KR20240043664A - 사이토카인 및 항체가 표면 발현된 자연살해세포 유래 세포외 소포체를 포함하는 암 질환 치료용 조성물 - Google Patents
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Abstract
본 발명은 사이토카인 및 항체가 표면 발현된 자연살해세포 유래 세포외소포체를 포함하는 암 질환 치료용 조성물에 관한 것으로, 인간 자연살해세포 표면에 IL-15 및 암세포 특이적 항체를 발현시켜 암세포에 특이적으로 작용하면 강력한 세포 독성 활성을 나타낼 수 있는 세포외 소포체를 제공할 수 있으며, 상기 세포외 소포체는 인체에 안전하면서 우수한 항암 효과를 나타내는 새로운 항암제로 제공될 수 있다. 또한, 본 발명의 상기 세포외 소포체는 내부에 암에 대한 치료 효과를 나타내는 약물 또는 생리활성물질을 봉입함으로써, 특정 암세포에 약물 또는 생리활성물질을 전달하는 용도로 활용될 수 있으므로, 새로운 암 치료 수단으로 제공될 수 있다.
Description
본 발명은 사이토카인 및 항체가 표면 발현된 자연살해세포 유래 세포외 소포체를 포함하는 암 질환 치료용 조성물을 제공한다.
세포외 소포체(Extracellular vesicle; EV)는 세포로부터 유래된 나노 사이즈의 소포체를 의미하며, 분비 형태 및 크기에 따라 엑소좀(exosomes), 마이크로베시클(microvesicles), 엑토좀(ectosomes), 마이크로파티클(microparticles), 막 소포체(membrane vesicles), 나노베시클(nanovesicles), 외막 소포체(outer membrane vesicles) 등으로 분류된다. 세포외 소포체는 세포의 주요 성분인 핵산 및 단백질을 포함하여 세포간 소통의 주요 수단이다.
최근에 암환자들에서 세포외 소포체의 분비량이 증가되는 경우가 보고되었으며, 암환자에서 특이적으로 나타나는 특정 단백질의 변화가 관찰됨에 따라, 세포외소포체가 암을 진단하는 마커로 활용될 가능성이 주목되고 있다. 또한, 세포외 소포체는 인체 내에서 안정성이 높으며 면역 반응을 유발하지 않기 때문에, 내부의 약물을 포함하면 체내의 타겟 세포에 선택적으로 약물을 전달하는 것이 가능하며, 세포외 소포체를 다양한 세포로부터 분리 및 정제하는 것이 용이하므로 세포외 소포체를 약물 전달체로 활용하는 연구가 진행되고 있다.
한편, 암은 비정상적인 세포의 성장으로 발병되는 질환으로, 국내에서는 사망원인의 1위를 차지할 정도로 암 환자의 사망률이 높은 것으로 보고되었다. 암의종류는 수십 종에 이르며, 주로 발병된 조직의 위치에 따라 암을 분류한다. 암은양성종양과 악성종양으로 구분되는데, 양성종양은 비교적 성장 속도가 느리고 종양의 원발생 부위에서 다른 조직으로 이동되는 전이가 발생하지 않는 반면, 악성종양은 원발부를 떠나 다른 조직으로 침윤되어 빠르게 성장하는 특성을 가져 생명을 위협한다.
암의 치료 방법은 수술 요법, 화학 요법, 방사선 요법 등이 사용되고 있으나, 오랜 연구에도 불구하고 치료를 진행한 암 환자의 50% 이상이 사망한 것으로보고되었다. 다양한 치료 방법들을 적용함에도 불구하고 암을 치료하는 것이 어려운 이유는 암 환자를 치료하기 위해 외과적 수술로 암을 제거하여도 환자의 다른조직으로 암세포가 전이되어 암이 재발되거나, 초기 치료 단계에서는 항암제로 종양의 크기가 감소하다가 치료 도중 또는 치료가 끝난 이후에 항암제에 내성을 나타내는 암세포들로 인하여 암이 급격하게 악화되기 때문이다.
특히, 통상적으로 주로 사용되는 화학 요법인 항암제는 주로 암세포의 증식을 억제하는 기작을 통해 항암 효과를 나타내는 약물로 약 60여 종의 다양한 종류가 개발되었다. 그러나 대부분의 항암제는 암세포뿐만 아니라 정상 세포에도 비선 택적으로 작용하기 때문에, 탈모, 극심한 피로감, 구토, 오심, 피부 및 손톱의 변색, 신경계 부작용 등의 심각한 부작용을 나타내는 문제가 있다.
기존의 항암제의 문제점을 극복하기 위해 암세포에 특이적으로 작용되는 치료 방법으로 표적 항암제, 면역세포를 이용한 항암 치료 등이 개발되었다. 그러나 이러한 치료 방법들은 환자의 특성에 따라 치료 효율의 차이나 나타나며, 면역계의 과도한 활성으로 인한 급성 염증 질환이 발병되는 등의 문제점이 해결되지 않았다. 따라서 암세포에 특이적인 새로운 치료 방법의 개발이 요구되고 있다.
본 발명의 목적은 사이토카인 및 항체를 표면에 발현하는 세포외 소포체를 제공하는 데에 있다.
본 발명의 또 다른 목적은 상기 세포외 소포체를 유효성분으로 포함하는 암의 예방 또는 치료용 약학적 조성물을 제공하는 데에 있다.
