KR20220062190A - 악액질의 예방 또는 치료를 위한 보중익기탕의 신규용도 - Google Patents
악액질의 예방 또는 치료를 위한 보중익기탕의 신규용도 Download PDFInfo
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Abstract
본 발명은 보중익기탕, 그의 추출물 또는 이의 분획물을 포함하는 악액질 예방 또는 치료용 약학 조성물, 상기 약학 조성물을 투여하는 단계를 포함하는 악액질 예방 또는 치료방법, 상기 보중익기탕, 그의 추출물 또는 이의 분획물을 포함하는 악액질 예방 또는 개선용 식품 조성물 및 사료용 조성물에 관한 것이다. 본 발명에서 제공하는 악액질 예방 또는 치료용 약학 조성물은, 종래로부터 사용되어 안전성이 입증된 보중익기탕을 포함하므로, 암성 악액질에 의해 유발되는 다양한 근위축, 근감소증의 치료를 위한 약학 조성물의 개발에 널리 활용될 수 있을 것이다.
Description
본 발명은 악액질의 예방 또는 치료를 위한 보중익기탕의 신규용도에 관한 것으로, 보다 구체적으로 본 발명은 보중익기탕, 그의 추출물 또는 이의 분획물을 포함하는 악액질 예방 또는 치료용 약학 조성물, 상기 약학 조성물을 투여하는 단계를 포함하는 악액질 예방 또는 치료방법, 상기 보중익기탕, 그의 추출물 또는 이의 분획물을 포함하는 악액질 예방 또는 개선용 식품 조성물 및 사료용 조성물에 관한 것이다.
악액질이란 결핵, 혈우병, 암 등의 말기에서 볼 수 있는 고도의 전신쇠약증세로, 병의 본질을 체액의 변조에 두는 체액병리학적 질환이며, 12 개월 이내에 적어도 5%의 체중 감소로 정의되기도 한다. 또한, 이는 전신의 각종 장기 장애에 의해 생기는 일종의 중독상태로 간주되며, 증상으로는 급격한 수척, 빈혈, 무기력, 피부 황색화, 소모성 질환이나 노화에 동반되는 근감소, 식욕감소, 지방조직 감소가 일어난다. 악액질의 원인 질환은 악성 종양, 바세도병, 하수체기능저하증 등이 알려져 있으며, 매크로파지가 생산하는 종양괴사인자(tumor necrosis factor; TNF) 등의 생물활성물질도 악액질을 증강시키는 요인으로 밝혀졌다.
암 악액질은 암을 가진 모든 환자들의 약 1/3에서 발생하고, 모든 암 관련 사망의 20% 이하에서 사망의 직접적인 원인이 되는 것으로 추정되고 있다. 고형 종양, 대장 암(CRC) 및 비소세포성 페암(NSCLC)을 갖는 환자들은 각각 약 28% 및 34%의 악액질의 비교적 높은 발생율을 나타낸다.
악액질의 주요 증상 중의 하나인 근감소는 호르몬 불균형, 심한 부상, 패혈증, 암 및 노화로 인한 여러 가지 이화 상태(catabolic condition)에서 발생하는 근육세포와 근조직의 크기 및 질량적 손실을 의미한다. 근감소는 근육의 손실을 유발하여 근육 약화 및 피로감을 유발하고 합병증을 악화시킨다. 근감소는 크레아틴 키나아제(Creatine kinase: CK), 근전도검사, 근육생검, 분자생물학적 유전자검사, 세포유전학적 검사 등을 통해 진단이 이루어진다. 현재 근감소를 치료하기 위한 방법으로써, 물리치료가 일반적으로 수행되며, 합병증, 기형 및 기능 장애 예방을 위한 작업치료, 호흡치료 및 지지요법(supportive therapy)등이 병행되고 있다.
다만, 근감소의 병인기전은 아직까지 명확히 규명되지 않았으며, 현재까지 근감소 발병의 주 원인으로 보고된 것으로써, TNF-alpha등의 염증성 사이토카인에 의한 프로테아좀-유비퀴틴 활성화에 따른 근단백질 분해 촉진, 산화물질 증가에 의한 근세포 손상, 스트레스 단백질 발현 감소로 인한 근단백질 생성 및 재생 감소 등이 알려져 있음. 현재의 치료는 대증요법으로써의 한계를 갖는다는 점에서, 악액질의 근감소에 대한 치료제 개발이 절실한 상황이다.
이러한 악액질의 치료를 위하여, 다양한 연구가 수행되고 있으나, 대체로 암치료와 병행되어야 하기 때문에, 환자에게 부작용이 적은 천연물을 중심으로 다양한 연구가 진행되고 있다. 예를 들어, 한국공개특허 제10-2020-0001730호에는 김치를 포함하는 악액질 예방, 개선 또는 치료용 조성물이 개시되어 있고, 한국공개특허 제10-2020-0085070호에는 황기 및 작약을 포함하는 악액질 예방 또는 치료용 조성물이 개시되어 있다.
이러한 배경하에서, 본 발명자들은 보다 효과적으로 악액질을 치료하는 방법을 개발하기 위하여, 예의 연구노력한 결과, 한방에서 예로부터 사용되어온 보중익기탕을 사용할 경우 악액질에 의한 근손실을 방지하는 효과를 나타냄을 확인하고, 본 발명을 완성하였다.
본 발명의 주된 목적은 보중익기탕, 그의 추출물 또는 이의 분획물을 포함하는 악액질 예방 또는 치료용 약학 조성물을 제공하는 것이다.
본 발명의 다른 목적은 상기 약학 조성물을 투여하는 단계를 포함하는 악액질 예방 또는 치료방법을 제공하는 것이다.
본 발명의 또 다른 목적은 상기 보중익기탕, 그의 추출물 또는 이의 분획물을 포함하는 악액질 예방 또는 개선용 식품 조성물을 제공하는 것이다.
본 발명의 또 다른 목적은 상기 보중익기탕, 그의 추출물 또는 이의 분획물을 포함하는 악액질 예방 또는 개선용 사료 조성물을 제공하는 것이다.
상술한 목적을 달성하기 위한 본 발명의 일 실시양태는 보중익기탕, 그의 추출물 또는 이의 분획물을 포함하는 악액질 예방 또는 치료용 약학 조성물을 제공한다.
본 발명의 용어 "보중익기탕"이란, 황기, 창출, 인삼, 당귀, 시호, 대조, 진피, 감초, 승마 및 건강의 10개의 약재를 한방 방식으로 조제하여 제조된 한약조성물을 의미한다. 상기 보중익기탕은 한방에서 피로회복, 체력증징, 면역활성 증진 등의 용도로 사용되어 왔으며, 최근에는 통증치료, 치매 예방 등의 다양한 용도로 사용되고 있다.
본 발명에 있어서, 상기 보중익기탕은 악액질을 예방, 치료 또는 개선하는데 사용될 수 있다.
본 발명의 용어 "추출물"이란, 목적하는 물질을 다양한 용매에 침지한 다음, 상온 또는 가온상태에서 일정시간 동안 추출하여 수득한 액상성분, 상기 액상성분으로부터 용매를 제거하여 수득한 고형분 등의 결과물을 의미한다. 뿐만 아니라, 상기 결과물에 더하여, 상기 결과물의 희석액, 이들의 농축액, 이들의 조정제물, 정제물 등을 모두 포함하는 것으로 포괄적으로 해석될 수 있다.
본 발명에 있어서, 상기 추출물은 보중익기탕의 추출물을 의미한다. 상기 보중익기탕의 추출물은 상기 보중익기탕을 물 또는 다양한 유기용매 등으로 추출하여 수득할 수 있다. 이때, 사용되는 유기용매는 특별히 이에 제한되지 않으나, 일 예로서, 극성용매 또는 비극성용매가 될 수 있고, 다른 예로서, 물, 탄소수 1 내지 4의 저급 알코올(메탄올, 에탄올, 프로판올 또는 부탄올 등), 이들의 혼합용매 등이 될 수 있으며, 또 다른 예로서, 에탄올 또는 그의 혼합용매를 사용할 수 있다. 또한, 상기 추출물을 수득하기 위한 방법 역시 특별히 이에 제한되지 않으나, 바람직하게는 상기 보중익기탕에 상기 용매를 가하고, 10 내지 25℃의 상온에서 추출하는 냉침추출법, 40 내지 100℃로 가열하여 추출하는 가열추출법, 초음파를 가하여 추출하는 초음파추출법, 환류냉각기를 이용한 환류추출법 등의 방법을 사용할 수 있다.
