KR20200134251A

KR20200134251A - 마크로라이드 화합물과 면역 체크포인트 억제제의 조합

Info

Publication number: KR20200134251A
Application number: KR1020207029157A
Authority: KR
Inventors: 올라 윈크비스트
Original assignee: 아이에스알 임뮨 시스템 레귤레이션 홀딩 에이비 (피유비엘)
Priority date: 2018-03-23
Filing date: 2019-03-25
Publication date: 2020-12-01
Also published as: CA3094747A1; JP2021523930A; WO2019180265A1; AU2019237257A1; CN112188893A; US20210040134A1; EP3768277A1

Abstract

본 발명은 면역 자극 마크로라이드와 체크포인트 억제제의 조합을 제공한다. 조합은 시너지 효과를 가지며 바이러스성 질병 및 암 치료에 사용될 수 있다.

Description

마크로라이드 화합물과 면역 체크포인트 억제제의 조합

본 발명은 면역 체크포인트 억제제 및 면역계를 자극할 수 있는 마크로라이드(macrolides)의 조합, 즉 이뮤노리드(immunolides)에 관한 것이다. 본 발명은 그 자체의 조합 및 의학, 특히 암의 면역치료적 치료 및 HIV와 같은 바이러스성 질환의 치료에 사용하기 위한 조합에 관한 것이다.

암세포는 다양한 암 특이적 항원을 발생시키는 무수한 유전적 돌연변이와 후성 유전학적 변화를 특징으로 한다. 이러한 항원은 T 세포에 의해 검출되며, 항원을 사용하여 전암성(precancerous) 및/또는 암성(cancerous) 세포를 정상 세포와 구별하고 암-특이적 면역 반응을 유도한다. T-세포-매개 면역 반응의 규모와 질은 일반적으로 면역 체크포인트(immune checkpoints)에 의해 조절되며, 이는 반응의 크기를 각각 증가 또는 감소시키는 역할을 하는 자극 및 억제 분자 및/또는 분자 경로로 정의될 수 있다. 정상적인 생리적 조건에서 면역 체크포인트는 자가 면역을 예방하고 병원성 감염으로 인한 조직 손상으로부터 보호하는 데 결정적이다. 그러나 암세포는 면역 저항을 얻는 방법으로 면역 체크포인트 단백질의 조절 장애를 이용할 수 있다.

T 세포-매개 항종양 면역 반응을 촉발하는 한 가지 접근법은 암세포에 의해 사용되는 면역 억제 체크포인트의 차단 또는 억제를 나타내는 "체크포인트 차단(checkpoint blockade)"이라고 한다. 많은 면역 체크포인트가 리간드-수용체 상호 작용에 의해 시작되기 때문에, 이러한 체크포인트는 항체에 의해 차단되거나 문제의 리간드 및/또는 수용체의 재조합 형태에 의해 조절될 수 있다.

단독으로 또는 조합하여 여러 면역 체크포인트는 T 세포-매개 항종양 면역 반응을 향상시키는 측면에서 관련이 있다. 여기에는 세포독성 T-림프구 관련 항원 4(cytotoxic T-lymphocyte associated antigen 4, CTLA4, CD152로도 알려짐), 프로그램된 세포 사멸 단백질 1 (programmed cell death protein 1, PD-1, CD279로도 알려짐) PD-1 리간드 1 (PD-1 ligand 1, PD-L1, B7-H1 및 CD274로도 알려짐), PD-1 리간드 2 (PD-1 ligand 2, PD-L2, B7-DC 및 CD-273으로도 알려짐), T-세포 막 단백질 3 (T-cell membrane protein 3, TIM3, HAVcr2로도 알려짐), 아데노신 A2a 수용체 (adenosine A2a receptor, A2aR), 림프구 활성화 유전자 3 (lymphocyte activation gene 3, LAG3, CD 223으로도 알려짐), B7-H3 (CD276으로도 알려짐), B7-H4 (B7-S1, B7X 및 VCTN1으로도 알려짐), 2B4 (CD244로도 알려짐), 및 B 및 T 림프구 감쇠기 (B and T lymphocyte attenuator, BTLA, CD272라고도 알려짐)이 포함되나 이에 제한되지 않는다. 더욱이, 관련 면역 체크포인트의 다른 예는 과학 및 특허 문헌에서 찾을 수 있으며 또한 본 발명의 범위 내에 있다.

면역 체크포인트 억제가 T 세포-매개 항종양 면역을 향상시키는 데 유용하지만, 본 발명자들은 T 세포 활성화를 추가로 향상시키기 위해 면역 체크포인트 억제를 하나 이상의 상호보완적인 메커니즘과 조합하여 훨씬 더 나은 항종양 효과를 제공할 것이라고 생각한다. 이를 위해, 본 발명자들은 마크로라이드가 면역자극 항암 및 면역자극 항-바이러스 효과를 갖는다는 것을 확인하고, 이는 본 발명자들이 개선된 치료 요법을 달성하기 위한 상호보완적인 메커니즘을 이용하는 본 발명을 이끌었다.

CD4⁺ T 세포는 면역 반응의 핵심적인 매개체이며, 암 환자에서 CD4⁺ T 세포의 면역 능력을 증가시키는 방법 및 수단에 대한 당업계의 큰 요구가 있다.

Kieser et al. 2000 Practical Streptomyces Genetics, Published by the John Innes Foundation Crawley et al. The influence of HIV on CD127 expression and its potential implications for IL-7 therapy. Semin Immunol. 2012 Jun;24(3):231-40. Gaisser et al. Analysis of seven genes from the eryAI-eryK region of the erythromycin biosynthetic gene cluster in Saccharopolyspora erythraea. Mol. Gen. Genet., 1997 Oct;256(3):239-51. Gaisser et al. A defined system for hybrid macrolide biosynthesis in Saccharopolyspora erythraea Mol. Micro., 2000; 36(2):391-401 Schell et al. Engineered biosynthesis of hybrid macrolide polyketides containing D-angolosamine and D-mycaminose moieties Org. Biomol. Chem., 2008;6:3315-3327 LeMahieu et al. Glycosidic Cleavage Reactions on Erythromycin A. Preparation of Erythronolide A, J. Med. Chem., 1974, 17(9):953-956 Djokic et al. Erythromycin Series. Part 13. Synthesis and Structure Elucidation of 10-Dihydro-10-deoxo-11-methyl-11-azaerythromycin A J. Chem. Res. (S),1988; 5:152-153 Glansdorp et al. Using Chemical Probes to Investigate the Sub-Inhibitory Effects of Azithromycin, Org. Biolmol. Chem., 2008; 208(6): 4120-4124 Rowe et al. Construction of new vectors for high-level expression in actinomycetes. Gene. 1998 Aug 17;216(1):215-23. Long et al. Engineering specificity of starter unit selection by the erythromycin-producing polyketide synthase. Mol. Microbiol. 2002 Mar;43(5):1215-25. Wilkening et al. The synthesis of novel 8a-aza-8a-homoerythromycin derivatives via the Beckmann rearrangement of (9Z)-erythromycin A oxime, Bioorg. Med. Chem Lett. 1993, 3 (6), p1287-1292 All references referred to in this application, including patent and patent applications, are incorporated herein by reference to the fullest extent possible.

에리트로마이신(erythromycin)과 아지트로마이신(azithromycin)과 같은 마크로라이드는 세균 감염 치료에 수년 동안 사용되어 왔다. 에리트로마이신은 방선균인 Saccharopolyspora erythraea의 발효에 의해 생성되는 폴리케타이드(polyketide) 천연물 마크로라이드이다. 아지트로마이신은 에리트로마이신의 반합성 아잘라이드(semisynthetic azalide) 유도체이다. 에리트로마이신과 같은 마크로라이드의 항균 활성을 설명하는 많은 참고문헌이 있다. 이 항균 메커니즘은 박테리아 50S 박테리아 리보솜의 P-사이트에 분자 결합을 통해 달성되어 tRNA 결합을 방해한다.

많은 참고문헌은 반합성 및 생합성 공학을 통한 에리트로마이신 유사체의 생성을 설명한다. 특히, 에리트로마이신, 데소사민/클라디노스(desosamine/cladinose) 및 마이카로스(mycarose)의 글리코실기의 반합성 제거 방법이 기술되어 있다. 에리트로마이신 아글리콘(aglycone)에 대안적인 글리코실기를 추가하기 위한 생체 변환에 대한 추가 방법이 설명되어 있다(예를 들어 Gaisser et al. 2000, Schell et al. 2008 및 WO 2001/079520 참조). 그러나 이 출판된 연구의 주요 초점은 항균성 에리트로마이신 유사체를 생성하는 것이다.

WO2007/004267호는 mTOR 억제제 및 알부민을 포함하는 나노 입자를 포함하는 조성물을 제2 치료제를 포함하는 조성물과 조합하여 투여함으로써 고형 종양을 치료하기 위한 방법 및 조성물을 개시한다.

WO2016/100882호는 암 치료에 사용하기 위한 면역조절제(immunomodulator) 및 제2 치료제를 포함하는 조합을 개시하며, 여기서 면역조절제는 면역 체크포인트 분자의 억제제이다.

본 발명은 특히 면역계의 자극이 유익한 암 및 암들에서 개선된 치료를 위한 마크로라이드 및 면역 체크포인트 억제제의 조합에 관한 것이다.

도 1은 마크로라이드 에리스로마이신 A (Erythromycin A), 화합물 1, 화합물 A, 화합물 B 및 EM703의 구조를 나타낸 도면이다.
도 2는 T-및 B-세포에 대한 CD69 상향 조절을 나타낸 도면이다. PBMC를 화합물 1, 화합물 A 및 활성화 대조군 LPS 및 IFN-감마로 24시간 동안 처리하였다. 초기 활성화 마커 CD69의 발현은 CD4+ T 세포 집단(왼쪽) 및 CD19+ B 세포 집단(오른쪽)에서 유세포 분석으로 측정되었다. 값은 삼중 샘플에서 평균 형광 강도, MFI 및 오차 막대 표준 편차를 나타낸다.
도 3은 T-및 B-세포에 대한 HLA-A, B, C 상향 조절을 나타낸 도면이다. PBMC는 화합물 1 또는 A 및 활성화 대조군 LPS 및 IFN-γ로 24시간 동안 처리되었다. HLA-A,B,C의 발현은 CD4+ T 세포 집단(왼쪽)과 CD19+ B 세포 집단(오른쪽)에서 유세포 분석을 통해 측정되었다. 값은 삼중 샘플에서 평균 형광 강도, MFI 및 오차 막대 표준 편차를 나타낸다.

도 4는 혈액 단핵구에 대한 CD80 및 HLA-DR 상향 조절을 나타낸 도면이다. PBMC는 화합물 1 또는 A뿐만 아니라 활성화 대조군 LPS 및 IFN-감마로 24시간 동안 처리되었다. CD80 및 HLA-DR의 발현은 유세포 분석을 통해 단핵구 세포 집단에서 측정되었다. 값은 삼중 샘플에서 평균 형광 강도, MFI 및 오차 막대 표준 편차를 나타낸다.
도 5는 혈액 단핵구에 대한 CD80 상향 조절을 나타낸 도면이다. PBMC는 화합물 1 또는 A뿐만 아니라 활성화 제어 IFN-감마로 24시간 동안 처리되었다. CD80의 발현은 유세포 분석을 통해 단핵구 세포 집단에서 측정되었다. 값은 삼중 샘플에서 평균 형광 강도, MFI 및 오차 막대 표준 편차를 나타낸다.
도 6은 ELISA로 측정한 48시간 또는 1주 동안 화합물 1로 자극한 후 PBMC로부터 IL-10의 생산을 나타낸 도면이다.
도 7은 증식 염료(proliferation dye) Celltrace violet (Invitrogen) 및 유세포 분석으로 측정한, 화합물 1로 6일 자극 후 CD4 T 세포 증식을 나타낸 도면이다. 미처리 세포(UNT) 또는 화합물 A를 대조군으로 사용하였다.
도 8은 유세포 분석으로 측정한, 화합물 1과 함께 배양한 후 CMV 특이적 CD8 T 세포에 대한 IL-7 수용체 α (CD127)의 상향 조절을 나타낸 도면이다.
도 9는 5일 동안 화합물 1 또는 A의 존재 또는 부재하에 CMV 펩티드로 성장한 PBMC (CMV+ 공여자로부터)로부터의 인터페론-감마 분비(유세포 비드 분석에 의해 측정됨)를 나타낸 도면이다.
도 10은 표시된 화합물로 48시간 동안 자극된 대식세포로부터 인터페론-감마 분비(유세포 비드 분석에 의해 측정됨)를 나타낸 도면이다.
도 11은 표시된 화합물로 48시간 동안 자극된 PBMC 또는 대식세포로부터의 케모카인(Chemokine) RANTES 분비(유세포 비드 분석에 의해 측정됨)를 나타낸 도면이다.
도 12는 표시된 화합물로 48시간 동안 자극된 PBMC 또는 대식세포로부터의 IL12p70 분비(유세포 비드 분석에 의해 측정됨)를 나타낸 도면이다.
도 13은 표시된 화합물로 48시간 동안 자극된 PBMC, 대식세포 또는 CD4 T 세포로부터의 IL1b 분비(유세포 비드 분석에 의해 측정됨)를 나타낸 도면이다.
도 14는 표시된 용량의 화합물 1을 24시간 이전에 주사한 C57b1/6 마우스의 혈액 내%CD25high 세포를 나타낸 도면이다. CD25 발현은 유세포 분석에 의해 측정되었다.
도 15는 24시간 이전에 표시된 화합물을 주사한 3 마리의 개별 C57b1/6 마우스의 비장에서 %MHC 클래스 I 높은 CD11b+ 세포를 나타낸 도면이다. MHC 클래스 I 및 CD11b 발현은 유세포 분석에 의해 측정되었다.
도 16은 항-PD-1 봉쇄와 ISR397 사이의 시너지 효과를 나타낸 도면이다. C57BL/6J 마우스에 B16-F10 흑색종 세포를 피하로 접종한 다음 항-PD-1 (닫힌 원), 항-PD-1+ ISR397 (닫힌 사각형)으로 처리하거나 처리하지 않은 상태(닫힌 삼각형)로 두었다. 3, 8, 11, 15, 18 일에 측정된 종양 부피가 표시된다.
도 17은 항-PD-1 봉쇄와 ISR397 사이의 시너지 효과를 나타낸 도면이다. C57BL/6J 마우스에 B16-F10 흑색종 세포를 피하로 접종한 다음 치료하지 않고 방치하거나(분홍색) 항-PD-1으로 처리하거나(보라색) 항-PD-1+ ISR397로 처리하였다(적색). 실험 종료(18일)에 측정된 종양 부피가 표시된다.
도 18은 항-PD-1 봉쇄와 ISR397 사이의 시너지 효과를 나타낸 도면이다. C57BL/6J 마우스에 B16-F10 흑색종 세포를 피하로 접종한 다음 항-PD-1 (닫힌 원), 항-PD-1+ ISR397으로 처리하거나(닫힌 사각형) 처리하지 않은 상태로 두었다(닫힌 삼각형). 3, 8, 11, 15, 18일에 측정된 종양 부피가 표시된다.
도 19는 ISR397 (화합물 1) 동작의 제안된 메커니즘을 나타낸 도면이다.

항균 활성이 부족한 마크로라이드의 면역 자극 활성은 이전에 보고된 적이 없다. 놀랍게도, 화합물 1(도 8)과 같은 본 발명의 화합물이 면역계의 여러 세포 유형에 대해 강력한 면역 자극 효과를 가졌다는 것이 이제 밝혀졌다. 1μM 화합물 1로 말초 혈액 단핵 세포 (PBMC)의 시험관 내 자극 24~48시간 후 활성화 마커(activation marker) CD69가 CD4+ T 세포 및 B 세포에서 상향 조절되었다(도 1). 우리는 또한 T 세포와 B 세포에서 MHC 클래스 I 분자(HLA-ABC)의 상향 조절을 관찰했으며(도 2), 이는 바이러스 항원의 항원 제시에 대한 영향을 나타낸다. 화합물 1로 PBMC 집단에서 단핵구를 자극하면 공동-자극 분자(co-stimulatory molecule) CD80과 항원 제시 분자(antigen presenting molecule) MHC 클래스 II (HLA-DR)가 상향 조절되었다(도 3). 대식세포로 분화된 단핵구는 또한 화합물 1에 의한 자극에 반응하여 CD80 상향 조절을 나타내었다(도 4). 더욱이, 화합물 1로 자극된 PBMC는 면역억제성 사이토카인(immunosuppressive cytokine) IL-10의 증가된 생산과 함께 변경된 사이토카인 프로파일을 나타내어 특정 조건 하에서 면역 억제 효과를 나타내었다. 화합물 1의 면역학적 효과에 대한 추가 분석은 유동 세포분석법으로 측정한 자극 6일 후 T 세포의 변경된 사이토카인 유도 증식 프로파일을 나타내었다(도 6). 또한, 바이러스-특이적 T 세포 증식은 화합물 1에 의해 영향을 받았다. CMV 항원의 존재하에 배양된 거대세포 바이러스(cytomegalovirus, CMV) 감염된 공여자로부터의 PBMC는 IL-7 수용체 α (CD127)의 발현이 증가된 활성화된 CMV-특이적 CD8+ T 세포의 변경된 표현형을 나타냈다(도 7). CD127은 T 세포 항상성, 분화 및 기능에 중요하며, 발현 감소는 HIV 및 기타 만성 바이러스 질환의 질병 중증도와 관련이 있다(Crawley et al. 2012).

