KR20220003411A - 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제의 활성이 강화된 미생물, 및 이의 용도 - Google Patents

3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제의 활성이 강화된 미생물, 및 이의 용도 Download PDF

Info

Publication number
KR20220003411A
KR20220003411A KR1020200081194A KR20200081194A KR20220003411A KR 20220003411 A KR20220003411 A KR 20220003411A KR 1020200081194 A KR1020200081194 A KR 1020200081194A KR 20200081194 A KR20200081194 A KR 20200081194A KR 20220003411 A KR20220003411 A KR 20220003411A
Authority
KR
South Korea
Prior art keywords
ala
leu
gly
val
amino acid
Prior art date
Application number
KR1020200081194A
Other languages
English (en)
Other versions
KR102389327B1 (ko
Inventor
신광수
이광우
소이슬
장연재
심지현
Original Assignee
씨제이제일제당 (주)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority to KR1020200081194A priority Critical patent/KR102389327B1/ko
Application filed by 씨제이제일제당 (주) filed Critical 씨제이제일제당 (주)
Priority to PCT/KR2021/008349 priority patent/WO2022005225A1/ko
Priority to EP24185365.4A priority patent/EP4424834A2/en
Priority to US17/766,389 priority patent/US20240167065A1/en
Priority to CN202211667157.0A priority patent/CN115960809A/zh
Priority to EP21833442.3A priority patent/EP4032977A4/en
Priority to CN202180003334.2A priority patent/CN114096663B/zh
Priority to BR112022008745-4A priority patent/BR112022008745B1/pt
Priority to KR1020210169330A priority patent/KR102434925B1/ko
Publication of KR20220003411A publication Critical patent/KR20220003411A/ko
Application granted granted Critical
Publication of KR102389327B1 publication Critical patent/KR102389327B1/ko

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/10—Transferases (2.)
    • C12N9/1003—Transferases (2.) transferring one-carbon groups (2.1)
    • C12N9/1014—Hydroxymethyl-, formyl-transferases (2.1.2)
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/74—Vectors or expression systems specially adapted for prokaryotic hosts other than E. coli, e.g. Lactobacillus, Micromonospora
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/74—Vectors or expression systems specially adapted for prokaryotic hosts other than E. coli, e.g. Lactobacillus, Micromonospora
    • C12N15/77—Vectors or expression systems specially adapted for prokaryotic hosts other than E. coli, e.g. Lactobacillus, Micromonospora for Corynebacterium; for Brevibacterium
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00—Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/02—Amides, e.g. chloramphenicol or polyamides; Imides or polyimides; Urethanes, i.e. compounds comprising N-C=O structural element or polyurethanes
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P7/00—Preparation of oxygen-containing organic compounds
    • C12P7/40—Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a carboxyl group including Peroxycarboxylic acids
    • C12P7/42—Hydroxy-carboxylic acids
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Y—ENZYMES
    • C12Y201/00—Transferases transferring one-carbon groups (2.1)
    • C12Y201/02—Hydroxymethyl-, formyl- and related transferases (2.1.2)
    • C12Y201/02011—3-Methyl-2-oxobutanoate hydroxymethyltransferase (2.1.2.11), i.e. ketopantoate hydroxymethyltransferase
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/01—Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales
    • C12R2001/15—Corynebacterium
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/01—Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales
    • C12R2001/185—Escherichia
    • C12R2001/19—Escherichia coli

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 변이체, 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 활성이 강화된 미생물, 상기 미생물을 포함하는 판토텐산 및/또는 판토산 생산용 조성물, 및 상기 미생물을 배양하는 단계를 포함하는 판토텐산 및/또는 판토산 제조 방법이 제공된다.