본 발명의 또 다른 목적은 상기 세포외 소포체를 포함하는 조성물로, 상기 세포외 소포체의 내부에 약물 또는 생리활성물질이 봉입된 것을 특징으로 하는 약물 또는 생리활성물질 전달용 조성물을 제공하는 데에 있다.
본 발명의 또 다른 목적은 상기 세포외 소포체를 제조하는 방법으로서, 사이토카인을 암호화하는 유전자, 링커를 암호화하는 링커 도메인, 및 막관통 단백질를 암호화하는 막관통 도메인을 포함하는 제1벡터를 제조하는 단계; 항체를 암호화하는 유전자, 링커를 암호화하는 링커 도메인, 및 막관통 단백질를 암호화하는 막관통 도메인을 포함하는 제2벡터를 제조하는 단계; 렌티 바이러스를 이용하여 상기 제1벡터 및 제2벡터로 세포를 형질전환하는 단계; 및 상기 제1벡터 및 제2벡터로 형질전환된 세포를 배양한 배양액으로부터 세포외 소포체를 분리하는 단계;를 포함하는 방법 제공하는 데에 있다.
상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 사이토카인 및 항체를 표면에 발현하는 세포외 소포체를 제공한다.
또한, 본 발명은 세포외 소포체를 유효성분으로 포함하는 암의 예방 또는 치료용 약학적 조성물을 제공한다.
또한, 본 발명은 세포외 소포체를 포함하는 조성물로, 상기 세포외 소포체의 내부에 약물 또는 생리활성물질이 봉입된 것을 특징으로 하는 약물 또는 생리활성물질 전달용 조성물을 제공한다.
또한, 본 발명은 세포외 소포체를 제조하는 방법으로서, 사이토카인을 암호화하는 유전자, 링커를 암호화하는 링커 도메인, 및 막관통 단백질를 암호화하는 막관통 도메인을 포함하는 제1벡터를 제조하는 단계; 항체를 암호화하는 유전자, 링커를 암호화하는 링커 도메인, 및 막관통 단백질를 암호화하는 막관통 도메인을 포함하는 제2벡터를 제조하는 단계; 렌티 바이러스를 이용하여 상기 제1벡터 및 제2벡터로 세포를 형질전환하는 단계; 및 상기 제1벡터 및 제2벡터로 형질전환된 세포를 배양한 배양액으로부터 세포외 소포체를 분리하는 단계;를 포함하는 방법을 제공한다.
본 발명은 사이토카인 및 항체가 표면 발현된 자연살해세포 유래 세포외 소포체를 포함하는 암 질환 치료용 조성물에 관한 것으로, 사이토카인을 암호화하는 유전자를 포함하는 제1벡터 및 항체를 암호화하는 유전자를 포함하는 제2벡터를 자연살해(Natural Killer, NK)세포에 형질전환함으로써, 사이토카인 및 항체를 모두 세포막 표면에 발현하는 NK세포를 제조하고, 사이토카인 및 항체를 모두 표면에 발현하는 세포외 소포체를 상기 NK세포로부터 제조할 수 있으며, 상기 세포외 소포체는 타깃 세포에 따라 특정 사이토카인 또는 특정 항체가 발현될 수 있도록 제1벡터 및 제2벡터를 조합하여 특정 항체로 타깃할 수 있는 세포에 원하는 사이토카인 반응이 유도할 수 있고, 인체에 안전하면서 우수한 항암 효과를 나타내는 새로운 항암제로 제공될 수 있다. 또한, 본 발명의 상기 세포외 소포체는 내부에 암에 대한 치료 효과를 나타내는 약물 또는 생리활성물질을 봉입함으로써, 특정 암세포에 약물 또는 생리활성물질을 전달하는 용도로 활용될 수 있으므로, 새로운 암 치료 수단으로 제공될 수 있다.
도 1은 사이토카인 및 항체를 암호화하는 유전자, 링커를 암호화하는 링커 도메인, 및 막관통 단백질을 암호화하는 막관통 도메인으로 구성된 벡터를 NK세포 유래 엑소좀을 제조하는 방법을 도시하여 나타낸 것이다.
도 2는 본 발명의 사이토카인 및 항체를 발현하는 렌티바이러스를 제작한 결과이다.
도 3은 본 발명의 세포외 소포체를 제조하기 위해 사이토카인 또는 항체가 발현되도록 형질전환된 NK세포에서 사이토카인 또는 항체가 발현되는지 확인한 결과이다.
도 4는 본 발명의 세포외 소포체를 제조하기 위해 사이토카인 또는 항체가 발현되도록 형질전환된 NK세포에서 세포독성 유전자의 발현 변화를 측정한 결과이다.
도 5는 본 발명의 세포외 소포체를 획득하기 위한 NK세포 배양 조건을 검증한 결과이다.
도 6은 본 발명에 따라 제조된 세포외 소포체에를 폐암세포에 처리한 뒤 암세포사멸을 확인한 결과이다.
도 7은 본 발명에 따라 제조된 세포외 소포체가 처리된 NK세포와 폐암세포의 공동 배양에서 폐암세포의 세포사멸을 확인한 결과이다.
도 2는 본 발명의 사이토카인 및 항체를 발현하는 렌티바이러스를 제작한 결과이다.
도 3은 본 발명의 세포외 소포체를 제조하기 위해 사이토카인 또는 항체가 발현되도록 형질전환된 NK세포에서 사이토카인 또는 항체가 발현되는지 확인한 결과이다.
도 4는 본 발명의 세포외 소포체를 제조하기 위해 사이토카인 또는 항체가 발현되도록 형질전환된 NK세포에서 세포독성 유전자의 발현 변화를 측정한 결과이다.