요약하면, 화합물 1은 항원 제시, 공동-자극(co-stimulation) 및 T 세포 활성화 및 증식에 영향을 줌으로써 면역 반응을 특이적으로 활성화하고 변형시키는 놀라운 능력을 가지고 있다. 본원에 제시된 많은 예에서, 화합물 2(도 8), 이전에 공개된 Schell et al. 2008년 (화합물 20과 같이)의 변경된 글리코실화와 연관된 다른 관련 마크로라이드 에리트로마이신 유사체는 분석에서 활성이 거의 또는 전혀 나타나지 않았기 때문에 음성 대조군으로 포함되었다.

면역 체크포인트 억제제와 함께 사용되는 마크로라이드는 면역 체계의 조절 효과를 최대화하는 동시에 치료적으로 원치 않는 직접적인 항균 효과를 최소화한다.

따라서, 본 발명은 마크로라이드 및 면역 체크포인트 억제제의 조합에 관한 것이다. 이 조합은 암 예방 및 치료에 유용하다. 마크로라이드 및 면역 체크포인트 억제제의 조합은 마크로라이드의 면역 자극 효과를 체크포인트 억제제에 의해 매개되는 면역계에 대한 중단의 방출과 조합함으로써 강화된 항종양 효과를 유도할 것으로 예상된다.

이러한 조합에 유용한 마크로라이드는 화학식 I의 마크로라이드(본원의 별도 단락 참조)를 포함하지만, 이에 제한되지는 않는다. 관심있는 특정 면역 체크포인트 억제제는 CTLA4 억제제, PD-1 억제제, PD-L1 억제제, PD-L2 억제제, LAG3 억제제, B7-H3 억제제 및 CMTM6 억제제에서 선택된 제제를 포함하지만, 이에 제한되지는 않는다. 본원의 별도 단락에서 마크로라이드와 함께 사용하기에 적합한 면역 체크포인트 억제제의 예가 제공된다.

마크로라이드와 면역 체크포인트 억제제의 특히 흥미로운 조합은 조합을 포함하며, 여기서 마크로라이드는 본원에 기재된 화합물로부터 선택된다. 이중 더욱 흥미로운 것은 화합물 1 (ISC397), 및 ISC397+ PD-1, ISC397+ PD-L1 또는 ISC397+CTLA-4 또는 ISC397+PD-1+CTLA-4 또는 ISC397+ PD-L1+CTLA-4와 같은 PD-1, PD-L1 및 CTLA-4의 억제제로부터 면역 체크포인트 억제제를 포함하는 구조식과 본원에 제공된 화합물에서 선택된 마크로라이드의 조합이다.

마크로라이드 및 면역 체크포인트 억제제의 조합은 마크로라이드, 면역 체크포인트 억제제 및 하나 이상의 약제학적으로 허용가능한 부형제를 포함하는 약학적 조성물의 형태일 수 있거나, 마크로라이드 및 하나 이상의 약제학적으로 허용가능한 부형제를 포함하는 하나의 조성물 및 면역 체크포인트 억제제 및 하나 이상의 약제학적으로 허용가능한 부형제를 포함하는 다른 조성물과 함께 2개의 약학적 조성물의 형태일 수 있다. 후자의 경우, 두 조성물은 동일하거나 상이한 투여 경로를 위해 설계될 수 있다.

대안적으로, 마크로라이드와 면역 체크포인트 억제제의 조합은 마크로라이드, 면역 체크포인트 억제제 및 하나 이상의 화장용으로 허용가능한 부형제를 포함하는 화장료 조성물의 형태일 수 있다.

마크로라이드와 면역 체크포인트 억제제의 조합은 추가로 단일 패키지에 포함된 약학적 키트의 형태일 수 있다:

i) 마크로라이드를 포함하는 제1 조성물,

ii) 면역 체크포인트 억제제를 포함하는 제2 조성물, 및

iii) 사용 지침.

본 발명의 조합의 일반적인 사용

마크로라이드와 면역 체크포인트 억제제의 조합은 의약품 및/또는 화장품에 유용하다. 마크로라이드와 면역 체크포인트 억제제의 조합은 의학에서 사용하기에 특히 중요하다. 잠재적인 적용은 임의의 관련 암 형태의 치료 또는 예방 방법을 포함하며, 이 방법은 마크로라이드 및 면역 체크포인트 억제제의 조합의 치료적 유효량을 필요로 하는 인간 또는 동물 대상체에게 투여하는 것을 포함한다.

본 발명은 또한 암을 치료 또는 예방하는 방법에 관한 것으로서, 상기 방법은 필요로 하는 인간 또는 동물 대상체에게 본원에 기재된 청구항 및 실시예 중 어느 하나에 따른 조합 물의 치료적 유효량을 투여하는 것을 포함한다.

약학적 조성물 및 상기 조합을 포함하는 약학적 키트를 포함하는 마크로라이드 및 면역 체크포인트 억제제의 조합은 부신암, 항문암, 담관암, 방광암, 골암, 뇌/CNS 종양, 유방암, 캐슬맨병(Castleman Disease), 자궁 경부암, 결장/직장암, 자궁내막암, 식도암, 안암, 담낭암, 위장관 유암종, 위장관 기질 종양(Gastrointestinal Stromal Tumor, GIST), 임신성 융모성 질환(Gestational Trophoblastic Disease), 호지킨병, 카포시 육종(Kaposi Sarcoma), 신장암, 후두 및 하인두암(Laryngeal and Hypopharyngeal Cancer), 급성 골수성 백혈병, 만성 림프구성 백혈병, 급성 림프구성 백혈병, 만성 골수성 백혈병, 만성 골수성 백혈병, 간암, 비소세포 폐암, 소세포 폐암, 폐암, 폐암, 폐 카르시노이드 종양(Lung Carcinoid Tumor), 림프종, 악성 중피종(Malignant Mesothelioma), 다발성 골수종, 골수 이형성 증후군, 비강 및 부비동 암, 비인두암, 신경 모세포종, 비-호지킨 림프종, 구강 및 구인두암, 골육종, 난소암, 췌장암, 음경암, 뇌하수체 종양, 타액선 암, 망막 모세포종, 전립선암, 망막 모세포종, 횡문근육종, 침샘암, 기저 및 편평 세포 피부암, 흑색종, 메르켈 세포 피부암, 소장암, 위암, 고환암, 흉선암, 갑상선암, 자궁육종, 질암, 외음부암, 발덴스트롬 마크로글로불린혈증(Waldenstrom Macroglobulinemia) 및 빌름스 종양(Wilms Tumor)을 포함하나 이에 제한되지 않는 모든 형태의 암의 예방 및 치료에 유용한 것으로 고려된다.

본원에 개시된 본 발명의 조합은 또한 질병, 장애, 상태 및 증상을 치료하는데 사용될 수 있으며, 여기서 면역 반응 자극은 예를 들어 바이러스성 제제 또는 HIV, 아데노바이러스, 알파바이러스, 아르보바이러스, 보르나병(Borna Disease), 버냐바이러스(Bunyavirus), 칼리시바이러스(Calicivirus), Condyloma Acuminata, 코로나바이러스(Coronavirus), 콕삭키바이러스(Coxsackievirus), 거대세포바이러스(Cytomegalovirus), 뎅기열 바이러스, 전염성 심상성 농창(Contageous Ecthyma), 엡스타인-바(Epstein-Barr virus), 감염홍반(Erythema Infectiosum), 한타바이러스(Hantavirus), 바이러스성 출혈열, 바이러스성 간염, 단순 포진 바이러스, 바이러스성 간염 전염성 단핵구증, 인플루엔자, 라사열 바이러스(Lassa Fever virus), 홍역, 볼거리, 전염성 연속종(Molluscum Contagiosum), 파라믹소바이러스(Paramyxovirus), 파파타치열(Phlebotomus fever), 폴리오마-바이러스, 리프트 밸리 열, 풍진, 슬로우병 바이러스(Slow Disease Virus), 두창(Smallpox), 아급성 경화성 범뇌염(Subacute Sclerosing Panencephalitis), 종양 바이러스 감염, 웨스트 나일 바이러스, 황색 발열 바이러스, 광견병 바이러스(Rabies Virus) 및 호흡기 세포 융합 바이러스와 같은 바이러스성 질병에 감염된 환자를 치료하는데 유용하다. 특히 HIV는 현재의 맥락에서 관심이 있다.

본원에 기술된 마크로라이드는 의학, 의학 연구 또는 그러한 용도를 위한 조성물의 제조에 사용될 수d 있다. 따라서, 하기에서 "마크로라이드"라는 용어가 의학적 용도 또는 약학적 조성물과 관련하여 사용되는 경우, 용어는 또한 화학식 I의 화합물을 포함하는 것으로 의도된다. 특히, 화학식 I의 마크로라이드의 본원에 기재된 바와 같은 의학적 용도는 화합물을 포함하며, 여기서 R₁이 Et이고, R₂가 화학식 II의 당이고, R₁₃이 OH, R₁₄가 H, R_a가 H, R₄가 Me, R₅가 H, R₆이 OH, R₇이 H, R₈이 NR₁₁R₁₂, R₉가 H, R₁₀이 H, X가 C=O이다.

화학식 I의 마크로라이드는 직접적인 항균 효과를 최소화하기 위해 설계되었지만 오히려 면역 활성화 특성에 중점을 둔다. 본 발명의 화합물이 박테리아 E. coli, S. salivarius, L. casei, B. longum 또는 M. luteus의 배양물에 첨가될 때, 항균 효과가 없거나 최소한으로 인정된다. 숙주 세포에 영향을 미치는 분리된 면역 자극 특성을 갖는 화합물을 갖는 이점은 박테리아 내성의 발생을 피할 수 있다는 것이다. 또한 설사와 위 막성 대장염을 유발하는 클로스트리디움 디피실리(Clostridium difficile)의 과다증식 위험이 있는 장내 미생물군(gut microbiota)에 영향을 미치는 마크로라이드의 잘 알려진 부작용이 방지된다. 많은 바이러스와 암은 T 세포에 의한 검출을 피하기 위해 HLA 발현을 하향 조절함으로써 면역 인식을 피하는 메커니즘을 개발하였다. 중재 화합물의 메커니즘은 감염된 세포에서 HLA 분자의 활성화 및 증가된 발현에 의존한다. HLA 분자는 감염된 세포의 제거를 가능하게 하는 T 세포에 대한 인식 신호를 제시하기 위해 세포 내 감염원으로부터 유래된 펩티드를 로딩하고 제시한다.

공지된 마크로라이드와 비교하여 화학식 I의 화합물의 유리한 특성은 다음 중 하나 이상을 포함할 수 있다:

-항균 활성의 직접적인 감소

-MHC 클래스 I 자극 개선

-향상된 면역 조절

-항원 제시 세포 활성화 개선

-향상된 T-세포 반응

-개선된 항종양 반응

-향상된 항바이러스 활성

-개선된 MHC 클래스 II 항원 제시

본 발명의 조합을 포함하는 약학적 조성물

본 발명은 또한 하나 이상의 약제학적으로 허용가능한 희석제 또는 담체와 함께 본 발명의 조합을 포함하는 약학적 조성물을 제공한다.

본 발명의 조합 또는 이의 제형은 임의의 통상적인 경로로 투여될 수 있으며, 예를 들어 비경구, 경구, 국소 또는 점막(구강, 설하, 경피, 질, 직장, 비강, 안구 등을 포함)으로, 의료 기기(예를 들어 스텐트) 또는 흡입을 통해 투입될 수 있으나, 이에 한정되지 않는다. 치료는 단일 투여 또는 일정 기간에 걸친 복수 투여로 구성될 수 있다.

각각의 화합물 (즉, 마크로라이드 및 체크포인트 억제제 각각) 또는 화합물을 포함하는 조성물은 별도의 투여 경로 및 상이한 제형 유형으로 투여될 수 있다. 또한 투여 빈도는 동일하지 않을 수 있다.

마크로라이드 및 체크포인트 억제제의 투여 요법은 해당 화합물 또는 조성물의 특성에 따라 달라질 수 있다. 투여 요법은 각각의 마크로라이드 또는 체크포인트 억제제를 포함하는 2개의 조성물 또는 조합의 단일 투여로 구성될 수 있다. 투여 요법은 또한 1회 이상의 기간에 걸친 복수의 투여일 수 있다. 투여는 특정 용도, 치료할 질병, 치료될 환자의 신체 상태 및 특성(예를 들어 성별, 체중 및 나이)에 따라 1일 1회, 1일 2회, 1일 3회, 1일 4회, 덜 자주 또는 더 자주 시행될 수 있다. 치료는 또한 예를 들어, 점적을 통한 정맥 내 투여 또는 데포(depots) 또는 서방형 제제를 통한 지속적인 투여에 의해 이루어질 수 있다.

본 발명의 조합이 그 자체로 투여되는 것이 가능하지만, 하나 이상의 허용 가능한 담체와 함께 이를 약제학적 제형으로 제시하는 것이 바람직하다. 담체(들)는 본 발명의 화합물과 양립할 수 있다는 의미에서 "허용가능(acceptable)"해야 하며 그 수용자에게 해롭지 않아야 한다. 적절한 캐리어의 예는 아래에서 더 자세히 설명된다.

약학적 조성물은 단위 투여 형태를 포함하는 적합한 투여 형태로 편리하게 제공될 수 있고, 약학 분야에 잘 알려진 임의의 방법에 의해 제조될 수 있다. 이러한 방법은 본 발명의 화합물을 하나 이상의 부형제와 회합시키는 단계를 포함한다. 일반적으로, 약학적 조성물은 본 발명의 화합물을 부형제(들)와 균일하고 친밀하게 결합시킨 다음, 필요하다면 생성된 조성물을 예를 들어, 정제로 성형하는 단계에 의하여 제조된다.

본 발명의 조합은 일반적으로 경구 또는 임의의 비경구 경로에 의해 통상적으로 임의의 통상적인 투여 경로에 의해, 활성 성분을 포함하는 약제학적 제형의 형태로, 임의로는 비독성 유기 또는 무기, 산 또는 염기, 부가염의 형태로 약제학적으로 허용되는 투여 형태로 투여 될 것이다. 치료될 장애 및 환자 및 투여 경로에 따라, 조성물은 다양한 용량 및/또는 빈도로 투여될 수 있다.

약학적 조성물은 제조 및 저장 조건 하에서 안정해야 한다; 따라서 필요한 경우 박테리아 및 곰팡이와 같은 미생물의 오염 작용에 대해 보존되어야 한다. 용액, 분산액, 에멀젼 및 현탁액과 같은 액체 제형의 경우, 담체는 예를 들어 물, 에탄올, 폴리올(예: 글리세롤, 프로필렌 글리콜 및 액체 폴리에틸렌 글리콜), 식물성 오일 및 이들의 적합한 혼합물을 함유하는 용매 또는 분산 매질일 수 있다.

예를 들어, 본 발명의 조합은 향료 또는 착색제를 함유할 수 있는 정제, 캡슐, 필름, 배주(ovules), 엘릭시르제(elixirs), 용액, 에멀젼 또는 현탁액의 형태로 경구, 협측(buccally) 또는 설하 투여될 수 있다.

경구 투여에 적합한 본 발명의 약학적 조성물은 각각 미리 결정된 양의 활성 성분을 함유하는 캡슐, 카세제(cachets) 또는 정제와 같은 개별 단위로; 예를 들어 정제 또는 캡슐 형태의 복수개의 단위로: 분말 또는 과립으로; 수성 액체 또는 비수성 액체의 용액 또는 현탁액으로; 또는 수중유 액체 에멀젼 또는 유중수 액체 에멀젼으로서 제공될 수 있다. 활성 성분은 또한 볼루스(bolus), 연약(electuary) 또는 페이스트로 제공될 수 있다.

