NL8304497A - METHOD FOR SEPARATING L-TRYPTOPHANE - Google Patents

METHOD FOR SEPARATING L-TRYPTOPHANE Download PDF

Info

Publication number
NL8304497A
NL8304497A NL8304497A NL8304497A NL8304497A NL 8304497 A NL8304497 A NL 8304497A NL 8304497 A NL8304497 A NL 8304497A NL 8304497 A NL8304497 A NL 8304497A NL 8304497 A NL8304497 A NL 8304497A
Authority
NL
Netherlands
Prior art keywords
tryptophan
reaction mixture
microorganism
added
solution
Prior art date
Application number
NL8304497A
Other languages
Dutch (nl)
Original Assignee
Mitsui Toatsu Chemicals
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Mitsui Toatsu Chemicals filed Critical Mitsui Toatsu Chemicals
Publication of NL8304497A publication Critical patent/NL8304497A/en

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/04Alpha- or beta- amino acids
    • C12P13/22Tryptophan; Tyrosine; Phenylalanine; 3,4-Dihydroxyphenylalanine
    • C12P13/227Tryptophan
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07DHETEROCYCLIC COMPOUNDS
    • C07D209/00Heterocyclic compounds containing five-membered rings, condensed with other rings, with one nitrogen atom as the only ring hetero atom
    • C07D209/02Heterocyclic compounds containing five-membered rings, condensed with other rings, with one nitrogen atom as the only ring hetero atom condensed with one carbocyclic ring
    • C07D209/04Indoles; Hydrogenated indoles
    • C07D209/10Indoles; Hydrogenated indoles with substituted hydrocarbon radicals attached to carbon atoms of the hetero ring
    • C07D209/18Radicals substituted by carbon atoms having three bonds to hetero atoms with at the most one bond to halogen, e.g. ester or nitrile radicals
    • C07D209/20Radicals substituted by carbon atoms having three bonds to hetero atoms with at the most one bond to halogen, e.g. ester or nitrile radicals substituted additionally by nitrogen atoms, e.g. tryptophane
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/02Separating microorganisms from their culture media

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

* N.0. 32228 ** N.0. 32228 *

Werkwijze voor het afscheiden van L-tryptofaan.Method for separating L-tryptophan.

De uitvinding heeft betrekking op een werkwijze voor het isoleren van L—trypto faan uit een L—tryptofaan en een micro—organisme bevattend reactiemengsel, dat bij de produktie van L-tryptofaan onder toepassing van het micro-organisme is verkregen.The invention relates to a process for isolating L-tryptophan from an L-tryptophan and a microorganism-containing reaction mixture obtained in the production of L-tryptophan using the microorganism.

5 Bij omzettingen onder toepassing van micro-organismen is het nood zakelijk de micro-organismen van de reactieprodukten af te scheiden. Er zijn een aantal werkwijzen bekend voor het verwijderen van de micro-organismen uit de reactiemengsels en het isoleren van de reactieprodukten. In de Japanse octrooipublikatie 16460/1963 wordt bijvoorbeeld een 10 werkwijze beschreven, waarbij een oppervlak-actief middel wordt toegevoegd aan een fermentatievloeistof van L-glutaminezuur, het mengsel wordt verhit om het micro-organisme uit te vlokken ai af te zetten en de afscheiding plaats vindt door filtratie na toevoeging van diatomee-'énaarde; en de Japanse ter inzage gelegde octrooipublikatie 29996/1978 15 beschrijft een werkwijze, waarbij een reactiemengsel, zoals een fermentatievloeistof van een aminozuur, over een ultrafiltratiemembraan wordt gefiltreerd ei het produkt vervolgens door kristallisatie wordt geïsoleerd.In conversions using micro-organisms, it is necessary to separate the micro-organisms from the reaction products. A number of methods are known for removing the microorganisms from the reaction mixtures and isolating the reaction products. For example, Japanese Patent Publication 16460/1963 discloses a method in which a surfactant is added to a fermentation broth of L-glutamic acid, the mixture is heated to flocculate the microorganism and the separation is effected found by filtration after addition of diatomaceous earth; and Japanese Patent Laid-Open Publication 29996/1978 describes a method in which a reaction mixture, such as an amino acid fermentation broth, is filtered through an ultrafiltration membrane and the product is then isolated by crystallization.

Deze werkwijzen blijken voor industriële toepassing echter niet 20 geheel bevredigend te zijn omdat volgens de wijze, waarop het opper-vlak-actieve middel wordt toegepast, het micro-organisme gemakkelijk kan worden verwijderd, maar het oppervlak-actieve middel niet gemakkelijk kan worden afgescheiden ai waarschijnlijk achterblijft in het reactieprodukt en de werkwijze, waarbij het ultrafiltratiemembraan 25 wordt toegepast, geeft moeilijkheden bij het wassen van de gebruikte apparatuur, dat te wijten is aan de aard daarvan.However, these methods appear not to be entirely satisfactory for industrial use because, according to the manner in which the surfactant is used, the microorganism can be easily removed, but the surfactant cannot be easily separated. likely to remain in the reaction product, and the process using the ultrafiltration membrane 25 presents difficulties in washing the equipment used, due to its nature.

Derhalve heeft de uitvinding ten doel een werkwijze te verschaffen voor het isoleren van L-tryptofaan uit een reactiemengsel, dat bij de produktie van L-tryptofaan onder toepassing van een micro-organisme is 30 verkregen, waarbij het micro-organisme op effectieve wijze uit het reactiemengsel wordt verwijderd.Therefore, the object of the invention is to provide a method for isolating L-tryptophan from a reaction mixture obtained in the production of L-tryptophan using a microorganism, the microorganism being effectively removed from the reaction mixture is removed.

Aan de onderhavige uitvinding lagen uitgebreide onderzoekingen ten grondslag teneinde dit doel te bereiken. Aangezien het algemeen bekend is, dat L-tryptofaan bij verhitting in zure oplossing instabiel is, was | 35 het verrassend, dat werd gevonden, dat wanneer een L-tryptofaan en een micro-organisme bevattend reactiemengsel met een anorganisch zuur wordt ingesteld op een pH van 2-5 en dan wordt verhit, L-tryptofaan stabiel is en het micro-organisme wordt gemodificeerd en uitvlokt tot een 8304497 2 .< * grootte* die gemakkelijk kan worden afgefiltfeerd. · ~ ..The present invention has undergone extensive research to achieve this goal. Since it is well known that L-tryptophan is unstable when heated in acidic solution, | Surprisingly, it has been found that when an L-tryptophan and a microorganism-containing reaction mixture with an inorganic acid is adjusted to a pH of 2-5 and then heated, L-tryptophan is stable and the microorganism becomes modified and flocculated to a 8304497 2. <* size * that can be easily filtered off. ~ ..