도 5는 본 발명의 세포외 소포체를 획득하기 위한 NK세포 배양 조건을 검증한 결과이다.
도 6은 본 발명에 따라 제조된 세포외 소포체에를 폐암세포에 처리한 뒤 암세포사멸을 확인한 결과이다.
도 7은 본 발명에 따라 제조된 세포외 소포체가 처리된 NK세포와 폐암세포의 공동 배양에서 폐암세포의 세포사멸을 확인한 결과이다.
이하, 본 발명을 보다 상세하게 설명한다.
본 발명은 사이토카인 및 항체를 표면에 발현하는 세포외 소포체를 제공한다.
상기 세포외 소포체를 구성하는 인지질 이중막은 막관통 단백질을 포함하고, 상기 막관통 단백질은 링커를 통해 상기 사이토카인 또는 항체와 결합될 수 있다.
상기 사이토카인은 상기 사이토카인은 서열번호 1로 표시되는 아미노산 서열을 갖는 IL-15이고, 상기 항체는 서열번호 2로 표시되는 아미노산 서열을 갖는 scFv(single chain variable fragment) 항체일 수 있다.
상기 링커는 서열번호 3 내지 13으로 표시되는 아미노산 서열들 중에서 선택된 어느 하나를 1 내지 20번 반복하는 서열을 갖을 수 있다.
상기 막관통 단백질은 서열번호 14로 표시되는 아미노산 서열을 갖을 수 있다.
상기 세포외 소포체는 사이토카인 또는 항체를 암호화하는 유전자; 링커를 암호화하는 링커 도메인; 및 막관통 단백질를 암호화하는 막관통 도메인을 포함하는 벡터;로 형질전환된 세포에서 유래될 수 있다.
상기 막관통 도메인은 표피 성장인자 수용체, 인슐린 수용체, 혈소판 유래 성장인자(Platelet-derived growth factor; PDGF) 수용체, 혈관내피 성장인자 수용체, 섬유아세포 성장인자 수용체, 콜레시스토키닌(Cholecystokinin; CCK) 수용체, 신경영양인자(Neurotrophic factor; NGF) 수용체, 간세포 성장인자(Hepatocyte growth factor; HGF) 수용체, 에프린(Ephrin; Eph) 수용체, 안지오포이에틴 수용체 및 RYK(Related to receptor tyrosine kinase) 수용체로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나의 수용체에 포함된 막관통 도메인일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다.
상기 세포는 보조 T 세포, CD8+ T 세포, 수지상 세포, 호중구 세포, 호산구 세포, 호염기구 세포, 대식세포, 단핵구 세포, 자연살해세포, B 세포, 성체줄기세포, 중간엽줄기세포, 혈액줄기세포 및 유도만능줄기세포(iPSc)로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다.
상기 세포외 소포체는 암세포에 특이적인 세포 독성을 가질 수 있다.
상기 세포외 소포체는 IFN-γ, 퍼포린, Fas 리간드 및 그랜자임 B의 발현수준을 증가시켜 세포 독성을 가질 수 있다.
상기 세포외 소포체는 내부에 약물 또는 생리활성물질이 봉입된 담체로 사용될 수 있다.
또한, 본 발명은 세포외 소포체를 유효성분으로 포함하는 암의 예방 또는 치료용 약학적 조성물을 제공한다.
상기 암은 흑색종, 결장암, 폐암, 피부암, 비소세포성 폐암, 결장암, 골암, 췌장암, 두부 또는 경부 암, 자궁암, 난소암, 직장암, 위암, 항문부근암, 유방암, 나팔관암종, 자궁내막암종, 자궁경부암종, 질암종, 음문암종, 호킨스씨병, 식도암, 소장암, 내분비선암, 갑상선암, 부갑상선암, 부신암, 연조직 육종, 요도암, 음경암, 전립선암, 만성 또는 급성 백혈병, 림프구 림프종, 방광암, 신장 또는 수뇨관암, 신장세포 암종, 신장골반 암종, 중추신경계 종양, 1차 중추신경계 림프종, 척수 종양, 뇌간신경교종 및 뇌하수체 선종으로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다.
본 발명의 다른 구체예에서, 약학 조성물은 약학 조성물의 제조에 통상적으로 사용하는 적절한 담체, 부형제, 붕해제, 감미제, 피복제, 팽창제, 윤활제, 활택제, 향미제, 항산화제, 완충액, 정균제, 희석제, 분산제, 계면활성제, 결합제 및 윤활제로 이루어진 군에서 선택되는 하나 이상의 첨가제를 추가로 포함할 수 있다.