경구 투여에 적합한 본 발명의 조합물의 용액 또는 현탁액은 또한 물, 알코올, 폴리올 등을 포함하는 하나 이상의 용매뿐만 아니라 pH 조절제, 안정화제, 계면활성제, 가용화제, 분산제, 방부제, 향료 등과 같은 하나 이상의 부형제를 함유할 수 있다. 구체적인 예는 예를 들어 N,N-디메틸아세트아미드, 폴리소르베이트 80과 같은 분산제, 계면활성제 및 폴리에틸렌글리콜, Phosal 50 PG (포스파티딜콜린, 대두 지방산, 에탄올, 모노/디글리세리드, 프로필렌 글리콜 및 아스코르빌 팔미테이트로 구성됨)와 같은 가용화제를 포함한다. 본 발명에 따른 제형은 또한 에멀젼의 형태일 수 있으며, 여기서 본 발명의 조합은 수중유 에멀젼 또는 유중수 에멀젼과 같은 에멀젼에 존재할 수 있다. 오일은 천연 또는 합성 오일 또는 예를 들어 대두유 또는 홍화유 또는 이들의 조합과 같은 임의의 오일 유사 물질일 수 있다.

정제는 미정질 셀룰로오스, 락토오스(예: 락토오스 일수화물 또는 락토오스 무수물), 나트륨 시트레이트, 탄산칼슘, 이염기성 인산칼슘 및 글리신, 부틸화 하이드록시톨루엔(E321), 크로스포비돈, 하이프로멜로스, 전분(바람직하게는 옥수수, 감자 또는 타피오카 전분)과 같은 붕해제, 나트륨 전분 글리콜레이트, 크로스카르멜로스 나트륨 및 특정 복합 규산염, 및 과립화 결합제, 예컨대 폴리비닐피롤리 돈, 하이드록시프로필메틸셀룰로오스(hydroxypropylmethylcellulose, HPMC), 하이드록시-프로필 셀룰로오스(hydroxy-propylcellulose, HPC), 마크로골 8000, 수크로오스, 젤라틴 및 아카시아와 같은 부형제를 포함할 수 있다. 또한, 마그네슘 스테아레이트, 스테아르산, 글리세릴 베헤네이트(glyceryl behenate) 및 탈크와 같은 윤활제가 포함될 수 있다.

정제는 선택적으로 하나 이상의 보조 성분과 함께 압축 또는 성형에 의해 제조될 수 있다. 압축 정제는 선택적으로 결합제(예를 들어, 포비돈, 젤라틴, 하이드록시프로필메틸 셀룰로오스), 윤활제, 불활성 희석제, 보존제, 붕해제(예를 들어, 나트륨 전분 글리콜레이트, 가교된 포비돈, 가교된 나트륨 카복시메틸 셀룰로오스), 표면 활성 또는 분산제와 혼합된 분말 또는 과립과 같은 자유 유동 형태의 활성 성분을 적합한 기계에서 압축하여 제조할 수 있다. 성형된 정제는 불활성 액체 희석제로 적신 분말 화합물의 혼합물을 적합한 기계에서 성형함으로써 제조될 수 있다. 정제는 선택적으로 코팅되거나 스코어링될 수 있고, 예를 들어, 원하는 방출 프로파일을 제공하기 위해 다양한 비율로 하이드록시프로필메틸셀룰로오스를 사용하여 활성 성분의 느린 또는 조절된 방출을 제공하도록 제형화될 수 있다.

유사한 유형의 고체 조성물은 또한 젤라틴 캡슐의 충전제로 사용될 수 있다. 이와 관련하여 바람직한 부형제는 락토오스, 전분, 셀룰로오스, 유당 또는 고분자량 폴리에틸렌 글리콜을 포함한다. 수성 현탁액 및/또는 엘릭시르제의 경우, 본 발명의 조합은 다양한 감미제 또는 향미제, 착색제 또는 염료와 함께, 유화제 및/또는 현탁제 및 물, 에탄올, 프로필렌 글리콜 및 글리세린과 같은 희석제, 및 이들의 조합과 함께 조합될 수 있다.

입안의 국소 투여에 적합한 본 발명의 약학적 조성물은 향미 기반의 활성 성분, 일반적으로 수크로오스 및 아카시아 또는 트라가칸트를 포함하는 로젠지(lozenges); 젤라틴 및 글리세린 또는 수크로오스 및 아카시아와 같은 불활성 기반의 활성 성분을 포함하는 알약; 및 적합한 액체 담체에 활성 성분을 포함하는 구강 세정제를 포함한다.

국소 투여에 적합한 본 발명의 약학적 조성물은 연고, 크림, 현탁액, 로션, 분말, 용액, 페이스트, 겔, 함침 드레싱, 스프레이, 에어로졸 또는 오일, 경피 장치, 더스팅 분말(dusting powders) 등으로 제제화될 수 있다. 이들 조성물은 활성제를 함유하는 통상적인 방법을 통해 제조될 수 있다. 따라서, 이들은 또한 방부제, 약물 침투를 돕는 용매, 크림 또는 연고의 완화제 및 로션용 에탄올 또는 올레 일 알코올과 같은 상용성 통상적인 담체 및 첨가제를 포함할 수 있다. 이러한 담체는 조성물의 약 1% 내지 약 98%로 존재할 수 있다. 더 일반적으로 그들은 구성의 약 80%까지 형성한다. 단지 예시로서, 크림 또는 연고는 원하는 농도를 갖는 크림 또는 연고를 생성하기에 충분한 양으로 화합물의 약 5-10 중량%를 함유하는 충분한 양의 친수성 물질 및 물을 혼합함으로써 제조된다.

경피 투여에 적합한 본 발명의 약학적 조성물은 장기간 동안 수용자의 표피와 밀접한 접촉을 유지하도록 의도된 별개의 패치로서 제공될 수 있다. 예를 들어, 활성 성분은 이온삼투법에 의해 패치로부터 전달될 수 있다.

외부 조직, 예를 들어 입 및 피부에 적용하기 위해, 조성물은 바람직하게는 국소 연고 또는 크림으로 적용된다. 연고로 제형화될 때, 활성 성분은 파라핀계 또는 수혼화성 연고 베이스와 함께 사용될 수 있다.

대안적으로, 활성 성분은 수중유 크림베이스 또는 유중수 베이스와 함께 크림으로 제형화될 수 있다.

비경구 투여를 위해, 활성 성분 및 예를 들어 제한 없이 물, 알코올, 폴리올, 글리세린 및 식물성 오일과 같은 멸균 비히클을 사용하여 유체 단위 투여 형태가 제조되며, 여기서, 물이 바람직하다. 사용된 비히클 및 농도에 따라 활성 성분은 콜로이드, 현탁되거나 또는 비히클에 용해될 수 있다. 용액을 준비할 때 활성 성분을 주사용 물에 용해시키고 적합한 바이알 또는 앰플에 채우고 밀봉하기 전에 필터를 멸균할 수 있다.

유리하게는, 국소 마취제, 방부제 및 완충제와 같은 제제가 비히클에 용해될 수 있다. 안정성을 높이기 위해, 조성물을 바이알에 채운 후 동결시키고 물을 진공 하에서 제거할 수 있다. 건조 동결건조된 분말은 그 다음 바이알에서 밀봉되고 사용 전에 액체를 재구성하기 위해 주사용 물이 수반되는 바이알이 공급될 수 있다.

주사가능한 용도에 적합한 본 발명의 약학적 조성물은 멸균 수용액 또는 분산액을 포함한다. 더욱이, 조성물은 이러한 멸균 주사가능한 용액 또는 분산액의 즉석 제조를 위한 멸균 분말 형태일 수 있다. 모든 경우에서, 최종 주사가능한 형태는 멸균되어야 하며 주사가 용이하도록 효과적으로 유동적이어야 한다.

비경구 현탁액은, 활성 성분이 용해되는 대신 비히클에 현탁되고 여과에 의해 멸균이 수행될 수 없다는 점을 제외하고는 용액과 실질적으로 동일한 방식으로 제조된다. 활성 성분은 멸균 비히클에 현탁시키기 전에 에틸렌 옥사이드에 노출시켜 멸균할 수 있다. 유리하게는, 활성 성분의 균일한 분포를 용이하게 하기 위해 계면활성제 또는 습윤제가 조성물에 포함된다.

특히 상기 언급된 성분 이외에, 본 발명의 제형은 해당 제형의 유형과 관련하여 당업계에 통상적인 다른 제제를 포함할 수 있으며, 예를 들어 경구 투여에 적합한 것은 향미제를 포함할 수 있음을 이해해야 한다. 당업자는 적합한 제형을 선택하는 방법 및 이를 제조하는 방법을 알 것이다 (예를 들어, Remington 's Pharmaceutical Sciences 18 Ed. 이상 참조). 당업자는 또한 적절한 투여 경로 및 투여량을 선택하는 방법을 알 것이다.

본 발명의 조합의 개별 투여량의 최적의 양 및 간격은 치료될 상태의 성질 및 정도, 투여 형태, 경로 및 부위, 치료될 특정 대상체의 연령과 상태에 의해 결정되고, 의사가 궁극적으로 사용할 적절한 복용량을 결정할 것이라는 것을 당업자는 인식할 것이다. 이 용량은 적절한 횟수만큼 반복될 수 있다. 부작용이 발생하면 정상적인 임상 실습에 따라 복용량 및/또는 복용량을 변경하거나 줄일 수 있다.

본 명세서에 언급된 모든% 값은 문맥에서 달리 요구하지 않는 한% w/w이다.

본 발명의 조합에 사용하기 위한 마크로라이드

본 발명의 조합에 사용하기 위한 면역 자극 마크로라이드는 화학식 I의 마크로라이드 또는 그의 약학적으로 허용가능한 염 수화물, 용매화물, 호변 이성질체(tautomers), 거울상 이성질체(enantiomers) 또는 부분 입체 이성질체(diastereomers)이다:

화학식 (I)

여기서 X는 C=O, -NR₃CH₂-, -CH₂NR₃-, -NR₃(C=O)-, -(C=O)NR₃-, C=NOH 및 -CH(OH)-로부터 선택되고, R₂는 화학식 II 또는 화학식 III의 당이고:

화학식 (II) 화학식 (III)

여기서 R₁은 알킬, 헤테로알킬, 사이클로알킬, 아릴 및 헤테로아릴 작용기로부터 선택되고,

여기서 알킬 작용기는 임의로 분지된 C₁-C₆ 알킬기로부터 선택되며,

여기서 헤테로알킬 작용기는 임의로 분지되거나 치환되고 하나 이상의 헤테로 원자를 포함하는 C₁-C₆ 알킬기로부터 선택되고,

여기서 사이클로알킬 작용기는 임의로 치환되고 하나 이상의 헤테로 원자를 임의로 포함하는 C₃-C₆ 사이클릭 알킬기로부터 선택되며,

여기서 아릴 작용기는 임의로 치환된 C₆ 방향족 고리로부터 선택되고,

여기서 헤테로아릴 작용기는 하나 이상의 헤테로 원자를 포함하는 임의로 치환된 C₁-C₅ 방향족 고리로부터 선택되며,

여기서 헤테로원자는 O, N, P 및 S로부터 선택되고,

여기서 치환기는 독립적으로 알킬, OH, F, Cl, NH₂, NH-알킬, NH-아실, S-알킬, S-아실, O-알킬 및 O-아실로부터 선택되며,

여기서 아실은 C₁-C₄ 임의로 분지된 아실기로부터 선택되고,

여기서 R₃은 H 및 Me로부터 선택되며,

여기서 R₄는 H 및 Me로부터 선택되고,

여기서 R_a는 H 및CR₂₁R₂₂R₂₃로부터 선택되며,

여기서 R₂₁, R₂₂, R₂₃, and R₅, R₆, R₇, R₈, R₉ 및 R₁₀은 독립적으로 H, Me, NR₁₁R₁₂, NO₂ 및 OR₁₁로부터 선택되고,

여기서 R₂₃은 화학식 II에서 R₄와 함께, R₄는 화학식 II에서 R₅와 함께, R₅는 화학식 II에서 R₇과 함께, R₇은 화학식 II에서 R₉와 함께 독립적으로 결합을 나타내기 위해 결합되어 각 그룹이 연결된 탄소 원자 사이에 이중 결합을 남길 수 있으며, 그래서

여기서 R₂₃과 R₄가 결합되어 이중 결합을 형성하면 화학식 II는 다음과 같이 나타낼 수 있고:

여기서 R₄와 R₅가 결합되어 이중 결합을 형성하면, 화학식 II는 다음과 같이 나타낼 수 있으며:

여기서 R₅와 R₇이 결합되어 이중 결합을 형성하면 화학식 II는 다음과 같이 나타낼 수 있고;

여기서 R₇과 R₉가 결합되어 이중 결합을 형성하면, 화학식 II는 다음과 같이 나타낼 수 있으며:

여기서 R₄는 화학식 III에서 R₅와 함께, R₄는 화학식 III에서 R₇과 함께, R₇은 화학식 III에서 R₉와 함께 독립적으로 결합을 나타내기 위해 결합되어 각 그룹이 연결된 탄소 원자 사이에 이중 결합을 남길 수 있고, 그래서

여기서 R₄와 R₅가 결합되어 이중 결합을 형성하면 화학식 III은 다음과 같이 나타낼 수 있고:

여기서 R₄와 R₇이 결합되어 이중 결합을 형성하면 화학식 III은 다음과 같이 나타낼 수 있으며:

ㄹ

여기서 R₇과 R₉가 결합되어 이중 결합을 형성하면 화학식 III은 다음과 같이 나타낼 수 있고:

여기서 R₂₁은 R₂₂와 함께, R₅는 R₆과 함께, R₇은 R₈과 함께, 또는 R₉는 R₁₀과 함께 카보닐로 대체될 수 있고,

여기서 R₁₁ 및 R₁₂는 독립적으로 H 및 알킬로부터 선택되며,

여기서 R₁₃은 H, OH 및 OCH₃로부터 선택되고,

여기서 R₁₄는 H 및 OH로부터 선택되며,

R₅, R₆, R₇, R₈, R₉ 또는 R₁₀ 중 하나는 NR₁₁R₁₂ 및 NO₂로부터 선택된다.

일부 관점에서, 마크로라이드는 화학식 (I)에 따른다.

단, R₁이 Et일 때, R₂는 화학식 II의 당이고, R₁₃은 H 또는 OH, R₁₄는 H 또는 OH, R_a는 H, R₄는 Me, R₅는 H, R₆은 OH, R₇은 H , R₈은 NR₁₁R₁₂, R₉는 H, R₁₀은 H이며, X는 C=O가 아닐 수 있고,

단, R₁이 Et일 때, R₂는 화학식 II의 당이고, R₁₃은 H 또는 OH, R₁₄는 H 또는 OH, R_a는 H, R₄는 Me, R₅는 OH, R₆은 H, R₇은 OH, R₈은 Me, R₉는 H, R₁₀은 H이며, X는 C=O가 아닐 수 있으며,

단, R₁이 Et일 때, R₂는 화학식 II의 당이고, R₁₃은 H 또는 OH, R₁₄는 H 또는 OH, R_a는 H, R₄는 Me, R₅는 OH, R₆는 H, R₇은 H , R₈은 NR₁₁R₁₂, R₉는 H, R₁₀은 OH이며, X는 C=O가 아닐 수 있다.

화학식 I의 면역 자극 마크로라이드 또는 그의 약제학적으로 허용가능한 염 수화물, 용매화물, 호변 이성질체, 거울상 이성질체 또는 부분 입체 이성질체는

화학식 (I)

를 가질 수 있다.

여기서 X는 C=O, -NR₃CH_2-및-CH(OH)-로부터 선택되고, R₂는 화학식 II의 당이고:

화학식 (II)

여기서 R₁은 알킬 또는 사이클로알킬 작용기로부터 선택되고,

여기서 알킬 작용기는 임의로 분지되고, 독립적으로 임의로 하이드록실화된 C₁-C₆ 알킬기로부터 선택되며,

여기서 사이클로알킬 작용기는 임의로 치환된 사이클릭알킬기 C₁-C₆으로부터 선택되고,

여기서 치환기는 알킬 및 OH로부터 선택되며,

여기서 R₃은 H 및 M에서 선택되고,

여기서 R₄는 H 및 Me로부터 선택되며,

여기서 R_a는 H 및-CR₂₁R₂₂R₂₃에서 선택되고,

여기서 R₂₁, R₂₂, R₂₃, and R₅, R₆, R₇, R₈, R₉ 및 R₁₀은 독립적으로 H, Me, NR₁₁R₁₂, NO₂ 및 OR₁₁에서 선택되며,

여기서 R₄와 R₅가 결합되어 이중 결합을 형성하면 화학식 II는 다음과 같이 나타낼 수 있으며:

여기서 R₅와 R₅₇이 결합되어 이중 결합을 형성하면 화학식 II는 다음과 같이 나타낼 수 있고:

여기서 R₇와 R₉가 결합되어 이중 결합을 형성하면 화학식 II는 다음과 같이 나타낼 수 있으며:

여기서 R₁₃은 H, OH 및 OCH₃로부터 선택되고,

여기서 R₁₄는 H 및 OH로부터 선택되며,

일 관점에서, 마크로라이드는 화학식 (I)에 따른다.