Derhalve wordt volgens de onderhavige uitvinding een werkwijzè voor het isoleren van L-tryptofaan uit een L-tryptofaan en een micro-organisme bevattend reactiemengsel, dat bij de produktie van L-trypto-5 faan onder toepassing van het micro-organisme wordt verkregen, verschaft, waarbij de werkwijze wordt gekenmerkt, doordat men het reactiemengsel met een anorganisch zuur instelt op een pH van 2-5 en het verhit, daarna het uitgevlokte micro-organisme afscheidt door (1) filtratie van het reactiemengsel terwijl L-tryptofaan in volledig opgeloste 10 toestand wordt gehouden of (2) toevoegen van een alkali aan het reactiemengsel om daarin aanwezig L-tryptofaan om te zetten in het alkali-metaalzout ervan en vervolgens dit mengsel te filtreren, terwijl het alkalimetaalzout in volledig opgeloste toestand wordt gehouden, en terugwinnen van L-tryptofaan uit het filtraat.Therefore, according to the present invention, a process for isolating L-tryptophan from an L-tryptophan and a microorganism-containing reaction mixture obtained in the production of L-tryptophan using the microorganism is provided the process being characterized by adjusting the reaction mixture to a pH of 2-5 with an inorganic acid and heating it, then separating the flocculated microorganism by (1) filtering the reaction mixture while L-tryptophan in completely dissolved or (2) adding an alkali to the reaction mixture to convert L-tryptophan contained therein into its alkali metal salt and then filtering this mixture, while keeping the alkali metal salt in completely dissolved state, and recovering L -tryptophan from the filtrate.

15 Voorbeelden van het "L-tryptofaan en een micro-organisme bevattend reactiemengsel, dat bij de produktie van L-tryptofaan onder toepassing van het micro-organisme wordt verkregen” (soms eenvoudigweg aangeduid als een reactiemengsel), zoals dit in de onderhavige beschrijving wordt aangeduid, zijn een reactiemengsel, verkregen door omzetting van L-se-20 rine en indool bij aanwezigheid van Escherichia coli, een reactiemengsel, verkregen volgens de boven aangegeven werkwijze onder toepassing van DL-serine in plaats van L-serine en Pseudomonas putida (MT-10182) of Pseudomonas punctata (MT-10243) tezamen met Escherichia coli als een serine-racemase; een reactiemengsel, verkregen onder toepassing van an-25 tranilzuur als precursor bij aanwezigheid van Bacillus subtilis en een reactiemengsel, verkregen onder toepassing van indool, pyrodruivezuur en ammoniak bij aanwezigheid van Aerobacter aerogenes.Examples of the "L-tryptophan and a microorganism-containing reaction mixture obtained from the production of L-tryptophan using the microorganism" (sometimes referred to simply as a reaction mixture), as used herein indicated are a reaction mixture obtained by reacting L-serine and indole in the presence of Escherichia coli, a reaction mixture obtained according to the above procedure using DL-serine instead of L-serine and Pseudomonas putida (MT -10182) or Pseudomonas punctata (MT-10243) together with Escherichia coli as a serine racemase; a reaction mixture obtained using anthranilic acid as a precursor in the presence of Bacillus subtilis and a reaction mixture obtained using indole, pyruvic acid and ammonia in the presence of Aerobacter aerogenes.

Deze L-tryptofaan bevattende reactiemengsels bevatten de gebruikte micro-organismen in de opgeloste of gesuspendeerde toestand. Aangezien 30 het volgens de stand van de techniek zeer moeilijk was de micro-organismen af te scheiden van L-tryptofaan, zijn de kosten van de zuive-ringstrap op industriële schaal hoog.These L-tryptophan-containing reaction mixtures contain the microorganisms used in the dissolved or suspended state. Since the prior art has found it very difficult to separate the microorganisms from L-tryptophan, the cost of the purification step on an industrial scale is high.

Wanneer het reactiemengsel een met water niet-mengbaar organisch oplosmiddel bevat, is het gewenst het organische oplosmiddel op ge-35 schikte wijze, zoals door scheiding van vloeistoffen of destillatie, voor de toepassing van de werkwijze volgens de uitvinding te verwijderen .When the reaction mixture contains a water-immiscible organic solvent, it is desirable to remove the organic solvent suitably, such as by liquid separation or distillation, before the process of the invention.

Wanneer het reactiemengsel onder neutrale tot alkalische omstandigheden wordt verhit, kan het micro-organisme in het reactiemengsel 40 niet worden uitgevlokt tot een materiaal dat in filtreerbare toestand 8 3 0 4 4 9 7 4 - % 3 verkeert. Het micro-organisme wordt daarentegen zeer gemafckelfjk uitgevlokt, wanneer het reactiemengsel na de omzetting met een anorganisch zuur wordt ingesteld op een pH van 2-5 en vervolgens wordt verhit (volgens de werkwijze van de uitvinding). Verrassenderwijs wordt L-trypto-5 faan hierbij niet ontleed en kan het uitgevlokte micro-organisme gemakkelijk door filtratie worden verwijderd. Wanneer na het op de boven beschreven wijze uitvlokken van het micro-organisme een alkali aan het reactiemengsel wordt toegevoegd om L-tryptofaan op te lossen, wordt het uitgevlokte micro-organisme nog in de filtreerbare toestand gehouden.When the reaction mixture is heated under neutral to alkaline conditions, the microorganism in the reaction mixture 40 cannot be flocculated to a material which is in the filterable state 8 3 0 4 4 9 7 4% 3. The microorganism, on the other hand, is highly flocculated when the reaction mixture is adjusted to a pH of 2-5 after reaction with an inorganic acid and then heated (according to the method of the invention). Surprisingly, L-trypto-5 phane is not decomposed and the flocculated microorganism can be easily removed by filtration. When an alkali is added to the reaction mixture after flocculating the microorganism as described above to dissolve L-tryptophan, the flocculated microorganism is still kept in the filterable state.

10 Derhalve betreft de werkwijze volgens de uitvinding een voor industriële toepassing geschikte werkwijze, waarbij onder toepassing van een micro-organisme geproduceerd L-tryptofaan op efficiënte wijze van het reactiemengsel kan worden afgescheiden.The process according to the invention therefore relates to a process suitable for industrial use, in which L-tryptophan produced using a micro-organism can be efficiently separated from the reaction mixture.

