxide can thus be added to the reaction mixture in an ineffective amount.
Betegnelsen "ligninnedbrytende enzym" som anvendt heri menes å omfatte et hvilket som helst enzym som modifiserer ligninet eller hemicellulosekomponenten i ved slik at ligninet frigis fra hemicellulosematriksen eller gjøres utløsbart etter vasking eller ekstråksjon. Egnede ligninnedbrytende enzymer er hemicellulaser, oksydaser og peroksydaser, idet de sistnevnte spesielt foretrekkes. Eksempler på hemicellulaser er manna-naser, xylanaser, galaktomannanaser og arabinosidaser, mens laccaser faller under gruppen oksydaser. Foretrukne peroksydaser er MnII-avhengige peroksydaser og ligninperoksydaser (også benevnt ligninaser). Ligninnedbrytende enzymer utskilles av mange mikrobestammer og særlig filamentære sopp. Betegnelsen "ligninperoksydaser" som anvendt heri menes å omfatte det rå enzympreparat som fremstilles av soppen under ligninolytiske betingelser såvel som de individuelle lignin-peroksydaseisoenzymer fra naturlige eller rekombinante produ-senter . The term "lignin-degrading enzyme" as used herein is meant to include any enzyme that modifies the lignin or hemicellulose component of wood such that the lignin is released from the hemicellulose matrix or rendered releasable after washing or extraction. Suitable lignin-degrading enzymes are hemicellulases, oxidases and peroxidases, the latter being particularly preferred. Examples of hemicellulases are mannanases, xylanases, galactomannanases and arabinosidases, while laccases fall under the group of oxidases. Preferred peroxidases are MnII-dependent peroxidases and lignin peroxidases (also called ligninases). Lignin-degrading enzymes are secreted by many microbial strains and especially filamentous fungi. The term "lignin peroxidases" as used herein is meant to include the crude enzyme preparation produced by the fungus under ligninolytic conditions as well as the individual lignin peroxidase isoenzymes from natural or recombinant producers.
Foretrukket anvendes ligninperoksydasen fra en hvitråtesopp som f.eks. P. chrysosporium enten fra dens native kilde eller i rekombinant form. Den rekombinante form av en ligninperoksydase av P. chrysosporium kan oppnås som beskrevet i PCT patentsøknad 88/2023. The lignin peroxidase from a white rot fungus such as e.g. P. chrysosporium either from its native source or in recombinant form. The recombinant form of a lignin peroxidase of P. chrysosporium can be obtained as described in PCT patent application 88/2023.
Ved en utførelsesform av fremgangsmåten i samsvar med oppfinnelsen kan det enzymatiske preparat være i en vesentlig renset form. Det foretrekkes imidlertid at det enzymatiske preparat er en rå ekstrakt, et filtrat eller en supernatant av en kultur av hvitråtesopp, f.eks. P. chrysosporium. In an embodiment of the method in accordance with the invention, the enzymatic preparation can be in a substantially purified form. However, it is preferred that the enzymatic preparation is a crude extract, a filtrate or a supernatant of a culture of white rot fungi, e.g. P. chrysosporium.
Stammer av P. chrysosporium er generelt tilgjengelige og fremgangsmåter for dyrking av dem i et N- eller C-begrenset medium er allerede kjent. Som et eksempel er et passende dyrkingsmedium det nitrogehbegrensede Blll/glukosemedium inneholdende 1,08 x IO"<3> M ammoniumtartrat, 1,47 x IO"<2> M KH2P04, 2,03 x IO"<3> M MgS04-7H20, 6,8 x 10"4 M CaCl2- 2H20, Strains of P. chrysosporium are generally available and methods for growing them in an N- or C-limited medium are already known. As an example, a suitable culture medium is the nitrogen-limited Blll/glucose medium containing 1.08 x 10"<3> M ammonium tartrate, 1.47 x 10"<2> M KH2PO4, 2.03 x 10"<3> M MgSO4-7H20 , 6.8 x 10"4 M CaCl2- 2H20,
2,96 x 10~<6> M tiamin-HCl og 10 ml* L"1 av en sporelementopp-løsning. Sporelementoppløsningen inneholder 7,8 x 10"<3> M nitriloeddiksyre, 1,2 x IO"<2> M MgS04-7H20, 1,7 x 10~<2> M NaCl, 3,59 x 10"<4> M FeS04-7H20, 7,75 x 10~<4> M CoCl2, <9,>0 x 10"<4> M CaCl2, 3,48 x 10~<4> M ZnS04, 4 x IO"<5> M CuS04- 5H20, 2,1 x IO"<5> M A1K(S04)2-12H20, 1,6 x IO"<4> M H3B03, 4,1 x IO"<5> M NaMo04-2H20 og 2,9 x IO"<3> M MnS04-<H>2<0.>2.96 x 10~<6> M thiamine-HCl and 10 ml* L"1 of a trace element solution. The trace element solution contains 7.8 x 10"<3> M nitriloacetic acid, 1.2 x 10"<2> M MgS04-7H20, 1.7 x 10~<2> M NaCl, 3.59 x 10"<4> M FeS04-7H20, 7.75 x 10~<4> M CoCl2, <9.>0 x 10" <4> M CaCl2, 3.48 x 10~<4> M ZnS04, 4 x IO"<5> M CuS04- 5H20, 2.1 x IO"<5> M A1K(S04)2-12H20, 1, 6 x IO"<4> M H3B03, 4.1 x IO"<5> M NaMo04-2H20 and 2.9 x IO"<3> M MnSO4-<H>2<0.>
For bruk ved fremgangsmåten i henhold til oppfinnelsen kan det ligninnedbrytende enzym kjemisk modifiseres ved hjelp av kovalent eller ikke-kovalent binding til vannoppløselige eller vannuoppløselige polymere forbindelser som forhindrer at enzymet kan bli adsorbert på massen under behandlingen. Egnede polymere forbindelser er f.eks. polyetylenglykol (PEG), polypropylenglyokol (PPG), polyakrylamider og polymere sukker-arter med forskjellige polymerisasjonsgrader og sammen setninger tilsvarende CM-cellulose, cellulose, agarose, alginat og chitosan. PEG er en foretrukket polymer forbindelse . For use in the method according to the invention, the lignin-degrading enzyme can be chemically modified by means of covalent or non-covalent binding to water-soluble or water-insoluble polymeric compounds which prevent the enzyme from being adsorbed on the pulp during the treatment. Suitable polymeric compounds are e.g. polyethylene glycol (PEG), polypropylene glycol (PPG), polyacrylamides and polymeric sugars with different degrees of polymerization and compositions corresponding to CM cellulose, cellulose, agarose, alginate and chitosan. PEG is a preferred polymeric compound.