단, R₁이 Et일 때, R₂는 화학식 II의 당이고, R₁₃은 H 또는 OH, R₁₄는 H 또는 OH, R_a는 H, R₄는 Me, R₅는 H, R₆은 OH, R₇은 H, R₈은 NR₁₁R₁₂, R₉는 H, R₁₀은 H이며, X는 C=O가 아닐 수 있고,

마크로라이드는 화학식 IV의 아글리콘을 3-하이드록실 위치에서 글리코실화하는 생체 형질전환 균주의 배양물에 첨가하는 것을 포함하는 화학식 I의 화합물을 제조하는 방법에 의해 제공될 수 있다.

마크로라이드의 흥미로운 선택은 R₂가 L-다우노사민(L-daunosamine), L-아코사민(L-acosamine), L-리스토사민(L-ristosamine), D-리스토사민(D-ristosamine), 4-옥소-L-반코사민(4-oxo-L-vancosamine), L-vancosamine, D-포로사민(D-forosamine), L-악티노사민(L-actinosamine), 3-에피-L-반코사민(3-epi-L-vancosamine), L-빈세니사민(L-vicenisamine), L-마이코사민(L-mycosamine), D-마이코사민(D-mycosamine), D-3-N-메틸-4-O-메틸-L-리스토사민)D-3-N-methyl-4-O-methyl-L-ristosamine, D-데소사민(D-desosamine), N,N-디메틸-L-디메틸-L-피롤로사민(N,N-dimethyl-L-pyrrolosamine), L-메고사민(L-megosamine), L-노갈라민(L-nogalamine), L-로도사민(L-rhodosamine), D-앙골로사민(D-angolosamine), L-케다로사민(L-kedarosamine), 2'-N-메틸-D-푸코사민(2'-N-methyl-D-fucosamine), 3-N,N-디메틸-L-에레모사민(3-N,N-dimethyl-L-eremosamine), D-라비도사민(D-ravidosamine), 3-N,N-디메틸-D-마이코사민/D-마이카미노스(3-N,N-dimethyl-D-mycosamine/D-mycaminose), 3-N-아세틸-D-라비도사민(3-N-acetyl-D-ravidosamine), 4-O-아세틸-D-라비도사민(4-O-acetyl-D-ravidosamine), 3-N-아세틸-4-O-아세틸-라비도사민(3-N-acetyl-4-O-acetyl-D-ravidosamine), D-글루코사민(D-glucosamine), N-아세틸-D-글루코사민(N-acetyl-D-glucosamine), L-데소사민(L-desosamine), D-아모사민(D-amosamine), D-비오사민(D-viosamine), L-아비디노사민(L-avidinosamine), D-글루코사민(D-gulosamine), D-알로사민(D-allosamine) 및 L-시비로사민(L-sibirosamine)으로부터 선택되는 화합물이다.

마크로라이드의 또 다른 흥미로운 선택은 R₂가 D-앙골로사민, N-데스메틸 D-앙골로사민, N-디데스메틸 D-앙골로사민, N-데스메틸 N-에틸 D-앙골로사민 및 N-ㄷ디데스메틸 N-디에틸 D-알골로사민에서 선택되는 화합물이다.

마크로라이드의 또 다른 흥미로운 선택은 R₂가 N-데스메틸 D-앙골로사민, N-디데스메틸 D-앙골로사민, N-데스메틸 N-에틸 D-앙골로사민 및 N-디데스메틸 N-디 에틸 D-앙골로사민으로부터 선택되는 화합물이다.

마크로라이드의 또 다른 흥미로운 선택은 R₂가 화학식 II에 따른 당인 화합물이다.

마크로라이드의 또 다른 흥미로운 선택은 R₂가 화학식 2에 따른 당이고, 여기서 R_a는 H, R₄는 Me, R₅는 H, R₆은 OH, R₇은 H, R₈은 NR₁₁R₁₂, R₉는 H 및 R₁₀은 H인 화합물이다.

마크로라이드의 또 다른 흥미로운 선택은 R₁₁이 H, Me 및 Et에서 선택되고 R₁₂가 H, Me 및 Et에서 선택되는 화합물이다.

마크로라이드의 또 다른 흥미로운 선택은 R₁₁이 Et이고 R₁₂가 Et인 화합물이다.

마크로라이드의 또 다른 흥미로운 선택은 R₁₁이 Me이고 R₁₂가 Et인 화합물이다.

마크로라이드의 또 다른 흥미로운 선택은 X가 C=O, -NR₃CH_2-및-CH(OH)-로부터 선택되는 화합물이다.

마크로라이드의 또 다른 흥미로운 선택은 R₁이 Me, Et 및 사이클로알킬로부터 선택되는 화합물이다.

마크로라이드의 또 다른 흥미로운 선택은 R₁이 Me 및 Et로부터 선택되는 화합물이다.

마크로라이드의 또 다른 흥미로운 선택은 X가-NR₃CH_2-또는-CH₂NR₃-에서 선택되는 화합물이다.

마크로라이드의 또 다른 흥미로운 선택은 R₅, R₆, R₇ 또는 R₈중 하나가 NR₁₁R₁₂인 화합물이다.

마크로라이드의 또 다른 흥미로운 선택은 R₂₁, R₂₂, R₂₃, 및 R₅, R₆, R₇, R₈, R₉, 및 R₁₀이 독립적으로 H, Me, NR₁₁R₁₂ 및 OR₁₁로부터 선택되는 화합물이다.

마크로라이드의 또 다른 흥미로운 선택은 R₁₃ 및 R₁₄가 OH인 화합물이다.

특히 흥미로운 것은 R₁이 Et이고, R₂가 화학식 II의 당이고, R₁₃이 OH, R¹⁴가 H, R_a가 H, R₄가 Me, R₅가 H, R₆이 OH, R₇이 H, R₈이 NR₁₁R₁₂, R₉가 H, R₁₀이 H, X가 C=O인 화학식 I의 마크로라이드이다.

특정 마크로라이드는 다음을 포함한다:

화합물 1

화합물 4

화합물 9

화합물 8

화합물 7

화합물 11

화합물 13

화합물 15

화합물 14

화합물 16

화합물 12

화합물 10

화합물 17

화합물 6

화합물 5

화합물 18

본 명세서의 실시예에서 알 수 있는 바와 같이, 일부 마크로라이드는 본 명세서에 정의된 바와 같이 실질적인 항균 활성이 없다.

화학식 I의 마크로라이드에 대한 일반적인 제조 방법

당업자는 공지된 방법을 사용하여 다양한 방식으로 화학식 I의 마크로라이드를 제조할 수 있음을 인식할 것이다. 아래의 경로는 화학식 I의 화합물의 제조에 사용될 수 있는 일부 방법의 예시일 뿐이다.

생체 변환을 위해 아글리콘이 필요한 경우에는 여러 가지 방법으로 접근할 수 있다. 아지트로마이신(azithromycin)과 에리트로마이신(erythromycin)은 쉽게 구할 수 있으며 적절한 시작점으로 간주된다. 마이카로스(mycarose)/클라디노스(cladinose) 및/또는 데소사민(desosamine)은 글리코시드 절단(glycoside cleavage)과 같은 화학적 방법으로 제거된다. 간단히 말해서, 한 가지 방법에서 당은 산으로 처리하여 제거할 수 있다. 아미노당의 제거를 용이하게 하기 위해서는 먼저 디메틸아민을 산화시켜 N-옥사이드를 형성하고 이를 열분해에 의해 제거해야 한다. 생성된 5-O/3-O 당은 산성 분해에 의해 제거될 수 있다. 적합한 방법은 LeMahieu et al. 1974 및 Djokic et al. 1988에 교시되어 있다. 마지막으로, 화합물은 아미노당을 추가하는 박테리아 균주를 사용하여 생체 형질 전환된다.

적합한 아글리콘에 대한 또 다른 경로는 발효 및 적합한 차단된 돌연변이로부터 분리하는 것이다. 예를 들어, 에리트로놀라이드(erythronolide) B (3a)는 예를 들어 미국특허 제3,127,315호(예를 들어, NRRL2361, NRRL2360, NRRL2359 및 NRRL2338), Gaisser et al. 2000 (예를 들어, S. erythraea DM ΔBV ΔCIII)에 기술된 균주 및 공정과 같은 글리코실화에서 차단된 S. erythraea 균주의 발효에 의해 생성될 수 있다. 간단히 말해서, 발효는 당업계에 공지된 방법에 의해 수행된다. 일반적으로 종자 배양이 준비되고 생산 용기로 옮겨진다. 생산 단계는 4일에서 10일 사이이며 유기체는 적절한 교반과 폭기를 통해 24 ℃에서 30 ℃ 사이에서 성장한다. 그런 다음 추출 및 정제를 통해 아글리콘을 분리할 수 있다.

본 발명의 아글리콘 또는 화합물이 아미노당 또는 임의의 다른 3차 아민을 가지고 발효에 의해 제조되는 경우, 박테리아 브로쓰를 추출하고 화합물을 정제하는 것이 필요할 것이다. 일반적으로 박테리아 브로쓰는 pH 8에서 10 사이, 이상적으로는 9.5로 조정된다. 그런 다음 적절한 유기 용매로 브로쓰를 추출할 수 있다. 이 용매는 물과 혼합될 수 없으며 이상적으로는 에틸 아세테이트, 메틸 tert-부틸 에테르(MTBE) 또는 유사한 특성을 가진 용매이다. 브로쓰와 용매는 이상적으로는 일정시간 동안, 예를 들어 30 분 또는 1시간 동안 교반하여 혼합된다. 그런 다음 상을 분리하고 유기 추출물을 제거한다. 브로쓰는 이러한 방식으로 여러 번, 이상적으로는 두세 번 추출할 수 있다. 결합된 유기 추출물은 진공에서 환원될 수 있다. 그 다음 잔류물을 약산성 수성 용매에 용해하거나 현탁시킨다. 일반적으로 염화 암모늄 수용액이다. 그런 다음 에틸 아세테이트와 같은 수불 혼화성 유기 용매로 여러 번, 이상적으로는 2 또는 3회 추출한다. 생성된 수성층을 수집하고 pH를 pH 8과 10 사이, 이상적으로는 9.0으로 조정한다. 생성된 수성층은 에틸 아세테이트와 같은 수불 혼화성 유기 용매로 여러 번, 이상적으로는 2 또는 3회 추출된다. 유기 추출물을 조합하고 진공에서 환원시켜 추가 정제가 필요한 표적 화합물에서 강화된 조 추출물을 생성한다.

화합물 정제는 크로마토그래피 또는 (재)결정화에 의해 수행될 수 있으며, 필요한 방법은 당업자에게 잘 알려져 있다. 순상 실리카상에서 크로마토그래피가 필요하고 본 발명의 아글리콘 또는 화합물이 아미노당 또는 기타 3차 아민을 가지는 경우, 이동상에 염기성 개질제를 첨가하는 것이 유리하다. 예를 들어, 순상 실리카상의 크로마토그래피는 0-5% 수성 수산화 암모늄이 첨가된 용리를 위해 헥산, 에틸 아세테이트, 메탄올 시스템을 사용할 수 있다. 이상적으로는 2% 수성 수산화 암모늄이 첨가된다. 생체 변환 후, 본 발명의 사용되지 않은 아글리콘 및 화합물은 모두 적합한 용매 시스템을 사용하여 동일한 조 추출물로부터 별도로 정제될 수 있다. 추가 정제가 필요한 경우 선택적으로 분취용 HPLC(preparative HPLC)을 수행할 수 있다.

1차 또는 2차 아민을 알킬화하기 위한 환원성 아민화는 당업자에게 잘 알려져 있다. 아민은 알데히드 또는 케톤과 함께 용매에 혼합되고 환원제가 첨가된다. 나트륨 보로하이드라이드는 아민과 카보닐의 반응으로 인해 생성되는 이민(imine) 또는 헤미아미날(hemiaminal)을 환원시켜 예를 들어 알킬화 아민을 생성할 수 있다. 소듐 보로하이드라이드는 또한 존재하는 다른 카르보닐기, 예를 들어 케톤을 환원시킬 수 있다. 케톤이 또한 존재하는 경우, 최적의 조건을 찾기 위해 상이한 환원제, 용매, 온도 및 반응시간이 테스트될 필요가 있다는 것은 당업자에게 명백 할 것이지만, 소듐 시아노보로하이드라이드(sodium cyanoborohydride)와 같은 양성자화된 이민에 보다 특이적인 환원제를 사용하는 것이 바람직하다.

본 발명의 조합에 사용하기 위한 체크포인트 억제제

현재 알려진 체크포인트 억제제는 물론 아직 확인되지 않은 체크포인트 억제제와 관련하여 본 발명과 관련하여 관심의 대상이다. 따라서, 관심의 대상은 이필리무맙(ipilimumab), 트레멜리무맙(tremelimumab)과 같은 CTLA4 억제제로부터 선택되거나, 펨브롤리주맙(pembrolizumab)(MK3475), 니볼루맙(nivolumab)(MDX-1106), 피딜리주맙(pidilizumab)(CT-011), AMP-224와 같은 PD-1 억제제로부터 선택되거나, 아테졸리주맙(atezolizumab), 아벨루맙(avelumab), 두르발루맙(durvalumab), MDX-1105, 항-PD-1 (Merck, Johnson, Roche 또는 Astra의 클론 RMP 1-14)과 같은 PD-L1 억제제로부터 선택되거나, 또는 PD-L2 억제제로부터 선택되거나, IMP321과 같은LAG3 억제제로부터 선택되거나, 에노블리투주맙(enoblituzumab) 및 MGD009와 같은 B7-H3 억제제로부터 선택되거나, CMTM6에서 선택된다.

특히 관심있는 것은 이필리무맙, 펨브롤리주맙, 니볼루맙, 아테졸리주맙, 아벨루맙 및 두르발루맙으로부터 선택된 면역 체크포인트 억제제이다.

훨씬 더 특별한 관심은 PD-1의 억제제로부터 선택된 면역 체크포인트 억제제이다.

그러나 면역 체크포인트 억제제의 다른 예는 과학 및 특허 문헌에서 찾을 수 있으며 또한 본 발명의 범위 내에 있다.

정의

관사 "a", "an" 및 "the"는 관사의 문법적 대상 중 하나 또는 하나 이상 (즉, 적어도 하나)을 지칭하기 위해 본 명세서에서 사용된다. 예를 들어 "아날로그(an analogue)"는 하나의 아날로그 또는 하나 이상의 아날로그를 의미한다.

본원에 사용된 용어 "직접 항균 효과(direct antibacterial effect)"는 박테리아 rRNA 복합체에 결합함으로써 발생하는 에리트로마이신 및 유사체의 항균 활성을 지칭한다. 이 효과는 숙주 면역계 성분의 존재를 요구하지 않으므로 체외 최소 억제 농도(Minimum Inhibitory Concentration, MIC) 분석 및 디스크 억제 분석과 같은 표준 항균 분석에서 명백한다.

본원에서 사용된 용어 "실질적인 항균 활성이 없는(without substantial antibacterial activity)"은 본 발명의 화합물이 E. coli, S. salivarius, L. casei 및 B. longum에서의 항균 활성에 대해 본원의 실시예 13에 따라 시험했을 때 > 64 μg/ml의 MIC 값을 갖는다는 것을 의미하는 것으로 의도된다.

본원에 사용된 용어 "면역 자극제(immunostimulator)"는 면역계를 활성화시키는 화합물을 의미하는 것으로 의도된다.

본원에서 사용된 "면역 체크포인트 억제제는 면역 체크포인트를 표적으로한다(immune checkpoint inhibitor targets an immune checkpoint)"라는 문장은 체크포인트 신호를 차단한다는 것을 의미한다.

본원에 사용된 용어 "알킬(alkyl)"은 직쇄 알킬의 경우 예를 들어-C_nH_2n+1과 같은 수소 원자로 완전히 포화된 sp3-하이브리드화된 탄소 원자로만 구성된 임의의 직쇄 또는 분지쇄를 지칭하며, 여기서 n은 1 및 6의 범위일 수 있고 예를 들어 메틸, 에틸, 프로필, 이소프로필, n-부틸, 이소부틸, sec-부틸, tert-부틸, n-펜틸, 네오펜틸, 이소펜틸, 헥실 또는 이소헥실일 수 있다. 본원에서 사용되는 알킬은 추가로 치환될 수 있다.