Voorbeelden van bij de werkwijze volgens de uitvinding gebruikt 15 anorganisch zuur zijn zwavelzuur, waterstofchloride en fosforzuur. De pH van het L-tryptofaan bevattende reactiemengsel wordt met een dergelijk anorganisch zuur ingesteld op 2-5, bij voorkeur 3-4. Het reactiemengsel, waarvan de pH is ingesteld, wordt vervolgens op een temperatuur van 60-120°C, bij voorkeur 80-105eC verhit. Door deze instelling 20 van de pH en behandeling met warmte wordt het micro-organisme gemodificeerd en uitgevlokt tot een grootte, die gemakkelijk kan worden afgefiltreerd, terwijl L-tryptofaan zonder enige verandering stabiel blijft.Examples of inorganic acid used in the process according to the invention are sulfuric acid, hydrogen chloride and phosphoric acid. The pH of the L-tryptophan-containing reaction mixture is adjusted to 2-5, preferably 3-4 with such an inorganic acid. The reaction mixture, whose pH is adjusted, is then heated to a temperature of 60-120 ° C, preferably 80-105 ° C. By adjusting the pH and heat treatment, the microorganism is modified and flocculated to a size which can be easily filtered off, while L-tryptophan remains stable without any change.

De tijdsduur van de behandeling met warmte is niet op bijzondere 25 wijze beperkt en de behandeling met warmte kan worden beëindigd op een tijdstip, waarop het micro-organisme in een geschikte toestand is uitgevlokt.The time of the heat treatment is not particularly limited and the heat treatment can be terminated at a time when the microorganism has flocculated in a suitable state.

Om het oplossen van het L-tryptofaan in het reactiemengsel te bevorderen kan een alcohol als oplosmiddel worden toegevoegd. Alcoholen 30 met een laag molecuulgewicht, zoals methanol, ethanol en isopropanol verdienen als alcohol de voorkeur, waarbij isopropanol bijzondere voorkeur verdient. De alcohol kan in een zodanige hoeveelheid worden gebruikt, dat de concentratie ervan in het reactiemengsel niet meer dan 70 gew.%, bij voorkeur 40-60 gew.% bedraagt. Wanneer het reactiemengsel 35 een met water niet-mengbaar organisch oplosmiddel bevat, wordt een tevoren bepaalde hoeveelheid van de alcohol toegevoegd nadat het met water niet-mengbare organische oplosmiddel is verwijderd.To aid the dissolution of the L-tryptophan in the reaction mixture, an alcohol as a solvent can be added. Low molecular weight alcohols such as methanol, ethanol and isopropanol are preferred alcohols, with isopropanol being particularly preferred. The alcohol can be used in an amount such that its concentration in the reaction mixture is not more than 70% by weight, preferably 40-60% by weight. When the reaction mixture contains a water-immiscible organic solvent, a predetermined amount of the alcohol is added after the water-immiscible organic solvent is removed.

Volgens een uitvoeringsvorm van de werkwijze volgens de uitvinding wordt na de bovenvermelde instelling van de pH en de behandeling met 40 warmte het uitgevlokte micro-organisme door filtratie van het reactie- 8304407 ———————— 4 mengsel afgescheiden, wat een water bevattende oplossing van L-trypto-faan geeft. Om de teruggewonnen hoeveelheid L-tryptofaan te verhogen, wordt deze filtratie uitgevoerd terwijl L-tryptofaan in het reactie-mengsel zich in de volledig opgeloste toestand bevindt, namelijk ter-5 wijl de concentratie van L-tryptofaan in het reactiemengsel beneden de oplosbaarheid ervan ligt. Derhalve is het gewoonlijk noodzakelijk het reactiemengsel te verhitten en heet te filtreren of het reactiemengsel volledig te verdunnen met water en het te filtreren. Vanuit het oogpunt van de doelmatigheid van de werkwijze verdient het de voorkeur het fil-10 treren in hete toestand onmiddellijk uit te voeren na de instelling van de pH en de behandeling met warmte. Bij de uitvoering van de filtratie kunnen geactiveerde kool en/of een filtratie-hulpmiddel van het sili-ciumdioxide-type worden toegepast.According to an embodiment of the method according to the invention, after the above-mentioned adjustment of the pH and the heat treatment, the flocculated microorganism is separated by filtration of the reaction mixture, which is a water. containing solution of L-tryptophan. To increase the amount of L-tryptophan recovered, this filtration is carried out while L-tryptophan in the reaction mixture is in the completely dissolved state, namely, while the concentration of L-tryptophan in the reaction mixture is below its solubility . Therefore, it is usually necessary to heat the reaction mixture and filter hot, or dilute the reaction mixture completely with water and filter it. From the viewpoint of the efficiency of the process, it is preferable to carry out the hot filtration immediately after the adjustment of the pH and the heat treatment. Activated carbon and / or a silicon dioxide-type filtration aid may be used in the filtration operation.

Volgens een andere uitvoeringsvorm van de werkwijze volgens de 15 uitvinding wordt als een andere methode voor het doen toenemen van de hoeveelheid van het teruggewonnen L-tryptofaan een alkali toegevoegd aan het reactiemengsel na het instellen van de pH ervan op 2-5 en het verhitten ervan om het micro-organisme uit te vlokken. Zo wordt L-tryp-tofaan volledig opgelost als het alkalizout ervan en daarna wordt het 20 reactiemengsel gefiltreerd, waarbij een water bevattende oplossing van L-tryptofaan wordt verkregen. Volgens de werkwijze van deze uitvoeringsvorm is geen hete filtratie of verdunning zoals bij de boven beschreven uitvoeringsvorm vereist en kunnen de kosten van de voor het verhitten benodigde energie worden bespaard of kan een water bevattende 25 oplossing met een hogere L-tryptofaanconcentratie worden behandeld.In another embodiment of the process of the invention, as another method of increasing the amount of the recovered L-tryptophan, an alkali is added to the reaction mixture after adjusting its pH to 2-5 and heating it to flocculate the microorganism. Thus, L-tryptophan is completely dissolved as its alkali salt and then the reaction mixture is filtered to yield an aqueous solution of L-tryptophan. According to the method of this embodiment, no hot filtration or dilution as in the above-described embodiment is required and the cost of the energy required for heating can be saved or an aqueous solution having a higher L-tryptophan concentration can be treated.

Derhalve is deze uitvoeringsvorm in het algemeen voordelig voor toepassing op industri'éle schaal.Therefore, this embodiment is generally advantageous for industrial scale application.