본 발명의 용어 "분획물"이란, 다양한 구성성분을 포함하는 혼합물로부터 특정성분 또는 특정 그룹을 분리하는 분획방법에 의하여 얻어진 결과물을 의미한다.
본 발명에 있어서, 상기 분획물은 상기 보중익기탕 추출물을 다양한 분획방법에 적용하여 수득한 분획물로 해석될 수 있다. 상기 추출물의 분획물은 상기 추출물을 다양한 분획방법에 적용하여 수득할 수 있는데, 상기 분획방법은 특별히 제한되지 않으나, 다양한 용매를 처리하여 수행하는 용매 분획법, 일정한 분자량 컷-오프 값을 갖는 한외 여과막을 통과시켜 수행하는 한외여과 분획법, 다양한 크로마토그래피(크기, 전하, 소수성 또는 친화성에 따른 분리를 위해 제작된 것)를 수행하는 크로마토그래피 분획법 등이 될 수 있다. 특히, 상기 용매 분획법에 사용되는 용매는 특별히 이에 제한되지 않으나, 극성 용매 또는 비극성 용매를 사용할 수 있고, 바람직하게는 비극성 용매를 사용할 수 있다. 상기 용매 분획법은 비극성 수준이 높은 용매로부터 낮은 용매를 사용하여 상기 추출물을 순차적으로 분획하는 방식으로 수행될 수 있는데, 예를 들어 헥산 또는 에틸아세테이트를 이용하여 상기 추출물을 순차적으로 분획하는 방법을 사용할 수 있다.
본 발명의 용어 "악액질(cachexia)"이란, 결핵, 혈우병, 암 등의 말기에서 볼 수 있는 체액의 변조에 의해 나타나는 고도의 전신쇠약증세를 의미하는데, 주요 증상으로서 급격한 수척, 빈혈, 무기력, 피부 황색화, 소모성 질환이나 노화에 동반되는 근감소, 식욕감소, 지방조직 감소 등이 알려져 있다.
본 발명에 있어서, 상기 악액질은 암의 발병에 의해 유발된 악액질인 것으로 해석될 수 있는데, 일 예로서, 대장암에 의해 유발된 악액질, 대장암의 전이에 의해 유발된 악액질 등이 될 수 있고, 다른 예로서, 대장암에 의해 유발된 근위축증, 대장암에 의해 유발된 근감소증, 대장암의 전이에 의해 유발된 근위축증, 대장암의 전이에 의해 유발된 근감소증 등이 될 수 있다.
본 발명의 용어 "예방"이란, 상기 약학 조성물의 투여로 악액질을 억제 또는 지연시키는 모든 행위를 의미한다.
본 발명의 용어 "치료"란, 치료하고자 하는 개개인 또는 세포의 천연 과정을 변경시키기 위해 임상적으로 개입하는 모든 행위를 의미하는데, 임상 병리 상태가 진행되는 동안 또는 이를 예방하기 위해 수행할 수 있다. 목적하는 치료 효과에는 질병의 발생 또는 재발을 예방하고, 증상을 완화시키며, 질병에 따른 모든 직접 또는 간접적인 병리학적 결과를 저하시키며, 전이를 예방하고, 질병 진행 속도를 감소시키며, 질병 상태를 경감 또는 일시적 완화시키며, 차도시키거나 예후를 개선시키는 것이 포함된다. 본 발명의 목적상 상기 치료는 상기 약학 조성물의 투여로 악액질의 증세가 호전되거나 완치되는 모든 행위를 포함하는 것으로 해석될 수 있으나, 특별히 이에 제한되지는 않는다.
상기 약학 조성물은 약학 조성물의 제조에 통상적으로 사용하는 적절한 담체, 부형제 및 희석제를 추가로 포함할 수 있는데, 상기 담체는 비자연적인 담체가 될 수 있다. 상기 담체, 부형제 및 희석제로는 락토즈, 덱스트로즈, 수크로스, 솔비톨, 만니톨, 자일리톨, 에리스리톨, 말티톨, 전분, 아카시아 고무, 알지네이트, 젤라틴, 칼슘 포스페이트, 칼슘 실리케이트, 셀룰로즈, 메틸 셀룰로즈, 미정질 셀룰로스, 폴리비닐 피롤리돈, 물, 메틸히드록시벤조에이트, 프로필히드록시벤조에이트, 탈크, 마그네슘 스테아레이트 및 광물유를 들 수 있다.
한편, 본 발명의 약학 조성물은, 각각 통상의 방법에 따라 산제, 과립제, 정제, 캡슐제, 현탁액, 에멀젼, 시럽, 에어로졸 등의 경구형 제형, 외용제, 좌제 및 멸균 주사용액의 형태로 제제화하여 사용될 수 있다. 제제화할 경우에는 보통 사용하는 충진제, 증량제, 결합제, 습윤제, 붕해제, 계면활성제 등의 희석제 또는 부형제를 사용하여 조제된다. 경구투여를 위한 고형제제에는 정제, 환제, 산제, 과립제, 캡슐제 등이 포함되며, 이러한 고형제제는 상기 고구마 끝순 추출물 또는 이의 분획물에 적어도 하나 이상의 부형제 예를 들면, 전분, 칼슘카보네이트 (calcium carbonate), 수크로스(sucrose) 또는 락토오스(lactose), 젤라틴 등을 섞어 조제된다. 또한 단순한 부형제 이외에 마그네슘 스티레이트, 탈크 같은 윤활제들도 사용된다. 경구를 위한 액상 제제로는 현탁제, 내용액제, 유제, 시럽제 등이 해당되는 데 흔히 사용되는 단순희석제인 물, 리퀴드 파라핀 이외에 여러 가지 부형제, 예를 들면 습윤제, 감미제, 방향제, 보존제 등이 포함될 수 있다. 비경구 투여를 위한 제제에는 멸균된 수용액, 비수성용제, 현탁제, 유제, 동결건조 제제, 좌제가 포함된다. 비수성용제, 현탁제로는 프로필렌글리콜 (propylene glycol), 폴리에틸렌 글리콜, 올리브 오일과 같은 식물성 기름, 에틸올레이트와 같은 주사 가능한 에스테르 등이 사용될 수 있다. 좌제의 기제로는 위텝솔(witepsol), 마크로골, 트윈 (tween) 61, 카카오지, 라우린지, 글리세로젤라틴 등이 사용될 수 있다.
상기 약학적 조성물은 정제, 환제, 산제, 과립제, 캡슐제, 현탁제, 내용액제, 유제, 시럽제, 멸균된 수용액, 비수성용제, 현탁제, 유제, 동결건조제제 및 좌제로 이루어진 군으로부터 선택되는 어느 하나의 제형을 가질 수 있다.
본 발명의 상기 약학 조성물에 포함된 보중익기탕, 그의 추출물 또는 이의 분획물의 함량은 특별히 이에 제한되지 않으나, 최종 조성물 총 중량에 대하여 0.0001 내지 50 중량%로 포함할 수 있고, 바람직하게는 0.001 내지 10 중량%의 함량으로 포함할 수 있다.
상기 본 발명의 약학 조성물은 약학적으로 유효한 양으로 투여될 수 있는데, 본 발명의 용어 "약학적으로 유효한 양"이란, 의학적 치료에 적용 가능한 합리적인 수혜/위험 비율로 질환을 치료하기에 충분한 양을 의미하며, 유효 용량 수준은 개체 종류 및 중증도, 연령, 성별, 약물의 활성, 약물에 대한 민감도, 투여 시간, 투여 경로 및 배출 비율, 치료 기간, 동시 사용되는 약물을 포함한 요소 및 기타 의학 분야에 잘 알려진 요소에 따라 결정될 수 있다. 본 발명의 약학 조성물은 개별 치료제로 투여하거나 다른 치료제와 병용하여 투여될 수 있고 종래의 치료제와는 순차적 또는 동시에 투여될 수 있다. 그리고 단일 또는 다중 투여될 수 있다. 상기 요소를 모두 고려하여 부작용 없이 최소한의 양으로 최대 효과를 얻을 수 있는 양을 투여하는 것이 중요하다.