Description

3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제의 활성이 강화된 미생물, 및 이의 용도{MICROORGANISM HAVING INHANCED ACTIVITY OF 3-METHYL-2-OXOBUTANOATE HYDROXYMETHYLTRANSFERASE AND USES THEREOF}
3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 변이체, 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제의 활성이 강화된 미생물, 상기 미생물을 포함하는 판토텐산 및/또는 판토산 생산용 조성물, 및 상기 미생물을 배양하는 단계를 포함하는 판토텐산 및/또는 판토산 제조 방법이 제공된다.
판토텐산(pantothenic acid)은 비타민 B 복합체에 속하는 물질로 비타민 B5라고도 불리며, 화장품, 의약, 사람 영양물, 동물 영양물 등에 다양하게 응용되고 있는 상업적으로 중요한 물질 중 하나이다. 판토텐산은 판토산(pantonic acid)에 베타-알라닌이 아미드 결합으로 연결된 구조이다.
판토텐산 또는 판토산은 화학적으로 합성하여 제조하거나, 적합한 배지에서 적합한 미생물을 발효시킴으로써 생물공학적으로 제조할 수 있다. 미생물을 이용하는 생물공학적 제조 방법의 이점은 목적하는 입체-이성체성 D-형태의 판토텐산 또는 판토산이 형성된다는 것이다.
이에, 생물공학적으로 판토텐산 및/또는 판토산을 제조하는데 유리한 효과를 갖는 미생물 및 이를 이용하여 판토텐산 및/또는 판토산을 고효율로 제조하는 기술의 개발이 요구된다.
미국 등록특허 제7718205호
본 발명의 일 예는 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제(3-methyl-2-oxobutanoate hydroxymethyltransferase) 활성을 가지는 폴리펩타이드를 제공한다. 상기 폴리펩타이드는 서열번호 37의 아미노산 서열, 또는 서열번호 37의 아미노산 서열에서 116번째 잔기에 상응하는 아미노산이 다른 아미노산으로 치환된 아미노산 서열을 포함하는 것일 수 있다.
본 발명의 다른 예는 상기 폴리펩타이드를 암호화하는 폴리뉴클레오타이드를 제공한다.
본 발명의 다른 예는 상기 폴리뉴클레오타이드를 포함하는 재조합 벡터를 제공한다.
본 발명의 다른 예는 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제의 활성이 강화된, 판토텐산 또는 판토산을 생산하는 미생물을 제공한다.
본 발명의 다른 예는 상기 판토텐산 또는 판토산을 생산하는 미생물을 포함하는 판토텐산 및/또는 판토산 생산용 조성물을 제공한다.
본 발명의 다른 예는 상기 판토텐산 또는 판토산을 생산하는 미생물을 배양하는 단계를 포함하는 판토텐산 및/또는 판토산 생산 방법을 제공한다.
본 명세서에서는 판토텐산 및/또는 판토산 생산능을 향상시킬 수 있는 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 또는 이의 변이체를 탐색하고, 이를 미생물에 도입함으로써, 판토텐산 및/또는 판토산 생산능이 우수한 재조합 균주를 제공하고자 한다.
본 명세서에서, 대장균 유래의 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제를 발현하는 미생물이 판토텐산 생산능이 우수함을 확인하고, 상기 미생물 유래의 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제의 특정 위치에 아미노산 치환 변이가 도입되는 경우, 판토텐산 생산능이 보다 증가하는 것을 확인하였다.
일 예는 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 활성을 가지는 폴리펩타이드를 제공한다. 상기 폴리펩타이드는 대장균 유래의 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 또는 이의 변이체일 수 있다. 예컨대, 상기 폴리펩타이드는 서열번호 37의 아미노산 서열, 또는 서열번호 37의 아미노산 서열에서 116번째 잔기에 상응하는 아미노산이 다른 아미노산으로 치환된 아미노산 서열을 포함하는 것일 수 있다.
다른 예는 상기 폴리펩타이드를 암호화하는 폴리뉴클레오타이드를 제공한다.
다른 예는 상기 폴리뉴클레오타이드를 포함하는 재조합 벡터를 제공한다. 상기 재조합 벡터는 상기 폴리펩타이드의 발현벡터로서 사용될 수 있다.
다른 예는 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제의 활성이 강화된 미생물을 제공한다. 상기 미생물은 판토텐산 또는 판토산을 생산하는 미생물일 수 있다. 일 구체예에서, 상기 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제는 대장균 유래의 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 또는 이의 변이체일 수 있다. 예컨대, 상기 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제는 서열번호 37의 아미노산 서열, 또는 서열번호 37의 아미노산 서열에서 116번째 잔기에 상응하는 아미노산이 다른 아미노산으로 치환된 아미노산 서열을 포함하는 것일 수 있다.
상기 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제의 활성이 강화된 미생물은, 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제가 강화되지 않은 동종 미생물과 비교하여, 높은 판토텐산 및/또는 판토산의 생산능을 가질 수 있다.
다른 예는 상기 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제의 활성이 강화된 미생물을 포함하는 판토텐산 및/또는 판토산 생산용 조성물을 제공한다.
다른 예는 상기 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제의 활성이 강화된 미생물을 배양하는 단계를 포함하는 판토텐산 및/또는 판토산 생산 방법을 제공한다.
이하, 보다 상세히 설명한다.
본 명세서에서, 판토텐산(pantothenic acid; e.g., D-판토텐산)은 화학식 1의 구조를 갖는 화합물로서, 판토산(pantoic acid)에 β-알라닌이 아미드 결합으로 연결된 비타민(비타민 B5)이고, 보조효소 A(coenzyme A, CoA)와 아실기 운반 단백질(acyl carrier protein, ACP)의 구성성분이며, 생물체의 각종 대사 작용에 관여한다.
Figure pat00001
(화학식 1: 판토텐산)
판토산(pantoic acid; e.g., D-판토산)은 화학식 2의 구조를 갖는 화합물로서, 다양한 생물학적 활성 화합물의 구성성분이다:
Figure pat00002
(화학식 2: 판토산)
본 명세서에서, 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제(3-methyl-2-oxobutanoate hydroxymethyltransferase)는 5,10-메틸렌테트라하이드로폴레이트, 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트, 및 물로부터 테트라하이드로폴레이트 및 2-디하이드로판토에이트를 생합성하는 과정을 촉매하는 효소이다.
본 명세서에서, 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제의 활성이 강화된 미생물은 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제를 암호화하는 유전자가 도입된 것일 수 있다.
일 구체예에서, 상기 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제는 대장균 (E. coli) 유래의 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 (야생형) 또는 하나 이상의 아미노산 잔기가 치환, 결실, 또는 삽입된 변이가 도입된 이의 변이체일 수 있다.
상기 대장균 유래의 야생형 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제는 서열번호 37의 아미노산 서열을 포함하는 것일 수 있다.
일 예에서, 상기 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제의 변이체는 서열번호 37의 아미노산 서열로 이루어진 대장균 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제의 116번째 아미노산 잔기에 상응하는 아미노산이 다른 아미노산, 즉, 알라닌(A, Ala), 아스파라진(N, Asn), 트레오닌(T, Thr), 글루탐산(E, Glu), 세린(S, Ser), 발린(V, Val), 이소류신(I, Ile), 류신(L, Leu), 아스파르트산(D, Asp), 시스테인(C, Cys), 글루타민(Q, Gln), 메티오닌(M, Met), 페닐알라닌(F, Phe), 프롤린(P, Pro), 트립토판(W, Trp), 타이로신(Y, Tyr), 아르기닌(R, Arg), 히스티딘(H, His), 라이신(K, Lys), 및 글라이신(G, Gly)로 이루어진 군에서 선택되고, 원래의 아미노산과 상이한 아미노산으로 치환된 것일 수 있다. 일 구체예에서, 상기 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 변이체는 서열번호 37의 아미노산 서열에서 116번째 아미노산 잔기에 상응하는 아미노산이 다른 아미노산, 즉, 알라닌(A, Ala), 아스파라진(N, Asn), 트레오닌(T, Thr), 글루탐산(E, Glu), 세린(S, Ser), 발린(V, Val), 이소류신(I, Ile), 류신(L, Leu), 아스파르트산(D, Asp), 시스테인(C, Cys), 글루타민(Q, Gln), 또는 메티오닌(M, Met)으로 치환된 것일 수 있다. 상기 변이체 중 서열번호 37의 아미노산 서열에서 116번째 아미노산 잔기에 상응하는 아미노산을 제외한 일부 아미노산 서열이 결실, 변형, 치환 또는 부가되더라도 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제의 활성을 나타내는 한 본 출원의 변이체에 포함될 수 있음은 자명하다.
또한, 일 예에서 상기 변이체는 서열번호 37로 기재되는 아미노산 서열과 적어도 80%, 85%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 또는 99% 이상의 상동성 또는 동일성을 가지는 아미노산 서열에서 서열번호 37의 아미노산 서열의 116번째 잔기에 상응하는 아미노산이 다른 아미노산으로 치환된 폴리펩타이드를 포함할 수 있다. 즉 서열번호 37의 아미노산 서열의 116번째 잔기에 상응하는 위치에서 다른 아미노산으로의 치환을 포함하고 서열번호 37의 아미노산 서열과 적어도 80%, 90%, 95%, 96%, 97%, 98%, 또는 99% 이상, 100% 미만의 서열 상동성 또는 동일성을 가지며 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 활성을 가지는 폴리펩타이드는 본 출원의 변이체에 포함될 수 있다.
일 구체예에서, 상기 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 변이체는 서열번호 62 내지 서열번호 73 중에서 선택된 아미노산 서열을 포함하는 것일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다. 상기 서열번호 62 내지 73 중에서 선택된 어느 하나의 서열로 이루어진 변이체에서 116번째 아미노산을 제외한 일부 아미노산 서열이 결실, 변형, 치환 또는 부가되더라도 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제의 활성을 나타내는 한 본 출원의 변이체에 포함될 수 있음은 자명하다. 또한, 일 예에서 상기 변이체는 서열번호 37의 아미노산 서열의 116번째 잔기에 상응하는 아미노산은 고정되고 서열번호 62 내지 73 중에서 선택된 어느 하나의 아미노산 서열과 적어도 80%, 85%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 또는 99% 이상의 상동성 또는 동일성을 가지는 폴리펩타이드를 포함할 수 있다. 즉 서열번호 37의 아미노산 서열의 116번째 잔기에 상응하는 위치에서 다른 아미노산으로의 치환을 포함하고 서열번호 62 내지 73 중에서 선택된 어느 하나의 아미노산 서열과 적어도 80%, 90%, 95%, 96%, 97%, 98%, 또는 99% 이상, 100% 미만의 서열 상동성 또는 동일성을 가지는 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 활성을 가지는 폴리펩타이드는 본 출원의 변이체에 포함될 수 있다.
본 명세서에서, 용어 "3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제의 활성이 강화된 미생물"은 앞서 설명한 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 활성을 가지는 폴리펩타이드를 발현하도록 조작(변이)됨으로써, 판토텐산 및/또는 판토산 생산능이 없던 미생물이 판토텐산 및/또는 판토산 생산능을 갖게 되거나, 본래의 판토텐산 및/또는 판토산 생산능보다 높은 판토텐산 및/또는 판토산 생산능을 갖게된 것일 수 있다. 본 명세서에서 "미생물"은 단세포 박테리아를 포괄하는 것으로, "세포"와 혼용될 수 있다. 본 명세서에서, 상기 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 활성을 가지는 폴리펩타이드 발현하도록 변이되기 전의 미생물을 상기 변이된 미생물과 구별하기 위하여, "모균주 (parent microorganism or parent strain) 또는 숙주 세포 (host cell)"로 표현될 수 있다.
일 예에서, 상기 미생물은 코리네박테리움 속 (the genus　Corynebacterium) 미생물, 에세리키아 속 (Escherichia) 미생물 등으로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상일 수 있다. 상기 코리네박테리움 속 미생물은 코리네박테리움 글루타미쿰 (Corynebacterium　glutamicum), 코리네박테리움 암모니아게네스 (Corynebacterium ammoniagenes), 브레비박테리움 락토퍼멘텀 (Brevibacterium lactofermentum), 브레비박테리움 플라범 (Brevibacterium flavum), 코리네박테리움 써모아미노게네스 (Corynebacterium　thermoaminogenes), 코리네박테리움 에피션스 (Corynebacterium　efficiens) 등을 포함할 수 있으나, 반드시 이에 한정되는 것은 아니다. 보다 더욱 구체적으로는, 상기 코리네박테리움 속 미생물은 코리네박테리움 글루타미쿰 (Corynebacterium　glutamicum)일 수 있다. 상기 에세리키아 속 균주는 대장균 (Escherichia coli)일 수 있다.
본 명세서에서, "3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제의 활성이 강화된 미생물"은 모균주가 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 활성을 가지는 폴리펩타이드를 발현하도록 하는 변이(조작)가 도입된, 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 활성을 가지는 폴리펩타이드를 발현하는 미생물일 수 있다. 일 예에서, 상기 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 활성을 가지는 폴리펩타이드를 발현하도록 하는 변이는 앞서 설명한 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 활성을 가지는 폴리펩타이드를 암호화하는 폴리뉴클레오타이드, 또는 이를 포함하는 재조합 벡터를 모균주에 도입하는 것에 의하여 수행되는 것일 수 있다. 이와 같이 모균주에 도입되는 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 활성을 가지는 폴리펩타이드를 암호화하는 폴리뉴클레오타이드는 모균주 내재의 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 암호화 유전자를 대체하거나 이에 더하여 추가로 포함되는 것일 수 있다.
일 구체예에서, 상기 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 활성을 가지는 폴리펩타이드를 발현하는 미생물은 기탁번호 KCCM12744P인 것일 수 있다.
본 명세서에서, 폴리뉴클레오타이드("유전자"와 혼용될 수 있음) 또는 폴리펩타이드("단백질"과 혼용될 수 있음)가 "특정 핵산 서열 또는 아미노산 서열을 포함한다, 특정 핵산 서열 또는 아미노산 서열로 이루어진다, 또는 특정 핵산 서열 또는 아미노산 서열로 표현된다" 함은 상기 폴리뉴클레오타이드 또는 폴리펩타이드가 상기 특정 핵산 서열 또는 아미노산 서열을 필수적으로 포함하는 것을 의미할 수 있으며, 상기 폴리뉴클레오타이드 또는 폴리펩타이드의 본래의 기능 및/또는 목적하는 기능을 유지하는 범위에서 상기 특정 핵산 서열 또는 아미노산 서열에 변이(결실, 치환, 변형, 및/또는 부가)가 가해진 "실질적으로 동등한 서열"을 포함하는 것(또는 상기 변이를 배제하지 않는 것)으로 해석될 수 있다.
일 예에서, 본 명세서에서 제공되는 핵산 서열 또는 아미노산 서열은 이들의 본래의 기능 또는 목적하는 기능을 유지하는 범위에서 통상적인 돌연변이 유발법, 예를 들면 방향성 진화법(direct evolution) 및/또는 부위특이적 돌연변이법(site-directed mutagenesis) 등에 의하여 변형된 것을 포함할 수 있다. 일 예에서, 폴리뉴클레오타이드 또는 폴리펩타이드가 "특정 핵산 서열 또는 아미노산 서열을 포함한다 또는 특정 핵산 서열 또는 아미노산 서열로 이루어진다" 함은 상기 폴리뉴클레오타이드 또는 폴리펩타이드가 (i) 상기 특정 핵산 서열 또는 아미노산 서열을 필수적으로 포함하거나, 또는 (ii) 상기 특정 핵산 서열 또는 아미노산 서열과 60% 이상, 70% 이상, 80% 이상, 85% 이상, 90% 이상, 91% 이상, 92% 이상, 93% 이상, 94% 이상, 95% 이상, 96% 이상, 97% 이상, 98% 이상, 99% 이상, 99.5% 이상, 또는 99.9% 이상의 상동성을 갖는 아미노산 서열로 이루어지거나 이를 필수적으로 포함하고 본래의 기능 및/또는 목적하는 기능을 유지하는 것을 의미할 수 있다. 본 명세서에서, 상기 목적하는 기능은 미생물의 판토텐산 및/또는 판토산 생산능을 증가시키거나 부여하는 기능을 의미할 수 있다.
본 명세서에 기재된 핵산 서열은 코돈의 축퇴성(degeneracy)으로 인하여 상기 단백질(라이신 배출 단백질)을 발현시키고자 하는 미생물에서 선호되는 코돈을 고려하여, 코딩영역으로부터 발현되는 단백질의 아미노산 서열 및/또는 기능을 변화시키지 않는 범위 내에서 코딩영역에 다양한 변형이 이루어질 수 있다.
본 명세서에서, 용어 "상동성(identity)"은 주어진 핵산 서열 또는 아미노산 서열과 일치하는 정도를 의미하며 백분율(%)로 표시될 수 있다. 핵산 서열에 대한 상동성의 경우, 예를 들면, 문헌에 의한 알고리즘 BLAST(참조: Karlin 및 Altschul, Pro. Natl. Acad. Sci. USA, 90, 5873, 1993)나 Pearson에 의한 FASTA(참조: Methods Enzymol., 183, 63, 1990)를 사용하여 결정할 수 있다. 이러한 알고리즘 BLAST에 기초하여, BLASTN이나 BLASTX라고 불리는 프로그램이 개발되어 있다(참조: http://www.ncbi.nlm.nih.gov).
일 예에서, 본 명세서에 제공되는 특정 핵산 서열을 포함하는 폴리뉴클레오타이드는 상기 특정 핵산 서열 또는 이와 실질적으로 동등한 핵산 서열뿐만 아니라, 상기 특정 핵산 서열에 상보적인 핵산 서열을 포함하는 폴리뉴클레오타이드 단편을 포함하는 것으로 해석될 수 있다. 구체적으로, 상기 상보성을 가지는 폴리뉴클레오타이드는 목적에 따라 당업자에 의해 적절히 조절 가능한 Tm 값, 예컨대, 55℃, 60℃, 63℃ 또는 65℃의 Tm 값에서 혼성화하고, 후술하는 조건에서 분석할 수 있다: 이러한 조건은 공지의 문헌에 구체적으로 기재되어 있다. 예를 들어, 60% 이상, 70% 이상, 80% 이상, 85% 이상, 90% 이상, 91% 이상, 92% 이상, 93% 이상, 94% 이상, 95% 이상, 96% 이상, 97% 이상, 98% 이상, 98% 이상, 99.5% 이상, 또는 99.9% 이상의 높은 상보성을 갖는 유전자끼리 혼성화하고, 그보다 낮은 상보성을 갖는 유전자끼리는 혼성화하지 않는 조건, 또는 통상의 써던 하이브리드화의 세척 조건인 60℃, 1x SSC(saline-sodium citrate buffer), 및 0.1%(w/v) SDS (Sodium Dodecyl Sulfate); 60℃, 0.1x SSC, 및 0.1% SDS; 또는 68℃, 0.1x SSC, 및 0.1% SDS에 상당하는 염 농도 및 온도에서, 1회, 구체적으로는 2회 내지 3회 세척하는 조건을 등을 열거할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다. 혼성화에는 두 개의 뉴클레오타이드가 상보적 서열을 가질 것을 요구되거나, 혼성화의 엄격도에 따라 염기 간의 미스매치(mismatch)가 허용될 수 있다. 상기 용어 "상보적"은 서로 혼성화가 가능한 뉴클레오타이드 염기 간의 관계를 기술하기 위하여 사용될 수 있다. 예를 들면, DNA의 경우, 아데노신은 티민에 상보적이며 시토신은 구아닌에 상보적이다. 폴리뉴클레오타이드를 혼성화하는 적절한 엄격도는 폴리뉴클레오타이드의 길이 및 상보성 정도에 의존하고, 이는 관련 기술분야에 잘 알려져 있다 (Sambrook et al., supra,9.50-9.51, 11.7-11.8 참조).
상기 폴리뉴클레오타이드 또는 벡터의 도입은 공지된 형질전환 방법을 당업자가 적절히 선택하여 수행될 수 있다. 본 명세서에서, 용어 "형질전환"은 표적 단백질(외래 단백질)을 암호화하는 폴리뉴클레오타이드를 포함하는 벡터를 숙주 세포 내에 도입하여 숙주세포 내에서 상기 폴리뉴클레오타이드가 암호화하는 단백질이 발현할 수 있도록 하는 것을 의미한다. 형질전환된 폴리뉴클레오타이드는 숙주 세포 내에서 발현될 수 있기만 한다면, 숙주 세포의 염색체 내에 삽입되어 위치하거나 염색체 외에 위치하거나 상관없이 이들 모두를 포함할 수 있다. 또한, 상기 폴리뉴클레오타이드는 표적 단백질을 코딩하는 DNA 및/또는 RNA를 포함한다. 상기 폴리뉴클레오타이드는 숙주 세포 내로 도입되어 발현될 수 있는 것이면, 그 도입되는 형태는 제한이 없다. 예를 들면, 상기 폴리뉴클레오타이드는 자체적으로 발현되는데 필요한 모든 요소를 포함하는 유전자 구조체인 발현 카세트 (expression cassette)의 형태로 숙주 세포에 도입될 수 있다. 상기 발현 카세트는 통상 상기 폴리뉴클레오타이드에 작동 가능하게 연결되어 있는 프로모터 (promoter), 전사 종결신호, 리보좀 결합부위 및/또는 번역 종결신호 등의 발현 조절 요소를 포함할 수 있다. 상기 발현 카세트는 자체 복제가 가능한 발현 벡터 형태일 수 있다. 또한, 상기 폴리뉴클레오타이드는 그 자체의 형태로 숙주세포에 도입되어 숙주세포에서 발현에 필요한 서열과 작동 가능하게 연결되어 있는 것일 수도 있다. 상기에서 용어 "작동 가능하게 연결"된 것이란 발현조절 요소가 목적 단백질(외래 단백질)을 암호화하는 폴리뉴클레오타이드의 전사 조절 (예, 전사 개시)를 수행할 수 있도록 발현조절 요소 (예, 프로모터)와 폴리뉴클레오타이드가 기능적으로 연결되어 있는 것을 의미할 수 있다. 작동 가능한 연결은 당업계의 공지된 유전자 재조합 기술을 이용하여 수행할 수 있으며, 예컨대, 통상적인 부위-특이적 DNA 절단 및 연결에 의하여 수행될 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
상기 폴리뉴클레오타이드를 숙주 세포에 형질전환 하는 방법은 핵산을 세포(미생물) 내로 도입하는 어떠한 방법으로도 수행 가능하며, 숙주 세포에 따라 당 분야에서 공지된 형질전환 기술을 적절히 선택하여 수행할 수 있다. 상기 공지된 형질전환 방법으로 전기천공법 (electroporation), 인산칼슘 (CaPO4) 침전법, 염화칼슘 (CaCl2) 침전법, 미세주입법 (microinjection), 폴리에틸렌글리콜 (PEG) 침전법(polyethylene glycol-mediated uptake), DEAE-덱스트란법, 양이온 리포좀법, 리포펙션(lipofection), 초산 리튬-DMSO법 등이 예시될 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
상기 폴리뉴클레오타이드의 숙주 세포 유전체 (염색체) 내 도입 (삽입)은 공지된 방법을 당업자가 적절히 선택하여 수행될 수 있으며, 예컨대, RNA-가이드 엔도뉴클레아제 시스템 (RNA-guided endonuclease system 또는 CRISPR system; 예컨대, (a) RNA-가이드 엔도뉴클레아제(예, Cas9 단백질 등), 이의 암호화 유전자, 또는 상기 유전자를 포함하는 벡터; 및 (b) 가이드 RNA (예, single guide RNA (sgRNA) 등), 이의 암호화 DNA, 또는 상기 DNA를 포함하는 벡터를 포함하는 혼합물(예컨대, RNA-가이드 엔도뉴클레아제 단백질과 가이드 RNA의 혼합물 등), 복합체 (예컨대, 리보핵산 융합단백질 (RNP), 재조합 벡터 (예컨대, RNA-가이드 엔도뉴클레아제 암호화 유전자 및 가이드 RNA 암호화 DNA를 포함하는 함께 포함하는 벡터 등) 등으로 이루어진 군에서 선택된 하나 이상)을 사용하여 수행될 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
본 명세서에서, 용어 "벡터"는 적합한 숙주 내에서 목적 단백질을 발현시킬 수 있도록 적합한 조절 서열에 작동 가능하게 연결된 상기 목적 단백질을 암호화하는 폴리뉴클레오타이드의 염기서열을 함유하는 DNA 제조물을 의미한다. 상기 조절 서열은 전사를 개시할 수 있는 프로모터, 전사를 조절하기 위한 임의의 오퍼레이터 서열, 적합한 mRNA 리보좀 결합부위를 암호화하는 서열, 및/또는 전사 및/또는 해독의 종결을 조절하는 서열을 포함할 수 있다. 벡터는 적당한 숙주 세포 내로 형질전환된 후, 숙주 세포의 게놈(유전체)과 무관하게 발현되거나, 숙주 세포의 게놈 내에 통합될 수 있다.
본 명세서에서 사용가능한 벡터는 숙주 세포 내에서 복제 가능한 것이면 특별히 한정되지 않으며, 통상 사용되는 모든 벡터들 중에서 선택될 수 있다. 통상 사용되는 벡터의 예로는 천연 상태이거나 재조합된 상태의 플라스미드, 코스미드, 바이러스, 박테리오파지 등을 들 수 있다. 예를 들어, 상기 벡터로서, 파지 벡터 또는 코스미드 벡터로서 pWE15, M13, MBL3, MBL4, IXII, ASHII, APII, t10, t11, Charon4A, 및 Charon21A 등을 사용할 수 있으며, 플라스미드 벡터로서 pBR계, pUC계, pBluescriptII계, pGEM계, pTZ계, pCL계 및 pET계 등을 사용할 수 있다. 구체적으로는　pDZ, pACYC177, pACYC184, pCL, pECCG117, pUC19, pBR322, pMW118, pCC1BAC 벡터 등을 예시할 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