Alternativt kan enzymet deglykosyleres slik at karbohydratrestene som vanligvis er involvert i adsorpsjonsmekanismene i det minste delvis fjernes. Deglykosylering kan gjennomføres ved hjelp av kjente metoder, f.eks. ved behandling av en prøve av ligninnedbrytende enzym med et enzym som f.eks. en endoglykosidase som er i stand til å nedbryte karbohydratrestene på et glykoprotein. Alternatively, the enzyme can be deglycosylated so that the carbohydrate residues that are usually involved in the adsorption mechanisms are at least partially removed. Deglycosylation can be carried out using known methods, e.g. by treating a sample of lignin-degrading enzyme with an enzyme such as an endoglycosidase capable of breaking down the carbohydrate residues on a glycoprotein.
Preparatene i samsvar med oppfinnelsen kan fremstilles ved kjemisk modifisering av en rå ekstrakt, filtrat eller supernatant oppnådd fra en soppkultur, foretrukket etter konsen-trering. Alternativt kan enzymene renses fra et fungalt material før noen kjemisk behandling. Det er særlig fordelaktig å anvende ligninperoksydaser fra en species eller stamme som ikke frembringer cellulaser, særlig når enzymet ikke er renset. Foretrukket anvendt er ligninperoksydase av en hvitråtesopp, f.eks. P. chrysosporium som indikert i det foregående. The preparations according to the invention can be prepared by chemical modification of a crude extract, filtrate or supernatant obtained from a mushroom culture, preferably after concentration. Alternatively, the enzymes can be purified from a fungal material before any chemical treatment. It is particularly advantageous to use lignin peroxidases from a species or strain that does not produce cellulases, especially when the enzyme is not purified. Preferably used is lignin peroxidase from a white rot fungus, e.g. P. chrysosporium as indicated above.
Fremgangsmåten i henhold til oppfinnelsen kan anvendes på en lang rekke forskjellige masser av tre hvor ligninrestinnholdet skal reduseres. Ublekede masser av ved som kan anvendes ved fremgangsmåten i henhold til oppfinnelsen er fordelaktig mekaniske masser, f.eks. slipmasse, inkluderende de termomekaniske masser som termomekaniske masser (TMP), kjemi-mekaniske masser (CMP), kjemitermomekaniske masser (CTMP) og kjemiske masser (CP) som f.eks. sulfittmasser og Kraft-masser, idet de sistnevnte foretrekkes. The method according to the invention can be used on a wide range of different masses of wood where the residual lignin content is to be reduced. Unbleached pulps of wood that can be used in the method according to the invention are advantageously mechanical pulps, e.g. grinding mass, including the thermomechanical masses such as thermomechanical masses (TMP), chemical mechanical masses (CMP), chemical thermomechanical masses (CTMP) and chemical masses (CP) such as e.g. sulphite pulps and Kraft pulps, the latter being preferred.
Som en generell regel kan enzymkonsentrasjonen være fra As a general rule, the enzyme concentration can be from
0,001 til 1000 VAO-enheter/g masse (en VAO-enhet bestemmes ved omdannelse av veratrylalkohol til veratrylaldehyd ved 310 nm = 0.001 to 1000 VAO units/g mass (one VAO unit is determined by the conversion of veratryl alcohol to veratryl aldehyde at 310 nm =
9,3 (imol.cm-<1> ved 30°C, pH 3,5), foretrukket fra 0,1 til 50 VAO-enheter/g masse, mer foretrukket fra 1 til 20 VAO-enheter/g masse. Optimal enzymkonsentrasjon avhenger av den kommersielle opprinnelse og type av massen. 9.3 (imol.cm-<1> at 30°C, pH 3.5), preferably from 0.1 to 50 VAO units/g mass, more preferably from 1 to 20 VAO units/g mass. Optimum enzyme concentration depends on the commercial origin and type of pulp.