본 발명의 약학 조성물의 투여량은 사용목적, 질환의 중독도, 환자의 연령, 체중, 성별, 기왕력, 또는 유효성분으로서 사용되는 물질의 종류 등을 고려하여 당업자가 결정할 수 있다. 예를 들어, 본 발명의 약학 조성물은 성인 1인당 약 0.1 ng 내지 약 100 mg/kg, 바람직하게는 1 ng 내지 약 10 mg/kg로 투여할 수 있고, 본 발명의 조성물의 투여빈도는 특별히 이에 제한되지 않으나, 1일 1회 투여하거나 또는 용량을 분할하여 수회 투여할 수 있다.
본 발명의 다른 실시양태는 상기 약학 조성물을 악액질이 발병되거나 또는 발병될 가능성이 있는, 인간을 제외한 개체에 투여하는 단계를 포함하는 악액질의 예방 또는 치료방법을 제공한다.
이때, 상기 보중익기탕, 추출물, 분획물, 악액질, 예방 및 치료의 정의는 상기에서 설명한 바와 같다.
본 발명의 용어 "개체"란, 상기 악액질이 발병될 가능성이 있거나, 또는 발병된 조직을 포함하는 모든 동물을 의미하는데, 인간은 제외된다. 본 발명의 조성물을 개체에 투여함으로써, 악액질을 완화 또는 치료할 수 있다.
본 발명의 용어, "완화"는 본 발명에 따른 조성물의 투여로 악액질이 호전되거나 이롭게 되는 모든 행위를 말한다.
본 발명의 용어 "치료"란, 본 발명에 따른 조성물을 악액질의 치료가 요구되는 개체에 투여하여 악액질의 치료가 수행되거나 이롭게 되도록 하는 모든 행위를 의미한다.
상기 본 발명의 조성물은 약학적으로 유효한 양으로 투여한다.
본 발명에서 용어, "투여"는 어떠한 적절한 방법으로 대상에게 본 발명의 약학 조성물을 도입하는 것을 말하며, 투여 경로는 목적 조직에 도달할 수 있는 한 경구 또는 비경구의 다양한 경로를 통하여 투여될 수 있다.
상기 약학적 조성물은 목적 또는 필요에 따라 당업계에서 사용되는 통상적인 방법, 투여 경로, 투여량에 따라 적절하게 개체에 투여될 수 있다. 투여 경로의 예로는 경구, 비경구, 피하, 복강 내, 폐 내, 및 비강 내로 투여될 수 있으며, 비경구 주입에는 근육 내, 정맥 내, 동맥 내, 복강 내 또는 피하투여가 포함된다. 또한 당업계에 공지된 방법에 따라 적절한 투여량 및 투여 횟수가 선택될 수 있으며, 실제로 투여되는 본 발명의 약학적 조성물의 양 및 투여 횟수는 치료하고자 하는 증상의 종류, 투여 경로, 성별, 건강 상태, 식이, 개체의 연령 및 체중, 및 질환의 중증도와 같은 다양한 인자에 의해 적절하게 결정될 수 있다.
본 발명에서의 용어 "약학적으로 유효한 양"은 의학적 용도에 적용 가능한 합리적인 수혜/위험 비율로 혈관 투과성 증가를 억제 또는 완화하기에 충분한 양을 의미하며, 유효 용량 수준은 개체 종류 및 중증도, 연령, 성별, 약물의 활성, 약물에 대한 민감도, 투여 시간, 투여 경로 및 배출 비율, 치료기간, 동시 사용되는 약물을 포함한 요소 및 기타 의학 분야에 잘 알려진 요소에 따라 결정될 수 있다. 본 발명의 조성물은 개별 치료제로 투여하거나 다른 치료제와 병용하여 투여될 수 있고 종래의 치료제와는 순차적 또는 동시에 투여될 수 있다. 그리고 단일 또는 다중 투여될 수 있다. 상기 요소를 모두 고려하여 부작용 없이 최소한의 양으로 최대 효과를 얻을 수 있는 양을 투여하는 것이 중요하며, 당업자에 의해 용이하게 결정될 수 있다.
본 발명의 또 다른 실시양태는 상기 보중익기탕, 그의 추출물 또는 이의 분획물을 포함하는 악액질 예방 또는 개선용 식품 조성물을 제공한다.
이때, 상기 보중익기탕, 추출물, 분획물, 악액질 및 예방의 정의는 상기에서 설명한 바와 같다.
상기 보중익기탕, 그의 추출물 또는 이의 분획물을 포함하는 조성물은 식품 조성물의 총 중량에 대하여 0.01 내지 100 중량%, 보다 바람직하게는 1 내지 80 중량%로 포함한다. 식품이 음료인 경우에는 100㎖를 기준으로 1~30g, 바람직하게는 3 ~ 20g의 비율로 포함될 수 있다. 또한, 상기 조성물은 식품 조성물에 통상 사용되어 냄새, 맛, 시각 등을 향상시킬 수 있는 추가 성분을 포함할 수 있다. 예들 들어, 비타민 A, C, D, E, B1, B2, B6, B12, 니아신(niacin), 비오틴(biotin), 폴레이트(folate), 판토텐산(panthotenic acid) 등을 포함할 수 있다. 또한, 아연(Zn), 철(Fe), 칼슘(Ca), 크롬(Cr), 마그네슘(Mg), 망간(Mn), 구리(Cu), 크륨(Cr) 등의 미네랄을 포함할 수 있다. 또한, 라이신, 트립토판, 시스테인, 발린 등의 아미노산을 포함할 수 있다. 또한, 방부제(소르빈산 칼륨, 벤조산나트륨, 살리실산, 데히드로초산나트륨 등), 살균제(표백분과 고도 표백분, 차아염소산나트륨 등), 산화방지제(부틸히드록시아니졸(BHA), 부틸히드록시톨류엔(BHT) 등), 착색제(타르색소 등), 발색제(아질 산 나트륨, 아초산 나트륨 등), 표백제(아황산나트륨), 조미료(MSG 글루타민산나트륨 등), 감미료(둘신, 사이클레메이트, 사카린, 나트륨 등), 향료(바닐린, 락톤류 등), 팽창제(명반, D-주석산수소칼륨 등), 강화제, 유화제, 증점제(호료), 피막제, 검기초제, 거품억제제, 용제, 개량제 등의 식품 첨가물(food additives)을 첨가할 수 있다. 상기 첨가물은 식품의 종류에 따라 선별되고 적절한 양으로 사용된다.
한편, 상기 보중익기탕, 그의 추출물 또는 이의 분획물을 포함하는 식품 조성물을 이용하여 악액질의 예방 또는 개선용 기능성식품을 제조할 수 있다.
구체적인 예로, 상기 조성물을 이용하여 농산물, 축산물 또는 수산물의 특성을 살려 변형시키는 동시에 저장성을 좋게한 가공식품을 제조할 수 있다. 이런 가공식품에는 예들 들어, 과자, 음료, 주류, 발효식품, 통조림, 우유가공식품, 육륙가공식품, 국수 등을 포함한다. 과자는 비스킷, 파이, 케익, 빵, 캔디, 젤리, 껌, 시리얼(곡물푸레이크 등의 식사대용품류 포함) 등을 포함한다. 음료는 탄산음료, 기능성이온음료, 쥬스(예들 들어, 사과, 배, 포도, 알로에, 감귤, 복숭아, 당근, 토마토 쥬스 등), 식혜 등을 포함한다. 주류는 청주, 위스키, 소주, 맥주, 양주, 과실주 등을 포함한다. 발효식품은 간장, 된장, 고추장 등을 포함한다. 통조림은 수산물 통조림(예들 들어, 참치, 고등어, 꽁치, 소라 통조림 등), 축산물 통조림(쇠고기, 돼지고기, 닭고기, 칠면조 통조림 등), 농산물 통조림(옥수수, 복숭아, 파일애플 통조림 등)을 포함한다. 우유가공식품은 치즈, 버터, 요구르트 등을 포함한다. 육류가공식품은 돈까스, 비프까스, 치킨까스, 소세지. 탕수육, 너겟류, 너비아니 등을 포함한다. 밀봉포장생면 등의 국수를 포함한다. 이 외에도 상기 조성물은 레토르트식품, 스프류 등에 사용될 수 있다.