본 문맥에서 용어 "헤테로알킬(heteroalkyl)"은 단독으로 또는 조합하여 사용되는 그룹-X-C-₁-₆ 알킬을 나타내며, 여기서 C₁-₆ 알킬은 상기 정의된 바와 같고 X는 O, S, NH 또는 N-알킬이다. 선형 헤테로알킬기의 예는 메톡시, 에톡시, 프로폭시, 부톡시, 펜톡시 및 헥속시이다. 분지형 헤테로알킬의 예는 이소-프로폭시, sec-부톡시, tert-부톡시, 이소-펜톡시 및 이소-헥속시이다. 사이클릭 헤테로알킬의 예는 사이클로프로필옥시, 사이클로부틸옥시, 사이클로펜틸옥시 및 사이클로헥실옥시이다. 본원에 사용된 헤테로알킬은 추가로 치환될 수 있다.

본원에 사용된 용어 "사이클로알킬(cycloalkyl)"은 화학식-C_nH_2n-1을 갖는 사이클릭/고리 구조화된 탄소 사슬을 의미하며, 여기서 n은 3-6이고, 예를 들어 사이클로프로필, 사이클로부틸, 사이클로펜틸 또는 사이클로헥실 등이다. 본 명세서에서 사용되는 사이클로알킬은 추가로 치환되거나 고리 구조에 헤테로 원자(O, S, NH 또는 N-알킬)를 함유할 수 있다.

본원에 사용된 용어 "아릴(aryl)"은 카르보사이클릭 방향족 고리 시스템을 포함하는 것으로 의도된다. 아릴은 또한 아래 열거된 카르보사이클릭 시스템의 부분적으로 수소화된 유도체를 포함하는 것으로 의도된다.

본원에서 사용되는 용어 "헤테로아릴(heteroaryl)"은 질소, 산소 및 황 중에서 선택된 하나 이상의 헤테로 원자를 함유하는 헤테로사이클릭 불포화 고리 시스템, 예컨대 푸릴, 티에닐, 피롤릴을 포함하고, 또한 하기 열거된 헤테로사이클릭 시스템의 부분 수소화된 유도체를 포함하는 것으로 의도된다 .

본원에 사용된 용어 "아릴" 및 "헤테로아릴"은 선택적으로 비치환되거나 일-, 이-또는 삼치환될 수 있는 아릴, 또는 선택적으로 비치환되거나 일-, 이-또는 삼치환될 수 있는 헤테로아릴을 지칭한다. "아릴" 및 "헤테로아릴"의 예는 페닐, 비페닐, 인데닐, 나프틸 (1-나프틸, 2-나프틸), N-하이드록시테트라졸릴, N-하이드록시트리아졸릴, N-하이드록시이미다졸릴, 안트라세닐 (1-안트라세닐, 2-안트라세닐, 3-안트라세닐), 페난트레닐, 플루오레닐, 펜탈레닐, 아줄레닐, 비페닐레닐, 티오페닐 (1-티에닐, 2-티에닐), 푸릴 (1-푸릴, 2-푸릴), 푸라닐, 티오페닐, 이속사졸릴, 이소티아졸릴 , 1,2,3-트리아졸릴, 1,2,4-트리아졸릴, 피라닐, 피리다지닐, 피라지닐, 1,2,3-트리아지닐, 1,2,4-트리아지닐, 1,3,5-트리아지닐, 1,2,3-옥사디아졸릴, 1,2,4-옥사디아졸릴, 1,2,5-옥사디아졸릴, 1,3,4-옥사디아졸릴, 1,2,3-티아디아졸릴, 1,2,4-티아디아졸릴, 1,2,5-티아디아졸릴, 1,3,4-티아디아졸릴, 테트라졸릴, 티아디아지닐, 인돌릴, 이소인돌릴, 벤조푸라닐, 벤조티오페닐 (티아나프테닐), 인돌릴, 옥사디아졸릴, 이속사졸릴, 퀴나졸리닐, 플루오레닐, 크산테닐, 이소인다닐, 벤즈하이드릴, 아크리디닐, 벤즈이속사졸릴, 퓨리닐, 퀴나졸리닐, 퀴놀리지닐, 퀴놀리닐, 이소퀴놀리닐, 퀴녹살리닐, 나프티리디닐, 프테리디닐, 아제피닐, 디아제피닐, 피롤릴 (2-피롤-2-일), 피라졸릴 (3-피라졸릴), 5-티오펜-2-일-2H-피라졸-3-일, 이미다졸릴 (1-이미다졸릴, 2-이미다졸릴, 4-이미다졸릴, 5-이미다졸릴), 트리아졸릴 (1,2,3-트리아졸-1-일, 1,2,3-트리아졸-2-일, 1,2,3-트리아졸-4-일, 1,2,4-트리아졸-3-일), 옥사졸릴 (2-옥사졸릴, 4-옥사졸릴, 5-옥사졸릴), 티아졸릴 (2-티아졸릴, 4-티아졸릴, 5-티아졸릴), 피리딜 (2-피리딜, 3-피리딜, 4-피리딜), 피리미디닐 (2-피리미디닐, 4-피리미디닐, 5-피리미디닐, 6-피리미디닐), 피라지닐, 피리다지닐 (3-피리다지닐, 4-피리다지닐, 5-피리다지닐), 이소퀴놀릴 (1-이소퀴놀릴, 3-이소퀴놀릴, 4-이소퀴놀릴, 5-이소퀴놀릴, 6-이소퀴놀릴, 7-이소퀴놀릴, 8-이소퀴놀릴), 퀴놀릴 (2-퀴놀릴, 3-퀴놀릴, 4-퀴놀릴, 5-퀴놀릴, 6-퀴놀릴, 7-퀴놀릴, 8-퀴놀릴), 벤조 [b]푸라닐 (2-벤조[b]푸라닐, 3-벤조[b]푸라닐, 4-벤조[b]푸라닐, 5-벤조[b]푸라닐, 6-벤조[b]푸라닐, 7-벤조[b]푸라닐), 2,3-디하이드로-벤조[b]푸라닐 (2-(2,3-디하이드로-벤조[b]푸라닐), 3-(2,3-디하이드로-벤조[b]푸라닐), 4-(2,3-디하이드로-벤조[b]푸라닐), 5-(2,3-디하이드로-벤조[b]푸라닐), 6-(2,3-디하이드로-벤조[b]푸라닐), 7-(2,3-디하이드로-벤조[b]푸라닐)), 벤조[b]티오페닐 (2-벤조[b]티오페닐, 3-벤조[b]티오페닐, 4-벤조[b]티오페닐, 5-벤조[b]티오페닐, 6-벤조[b]티오페닐, 7-벤조[b]티오페닐), 2,3-디하이드로-벤조[b]티오페닐 (2-(2,3-디하이드로-벤조[b]티오페닐), 3-(2,3-디하이드로-벤조[b]티오페닐), 4-(2,3-디하이드로-벤조[b]티오페닐), 5-(2,3-디하이드로-벤조[b]티오페닐), 6-(2,3-디하이드로-벤조[b]티오페닐), 7-(2,3-디하이드로-벤조[b]티오페닐)), 인돌릴 (1-인돌릴, 2-인돌릴, 3-인돌릴, 4-인돌릴, 5-인돌릴, 6-인돌릴, 7-인돌릴), 인다졸릴 (1-인다졸릴, 2-인다졸릴, 3-인다졸릴, 4-인다졸릴, 5-인다졸릴, 6-인다졸릴, 7-인다졸릴), 벤즈이미다졸릴, (1-벤즈이미다졸릴, 2-벤즈이미다졸릴, 4-벤즈이미다졸릴, 5-벤즈이미다졸릴, 6-벤즈이미다졸릴, 7-벤즈이미다졸릴, 8-벤즈이미다졸릴), 벤족사졸릴 (1-벤족사졸릴, 2-벤족사졸릴), 벤조티아졸릴 (1-벤조티아졸릴, 2-벤조티아졸릴, 4-벤조티아졸릴, 5-벤조티아졸릴, 6-벤조티아졸릴, 7-벤조티아졸릴), 카르바졸릴 (1-카르바졸릴, 2-카르바졸릴, 3-카르바졸릴, 4-카르바졸릴)을 포함하나, 이에 한정되는 것은 아니다. 부분적으로 수소화된 유도체의 비제한적인 예는 1,2,3,4-테트라하이드로나프틸, 1,4-디하이드로나프틸, 피롤리닐, 피라졸리닐, 인돌리닐, 옥사졸리디닐, 옥사졸리닐, 옥사제피닐 등이다.

본 발명의 화합물의 약제학적으로 허용가능한 염은 약제학적으로 허용가능한 무기 또는 유기산 또는 염기뿐만 아니라 4차 암모늄 산부가염으로부터 형성된 통상적인 염을 포함한다. 적합한 산 염의 보다 구체적인 예는 염산, 브롬화수소, 황산, 인산, 질산, 과염소산, 푸마르산, 아세트산, 프로피온산, 숙신산, 글리콜산, 포름산, 젖산, 말레산, 타르타르산, 구연산, 팔모산, 말론산, 하이드록시말레산, 페닐아세트산, 글루탐산, 벤조산, 살리실산, 톨루엔설폰산, 메탄설폰산, 나프탈렌-2-설 폰산, 벤젠설폰산 하이드록시나프토산, 하이드로요오드산, 말산, 스테로산, 탄닌산 등을 포함한다. 옥살산과 같은 다른 산은 그 자체로는 약제학적으로 허용되지는 않지만, 본 발명의 화합물 및 약제학적으로 허용가능한 염을 얻는데 중간체로서 유용한 염의 제조에 유용할 수 있다. 적합한 염기성 염의 보다 구체적인 예는 나트륨, 리튬, 칼륨, 마그네슘, 알루미늄, 칼슘, 아연, N,N'-디벤질에틸렌디아민, 클로로 프로카인, 콜린, 디에탄올 아민, 에틸렌디아민, N-메틸글루카민 및 프로카인 염을 포함한다.

본 발명은 다음의 비제한적인 구현예에 의해 추가로 설명된다:

1. 마크로라이드와 면역 체크포인트 억제제의 조합물.

2. 마크로라이드가 실질적인 항균 활성이 없는, 구현예 1에 따른 조합물.

3. 실시예 13에 기재된 항균 활성 시험에 따라 시험했을 때 마크로라이드가 > 64μg/ml의 MIC 값을 갖는, 구현예 2에 따른 조합물

4. 마크로라이드가 화학식 I 또는 또는 약제학적으로 허용가능한 염을 갖는, 선행하는 구현예 중 어느 하나에 따른 마크로라이드 및 면역 체크포인트 억제제의 조합물

화학식 (I)

여기서 X는 C=O, -NR₃CH₂-, -CH₂NR₃-, -NR₃(C=O)-, -(C=O)NR₃-, C=NOH 및-CH(OH)-로부터 선택되고, R₂는 화학식 II 또는 화학식 III의 당이고:

화학식 (II) 화학식 (III)

여기서 헤테로원자는 O, N, P 및 S로부터 선택되고,

여기서 R₃은 H 및 Me로부터 선택되며,

여기서 R₄는 H 및 Me로부터 선택되고,

여기서 R_a는 H 및 CR₂₁R₂₂R₂₃로부터 선택되며,

여기서 R₂₃은 화학식 II에서 R₄와 함께, R₄는 화학식 II에서 R₅와 함께, R₅는 화학식 II에서 R₇과 함께, R₇은 화학식 II에서 R₉와 함께 독립적으로 결합을 나타내기 위해 결합되어 각 그룹이 연결된 탄소 원자 사이에 이중 결합을 남길 수 있으며,

여기서 R₁₃은 H, OH 및 OCH₃로부터 선택되고,

여기서 R₁₄는 H 및 OH로부터 선택되며,

5. 마크로라이드가 하기 또는 약제학적으로 허용가능한 염으로부터 선택되는, 선행하는 구현예들 중 어느 하나에 따른 조합물:

6. 마크로라이드가 하기 또는 약제학적으로 허용가능한 염인, 선행하는 구현예들 중 어느 하나에 따른 조합물.

7. 면역 체크포인트 억제제가 세포독성 T-림프구 관련 항원 4(cytotoxic T-lymphocyte associated antigen 4, CTLA4, CD152로도 알려짐), 프로그램된 세포 사멸 단백질 1 (programmed cell death protein 1, PD-1, CD279로도 알려짐) PD-1 리간드 1 (PD-1 ligand 1, PD-L1, B7-H1 및 CD274로도 알려짐), PD-1 리간드 2 (PD-1 ligand 2, PD-L2, B7-DC 및 CD-273으로도 알려짐), T-세포 막 단백질 3 (T-cell membrane protein 3, TIM3, HAVcr2로도 알려짐), 아데노신 A2a 수용체 (adenosine A2a receptor, A2aR), 림프구 활성화 유전자 3 (lymphocyte activation gene 3, LAG3, CD 223으로도 알려짐), B7-H3 (CD276으로도 알려짐), B7-H4 (B7-S1, B7X 및 VCTN1으로도 알려짐), 2B4 (CD244로도 알려짐), B 및 T 림프구 감쇠기 (B and T lymphocyte attenuator, BTLA, CD272라고도 알려짐) 및 CMTM6으로부터 선택되는 면역 체크포인트를 표적으로 하는, 0선행하는 구현예들 중 어느 하나에 따른 조합물.

8. 면역 체크포인트 억제제가 CTLA4 억제제, PD-1 억제제, PD-L1 억제제, PD-L2 억제제, TIM3 억제제, A2aR 억제제, LAG3 억제제, B7-H3 억제제, B7-H4 억제제, 2B4 억제제, BTLA 억제제 및 CMTM6 억제제로부터 선택되는, 선행하는 구현예들 중 어느 하나에 따른 조합물.

9. 마크로라이드가 하기 또는 이의 약제학적으로 허용가능한 염이고, 면역 체크포인트 억제제가 PD-1 억제제인, 구현예 8에 따른 조합물.

10. 면역 체크포인트 억제제가 이필리무맙(ipilimumab), 트레멜리무맙(tremelimumab), 펨브롤리주맙(pembrolizumab), 니볼루맙(nivolumab), 피딜리주맙(pidilizumab), AMP-224, 아테졸리주맙(atezolizumab), 아벨루맙(avelumab), 두르발루맙(durvalumab), MDX-1105, IMP321, 에노블리투주맙(enoblituzumab) 및 MGD009로부터 선택되는, 선행하는 구현예들 중 어느 하나에 따른 조합물.

11. 면역 체크포인트 억제제가 이필리무맙, 펨브롤리주맙, 니볼루맙, 아테졸리주맙, 아벨루맙 및 두르발맙으로부터 선택되는, 구현예 10에 따른 조합물.

12. 하나의 조성물이 마크로라이드 및 하나 이상의 약제학적으로 허용되는 부형제를 포함하고 다른 조성물은 면역 체크포인트 억제제 및 하나 이상의 약제학적으로 허용되는 부형제를 포함하는 2개의 약제학적 조성물의 형태인, 선행하는 구현예 중 어느 하나에 따른 조합물.

13. 2개의 약제학적 조성물이 동일하거나 상이한 투여 경로를 위해 디자인된, 구현예 12에 따른 조합물.

14. 의학에 사용하기 위한 구현예 1-13 중 어느 하나에서 정의된 조합물.

15. 면역자극제로서 사용하기 위한 구현예 14에 따른 조합물.

16. 암 치료에 사용하기 위한 구현예 14-15 중 어느 하나에 따른 조합물.

17. 암이 부신암, 항문암, 담관암, 방광암, 골암, 뇌/CNS 종양, 유방암, 캐슬맨병(Castleman Disease), 자궁 경부암, 결장/직장암, 자궁내막암, 식도암, 안암, 담낭암, 위장관 유암종, 위장관 기질 종양(Gastrointestinal Stromal Tumor, GIST), 임신성 융모성 질환(Gestational Trophoblastic Disease), 호지킨병, 카포시 육종(Kaposi Sarcoma), 신장암, 후두 및 하인두암(Laryngeal and Hypopharyngeal Cancer), 급성 골수성 백혈병, 만성 림프구성 백혈병, 급성 림프구성 백혈병, 만성 골수성 백혈병, 만성 골수성 백혈병, 간암, 비소세포 폐암, 소세포 폐암, 폐암, 폐암, 폐 카르시노이드 종양(Lung Carcinoid Tumor), 림프종, 악성 중피종(Malignant Mesothelioma), 다발성 골수종, 골수 이형성 증후군, 비강 및 부비동 암, 비인두암, 신경 모세포종, 비-호지킨 림프종, 구강 및 구인두암, 골육종, 난소암, 췌장암, 음경암, 뇌하수체 종양, 타액선 암, 망막 모세포종, 전립선암, 망막 모세포종, 횡문근육종, 침샘암, 기저 및 편평 세포 피부암, 흑색종, 메르켈 세포 피부암, 소장암, 위암, 고환암, 흉선암, 갑상선암, 자궁육종, 질암, 외음부암, 발덴스트롬 마크로글로불린혈증(Waldenstrom Macroglobulinemia) 및 빌름스 종양(Wilms Tumor)에서 선택되는, 구현예 16에 따른 조합물.