Masse av ved underkastes foretrukket alkalisk ekstråksjon før den behandles enzymatisk. Den enzymatiske behandling gjennom-føres fordelaktig med en massekonsistens fra 0,1 til 15 %, foretrukket fra 1 til 5 %. Massekonsistensen bestemmes ved hjelp av en standard prosedyre som tørr vekt av massen etter tørking i 2 til 10 timer ved omtrent 105°C. For oppnåelse av en optimal massekonsistens kan den ublekede masse av ved for-tynnes med avionisert vann, ferskvann eller vannledningsvann under blekeprosessen. Av økonomiske grunner foretrekkes imidlertid ferskvann eller vannledningsvann ettersom det er funnet at egenskapene av vannet ikke påvirker sluttresulta-tene. Med "ferskvann" menes vann som er pumpet direkte f.eks. fra vann, dammer eller elver. Wood pulp is preferably subjected to alkaline extraction before it is treated enzymatically. The enzymatic treatment is advantageously carried out with a mass consistency of from 0.1 to 15%, preferably from 1 to 5%. The pulp consistency is determined by a standard procedure as the dry weight of the pulp after drying for 2 to 10 hours at about 105°C. To achieve an optimal pulp consistency, the unbleached pulp of wood can be diluted with deionized water, fresh water or tap water during the bleaching process. For economic reasons, however, fresh water or tap water is preferred as it has been found that the properties of the water do not affect the final results. By "fresh water" is meant water that has been pumped directly, e.g. from water, ponds or rivers.
Det er foretrukket å vaske massen med en alkalisk oppløsning før den enzymatiske behandling eller å gjennomføre den enzymatiske behandling etter et alkalitrinn, f.eks. oksygen-bleke-trinn eller E-trinn. It is preferred to wash the mass with an alkaline solution before the enzymatic treatment or to carry out the enzymatic treatment after an alkaline step, e.g. oxygen bleach stage or E stage.
Tidsperioden nødvendig for behandling av massen kan variere sterkt med hensyn til kvaliteten av substratet og arten av enzymmodifisering fra noen få minutter til flere timer. Optimale temperatur- og pH-betingelser bør tilpasses det spesielle enzym som anvendes. Temperaturen er imidlertid generelt i området fra 20 til 50°C, foretrukket fra 40 til 50°C. pH i systemet er vanligvis i området fra 2 til 5, foretrukket fra 3 til 4. Reaksjonstiden er vanligvis 30 til 60 minutter. The time period required for processing the pulp can vary greatly with respect to the quality of the substrate and the nature of enzyme modification from a few minutes to several hours. Optimal temperature and pH conditions should be adapted to the particular enzyme used. However, the temperature is generally in the range from 20 to 50°C, preferably from 40 to 50°C. The pH of the system is usually in the range from 2 to 5, preferably from 3 to 4. The reaction time is usually 30 to 60 minutes.
Etter den enzymatiske behandling kan fjernelse av det opp-løseliggjorte lignin fra massen gjennomføres enten ved vasking, filtrering eller ved ekstraksjon, foretrukket ved ekstraksjon. Egnede ekstraksjonsmidler inkluderer f.eks. baser som alkalimetallhydroksyder, dimetylformamid, dioksan, aceton og alkohol. En fortynnet, vandig natriumhydroksydekstraksjon foretrekkes generelt. Et typisk ekstraksjonstrinn kan gjennom-føres ved en massekonsistens fra 1 til 20 %, foretrukket fra 1 til 5 % ved en temperatur mellom 40 og 60°C. Den endelige pH er foretrukket fra 10 til 11. Reaksjonstiden kan være fra 30 minutter til 3 timer, foretrukket fra 45 minutter til 2 timer. After the enzymatic treatment, the solubilized lignin can be removed from the pulp either by washing, filtration or by extraction, preferably by extraction. Suitable extractants include e.g. bases such as alkali metal hydroxides, dimethylformamide, dioxane, acetone and alcohol. A dilute aqueous sodium hydroxide extraction is generally preferred. A typical extraction step can be carried out at a mass consistency of from 1 to 20%, preferably from 1 to 5% at a temperature between 40 and 60°C. The final pH is preferably from 10 to 11. The reaction time can be from 30 minutes to 3 hours, preferably from 45 minutes to 2 hours.
Graden av delignifisering av massen kan indikeres ved Kappa-tallet som målt ved den standardmetode beskrevet i TAPPI Test Methods (Tappi, Atlanta, Ga.) Vol 1, 1988 "Kappa number of pulp - T 236 cm 85". Kappa-tallet er volumet (i milliliter) av 0,1 N aliumpermanganatoppløsning som forbrukes av 1 gram fuk-tighetsfri masse under betingelsene angitt i den ovenfor nevnte metode. Et lavere Kappa-tall er ønskelig ettersom dette indikerer at en mindre mengde lignin er tilstede i massen. The degree of delignification of the pulp can be indicated by the Kappa number as measured by the standard method described in TAPPI Test Methods (Tappi, Atlanta, Ga.) Vol 1, 1988 "Kappa number of pulp - T 236 cm 85". The kappa number is the volume (in milliliters) of 0.1 N aluminum permanganate solution consumed by 1 gram of moisture-free pulp under the conditions specified in the above-mentioned method. A lower Kappa number is desirable as this indicates that a smaller amount of lignin is present in the pulp.