본 발명의 용어 "기능성식품(functional food)"이란, 특정보건용 식품(food for special health use, FoSHU)와 동일한 용어로, 영양 공급 외에도 생체조절기능이 효율적으로 나타나도록 가공된 의학, 의료효과가 높은 식품을 의미한다. 본 발명에서 용어,“건강식품(health food)"은 일반식품에 비해 적극적인 건강유지나 증진 효과를 가지는 식품을 의미하고, 건강보조식품(health supplement food)는 건강 보조 목적의 식품을 의미한다. 경우에 따라, 기능성식품, 건강식품, 건강보조식품의 용어는 호용된다. 상기 식품은 악액질의 예방 또는 개선에 유용한 효과를 얻기 위하여 정제, 캅셀, 분말, 과립, 액상, 환 등의 다양한 형태로 제조될 수 있다.
본 발명의 또 다른 실시양태는 상기 보중익기탕, 그의 추출물 또는 이의 분획물을 포함하는 악액질 예방 또는 개선용 사료 조성물을 제공한다.
이때, 상기 보중익기탕, 추출물, 분획물, 악액질, 예방 및 치료의 정의는 상기에서 설명한 바와 같다.
본 발명의 용어 "사료"란 가축이 먹고, 섭취하며, 소화시키기 위한 또는 이에 적당한 임의의 천연 또는 인공 규정식, 한끼식 등 또는 상기 한끼식의 성분을 의미한다.
상기 사료는 사료 첨가제 또는 보조사료를 포함할 수 있다.
상기 사료의 종류는 특별히 제한되지 않으며, 당해 기술 분야에서 통상적으로 사용되는 사료를 사용할 수 있다. 상기 사료의 비제한적인 예로는, 곡물류, 근과류, 식품 가공 부산물류, 조류, 섬유질류, 제약 부산물류, 유지류, 전분류, 박류 또는 곡물 부산물류 등과 같은 식물성 사료; 단백질류, 무기물류, 유지류, 광물성류, 유지류, 단세포 단백질류, 동물성 플랑크톤류 또는 음식물 등과 같은 동물성 사료를 들 수 있다. 이들은 단독으로 사용되거나 2종 이상을 혼합하여 사용될 수 있다.
본 발명에서 제공하는 악액질 예방 또는 치료용 약학 조성물은, 종래로부터 사용되어 안전성이 입증된 보중익기탕을 포함하므로, 암성 악액질에 의해 유발되는 다양한 근위축, 근감소증의 치료를 위한 약학 조성물의 개발에 널리 활용될 수 있을 것이다.
도 1a는 골격근 세포에 대장암 세포 배양액(CM)을 처리한 후, 상기 배양액의 농도 및 배양시간의 경과에 따른 세포생존율의 변화를 비교한 결과를 나타내는 그래프이다.
도 1b는 골격근 세포에 30%의 대장암 세포 배양액(CM)과 30 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)을 각각 개별적으로 처리하거나 또는 함께 처리한 후, 상기 배양액의 농도 및 배양시간의 경과에 따른 세포생존율의 변화를 비교한 결과를 나타내는 그래프이다.
도 1c는 골격근 세포에 30%의 대장암 세포 배양액(CM)과 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)을 각각 개별적으로 처리하거나 또는 함께 처리한 후, 상기 배양액의 농도 및 배양시간의 경과에 따른 세포생존율의 변화를 비교한 결과를 나타내는 그래프이다.
도 2a는 골격근 세포에 30%의 대장암 세포 배양액(CM)과 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)을 각각 개별적으로 처리하거나 또는 함께 처리한 후, 배양된 골격근 세포의 밀도를 나타내는 현미경사진이다.
도 2b는 골격근 세포에 30%의 대장암 세포 배양액(CM)과 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)을 각각 개별적으로 처리하거나 또는 함께 처리한 후, 배양된 골격근 세포의 직경을 비교한 결과를 나타내는 그래프이다.
도 3a는 골격근 세포에 대장암 세포 배양액(CM)을 처리한 후, 상기 배양액의 농도에 따른 Atrogin-1 및 MuRF-1의 발현 수준을 비교한 결과를 나타내는 웨스턴블럿 분석결과이다.
도 3b는 골격근 세포에 30% 대장암 세포 배양액(CM)과 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)을 각각 개별적으로 처리하거나 또는 함께 처리한 후, Atrogin-1 및 MuRF-1의 발현 수준을 비교한 결과를 나타내는 웨스턴블럿 분석결과이다.
도 4는 골격근 세포에 30% 대장암 세포 배양액(CM)과 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)을 각각 개별적으로 처리하거나 또는 함께 처리한 후, MyHC의 발현 수준을 비교한 결과를 나타내는 웨스턴블럿 분석결과이다.
도 5a는 골격근 세포에 30% 대장암 세포 배양액(CM)과 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)을 각각 개별적으로 처리하거나 또는 함께 처리한 후, STAT3 및 인산화된 STAT3(p-STAT3)의 수준을 비교한 결과를 나타내는 웨스턴블럿 분석결과이다.
도 5b는 골격근 세포에 30% 대장암 세포 배양액(CM)과 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)을 각각 개별적으로 처리하거나 또는 함께 처리한 후, 핵추출물을 사용하여 EMSA(electrophoretic mobility shift assay)를 수행한 결과이다.
도 6a는 마우스를 이용한 실험과정을 요약한 개략도이다.
도 6b는 대장암 세포가 이식되지 않은 마우스(Blank), 대장암 세포가 이식되고 치료제를 투여하지 않은 마우스(Control), 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib를 투여한 마우스(Celecoxib), 대장암 세포가 이식되고 보중익기탕을 투여한 마우스(Boro) 및 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib과 보중익기탕을 함께 투여한 마우스(Boro+Celecoxib)를 대상으로 암조직을 제외한 체중을 비교한 결과를 나타내는 그래프이다.
도 6c는 대장암 세포가 이식되지 않은 마우스(Blank), 대장암 세포가 이식되고 치료제를 투여하지 않은 마우스(Control), 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib를 투여한 마우스(Celecoxib), 대장암 세포가 이식되고 보중익기탕을 투여한 마우스(Boro) 및 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib과 보중익기탕을 함께 투여한 마우스(Boro+Celecoxib)로 부터 적출된 비복근(GAS)과 앞정강근(TA)의 중량을 비교한 결과를 나타내는 그래프이다.
도 6d는 대장암 세포가 이식되지 않은 마우스(Blank), 대장암 세포가 이식되고 치료제를 투여하지 않은 마우스(Control), 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib를 투여한 마우스(Celecoxib), 대장암 세포가 이식되고 보중익기탕을 투여한 마우스(Boro) 및 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib과 보중익기탕을 함께 투여한 마우스(Boro+Celecoxib)로 부터 적출된 비복근(GAS)과 앞정강근(TA)의 조직염색을 수행한 결과를 나타내는 현미경사진이다.
도 6e는 대장암 세포가 이식되지 않은 마우스(Blank), 대장암 세포가 이식되고 치료제를 투여하지 않은 마우스(Control), 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib를 투여한 마우스(Celecoxib), 대장암 세포가 이식되고 보중익기탕을 투여한 마우스(Boro) 및 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib과 보중익기탕을 함께 투여한 마우스(Boro+Celecoxib)로 부터 적출된 비장(spleen), 간(liver), 심장(heart) 및 폐(lung)의 중량을 비교한 결과를 나타내는 그래프이다.
도 7은 대장암 세포가 이식되지 않은 마우스(Blank), 대장암 세포가 이식되고 치료제를 투여하지 않은 마우스(Control), 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib를 투여한 마우스(Celecoxib), 대장암 세포가 이식되고 보중익기탕을 투여한 마우스(Boro) 및 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib과 보중익기탕을 함께 투여한 마우스(Boro+Celecoxib)의 혈중 사이토카인 농도를 나타내는 그래프로서, 7a는 IL-6, 7b는 TNF-α, 7c는 CRP, 7d는 ALT, 7e는 AST, 7f는 Creatine를 각각 나타낸다.