구체적으로 담체, 부형제 및 희석제는 락토즈, 덱스트로즈, 수크로스, 솔비톨, 만니톨, 자일리톨, 에리스리톨, 말티톨, 전분, 아카시아 고무, 알지네이트, 젤라틴, 칼슘 포스페이트, 칼슘 실리케이트, 셀룰로즈, 메틸 셀룰로즈, 미정질 셀룰로스, 폴리비닐 피롤리돈, 물, 메틸히드록시벤조에이트, 프로필히드록시벤조에이트, 탈크, 마그네슘 스테아레이트 및 광물유를 사용할 수 있으며, 경구투여를 위한 고형제제에는 정제, 환제, 산제, 과립제, 캡슐제 등이 포함되며, 이러한 고형제제는 상기 조성물에 적어도 하나 이상의 부형제, 예를 들면, 전분, 칼슘카보네이트, 수크로스 또는 락토오스, 젤라틴 등을 섞어 조제할 수 있다. 또한 단순한 부형제 이외에 마그네슘 스티레이트, 탈크 같은 윤활제들도 사용할 수 있다. 경구를 위한 액상제제로는 현탁제, 내용액제, 유제, 시럽제 등이 있으며 흔히 사용되는 단순 희석제인 물, 리퀴드 파라핀 이외에 여러 가지 부형제, 예를 들면 습윤제, 감미제, 방향제, 보존제 등이 포함될 수 있다. 비경구 투여를 위한 제제에는 멸균된 수용액, 비수성용제, 현탁제, 유제, 동결건조제제, 좌제 등이 포함된다. 비수성용제, 현탁제로는 프로필렌글리콜, 폴리에틸렌 글리콜, 올리브오일과 같은 식물성 기름, 에틸올레이트와 같은 주사 가능한 에스테르 등이 사용될 수 있다. 좌제의 기재로는 위텝솔 (witepsol), 마크로골, 트윈 (tween) 61, 카카오지, 라우린지, 글리세로제라틴 등이 사용될 수 있다.
본 발명의 일실시예에 따르면, 상기 약학 조성물은 정맥내, 동맥내, 복강내, 근육내, 동맥내, 복강내, 흉골내, 경피, 비측내, 흡입, 국소, 직장, 경구, 안구내 또는 피내 경로를 통해 통상적인 방식으로 대상체로 투여할 수 있다.
본 발명에 따른 유효성분의 투여량은 대상체의 상태 및 체중, 질환의 종류 및 정도, 약물 형태, 투여경로 및 기간에 따라 달라질 수 있으며 당업자에 의해 적절하게 선택될 수 있고, 1일 투여량이 0.01 mg/kg 내지 200 mg/kg, 바람직하게는 0.1 mg/kg 내지 200 mg/kg, 보다 바람직하게는 0.1 mg/kg 내지 100 mg/kg 일 수 있다. 투여는 하루에 한번 투여할 수도 있고 수회로 나누어 투여할 수도 있으며, 이에 의해 본 발명의 범위가 제한되는 것은 아니다.
또한 본 발명은 상기 세포외 소포체를 포함하는 조성물로, 상기 세포외 소포체의 내부에 약물 또는 생리활성물질이 봉입된 것을 특징으로 하는 약물 또는 생리활성물질 전달용 조성물을 제공한다.
상기 약물은 항암제, 소염진통제, 항생제, 항균제 및 백신으로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나이고, 상기 생리활성물질은 펩타이드, 단백질, 호르몬제 및 유전자로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다.
또한 본 발명은 상기 세포외 소포체를 제조하는 방법으로서, 사이토카인을 암호화하는 유전자, 링커를 암호화하는 링커 도메인, 및 막관통 단백질를 암호화하는 막관통 도메인을 포함하는 제1벡터를 제조하는 단계; 항체를 암호화하는 유전자, 링커를 암호화하는 링커 도메인, 및 막관통 단백질를 암호화하는 막관통 도메인을 포함하는 제2벡터를 제조하는 단계; 렌티 바이러스를 이용하여 상기 제1벡터 및 제2벡터로 세포를 형질전환하는 단계; 및 상기 제1벡터 및 제2벡터로 형질전환된 세포를 배양한 배양액으로부터 세포외 소포체를 분리하는 단계;를 포함하는 방법을 제공한다.
이하, 본 발명의 이해를 돕기 위하여 실시예 등을 들어 상세하게 설명하기로 한다. 다만 하기의 실시예 등은 본 발명의 내용을 예시하는 것일 뿐 본 발명의 범위가 하기 실시예 등에 한정되는 것은 아니다. 본 발명의 실시예 등은 당업계에서 평균적인 지식을 가진 자에게 본 발명을 보다 완전하게 설명하기 위해 제공되는 것이다.
실시예 1: 세포 배양
HEK-293FT 세포(인간 배아 신장세포)는 10% 우태아혈청, 1% 페니실린 및 스트렙토마이신을 첨가한 DMEM 배지(Hyclone)에서 배양하였다. A549-luc 세포(인간 비소세포성 폐암 세포)는 10% 우태아혈청, 1% 페니실린 및 스트렙토마이신(Hyclone)이 첨가된 RPMI-1640 배지(Hyclone)에서 배양하였다. NK-92 세포(인간 자연살해세포)는 12.5% 우태아혈청, 12.5% 말혈청, 1% 페니실린 및 스트렙토마이신, 0.02mM의 folic acid (Sigma-Aldrich), 0.2mM inositol (Sigma-Aldrich), 0.1mM 2-Mercaptoethanol (GibcoTM),100IU/mL의 재조합 IL-2 (R&D system)가 첨가된 MEM-α 배지(GibcoTM)에서 배양하였다.
실시예 2: 렌티 바이러스 제조
본 발명에 따라 사이토카인 및 항체를 표면에 발현하는 NK세포 유래 세포외 소포체를 제조하기 위해, 사이토카인을 암호화하는 유전자를 포함하는 제1벡터 및 항체를 암호화하는 유전자를 포함하는 제2벡터를 제조하고, 렌티 바이러스를 이용하여 두 벡터를 각각 세포에 형질전환하였다.