본 명세서에서 사용 가능한 벡터는 공지된 발현 벡터 및/또는 폴리뉴클레오타이드의 숙주 세포 염색체 내 삽입용 벡터일 수 있다. 상기 폴리뉴클레오타이드의 숙주 세포 염색체 내 삽입은 당업계에 알려진 임의의 방법, 예를 들면, 상동재조합 또는 CRISPR 시스템에 의하여 이루어질 수 있으나, 이에 한정되지는 않는다. 상기 벡터는 상기 염색체 내 삽입 여부를 확인하기 위한 선별 마커(selection marker)를 추가로 포함할 수 있다. 상기 선별 마커는 벡터로 형질전환된 세포를 선별, 즉, 상기 폴리뉴클레오타이드의 삽입 여부를 확인하기 위한 것으로, 약물 내성, 영양 요구성, 세포 독성제에 대한 내성 또는 표면 단백질의 발현과 같은 선택가능 표현형을 부여하는 유전자들 중에서 선택되어 사용될 수 있다. 선택제(selective agent)가 처리된 환경에서는 선별 마커를 발현하는 세포만 생존하거나 다른 표현 형질을 나타내므로, 형질전환된 세포를 선별할 수 있다.
다른 예는 미생물의 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제의 활성을 강화시키는 단계를 포함하는, 상기 미생물의 판토텐산 및/또는 판토산 생산능을 증가시키는 방법, 또는 상기 미생물에 파?跆某? 생산능을 부여하는 방법을 제공한다.
상기 미생물의 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제의 활성을 강화시키는 단계는 상기 미생물에 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 활성을 가지는 폴리펩타이드를 발현하도록 하는 변이를 도입하는 단계를 포함할 수 있다.
상기 변이를 도입하는 단계는 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 활성을 가지는 폴리펩타이드의 암호화 폴리뉴클레오타이드 또는 상기 폴리뉴클레오타이드를 포함하는 재조합 벡터를 미생물에 도입(형질전환)시키는 단계를 포함하는 것일 수 있다.
다른 예는 상기한 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 활성이 강화된 미생물을 배지에서 배양하는 단계를 포함하는, 판토텐산 및/또는 판토산의 생산 방법을 제공한다. 상기 방법은, 상기 배양하는 단계 이후에, 상기 배양된 미생물, 배지, 또는 이들 모두로부터 판토텐산 및/또는 판토산을 회수하는 단계를 추가로 포함할 수 있다.
　상기 방법에 있어서, 상기 미생물을 배양하는 단계는, 특별히 이에 제한되지 않으나, 공지된 회분식 배양방법, 연속식 배양방법, 유가식 배양방법 등에 의해 수행될 수 있다. 이때, 배양조건은, 특별히 이에 제한되지 않으나, 염기성 화합물 (예: 수산화나트륨, 수산화칼륨 또는 암모니아) 또는 산성 화합물 (예: 인산 또는 황산)을 사용하여 적정 pH (예컨대, pH 5 내지 9, 구체적으로는 pH 6 내지 8, 가장 구체적으로는 pH 6.8)를 조절할 수 있고, 산소 또는 산소-함유 가스 혼합물을 배양물에 도입시켜 호기성 조건을 유지할 수 있다. 배양온도는 20 내지 45℃, 또는 25 내지 40℃를 유지할 수 있고, 약 10 내지 160 시간 동안 배양할 수 있으나, 이에 제한 되는 것은 아니다. 상기 배양에 의하여 생산된 판토텐산 및/또는 판토산은　배지　중으로 분비되거나 세포 내에 잔류할 수 있다.
상기 배양에 사용 가능한 배지는 탄소 공급원으로 당 및 탄수화물 (예: 글루코오스, 슈크로오스, 락토오스, 프럭토오스, 말토오스, 몰라세, 전분 및 셀룰로오스), 유지 및 지방 (예: 대두유, 해바라기씨유, 땅콩유 및 코코넛유), 지방산 (예: 팔미트산, 스테아르산 및 리놀레산), 알코올 (예: 글리세롤 및 에탄올), 유기산 (예: 아세트산) 등으로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 개별적으로 사용하거나 또는 2종 이상을 혼합하여 사용할 수 있으나, 이에 제한되지 않는다. 질소 공급원으로는 질소-함유 유기 화합물 (예: 펩톤, 효모 추출액, 육즙, 맥아 추출액, 옥수수 침지액, 대두 박분 및 우레아), 무기 화합물 (예: 황산암모늄, 염화암모늄, 인산암모늄, 탄산암모늄 및 질산암모늄) 등으로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 개별적으로 사용하거나 또는 2종 이상을 혼합하여 사용할 수 있으나, 이에 제한되지 않는다. 인 공급원으로 인산이수소칼륨, 인산수소이칼륨, 이에 상응하는 나트륨 함유 염 등으로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 개별적으로 사용하거나 또는 2종 이상을 혼합하여 사용할 수 있으나, 이에 제한되지 않는다. 또한,　상기 배지는 기타 금속염 (예: 황산마그네슘 또는 황산철), 아미노산, 및/또는 비타민 등과 같은 필수성장-촉진 물질을 포함할 수 있다.
상기 판토텐산 및/또는 판토산을 회수하는 단계는 배양방법에 따라 당해 분야에 공지된 적합한 방법을 이용하여 배지, 배양액, 또는 미생물로부터 목적하는 아미노산을 수집하는 것일 수 있다. 예를 들어, 상기 회수하는 단계는 원심분리, 여과, 음이온 교환 크로마토그래피, 결정화, HPLC 등에서 선택된 하나 이상의 방법으로 수행될 수 있다. 상기 판토텐산 및/또는 판토산을 회수하는 방법은, 그 이전, 동시, 또는 그 이후에, 정제단계를 추가적으로 포함할 수 있다.
본 명세서에서는 미생물의 판토텐산 및/또는 판토산의 생산능을 증가시키는 기술이 제공되며, 이를 위하여, 대장균 유래의 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 또는 이의 변이체를 제공하며, 상기 대장균 유래의 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 또는 변이체를 발현하도록 하는 변이를 미생물에 도입함으로써, 판토텐산 및/또는 판토산의 생산성을 향상시키거나 판토텐산 및/또는 판토산 생상능을 부여할 수 있는 기술이 제공된다.
이하에서는 실시예를 들어 본 발명을 더욱 구체적으로 설명하고자 하나, 이는 예시적인 것에 불과할 뿐이며, 본 발명의 범위를 제한하고자 함이 아니다. 아래 기재된 실시예들은 발명의 본질적인 요지를 벗어나지 않는 범위에서 변형될 수 있음은 당 업자들에게 있어 자명하다.
실시예 1) 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 유전자 탐색 및 선별
코리네박테리움 글루타미쿰 ATCC13032의 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 암호화 유전자(panB)를 query로 설정하여 NCBI BLAST 탐색 결과, 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 암호화 유전자 활성을 가질 것으로 추정되는 후보 유전자들과 이들을 보유한 미생물들을 선별하였다. 그 중 생물안전도(biosafety level)가 1 등급인 미생물 유래의 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 암호화 유전자들을 선별하고, 이를 표 1에 정리하였다:
3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 암호화 유전자를 보유하고 있을 것으로 추정되는 미생물 및 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 유전자 선별에 사용된 프라이머/플라스미드
미생물명 KCTC
Accession No.		 프라이머 플라스미드
1 Escherichia coli ATCC47076 서열번호 1, 2 pECCG117-panB(EC)
2 Bacillus subtilis KCTC3135(ATCC 6051) 서열번호 3, 4 pECCG117-panB(BS)
3 Pantoea agglomerans KCTC2564(ATCC27155) 서열번호 5, 6 pECCG117-panB(PA)
4 Serratia rubidaea KCTC2927(ATCC27593) 서열번호 7, 8 pECCG117-panB(SR)
5 Serratia proteamaculans KCTC2936(ATCC19323) 서열번호 9, 10 pECCG117-panB(SP)
6 Pseudomonas resinovorans KCTC12498(ATCC14235) 서열번호 11, 12 pECCG117-panB(PR)
7 Pedobacter terrae KCTC12762(DSM17933) 서열번호 13, 14 pECCG117-panB(PT)
8 Citrobacter bitternis KCTC42139(JCM30009) 서열번호 15, 16 pECCG117-panB(CB)
9 Enterobacter cloacae KCTC2519(ATCC23355) 서열번호 17, 18 pECCG117-panB(ECl)
10 Achromobacter piechaudii KCTC22890(ATCC43552) 서열번호 19, 20 pECCG117-panB(AP)
11 Staphylococcus epidermidis KCTC1917(ATCC12228) 서열번호 21, 22 pECCG117-panB(SE)
12 Shigella flexneri KCTC12073 서열번호 23, 24 pECCG117-panB(SF)
13 Corynebacterium glutamicum KCTC9097(ATCC13032) 서열번호 25, 26 pECCG117-panB(CG)
실시예 2) 외래 미생물 유래 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제가 도입된 코리네박테리움 속 미생물 제작
상기 실시예 1에서 확보된 미생물들의 게놈을 추출한 후, 이를 주형으로 표 1의 프라이머 서열을 이용하여 PCR을 수행하여, 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제를 암호화하는 DNA 단편을 증폭하였다. 상기 PCR은 PfuUltraTM 고-신뢰 DNA 폴리머라제(Stratagene)를 사용하여 수행하였으며, 변성 95℃, 30초; 어닐링 55℃, 30초; 및 중합반응 72℃, 1분을 30회 반복하는 조건으로 수행하였다. 그 결과 각각의 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제를 암호화하는 DNA 단편(panB)을 획득하였다.
코리네박테리움 글루타미쿰 유래의 PLM1 프로모터를 확보하기 위하여, 코리네박테리움 글루타미쿰(ATCC13032) 게놈 DNA를 주형으로 서열번호 27와 28의 프라이머를 이용하여 상기 기재된 바와 동일하게 PCR을 수행하여, 프로모터 DNA 단편을 획득하였다.
제한효소 BamHI으로 처리한 후, 65℃에서 20분간 열처리한 pECCG117 (대한민국 등록특허 제10-0057684호) 벡터와 얻어진 DNA단편들 (각 panB, PLM1 프로모터)을 몰농도 (M) 2:1:1 (pECCG117 벡터:panB:PLM1)이 되도록 하여 다카라(TaKaRa)의 Infusion Cloning Kit를 사용하여 제공된 매뉴얼에 따라 클로닝함으로써 플라스미드를 획득하였고, 상기 획득된 플라스미드의 이름과 도입된 유전자 정보를 상기 표 1에 표기하였다.
제작된 13종의 벡터들을 전기천공법에 의해 코리네박테리움 글루타미쿰 ATCC 13032에 형질전환하여, 외래 PanB(3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제)를 발현하는 균주들을 제작하였다
실시예 3) 외래 미생물 유래 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제가 발현되는 코리네박테리움 속 미생물의 판토텐산 생산능 조사
상기 실시예 2에서 얻어진 다양한 외래 미생물 유래의 panB 발현 균주들의 판토텐산 생산성을 확인하기 위하여, 하기와 같은 조성으로 이루어진 생산배지 25 ㎖을 함유하는 250 ㎖ 코너-바풀 플라스크에 모균주(비형질전환 균주) 및 상기 균주들을 각각 접종한 후, 32℃에서 48시간동안 200 rpm으로 진탕 배양하여 판토텐산을 제조하였다.
<생산배지>
포도당 10%, 베타-알라닌 0.5%, 효모추출물 0.4%, 황산암모늄 1.5%, 제1인산칼륨 0.1%, 황산마그네슘7수염 0.05%, 황산철7수염 10mg/ℓ, 황산망간1수염 6.7 mg/ℓ, 비오틴 50 ㎍/ℓ, 티아민·HCl 100 ㎍/ℓ, pH 7.2
상기 얻어진 배양액을 20,000rcf에서 10분동안 원심분리 후 상등액을 TDW(triple distilled water)로 1/10 희석한 후 HPLC 분석을 수행하여 판토텐산 및 L-발린의 농도를 측정하고, 그 결과를 하기의 표 2에 나타내었다.
판토텐산 농도 (g/L) L-valine 농도 (g/L)
ATCC13032 (야생형) 0.0 2.4
ATCC13032 pECCG117-panB(EC) 1.2 1.5
ATCC13032 pECCG117-panB(BS) 0.5 1.9
ATCC13032 pECCG117-panB(PA) 0.6 2.0
ATCC13032 pECCG117-panB(SR) 0.7 1.8
ATCC13032 pECCG117-panB(SP) 0.3 2.2
ATCC13032 pECCG117-panB(PR) 0.7 1.9
ATCC13032 pECCG117-panB(PT) 0.7 2.0
ATCC13032 pECCG117-panB(CB) 0.7 2.0
ATCC13032 pECCG117-panB(ECl) 0.6 2.1
ATCC13032 pECCG117-panB(AP) 0.6 1.9
ATCC13032 pECCG117-panB(SE) 0.5 2.0
ATCC13032 pECCG117-panB(SF) 0.7 1.9
ATCC13032 pECCG117-panB(CG) 0.6 2.0
표 2 에 나타난 바와 같이, 모균주인 코리네박테리움 글루타미쿰 ATCC 13032는 판토텐산을 생산하지 않는 반면, 시험된 모든 외래 미생물 유래의 panB 발현 코리네박테리움 글루타미쿰 균주들은 평균적으로 약 0.6 g/L의 판토텐산을 생산하였다. 특히, 외래 미생물 유래의 PanB의 발현 균주들 중에서 대장균 유래의 panB 발현 균주인 ATCC13032 pECCG117-panB(EC)가 가장 높은 판토텐산 생산성(1.2 g/L)을 보였다.
상기의 결과는 실시예 1에서 선별된 13종의 미생물 유래 효소(3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제)들이 모두 판토텐산 생산능을 보이며, 이 중에서도 대장균 유래의 효소가 특히 높은 판토텐산 생산능을 가짐을 보여준다.
실시예 4) 대장균 유래 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 유전자가 도입된 코리네박테리움 속 미생물 제작
상기 실시예 3에서 특히 우수한 판토텐산 생산능을 가지는 것으로 확인된 대장균 유래의 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 암호화 유전자(panB)를 코리네박테리움 글루타미쿰 ATCC13032에 도입하기 위한 플라스미드를 제작하였다.
먼저, 모균주에 존재하는 panB를 결손시키기 위한 벡터를 제작하였다. 코리네박테리움 글루타미쿰 ATCC13032의 게놈 DNA를 주형으로 하여 서열번호 29와 30 및 서열번호 31와 32의 프라이머를 이용하여 PCR을 수행하였다. PCR은 변성 95℃, 30초; 어닐링 55℃, 30초; 및 중합반응 72℃, 1분을 25회 반복하는 조건으로 수행하였다. 그 결과, panB 유전자 상단부위 1000bp와 panB 유전자 하단부위 1000bp의 유전자 단편을 각각 획득하였고, QIAGEN사의 PCR Purification kit를 사용하여 각 증폭산물을 정제하여, 벡터 제작을 위한 삽입 DNA 단편으로 사용하였다.
제한효소 smaI으로 처리한 후 65℃에서 20분간 열처리한 pDZ(대한민국 등록 특허 번호 제0924065호) 벡터와 DNA 단편(panB 유전자 상단부위 1000bp의 유전자 단편 및 panB 유전자 하단부위 1000bp의 유전자 단편)을 몰농도 (M) 2:1:1이 되도록 하여 다카라(TaKaRa)의 Infusion Cloning Kit를 사용하여 제공된 매뉴얼에 따라 클로닝함으로써 panB 유전자를 염색체상에 결손하기 위한 벡터 pDZ_ΔpanB를 제작하였다.
대장균 유래 panB 유전자를 준비하기 위하여, 실시예 2에서 제작된 플라스미드 pECCG117-panB(EC)를 주형으로 하여 프라이머 33와 34를 이용하여 PCR하였다. PCR은 변성 95℃, 30초; 어닐링 55℃, 30초; 및 중합반응 72℃, 1분을 25회 반복하여 수행하고, 그 결과 1077bp의 DNA단편을 획득하였다. 제한효소 smaI으로 처리한 후 65℃에서 20분간 열처리한 pDZ_ΔpanB 벡터와 상기 얻어진 DNA 단편을 몰농도 (M) 1:2가 되도록 하여 다카라(TaKaRa)의 Infusion Cloning Kit를 사용하여 제공된 매뉴얼에 따라 클로닝함으로써, 대장균 유래의 panB 유전자를 염색체상에 도입하기 위한 벡터 pDZ_ΔpanB::PLM1-panB(EC)를 제작하였다.
제작된 벡터 pDZ_ΔpanB와 pDZ_ΔpanB::panB(EC)를 전기천공법을 통해 각각 코리네박테리움 글루타미쿰 ATCC 13032 에 형질전환하고, 2차 교차 과정을 거쳐 염색체 상에서 panB가 결손된 균주(ΔpanB 균주)와 대장균 유래 panB가 도입된 균주(ΔpanB::panB(EC))를 각각 얻었다. 대장균 유래 panB의 적절한 치환 여부는 하기의 프라이머 조합을 사용하여 MASA(Mutant Allele Specific Amplification) PCR 기법(Takeda et al., Hum. Mutation, 2, 112-117 (1993))을 사용하여 확인하였다. 즉, 대장균 panB에 부합하는 프라이머 조합(서열번호 35와 28 및 서열번호 36와 1)에서는 증폭되는 균주를 선별함으로써 1차 결정하였으며, 선별된 균주의 panB 서열은 서열번호 35 및 서열번호 36의 프라이머 조합을 이용하여 분석함으로써 2차 확인하였다.
상기와 같이 얻어진 변이주들의 판토텐산 생산성을 확인하기 위하여, 생산배지 (실시예 3 참조) 25㎖을 함유하는 250㎖ 코너-바풀 플라스크에 코리네박테리움 글루타미쿰 ATCC 13032의 야생형 균주, ΔpanB 균주, 및 ΔpanB::panB(EC) 변이주를 접종한 후, 32℃에서 48시간동안 200rpm으로 진탕 배양하여 판토텐산을 제조하였다.
상기 얻어진 배양액을 20,000rcf에서 10분동안 원심분리 후 상등액을 TDW(triple distilled water)로 1/10 희석한 후 HPLC 분석을 수행하여 판토텐산 및 L-발린의 농도를 측정하고, 그 결과를 하기의 표 3에 나타내었다.
판토텐산 농도 (g/L) L-valine 농도(g/L)
ATCC13032 (야생형) 0.1 1.9
ATCC13032 ΔpanB 0.0 2.7
ATCC13032 ΔpanB ::panB(EC) 0.4 1.3
표 3에 나타난 바와 같이, 코리네박테리움 글루타미쿰 ATCC 13032의 야생형 및 panB 결손 (ΔpanB) 균주는 판토텐산을 전혀 생산하지 못하거나 거의 생산하지 못하는 반면, 외래의 panB를 발현하는 변이주 코리네박테리움 글루타미쿰(ΔpanB::panB(EC))은 0.4g/ℓ의 농도로 판토텐산을 생산하였다.
실시예 5) 인공변이법(NTG 기반 변이)을 통한 무작위 돌연변이주 제작 및 panB 생산 균주 선별
본 실시예에서는 판토텐산의 생산능이 보다 더 향상된 미생물 변이주를 얻기 위해 하기와 같은 방법을 사용하여 미생물의 변이를 유도하였다
구체적으로, 코리네박테리움 글루타미쿰 ATCC ΔpanB::panB(EC) 균주를 활성화 배지에서 16시간 동안 배양하여 활성화시키고, 121℃에서 15분간 멸균한 종배지에 접종하여 14시간 동안 배양한 후, 배양액 5 ㎖을 회수하였다. 회수한 배양액을 100 mM 시트르산 완충용액 (citric buffer)으로 세척한 후, NTG (N-Methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine)를 최종농도 200 mg/ℓ가 되도록 첨가하여 20분 동안 처리하고, 100 mM 인산 완충용액 (phosphate buffer)으로 세척하였다. NTG가 처리된 균주를 최소배지에 도말하여 사멸율을 측정한 결과, 사멸율은 85%로 나타났다. 생존한 세포들을 생산배지에 접종 및 배양하고, 최종적으로 우수한 판토텐산 생산능을 나타내는 변이주를 선별하여 코리네박테리움 글루타미쿰 CJVB5-01 (Corynebacterium glutamicum, CJVB5-01)로 명명하였다.
본 실시예에서 사용한 배지의 조성은 하기와 같다.
<활성화배지>
소고기 추출물 1%, 폴리펩톤 1%, 소듐클로라이드 0.5%, 효모추출물 1%, 한천 2%, pH 7.2
<생산배지>
포도당 10%, 베타-알라닌 0.5%, 효모추출물 0.4%, 황산암모늄 1.5%, 제1인산칼륨 0.1%, 황산마그네슘7수염 0.05%, 황산철7수염 10mg/ℓ, 황산망간1수염 6.7 mg/ℓ, 비오틴 50 ㎍/ℓ, 티아민·HCl 100 ㎍/ℓ, pH 7.2
<최소배지>
포도당 1.0%, 황산암모늄 0.4%, 황산마그네슘 0.04%, 인산제1칼륨 0.1%, 요소 0.1%, 티아민 0.001%, 비오틴 200 ㎍/L, 한천 2%, pH 7.2
상기 얻어진 변이주 코리네박테리움 글루타미쿰 CJVB5-01의 판토텐산 생산능을 확인하기 위하여, 생산배지 25㎖을 함유하는 250㎖ 코너-바풀 플라스크에 코리네박테리움 글루타미쿰 ΔpanB 균주, ΔpanB::panB(EC) 균주, 및 CJVB5-01 변이주를 각각 접종한 후, 32℃에서 48시간동안 200rpm으로 진탕 배양하여 판토텐산을 제조하였다.
상기 얻어진 배양액을 20,000rcf에서 10분동안 원심분리 후 상등액을 TDW(triple distilled water)로 1/10 희석한 후 HPLC 분석을 수행하여 판토텐산 및 L-발린의 농도를 측정하고, 그 결과를 하기의 표 4에 나타내었다.
NTG 기반 변이균주의 판토텐산 생산능
판토텐산 농도 (g/L) L-valine 농도(g/L)
ATCC13032 ΔpanB 0.0 2.4
ATCC13032 ΔpanB ::panB(EC) 0.3 1.4
CJVB5-01 1.2 1.0
표 4에 나타난 바와 같이, 코리네박테리움 글루타미쿰 ΔpanB 균주는 판토텐산을 생산하지 않는 반면, 외래 panB가 삽입된 코리네박테리움 글루타미쿰 ΔpanB::panB(EC)은 0.3g/ℓ의 농도로 판토텐산을 생산하였고, 코리네박테리움 글루타미쿰 CJVB5-01 변이주는 1.2g/ℓ의 농도로 판토텐산을 생산하여, 보다 우수한 판토텐산 생산능을 보이는 것을 확인하였다.
코리네박테리움 글루타미쿰 CJVB5-01 변이주의 게놈 시퀀싱 결과, 삽입된 대장균 panB 유전자가, 야생형 대장균 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 (서열번호 37)에 G116A 변이 (서열번호 37의 아미노산 서열 중 116번째 아미노산 잔기인 G(Gly)가 A(Ala)로 치환)가 도입된 변이체를 암호화하도록 변이되었음을 확인하였다. 이하, 'G116A'와 같이 아미노산 위치를 이용한 아미노산 변이 표시는 아미노산 변이 및/또는 이러한 아미노산 변이를 유도하는 유전자 변이를 의미하는 것으로 이해된다.
상기 G116A 변이가 도입된 대장균 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 변이체의 아미노산 서열을 서열번호 62에 나타내었다.
상기의 결과로 무작위 돌연변이법을 통해 얻어진 변이주가 피루브산으로부터 판토텐산이 합성되는 경로를 저해받지 않고, 판토텐산을 고효율 및 고수율로 생산 할 수 있음을 확인하였다.
실시예 6) 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 활성을 갖는 변이형 PanB 플라스미드 제작
상기 실시예 5을 통해 판토텐산 생산능에 영향을 미치는 것으로 확인된 대장균 PanB (3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제)의 변이 위치인 116번째 아미노산 잔기가 판토텐산 생산능 증가에 중요한 위치임을 확인하기 위하여, 이 위치의 아미노산 잔기를 다른 아미노산으로 치환한 변이형을 제작하여 그 효과를 확인하였다. 실시예 2에서 제작된 pECCG117-panB(EC)(표 1 참조)를 주형으로 하고 하기의 표 5에 기재된 프라이머를 사용하여, 대장균 PanB (서열번호 37)의 116번째 위치의 아미노산인 G(Gly)가 다른 아미노산이 치환된 무작위 돌연변이 (Saturated mutagenesis)가 도입된 (즉, 상기 무작위 돌연변이가 도입된 대장균 PanB를 암호화하도록 변이된 panB 유전자가 도입된) 19종의 변이체를 제작하였다. 실시예 1에서 제작된 pECCG117-panB(EC)를 주형으로 사용하였다. 각각의 Saturated mutagenesis가 도입된 변이주의 변이형에 따른 치환된 아미노산 및 각 변이형에 사용된 프라이머를 다음의 표 5에 정리하였다:
Template 아미노산 치환 사용된 프라이머
pECCG117-panB(EC) G116S 서열번호 27, 38 / 39, 28
G116C 서열번호 27, 40 / 41, 28
G116L 서열번호 27, 42 / 43, 28
G116I 서열번호 27, 44 / 45, 28
G116T 서열번호 27, 46 / 47, 28
G116V 서열번호 27, 48 / 49, 28
G116M 서열번호 27, 50 / 51, 28
G116D 서열번호 27, 52 / 53, 28
G116E 서열번호 27, 54 / 55, 28
G116N 서열번호 27, 56 / 57, 28
G116Q 서열번호 27, 58 / 59, 28
G116A 서열번호 27, 60 / 61, 28
구체적으로, 상기 표 5에서 제시한 프라이머를 이용하여 실시예 2에서 제작된 pECCG117-panB(EC)(표 1 참조)를 주형으로 PCR을 수행하였다. 중합효소는 SolgTM Pfu-X DNA 폴리머라제 (SolGent co.,Ltd.)를 사용하였으며, PCR은 95 ℃에서 10분간 변성 후, 95℃ 30초 변성, 55℃ 30초 어닐링, 72℃ 1분 중합을 25회 반복한 후, 72℃에서 5분간 중합반응을 수행하여 진행하였다. 그 결과 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 유전자의 변이를 중심으로 5' 상류 부위의 610bp DNA 단편과 3' 하류 부위의 470bp의 DNA 단편을 수득하였다.
제한효소 BamHI으로 처리한 후 65℃에서 20분간 열처리한 pECCG117 (대한민국 등록특허 제10-0057684호) 벡터와 상기 수득된 각각의 DNA 단편들(5' 상류 부위의 610bp DNA 단편과 3' 하류 부위의 470bp의 DNA 단편)을 몰농도 (M) 2:1:1이 되도록 하여 다카라(TaKaRa)의 Infusion Cloning Kit를 사용하여 제공된 매뉴얼에 따라 클로닝함으로써, 변이 panB 도입을 위한 19종의 플라스미드를 획득하였다. 상기 얻어진 19종의 변이 플라스미드의 정보를 하기의 표 6에 정리하였다:
변이 위치 아미노산 치환 아미노산 치환을 유도하도록 제작된 변이 플라스미드
panB (서열번호 37)의 116번째 아미노산 잔기 G116S pECCG117-panB(G116S)
G116C pECCG117-panB(G116C)
G116L pECCG117-panB(G116L)
G116I pECCG117-panB(G116I)
G116T pECCG117-panB(G116T)
G116V pECCG117-panB(G116V)
G116M pECCG117-panB(G116M)
G116D pECCG117-panB(G116D)
G116E pECCG117-panB(G116E)
G116N pECCG117-panB(G116N)
G116Q pECCG117-panB(G116Q)
G116A pECCG117-panB(G116A)
실시예 7) 3- 메틸 -2- 옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제 활성을 갖는 변이형 panB의 판토텐산 생산능 평가
실시예 6에서 제작된 변이 플라스미드와 pECCG117-panB(WT-EC)(표 1)을 각각 실시예 4에서 제작된 ATCC13032 ΔpanB 균주에 전기펄스법으로 도입한 후 카나마이신 25mg/L를 함유하는 선별배지에서 도말하여 각각의 무작위 돌연변이(Saturated mutagenesis)가 도입된 총 19종의 형질전환 변이주를 획득하였다. 그 후, 실시예 3과 동일한 방법으로 플라스크 평가를 진행하여, 얻어진 판토텐산 생산능을 측정하였다. 상기 얻어진 결과를 표 7에 나타내었다:
균주 판토텐산 (g/L)
배치1 배치2 배치3 평균
ATCC 13032 ΔpanB (대조군) 0.0 0.0 0.0 0.0
ATCC 13032 ΔpanB pECCG117-panB(G116S) 1.5 1.9 1.6 1.7
ATCC 13032 ΔpanB pECCG117-panB(G116C) 1.2 1.3 1.2 1.2
ATCC 13032 ΔpanB pECCG117-panB(G116L) 1.6 1.5 1.4 1.5
ATCC 13032 ΔpanB pECCG117-panB(G116I) 1.5 1.7 1.6 1.6
ATCC 13032 ΔpanB pECCG117-panB(G116T) 2.4 2.5 2.3 2.4
ATCC 13032 ΔpanB pECCG117-panB(G116V) 1.6 1.7 1.4 1.6
ATCC 13032 ΔpanB pECCG117-panB(G116M) 0.9 0.9 1.1 1.0
ATCC 13032 ΔpanB pECCG117-panB(G116D) 1.3 1.1 1.2 1.2
ATCC 13032 ΔpanB pECCG117-panB(G116E) 1.9 1.2 2.1 1.7
ATCC 13032 ΔpanB pECCG117-panB(G116N) 2.5 2.5 2.6 2.5
ATCC 13032 ΔpanB pECCG117-panB(G116Q) 1.0 1.1 1.0 1.0
ATCC 13032 ΔpanB pECCG117-panB(G116A) 2.6 2.9 2.9 2.8
ATCC 13032 ΔpanB pECCG117-panB(WT) 0.9 0.8 1.0 0.9
상기의 표 7에서 볼 수 있듯이, ATCC13032 ΔpanB 균주는 판토텐산을 생산하지 않는 반면, 대장균 PanB (야생형) 또는 이의 변이형이 도입된 변이주는 모두 판토텐산 생산능을 보였다. 또한, G116S, G116C, G116L, G116I, G116T, G116V, G116D, G116E, G116N, G116A, G116M, 또는 G116Q 변이가 도입된 변이주는 대장균 PanB (야생형)을 포함하는 변이주인 ATCC 13032 ΔpanB pECCG117-panB(WT)와 비교하여 보다 높은 수준으로 판토텐산을 생산하였다. 이와 같은 결과로, 대장균 PanB의 야생형 및 변이형 모두 판토텐산 생산 증가 효과를 가지고, 특히 PanB(서열번호 37)의 116번째 아미노산 잔기가가 판토텐산 생산에 중요한 위치이며, 이 위치의 아미노산을 원래와 다른 다양한 아미노산으로 치환할 경우 판토텐산의 생산능이 보다 증가됨을 확인할 수 있었다.
본 실시예에서 판토텐산의 생산능이 가장 우수한 것으로 확인된 ATCC 13032 ΔpanB pECCG117-panB(G116A) 균주 (Corynebacterium glutamicum CV03-5001로 명명)를 2020년 6월 8일자로 대한민국 서울특별시 서대문구 홍제동에 소재하는 한국미생물보존센터에 기탁하여 KCCM12744P의 기탁번호를 부여 받았다.
이상의 설명으로부터, 본 출원이 속하는 기술분야의 당업자는 본 출원이 그 기술적 사상이나 필수적 특징을 변경하지 않고서 다른 구체적인 형태로 실시될 수 있다는 것을 이해할 수 있을 것이다. 이와 관련하여, 이상에서 기술한 실시예들은 모든 면에서 예시적인 것이며 한정적인 것이 아닌 것으로 이해해야만 한다. 본 출원의 범위는 상기 상세한 설명보다는 후술하는 특허 청구범위의 의미 및 범위 그리고 그 등가 개념으로부터 도출되는 모든 변경 또는 변형된 형태가 본 출원의 범위에 포함되는 것으로 해석되어야 한다.
한국미생물보존센터 KCCM12744P 20200608
<110> CJ CheilJedang Corporation <120> MICROORGANISM HAVING INHANCED ACTIVITY OF 3-METHYL-2-OXOBUTANOATE HYDROXYMETHYLTRANSFERASE AND USES THEREOF <130> DPP20200603KR <160> 73 <170> koPatentIn 3.0 <210> 1 <211> 37 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 1 tagatcgaaa ggtgcacaaa gatgaaaccg accacca 37 <210> 2 <211> 41 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 2 ccgctctaga actagtggat cttaatggaa actgtgttct t 41 <210> 3 <211> 36 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 3 tagatcgaaa ggtgcacaaa gatgaaaccg accacc 36 <210> 4 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 4 ccgctctaga actagtggat cttaatggaa actgtgttct 40 <210> 5 <211> 38 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 5 tagatcgaaa ggtgcacaaa gatgaaacca accaccat 38 <210> 6 <211> 41 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 6 ccgctctaga actagtggat cttaatggaa actgtgttct t 41 <210> 7 <211> 42 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 7 tagatcgaaa ggtgcacaaa gatgtcatta aagcaaataa ct 42 <210> 8 <211> 41 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 8 ccgctctaga actagtggat cttattggaa actgtgttct t 41 <210> 9 <211> 36 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 9 tagatcgaaa ggtgcacaaa gatgaaaccc accacc 36 <210> 10 <211> 39 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 10 ccgctctaga actagtggat cttagttaaa tgagtgctc 39 <210> 11 <211> 37 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 11 tagatcgaaa ggtgcacaaa gatgaaaccg accacca 37 <210> 12 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 12 ccgctctaga actagtggat cttaatggaa actgtgttct 40 <210> 13 <211> 36 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 13 tagatcgaaa ggtgcacaaa gatgaaaccc accacg 36 <210> 14 <211> 38 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 14 ccgctctaga actagtggat cttactggaa actgtgct 38 <210> 15 <211> 44 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 15 tagatcgaaa ggtgcacaaa gatgaaaact ttaaatcatt taaa 44 <210> 16 <211> 39 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 16 ccgctctaga actagtggat cttagtcatg ttgctctac 39 <210> 17 <211> 37 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 17 tagatcgaaa ggtgcacaaa gatgccagat gtaaccg 37 <210> 18 <211> 36 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 18 ccgctctaga actagtggat ctcatgcgga gaaccc 36 <210> 19 <211> 36 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 19 tagatcgaaa ggtgcacaaa gatgcctgat gtgacc 36 <210> 20 <211> 36 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 20 ccgctctaga actagtggat ctcatgcgga gaatcc 36 <210> 21 <211> 39 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 21 tagatcgaaa ggtgcacaaa gatgtcggta cataaagaa 39 <210> 22 <211> 42 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 22 ccgctctaga actagtggat cttaatattg ttctttttcg tt 42 <210> 23 <211> 36 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 23 tagatcgaaa ggtgcacaaa gatgaaaccc accacc 36 <210> 24 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 24 ccgctctaga actagtggat cttagttgaa agagtgctct 40 <210> 25 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 25 tagatcgaaa ggtgcacaaa gatgtctaca gcaaaaaaag 40 <210> 26 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 26 ccgctctaga actagtggat cttaatactg ttcatcgtca 40 <210> 27 <211> 41 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 27 cttgatatcg aattcctgca ttcagggtag ttgactaaag a 41 <210> 28 <211> 17 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 28 ctttgtgcac ctttcga 17 <210> 29 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 29 tgaattcgag ctcggtaccc gaaatagcgc ttgatgaatc 40 <210> 30 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 30 ggttgctacc tgcacccggg gggcatgagt atagatgtga 40 <210> 31 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 31 ctatactcat gccccccggg tgcaggtagc aaccacaaag 40 <210> 32 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 32 gtcgactcta gaggatcccc tatgtggcgt tgggtgcagc 40 <210> 33 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 33 catctatact catgcccccc ttcagggtag ttgactaaag 40 <210> 34 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 34 tgtggttgct acctgcaccc ttaatggaaa ctgtgttctt 40 <210> 35 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 35 cccacccggt gtcattcgac 20 <210> 36 <211> 19 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 36 gcgcatccag ctcatcggt 19 <210> 37 <211> 264 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_PanB WT <400> 37 Met Lys Pro Thr Thr Ile Ser Leu Leu Gln Lys Tyr Lys Gln Glu Lys 1 5 10 15 Lys Arg Phe Ala Thr Ile Thr Ala Tyr Asp Tyr Ser Phe Ala Lys Leu 20 25 30 Phe Ala Asp Glu Gly Leu Asn Val Met Leu Val Gly Asp Ser Leu Gly 35 40 45 Met Thr Val Gln Gly His Asp Ser Thr Leu Pro Val Thr Val Ala Asp 50 55 60 Ile Ala Tyr His Thr Ala Ala Val Arg Arg Gly Ala Pro Asn Cys Leu 65 70 75 80 Leu Leu Ala Asp Leu Pro Phe Met Ala Tyr Ala Thr Pro Glu Gln Ala 85 90 95 Phe Glu Asn Ala Ala Thr Val Met Arg Ala Gly Ala Asn Met Val Lys 100 105 110 Ile Glu Gly Gly Glu Trp Leu Val Glu Thr Val Gln Met Leu Thr Glu 115 120 125 Arg Ala Val Pro Val Cys Gly His Leu Gly Leu Thr Pro Gln Ser Val 130 135 140 Asn Ile Phe Gly Gly Tyr Lys Val Gln Gly Arg Gly Asp Glu Ala Gly 145 150 155 160 Asp Gln Leu Leu Ser Asp Ala Leu Ala Leu Glu Ala Ala Gly Ala Gln 165 170 175 Leu Leu Val Leu Glu Cys Val Pro Val Glu Leu Ala Lys Arg Ile Thr 180 185 190 Glu Ala Leu Ala Ile Pro Val Ile Gly Ile Gly Ala Gly Asn Val Thr 195 200 205 Asp Gly Gln Ile Leu Val Met His Asp Ala Phe Gly Ile Thr Gly Gly 210 215 220 His Ile Pro Lys Phe Ala Lys Asn Phe Leu Ala Glu Thr Gly Asp Ile 225 230 235 240 Arg Ala Ala Val Arg Gln Tyr Met Ala Glu Val Glu Ser Gly Val Tyr 245 250 255 Pro Gly Glu Glu His Ser Phe His 260 <210> 38 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 38 gtttctacca gccactcgga gccttcaatt ttgaccatgt 40 <210> 39 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 39 acatggtcaa aattgaaggc tccgagtggc tggtagaaac 40 <210> 40 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 40 gtttctacca gccactcgca gccttcaatt ttgaccatgt 40 <210> 41 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 41 acatggtcaa aattgaaggc tgcgagtggc tggtagaaac 40 <210> 42 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 42 gtttctacca gccactccag gccttcaatt ttgaccatgt 40 <210> 43 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 43 acatggtcaa aattgaaggc ctggagtggc tggtagaaac 40 <210> 44 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 44 gtttctacca gccactcgat gccttcaatt ttgaccatgt 40 <210> 45 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 45 acatggtcaa aattgaaggc atcgagtggc tggtagaaac 40 <210> 46 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 46 gtttctacca gccactcggt gccttcaatt ttgaccatgt 40 <210> 47 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 47 acatggtcaa aattgaaggc accgagtggc tggtagaaac 40 <210> 48 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 48 gtttctacca gccactccac gccttcaatt ttgaccatgt 40 <210> 49 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 49 acatggtcaa aattgaaggc gtggagtggc tggtagaaac 40 <210> 50 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 50 gtttctacca gccactccat gccttcaatt ttgaccatgt 40 <210> 51 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 51 acatggtcaa aattgaaggc atggagtggc tggtagaaac 40 <210> 52 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 52 gtttctacca gccactcatc gccttcaatt ttgaccatgt 40 <210> 53 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 53 acatggtcaa aattgaaggc gatgagtggc tggtagaaac 40 <210> 54 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 54 gtttctacca gccactcttc gccttcaatt ttgaccatgt 40 <210> 55 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 55 acatggtcaa aattgaaggc gaagagtggc tggtagaaac 40 <210> 56 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 56 gtttctacca gccactcgtt gccttcaatt ttgaccatgt 40 <210> 57 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 57 acatggtcaa aattgaaggc aacgagtggc tggtagaaac 40 <210> 58 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 58 gtttctacca gccactcctg gccttcaatt ttgaccatgt 40 <210> 59 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 59 acatggtcaa aattgaaggc caggagtggc tggtagaaac 40 <210> 60 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 60 gtttctacca gccactctgc gccttcaatt ttgaccatgt 40 <210> 61 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_primer <400> 61 acatggtcaa aattgaaggc gcagagtggc tggtagaaac 40 <210> 62 <211> 264 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_PanB with G116A mutation <400> 62 Met Lys Pro Thr Thr Ile Ser Leu Leu Gln Lys Tyr Lys Gln Glu Lys 1 5 10 15 Lys Arg Phe Ala Thr Ile Thr Ala Tyr Asp Tyr Ser Phe Ala Lys Leu 20 25 30 Phe Ala Asp Glu Gly Leu Asn Val Met Leu Val Gly Asp Ser Leu Gly 35 40 45 Met Thr Val Gln Gly His Asp Ser Thr Leu Pro Val Thr Val Ala Asp 50 55 60 Ile Ala Tyr His Thr Ala Ala Val Arg Arg Gly Ala Pro Asn Cys Leu 65 70 75 80 Leu Leu Ala Asp Leu Pro Phe Met Ala Tyr Ala Thr Pro Glu Gln Ala 85 90 95 Phe Glu Asn Ala Ala Thr Val Met Arg Ala Gly Ala Asn Met Val Lys 100 105 110 Ile Glu Gly Ala Glu Trp Leu Val Glu Thr Val Gln Met Leu Thr Glu 115 120 125 Arg Ala Val Pro Val Cys Gly His Leu Gly Leu Thr Pro Gln Ser Val 130 135 140 Asn Ile Phe Gly Gly Tyr Lys Val Gln Gly Arg Gly Asp Glu Ala Gly 145 150 155 160 Asp Gln Leu Leu Ser Asp Ala Leu Ala Leu Glu Ala Ala Gly Ala Gln 165 170 175 Leu Leu Val Leu Glu Cys Val Pro Val Glu Leu Ala Lys Arg Ile Thr 180 185 190 Glu Ala Leu Ala Ile Pro Val Ile Gly Ile Gly Ala Gly Asn Val Thr 195 200 205 Asp Gly Gln Ile Leu Val Met His Asp Ala Phe Gly Ile Thr Gly Gly 210 215 220 His Ile Pro Lys Phe Ala Lys Asn Phe Leu Ala Glu Thr Gly Asp Ile 225 230 235 240 Arg Ala Ala Val Arg Gln Tyr Met Ala Glu Val Glu Ser Gly Val Tyr 245 250 255 Pro Gly Glu Glu His Ser Phe His 260 <210> 63 <211> 264 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_PanB with G116N mutation <400> 63 Met Lys Pro Thr Thr Ile Ser Leu Leu Gln Lys Tyr Lys Gln Glu Lys 1 5 10 15 Lys Arg Phe Ala Thr Ile Thr Ala Tyr Asp Tyr Ser Phe Ala Lys Leu 20 25 30 Phe Ala Asp Glu Gly Leu Asn Val Met Leu Val Gly Asp Ser Leu Gly 35 40 45 Met Thr Val Gln Gly His Asp Ser Thr Leu Pro Val Thr Val Ala Asp 50 55 60 Ile Ala Tyr His Thr Ala Ala Val Arg Arg Gly Ala Pro Asn Cys Leu 65 70 75 80 Leu Leu Ala Asp Leu Pro Phe Met Ala Tyr Ala Thr Pro Glu Gln Ala 85 90 95 Phe Glu Asn Ala Ala Thr Val Met Arg Ala Gly Ala Asn Met Val Lys 100 105 110 Ile Glu Gly Asn Glu Trp Leu Val Glu Thr Val Gln Met Leu Thr Glu 115 120 125 Arg Ala Val Pro Val Cys Gly His Leu Gly Leu Thr Pro Gln Ser Val 130 135 140 Asn Ile Phe Gly Gly Tyr Lys Val Gln Gly Arg Gly Asp Glu Ala Gly 145 150 155 160 Asp Gln Leu Leu Ser Asp Ala Leu Ala Leu Glu Ala Ala Gly Ala Gln 165 170 175 Leu Leu Val Leu Glu Cys Val Pro Val Glu Leu Ala Lys Arg Ile Thr 180 185 190 Glu Ala Leu Ala Ile Pro Val Ile Gly Ile Gly Ala Gly Asn Val Thr 195 200 205 Asp Gly Gln Ile Leu Val Met His Asp Ala Phe Gly Ile Thr Gly Gly 210 215 220 His Ile Pro Lys Phe Ala Lys Asn Phe Leu Ala Glu Thr Gly Asp Ile 225 