18. 바이러스성 질병의 치료에 사용하기 위한 구현예 14-15 중 어느 하나에 따른 조합물.

19. 바이러스 질환이 HIV, 아데노바이러스, 알파바이러스, 아르보바이러스, 보르나병(Borna Disease), 버냐바이러스(Bunyavirus), 칼리시바이러스(Calicivirus), Condyloma Acuminata, 코로나바이러스(Coronavirus), 콕삭키바이러스(Coxsackievirus), 거대세포바이러스(Cytomegalovirus), 뎅기열 바이러스, 전염성 심상성 농창(Contageous Ecthyma), 엡스타인-바(Epstein-Barr virus), 감염홍반(Erythema Infectiosum), 한타바이러스(Hantavirus), 바이러스성 출혈열, 바이러스성 간염, 단순 포진 바이러스, 바이러스성 간염 전염성 단핵구증, 인플루엔자, 라사열 바이러스(Lassa Fever virus), 홍역, 볼거리, 전염성 연속종(Molluscum Contagiosum), 파라믹소바이러스(Paramyxovirus), 파파타치열(Phlebotomus fever), 폴리오마-바이러스, 리프트 밸리 열, 풍진, 슬로우병 바이러스(Slow Disease Virus), 두창(Smallpox), 아급성 경화성 범뇌염(Subacute Sclerosing Panencephalitis), 종양 바이러스 감염, 웨스트 나일 바이러스, 황색 발열 바이러스, 광견병 바이러스(Rabies Virus) 및 호흡기 세포 융합 바이러스에서 선택되는, 구현예 18에 따른 조합물.

20. 구현예 1-13 중 어느 하나에 따른 조합물 및 하나 이상의 약제학적으로 허용가능한 부형제를 포함하는 약학적 조성물.

21. 구현예 14-19 중 어느 하나에 따른 조합물 및 하나 이상의 약제학적으로 허용가능한 부형제를 포함하는 약학적 조성물.

22. 단일 패키지에 다음을 포함하는 암 치료 또는 예방용 약학적 키트:

i) 마크로라이드를 포함하는 제1 조성물;

ii) 면역 체크포인트 억제제를 포함하는 제2 조성물; 및

iii) 사용 지침.

23. 마크로라이드가 하기 또는 이의 약제학적으로 허용가능한 염으로부터 선택되는, 구현예 22에 따른 약학적 키트:

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24. 마크로라이드가 하기 또는 또는 이의 약제학적으로 허용가능한 염으로부터 선택되는, 구현예 21에 따른 약학적 키트.

25. 암을 치료 또는 예방하는 방법으로서, 상기 방법은 이를 필요로 하는 인간 또는 동물 대상체에게 치료적 유효량의 구현예 1-13 중 어느 하나에 따른 조합 물을 투여하는 것을 포함하는 방법.

실시예

물질(Materials)

달리 명시되지 않는 한, 아래 실시예에서 사용된 모든 시약은 상업적으로 얻은 것이다. 아지트로마이신 B(Azithromycin B)의 공급업체의 예로는 Santa Cruz Biotechnology (미국 텍사스) 및 Toronto Research Chemicals (캐나다 토론토)가 있다.

항체(Antibodies)

Anti-CD80 V450, anti-CD69 PE, anti HLA-DR APC-R700, anti CD127-APC 및 anti-Anti-HLA-A, B, C FITC는 BD Biosciences에서 구입하였다. T 세포 증식 분석을 위한 Celltrace violet은 Invitrogen에서 구입하였다. ELISA 항체는 BD Biosciences에서 구입하였다.

배지(Media)

25mM HEPES, L-글루타민, 피루브산나트륨, 10% 소태아 혈청(Gibco), 100μg/mL 페니실린 및 100μg/mL 스트렙토 마이신이 보충된 RPMI-1640 (Invitrogen)

일반 생물학 방법(General Biology Methods)

면역 자극에 대한 본 발명의 화합물의 효과는 하기 기재된 방법 중 하나 이상을 사용하여 시험될 수 있다:

일반 화합물 방법(General Compound Method)

용액의 화합물 분석 용해도 및 안정성

발효 브로쓰 및 화합물 분석(Analysis of fermentation broths and compounds)

아래와 같이 얻은 발효액의 분취량을 동량의 에틸 아세테이트로 30분 동안 격렬하게 흔들고 원심 분리로 분리하거나 이미 분리된 화합물을 메탄올:물 (9:1, 0.1mg/ml)에 용해시킨 다음, 원심 분리로 분리하였다. 상청액을 LC-MS 및 LC-MS/MS로 분석하고 40℃에서 가열된 Luna HPLC 컬럼 (250 Х 4.6 mm; Phenomenex, Macclesfield, UK), 4차 펌프, 자동 샘플러, 컬럼 오븐 및 Bruker Esquire 이온 트랩 MS에 연결된 다이오드 어레이 검출기로 구성된 Agilent 1100 HPLC 시스템을 사용하여 염기-비활성화 Luna C18 역상 실리카 (5 마이크론 입자 크기))에서 크로마토그래피를 수행하였다.

이동상 A = 물 중 0.1% 포름산

이동상 B = 아세토니트릴 중 0.1% 포름산

구배(Gradient): T= 0 min, B = 50%; T= 4.5 min, B = 50%; T = 7 min, B = 100%; T= 10.5 min, B = 100%; T = 10.75 min, B = 50%; T = 13 min, B = 50%.

화합물은 LC-MS 및 LC-MS/MS로 확인하고 내부 표준에 대해 LC-MS/MS로 정량화하였다.

유세포 분석에 의한 마커 발현 분석(Analysis of marker expression by flow cytometry)

인간 말초 혈액 단핵 세포(PBMC)는 Ficoll-Paque 밀도 원심 분리로 건강한 기증자로부터 정제되었다. 세포를 25mM HEPES, L-글루타민, 소듐 피루베이트(Sigma), 10% 소태아 혈청, 100μg/mL 페니실린 및 100μg/mL 스트렙토마이신(Hyclone)이 보충된 완전한 RPMI-1640 배지 (Invitrogen)에서 37 ℃, 5% CO₂에서 24-72시간 동안 배양하고, 화합물 1과 2의 농도를 증가시키면서 자극을 주었다. 그런 다음 세포를 PBS에서 세척하고 세포 표면 마커 (BD Pharmingen)에 특이적인 단일클론 항체로 염색하고 BD FACS Canto II 유세포 분석기를 사용하여 유세포 분석으로 분석하였다. 모든 샘플은 중복 테스트되었다.

거대 세포 바이러스 배양(Cytomegalovirus (CMV) cultures)

인간 말초 혈액 단핵 세포(PBMC)는 Ficoll-Paque 밀도 원심 분리를 통해 건강한 CMV 양성 공여자로부터 정제되었다. PBMC를 PBS 중 5 μM celltrace violet (Invitrogen)으로 15분 동안 표지한 다음 완전한 세포 배양 배지로 세척하였다. 표지된 PBMC는 L-글루타민, 소듐 피루베이트 (Sigma), 10% 소태아 혈청, 100μg/mL 페니실린 및 100μg/mL 스트렙토마이신(Hyclone)이 보충된 AIM-V 배지 (Invitrogen)에서 CMV pp65 단백질 (1 ㎍ 펩타이드/ml, JPT)을 포함하는 펩타이드 라이브러리의 존재하에 37 ℃, 5% CO₂에서 6-8일 동안 배양하였다. 세포 증식은 BD FACS Canto II 유세포 분석기를 사용하여 유세포 분석으로 평가되었다.

ELISA

완전한 RPMI 배지, 37℃, 5% CO₂에서 2.5 μM의 화합물 1 및 100 U/mL IL-2 (Miltenyi Biotechnologies)와 함께 48시간 및 7일 배양한 후 표준 샌드위치 ELISA (BD Biosciences의 모든 항체)로 상등액 IL-10을 측정하였다.

TLR2 분석(TLR2 assay)

샘플 및 대조군은 표준 분석 조건을 사용하여 Invivogen에서 세포 리포터 분석을 사용하여 재조합 HEK-293-TLR 세포주에서 이중으로 테스트되었다. 이들 세포주는 기능적으로 인간 TLR2 단백질과 분비된 알칼리성 포스파타제(secreted alkaline phosphatase, SEAP)인 리포터 유전자를 과발현한다. 이 리포터 유전자의 생산은 NFkB 유도성 프로모터에 의해 유도된다. TLR 리포터 세포주 활성화 결과는 광학 밀도 값(OD)으로 제공된다.

각 시험 물품 20 μl를 사용하여 200μl의 최종 반응 부피에서 hTLR2 리포터 세포주를 자극하였다. 샘플은 20uM 및 10uM에서 최소 두 가지 농도로 이중으로 테스트되었다.

세포 투과성 평가(양방향)(Assessment of cell permeability (bidirectional))

10μM 테스트 제품을 Caco-2 세포 단층의 정점(apical, A) 표면(37℃에서 0.3% DMSO 및 5μM LY가 있는 HBSS 완충액에서)에 첨가하고 90분 배양 후 기저 측(basolateral, B) 구획으로의 화합물 침투를 측정하였다. 이것은 또한 활성 수송을 조사하기 위해 역방향(기저 측에서 정점으로)으로 수행되었다. LC-MS/MS는 테스트 및 표준 대조군 화합물의 수준을 정량화하는 데 사용된다. 유출 비율(Efflux ratio)은 B 대 A 투자율(B to A permeability)을 A 대 B 투자율(A to B permeability)로 나누어 계산하였다.

약물 투과성(Drug permeability): Papp = (VA/(Area Х time)) Х ([drug] accepter/(([drug] initial, donor) ХDilution Factor)

대사 안정성 평가(마이크로솜 안정성 분석)(Assessment of metabolic stability (microsome stability assay))

마이크로솜의 대사율은 다음과 같이 테스트되었다:

인간 간 마이크로솜을 완충액 C (0.1M 인산칼륨 완충액, 1.0mM EDTA, pH 7.4)로 2.5mg/mL의 농도로 희석하였다. 30 μL의 1.5 μM 화합물 스파이킹 용액(spiking solution)을 웰에 추가하여 (1.5 μL의 500 μM 스파이킹 용액 (10 μL의 10 mM DMSO 스톡 용액을 190 μL ACN에 넣어 최종 테스트 농도 1uM을 생성) 및 18.75μL의 20 mg/mL 간 마이크로솜을 479.75 μL의 버퍼 C에 추가하여 마이크로솜 안정성 연구를 수행하였다. 모든 샘플은 37℃에서 약 15분 동안 사전 배양되었다. 그 후, 15μL의 NADPH 용액(6mM)을 부드럽게 혼합하면서 첨가하여 반응을 시작하였다. 분취량(40 μL)을 0, 5, 15, 30 및 45분에 제거하고 내부 표준(135 μL)을 함유하는 ACN으로 급냉시켰다. 단백질을 원심 분리 (4000 rpm, 15분)로 제거하고 샘플 플레이트를 LC-MS/MS로 화합물 농도를 분석하였다. 그런 다음 분석 물질의 농도를 원래 존재하는 양과 비교하여 표준 방법으로 반감기를 계산하였다.

실시예

실시예 1-화합물 1의 제조(ISC397)

아지트로마이신 아글리콘(Azithromycin Aglycone, Az-AG, 1a)의 제조

아지트로마이신 아글리콘(1a)은 문헌에 설명된 방법을 사용하여 생성되었다 (Djokic et al. 1988). 간단히 말해서, 아지트로마이신은 3-O 및 5-O 당의 산성 제거에 의해 아지트로마이신 아글리콘으로 전환된다. 5-O 아미노당은 먼저 산화되고 열분해되어 절단을 촉진한다.

에리트로마이신 아글리콘(에리트로놀라이드(erythronolides))을 글리코실화할 수 있는 생체 변환 균주의 생성:

S. erythraea 18A1 (pAES52)의 생성

angAI, angAII, angCVI, ang-orf14, angMIII, angB, angMI 및 angMII와 actII-ORF4 pactI/III 발현 시스템 (Rowe et al. 1998)을 포함하는 발현 플라스미드 인 pAES52를 다음과 같이 생성하였다.

앙골라마이신 당(angolamycin sugar) 생합성 유전자는 American Type Culture Collection (Manassas, Virginia, USA)에서 얻은 S. eurythermus ATCC23956 균주의 cosmid 라이브러리에서 증폭되었다. 생합성 유전자 클러스터 서열은 EU038272, EU220288 및 EU232693으로 기탁되었다(Schell et al . 2008).

생합성 유전자 카세트는 앞서 설명한 바와 같이 벡터 pSG144에 조립되었고 (Schell et al. 2008, ESI), 당 생합성에 필요한 8개가 얻어질 때까지 순차적인 유전자를 추가하여 플라스미드 pAES52를 생성하였다.

pAES52는 균주 18A1로 형질 전환되었다(WO2005054265).

pAES52의 S. erythraea 18A1로의 형질전환

pAES52는 표준 방법을 사용하여 원형질체에 의해 S. erythraea 18A1로 형질 전환되었다(Kieser et al. 2000, Gaisser et al. 1997). 결과로 생성된 균주는 ISOM-4522로 지정되었으며, 이는 2017년 1월 24일 NCIMB에 수탁번호 NCIMB 42718로 기탁되었다.

S. erythraea SGT2 (pAES54)의 생성

angAI, angAII, angCVI, ang-orf14, angMIII, angB, angMI 및 angMII와 actII-ORF4 pactI/III 발현 시스템 (Rowe et al., 1998)을 포함하는 발현 플라스미드인 pAES54는 다음과 같이 생성되었다.

앙골로마이신 당 생합성 유전자는 American Type Culture Collection (Manassas, Virginia, USA)에서 얻은 S. eurythermus ATCC23956 균주의 cosmid 라이브러리에서 증폭되었다. 생합성 유전자 클러스터 서열은 EU038272, EU220288 및 EU232693으로 기탁되었다(Schell et al . 2008)

생합성 유전자 카세트는 앞서 설명한 바와 같이 벡터 pSG144에 조립되었고(Schell et al. 2008, ESI), 당 생합성에 필요한 8개가 얻어질 때까지 순차적인 유전자를 추가하여 플라스미드 pAES52를 생성하였다.

플라스미드 pAES54는 actII-ORF4 pactI/III 프로모터 시스템을 포함하는 11,541 bp SpeI-NheI 단편을 연결하여 만들어졌고, 8 ang 유전자는 아프라마이신(apramycin) 내성 유전자, oriC, oriT를 포함하는 pGP9의 5,087 bp XbaI-SpeI 단편과 함께 pAES52에서 방선균류(streptomycetes) 내의 전달 및 통합 변환을 위해 attP 사이트와의 phiBT1 인티그레이즈(integrase)를 위해 절제되었다(호환 가능한 NheI 및 XbaI 사이트는 리게이션(ligation) 중에 제거되었다.)

pAES54는 S. erythraea SGT2로 형질 전환되었다(Gaisser et al. 2000, WO2005054265).

pAES54의 S. erythraea SGT2로의 형질 전환

pAES54는 표준 방법을 사용하여 S. erythraea SGT2로 컨쥬게이션에 의해 전달되었다. 간단히 말해서, E. coli ET12567 pUZ8002를 표준 절차를 통해 pAES54로 형질 전환하고 아프라마이신(Apramycin, 50 μg/mL), 카나마이신(Kanamycin, 50 μg/mL) 및 클로람페니콜(Chloramphenicol, 33 μg/mL) 선택을 사용하여 2TY에 스프레딩하였다. 이 플레이트는 37℃에서 밤새 배양되었다. 이로부터의 콜로니를 사용하여 후기 로그 단계에 도달할 때까지 37℃에서 배양된 신선한 액체 2TY 배양물을 설정하여 사용하였다. 세포를 수확하고, 세척하고, S. erythraea SGT2의 포자와 혼합하고, R6 플레이트에 펴고 28℃에서 배양하였다. 24시간 후, 이들 플레이트를 3mg의 아프라마이신과 2.5mg의 날리딕산(nalidixic acid)을 함유하는 1mL의 멸균 수로 덮고 추가로 5-7일 동안 28℃에서 배양하였다. 이 플레이트상의 엑컨쥬겐트(Exconjugants)를 아프라마이신(100μg/mL)을 함유하는 R6의 새로운 플레이트로 옮겼다.

대체 생체 변환 균주

대안으로, BIOT-2945 (Schell et al. 2008)는 에리트로놀라이드에 앙골로사민을 추가하기 때문에 생체 변환 균주로 사용될 수 있다.