구체적으로 제1벡터는 사이토카인으로 IL-15를 암호화하는 유전자, 링커 도메인 및 PDGF 수용체의 막관통 도메인을 포함하고, 제2벡터는 갖는 얼비툭스(Erbitux)의 scFv를 암호화하는 유전자, 링커 도메인 및 PDGF 수용체의 막관통 도메인을 포함한다. 각 제1벡터 및 제2벡터는 논문(Proc Natl Acad Sci U S A. 2013 May 14;110(20):8099-104)을 참조하여 제작하였다.
제조된 제1벡터 및 제2벡터로 세포를 형질전환하기 위해 사용될 렌티 바이러스는 다음과 같은 방법으로 제조하였다. HEK-293FT 세포를 10% 우태아혈청, 1% 페니실린 및 스트렙토마이신을 첨가한 DMEM 배지가 담긴 6 웰 플레이트에 약 1 X 106세포 농도로 접종하였다. Opti-MEM(ref.31985-070; GibcoTM)배지하에 Lipofectamine 2000 Reagent(ref.11668-027; Thermo fisher scientific), pCMVD(# PS100001; Origene) 및 pVSVg(# 1733; Addgene) 바이러스 패키징 벡터를 상기 제1벡터 또는 제2벡터와 1:1:1의 비율로 혼합하였고 1:1:1의 비율로 혼합하여 처리한 후, 37℃에서 밤새 배양하였다. 다음날 상등액을 제거하고, 10%의 우태아혈청, 1%의 페니실린 및 스트렙토마이신을 포함하는 신선한 배지로 교체하였다. 48 시간 배양 후, 바이러스를 포함하는 배지 상등액을 수득하여 원심분리하고, 계면활성제가 없는 셀룰로오스 아세테이트(Surfactant-free cellulose acetate; SFCA) 막 여과 장치(0.45 μm; Corning)를 이용하여 세포 파편들을 제거하였다. 렌티 바이러스의 역가는 제조사의 설명서에 따라 Lenti-X p24 신속 역가 키트(# 632200; Takara)를 사용하여 측정하였다. 도2에 나타난 바와 같이, 제1벡터를 포함하는 제1 렌티 바이러스 및 제2벡터를 포함하는 제2 렌티 바이러스는 각각 분주하여 -80℃에서 동결하여 보관하였다.
실시예 3: 렌티 바이러스를 이용한 NK세포의 형질전환
본 발명에 따른 사이토카인 및 항체 표면 발현하는 세포외 소포체를 제조하기 위해, 상기 실시예 3에서 제조된 렌티 바이러스들로 면역세포를 형질전환하였다.
자연살해세포인 NK-92 세포를 12 웰 플레이트에 약 3.0 X 105세포/웰 농도로 접종하였다. 실시예 3에서 제조된 제1 렌티 바이러스 또는 제2 렌티 바이러스를 50 MOI(Multiplicity of infection) 농도로 10 μg/mL의 폴리브렌(polybrene)과 함께 처리되었다. 렌티 바이러스가 처리된 세포 혼합물을 상온에서 1,200 g로 90분 동안 원심분리하여 회전접종(spinoculation)하고, 37℃에서 밤새 배양하였다. 여분의 바이러스를 제거하고, 12.5% 우태아혈청, 12.5% 말혈청, 1% 페니실린 및 스트렙토마이신, 0.02mM의 folic acid, 0.2mM inositol, 0.1mM b-mercaptoethanol, 100 IU/mL의 재조합 IL-2(R&D system)가 첨가된 MEM-α 배지로 교체하였다.
형질전환 되지 않은 NK세포 C를 대조군으로 사용하고, IL-15 유전자를 포함하는 제1 렌티 바이러스로와 얼비툭스(Erbitux)의 scFv 유전자를 포함하는 제2 렌티 바이러스 모두로 형질전환된 세포 M로 표기하였다.
실시예 4: 형질전환된 NK세포에서 사이토카인 및 항체의 발현 확인
본 발명에 따른 사이토카인 및 항체를 표면에 발현하는 세포외 소포체를 제조하기 위해, 실시예 3에서 제조된 형질전환된 NK세포에서 사이토카인 및 항체가 발현되는지 확인하였다.
상기 실시예 3에서 형질전환된 NK세포를 72시간 배양 후, 형광현미경을 미용하여 세포를 관찰하였을 때, 도3에 나타난 바와 같이, 대조군에 비해서 형광이 높게 발현하는 것을 확인하였다.
또한, 형질전환된 세포로부터 제조사의 설명서에 따라 mRNA 추출 키트(Direct-zol™ RNA Microprep, # R2060; Zymo Research)를 이용하여 mRNA를 추출하고, nanodrop(DS-11 Series Spectrophotometer; DeNovix)을 이용하여 추출된 mRNA의 농도를 측정하였다. 추출된 mRNA 1000 ng을 제조사의 설명서에 따라 키트(Omniscript RT Kit, # 205113; QIAGEN)로 cDNA로 합성하였다. 각 세포들에서 IL-15 유전자와 얼비툭스(Erbitux)의 scFv 유전자의 발현 수준을 확인하기 위해 표 1의 프라이머 세트 및 Power SYBR™ Green PCR Master Mix(# 4367659; Applied Biosystems)를 이용하여 qRT-PCR로 분석하였다. qRT-PCR은 StepOnePlus Real-Time PCR System(Applied Biosystems) 기기를 사용하였다.