230 235 240 Arg Ala Ala Val Arg Gln Tyr Met Ala Glu Val Glu Ser Gly Val Tyr 245 250 255 Pro Gly Glu Glu His Ser Phe His 260 <210> 64 <211> 264 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_PanB with G116T mutation <400> 64 Met Lys Pro Thr Thr Ile Ser Leu Leu Gln Lys Tyr Lys Gln Glu Lys 1 5 10 15 Lys Arg Phe Ala Thr Ile Thr Ala Tyr Asp Tyr Ser Phe Ala Lys Leu 20 25 30 Phe Ala Asp Glu Gly Leu Asn Val Met Leu Val Gly Asp Ser Leu Gly 35 40 45 Met Thr Val Gln Gly His Asp Ser Thr Leu Pro Val Thr Val Ala Asp 50 55 60 Ile Ala Tyr His Thr Ala Ala Val Arg Arg Gly Ala Pro Asn Cys Leu 65 70 75 80 Leu Leu Ala Asp Leu Pro Phe Met Ala Tyr Ala Thr Pro Glu Gln Ala 85 90 95 Phe Glu Asn Ala Ala Thr Val Met Arg Ala Gly Ala Asn Met Val Lys 100 105 110 Ile Glu Gly Thr Glu Trp Leu Val Glu Thr Val Gln Met Leu Thr Glu 115 120 125 Arg Ala Val Pro Val Cys Gly His Leu Gly Leu Thr Pro Gln Ser Val 130 135 140 Asn Ile Phe Gly Gly Tyr Lys Val Gln Gly Arg Gly Asp Glu Ala Gly 145 150 155 160 Asp Gln Leu Leu Ser Asp Ala Leu Ala Leu Glu Ala Ala Gly Ala Gln 165 170 175 Leu Leu Val Leu Glu Cys Val Pro Val Glu Leu Ala Lys Arg Ile Thr 180 185 190 Glu Ala Leu Ala Ile Pro Val Ile Gly Ile Gly Ala Gly Asn Val Thr 195 200 205 Asp Gly Gln Ile Leu Val Met His Asp Ala Phe Gly Ile Thr Gly Gly 210 215 220 His Ile Pro Lys Phe Ala Lys Asn Phe Leu Ala Glu Thr Gly Asp Ile 225 230 235 240 Arg Ala Ala Val Arg Gln Tyr Met Ala Glu Val Glu Ser Gly Val Tyr 245 250 255 Pro Gly Glu Glu His Ser Phe His 260 <210> 65 <211> 264 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_PanB with G116E mutation <400> 65 Met Lys Pro Thr Thr Ile Ser Leu Leu Gln Lys Tyr Lys Gln Glu Lys 1 5 10 15 Lys Arg Phe Ala Thr Ile Thr Ala Tyr Asp Tyr Ser Phe Ala Lys Leu 20 25 30 Phe Ala Asp Glu Gly Leu Asn Val Met Leu Val Gly Asp Ser Leu Gly 35 40 45 Met Thr Val Gln Gly His Asp Ser Thr Leu Pro Val Thr Val Ala Asp 50 55 60 Ile Ala Tyr His Thr Ala Ala Val Arg Arg Gly Ala Pro Asn Cys Leu 65 70 75 80 Leu Leu Ala Asp Leu Pro Phe Met Ala Tyr Ala Thr Pro Glu Gln Ala 85 90 95 Phe Glu Asn Ala Ala Thr Val Met Arg Ala Gly Ala Asn Met Val Lys 100 105 110 Ile Glu Gly Glu Glu Trp Leu Val Glu Thr Val Gln Met Leu Thr Glu 115 120 125 Arg Ala Val Pro Val Cys Gly His Leu Gly Leu Thr Pro Gln Ser Val 130 135 140 Asn Ile Phe Gly Gly Tyr Lys Val Gln Gly Arg Gly Asp Glu Ala Gly 145 150 155 160 Asp Gln Leu Leu Ser Asp Ala Leu Ala Leu Glu Ala Ala Gly Ala Gln 165 170 175 Leu Leu Val Leu Glu Cys Val Pro Val Glu Leu Ala Lys Arg Ile Thr 180 185 190 Glu Ala Leu Ala Ile Pro Val Ile Gly Ile Gly Ala Gly Asn Val Thr 195 200 205 Asp Gly Gln Ile Leu Val Met His Asp Ala Phe Gly Ile Thr Gly Gly 210 215 220 His Ile Pro Lys Phe Ala Lys Asn Phe Leu Ala Glu Thr Gly Asp Ile 225 230 235 240 Arg Ala Ala Val Arg Gln Tyr Met Ala Glu Val Glu Ser Gly Val Tyr 245 250 255 Pro Gly Glu Glu His Ser Phe His 260 <210> 66 <211> 264 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_PanB with G116S mutation <400> 66 Met Lys Pro Thr Thr Ile Ser Leu Leu Gln Lys Tyr Lys Gln Glu Lys 1 5 10 15 Lys Arg Phe Ala Thr Ile Thr Ala Tyr Asp Tyr Ser Phe Ala Lys Leu 20 25 30 Phe Ala Asp Glu Gly Leu Asn Val Met Leu Val Gly Asp Ser Leu Gly 35 40 45 Met Thr Val Gln Gly His Asp Ser Thr Leu Pro Val Thr Val Ala Asp 50 55 60 Ile Ala Tyr His Thr Ala Ala Val Arg Arg Gly Ala Pro Asn Cys Leu 65 70 75 80 Leu Leu Ala Asp Leu Pro Phe Met Ala Tyr Ala Thr Pro Glu Gln Ala 85 90 95 Phe Glu Asn Ala Ala Thr Val Met Arg Ala Gly Ala Asn Met Val Lys 100 105 110 Ile Glu Gly Ser Glu Trp Leu Val Glu Thr Val Gln Met Leu Thr Glu 115 120 125 Arg Ala Val Pro Val Cys Gly His Leu Gly Leu Thr Pro Gln Ser Val 130 135 140 Asn Ile Phe Gly Gly Tyr Lys Val Gln Gly Arg Gly Asp Glu Ala Gly 145 150 155 160 Asp Gln Leu Leu Ser Asp Ala Leu Ala Leu Glu Ala Ala Gly Ala Gln 165 170 175 Leu Leu Val Leu Glu Cys Val Pro Val Glu Leu Ala Lys Arg Ile Thr 180 185 190 Glu Ala Leu Ala Ile Pro Val Ile Gly Ile Gly Ala Gly Asn Val Thr 195 200 205 Asp Gly Gln Ile Leu Val Met His Asp Ala Phe Gly Ile Thr Gly Gly 210 215 220 His Ile Pro Lys Phe Ala Lys Asn Phe Leu Ala Glu Thr Gly Asp Ile 225 230 235 240 Arg Ala Ala Val Arg Gln Tyr Met Ala Glu Val Glu Ser Gly Val Tyr 245 250 255 Pro Gly Glu Glu His Ser Phe His 260 <210> 67 <211> 264 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_PanB with G116V mutation <400> 67 Met Lys Pro Thr Thr Ile Ser Leu Leu Gln Lys Tyr Lys Gln Glu Lys 1 5 10 15 Lys Arg Phe Ala Thr Ile Thr Ala Tyr Asp Tyr Ser Phe Ala Lys Leu 20 25 30 Phe Ala Asp Glu Gly Leu Asn Val Met Leu Val Gly Asp Ser Leu Gly 35 40 45 Met Thr Val Gln Gly His Asp Ser Thr Leu Pro Val Thr Val Ala Asp 50 55 60 Ile Ala Tyr His Thr Ala Ala Val Arg Arg Gly Ala Pro Asn Cys Leu 65 70 75 80 Leu Leu Ala Asp Leu Pro Phe Met Ala Tyr Ala Thr Pro Glu Gln Ala 85 90 95 Phe Glu Asn Ala Ala Thr Val Met Arg Ala Gly Ala Asn Met Val Lys 100 105 110 Ile Glu Gly Val Glu Trp Leu Val Glu Thr Val Gln Met Leu Thr Glu 115 120 125 Arg Ala Val Pro Val Cys Gly His Leu Gly Leu Thr Pro Gln Ser Val 130 135 140 Asn Ile Phe Gly Gly Tyr Lys Val Gln Gly Arg Gly Asp Glu Ala Gly 145 150 155 160 Asp Gln Leu Leu Ser Asp Ala Leu Ala Leu Glu Ala Ala Gly Ala Gln 165 170 175 Leu Leu Val Leu Glu Cys Val Pro Val Glu Leu Ala Lys Arg Ile Thr 180 185 190 Glu Ala Leu Ala Ile Pro Val Ile Gly Ile Gly Ala Gly Asn Val Thr 195 200 205 Asp Gly Gln Ile Leu Val Met His Asp Ala Phe Gly Ile Thr Gly Gly 210 215 220 His Ile Pro Lys Phe Ala Lys Asn Phe Leu Ala Glu Thr Gly Asp Ile 225 230 235 240 Arg Ala Ala Val Arg Gln Tyr Met Ala Glu Val Glu Ser Gly Val Tyr 245 250 255 Pro Gly Glu Glu His Ser Phe His 260 <210> 68 <211> 264 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_PanB with G116I mutation <400> 68 Met Lys Pro Thr Thr Ile Ser Leu Leu Gln Lys Tyr Lys Gln Glu Lys 1 5 10 15 Lys Arg Phe Ala Thr Ile Thr Ala Tyr Asp Tyr Ser Phe Ala Lys Leu 20 25 30 Phe Ala Asp Glu Gly Leu Asn Val Met Leu Val Gly Asp Ser Leu Gly 35 40 45 Met Thr Val Gln Gly His Asp Ser Thr Leu Pro Val Thr Val Ala Asp 50 55 60 Ile Ala Tyr His Thr Ala Ala Val Arg Arg Gly Ala Pro Asn Cys Leu 65 70 75 80 Leu Leu Ala Asp Leu Pro Phe Met Ala Tyr Ala Thr Pro Glu Gln Ala 85 90 95 Phe Glu Asn Ala Ala Thr Val Met Arg Ala Gly Ala Asn Met Val Lys 100 105 110 Ile Glu Gly Ile Glu Trp Leu Val Glu Thr Val Gln Met Leu Thr Glu 115 120 125 Arg Ala Val Pro Val Cys Gly His Leu Gly Leu Thr Pro Gln Ser Val 130 135 140 Asn Ile Phe Gly Gly Tyr Lys Val Gln Gly Arg Gly Asp Glu Ala Gly 145 150 155 160 Asp Gln Leu Leu Ser Asp Ala Leu Ala Leu Glu Ala Ala Gly Ala Gln 165 170 175 Leu Leu Val Leu Glu Cys Val Pro Val Glu Leu Ala Lys Arg Ile Thr 180 185 190 Glu Ala Leu Ala Ile Pro Val Ile Gly Ile Gly Ala Gly Asn Val Thr 195 200 205 Asp Gly Gln Ile Leu Val Met His Asp Ala Phe Gly Ile Thr Gly Gly 210 215 220 His Ile Pro Lys Phe Ala Lys Asn Phe Leu Ala Glu Thr Gly Asp Ile 225 230 235 240 Arg Ala Ala Val Arg Gln Tyr Met Ala Glu Val Glu Ser Gly Val Tyr 245 250 255 Pro Gly Glu Glu His Ser Phe His 260 <210> 69 <211> 264 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_PanB with G116L mutation <400> 69 Met Lys Pro Thr Thr Ile Ser Leu Leu Gln Lys Tyr Lys Gln Glu Lys 1 5 10 15 Lys Arg Phe Ala Thr Ile Thr Ala Tyr Asp Tyr Ser Phe Ala Lys Leu 20 25 30 Phe Ala Asp Glu Gly Leu Asn Val Met Leu Val Gly Asp Ser Leu Gly 35 40 45 Met Thr Val Gln Gly His Asp Ser Thr Leu Pro Val Thr Val Ala Asp 50 55 60 Ile Ala Tyr His Thr Ala Ala Val Arg Arg Gly Ala Pro Asn Cys Leu 65 70 75 80 Leu Leu Ala Asp Leu Pro Phe Met Ala Tyr Ala Thr Pro Glu Gln Ala 85 90 95 Phe Glu Asn Ala Ala Thr Val Met Arg Ala Gly Ala Asn Met Val Lys 100 105 110 Ile Glu Gly Leu Glu Trp Leu Val Glu Thr Val Gln Met Leu Thr Glu 115 120 125 Arg Ala Val Pro Val Cys Gly His Leu Gly Leu Thr Pro Gln Ser Val 130 135 140 Asn Ile Phe Gly Gly Tyr Lys Val Gln Gly Arg Gly Asp Glu Ala Gly 145 150 155 160 Asp Gln Leu Leu Ser Asp Ala Leu Ala Leu Glu Ala Ala Gly Ala Gln 165 170 175 Leu Leu Val Leu Glu Cys Val Pro Val Glu Leu Ala Lys Arg Ile Thr 180 185 190 Glu Ala Leu Ala Ile Pro Val Ile Gly Ile Gly Ala Gly Asn Val Thr 195 200 205 Asp Gly Gln Ile Leu Val Met His Asp Ala Phe Gly Ile Thr Gly Gly 210 215 220 His Ile Pro Lys Phe Ala Lys Asn Phe Leu Ala Glu Thr Gly Asp Ile 225 230 235 240 Arg Ala Ala Val Arg Gln Tyr Met Ala Glu Val Glu Ser Gly Val Tyr 245 250 255 Pro Gly Glu Glu His Ser Phe His 260 <210> 70 <211> 264 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_PanB with G116D mutation <400> 70 Met Lys Pro Thr Thr Ile Ser Leu Leu Gln Lys Tyr Lys Gln Glu Lys 1 5 10 15 Lys Arg Phe Ala Thr Ile Thr Ala Tyr Asp Tyr Ser Phe Ala Lys Leu 20 25 30 Phe Ala Asp Glu Gly Leu Asn Val Met Leu Val Gly Asp Ser Leu Gly 35 40 45 Met Thr Val Gln Gly His Asp Ser Thr Leu Pro Val Thr Val Ala Asp 50 55 60 Ile Ala Tyr His Thr Ala Ala Val Arg Arg Gly Ala Pro Asn Cys Leu 65 70 75 80 Leu Leu Ala Asp Leu Pro Phe Met Ala Tyr Ala Thr Pro Glu Gln Ala 85 90 95 Phe Glu Asn Ala Ala Thr Val Met Arg Ala Gly Ala Asn Met Val Lys 100 105 110 Ile Glu Gly Asp Glu Trp Leu Val Glu Thr Val Gln Met Leu Thr Glu 115 120 125 Arg Ala Val Pro Val Cys Gly His Leu Gly Leu Thr Pro Gln Ser Val 130 135 140 Asn Ile Phe Gly Gly Tyr Lys Val Gln Gly Arg Gly Asp Glu Ala Gly 145 150 155 160 Asp Gln Leu Leu Ser Asp Ala Leu Ala Leu Glu Ala Ala Gly Ala Gln 165 170 175 Leu Leu Val Leu Glu Cys Val Pro Val Glu Leu Ala Lys Arg Ile Thr 180 185 190 Glu Ala Leu Ala Ile Pro Val Ile Gly Ile Gly Ala Gly Asn Val Thr 195 200 205 Asp Gly Gln Ile Leu Val Met His Asp Ala Phe Gly Ile Thr Gly Gly 210 215 220 His Ile Pro Lys Phe Ala Lys Asn Phe Leu Ala Glu Thr Gly Asp Ile 225 230 235 240 Arg Ala Ala Val Arg Gln Tyr Met Ala Glu Val Glu Ser Gly Val Tyr 245 250 255 Pro Gly Glu Glu His Ser Phe His 260 <210> 71 <211> 264 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_PanB with G116C mutation <400> 71 Met Lys Pro Thr Thr Ile Ser Leu Leu Gln Lys Tyr Lys Gln Glu Lys 1 5 10 15 Lys Arg Phe Ala Thr Ile Thr Ala Tyr Asp Tyr Ser Phe Ala Lys Leu 20 25 30 Phe Ala Asp Glu Gly Leu Asn Val Met Leu Val Gly Asp Ser Leu Gly 35 40 45 Met Thr Val Gln Gly His Asp Ser Thr Leu Pro Val Thr Val Ala Asp 50 55 60 Ile Ala Tyr His Thr Ala Ala Val Arg Arg Gly Ala Pro Asn Cys Leu 65 70 75 80 Leu Leu Ala Asp Leu Pro Phe Met Ala Tyr Ala Thr Pro Glu Gln Ala 85 90 95 Phe Glu Asn Ala Ala Thr Val Met Arg Ala Gly Ala Asn Met Val Lys 100 105 110 Ile Glu Gly Cys Glu Trp Leu Val Glu Thr Val Gln Met Leu Thr Glu 115 120 125 Arg Ala Val Pro Val Cys Gly His Leu Gly Leu Thr Pro Gln Ser Val 130 135 140 Asn Ile Phe Gly Gly Tyr Lys Val Gln Gly Arg Gly Asp Glu Ala Gly 145 150 155 160 Asp Gln Leu Leu Ser Asp Ala Leu Ala Leu Glu Ala Ala Gly Ala Gln 165 170 175 Leu Leu Val Leu Glu Cys Val Pro Val Glu Leu Ala Lys Arg Ile Thr 180 185 190 Glu Ala Leu Ala Ile Pro Val Ile Gly Ile Gly Ala Gly Asn Val Thr 195 200 205 Asp Gly Gln Ile Leu Val Met His Asp Ala Phe Gly Ile Thr Gly Gly 210 215 220 His Ile Pro Lys Phe Ala Lys Asn Phe Leu Ala Glu Thr Gly Asp Ile 225 230 235 240 Arg Ala Ala Val Arg Gln Tyr Met Ala Glu Val Glu Ser Gly Val Tyr 245 250 255 Pro Gly Glu Glu His Ser Phe His 260 <210> 72 <211> 264 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_PanB with G116Q mutation <400> 72 Met Lys Pro Thr Thr Ile Ser Leu Leu Gln Lys Tyr Lys Gln Glu Lys 1 5 10 15 Lys Arg Phe Ala Thr Ile Thr Ala Tyr Asp Tyr Ser Phe Ala Lys Leu 20 25 30 Phe Ala Asp Glu Gly Leu Asn Val Met Leu Val Gly Asp Ser Leu Gly 35 40 45 Met Thr Val Gln Gly His Asp Ser Thr Leu Pro Val Thr Val Ala Asp 50 55 60 Ile Ala Tyr His Thr Ala Ala Val Arg Arg Gly Ala Pro Asn Cys Leu 65 70 75 80 Leu Leu Ala Asp Leu Pro Phe Met Ala Tyr Ala Thr Pro Glu Gln Ala 85 90 95 Phe Glu Asn Ala Ala Thr Val Met Arg Ala Gly Ala Asn Met Val Lys 100 105 110 Ile Glu Gly Gln Glu Trp Leu Val Glu Thr Val Gln Met Leu Thr Glu 115 120 125 Arg Ala Val Pro Val Cys Gly His Leu Gly Leu Thr Pro Gln Ser Val 130 135 140 Asn Ile Phe Gly Gly Tyr Lys Val Gln Gly Arg Gly Asp Glu Ala Gly 145 150 155 160 Asp Gln Leu Leu Ser Asp Ala Leu Ala Leu Glu Ala Ala Gly Ala Gln 165 170 175 Leu Leu Val Leu Glu Cys Val Pro Val Glu Leu Ala Lys Arg Ile Thr 180 185 190 Glu Ala Leu Ala Ile Pro Val Ile Gly Ile Gly Ala Gly Asn Val Thr 195 200 205 Asp Gly Gln Ile Leu Val Met His Asp Ala Phe Gly Ile Thr Gly Gly 210 215 220 His Ile Pro Lys Phe Ala Lys Asn Phe Leu Ala Glu Thr Gly Asp Ile 225 230 235 240 Arg Ala Ala Val Arg Gln Tyr Met Ala Glu Val Glu Ser Gly Val Tyr 245 250 255 Pro Gly Glu Glu His Ser Phe His 260 <210> 73 <211> 264 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> synthetic_PanB with G116M mutation <400> 73 Met Lys Pro Thr Thr Ile Ser Leu Leu Gln Lys Tyr Lys Gln Glu Lys 1 5 10 15 Lys Arg Phe Ala Thr Ile Thr Ala Tyr Asp Tyr Ser Phe Ala Lys Leu 20 25 30 Phe Ala Asp Glu Gly Leu Asn Val Met Leu Val Gly Asp Ser Leu Gly 35 40 45 Met Thr Val Gln Gly His Asp Ser Thr Leu Pro Val Thr Val Ala Asp 50 55 60 Ile Ala Tyr His Thr Ala Ala Val Arg Arg Gly Ala Pro Asn Cys Leu 65 70 75 80 Leu Leu Ala Asp Leu Pro Phe Met Ala Tyr Ala Thr Pro Glu Gln Ala 85 90 95 Phe Glu Asn Ala Ala Thr Val Met Arg Ala Gly Ala Asn Met Val Lys 100 105 110 Ile Glu Gly Met Glu Trp Leu Val Glu Thr Val Gln Met Leu Thr Glu 115 120 125 Arg Ala Val Pro Val Cys Gly His Leu Gly Leu Thr Pro Gln Ser Val 130 135 140 Asn Ile Phe Gly Gly Tyr Lys Val Gln Gly Arg Gly Asp Glu Ala Gly 145 150 155 160 Asp Gln Leu Leu Ser Asp Ala Leu Ala Leu Glu Ala Ala Gly Ala Gln 165 170 175 Leu Leu Val Leu Glu Cys Val Pro Val Glu Leu Ala Lys Arg Ile Thr 180 185 190 Glu Ala Leu Ala Ile Pro Val Ile Gly Ile Gly Ala Gly Asn Val Thr 195 200 205 Asp Gly Gln Ile Leu Val Met His Asp Ala Phe Gly Ile Thr Gly Gly 210 215 220 His Ile Pro Lys Phe Ala Lys Asn Phe Leu Ala Glu Thr Gly Asp Ile 225 230 235 240 Arg Ala Ala Val Arg Gln Tyr Met Ala Glu Val Glu Ser Gly Val Tyr 245 250 255 Pro Gly Glu Glu His Ser Phe His 260