Het alkali, dat moet worden toegevoegd aan het reactiemengsel, dat is onderworpen aan de instelling van de pH en de behandeling met hitte, 30 kan elk alkali zijn, dat door reactie met L-tryptofaan een in water oplosbaar zout kan vormen. Voorbeelden zijn ammoniak, natriumhydroxide, kaliumhydroxide, natriumwaterstofcarbonaat en kaliumwaterstofcarbonaat. In de industrie verdient ammoniak de voorkeur wegens de grote oplosbaarheid ervan in de water bevattende oplossing en het gemakkelijk te-35 rugwinnen ervan.The alkali to be added to the reaction mixture subjected to pH adjustment and heat treatment can be any alkali which can form a water-soluble salt by reaction with L-tryptophan. Examples are ammonia, sodium hydroxide, potassium hydroxide, sodium hydrogen carbonate and potassium hydrogen carbonate. In the industry, ammonia is preferred because of its high solubility in the aqueous solution and its easy recovery.

De hoeveelheid van het alkali is gewoonlijk de hoeveelheid, die vereist is om het reactiemengsel te neutraliseren en het in het reactiemengsel aanwezige L-tryptofaan in het alkalizout ervan om te zetten. Er treden geen ernstige nadelen óp wanneer het alkali in overmaat wordt 40 gebruikt. Aangezien echter op het moment van het verwijderen van 8304497 ' t Γ 9 % 5 L-tryptofaankristallen de pH met een -zuur-wordt ingesteld op het iso-elektrische punt ervan teneinde de opbrengst van het geïsoleerde L-tryptofaan te verhogen» heeft de toepassing van een overmaat van het alkali op ongewenste wijze een toename van de hoeveelheid anorganische 5 zouten tot gevolg·The amount of the alkali is usually the amount required to neutralize the reaction mixture and convert the L-tryptophan present in the reaction mixture into its alkali salt. There are no serious drawbacks when the alkali is used in excess. However, since at the time of removing 8304497 the 9% 5 L-tryptophan crystals, the pH is adjusted to its isoelectric point with an -acid to increase the yield of the isolated L-tryptophan. of an excess of the alkali undesirably results in an increase in the amount of inorganic salts ·

Bij voorkeur wordt het alkali toegevoegd nadat het met warmte behandelde reactiemengsel is afgekoeld tot 0-50°C» in het bijzonder 5-20°C. Wanneer het alkali bij hogere temperaturen wordt toegevoegd» kan het L-tryptofaan ontleding of racemisatie ondergaan.Preferably, the alkali is added after the heat-treated reaction mixture has cooled to 0-50 ° C, especially 5-20 ° C. When the alkali is added at higher temperatures, the L-tryptophan may undergo decomposition or racemization.

10 Wanneer als het alkali ammoniakgas wordt gebruikt» verdient het de voorkeur gekoeld ammoniakgas in het reactiemengsel te blazen teneinde de oplosbaarheid van ammoniak in het reactiemengsel te vergroten· Wanneer een anorganische base» zoals natriumhydroxide» wordt gebruikt heeft de toevoeging daarvan bij kamertemperatuur de vorming van een al-15 kalimetaalzout van L-tryptofaan, dat zeer snel oplost, tot gevolg.When ammonia gas is used as the alkali, it is preferable to blow cooled ammonia gas into the reaction mixture in order to increase the solubility of ammonia in the reaction mixture. When an inorganic base such as sodium hydroxide is used, its addition at room temperature produces an al-15 potassium metal salt of L-tryptophan, which dissolves very quickly.

Wanneer geactiveerde kool en/of een filtratiehulpmiddel van het siliciumdioxide-type aan het het alkalizout van L-tryptofaan bevattende reactiemengsel wordt toegevoegd en dit wordt gefiltreerd bij aanwezigheid van het toegevoegde filtratiehulpmiddel, worden de micro-organis-20 men gemakkelijk afgescheiden en kan een water bevattende oplossing van het alkalizout van L-tryptofaan worden verkregen.When activated carbon and / or a silica-type filtration aid is added to the L-tryptophan-containing reaction mixture alkali salt and it is filtered in the presence of the added filtration aid, the microorganisms are easily separated and a water can be containing solution of the alkali salt of L-tryptophan.

L-tryptofaan kan worden teruggewonnen door de verkregen water bevattende oplossing van het alkalizout van L-tryptofaan te onderwerpen aan een gebruikelijke kristallisatiemethode, zoals neutralisatie.L-tryptophan can be recovered by subjecting the obtained aqueous solution of the L-tryptophan alkali salt to a conventional crystallization method, such as neutralization.

25 In de volgende voorbeelden wordt de uitvinding nader toegelicht.In the following examples the invention is further elucidated.

Voorbeeld IExample I

Een entoog van platina met Escherichia coli werd geënt in 50 ml van een kweekmedim met de onderstaande samenstelling (I), en er werd gedurende 20 uren onder schudden bij 30°C gekweekt. Eén liter van de 30 kweekvloeistof werd gecentrifugeerd en de cellen werden verzameld en gebruikt als een bron van tryptofaan-synthetase.An inoculum of platinum with Escherichia coli was inoculated into 50 ml of a culture medium of the following composition (I), and cultivated with shaking at 30 ° C for 20 hours. One liter of the culture broth was centrifuged and the cells were collected and used as a source of tryptophan synthetase.

Kweekmedium-samenstelling (I) vleesextract 1,0 gew.% 35 pepton 0,5 gew.% gistextract 0,1 gew.% KH2PO4 0,2 gew.% pH in de beginfase 7,0 40 Een entoog van platina met Pseudomonas putida (IFO 12996) werd ge- 8304497 « 6 ent in 50 ml van een kweekmedium met de volgende samenstelling (II) en er werd gedurende 20 uren onder schudden bij 30°C gekweekt. Eén liter van de kweekvloeistof werd gecentrifugeerd en de cellen werden verzameld en gebruikt als een bron van serine-racemase.Culture medium composition (I) meat extract 1.0 wt% 35 peptone 0.5 wt% yeast extract 0.1 wt% KH2PO4 0.2 wt% pH in the initial phase 7.0 40 An inoculum of platinum with Pseudomonas putida (IFO 12996) was inoculated into 50 ml of a culture medium of the following composition (II) and cultivated with shaking at 30 ° C for 20 hours. One liter of the broth was centrifuged and the cells were collected and used as a source of serine racemase.