도 8a는 대장암 세포가 이식되지 않은 마우스(Blank), 대장암 세포가 이식되고 치료제를 투여하지 않은 마우스(Control), 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib를 투여한 마우스(Celecoxib), 대장암 세포가 이식되고 보중익기탕을 투여한 마우스(Boro) 및 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib과 보중익기탕을 함께 투여한 마우스(Boro+Celecoxib)로 부터 적출된 비복근(GAS)과 앞정강근(TA)의 조직을 대상으로 MuRF-1의 발현수준을 확인하기 위한 면역조직화학분석(ImmunoHistoChemistry, IHC)을 수행한 결과를 나타내는 형광현미경 사진이다.
도 8b는 대장암 세포가 이식되지 않은 마우스(Blank), 대장암 세포가 이식되고 치료제를 투여하지 않은 마우스(Control), 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib를 투여한 마우스(Celecoxib), 대장암 세포가 이식되고 보중익기탕을 투여한 마우스(Boro) 및 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib과 보중익기탕을 함께 투여한 마우스(Boro+Celecoxib)로 부터 적출된 비복근(GAS)과 앞정강근(TA)의 조직을 대상으로 Atrogin-1 및 MuRF-1의 발현 수준을 비교한 결과를 나타내는 웨스턴블럿 분석결과이다.
도 1b는 골격근 세포에 30%의 대장암 세포 배양액(CM)과 30 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)을 각각 개별적으로 처리하거나 또는 함께 처리한 후, 상기 배양액의 농도 및 배양시간의 경과에 따른 세포생존율의 변화를 비교한 결과를 나타내는 그래프이다.
도 1c는 골격근 세포에 30%의 대장암 세포 배양액(CM)과 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)을 각각 개별적으로 처리하거나 또는 함께 처리한 후, 상기 배양액의 농도 및 배양시간의 경과에 따른 세포생존율의 변화를 비교한 결과를 나타내는 그래프이다.
도 2a는 골격근 세포에 30%의 대장암 세포 배양액(CM)과 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)을 각각 개별적으로 처리하거나 또는 함께 처리한 후, 배양된 골격근 세포의 밀도를 나타내는 현미경사진이다.
도 2b는 골격근 세포에 30%의 대장암 세포 배양액(CM)과 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)을 각각 개별적으로 처리하거나 또는 함께 처리한 후, 배양된 골격근 세포의 직경을 비교한 결과를 나타내는 그래프이다.
도 3a는 골격근 세포에 대장암 세포 배양액(CM)을 처리한 후, 상기 배양액의 농도에 따른 Atrogin-1 및 MuRF-1의 발현 수준을 비교한 결과를 나타내는 웨스턴블럿 분석결과이다.
도 3b는 골격근 세포에 30% 대장암 세포 배양액(CM)과 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)을 각각 개별적으로 처리하거나 또는 함께 처리한 후, Atrogin-1 및 MuRF-1의 발현 수준을 비교한 결과를 나타내는 웨스턴블럿 분석결과이다.
도 4는 골격근 세포에 30% 대장암 세포 배양액(CM)과 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)을 각각 개별적으로 처리하거나 또는 함께 처리한 후, MyHC의 발현 수준을 비교한 결과를 나타내는 웨스턴블럿 분석결과이다.
도 5a는 골격근 세포에 30% 대장암 세포 배양액(CM)과 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)을 각각 개별적으로 처리하거나 또는 함께 처리한 후, STAT3 및 인산화된 STAT3(p-STAT3)의 수준을 비교한 결과를 나타내는 웨스턴블럿 분석결과이다.
도 5b는 골격근 세포에 30% 대장암 세포 배양액(CM)과 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)을 각각 개별적으로 처리하거나 또는 함께 처리한 후, 핵추출물을 사용하여 EMSA(electrophoretic mobility shift assay)를 수행한 결과이다.
도 6a는 마우스를 이용한 실험과정을 요약한 개략도이다.
도 6b는 대장암 세포가 이식되지 않은 마우스(Blank), 대장암 세포가 이식되고 치료제를 투여하지 않은 마우스(Control), 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib를 투여한 마우스(Celecoxib), 대장암 세포가 이식되고 보중익기탕을 투여한 마우스(Boro) 및 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib과 보중익기탕을 함께 투여한 마우스(Boro+Celecoxib)를 대상으로 암조직을 제외한 체중을 비교한 결과를 나타내는 그래프이다.
도 6c는 대장암 세포가 이식되지 않은 마우스(Blank), 대장암 세포가 이식되고 치료제를 투여하지 않은 마우스(Control), 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib를 투여한 마우스(Celecoxib), 대장암 세포가 이식되고 보중익기탕을 투여한 마우스(Boro) 및 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib과 보중익기탕을 함께 투여한 마우스(Boro+Celecoxib)로 부터 적출된 비복근(GAS)과 앞정강근(TA)의 중량을 비교한 결과를 나타내는 그래프이다.
도 6d는 대장암 세포가 이식되지 않은 마우스(Blank), 대장암 세포가 이식되고 치료제를 투여하지 않은 마우스(Control), 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib를 투여한 마우스(Celecoxib), 대장암 세포가 이식되고 보중익기탕을 투여한 마우스(Boro) 및 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib과 보중익기탕을 함께 투여한 마우스(Boro+Celecoxib)로 부터 적출된 비복근(GAS)과 앞정강근(TA)의 조직염색을 수행한 결과를 나타내는 현미경사진이다.
도 6e는 대장암 세포가 이식되지 않은 마우스(Blank), 대장암 세포가 이식되고 치료제를 투여하지 않은 마우스(Control), 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib를 투여한 마우스(Celecoxib), 대장암 세포가 이식되고 보중익기탕을 투여한 마우스(Boro) 및 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib과 보중익기탕을 함께 투여한 마우스(Boro+Celecoxib)로 부터 적출된 비장(spleen), 간(liver), 심장(heart) 및 폐(lung)의 중량을 비교한 결과를 나타내는 그래프이다.
도 7은 대장암 세포가 이식되지 않은 마우스(Blank), 대장암 세포가 이식되고 치료제를 투여하지 않은 마우스(Control), 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib를 투여한 마우스(Celecoxib), 대장암 세포가 이식되고 보중익기탕을 투여한 마우스(Boro) 및 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib과 보중익기탕을 함께 투여한 마우스(Boro+Celecoxib)의 혈중 사이토카인 농도를 나타내는 그래프로서, 7a는 IL-6, 7b는 TNF-α, 7c는 CRP, 7d는 ALT, 7e는 AST, 7f는 Creatine를 각각 나타낸다.
도 8a는 대장암 세포가 이식되지 않은 마우스(Blank), 대장암 세포가 이식되고 치료제를 투여하지 않은 마우스(Control), 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib를 투여한 마우스(Celecoxib), 대장암 세포가 이식되고 보중익기탕을 투여한 마우스(Boro) 및 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib과 보중익기탕을 함께 투여한 마우스(Boro+Celecoxib)로 부터 적출된 비복근(GAS)과 앞정강근(TA)의 조직을 대상으로 MuRF-1의 발현수준을 확인하기 위한 면역조직화학분석(ImmunoHistoChemistry, IHC)을 수행한 결과를 나타내는 형광현미경 사진이다.
도 8b는 대장암 세포가 이식되지 않은 마우스(Blank), 대장암 세포가 이식되고 치료제를 투여하지 않은 마우스(Control), 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib를 투여한 마우스(Celecoxib), 대장암 세포가 이식되고 보중익기탕을 투여한 마우스(Boro) 및 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib과 보중익기탕을 함께 투여한 마우스(Boro+Celecoxib)로 부터 적출된 비복근(GAS)과 앞정강근(TA)의 조직을 대상으로 Atrogin-1 및 MuRF-1의 발현 수준을 비교한 결과를 나타내는 웨스턴블럿 분석결과이다.