Claims (16)

  1. 서열번호 37의 아미노산 서열에서 116번째 잔기에 상응하는 아미노산이 다른 아미노산으로 치환된, 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제(3-methyl-2-oxobutanoate hydroxymethyltransferase) 활성을 가지는 폴리펩타이드.
  2. 제1항에 있어서, 서열번호 37의 아미노산 서열에서 116번째 잔기에 상응하는 아미노산이 알라닌(A, Ala), 아스파라진(N, Asn), 트레오닌(T, Thr), 글루탐산(E, Glu), 세린(S, Ser), 발린(V, Val), 이소류신(I, Ile), 류신(L, Leu), 아스파르트산(D, Asp), 시스테인(C, Cys), 글루타민(Q, Gln), 또는 메티오닌(M, Met)으로 치환된, 폴리펩타이드.
  3. 제1항에 있어서, 상기 폴리펩티드는 서열번호 62 내지 서열번호 73 중에서 선택된 어느 하나의 서열번호의 아미노산 서열로 이루어진 것인, 폴리펩타이드.
  4. 제1항 내지 제3항 중 어느 한 항의 폴리펩타이드를 암호화하는 폴리뉴클레오타이드.
  5. 제4항의 폴리뉴클레오타이드를 포함하는 재조합 벡터.
  6. 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제(3-methyl-2-oxobutanoate hydroxymethyltransferase)의 활성이 강화된, 판토텐산 또는 판토산을 생산하는 미생물.
  7. 제6항에 있어서, 상기 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제는 대장균(Escherichia Coli) 유래의 PanB 단백질인, 미생물.
  8. 제6항에 있어서, 상기 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제는 서열번호 37의 아미노산 서열로 이루어지거나 서열번호 37의 아미노산 서열에서 116번째 잔기에 상응하는 아미노산이 다른 아미노산으로 치환된 서열로 이루어진 것인, 미생물.
  9. 제6항에 있어서, 상기 미생물은 코리네박테리움 속 미생물 또는 에세리키아 속 미생물인, 미생물.
  10. 제9항에 있어서, 상기 코리네박테리움 속 미생물은 코리네박테리움 글루타미쿰인, 미생물.
  11. 제6항에 있어서, 상기 미생물은 제1항 내지 제3항 중 어느 한 항의 폴리펩타이드, 상기 폴리펩타이드를 암호화하는 폴리뉴클레오타이드 또는 상기 폴리뉴클레오타이드를 포함하는 재조합 벡터를 포함하는 것인, 미생물.
  12. 제6항 내지 제10항 중 어느 한 항의 미생물을 포함하는, 판토텐산 또는 판토산 생산용 조성물.
  13. 제12항에 있어서, 상기 미생물은 서열번호 37의 아미노산 서열로 이루어지거나 서열번호 37의 아미노산 서열에서 116번째 잔기에 상응하는 아미노산이 다른 아미노산으로 치환된 아미노산 서열로 이루어진 폴리펩타이드, 상기 폴리펩타이드를 암호화하는 폴리뉴클레오타이드 또는 상기 폴리뉴클레오타이드를 포함하는 재조합 벡터를 포함하는 것인, 판토텐산 또는 판토산 생산용 조성물.
  14. 제6항 내지 제10항 중 어느 한 항의 미생물을 배지에서 배양하는 단계를 포함하는, 판토텐산 또는 판토산의 생산 방법.
  15. 제14항에 있어서, 상기 배양하는 단계 이후에, 배양된 미생물, 배지, 또는 이들 모두로부터 판토텐산 또는 판토산을 회수하는 단계를 추가로 포함하는, 판토텐산 또는 판토산의 생산 방법.
  16. 제14항에 있어서, 상기 미생물은 서열번호 37의 아미노산 서열로 이루어지거나 서열번호 37의 아미노산 서열에서 116번째 잔기에 상응하는 아미노산이 다른 아미노산으로 치환된 아미노산 서열로 이루어진 폴리펩타이드, 상기 폴리펩타이드를 암호화하는 폴리뉴클레오타이드 또는 상기 폴리뉴클레오타이드를 포함하는 재조합 벡터를 포함하는 것인, 판토텐산 또는 판토산 생산 방법.
KR1020200081194A 2020-07-01 2020-07-01 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제의 활성이 강화된 미생물, 및 이의 용도 KR102389327B1 (ko)