En ytterligere liknende prosess av særlig interesse involverer også behandlingen av vandig avløpsvann som frigis fra masse-fremstillingsprosessene fra ved eller fra blekeprosessen for masse av ved for ytterligere å nedbryte ligninkomponenten. Et typisk avløpsvann som kan behandles med en ligninperoksydase i eksklusivt nærvær av oksygen som et kosubstrat er El-effluenten fra Kraft-prosessen. A further similar process of particular interest also involves the treatment of aqueous waste water released from the wood pulping processes or from the wood pulp bleaching process to further degrade the lignin component. A typical wastewater that can be treated with a lignin peroxidase in the exclusive presence of oxygen as a cosubstrate is the El effluent from the Kraft process.
Oppfinnelsen illustreres ytterligere som følger: The invention is further illustrated as follows:
Eksempel 1 Example 1
Behandling av masse av tre med rekombinant ligninperoksydase (ligninase). Treatment of wood pulp with recombinant lignin peroxidase (ligninase).
1) Fremstilling av rekombinant ligninase 1) Preparation of recombinant ligninase
Rekombinant apo-ligninase av P. chrysosporium isoleres fra pelletfraksjonen av et kulturlysat av E. coli (pBSR3) NRRL-18068 ved ekstraksjon i 4M urea 50 mM natriumacetat lOmM ditiotreitol (DTT). Supernatantekstrakten separeres så fra pelleten ved passende sentrifugering og tilføres en DEAE-Sepharose anionbytter-kolonne. En gradient på 0 til IM NaCl gjennomføres i ekstraksjonsbufferen. Fraksjoner samles og analyseres for deres immunoreaktivitet med et anti-ligninase antistoff. De sterkeste immunoreaktive fraksjoner samles og tilføres en graderingskolonne (S-300 Sephacryl, Pharmacia) i 4M urea 50 mM KH2P04 4mM DTT pH 7. På nytt kontrolleres frak-sjonene for deres immunoreaktivitet og de sterkeste reaktive fraksjoner samles og dialyseres mot Tris-HCl pH 8 ImM DTT 20 % Recombinant apo-ligninase of P. chrysosporium is isolated from the pellet fraction of a culture lysate of E. coli (pBSR3) NRRL-18068 by extraction in 4M urea 50 mM sodium acetate 10M dithiothreitol (DTT). The supernatant extract is then separated from the pellet by appropriate centrifugation and applied to a DEAE-Sepharose anion-exchange column. A gradient of 0 to IM NaCl is carried out in the extraction buffer. Fractions are collected and analyzed for their immunoreactivity with an anti-ligninase antibody. The strongest immunoreactive fractions are collected and added to a graduation column (S-300 Sephacryl, Pharmacia) in 4M urea 50 mM KH2P04 4mM DTT pH 7. The fractions are again checked for their immunoreactivity and the strongest reactive fractions are collected and dialyzed against Tris-HCl pH 8 ImM DTT 20%
(volum/volum) glyserol. (volume/volume) glycerol.
Protoheme IX (Sigma) oppløst i 0,1N KOH tilsettes til den dia-lyserte oppløsning. Denne dialyseres mot 50mM Tris HC1 pH 8. ImM redusert glutation 100JJ.M oksydert glutation over natten ved 4°C. Til slutt dialyseres prøven mot lOmM natriumacetat pH 6. 2) Blekeprosess med den rekombinante ligninase 2,5 g Kraft-masse oppnådd fra løwed ekstraheres først med 2,5 % natriumhydroksyd i 1 time ved 50°C og vaskes så med vannledningsvann til nøytralitet. Konsistensen av massen innstilles til 2,5 % (omtrent tilsvarende 2,5 g masse fortynnet i 100 ml vannledningsvann) og pH senkes til pH 3,5 med saltsyre. Blandingen blir så gjennomboblet med oksygen under omrøring. 50 VAO-enheter/g masse av den rekonstituerte ligninase tilsettes til blandingen og reaksjonen gjennomføres i 1 time ved 40°C. En kontrollprøve med varmedenaturert enzym fremstilles også som en prøve uten enzym. Protoheme IX (Sigma) dissolved in 0.1N KOH is added to the dialyzed solution. This is dialyzed against 50mM Tris HC1 pH 8. ImM reduced glutathione 100JJ.M oxidized glutathione overnight at 4°C. Finally, the sample is dialyzed against lOmM sodium acetate pH 6. 2) Bleaching process with the recombinant ligninase 2.5 g Kraft pulp obtained from the leaves is first extracted with 2.5% sodium hydroxide for 1 hour at 50°C and then washed with tap water to neutrality. The consistency of the mass is set to 2.5% (approximately equivalent to 2.5 g of mass diluted in 100 ml of tap water) and the pH is lowered to pH 3.5 with hydrochloric acid. The mixture is then bubbled through with oxygen while stirring. 50 VAO units/g mass of the reconstituted ligninase are added to the mixture and the reaction is carried out for 1 hour at 40°C. A control sample with heat-denatured enzyme is also prepared as a sample without enzyme.
Omsetningen stanses ved vasking med vannledningsvann og Kappa-tallet av det enzymatisk behandlede preparat og kontrollprøven måles. Overraskende fremviser preparatet behandlet med den rekombinante ligninase i eksklusivt nærvær av oksygen som kosubstrat et lavere Kappa-tall ved sammenlikning med kontrollprøven, og dette viser at en vesentlig delignifisering var oppnådd. The turnover is stopped by washing with tap water and the Kappa number of the enzymatically treated preparation and the control sample is measured. Surprisingly, the preparation treated with the recombinant ligninase in the exclusive presence of oxygen as cosubstrate shows a lower Kappa number when compared to the control sample, and this shows that a significant delignification had been achieved.