각 세포들에서 IL-15 유전자와 얼비툭스(Erbitux)의 scFv 유전자의 발현 수준을 하기 표 1의 프라이머 세트를 이용하여 실시간 중합효소 연쇄반응(real-time PCR)으로 분석하였다.
| 유전자 | 프라이머 염기서열 | |
| IL-15 | F | AACAGAAGCCAACTGGGTGAATG |
| R | CTCCAAGAGAAAGCACTTCATTGC | |
| Erbitux | F | GGCCCAGCCGGCCAT |
| R | ATTTAGGCCCCCGAGGCCTTTCAGCTCCAGCTTGGTCCCA | |
| IFN-γ | F | TGACCAGAGCATCCAAAAGA |
| R | CTCTTCGACCTCGAAACAGC | |
| Perforin | F | ACTCACAGGCAGCCAACTTTGC |
| R | CTCTTGAAGTCAGGGTGCAGCG | |
| Granzyme B | F | CGACAGTACCATTGAGTTGTGC |
| R | TTCGTCCATAGGAGACAATGCC | |
| Fas ligand | F | GGTTCTGGTTGCCTTGGTAGGA |
| R | CTGTGTGCATCTGGCTGGTAGA | |
| Human GAPDH |
F | GAATTTGGCTACAGCAACAG |
| R | TGAGGGTCTCTCTCTTCCTC | |
각 시료에서 IL-15 또는 Erbitux의 발현 수준은 동일한 시료의 GAPDH의 양에 대한 정규화 후, Ct(comparative threshold cycle) 분석으로 계산하였고, 초기 Ct 값으로부터 변형된 2-△△Ct값으로 표시하였다.
도 3에 나타난 바와 같이, 대조군이 비해 두 개의 렌티 바이러스로 모두 형질전환된 M NK세포에서 에서는 IL-15 유전자 또는 얼비툭스(Erbitux)의 scFv 유전자의 발현 수준이 모두 크게 증가하는 것으로 나타났다.
또한, 유세포 분석을 통하여 도 3에 나타난 바와 같이 IL-15 유전자 또는 얼비툭스(Erbitux)의 단밸질을 발현하는 세포가 대부분이라는 것을 확인하였다.
실시예 5. 형질전환된 NK세포에서 세포독성 물질 발현 변화 확인
본 발명에 따른 사이토카인 및 항체를 표면에 발현하는 세포외 소포체를 제조하기 위해, 실시예 3에서 제조된 형질전환된 NK세포에서 세포독성을 나타내는 물질의 발현 변화 정도를 확인하였다.
상기 실시예 3에서 형질전환된 세포로부터 제조사의 설명서에 따라 mRNA를 추출하고, 추출된 mRNA 1000 ng을 cDNA로 합성하였다. 각 세포들에서 의 발현 수준을 확인하기 위해 표 1의 프라이머 세트 및 Power SYBR™ Green PCR Master Mix를 이용하여 qRT-PCR로 분석하였다.
각 세포들에서 세포독성을 나타내는 표지자인 IFN-γ, 퍼포린, Fas 리간드, 그랜자임 B 유전자 발현 수준을 표 1의 프라이머 세트를 이용하여 실시간 중합효소 연쇄반응(real-time PCR)으로 분석하였다.
각 시료에서 IFN-γ, 퍼포린, Fas 리간드, 그랜자임 B의 발현 수준은 동일한 시료의 GAPDH의 양에 대한 정규화 후, Ct(comparative threshold cycle) 분석으로 계산하였고, 초기 Ct 값으로부터 변형된 2-△△Ct값으로 표시하였다.
도 4에 나타난 바와 같이, 대조군이 비해 두 개의 렌티 바이러스로 모두 형질전환된 M NK세포에서 에서는 IFN-γ, 퍼포린, Fas 리간드, 그랜자임 B 유전자의 발현 수준이 모두 2배 이상 증가하는 것으로 나타났다. 따라서, ME가 NK-92 세포의 세포독성 능력을 향상시켜 항암 효과를 증진시시는 것을 의미한다.
실시예 6. 세포외 소포체 분리 정제
본 발명에 따른 사이토카인 및 항체를 표면에 발현하는 세포외 소포체를 제조하기 위해, 실시예 3에서 제조된 형질전환된 NK세포에서 세포외 소포체를 분리하였다.
도 5와 같이, NK세포의 경우 배양시 다량의 혈청이 사용되기 때문에, 혈청이 포함되지 않은 조건에서의 세포의 생존율과 세포외 소포체의 수와 단백질 농도 등을 확인하여 세포외 소포체 분리 조건을 확립하였다.
실시예 3의 대조군 C NK세포 또는 형질전환된 M NK세포를 각각 2.5 x 105세포/ml 농도로 우태아혈청, 말혈청이 포함되지 않은 MEM-α 배지에 접종하고 24 시간 배양하였다. 각 세포를 배양한 배양액의 상등액을 300 g, 2,500 g, 및 10,000 g로 순차적으로 연속 원심분리하였다. 원심분리된 상등액을 0.2 μm 주사기 필터로 여과하고, 120,000 g에서 원심분리하여 세포외 소포체의 펠릿을 수득하였다. 수득된 펠릿은 PBS에 현탁하고, -80℃에서 동결 보존하였다.
형질전환 되지 않은 NK세포 C로부터 수득한 세포외 소포체를 CE로, 제1, 제2 렌티 바이러스들로 형질전환된 NK세포 M으로부터 수득한 세포외 소포체를 ME로 표기하였다.