화합물 1을 제조하기 위한 아지트로마이신 아글리콘의 생체 변환

SV2 배지(40 mL) 및 8 uL 티오스트렙톤(25 mg/mL)을 함유하는 삼각 플라스크(250 mL)에 0.2 mL의 균주 ISOM-4522의 포자 스톡을 접종하고 30℃에서 배양하고 300 rpm에서 2.5 cm 스로(throw)로 48시간 동안 교반하였다.

SV2 배지:

EryPP 배지(7 mL)가 들어 있는 멸균 번지 팔콘 튜브(bunged falcon tubes, 50 mL)를 준비하고 항생제 없이 종자 플라스크(팔콘 튜브 당 0.5 mL)의 배양물로 접종하였다. 팔콘을 30℃에서 배양하고 300 rpm에서 2.5 cm 스로(throw)로 24시간 동안 교반하였다.

ERYPP 배지:

24시간 후, 아지트로마이신 아글리콘(DMSO 중 0.5mM, 50uL)을 각 팔콘 튜브에 첨가하고, 추가 6일 동안 2.5cm 스로(throw)로 300rpm에서 배양을 계속하였다.

화합물 1의 분리

전체 브로쓰를 pH 9.5로 조정하고 1 부피의 에틸 아세테이트로 2회 추출하였다. 유기층은 원심 분리(3,500rpm, 25분) 후 아스피레이션(aspiration)에 의해 수집되었다. 유기층을 합하고 진공에서 환원시켜 화합물 1을 함유하는 갈색 검(gum)d으로 나타내게 하였다. 이 추출물을 에틸 아세테이트(200ml)와 수성 염화 암모늄 (50% 농축 용액 20ml) 사이에서 분배하였다. 분리 후 유기층을 추가 부피(200 ml)의 염화 암모늄 수용액으로 추출하였다. 결합된 수성층을 수성 수산화나트륨으로 pH 9.0으로 조정한 다음 1 부피 당량의 에틸 아세테이트로 2회 추출하였다. 유기층을 합하고 진공에서 갈색 고체로 환원시켰다. 이 추출물을 실리카 컬럼에 적용하고 다음을 사용하여 단계적으로 (500ml 로트(lots)에서) 용출하였다:

화합물 1은 주로 F 및 G에 존재하였다. 이러한 용매를 조합하고 진공에서 환원하여 화합물 1을 포함하는 갈색 고체를 생성하였다. 그런 다음 이 물질을 분취용 HPLC (C18 Gemini NX 컬럼, 20mM 암모늄 아세테이트 및 아세토니트릴을 용매로 사용하는 Phenomenex)로 정제하였다. 표적 화합물을 함유하는 분획을 모아서 건조시킨 다음 C18 SPE 카트리지에서 탈염시켰다.

실시예 2-화합물 3의 제조 (공지의 화합물-Schell et al., 2008의 화합물 17에 해당됨)

에리트로놀라이드 B(Erythronolide B, 3a)는 예를 들어 미국특허 제3,127,315호에 기술된 균주 및 공정과 같은 글리코실화에서 차단된 S. erythraea 균주의 발효에 의해 생성될 수 있다(예를 들어, NRRL2361, 2360, 2359 및 2338), Gaisser et al 2000 (예를 들어, S.erythraea DM ΔBV ΔCIII.

이어서 에리트로놀라이드 B (3a)를 3-하이드록실(예를 들어, NCIMB 42718)에 안골로사민을 첨가할 수 있는 생체 변환 균주에 공급하고 화합물 3을 표준 방법에 의해 발효 브로쓰로부터 분리하였다.

실시예 3-화합물 4의 제조

아지트로마이신 B 아글리콘 (4a)은 아지트로마이신 A와 동일한 방식으로 아지트로마이신 B의 당을 가수 분해하여 생성되었다.

그런 다음 아지트로마이신 B 아글리콘(4a)을 3-하이드록실(예를 들어, NCIMB 42718)에 앙골로사민을 첨가할 수 있는 생체 변환 균주에 공급하고 표준 방법을 사용하여 발효 브로쓰에서 분리하였다.

실시예 4-화합물 5의 제조

사이클로부틸 에리트로놀라이드 B (5a)는 WO98/01571에 기재된 방법을 사용하여 생성되었다. 간단히 말해서, S.erythraea DM ΔBV ΔCIII (Gaisser et al. 2000)는 pIG1 (Long et al., 2002, WO98/01571)로 형질 전환되었다. 사이클로부텐 카복실산을 첨가하여 생성된 균주를 발효시키면 사이클로부틸 에리트로놀라이드 B (5a)가 생성되었다. 이것은 표준 방법을 사용하여 발효 브로쓰에서 분리되었다. 그런 다음 사이클로부틸 에리트로놀라이드 B (5a)를 표준 방법을 사용하여 발효 브로쓰에서 분리된 3-하이드록실(예를 들어, NCIMB 42718) 및 화합물 5에 앙골로사민을 첨가할 수 있는 생체 변환 균주에 공급하였다.

실시예 5-화합물 6의 제조

ATCC 31771의 발효물에 첨가하고 표준 방법을 사용하여 발효 브로쓰에서 화합물 6을 분리함으로써 화합물 3의 아미노당(실시예 2 참조)에서 메틸기를 제거하였다.

실시예 6-화합물 7의 제조

화합물 3을 용매 중 나트륨 보로하이드라이드로 처리하였다. 표준 반응 후 화합물 7을 표준 방법으로 정제하였다.

실시예 7-화합물 8의 제조

14-데스메틸 에리트로놀라이드 B (8a)는 WO2000/00618에 기재된 방법을 사용하여 생성되었다. 간단히 말해서, S.erythraea DM ΔBV ΔCIII (Gaisser et al. 2000)는 pPFL43으로 형질 전환되었다. 생성된 균주를 전형적인 방법을 사용하여 발효시키고 화합물 8a를 크로마토그래피를 사용하여 분리하였다.

14-데스메틸 에리트로놀라이드 B (8a)를 3-하이드록실(예를 들어, NCIMB 42718)에 앙골로사민을 첨가할 수 있는 생체 변환 균주에 공급하고 표준 방법을 사용하여 발효 브로쓰에서 분리하였다.

실시예 8-화합물 9의 제조

14-하이드록시 앙골로사민 에리트로놀라이드 B (9)는 화합물 3 (실시예 2 참조)을 하이드록실기를 추가하는 S. rochei ATCC 21250의 발효물에 공급하여 생성되었다. 이어서 화합물 9를 표준 방법을 사용하여 발효 브로쓰로부터 분리하였다.

실시예 9-화합물 10의 제조

화합물 6 (6.0mg, 0.01mmol)을 디클로로메탄(1mL)에 용해시키고 아세트알데히드(1.0μL, 0.02mmol)를 첨가하였다. 반응물을 실온에서 교반하고 소듐 트리아 세톡시보로하이드라이드(2.1mg, 0.01mmol)를 첨가하였다. 반응물을 30분 동안 교반한 다음 농축된 수성 중탄산나트륨(25 mL)을 첨가하여 급냉시켰다. 수성 추출물을 에틸 아세테이트(3 x 25 mL)로 추출하였다. 유기 추출물을 합하고 농축된 염수 용액으로 세척하고 용매를 진공에서 제거하였다. 이어서 표적 화합물 10을 분취용 HPLC로 정제하였다.

실시예 10-화합물 12의 제조

화합물 3 (실시예 2 참조)은 ATCC 31771의 발효물에 첨가함으로써 아미노당에서 두 메틸기를 제거하기 위해 생체 형질 전환되고, 화합물 11은 표준 방법을 사용하여 발효 브로쓰로부터 분리되었다.

화합물 11을 THF에 용해시키고 아세트알데히드를 첨가한다. 반응물을 실온에서 교반하고 소듐 시아노보로하이드라이드를 첨가한다. 반응물을 추가로 교반하고 수성 중탄산나트륨을 첨가하여 반응을 급냉시킨다. 수성 추출물을 EtOAc (3 x vol 당량)로 추출한다. 유기 추출물을 결합하고 염수로 세척하고 용매를 진공에서 제거한다. 이어서 표적 화합물 12를 표준 방법을 사용하여 정제한다.

실시예 11-화합물 14의 제조

화합물 1 (실시예 1 참조)은 ATCC 31771의 발효물에 첨가하여 아미노당에서 메틸기를 제거하ㄱ 위해 생체 형질 전환되고 표준 방법을 사용하여 발효 브로쓰에서 화합물 13을 분리한다.

화합물 13을 THF에 용해시키고 아세트알데히드를 첨가한다. 반응물을 실온에서 교반하고 소듐 시아노보로하이드라이드를 첨가한다. 반응물을 추가로 교반하고 수성 중탄산나트륨을 첨가하여 반응을 급냉한다. 수성 추출물을 EtOAc (3 x vol 당량)로 추출한다. 유기 추출물을 결합하고 염수로 세척하고 용매를 진공에서 제거한다. 이어서 표적 화합물 14를 표준 방법을 사용하여 정제한다.

실시예 12-화합물 16의 제조

화합물 1 (실시예 1 참조)은 ATCC 31771의 발효물에 첨가함으로써 아미노당에서 두 메틸기를 제거하기 위해 생체 형질 전환되고 화합물 15는 표준 방법을 사용하여 발효 브로쓰로부터 분리된다.

화합물 15를 THF에 용해시키고 아세트알데히드를 첨가한다. 반응물을 실온에서 교반하고 소듐 시아노보로하이드라이드를 첨가한다. 반응물을 추가로 교반하고 수성 중탄산나트륨을 첨가하여 반응을 급냉한다. 수성 추출물을 EtOAc (3 x vol 당량)로 추출한다. 유기 추출물을 결합하고 염수로 세척하고 용매를 진공에서 제거한다. 이어서 표적 화합물 16을 표준 방법을 사용하여 정제한다.

실시예 13-직접적인 항균 활성의 평가

일반적인 장내 세균(Escherichia coli, Streptococcus salivarius subsp. salivarius, Lactobacillus casei 및 Bifidobacterium longum subsp. infantis) 중 4개의 균주 및 일반적인 포유류 피부 분리균 Micrococcus luteus에 대한 마크로라이드 화합물의 생체 활성을 최소 억제 농도(MIC) 분석을 사용하여 평가하였다. . 박테리아 균주는 NCIMB에서 얻은 M. luteus를 제외하고 DSMZ (Brunswick, Germany)에서 구입하여 -80 ℃의 20% 글리세롤에 보관하였다.

양성 대조군(아지트로마이신 및 에리트로마이신) 및 시험 화합물 1 및 2의 스톡 용액(100% DMSO)을 브로쓰에서 256 μg/ml의 작업 스톡 농도로 희석하였다(최종 분석 시험 농도 범위 128 μg/ml ~ 0.00391 μg/ml). 다른 모든 화합물의 스톡 용액을 브로쓰에서 128μg/ml의 작업 스톡 농도로 희석하였다(최종 분석 테스트 농도 범위 64 μg/ml ~ 0.00195 μg/ml).

박테리아 균주는 37℃에서 호기성으로 배양된 M. luteus를 제외하고는 37℃의 혐기성 챔버에서 적절한 브로쓰에서 배양되었다. 18시간 배양물을 브로쓰에서 0.1의 OD₅₉₅로 희석한 다음 추가로 1:10으로 희석하였다. 96-웰 플레이트에서, 200 μl의 테스트 화합물의 작업 스톡을 웰 1로 옮기고 브로쓰에서 연속 희석(1:2)하였다. 100 μl 박테리아 현탁액을 각 웰에 분주하고 완전히 혼합하였다. 적절한 무균 대조군을 포함하고 플레이트를 혐기성 챔버 또는 호기성 (M. luteus)에서 37℃에서 18시간 동안 배양하였다. MIC는 눈에 띄는 성장이 없는 첫 번째 웰에서 테스트 화합물의 농도로 결정되었다.

	*Escherichia coli*	*Streptococcus salivarius*	*Lactobacillus casei*	*Bifidobacterium longum*	*Micrococcus luteus*
아지트로마이신	<8 μg/ml	<0.5 μg/ml	<1.0 μg/ml	>64 μg/ml	0.125 μg/ml
에리트로마이산	>64 μg/ml	<0.06 μg/ml	<0.25 μg/ml	>64 μg/ml	<0.0625 μg/ml
화합물 1	>64 μg/ml	>64 μg/ml	>64 μg/ml	>64 μg/ml	>256 μg/ml
화합물 4	>64 μg/ml	>64 μg/ml	>64 μg/ml	>64 μg/ml
화합물 5	>64 μg/ml	>64 μg/ml	>64 μg/ml	>64 μg/ml
화합물 6	>64 μg/ml	>64 μg/ml	>64 μg/ml	>64 μg/ml
화합물 7	>64 μg/ml	>64 μg/ml	>64 μg/ml	>64 μg/ml
화합물 8	>64 μg/ml	>64 μg/ml	>64 μg/ml	>64 μg/ml
화합물 9	>64 μg/ml	>64 μg/ml	>64 μg/ml	>64 μg/ml
EM703					64-128 μg/ml

표 1에 제시된 데이터에서 알 수 있듯이, 화합물 1, 3, 4, 5, 6, 7, 8 및 9는 시험된 박테리아 균주에 대해 항균 활성을 나타내지 않는 반면, 에리트로마이신 및 아지트로마이신은 다수의 균주에 대해 강력한 활성을 나타낸다.

실시예 14-면역 자극 활성 평가

인간 말초 혈액 단핵 세포(PBMC)는 Ficoll-Paque 밀도 원심 분리로 건강한 기증자로부터 정제되었다. 세포를 25mM HEPES, L-글루타민, 소듐 피루베이트(Sigma), 10% 소태아 혈청, 100 μg/mL 페니실린 및 100 μg/mL 스트렙토마이신(Hyclone)이 보충된 완전한 RPMI-1640 배지(Invitrogen)에서 배양하였다. 세포는 조직 배양 플레이트에서 화합물 1과 2의 농도를 증가시키면서 37℃, 5% CO₂에서 24시간(연구 1-4) 또는 48시간에서 1주(연구 5) 동안 자극되었다. 세포를 플레이트에서 제거하고, PBS로 세척하고, BD Pharmingen 및 FACS Canto II 유세포 분석기의 단일 클론 항체를 사용하여 유세포 분석을 통해 세포 특이적 표면 마커 및 MHC 클래스 I의 발현을 분석하였다.

완전한 RPMI 배지, 37℃, 5% CO₂에서 2.5 uM의 화합물 1 및 100 U/mL IL-2 (Miltenyi Biotechnologies)와 함께 48시간 및 7일 배양한 후 표준 샌드위치 ELISA (BD Biosciences의 모든 항체)로 상등액 IL-10을 측정하였다. ,

연구 1: 1μM 화합물 1(도 8)로 말초 혈액 단핵 세포(PBMC)의 24시간 시험관 내 자극 후 활성화 마커 CD69가 CD4+ T 세포 및 B 세포에서 상향 조절되었다(도 1).

연구 2: 우리는 또한 T 세포와 B 세포에서 분자 MHC 클래스 I (HLA-ABC)의 상향 조절을 관찰하여(도 2) 바이러스 항원의 항원 제시에 대한 효과를 나타내었다.

연구 3: 화합물 1을 사용한 PBMC의 자극은 단핵구에서 항원 제시 분자(antigen presenting molecule) MHC 클래스 II (HLA-DR)뿐만 아니라 공동 자극 분자(co-stimulatory molecule) CD80의 상향 조절을 유도하였다(도 3).

연구 4: 대식세포로 분화된 단핵구는 또한 화합물 1에 의한 자극에 반응하여 CD80을 상향 조절하였다(도 4).

연구 5: 48시간 및 7일 동안 화합물 1로 자극된 PBMC는 샌드위치 ELISA로 측정된 면역억제 사이토카인 IL-10의 증가된 생산과 함께 변경된 사이토카인 프로파일을 나타내었다. 이것은 특정 조건에서 면역 억제 효과를 나타낸다(도 5).

연구 6: PBMC를 화합물 1로 자극하고 IL-2 (Miltenyi Biotechnologies) 및 Cell Trace Violet Dye (Invitrogen)의 존재하에 6일 동안 RPMI 배지에서 배양하였다. 증식은 유세포 분석으로 측정되었다. 화합물 1의 면역학적 효과의 분석은 T 세포의 변경된 사이토카인 구동 증식 프로파일을 나타내었다(도 6).

연구 7: 바이러스 특이적 T 세포 증식은 또한 화합물 1에 의해 영향을 받았다. CMV 항원 및 화합물 1의 존재하에 6일 동안 배양된 거대 세포 바이러스(CMV) 감염 공여자로부터의 PBMC는 유세포 분석으로 측정된 IL-7 수용체 α (CD127)의 발현이 증가된 활성화된 CMV 특이적 CD8+ T 세포의 표현형을 나타내었다(도 7). CD127은 T 세포 항상성, 분화 및 기능에 중요하며, 발현 감소는 HIV 및 기타 만성 바이러스 질환의 질병 중증도와 관련이 있다(Crawley et al. 2012).