Eksempel 2 Example 2
Behandling av masse av ved med et filtrat fra en kultur av Treatment of wood pulp with a filtrate from a culture of
P. chrysosporium. P. chrysosporium.
En konsentrert ligninolytisk enzymblanding hovedsakelig inneholdende ligninaser og Mn-avhengige peroksydaser oppnås ved ultrafiltrering (molekylvektgrense 10000) av en kultur av P. chrysosporium ATCC 24 725 fremstilt ved hjelp av metoden til Linko, Enzyme Microb. Technol. 1988, 10, 410-417. En slik blanding har en enzymatisk aktivitet på 125 VAO-enheter/ml. Proteininnholdet av blandingen er 5 mg/ml bestemt ved hjelp av metoden til Bradford et al., Anal. Biochem. (1976) 72: 248. 7,5 g Kraft-masse oppnådd fra løwed ekstraheres først med 2,5 % natriumhydroksyd i 1 time ved 50°C og vaskes så med vannledningsvann til nøytral reaksjon. Konsistensen av massen innstilles til 2,5 % (omtrent tilsvarende 2,5 g masse fortynnet i 100 ml vannledningsvann) og pH senkes til pH 3,5 med saltsyre. A concentrated ligninolytic enzyme mixture mainly containing ligninases and Mn-dependent peroxidases is obtained by ultrafiltration (molecular weight limit 10,000) of a culture of P. chrysosporium ATCC 24 725 prepared by the method of Linko, Enzyme Microb. Technol. 1988, 10, 410-417. Such a mixture has an enzymatic activity of 125 VAO units/ml. The protein content of the mixture is 5 mg/ml determined by the method of Bradford et al., Anal. Biochem. (1976) 72: 248. 7.5 g of Kraft pulp obtained from the leaves are first extracted with 2.5% sodium hydroxide for 1 hour at 50°C and then washed with tap water to a neutral reaction. The consistency of the mass is set to 2.5% (approximately equivalent to 2.5 g of mass diluted in 100 ml of tap water) and the pH is lowered to pH 3.5 with hydrochloric acid.
Preparatet oppdeles i tre prøver. En prøve suppleres med The preparation is divided into three samples. A sample is supplemented with
100 |XM H202, en annen prøve suppleres med 100 |1M H202 og spyles med oksygen, mens en ytterligere prøve bare spyles med oksygen. 50 VAO-enheter/g masse av den enzymatiske blanding tilsettes til hver prøve og reaksjonen gjennomføres i 1 time ved 40°C under omrøring. Reaksjonen stanses ved vasking med vannledningsvann og Kappa-tallet av prøvene måles. 100 |XM H 2 O 2 , another sample is supplemented with 100 |1M H 2 O 2 and flushed with oxygen, while a further sample is flushed with oxygen only. 50 VAO units/g mass of the enzymatic mixture are added to each sample and the reaction is carried out for 1 hour at 40°C with stirring. The reaction is stopped by washing with tap water and the Kappa number of the samples is measured.
Overraskende oppnås bedre resultater ved delignifisering av masse ved eksklusivt nærvær av oksygen som et kosubstrat enn i nærvær av hydrogenperoksyd supplert eller ikke supplert med oksygen. Surprisingly, better results are obtained in the delignification of pulp in the exclusive presence of oxygen as a cosubstrate than in the presence of hydrogen peroxide supplemented or not supplemented with oxygen.
Eksempel 3 Example 3
Modifisering av enzympreparat Modification of enzyme preparation
Rå ligninperoksydase fra Phanerochaete chrysosporium ble enten fremstilt i henhold til publiserte prosedyrer (f.eks. H. Janshekar, A. Fiechter, J. of Biotechnology 1988, 8, 97-112) eller innkjøpt fra Cultor Ltd., Helsinki, Finland. a) Modifisering med aktivert metoksypolyetylenglykol 1 ml rått ligninperoksydasepreparat (aktivitet: 110 VAO-enheter, proteininnhold 5 mg (Bradford et al., Anal. Biochem. 1976, 72, 248)) ble fortynnet i 9 ml acetatbuffer 50 mM. Etter innstilling av pH til 7,5 ble 1 g cyanursyreklorid-aktivert metoksypolyetylenglykol (Sigma Nr. M-3277) tilsatt. Denne oppløsning ble omrørt over natten ved 4°C. Den enzymatiske aktivitet etter behandlingen var 75 % av den opprinnelige blanding. Ingen ytterligere rensing ble gjennomført. b) Modifisering med ConA- Sepharose ( Concanavalin A- Agarose) 1 ml rått ligninperoksydasepreparat (som under a)) ble blandet med 1 g ConA-Sepharose (Pharmacia) i 10 ml acetatbuffer (100 mM) ved pH 7 over natten ved 4°C. Det faste kompleks ble så vasket med 100 ml av den samme buffer. Utbyttet med hensyn til aktiviteten var 50 %. Crude lignin peroxidase from Phanerochaete chrysosporium was either prepared according to published procedures (eg, H. Janshekar, A. Fiechter, J. of Biotechnology 1988, 8, 97-112) or purchased from Cultor Ltd., Helsinki, Finland. a) Modification with activated methoxy polyethylene glycol 1 ml of crude lignin peroxidase preparation (activity: 110 VAO units, protein content 5 mg (Bradford et al., Anal. Biochem. 1976, 72, 248)) was diluted in 9 ml of acetate buffer 50 mM. After adjusting the pH to 7.5, 1 g of cyanuric acid chloride-activated methoxy polyethylene glycol (Sigma No. M-3277) was added. This solution was stirred overnight at 4°C. The enzymatic activity after the treatment was 75% of the original mixture. No further purification was carried out. b) Modification with ConA-Sepharose (Concanavalin A-Agarose) 1 ml crude lignin peroxidase preparation (as under a)) was mixed with 1 g ConA-Sepharose (Pharmacia) in 10 ml acetate buffer (100 mM) at pH 7 overnight at 4° C. The solid complex was then washed with 100 ml of the same buffer. The yield with respect to the activity was 50%.