55

Kweekmediumrsamenstelling (II) vleesextract 1,0 gew.% pepton 0,5 gew.%Culture medium composition (II) meat extract 1.0 wt% peptone 0.5 wt%

NaCl 0,5 gew.% 10 pH in de beginfase 7,0NaCl 0.5 wt% 10 pH in the initial phase 7.0

In een kolf van 300 ml, die was voorzien van een roerder, werden 11,3 g DL-serine, 6,0 g ammoniumsulfaat, 10 mg pyridoxalfosfaat en 66 g water gebracht en er werd goed geroerd. Geconcentreerde ammonia werd 15 aan de verkregen water bevattende oplossing toegevoegd on de pH ervan in te stellen op 8,5. Vervolgens werden 6,8 g (vaste stofgehalte 1,7 g) van een natte crème-achtige koek van Escherichia coli en 3,4 g (vaste stofgehalte 0,85 g) van een natte crème-achtige koek van Pseudomonas putida in water gesuspendeerd, waarbij een suspensie met een totaal vo-20 lume van 20 ml werd gevormd. De verkregen suspensie werd toegevoegd aan de bovengenoemde water bevattende oplossing.11.3 g DL-serine, 6.0 g ammonium sulfate, 10 mg pyridoxal phosphate and 66 g water were placed in a 300 ml flask equipped with a stirrer and stirred well. Concentrated ammonia was added to the resulting aqueous solution to adjust its pH to 8.5. Then 6.8 g (solid content 1.7 g) of a wet cream-like cake of Escherichia coli and 3.4 g (solid content of 0.85 g) of a wet cream-like cake of Pseudomonas putida were suspended in water , whereby a suspension with a total volume of 20 ml was formed. The resulting suspension was added to the above aqueous solution.

Nadat het mengsel op 35°C werd gehouden, werden 57,2 g van een 11,5 g indool bevattende oplossing in tolueen toegevoegd en werd de omzetting gedurende 48 uren bij 35°C uitgevoerd. De opbrengst van de 25 reactie was kwantitatief.After the mixture was kept at 35 ° C, 57.2 g of an 11.5 g indole-containing solution in toluene was added and the reaction was carried out at 35 ° C for 48 hours. The yield of the reaction was quantitative.

Het reactiemengsel werd gedestilleerd om tolueen te verwijderen en water werd toegevoegd om de totale hoeveelheid van het mengsel in te stellen op 450 g. Het werd met zwavelzuur ingesteld op een pH van 3,5 en er werden 3 g geactiveerde kool toegevoegd. Het mengsel werd verhit 30 op 95-98eC en gedurende 1 uur bij deze temperatuur gehouden. Het werd bij dezelfde temperatuur heet gefiltreerd, terwijl L-tryptofaan in de opgeloste toestand werd gehouden teneinde geactiveerde kool en het uitgevlokte micro-organisme af te scheiden. Het filtraat werd geconcentreerd tot de L-tryptofaanconcentratie 10 gew.% bedroeg. Het werd afge-35 koeld tot 20°C en de verkregen kristallen werden afgescheiden door filtratie.The reaction mixture was distilled to remove toluene and water was added to adjust the total amount of the mixture to 450 g. It was adjusted to a pH of 3.5 with sulfuric acid and 3 g of activated charcoal were added. The mixture was heated at 95-98 ° C and held at this temperature for 1 hour. It was filtered hot at the same temperature while keeping L-tryptophan in the dissolved state to separate activated charcoal and the flocculated microorganism. The filtrate was concentrated until the L-tryptophan concentration was 10% by weight. It was cooled to 20 ° C and the crystals obtained were separated by filtration.

L-tryptofaankrlstallen met een zuiverheid van 99,5% werden in een opbrengst van 80%, betrokken op indool, geïsoleerd.L-tryptophan crystals of 99.5% purity were isolated in 80% yield based on indole.

Voorbeeld IIExample II

40 Dezelfde omzetting als in voorbeeld I werd uitgevoerd in water on- 8304497 ft 7 m der toepassing van cellen van Escherichia call (MT-10232) en cellen van Pseudomonas punctata (MI-10243), die op dezelfde wijze als in.voorbeeld I waren gekweekt. Het reactiemengsel werd door centrifugeren gefiltreerd teneinde de daarin geprecipiteerde L-tryptofaankristallen en de 5 bij de omzetting gebruikte microbiële cellen af te scheiden*The same conversion as in Example I was carried out in water using Escherichia call cells (MT-10232) and Pseudomonas punctata cells (MI-10243), which were in the same manner as in Example I. grown. The reaction mixture was filtered by centrifugation to separate the L-tryptophan crystals precipitated therein and the 5 microbial cells used in the conversion *

De crème-achtige koek werd in water gebracht, waarbij de concentratie van L-tryptofaan werd ingesteld op 4,0 gew.Z. Vervolgens werd de pH van de oplossing met fosforzuur ingesteld op 4,0. 2 g geactiveerde kool en 2 g Celite 545 (een handelsnaam voor een produkt van John8-10 Manville Corporation) werden toegevoegd en het mengsel werd gedurende 1 uur bij 95-98eC verhit. Het werd bij dezelfde temperatuur heet gefiltreerd teneinde geactiveerde kool, Celite en uitgevlokte microbiële cellen af te scheiden. Het filtraat werd geconcentreerd tot een L-tryp-tofaanconcentratie van 15 gew.Z en gekoeld tot 20°C. De geprecipiteerde 15 kristallen werden gewonnen door filtratie.The creamy cake was placed in water, the concentration of L-tryptophan being adjusted to 4.0 wt. Then the pH of the solution was adjusted to 4.0 with phosphoric acid. 2 g of activated charcoal and 2 g of Celite 545 (a trade name for a product of John8-10 Manville Corporation) were added and the mixture was heated at 95-98 ° C for 1 hour. It was filtered hot at the same temperature to separate activated charcoal, Celite and flocculated microbial cells. The filtrate was concentrated to an L-tryptophan concentration of 15 wt% and cooled to 20 ° C. The precipitated crystals were collected by filtration.

De opbrengst aan geïsoleerd L-tryptofaan was 87Z en de zuiverheid ervan was 99,7Z.The yield of isolated L-tryptophan was 87Z and its purity was 99.7Z.