알 수 있는 바와 같이, 화합물 1은 항원 제시, 공동-자극 및 T 세포 활성화 및 증식에 영향을 줌으로써 면역 반응을 특이적으로 활성화하고 변형시키는 놀라운 능력을 갖는다. 이러한 많은 연구에서, 이전에 Schell et al, 2008 (화합물 20)에 발표된 변경된 글리코실화를 가진 또 다른 관련 마크로라이드 에리트로마이신 유사 체인 화합물 2가 포함되었으며 분석에서 활성이 거의 또는 전혀 나타나지 않았다.

연구 8: CMV에 감염된 공여자로부터의 PBMC를 CMV 항원의 존재하에 배양했으며, 여기서 처리하지 않았거나 화합물 1 또는 화합물 2에 3일 동안 노출하였다. 화합물 1에 대한 노출은 높은 수준의 IFN-감마의 분비를 유도한 반면, 항원 배양 단독 또는 화합물 A와 함께 항원은 IFN-감마 분비를 유도하지 않았다(도 9).

연구 9: 48시간 동안 화합물 1 또는 2에 노출된 건강한 기증자의 대식세포. 화합물 1에 노출된 대식세포만이 IFN-감마를 분비한 반면, 처리되지 않은 대식세포 및 화합물 A에 노출된 대식세포는 IFN-감마를 분비하지 않았다(도 10). 따라서 화합물 1은 건강한 공여자의 대식세포에서 IFN-감마 분비를 유도할 수 있다.

연구 10: 화합물 1 또는 2에 2일 동안 노출된 PBMC 및 대식세포(도 11). PBMC에서 RANTES의 기초 발현은 화합물 2의 영향을 받지 않은 반면, 화합물 1은 발현의 2배 상향 조절을 유도하였다. RANTES의 발현은 대식세포에서 미미했으며 화합물 1은 높은 발현을 유도하였다.

연구 11: 화합물 1과 2에 2일 동안 노출된 PBMC 및 대식세포. PBMC와 대식세포는 화합물 1에 반응하여 IL-12p70을 분비한 반면, 화합물 2는 처리되지 않은 세포에 대한 분비를 유도하지 못하였다(도 12).

연구 12: 화합물 1과 2에 2일 동안 노출된 PBMC, 대식세포 및 CD4+ T 세포. IL-1 베타 분비는 대식세포에서 화합물 1에 의해 증가하고 그리고 PBMC에서 약간 증가한 반면, IL-1 베타는 CD4+ T 세포에서 유도되지 않았다(도 13).

연구 13: 화합물 1을 i.v. 0.165 mg/kg에서 5 mg/kg으로 C57bl/6 마우스에 투여하였다. CD25+ 세포 풍부도는 5 mg/kg(도 14)의 최고 용량을 수용한 동물에서 증가했으며, 같은 그룹의 체중과 마찬가지로 증가하였다(미도시).

연구 14: 화합물 1 또는 2를 i.v. C57bl/6 마우스에 투여하였다. 24시간 후 비장을 제거하고 CD11b+ 비장 세포에 대한 MHC 클래스 I 발현을 평가하였다. 화합물 1이 높은 MHC I 발현을 갖는 비장 세포의 증가를 유도한 반면, 화합물 A를 주사 한 마우스의 비장 세포에서는 효과가 관찰되지 않았다.

실시예 15-대사 안정성 평가

본 발명의 화합물의 대사 안정성은 표준 인간 마이크로솜 안정성 분석에서 평가되었다(일반적인 방법 참조). 더 긴 반감기를 가진 화합물은 투여 후 더 긴 반감기를 가질 것으로 예상되며, 이는 덜 빈번한 투여를 허용하는 데 유용할 수 있다. 반감기가 짧은 화합물은 환자의 시스템에 들어가면 활성 개체가 빠르게 분해되는 '연약한 약물(soft drugs)'로 사용하는 데 유용할 수 있다. 평가된 화합물의 반감기는 아래 표 2에 제시되어 있다:

	T1/2 (minutes)
아지트로마이신	245
에리트로마이신	31
화합물 1	108
화합물 3	35
화합물 4	160
화합물 5	83
화합물 6	109
화합물 7	56
화합물 8	33
화합물 9	100
화합물 10	31
화합물 17	151
화합물 18	25
화합물 19	18
EM703	97

알 수 있는 바와 같이, 본 발명의 많은 화합물은 아지트로마이신, 에리트로 마이신 및 EM703과 비교하여 대사 안정성이 증가 또는 감소하였다(예를 들어 EP1350510 참조).

실시예 16-caco-2 투과성 평가

본 발명의 화합물의 투과성은 표준 caco-2 양방향 투과성 분석으로 평가되었다(일반적인 방법 참조). 증가된 투과성을 갖는 화합물은 더 나은 세포 침투 및 효과 가능성을 가질 것으로 예상되며, 개선된 투과성 및/또는 감소된 유출을 갖는 화합물은 증가된 경구 생체 이용률을 가질 것으로 예상될 것이다. 화합물의 투과성 및 유출은 하기 표 3에 나타낸다:

	P_app x 10⁶/cm.s^-1	유출 비율(Efflux ratio)
아지트로마이신	<0.14	>78
화합물 1	0.32	63
화합물 3	0.27	166
화합물 4	0.38	49
화합물 5	0.47	81
화합물 8	0.46	56
화합물 10	1.23	26
화합물 17	0.5	39
화합물 18	9.44	3.5
EM703	<0.15	>108

알 수 있는 바와 같이, 본 발명의 많은 화합물은 아지트로마이신 및 EM703과 비교하여 개선된 세포 투과성 및/또는 감소된 유출을 갖는다(예를 들어 EP1350510 참조).

실시예 17-TLR2 자극의 평가

화합물은 TLR2 수용체의 자극에 대해 측정된 TLR2 리포터 분석(일반 방법 참조)을 사용하여 테스트되었다. 자극 효과는 분비된 알칼리성 포스파타제(SEAP)의 방출로 인한 광학 밀도(OD)의 증가로 측정되었으며 표 4에 나와 있다.

	20μM 테스트 물의 첨가 후의 OD	10μM 테스트 물의 첨가 후의 OD	5μM 테스트 물의 첨가 후의 OD
아지트로마이신	0.031	0.045	0.029
에리트로마이신	0.045	0.065	0.035
화합물 1	0.458	0.202	0.111
화합물 2	0.044	0.010	0.046
화합물 3	-0.026	-0.015	-0.043
화합물 17	0.234	0.155	0.054
EM703	-0.033	-0.024	-0.040

알 수 있듯이, 화합물 1은 5uM까지의 농도에서 TLR2를 자극하고, 화합물 17은 10uM까지의 농도에서 TLR2를 자극한 반면, 에리트로마이신 A, 아지트로마이신 및 화합물 2 및 3, 이전에 Schell et al, 2008에 발표된 변경된 글리코실화를 갖는 관련 마크로라이드 에리트로마이신 유사체(화합물 17 및 20)는 최대 20uM 농도에서 자극이 거의 또는 전혀 나타나지 않았다.

실시예 18-화합물 17의 제조

아글리콘 17a는 9-데옥소-8a-아자-8a-메틸-8a-호모에리트로마이신(9-deoxo-8a-aza-8a-methyl-8a-homoerythromycin)(Wilkening 1993)으로부터 당의 가수 분해로 생성되었다. 17a는 표준 방법을 사용하여 발효 브로쓰에서 분리된 3-하이드록실 (예를 들어 NCIMB 42718) 및 화합물 17에 앙골로사민을 첨가할 수 있는 생체 변환 균주에 공급되었다.

실시예 19-화합물 18의 제조

6-데옥시 에리트로놀라이드 B (6-DEB, 18a)를 3-하이드록실(예를 들어, NCIMB 42718)에 앙골로사민을 첨가할 수 있는 생체 형질 전환 균주에 공급하고 표준 방법을 사용하여 발효 브로쓰에서 분리하였다.

실시예 20-ISC397 및 체크 포인트 억제제의 조합 효과 연구

C57BL/6J 마우스는 독일의 Charles River Laboratories에서 구입하였다. 마우스를 이소플루란 마취하에 1 x 10⁶ B16-F10 흑색종 세포로 우측 후방 옆구리에 피하 주사하였다.

처리 그룹은 다음과 같았다(그룹당 10 마리 마우스):

1) 1,3,6,9 및 12일에 항-PD-1 (클론 RMP 1-14, Merck, Johnson, Roche 또는 Astra, 200 microgram/dose).

2) 매일 실험 종료일까지 1,3,6,9 및 12+일에 ISR397 (500 microgram/dose) 항-PD-1 (클론 RMP 1-14, Merck, Johnson, Roche 또는 Astra, 200 microgram/dose)

3) 미처리.

모든 화합물은 i.v.로 투여하였다. 종양 부피는 매일 측정되었고 동물의 건강 상태는 매일 2회 측정되었다. 종양이 2ml에 도달하거나 건강 상태가 좋지 않으면 동물을 희생시켰다. 실험은 18일에 종료되었고 모든 마우스는 자궁 경부 탈구로 죽었다.

결과는 도 16-19에 나타내었다.

Claims

화학식 I을 가지는 마크로라이드(macrolide) 또는 그의 약학적으로 허용가능한 염 및 면역 체크포인트 억제제(immune checkpoint inhibitor)의 조합물:

화학식 (I)
여기서 X는 C=O, -NR₃CH₂-, -CH₂NR₃-, -NR₃(C=O)-, -(C=O)NR₃-, C=NOH 및 CH(OH)-로부터 선택되고, R₂는 화학식 II 또는 화학식 III의 당이고:

화학식 (II) 화학식 (III)
여기서 R₁은 알킬, 헤테로알킬, 사이클로알킬, 아릴 및 헤테로아릴 작용기로부터 선택되고,
여기서 알킬 작용기는 임의로 분지된 C₁-C₆ 알킬기로부터 선택되며,
여기서 헤테로알킬 작용기는 임의로 분지되거나 치환되고 하나 이상의 헤테로 원자를 포함하는 C₁-C₆ 알킬기로부터 선택되고,
여기서 사이클로알킬 작용기는 임의로 치환되고 하나 이상의 헤테로 원자를 임의로 포함하는 C₃-C₆ 사이클릭 알킬기로부터 선택되며,
여기서 아릴 작용기는 임의로 치환된 C₆ 방향족 고리로부터 선택되고,
여기서 헤테로아릴 작용기는 하나 이상의 헤테로 원자를 포함하는 임의로 치환된 C₁-C₅ 방향족 고리로부터 선택되며,
여기서 헤테로원자는 O, N, P 및 S로부터 선택되고,
여기서 치환기는 독립적으로 알킬, OH, F, Cl, NH₂, NH-알킬, NH-아실, S-알킬, S-아실, O-알킬 및 O-아실로부터 선택되며,
여기서 아실은 C₁-C₄ 임의로 분지된 아실기로부터 선택되고,

여기서 R₃은 H 및 Me로부터 선택되며,
여기서 R₄는 H 및 Me로부터 선택되고,

여기서 R_a는 H 및CR₂₁R₂₂R₂₃로부터 선택되며,
여기서 R₂₁, R₂₂, R₂₃, and R₅, R₆, R₇, R₈, R₉ 및 R₁₀은 독립적으로 H, Me, NR₁₁R₁₂, NO₂ 및 OR₁₁로부터 선택되고,

여기서 R₂₃은 화학식 II에서 R₄와 함께, R₄는 화학식 II에서 R₅와 함께, R₅는 화학식 II에서 R₇과 함께, R₇은 화학식 II에서 R₉와 함께 독립적으로 결합을 나타내기 위해 결합되어 각 그룹이 연결된 탄소 원자 사이에 이중 결합을 남길 수 있으며,

여기서 R₂₁은 R₂₂와 함께, R₅는 R₆과 함께, R₇은 R₈과 함께, 또는 R₉는 R₁₀과 함께 카보닐로 대체될 수 있고,
여기서 R₁₁ 및 R₁₂는 독립적으로 H 및 알킬로부터 선택되며,
여기서 R₁₃은 H, OH 및 OCH₃로부터 선택되고,
여기서 R₁₄는 H 및 OH로부터 선택되며,

R₅, R₆, R₇, R₈, R₉ 또는 R₁₀ 중 하나는 NR₁₁R₁₂ 및 NO₂로부터 선택됨.
제1항에 있어서, 상기 마크로라이드는 하기 또는 약학적으로 허용가능한 염으로부터 선택되는 것을 특징으로 하는 조합물:
제1항 또는 제2항에 있어서, 상기 마크로라이드는
또는 약학적으로 허용가능한 염인 것을 특징으로 하는 조합물.
제1항 내지 제3항 중 어느 한 항에 있어서, 상기 면역 체크포인트 억제제는 세포독성 T-림프구 관련 항원 4(cytotoxic T-lymphocyte associated antigen 4, CTLA4, CD152로도 알려짐), 프로그램된 세포 사멸 단백질 1 (programmed cell death protein 1, PD-1, CD279로도 알려짐) PD-1 리간드 1 (PD-1 ligand 1, PD-L1, B7-H1 및 CD274로도 알려짐), PD-1 리간드 2 (PD-1 ligand 2, PD-L2, B7-DC 및 CD-273으로도 알려짐), T-세포 막 단백질 3 (T-cell membrane protein 3, TIM3, HAVcr2로도 알려짐), 아데노신 A2a 수용체 (adenosine A2a receptor, A2aR), 림프구 활성화 유전자 3 (lymphocyte activation gene 3, LAG3, CD 223으로도 알려짐), B7-H3 (CD276으로도 알려짐), B7-H4 (B7-S1, B7X 및 VCTN1으로도 알려짐), 2B4 (CD244로도 알려짐), B 및 T 림프구 감쇠기 (B and T lymphocyte attenuator, BTLA, CD272라고도 알려짐) 및 CMTM6으로부터 선택되는 면역 체크포인트를 표적으로 하는 것을 특징으로 하는 조합물.
제1항 내지 제4항 중 어느 한 항에 있어서, 상기 면역 체크포인트 억제제는 CTLA4 억제제, PD-1 억제제, PD-L1 억제제, PD-L2 억제제, TIM3 억제제, A2aR 억제제, LAG3 억제제, B7-H3 억제제, B7-H4 억제제, 2B4 억제제, BTLA 억제제 및 CMTM6 억제제로부터 선택되는 것을 특징으로 하는 조합물.
제1항 내지 제5항 중 어느 한 항에 있어서, 상기 면역 체크포인트 억제제는 이필리무맙(ipilimumab), 트레멜리무맙(tremelimumab), 펨브롤리주맙(pembrolizumab), 니볼루맙(nivolumab), 피딜리주맙(pidilizumab), AMP-224, 아테졸리주맙(atezolizumab), 아벨루맙(avelumab), 두르발루맙(durvalumab), MDX-1105, IMP321, 에노블리투주맙(enoblituzumab) 및 MGD009로부터 선택되는 것을 특징으로 하는 조합물.
제6항에 있어서, 상기 면역 체크포인트 억제제는 이필리무맙, 펨브롤리주맙, 니볼루맙, 아테졸리주맙, 아벨루맙 및 두르발맙으로부터 선택되는 것을 특징으로 하는 조합물.
제1항 내지 제7항 중 어느 한 항에 있어서, 하나의 조성물이 마크로라이드 및 하나 이상의 약학적으로 허용가능한 부형제를 포함하고, 다른 조성물이 면역 체크포인트 억제제 및 하나 이상의 약학적으로 허용가능한 부형제를 포함하는 조합 물.
제8항에 있어서, 2개의 약학적 조성물이 동일하거나 상이한 투여 경로를 위해 설계된 것을 특징으로 하는 조합물.
면역자극제(immunostimulator)와 같은 의학에 사용하기 위한 제1항 내지 제9항 중 어느 한 항에 정의된 조합물.
제10항에 있어서, 암 치료에 사용하기 위한 것을 특징으로 하는 조합물.
제10항에 있어서, 바이러스성 질환의 치료에 사용하기 위한 것을 특징으로 하는 조합물.
제1항 내지 제9항 중 어느 한 항의 조합물 및 하나 이상의 약학적으로 허용가능한 부형제를 포함하는 약학적 조성물.
제10항 내지 제12항 중 어느 한 항의 조합물 및 하나 이상의 약학적으로 허용가능한 부형제를 포함하는 약학적 조성물.
단일 패키지에 다음을 포함하는 암 치료 또는 예방용 약학적 키트:
i) 마크로라이드를 포함하는 제1 조성물;
ii) 면역 체크포인트 억제제를 포함하는 제2 조성물; 및
iii) 사용 지침.