c) Deglvkosylering c) Deglycosylation
1 ml rått ligninperokysdasepreparat (som under a)) ble fortynnet i 1 ml acetatbuffer (100 mM, pH 5). Deretter ble 10 enheter av endoglykosidase F (Boehringer) tilsatt til preparatet og reaksjonen ble gjennomført ved 37°C i 2 timer. Utbyttet med hensyn til aktivitet var 30 %. 1 ml of crude lignin peroxidase preparation (as under a)) was diluted in 1 ml of acetate buffer (100 mM, pH 5). Then 10 units of endoglycosidase F (Boehringer) were added to the preparation and the reaction was carried out at 37°C for 2 hours. The yield with regard to activity was 30%.
Eksempel 4 Example 4
Behandling av masse av ved. Treatment of wood pulp.
2,5 g av den aktuelle masse ekstraheres først med natriumhydroksyd (2,5 % av g tørr masse, 10 % konsistens) i 1 time ved 50°C og vaskes så med vannledningsvann til nøytral reaksjon. Etter tilsetning av 100 ml vannledningsvann senkes pH til 3,5 med saltsyre. Blandingen gjennombobles så med oksygen under omrøring. 2.5 g of the mass in question is first extracted with sodium hydroxide (2.5% of g of dry mass, 10% consistency) for 1 hour at 50°C and then washed with tap water to a neutral reaction. After adding 100 ml of tap water, the pH is lowered to 3.5 with hydrochloric acid. The mixture is then bubbled through with oxygen while stirring.
Enzympreparatet fremstilt som beskrevet i eksempel 3 blir så tilsatt til massesuspensjonen og reaksjonen gjennomføres så i 1 time ved 40°C. Reaksjonen avsluttes ved filtrering og en etterfølgende natriumhydroksydekstraksjon som beskrevet i det foregående. The enzyme preparation prepared as described in example 3 is then added to the mass suspension and the reaction is then carried out for 1 hour at 40°C. The reaction is terminated by filtration and a subsequent sodium hydroxide extraction as described above.
Graden av delignifisering måles ved bestemmelse av Kappa-tallet. Ligninet er også analytisk påvisbart i den kombinerte filtrat/alkaliske ekstrakt, f.eks. ved gelfiltrering-høy-ytelsesvæskekromatografi under anvendelse av UV/Vis-spek-troskopi for deteksjon. The degree of delignification is measured by determining the Kappa number. The lignin is also analytically detectable in the combined filtrate/alkaline extract, e.g. by gel filtration-high performance liquid chromatography using UV/Vis spectroscopy for detection.
Bedre resultater ved delignifisering av massen oppnås med et modifisert enzympreparat enn med et ikke-modifisert enzympreparat selv om den enzymatiske aktivitet av det modifiserte preparat pr. g masse var 10 ganger lavere enn for det ikke-modifiserte preparat (tabell 1). Better results when delignifying the pulp are achieved with a modified enzyme preparation than with a non-modified enzyme preparation, even if the enzymatic activity of the modified preparation per g mass was 10 times lower than for the unmodified preparation (table 1).
Bedre resultater oppnås når oksygen alene anvendes enn når hydrogenperoksyd alene anvendes (tabell 2). Better results are obtained when oxygen alone is used than when hydrogen peroxide alone is used (table 2).
Delignifisering av løwed-kraftmasse, nåletre-kraftmasse blandet mekanisk masse og nåletre-sulfittmasse kan oppnås (tabell 3). Delignification of løwed kraft pulp, softwood kraft pulp mixed mechanical pulp and softwood kraft pulp can be achieved (Table 3).
Eksempel 5 Example 5
Behandling av masse av ved. Treatment of wood pulp.
Eksempel 4 gjentas under anvendelse av 50 VAO-enheter/g masse av den enzymatiske blanding som fremstilt i eksempel 3 c). Når denne tilsettes med samme konsentrasjon er den enzymatiske blanding behandlet med endoglykosidase F mer effektiv ved delignifisering av massen enn en ikke-modifisert blanding. Example 4 is repeated using 50 VAO units/g mass of the enzymatic mixture as prepared in example 3 c). When this is added at the same concentration, the enzymatic mixture treated with endoglycosidase F is more effective at delignifying the pulp than a non-modified mixture.
Eksempel 6 Example 6
Modifisering av lignin. Modification of lignin.