Voorbeeld IIIExample III

Dezelfde crème-achtige filterkoek, die L-tryptofaan en microbiële 20 cellen omvatte, als was verkregen in voorbeeld II werd gesuspendeerd in een mengsel van water van isopropanol met een volumeverhouding van 1:1 en de concentratie van L-tryptofaan werd ingesteld op 7 gew.Z. Er werd geconcentreerd zoutzuur toegevoegd om de pH van de suspensie in te stellen op 3,5. Geactiveerde kool (3 g) werd toegevoegd en het mengsel 25 werd gedurende 1 uur bij 80-84°C verhit. Het mengsel werd bij dezelfde temperatuur heet gefiltreerd. Het filtraat werd afgekoeld tot 5°C en de geprecipiteerde kristallen werden verzameld door filtratie.The same cream-like filter cake, which included L-tryptophan and microbial cells, as obtained in Example II was suspended in a mixture of water of isopropanol with a volume ratio of 1: 1 and the concentration of L-tryptophan was adjusted to 7 wt .Z. Concentrated hydrochloric acid was added to adjust the pH of the suspension to 3.5. Activated charcoal (3 g) was added and the mixture was heated at 80-84 ° C for 1 hour. The mixture was filtered hot at the same temperature. The filtrate was cooled to 5 ° C and the precipitated crystals were collected by filtration.

De opbrengst aan geïsoleerd L-tryptofaan was 75% en de zuiverheid was 98,5%.The yield of isolated L-tryptophan was 75% and the purity was 98.5%.

30 Voorbeeld IVExample IV

Dezelfde omzetting als in voorbeeld I werd uitgevoerd. Na verwijderen van tolueen werd het reactiemengsel verdund met water tot de L-tryptofaanconcentratie 1 gew.Z was. De pH van het reactiemengsel werd met zwavelzuur ingesteld op 4,0 en er werd gedurende 2 uren bij kamer-35 temperatuur geroerd om L-tryptofaan op te lossen. Geactiveerde kool (3 g) en 3 g Standard Supercell (een handelsnaam voor een produkt van Johns-Manville Corporation) als een filtreerhulpmiddel werden toegevoegd en de oplossing werd bij kamertemperatuur gefiltreerd. Het filtraat werd geconcentreerd tot de L-tryptofaanconcentratie 10 gew.Z was 40 en vervolgens afgekoeld tot 5°C. De geprecipiteerde cellen werden ver- 830^497The same conversion as in Example I was performed. After removing toluene, the reaction mixture was diluted with water until the L-tryptophan concentration was 1 wt.%. The pH of the reaction mixture was adjusted to 4.0 with sulfuric acid and stirred at room temperature for 2 hours to dissolve L-tryptophan. Activated charcoal (3 g) and 3 g Standard Supercell (a trade name for a product of Johns-Manville Corporation) as a filter aid were added and the solution filtered at room temperature. The filtrate was concentrated to L-tryptophan concentration 10 wt. Z was 40 and then cooled to 5 ° C. The precipitated cells were 830 ^ 497

Aa

» 9 8 zameld door filtratie*»9 8 collected by filtration *

De opbrengst aan geïsoleerd L-tryptofaan was 79% en de zuiverheid ervan was 98,8%.The yield of isolated L-tryptophan was 79% and its purity was 98.8%.

Voorbeeld VExample V

5 Op dezelfde wijze als in voorbeeld I werden indool en DL-serine in een tolueenoplossing omgezet* De opbrengst van de reactie was kwantitar tief. Tolueen werd door destillatie uit het reactiemengsel verwijderd.In the same manner as in Example 1, indole and DL-serine were converted into a toluene solution. * The yield of the reaction was quantitative. Toluene was removed from the reaction mixture by distillation.

Het verkregen, L-tryptofaan bevattende reactiemengsel werd met zwavelzuur ingesteld op pH 4,0 en gedurende 1 uur bij 95-98°C verhit.The resulting L-tryptophan-containing reaction mixture was adjusted to pH 4.0 with sulfuric acid and heated at 95-98 ° C for 1 hour.

10 Na afkoelen tot kamertemperatuur werd ammoniakgas in het reactiemengsel geblazen teneinde het daarin aanwezige L-tryptofaan als het ammonium-zout ervan op te lossen. Geactiveerde kool in een hoeveelheid van 10 gew.%, betrokken op L-tryptofaan en Celite 545 (een handelsnaam voor een produkt van Johns-Manville Corporation) in een hoeveelheid van 10 15 gew.%, betrokken op L-tryptofaan, werden aan de oplossing toegevoegd en de oplossing werd gefiltreerd. Het micro-organisme werd samen met Celite 545 en geactiveerde kool afgescheiden. Het filtraat werd op 100 °C verhit om ammoniak te verwijderen en de concentratie aan L-tryp-tofaan werd door toevoeging van water ingesteld op 10 gew.%. De oplos-20 sing werd gekoeld tot 20eC en de geprecipiteerde kristallen werden afgescheiden door filtratie, gewassen met water en gedroogd.After cooling to room temperature, ammonia gas was blown into the reaction mixture to dissolve the L-tryptophan contained therein as its ammonium salt. Activated carbon in an amount of 10 wt%, based on L-tryptophan and Celite 545 (a trade name for a product of Johns-Manville Corporation) in an amount of 10 wt%, based on L-tryptophan, were added to the solution added and the solution was filtered. The microorganism was separated together with Celite 545 and activated charcoal. The filtrate was heated to 100 ° C to remove ammonia, and the concentration of L-tryptophan was adjusted to 10 wt% by adding water. The solution was cooled to 20 ° C and the precipitated crystals were separated by filtration, washed with water and dried.

De opbrengst aan geïsoleerd L-tryptofaan was 75%, betrokken op het verkregen tryptofaan, en de door vloeistofchromatografle gemeten zuiverheid was 98,5%.The yield of isolated L-tryptophan was 75% based on the tryptophan obtained, and the purity measured by liquid chromatography was 98.5%.