이하 본 발명을 실시예를 통하여 보다 상세하게 설명한다. 그러나 이들 실시예는 본 발명을 예시적으로 설명하기 위한 것으로 본 발명의 범위가 이들 실시예에 한정되는 것은 아니다.
실시예 1: 악액질에 의한 증상 및 근육손실 유전자의 발현에 미치는 보중익기탕의 효과
마우스 유래 C2C12 근아세포(myoblast)를 골격근 세포(myotube)로 분화시키고, 이에 마우스 CT26 대장암 세포의 배양액(CM)을 처리하여 암성 악액질을 유발시킨 다음, 이에 보중익기탕(Boro)을 처리하여, 골격근 세포에서의 변화를 분석하였다.
실시예 1-1: 세포생존율 분석
먼저, 기준 실험군으로서, 분화된 골격근 세포에 CT26 대장암 세포의 배양액(CM)을 다양한 농도(0, 30, 50 또는 100%)로 처리하고 120시간 동안 배양한 후, 배양된 골격근 세포의 생존율을 비교하였다(도 1a).
도 1a는 골격근 세포에 대장암 세포 배양액(CM)을 처리한 후, 상기 배양액의 농도 및 배양시간의 경과에 따른 세포생존율의 변화를 비교한 결과를 나타내는 그래프이다.
도 1a에서 보듯이, 대장암 세포 배양액(CM)이 처리된 골격근세포는 배양직후부터 세포생존율이 지속적으로 감소됨을 확인하였다.
다음으로, 분화된 골격근 세포에, 30%의 CT26 대장암 세포의 배양액(CM)과 30 또는 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)을 각각 개별적으로 처리하거나 또는 함께 처리하고, 120시간 동안 배양한 후, 배양된 골격근 세포의 생존율을 비교하였다(도 1b 및 1c).
도 1b는 골격근 세포에 30%의 대장암 세포 배양액(CM)과 30 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)을 각각 개별적으로 처리하거나 또는 함께 처리한 후, 상기 배양액의 농도 및 배양시간의 경과에 따른 세포생존율의 변화를 비교한 결과를 나타내는 그래프이고, 도 1c는 골격근 세포에 30%의 대장암 세포 배양액(CM)과 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)을 각각 개별적으로 처리하거나 또는 함께 처리한 후, 상기 배양액의 농도 및 배양시간의 경과에 따른 세포생존율의 변화를 비교한 결과를 나타내는 그래프이다.
도 1b 및 1c에서 보듯이, 보중익기탕(Boro)을 단독으로 처리한 경우에는, 세포생존율이 변화되지 않았고, 대장암 세포 배양액(CM)과 보중익기탕(Boro)을 함께 처리한 경우에는, 대장암 세포 배양액(CM)의 처리에 의해 감소된 세포생존율이 증가됨을 확인하였다.
특히, 30 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro) 보다는 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)을 사용한 경우에 세포 생존율이 보다 높은 수준으로 증가하였으므로, 이후의 실시예에서는 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)을 처리하였다.
실시예 1-2: 근육손실 분석
분화된 골격근 세포에, 30%의 CT26 대장암 세포의 배양액(CM)과 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)을 각각 개별적으로 처리하거나 또는 함께 처리하고, 120시간 동안 배양한 후, 배양된 골격근 세포의 밀도 및 직경의 변화를 분석하였다(도 2a 및 2b).
도 2a는 골격근 세포에 30%의 대장암 세포 배양액(CM)과 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)을 각각 개별적으로 처리하거나 또는 함께 처리한 후, 배양된 골격근 세포의 밀도를 나타내는 현미경사진이고, 도 2b는 골격근 세포에 30%의 대장암 세포 배양액(CM)과 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)을 각각 개별적으로 처리하거나 또는 함께 처리한 후, 배양된 골격근 세포의 직경을 비교한 결과를 나타내는 그래프이다.
도 2a 및 2b에서 보듯이 보중익기탕(Boro)을 단독으로 처리한 경우에는, 배양된 골격근 세포의 밀도 및 직경이 변화되지 않았고, 대장암 세포 배양액(CM)과 보중익기탕(Boro)을 함께 처리한 경우에는, 대장암 세포 배양액(CM)의 처리에 의해 감소된 밀도와 직경이 증가됨을 확인하였다.
상기 결과로부터, 보중익기탕은 악액질에 의한 근육위축을 억제할 수 있을 것으로 분석되었다.
실시예 1-3: 근육손실 유도 유전자의 발현수준 분석
먼저, 근육 손실 유도 유전자 Atrogin-1 및 MuRF-1의 발현 수준에 미치는 암세포 배양액의 영향을 분석하기 위하여, 분화된 골격근 세포에, 0. 15, 30, 50 또는 100%의 CT26 대장암 세포의 배양액(CM)을 처리하여 배양하고, 배양이 종료된 후, 배양된 각 골격근 세포에서 발현된 Atrogin-1 및 MuRF-1의 발현 수준을 웨스턴블럿 분석을 통해 비교하였다(도 3a).
도 3a는 골격근 세포에 대장암 세포 배양액(CM)을 처리한 후, 상기 배양액의 농도에 따른 Atrogin-1 및 MuRF-1의 발현 수준을 비교한 결과를 나타내는 웨스턴블럿 분석결과이다.
도 3a에서 보듯이, 골격근 세포에 대장암 세포 배양액(CM)을 처리하지 않은 경우에 비하여, 대장암 세포 배양액(CM)을 처리한 경우에 Atrogin-1 및 MuRF-1의 발현 수준이 증가됨을 확인하였다.
특히, 30%의 CT26 대장암 세포의 배양액(CM)을 처리한 경우에 Atrogin-1 및 MuRF-1가 가장 높은 수준으로 발현됨을 확인하였다.
다음으로, 30%의 CT26 대장암 세포의 배양액(CM)과 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)을 각각 개별적으로 처리하거나 또는 함께 처리하여 배양한 골격근 세포를 대상으로 Atrogin-1 및 MuRF-1의 발현 수준을 웨스턴블럿 분석을 통해 비교하였다(도 3b).
도 3b는 골격근 세포에 30% 대장암 세포 배양액(CM)과 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)을 각각 개별적으로 처리하거나 또는 함께 처리한 후, Atrogin-1 및 MuRF-1의 발현 수준을 비교한 결과를 나타내는 웨스턴블럿 분석결과이다.
도 3b에서 보듯이, 30%의 CT26 대장암 세포의 배양액(CM) 처리에 의해 증가된 Atrogin-1 및 MuRF-1의 발현 수준은 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)의 처리에 의해, 30%의 CT26 대장암 세포의 배양액(CM)을 처리하지 않은 수준으로 감소됨을 확인하였다.
실시예 1-4: 근육구성 유전자의 발현수준 분석
MyHC(Myosin heavy chain)는 근육을 구성하는 단위로서 근육 분해의 지표로서 사용되므로, 이에 미치는 대장암 세포의 배양액(CM)과 보중익기탕(Boro)의 효과를 분석하였다.
대략적으로, 30%의 CT26 대장암 세포의 배양액(CM)과 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)을 각각 개별적으로 처리하거나 또는 함께 처리하여 배양한 골격근 세포를 대상으로 MyHC의 발현 수준을 웨스턴블럿 분석을 통해 비교하였다(도 4)
도 4는 골격근 세포에 30% 대장암 세포 배양액(CM)과 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)을 각각 개별적으로 처리하거나 또는 함께 처리한 후, MyHC의 발현 수준을 비교한 결과를 나타내는 웨스턴블럿 분석결과이다.
도 4에서 보듯이, 30%의 CT26 대장암 세포의 배양액(CM) 처리에 의해 감소된 MyHC의 발현 수준은 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)의 처리에 의해, 다시 증가됨을 확인하였다.
실시예 1-5: STAT3 활성에 미치는 영향 분석
먼저, 30%의 CT26 대장암 세포의 배양액(CM)과 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)을 각각 개별적으로 처리하거나 또는 함께 처리하여 배양한 골격근 세포를 대상으로, STAT3 및 인산화된 STAT3(p-STAT3)의 수준을 웨스턴블럿 분석을 통해 비교하였다(도 5a).