200 jig Organosolv-lignin (87/64003; Organocell, Munchen, Tyskland) fra en 2 % utgangsoppløsning i dioksan i 1 ml natriumtartatbuffer (100 mM) pH 3,5 ble inkubert med 1 VAO-enhet av et ConA-Sepharose-modifisert enzympreparat ved 40°C i 1 time under spyling med oksygen. Etter dette ble pH innstilt 200 µg of Organosolv lignin (87/64003; Organocell, Munich, Germany) from a 2% stock solution in dioxane in 1 ml sodium tartrate buffer (100 mM) pH 3.5 was incubated with 1 VAO unit of a ConA-Sepharose modified enzyme preparation at 40°C for 1 hour while flushing with oxygen. After this, the pH was adjusted
til 10,5 med natriumhydroksyd og prøven ble filtrert gjennom et 0,45 |lm filter for å fjerne enzym/ConA-komplekset. En prøve behandlet på samme måte med ConA-Sepharose, men uten enzym ble fremstilt samtidig. to 10.5 with sodium hydroxide and the sample was filtered through a 0.45 µm filter to remove the enzyme/ConA complex. A sample treated in the same way with ConA-Sepharose, but without enzyme, was prepared at the same time.
Reaksjonsproduktene ble analysert ved hjelp av gelpermeasjon-høyytelsesvæskekromatografi (HPLC) på to seriekoblede TSK (GMP W&L, 7,8 x 300 mm) kolonner (Toya Soda, Japan). Strømnings-takten var 1 ml/min og natriumkarbonat (10 mM, pH 10,5) med 0,05 % polyetylenglykol (PEG 6000) ble anvendt som eluerings-middel. Absorpsjon ved 250, 310 og 360 nm ble bestemt under anvendelse av en dioderekke UV-detektor. The reaction products were analyzed by gel permeation high-performance liquid chromatography (HPLC) on two series-connected TSK (GMP W&L, 7.8 x 300 mm) columns (Toya Soda, Japan). The flow rate was 1 ml/min and sodium carbonate (10 mM, pH 10.5) with 0.05% polyethylene glycol (PEG 6000) was used as eluent. Absorbance at 250, 310 and 360 nm was determined using a diode array UV detector.
Det enzymbehandlede lignin var sterkt modifisert. Vesentlig lysgjøring av ligninsuspensjonen ble iakttatt etter enzym-behandlingen. UV-absorpsjonsspektra ved 250, 310 og 360 nm av de individuelle ligninkomponenter etter separering ved hjelp av gelpermeasjonskromatografi var sterkt endret. The enzyme-treated lignin was highly modified. Substantial lightening of the lignin suspension was observed after the enzyme treatment. The UV absorption spectra at 250, 310 and 360 nm of the individual lignin components after separation by gel permeation chromatography were strongly altered.
Alle reaksjonsblandinger ble spylt med oksygen før og under reaksjonsforløpet (1 time). All reaction mixtures were flushed with oxygen before and during the course of the reaction (1 hour).
a: PEG-modifisert bovint serumalbumin fremstilt på samme måte som det modifiserte enzympreparat, bovint Heme (Sigma Nr. H-2250), 10flg/ml. a: PEG-modified bovine serum albumin prepared in the same manner as the modified enzyme preparation, bovine Heme (Sigma No. H-2250), 10flg/ml.
b: 5 VAO-enheter/g masse, b: 5 VAO units/g mass,
c: 50 VAO-enheter/g masse. c: 50 VAO units/g mass.
Hydrogenperoksydkonsentrasjonen var 100 jiMol/liter; oksygen-innholdet var som i tabell 1. The hydrogen peroxide concentration was 100 jiMol/liter; the oxygen content was as in table 1.
Claims (6)
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
GB898920596A GB8920596D0 (en) | 1989-09-12 | 1989-09-12 | Improvements in or relating to organic compounds |
GB898920595A GB8920595D0 (en) | 1989-09-12 | 1989-09-12 | Improvements in or relating to organic compounds |
Publications (4)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
NO903924D0 NO903924D0 (en) | 1990-09-10 |
NO903924L NO903924L (en) | 1991-03-13 |
NO178201B true NO178201B (en) | 1995-10-30 |
NO178201C NO178201C (en) | 1996-02-07 |
Family
ID=26295910
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
NO903924A NO178201C (en) | 1989-09-12 | 1990-09-10 | Lignin-degrading enzymatic preparation for the treatment of wood pulp and method for bleaching of pulp |
Country Status (10)
Country | Link |
---|---|
EP (1) | EP0418201B1 (en) |
JP (1) | JPH03104993A (en) |
AU (1) | AU646403B2 (en) |
BR (1) | BR9004525A (en) |
CA (1) | CA2025079A1 (en) |
DE (1) | DE69015294T2 (en) |
ES (1) | ES2067719T3 (en) |
FI (1) | FI904456A0 (en) |
NO (1) | NO178201C (en) |
PT (1) | PT95273A (en) |
Families Citing this family (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH0691290A (en) * | 1991-10-11 | 1994-04-05 | Kobe Steel Ltd | Method for treating waste water from pulp bleaching |
JP2525704B2 (en) * | 1992-03-16 | 1996-08-21 | 日本製紙株式会社 | Manufacturing method of laminated base paper |
US5369024A (en) * | 1992-03-25 | 1994-11-29 | The United States Of America As Represented By The Secretary Of Agriculture | Xylanase from streptomyces roseiscleroticus NRRL-11019 for removing color from kraft wood pulps |