25 Voorbeeld VIExample VI

Hetzelfde L-tryptofaan bevattende reactiemengsel als is verkregen in voorbeeld V werd gecentrifugeerd en een mengsel van L-tryptofaan-kristallen en de micro-organismen werd verkregen als een crime-achtige koek. De crème-achtige koek werd in water gebracht, waarbij een suspen-30 sie met een L-tryptofaanconcentratie van 30 gew.% werd gevormd. De pH van de suspensie werd ingesteld op 3,5 en de suspensie werd gedurende 2 uren bij 95-98°C verhit teneinde de bij de omzetting gebruikte micro-organismen uit te vlokken. Na afkoelen tot kamertemperatuur werd water bevattende ammoniak toegevoegd teneinde L-tryptofaan in het reactie-35 mengsel als het atnmoniumzout ervan op te lossen. Aan de oplossing werd 20 gew.% geactiveerde kool, betrokken op L-tryptofaan, toegevoegd en de uitgevlokte microbiële cellen werden bij kamertemperatuur afgescheiden. In het filtraat werd bij verhoogde temperatuur stikstofgas geblazen om ammoniak te verwijderen. Na afkoelen tot 5eC werd het geprecipiteerde 40 L-tryptofaan afgescheiden'door een centrifugale ontwateringsinrichr 83 0 4 4 9 7 Λ « % 9 ting.The same L-tryptophan-containing reaction mixture as obtained in Example V was centrifuged and a mixture of L-tryptophan crystals and the microorganisms was obtained as a crime-like cake. The creamy cake was placed in water to form a slurry with an L-tryptophan concentration of 30% by weight. The pH of the slurry was adjusted to 3.5 and the slurry was heated at 95-98 ° C for 2 hours to flocculate the microorganisms used in the reaction. After cooling to room temperature, aqueous ammonia was added to dissolve L-tryptophan in the reaction mixture as its ammonium salt. 20% by weight of activated charcoal based on L-tryptophan was added to the solution and the flocculated microbial cells were separated at room temperature. Nitrogen gas was blown into the filtrate at elevated temperature to remove ammonia. After cooling to 5 ° C, the precipitated 40 L-tryptophan was separated by a centrifugal dewaterer 83% 4 9 7%.

De opbrengst van geïsoleerd L-tryptofaan was. 88%, betrokken op het verkregen tryptofaan en de zuiverheid ervan was 98,0%.The yield of isolated L-tryptophan was. 88%, based on the tryptophan obtained, and its purity was 98.0%.

Voorbeeld VIIExample VII

5 Een 12 gew.procents oplossing van L-tryptofaan in water, die op dezelfde wijze als in voorbeeld V was verkregen, werd met fosforzuur ingesteld op pH 4,0 en op 95-98°C verwarmd. Na afkoelen tot 25°C werd een 20 gew.procents oplossing van natriumhydroxide in water toegevoegd teneinde de pH van de oplossing op 10 te brengen. Asm. de water bevat-10 tende L-tryptofaanoplossing werden 10 gew.% geactiveerde kool, betrokken op tryptofaan, en 10 gew.% Standard Supercell (een handelsnaam voor een produkt van Johns-Manville Corporation), betrokken op tryptofaan, als filtreerhulpmiddel toegevoegd en de oplossing werd bij 20°C gefiltreerd. Het filtraat werd met azijnzuur geneutraliseerd tot een pH van 15 6 en de geprecipiteerde kristallen van L-tryptofaan werden afgescheiden door filtratie en gedroogd. De opbrengst aan geïsoleerd L-tryptofaan was 75%, betrokken op het verkregen tryptofaan, en de zuiverheid ervan was 99,2%.A 12% by weight aqueous solution of L-tryptophan, obtained in the same manner as in Example V, was adjusted to pH 4.0 with phosphoric acid and heated to 95-98 ° C. After cooling to 25 ° C, a 20% strength aqueous sodium hydroxide solution was added to adjust the pH of the solution to 10. Asm. the aqueous L-tryptophan solution containing 10% by weight of activated charcoal based on tryptophan and 10% by weight of Standard Supercell (a trade name for a product of Johns-Manville Corporation) based on tryptophan were added as a filter aid and the solution was filtered at 20 ° C. The filtrate was neutralized to a pH of 15 with acetic acid and the precipitated crystals of L-tryptophan were separated by filtration and dried. The yield of isolated L-tryptophan was 75% based on the tryptophan obtained, and its purity was 99.2%.

Voorbeeld VIIIExample VIII

20 Een crime-achtige koek van L-tryptofaan, die op dezelfde wijze als in voorbeeld V was verkregen, werd gedispergeerd in een mengsel van war ter en isopropanol in een volumeverhouding van 1:1, waarbij een suspensie met een L-tryptofaanconcentratie van 20 gew.% werd gevormd. De suspensie werd met zwavelzuur ingesteld op pH 3,5 en werd vervolgens gedu-25 rende 2 uren bij 80-84eC verhit. Na afkoelen tot 5°C werd ammoniakgas in het reactiemengsel geblazen teneinde L-tryptofaan in het oplosmiddel als het ammoniumzout ervan op te lossen. Aan de oplossing werd 20 gew.% geactiveerde kool, betrokken op tryptofaan, toegevoegd en de oplossing werd onder zuiging gefiltreerd, wat een lichtgele heldere L-tryptofaanr 30 oplossing gaf. In de oplossing werd onder verwarmen stikstofgas geblazen teneinde ammoniak te verwijderen. De oplossing werd gekoeld en de geprecipiteerde L-tryptofaankristallen werden afgescheiden door filtratie en gedroogd.A crime-like cake of L-tryptophan, which was obtained in the same manner as in Example V, was dispersed in a mixture of warmer and isopropanol in a volume ratio of 1: 1, whereby a suspension with an L-tryptophan concentration of 20 wt% was formed. The slurry was adjusted to pH 3.5 with sulfuric acid and then heated at 80-84 ° C for 2 hours. After cooling to 5 ° C, ammonia gas was blown into the reaction mixture to dissolve L-tryptophan in the solvent as its ammonium salt. To the solution, 20% by weight of activated charcoal based on tryptophan was added and the solution was filtered under suction to give a light yellow clear L-tryptophan solution. Nitrogen gas was blown into the solution with heating to remove ammonia. The solution was cooled and the precipitated L-tryptophan crystals were separated by filtration and dried.

De opbrengst aan geïsoleerd L-tryptofaan was 83%, betrokken op het 35 verkregen tryptofaan, en de zuiverheid ervan was 98,8%.The yield of isolated L-tryptophan was 83% based on the tryptophan obtained, and its purity was 98.8%.

8304497 _ - ___—^8304497 _ - ___— ^

Claims (2)