실시예 7. 세포외 소포체에 의한 암세포 독성 분석
본 발명에 따라 제조된 세포외 소포체의 암세포에 대한 세포 독성을 평가하기 위해, 도 6과 같이, 암세포와 세포외 소포체를 공동 배양한 뒤 암세포의 생존율을 확인하였다. 세포 발광 유전자를 가진 인간 비소세포성 폐암세포(A549-luc)를 사용하였으며, MTS 및 IVIS spectrum(PerkinElmer)을 이용하여 분석하였다.
인간 비소세포성 폐암세포인 A549-luc 세포를 각각 1 x 104세포/well의 농도로 96 well plate에 하루 동안 배양하였다. 실시예 6에서 제조된 세포외 소포체를 각각 0, 2 x 108,5x108세포외 소포체/웰 농도로 세포에 처리하고 24 시간 배양하였다. 세포 사멸 정도는 CellTiter 96 AQueous Assay(Promega, #G5421)로 분석하였다. 배양 종료 시, MTS 시약을 각 웰에 첨가하고 37℃에서 2시간 동안 배양하였다. 마이크로플레이트 리더기를 사용하여 490 nm에서 흡광도를 측정하였다.
또한, A549-luc 세포의 생존율을 분석하기 위해, 발광 및 형광 동물 이미징 시스템(IVIS)을 사용하였다. D-루시페린(P/N 122799; Perkin)을 각 웰에 첨가하고 IVIS 소프트웨어를 사용하여 루시페린을 측정하였다.
그 결과, 도 6에 나타난 바와 같이, 암세포인 A549-luc 세포에서는 세포외 소포체를 처리함에 따라 세포가 사멸되는 것으로 나타났다. 특히, 형질전환 되지 않은 NK세포 C로부터 수득한 세포외 소포체 CE를 처리하는 경우 보다 제1 및 제2 렌티 바이러스들로 형질전환된 NK세포 M으로부터 수득한 세포외 소포체 ME로 처리하는 경우, 암세포가 사멸되는 정도가 더 크게 나타났다.
상기 결과는 본 발명의 세포외 소포체는 암세포를 사멸시키는 세포독성이 크게 증가된 것을 나타내기 때문에, 효과적인항암제로 사용될 수 있음을 입증한다.
실시예 8: 세포외 소포체가 전처리된 NK세포의 공동 배양 분석
96 웰 플레이트에 비소세포성 폐암세포인 A549-luc 세포를 각각 1 x 104세포/웰의 밀도로 접종하고 1 x 109세포외 소포체를 24시간 전처리 한 NK-92 세포를 상이한 비율의 폐암세포(1:2 내지 1:4)와 함께 배양하였다. 배양 종료 시, MTS 시약을 각 웰에 첨가하고 37℃에서 2시간 동안 배양하였다. 마이크로플레이트 리더기를 사용하여 490 nm에서 흡광도를 측정하였다.
또한, A549-luc 세포의 생존율을 분석하기 위해, 발광 및 형광 동물 이미징 시스템(IVIS)을 사용하였다. D-루시페린(P/N 122799; Perkin)을 각 웰에 첨가하고 IVIS 소프트웨어를 사용하여 루시페린을 측정하였다. 그 결과, 도 7에 나타난 바와 같이, 암세포인 A549-luc 세포에서는 세포외 소포체를 처리함에 따라 세포가 사멸되는 것으로 나타났다. 특히, 형질전환 되지 않은 NK세포 C로부터 수득한 세포외 소포체 CE를 처리하는 경우 보다 제1 및 제2 렌티 바이러스들로 형질전환된 NK세포 M으로부터 수득한 세포외 소포체 ME로 처리하는 경우, 암세포가 사멸되는 정도가 더 크게 나타났다.
전술한 본 발명의 설명은 예시를 위한 것이며, 본 발명이 속하는 기술 분야의 통상의 지식을 가진 자는 본 발명의 기술적 사상이나 필수적인 특징을 변경하지 않고서 다른 구체적인 형태로 쉽게 변형이 가능하다는 것을 이해할 수 있을 것이다. 그러므로 이상에서 기술한 실시예들은 모든 면에서 예시적인 것이며 한정적이 아닌 것으로 이해해야만 한다.
본 발명의 범위는 후술하는 청구범위에 의하여 나타내어지며, 청구범위의 의미 및 범위 그리고 그 균등 개념으로부터 도출되는 모든 변경 또는 변형된 형태가 본 발명의 범위에 포함되는 것으로 해석되어야 한다.
Claims (16)
- 사이토카인 및 항체를 표면에 발현하는 세포외 소포체.
- 제1항에 있어서, 상기 세포외 소포체를 구성하는 인지질 이중막은 막관통 단백질을 포함하고, 상기 막관통 단백질은 링커를 통해 상기 사이토카인 또는 항체와 결합된 것을 특징으로 하는 세포외 소포체.
- 제2항에 있어서, 상기 사이토카인은 서열번호 1로 표시되는 아미노산 서열을 갖는 IL-15이고, 상기 항체는 서열번호 2로 표시되는 아미노산 서열을 갖는 scFv(single chain variable fragment) 항체인 것을 특징으로 하는 세포외 소포체.
- 제2항에 있어서, 상기 링커는 서열번호 3 내지 13으로 표시되는 아미노산 서열들 중에서 선택된 어느 하나를 1 내지 20번 반복하는 서열을 갖는 것을 특징으로 하는 세포외 소포체.
- 제2항에 있어, 상기 막관통 단백질은 서열번호 14로 표시되는 아미노산 서열을 갖은 막관통 단백질인 것을 특징으로 하는 세포외 소포체.