도 5a는 골격근 세포에 30% 대장암 세포 배양액(CM)과 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)을 각각 개별적으로 처리하거나 또는 함께 처리한 후, STAT3 및 인산화된 STAT3(p-STAT3)의 수준을 비교한 결과를 나타내는 웨스턴블럿 분석결과이다.
도 5a에서 보듯이, 30%의 CT26 대장암 세포의 배양액(CM) 처리에 의해 증가된 STAT3 인산화 수준은 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)의 처리에 의해, 30%의 CT26 대장암 세포의 배양액(CM)을 처리하지 않은 수준으로 감소됨을 확인하였다.
다음으로, STAT3의 결합활성에 미치는 영향을 분석하기 위하여, 30%의 CT26 대장암 세포의 배양액(CM)과 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)을 각각 개별적으로 처리하거나 또는 함께 처리하여 배양한 골격근 세포에 핵 추출물(5 μg/레인)을 처리하고, EMSA(electrophoretic mobility shift assay)를 수행하고, 그 결과를 분석하였다(도 5b). 이때, 내부대조군으로서 OCT1을 사용하였다.
도 5b는 골격근 세포에 30% 대장암 세포 배양액(CM)과 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)을 각각 개별적으로 처리하거나 또는 함께 처리한 후, 핵추출물을 사용하여 EMSA(electrophoretic mobility shift assay)를 수행한 결과이다.
도 5b에서 보듯이, 30%의 CT26 대장암 세포의 배양액(CM) 처리에 의해 증가된 STAT3 결합활성은, 50 ㎍/㎖의 보중익기탕(Boro)의 처리에 의해, 30%의 CT26 대장암 세포의 배양액(CM)을 처리하지 않은 수준으로 감소됨을 확인하였다.
실시예 2: in vivo 분석
보중익기탕의 악액질 억제효과를 검증하기 위하여, 암세포를 이식한 마우스 모델을 사용한 실험을 수행하였다.
실시예 2-1: 마우스 모델의 제작
5×105개의 CT26 대장암 세포를 Matrigel과 1:1 비율로 혼합하고, 상기 혼합물을 마우스 오른쪽 엉덩이 부분에 피하 주사하여 이식하였으며, 1주 동안 안정화시킨 후, 4주 동안 Celecoxib (50 mg/ml, 주 3회 투여) 또는 보중익기탕 (Boro, 0.5 g/kg, 주 3회 투여)를 복강투여하면서 사육하고, 복강투여가 종료된 후, 각 마우스를 안락사시켰다(도 6a).
도 6a는 마우스를 이용한 실험과정을 요약한 개략도이다.
실시예 2-2: 체중분석
상기 실시예 2-1에서 희생시킨 각 마우스로부터 암조직을 제거한 후, 각 마우스의 체중을 측정하였다(도 6b).
도 6b는 대장암 세포가 이식되지 않은 마우스(Blank), 대장암 세포가 이식되고 치료제를 투여하지 않은 마우스(Control), 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib를 투여한 마우스(Celecoxib), 대장암 세포가 이식되고 보중익기탕을 투여한 마우스(Boro) 및 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib과 보중익기탕을 함께 투여한 마우스(Boro+Celecoxib)를 대상으로 암조직을 제외한 체중을 비교한 결과를 나타내는 그래프이다.
도 6b에서 보듯이, 대장암 세포가 이식된 마우스의 경우, 체중이 현저하게 감소되었으나, Celecoxib 또는 보중익기탕을 복강투여한 경우에는 체중감소가 억제됨을 확인하였다.
상기 결과는, 대장암 이식에 의해 유발된 악액질 증상에 의해 체중이 증가되지만, 이러한 악액질 증상이 보중익기탕에 의해 감소 또는 치료되는 효과를 나타내는 것으로 분석되었다.
실시예 2-3: 근육중량 분석
상기 실시예 2-1에서 희생시킨 각 마우스로부터 비복근 (Gastrocnemius, GAS)과 앞정강근 (Tibialis anterior, TA)를 각각 적출하고, 이들의 중량을 측정하였다(도 6c).
도 6c는 대장암 세포가 이식되지 않은 마우스(Blank), 대장암 세포가 이식되고 치료제를 투여하지 않은 마우스(Control), 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib를 투여한 마우스(Celecoxib), 대장암 세포가 이식되고 보중익기탕을 투여한 마우스(Boro) 및 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib과 보중익기탕을 함께 투여한 마우스(Boro+Celecoxib)로 부터 적출된 비복근(GAS)과 앞정강근(TA)의 중량을 비교한 결과를 나타내는 그래프이다.
도 6c에서 보듯이, 대장암 세포가 이식된 마우스의 경우, 비복근과 앞정강근의 중량이 현저히 감소됨을 확인하였다.
이러한 근육중량의 감소는 대장암 세포의 이식에 의해 유도된 체중감소의 원인이 될 것으로 예상되었다.
또한, 이러한 근육중량의 감소는 Celecoxib 또는 보중익기탕의 복강투여에 의해 억제되었는데, 비복근의 경우에는 Celecoxib 또는 보중익기탕의 복강투여에 의해 억제되었으나, 앞정강근의 경우에는 Celecoxib는 억제효과를 나타내지 않았고, 보중익기탕 만이 억제효과를 나타냄을 확인하였다.
이를 검증하기 위하여, 적출된 비복근(GAS) 및 앞정강근(TA)를 대상으로 H&E (Haemotoxylin and Eosin)염색을 수행하고, 현미경으로 관찰하여 근육 손실 정도를 비교분석하였다(도 6d).
도 6d는 대장암 세포가 이식되지 않은 마우스(Blank), 대장암 세포가 이식되고 치료제를 투여하지 않은 마우스(Control), 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib를 투여한 마우스(Celecoxib), 대장암 세포가 이식되고 보중익기탕을 투여한 마우스(Boro) 및 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib과 보중익기탕을 함께 투여한 마우스(Boro+Celecoxib)로 부터 적출된 비복근(GAS)과 앞정강근(TA)의 조직염색을 수행한 결과를 나타내는 현미경사진이다.
도 6d에서 보듯이, 대장암 세포가 이식되고 치료제를 투여하지 않은 마우스(Control)에서는 GAS와 TA의 근섬유가 위축되어 굵기가 감소되었고, Celecoxib 또는 보중익기탕이 복강투여된 마우스(Celecoxib, Boro 및 Boro+Celecoxib)에서는 근섬유의 위축이 억제됨을 확인하였다.
상기 결과는, 대장암 이식에 의해 유발된 악액질 증상에 의해 비복근(GAS)과 앞정강근(TA)의 조직에서 근육 손실이 유발되지만, 이러한 악액질 증상이 보중익기탕에 의해 감소 또는 치료되는 효과를 나타내는 것으로 분석되었다.
실시예 2-4: 장기중량 분석
상기 실시예 2-1에서 희생시킨 각 마우스로부터 비장(spleen), 간(liver), 심장(heart) 및 폐(lung)를 적출하고, 이들 적출된 장기의 중량을 측정하였다(도 6e).
도 6e는 대장암 세포가 이식되지 않은 마우스(Blank), 대장암 세포가 이식되고 치료제를 투여하지 않은 마우스(Control), 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib를 투여한 마우스(Celecoxib), 대장암 세포가 이식되고 보중익기탕을 투여한 마우스(Boro) 및 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib과 보중익기탕을 함께 투여한 마우스(Boro+Celecoxib)로 부터 적출된 비장(spleen), 간(liver), 심장(heart) 및 폐(lung)의 중량을 비교한 결과를 나타내는 그래프이다.
도 6e에서 보듯이, 마우스의 면역관련 장기인 비장(spleen)의 경우에는 대장암 세포의 이식에 의해 중량이 현저하게 증가하고, 이처럼 증가된 중량은 보중익기탕의 복강투여에 의해 다시 감소됨을 확인하였다. 이에 반하여, 간, 심장 및 폐의 경우에는 대장암 세포의 이식 또는 Celecoxib/보중익기탕의 복강투여에 의해 유의한 변화를 나타내지 않음을 확인하였다.