1. Werkwijze voor het afscheiden van L—tryptofaan uit een L-tryp-tofaan en een miero-organisme bevattend reactiemengsel, dat bij de pro-duktie van L-tryptofaan onder toepassing van het micro-organisme wordt 5 verkregen, met het kenmerk, dat men het reac tiemengsel met anorganisch zuur instelt op een pH van 2-5, het verhit en daarna het verhitte reac-tiemengsel filtreert teneinde het micro-organisme te verwijderen.1. A method for separating L-tryptophan from an L-tryptophan and an antimony-containing reaction mixture obtained in the production of L-tryptophan using the microorganism, characterized in that: adjusting the reaction mixture with inorganic acid to a pH of 2-5, heating it and then filtering the heated reaction mixture to remove the microorganism. 2. Werkwijze voor het afscheiden van L-tryptofaan uit een L-tryp-tofaan en een micro-organisme bevattend reac tiemengsel, dat bij de pro- 10 duktie van L-tryptofaan onder toepassing van het micro-organisme wordt verkregen, met het kenmerk, dat men het reac tiemengsel met anorganisch zuur instelt op een pH van 2-5, het verhit, een alkali aan het verhitte reactiemengsel toevoegt teneinde het daarin aanwezige L-tryptofaan om te zetten in het alkalimetaalzout ervan en daarna het reactiemengsel 15 filtreert om het micro-organisme te verwijderen. 11I II l-l 83044972. A method of separating L-tryptophan from an L-tryptophan and a microorganism-containing reaction mixture obtained in the production of L-tryptophan using the microorganism, characterized adjusting the reaction mixture with inorganic acid to a pH of 2-5, heating it, adding an alkali to the heated reaction mixture to convert the L-tryptophan contained therein into its alkali metal salt and then filtering the reaction mixture to microorganism. 11I II l-l 8304497
NL8304497A 1984-01-10 1983-12-30 METHOD FOR SEPARATING L-TRYPTOPHANE NL8304497A (en)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE3400603 1984-01-10
DE19843400603 DE3400603A1 (en) 1984-01-10 1984-01-10 METHOD FOR SEPARATING L-TRYPTOPHANE

Publications (1)

Publication Number Publication Date
NL8304497A true NL8304497A (en) 1985-07-16

Family

ID=6224602

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
NL8304497A NL8304497A (en) 1984-01-10 1983-12-30 METHOD FOR SEPARATING L-TRYPTOPHANE

Country Status (7)

Country Link
AU (1) AU566747B2 (en)
CA (1) CA1215068A (en)
CH (1) CH659828A5 (en)
DE (1) DE3400603A1 (en)
FR (1) FR2557873B1 (en)
GB (1) GB2152031B (en)
NL (1) NL8304497A (en)

Families Citing this family (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH0648990B2 (en) * 1987-01-14 1994-06-29 味の素株式会社 Method for purifying tryptophan
BR8803497A (en) * 1987-07-13 1989-01-31 Mitsui Toatsu Chemicals PROCESS FOR THE PREPARATION OF L-TRYPTOPHANE AND PROCESS FOR THE PREPARATION OF AQUEOUS ENZYMATIC SOLUTION OF TRIPTOPHANE SYNTHESIS OUTRIPTOPHANESE
KR950013858B1 (en) * 1987-10-12 1995-11-17 미쓰이 도아쓰 가가쿠 가부시기가이샤 Process for producing l-tryptophane
DE3915616C1 (en) * 1989-05-12 1990-06-21 Gesellschaft Fuer Biotechnologische Forschung Mbh (Gbf), 3300 Braunschweig, De
JPH0489479A (en) * 1990-08-01 1992-03-23 Ajinomoto Co Inc Recovery of optically active tryptophan
BR9605094A (en) * 1995-10-13 1998-07-07 Ajinomoto Kk Process for removing cells from a fermentation broth
EP0770676A3 (en) * 1995-10-23 1999-05-19 Ajinomoto Co., Ltd. Method for treating fermentation broth
DE19540788A1 (en) * 1995-11-02 1997-05-07 Degussa Use of aqueous L-tryptophan and / or L-threonine salt solutions
CA2569204A1 (en) 2006-11-28 2008-05-28 Apotex Technologies Inc. Crystalline d-isoglutamyl-d-tryptophan and the mono ammonium salt of d-isoglutamyl-d-tryptophan
CA2571645A1 (en) 2006-12-19 2008-06-19 Apotex Technologies Inc. Pharmaceutically acceptable salts of thymodepressin and processes for their manufacture

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US2973304A (en) * 1958-10-02 1961-02-28 Pfizer & Co C Fermentation process
FR1343804A (en) * 1962-10-25 1963-11-22 Sumitomo Chemical Co Process for the production of l-amino acids by fermentation
US4411991A (en) * 1980-10-07 1983-10-25 Kanegafuchi Chemical Industry Company, Limited Process for fermentative production of amino acids

Also Published As

Publication number Publication date
GB8334071D0 (en) 1984-02-01
AU2274983A (en) 1985-06-27
FR2557873A1 (en) 1985-07-12
GB2152031A (en) 1985-07-31
GB2152031B (en) 1987-07-22
CH659828A5 (en) 1987-02-27
CA1215068A (en) 1986-12-09
DE3400603A1 (en) 1985-07-18
FR2557873B1 (en) 1986-05-16
AU566747B2 (en) 1987-10-29

Similar Documents

Publication Publication Date Title
NL8304497A (en) METHOD FOR SEPARATING L-TRYPTOPHANE
US10759737B2 (en) Method for extracting 1,5-pentanediamine from solution system containing 1,5-pentanediamine salt
AU620723B2 (en) Process for purifying tryptophan
US4335209A (en) Process for preparation of L-tryptophan by enzyme
NL8501093A (en) METHOD FOR RACEMIZING AN OPTICALLY ACTIVE N-BENZYLIDEENAMINOIC ACID AMIDE
JPH10137771A (en) Method for removing water-soluble high molecular compound
RU2159247C2 (en) Method of removing n-phosphonomethylglycine and its salts or its ionic form from aqueous n-phosphonomethylglycine production waste mixture
KR870001146B1 (en) L-tryptophan isolation method
NL8304496A (en) METHOD FOR INSULATING L-AMINO ACIDS
KR900008249B1 (en) Process for preparing l-cystine
RU2094461C1 (en) Method of preparing 5-hydroxypyrazine carboxylic acid and/or their salts
JPH0623182B2 (en) Method for separating L-cysteine hydrochloride monohydrate
KR900005773B1 (en) Process for preparing l-tryptophan and process for preparing a stable agueous enzyme solution
JPH0365954B2 (en)
JPS5945897A (en) Separation of l-tryptophan
US5329014A (en) Method for recovering optically active tryptophan
JP2001504332A (en) Improved production method of L-aspartic acid
JPS5945896A (en) Separation of l-tryptophan
EP0140713A2 (en) Method for production and recovery of L-Phenylalanine
US3860599A (en) Preparation of hydroxyquinolines
JPH0344759B2 (en)
JPS60184392A (en) Preparation of d-alpha-amino acid
SU1495309A1 (en) Method of treating waste water
GB2151634A (en) Improvement in enzyme reaction
JPH09313195A (en) Production of s-phenyl-l-cysteine

Legal Events

Date Code Title Description
A1B A search report has been drawn up
BC A request for examination has been filed
BN A decision not to publish the application has become irrevocable
BN A decision not to publish the application has become irrevocable