- 제2항에 있어서, 상기 세포외 소포체는 사이토카인 또는 항체를 암호화하는 유전자; 링커를 암호화하는 링커 도메인; 및 막관통 단백질를 암호화하는 막관통 도메인을 포함하는 벡터;로 형질전환된 세포에서 유래된 것을 특징으로 하는 세포외 소포체.
- 제6항에 있어서, 상기 막관통 도메인은 표피 성장인자 수용체, 인슐린 수용체, 혈소판 유래 성장인자(Platelet-derived growth factor; PDGF) 수용체, 혈관내피 성장인자 수용체, 섬유아세포 성장인자 수용체, 콜레시스토키닌(Cholecystokinin; CCK) 수용체, 신경영양인자(Neurotrophic factor; NGF) 수용체, 간세포 성장인자(Hepatocyte growth factor; HGF) 수용체, 에프린(Ephrin; Eph) 수용체, 안지오포이에틴 수용체 및 RYK(Related to receptor tyrosine kinase) 수용체로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나의 수용체에 포함된 막관통 도메인인 것을 특징으로 하는 세포외 소포체.
- 제6항에 있어서, 상기 세포는 보조 T 세포, CD8+ T 세포, 수지상 세포, 호중구 세포, 호산구 세포, 호염기구 세포, 대식세포, 단핵구 세포, 자연살해세포, B 세포, 성체줄기세포, 중간엽줄기세포, 혈액줄기세포 및 유도만능줄기세포(iPSc)로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나인 것을 특징으로 하는 세포외 소포체.
- 제1항에 있어서, 상기 세포외 소포체는 암세포에 특이적인 세포 독성을 가지는 것을 특징으로 하는 세포외 소포체.
- 제9항에 있어서, 상기 세포외 소포체는 IFN-γ, 퍼포린, Fas 리간드 및 그랜자임 B의 발현수준을 증가시켜 세포 독성을 가지는 것을 특징으로 하는 세포외 소포체.
- 제2항에 있어서, 상기 세포외 소포체는 내부에 약물 또는 생리활성물질이 봉입된 담체로 사용되는 것을 특징으로 하는 세포외 소포체.
- 제1항 내지 제11항 중 어느 한 항의 세포외 소포체를 유효성분으로 포함하는 암의 예방 또는 치료용 약학적 조성물.
- 제12항에 있어서, 상기 암은 흑색종, 결장암, 폐암, 피부암, 비소세포성 폐암, 결장암, 골암, 췌장암, 두부 또는 경부 암, 자궁암, 난소암, 직장암, 위암, 항문부근암, 유방암, 나팔관암종, 자궁내막암종, 자궁경부암종, 질암종, 음문암종, 호킨스씨병, 식도암, 소장암, 내분비선암, 갑상선암, 부갑상선암, 부신암, 연조직 육종, 요도암, 음경암, 전립선암, 만성 또는 급성 백혈병, 림프구 림프종, 방광암, 신장 또는 수뇨관암, 신장세포 암종, 신장골반 암종, 중추신경계 종양, 1차 중추신경계 림프종, 척수 종양, 뇌간신경교종 및 뇌하수체 선종으로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나인 것을 특징으로 하는 암의 예방 또는 치료용 약학적 조성물.
- 제1항 내지 제11항 중 어느 한 항의 세포외 소포체를 포함하는 조성물로, 상기 세포외 소포체의 내부에 약물 또는 생리활성물질이 봉입된 것을 특징으로 하는 약물 또는 생리활성물질 전달용 조성물.
- 제14항에 있어서, 상기 약물은 항암제, 소염진통제, 항생제, 항균제 및 백신으로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나이고, 상기 생리활성물질은 펩타이드, 단백질, 호르몬제 및 유전자로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나인 것을 특징으로 하는 약물 또는 생리활성물질 전달용 조성물.
- 제1항 내지 제11항 중 어느 한 항의 세포외 소포체를 제조하는 방법으로서,
사이토카인을 암호화하는 유전자, 링커를 암호화하는 링커 도메인, 및 막관통 단백질를 암호화하는 막관통 도메인을 포함하는 제1벡터를 제조하는 단계;
항체를 암호화하는 유전자, 링커를 암호화하는 링커 도메인, 및 막관통 단백질를 암호화하는 막관통 도메인을 포함하는 제2벡터를 제조하는 단계;
렌티 바이러스를 이용하여 상기 제1벡터 및 제2벡터로 세포를 형질전환하는 단계; 및
상기 제1벡터 및 제2벡터로 형질전환된 세포를 배양한 배양액으로부터 세포외 소포체를 분리하는 단계;를 포함하는 방법.
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ID=90662489
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| KR1020230071398A KR20240043664A (ko) | 2022-09-26 | 2023-06-02 | 사이토카인 및 항체가 표면 발현된 자연살해세포 유래 세포외 소포체를 포함하는 암 질환 치료용 조성물 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| KR (1) | KR20240043664A (ko) |
Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| KR101820264B1 (ko) | 2017-01-18 | 2018-01-18 | 건국대학교 산학협력단 | 줄기세포 유래 엑소좀을 포함하는 암의 예방 또는 치료용 조성물 |
-
2023
- 2023-06-02 KR KR1020230071398A patent/KR20240043664A/ko unknown
Patent Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| KR101820264B1 (ko) | 2017-01-18 | 2018-01-18 | 건국대학교 산학협력단 | 줄기세포 유래 엑소좀을 포함하는 암의 예방 또는 치료용 조성물 |
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