상기 결과는, 대장암 이식에 의해 유발된 악액질 증상에 의해 면역관련 장기인 비장(spleen)의 중량이 증가되지만, 이러한 악액질 증상이 보중익기탕에 의해 감소 또는 치료되는 효과를 나타내는 것으로 분석되었다.
실시예 2-5: 사이토카인 혈중농도 분석
상기 실시예 2-1에서 희생시킨 각 마우스의 혈액에 포함된 염증성 사이토카인인 IL-6, TNF-α, CRP, ALT, AST 및 Creatine의 농도를 ELISA를 통해 측정하고 비교하였다(도 7a 내지 7f).
도 7은 대장암 세포가 이식되지 않은 마우스(Blank), 대장암 세포가 이식되고 치료제를 투여하지 않은 마우스(Control), 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib를 투여한 마우스(Celecoxib), 대장암 세포가 이식되고 보중익기탕을 투여한 마우스(Boro) 및 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib과 보중익기탕을 함께 투여한 마우스(Boro+Celecoxib)의 혈중 사이토카인 농도를 나타내는 그래프로서, 7a는 IL-6, 7b는 TNF-α, 7c는 CRP, 7d는 ALT, 7e는 AST, 7f는 Creatine를 각각 나타낸다.
도 7a 내지 7f에서 보듯이, 모든 사이토카인은 대장암 세포의 이식에 의해 증가되었고, ALT를 제외한 5개 사이토카인은 Celecoxib 또는 보중익기탕의 복강투여에 의해 증가된 혈중농도가 감소되었다. 특히, AST는 Celecoxib가 복강투여된 경우에만 혈중농도가 감소되었고, TNF-α는 보중익기탕이 복강투여된 경우에만 혈중농도가 감소됨을 확인하였다.
다만, ALT의 경우에는 Celecoxib 또는 보중익기탕의 복강투여에 의해 영향을 받지 않음을 확인하였다.
상기 결과는, 대장암 이식에 의해 유발된 악액질 증상에 의해 혈중 사이토카인의 농도가 증가하지만, 이러한 악액질 증상이 보중익기탕에 의해 감소 또는 치료되는 효과를 나타내는 것으로 분석되었다.
실시예 2-6: 유전자 발현수준 분석
상기 실시예 2-3의 결과에서 보듯이, 대장암 세포의 이식에 의해 비복근(GAS) 및 앞정강근(TA)이 직접적으로 영향을 받아 위축됨을 확인하였는 바, 이를 검증하고자 하였다.
먼저, 상기 각 근육조직에서 근육손실 유도 유전자인 MuRF-1의 의 발현수준을 확인하기 위하여 면역조직화학분석(ImmunoHistoChemistry, IHC)을 수행하였다(도 8a).
도 8a는 대장암 세포가 이식되지 않은 마우스(Blank), 대장암 세포가 이식되고 치료제를 투여하지 않은 마우스(Control), 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib를 투여한 마우스(Celecoxib), 대장암 세포가 이식되고 보중익기탕을 투여한 마우스(Boro) 및 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib과 보중익기탕을 함께 투여한 마우스(Boro+Celecoxib)로 부터 적출된 비복근(GAS)과 앞정강근(TA)의 조직을 대상으로 MuRF-1의 발현수준을 확인하기 위한 면역조직화학분석(ImmunoHistoChemistry, IHC)을 수행한 결과를 나타내는 형광현미경 사진이다.
도 8a에서 보듯이, 대장암 세포가 이식되고 치료제를 투여하지 않은 마우스(Control)의 비복근(GAS)과 앞정강근(TA)의 조직에서는 MuRF-1 유전자가 높은 수준으로 발현되었으나, Celecoxib 또는 보중익기탕이 복강투여된 마우스(Celecoxib, Boro 및 Boro+Celecoxib)에서는 MuRF-1 유전자의 발현수준이 감소됨을 확인하였다.
또한, 상기 각 근육조직에서 근육손실 유도 유전자인 Atrogin-1 및 MuRF-1의 발현 수준을 웨스턴블럿 분석을 통해 비교하였다(도 8b).
도 8b는 대장암 세포가 이식되지 않은 마우스(Blank), 대장암 세포가 이식되고 치료제를 투여하지 않은 마우스(Control), 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib를 투여한 마우스(Celecoxib), 대장암 세포가 이식되고 보중익기탕을 투여한 마우스(Boro) 및 대장암 세포가 이식되고 Celecoxib과 보중익기탕을 함께 투여한 마우스(Boro+Celecoxib)로 부터 적출된 비복근(GAS)과 앞정강근(TA)의 조직을 대상으로 Atrogin-1 및 MuRF-1의 발현 수준을 비교한 결과를 나타내는 웨스턴블럿 분석결과이다.
도 8b에서 보듯이, 대장암 세포가 이식되고 치료제를 투여하지 않은 마우스(Control)의 비복근(GAS)과 앞정강근(TA)의 조직에서는 Atrogin-1 및 MuRF-1 유전자가 높은 수준으로 발현되었으나, Celecoxib 또는 보중익기탕이 복강투여된 마우스(Celecoxib, Boro 및 Boro+Celecoxib)에서는 Atrogin-1 및 MuRF-1 유전자의 발현수준이 감소됨을 확인하였다.
상기 결과는, 대장암 이식에 의해 유발된 악액질 증상에 의해 비복근(GAS)과 앞정강근(TA)의 조직에서 근위축이 유발되지만, 이러한 악액질 증상이 보중익기탕에 의해 감소 또는 치료되는 효과를 나타내는 것으로 분석되었다.
이상의 설명으로부터, 본 발명이 속하는 기술분야의 당업자는 본 발명이 그 기술적 사상이나 필수적 특징을 변경하지 않고서 다른 구체적인 형태로 실시될 수 있다는 것을 이해할 수 있을 것이다. 이와 관련하여, 이상에서 기술한 실시 예들은 모든 면에서 예시적인 것이며 한정적인 것이 아닌 것으로서 이해해야만 한다. 본 발명의 범위는 상기 상세한 설명보다는 후술하는 특허 청구범위의 의미 및 범위 그리고 그 등가 개념으로부터 도출되는 모든 변경 또는 변형된 형태가 본 발명의 범위에 포함되는 것으로 해석되어야 한다.
Claims (11)
- 보중익기탕, 그의 추출물 또는 이의 분획물을 포함하는, 악액질 예방 또는 치료용 약학 조성물.
- 제1항에 있어서,
상기 추출물은 보중익기탕을 극성용매 또는 비극성용매로 추출하여 수득한 것인, 약학 조성물.
- 제2항에 있어서,
상기 극성 용매는 물, 탄소수 1 내지 4의 저급 알코올 및 이들의 혼합 용매로 이루어진 군에서 선택되는 용매인 것인, 약학 조성물.
- 제2항에 있어서,
상기 추출은 냉침추출법, 가열추출법, 초음파추출법, 환류추출법 및 이들의 조합으로 구성된 군으로부터 선택되는 방법을 사용하여 수행되는 것인, 약학 조성물.
- 제1항에 있어서,
상기 분획물은 상기 보중익기탕 추출물을 용매 분획법, 한외여과 분획법, 크로마토그래피 분획법 및 이들의 조합으로부터 선택되는 분획방법에 적용하여 수득하는 것인, 약학 조성물.
- 제1항에 있어서,
상기 악액질은 암의 발병에 의해 유발된 악액질인 것인 조성물.
- 제6항에 있어서,
상기 악액질은 대장암에 의해 유발된 악액질 또는 대장암의 전이에 의해 유발된 악액질인 것인, 조성물.
- 제1항에 있어서,
상기 조성물은 약학적으로 허용되는 담체, 부형제 또는 희석제를 추가로 포함하는 것인, 약학 조성물.
- 제1항 내지 제8항 중 어느 하나의 항의 약학 조성물을 악액질이 발병되거나 또는 발병될 가능성이 있는 인간을 제외한 개체에 투여하는 단계를 포함하는, 악액질의 예방 또는 치료방법.
- 보중익기탕, 그의 추출물 또는 이의 분획물을 포함하는, 악액질 예방 또는 개선용 건강식품 조성물.
- 보중익기탕, 그의 추출물 또는 이의 분획물을 포함하는, 악액질 예방 또는 개선용 사료 조성물.
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