US5498534A (en) * | 1992-03-25 | 1996-03-12 | The United States Of America As Represented By The Secretary Of Agriculture | Method of removing color from wood pulp using xylanase from streptomyces roseiscleroticus NRRL B-11019 |
FI970158A (en) * | 1997-01-14 | 1998-07-15 | Neste Oy | New fiberboard adhesive |
US6372464B1 (en) * | 2000-06-19 | 2002-04-16 | Novozymes Biotech, Inc. | Polypeptides having peroxidase activity and nucleic acids encoding same |
CN105082302A (en) * | 2015-03-31 | 2015-11-25 | 西南林业大学 | Manufacturing method of high-strength chipboard |
CN113957737A (en) * | 2021-11-10 | 2022-01-21 | 安徽鑫光新材料科技股份有限公司 | Pollution-free pulping process by straw biological method |
Family Cites Families (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4690895A (en) * | 1985-07-15 | 1987-09-01 | Repligen Corporation | Use of rLDM™ 1-6 and other ligninolytic enzymes in the bleaching of kraft pulp |
JPH0671424B2 (en) * | 1986-03-18 | 1994-09-14 | 新王子製紙株式会社 | Lignin degrading enzyme and method for producing the same |
AU606081B2 (en) * | 1986-09-12 | 1991-01-31 | Sandoz Ag | Recombinant ligninase |
DE3636208A1 (en) * | 1986-10-24 | 1988-05-05 | Call Hans Peter | METHOD FOR DELIGNIFYING AND WHICH BLEACHING LIGNICELLULOSE-CONTAINING OR LIGNINAL MATERIAL OR LIGNIN BY ENZYMATIC TREATMENT |
US4830708A (en) * | 1987-11-30 | 1989-05-16 | Pulp And Paper Research Institute Of Canada | Direct biological bleaching of hardwood kraft pulp with the fungus Coriolus versicolor |
ZA894239B (en) * | 1988-06-08 | 1990-03-28 | Int Paper Co | Enzymatic delignification of lignocellulosic material |
-
1990
- 1990-09-10 DE DE1990615294 patent/DE69015294T2/en not_active Expired - Fee Related
- 1990-09-10 NO NO903924A patent/NO178201C/en unknown
- 1990-09-10 FI FI904456A patent/FI904456A0/en not_active IP Right Cessation
- 1990-09-10 AU AU62323/90A patent/AU646403B2/en not_active Ceased
- 1990-09-10 ES ES90810681T patent/ES2067719T3/en not_active Expired - Lifetime
- 1990-09-10 EP EP90810681A patent/EP0418201B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1990-09-11 PT PT9527390A patent/PT95273A/en not_active Application Discontinuation
- 1990-09-11 BR BR909004525A patent/BR9004525A/en unknown
- 1990-09-11 CA CA 2025079 patent/CA2025079A1/en not_active Abandoned
- 1990-09-12 JP JP24017190A patent/JPH03104993A/en active Pending
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
ES2067719T3 (en) | 1995-04-01 |
NO903924D0 (en) | 1990-09-10 |
AU646403B2 (en) | 1994-02-24 |
AU6232390A (en) | 1991-03-21 |
DE69015294T2 (en) | 1995-05-18 |
EP0418201A3 (en) | 1992-09-23 |
EP0418201A2 (en) | 1991-03-20 |
NO178201C (en) | 1996-02-07 |
PT95273A (en) | 1991-05-22 |
CA2025079A1 (en) | 1991-03-13 |
DE69015294D1 (en) | 1995-02-02 |
JPH03104993A (en) | 1991-05-01 |
NO903924L (en) | 1991-03-13 |
EP0418201B1 (en) | 1994-12-21 |
FI904456A0 (en) | 1990-09-10 |
BR9004525A (en) | 1991-09-10 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
FI121469B (en) | Xylanases isolated from the Microtetraspora species and methods for their use | |
AU716627B2 (en) | Purified mannanase from bacillus amyloliquefaciens and method of preparation | |
US6103059A (en) | Process for delignification of a lignin containing pulp | |
Bajpai et al. | Biobleaching of kraft pulp | |
AU624279B2 (en) | Method for bleaching with reduced organic chlorides | |
JPH0340887A (en) | Enzyme-removed lignin for lignocellulosic material | |
FI109037B (en) | Enzymatic treatment of chemical lignocellulosic pulp | |
NZ235039A (en) | Treatment of chemical pulp with an alkaline xylanase above ph 7.5, followed by chlorine treatment | |
NO178201B (en) | Lignin-degrading enzymatic preparation for the treatment of pulp of wood and method for bleaching of pulp | |
FI96783B (en) | Use of Aureobasidium pullulans in pulp bleaching | |
SE511229C2 (en) | Process for the use of enzymes in the production and bleaching of pulp | |
US5369024A (en) | Xylanase from streptomyces roseiscleroticus NRRL-11019 for removing color from kraft wood pulps | |
US5785811A (en) | Process for treating lignocellulosic material with soybean peroxidase in the presence of peroxide | |
CA1249783A (en) | Use of ligninolytic enzymes | |
Bajpai et al. | Biobleaching | |
De Carvalho et al. | Production and characterization of Phanerochaete chrysosporium lignin peroxidases for pulp bleaching | |
JPH02210086A (en) | Pulp-bleaching method | |
Castro e Silva et al. | Decay of Parkia oppositifolia in Amazonia by Pycnoporus sanguineus and potential use for effluent decolorization | |
JP2001303469A (en) | Method for producing bleached pulp | |
NO173516B (en) | PROCEDURE FOR BLACKING CELLULOSE CONTENT BY TREATING A CULTURE OF AUREOBASIDIUM PULLULANS, OR AN ENZYMATIC SYSTEM CONTAINING AT LEAST ONE HEMICELLULOSE AVA. pullulan |