Priority Applications (9)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KR1020200081194A KR102389327B1 (ko) 2020-07-01 2020-07-01 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제의 활성이 강화된 미생물, 및 이의 용도
EP24185365.4A EP4424834A2 (en) 2020-07-01 2021-07-01 Microorganism having increased activity of 3-methyl-2-oxobutanoate hydroxymethyltransferase, and use thereof
US17/766,389 US20240167065A1 (en) 2020-07-01 2021-07-01 Microorganism having increased activity of 3-methyl-2-oxobutanoate hydroxymethyltransferase, and use thereof
CN202211667157.0A CN115960809A (zh) 2020-07-01 2021-07-01 生产泛酸或泛解酸的棒状杆菌属微生物、组合物及方法
PCT/KR2021/008349 WO2022005225A1 (ko) 2020-07-01 2021-07-01 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제의 활성이 강화된 미생물, 및 이의 용도
EP21833442.3A EP4032977A4 (en) 2020-07-01 2021-07-01 MICROORGANISM HAVING INCREASED HYDROXYMETHYLTRANSFERASE 3-METHYL-2-OXOBUTANOATE ACTIVITY, AND USE THEREOF
CN202180003334.2A CN114096663B (zh) 2020-07-01 2021-07-01 具有增强的3-甲基-2-氧代丁酸羟甲基转移酶活性的微生物及其用途
BR112022008745-4A BR112022008745B1 (pt) 2020-07-01 2021-07-01 Microrganismo com atividade aumentada da 3-metil-2-oxobutanoato hidroximetiltransferase e utilização do mesmo
KR1020210169330A KR102434925B1 (ko) 2020-07-01 2021-11-30 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제의 활성이 강화된 미생물, 및 이의 용도

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KR1020200081194A KR102389327B1 (ko) 2020-07-01 2020-07-01 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제의 활성이 강화된 미생물, 및 이의 용도

Related Child Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
KR1020210169330A Division KR102434925B1 (ko) 2020-07-01 2021-11-30 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제의 활성이 강화된 미생물, 및 이의 용도

Publications (2)

Publication Number Publication Date
KR20220003411A true KR20220003411A (ko) 2022-01-10
KR102389327B1 KR102389327B1 (ko) 2022-04-20

Family

ID=79316584

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
KR1020200081194A KR102389327B1 (ko) 2020-07-01 2020-07-01 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제의 활성이 강화된 미생물, 및 이의 용도
KR1020210169330A KR102434925B1 (ko) 2020-07-01 2021-11-30 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제의 활성이 강화된 미생물, 및 이의 용도

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
KR1020210169330A KR102434925B1 (ko) 2020-07-01 2021-11-30 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제의 활성이 강화된 미생물, 및 이의 용도

Country Status (5)

Country Link
US (1) US20240167065A1 (ko)
EP (2) EP4032977A4 (ko)
KR (2) KR102389327B1 (ko)
CN (2) CN115960809A (ko)
WO (1) WO2022005225A1 (ko)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2024158257A1 (ko) * 2023-01-27 2024-08-02 씨제이제일제당 (주) 글루타미시박터 할로피토콜라 유래 판토에이트-베타-알라닌 리가아제의 활성이 강화된 미생물 및 이의 용도

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR20240105656A (ko) * 2022-12-28 2024-07-08 씨제이제일제당 (주) 음이온 수송 단백질의 활성이 강화된 미생물 및 이의 용도

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR20000047829A (ko) * 1998-12-01 2000-07-25 추후 미생물에서 ｐａｎＤ 유전자를 증폭시켜 Ｄ-판토텐산을제조하는 발효 방법
US20030073204A1 (en) * 2001-03-14 2003-04-17 Degussa Ag Process for the manufacture of D-pantothene acid and/or its salts by fermentation
KR20060023159A (ko) * 2003-06-18 2006-03-13 디에스엠 아이피 어셋츠 비.브이. 포자를 형성할 수 없는 미생물을 사용한 판토텐산염의 제조방법
US7718205B2 (en) 2004-04-26 2010-05-18 Dsm Ip Assets B.V. Process for preparation of calcium-D-pantothenate

Family Cites Families (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5932457A (en) * 1995-09-13 1999-08-03 Takeda Chemical Industries, Ltd Process for producing D-pantoic acid and D-pantothenic acid or salts thereof
DE19855312A1 (de) * 1998-12-01 2000-06-08 Degussa Verfahren zur fermentativen Herstellung von D-Pantothensäure unter Verwendung coryneformer Bakterien
IL148786A0 (en) * 1999-09-21 2002-09-12 Basf Ag Methods and microorganisms for production of panto-compounds
EP2066782A4 (en) 2006-09-15 2010-02-03 Cj Cheiljedang Corp CORYNEBACTERIA WITH IMPROVED L-LYSINE PRODUCTIVITY AND METHOD FOR THE PREPARATION OF L-LYSINE THEREWITH
US8517405B2 (en) 2007-09-10 2013-08-27 Hui Yan Human powered vehicle with two reciprocal pedals
EP2157174A1 (en) * 2008-08-12 2010-02-24 DSM IP Assets B.V. Increased production of pantothenate (vitamin B5)
US10385367B2 (en) * 2009-06-01 2019-08-20 Ginkgo Bioworks, Inc. Methods and molecules for yield improvement involving metabolic engineering
KR101594156B1 (ko) * 2013-06-25 2016-02-15 씨제이제일제당 주식회사 Ｌ-라이신 생산능이 향상된 미생물 및 그를 이용하여 ｌ-라이신을 생산하는 방법
KR102589135B1 (ko) * 2021-05-10 2023-10-12 씨제이제일제당 (주) 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제의 활성이 강화된 미생물, 및 이의 용도

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR20000047829A (ko) * 1998-12-01 2000-07-25 추후 미생물에서 ｐａｎＤ 유전자를 증폭시켜 Ｄ-판토텐산을제조하는 발효 방법
US20030073204A1 (en) * 2001-03-14 2003-04-17 Degussa Ag Process for the manufacture of D-pantothene acid and/or its salts by fermentation
KR20060023159A (ko) * 2003-06-18 2006-03-13 디에스엠 아이피 어셋츠 비.브이. 포자를 형성할 수 없는 미생물을 사용한 판토텐산염의 제조방법
US7718205B2 (en) 2004-04-26 2010-05-18 Dsm Ip Assets B.V. Process for preparation of calcium-D-pantothenate

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
GenBank: AFG39014.1 (2014.01.31.) 1부.* *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2024158257A1 (ko) * 2023-01-27 2024-08-02 씨제이제일제당 (주) 글루타미시박터 할로피토콜라 유래 판토에이트-베타-알라닌 리가아제의 활성이 강화된 미생물 및 이의 용도

Also Published As

Publication number Publication date
KR102434925B1 (ko) 2022-08-19
EP4032977A1 (en) 2022-07-27
WO2022005225A1 (ko) 2022-01-06
US20240167065A1 (en) 2024-05-23
EP4032977A4 (en) 2024-03-06
EP4424834A2 (en) 2024-09-04
CN114096663A (zh) 2022-02-25
CN115960809A (zh) 2023-04-14
KR20220003476A (ko) 2022-01-10
BR112022008745A2 (pt) 2023-01-10
KR102389327B1 (ko) 2022-04-20
CN114096663B (zh) 2023-09-26

Similar Documents

Publication Publication Date Title
RU2770464C1 (ru) Новая аденилосукцинат-синтетаза и способ получения нуклеотидов пурина с ее использованием
JP6998466B2 (ja) クエン酸シンターゼの活性が弱化された変異型ポリペプチド及びそれを用いたｌ－アミノ酸生産方法
CN108884449B (zh) 新型异丙基苹果酸合酶变异体及使用其生产l-亮氨酸的方法
KR102028554B1 (ko) 신규한 프로모터 및 이를 이용한 l-아미노산 생산 방법
KR102434925B1 (ko) 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제의 활성이 강화된 미생물, 및 이의 용도
CN112004926B (zh) 变体磷酸核糖焦磷酸酰胺转移酶及使用其制备嘌呤核苷酸的方法
KR102198072B1 (ko) 글루타민 신테타아제 변이형 폴리펩티드 및 이를 이용한 l-글루타민 생산 방법
KR102589135B1 (ko) 3-메틸-2-옥소뷰타노에이트 하이드록시 메틸트랜스퍼라아제의 활성이 강화된 미생물, 및 이의 용도
CN115044521B (zh) L-赖氨酸生产能力得到提高的谷氨酸棒状杆菌突变株及利用其的l-赖氨酸的生产方法
KR102527895B1 (ko) GlxR 단백질 변이체 또는 이를 이용한 쓰레오닌 생산방법
KR102285951B1 (ko) 시트레이트 신타아제의 활성이 약화된 신규한 변이형 폴리펩티드 및 이를 이용한 l-아미노산 생산 방법
CN115500080A (zh) 新型双功能亚甲基四氢叶酸脱氢酶/亚甲基四氢叶酸环水解酶变体及使用其生产xmp或gmp的方法
KR102685485B1 (ko) L-라이신 생산능이 향상된 변이 미생물 및 이를 이용한 l-라이신의 생산 방법
KR102360900B1 (ko) 신규한 폴리펩티드 및 이를 이용한 l-류신의 생산 방법
KR102685495B1 (ko) L-라이신 생산능이 향상된 코리네박테리움 글루타미쿰 변이주 및 이를 이용한 l-라이신의 생산 방법
JP2024515389A (ja) Ｌ－リシン生産能が向上したコリネバクテリウム・グルタミカム変異株及びそれを用いたｌ－リシンの生産方法
JP2024014656A (ja) Ｌ－アルギニンまたはｌ－シトルリン生産能が向上したコリネバクテリウム属微生物およびこれを用いたｌ－アルギニンまたはｌ－シトルリンの生産方法
KR20240000169A (ko) L-히스티딘 배출 단백질 및 이를 이용한 l-히스티딘 생산 방법
KR20240000168A (ko) L-히스티딘 배출 단백질 및 이를 이용한 l-히스티딘 생산 방법

Legal Events

Date Code Title Description
A107 Divisional application of patent
E701 Decision to grant or registration of patent right
GRNT Written decision to grant