KR20190125330A - 레바우디오시드 e로부터 스테비올 글리코시드 레바우디오시드 d4의 생합성 제조 - Google Patents

레바우디오시드 e로부터 스테비올 글리코시드 레바우디오시드 d4의 생합성 제조 Download PDF

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Abstract

본 발명은 일부 양태에서, 레바우디오시드 E의 사용을 통한 스테비올 글리코시드 레바우디오시드 D4의 제조에 관한 것이다. 일부 양태에서, 본 발명은 돌연변이체 CP1 효소, 돌연변이체 HV1 효소뿐만 아니라, 예컨대 레바우디오시드 D4를 제조하기 위해, 이러한 효소를 이용하는 숙주 세포 및 방법에 관한 것이다.

Description

레바우디오시드 E로부터 스테비올 글리코시드 레바우디오시드 D4의 생합성 제조
관련 출원에 대한 교차-참조
본 출원은 그 내용의 전문이 본원에 참조로 포함되는, 2017년 3월 6일에 출원된 미국 가출원 제62/467,467호에 대한 우선권을 청구한다.
발명의 분야
본 발명의 분야는 선택된 미생물 내로 조작된 생합성 경로를 통한 특정 스테비올 글리코시드의 제조에 유용한 방법 및 공정에 관한 것이다. 보다 구체적으로, 본 개시는 효소적 전환을 통해 레바우디오시드 E("Reb E")로부터 합성될 수 있는 이전에 알려지지 않은 레바우디오시드인 레바우디오시드 D4("Reb D4")의 제조에 관한 것이다.
몇몇 스테비올 글리코시드가 스테비아 레바우디아나(Stevia rebaudiana) 잎에서 화합물로 확인되었고, 식품, 사료 및 음료에서 고강도, 저칼로리 감미제로 널리 사용되었다. 이들 천연 발생 스테비올 글리코시드는 동일한 기본 디테르펜 구조(스테비올 골격)를 갖지만 스테비올 골격의 C13 및 C19 위치에서 이의 탄수화물 잔기 변형(예컨대 글루코스, 람노스 및 자일로스 잔기)의 수 및 구조가 상이하다. 흥미롭게도, 기본 스테비올 구조의 당 '장식'에서의 이러한 변화는 개별 스테비올 글리코시드 자체의 특성에 극적이고 예측하지 못한 영향을 미친다. 이들 속성에는 다른 특성 중에서도 비제한적으로 맛 프로필, 결정화점, 용해도 및 인식되는 단맛이 포함된다. 알려진 구조를 갖는 스테비올 글리코시드에는 스테비오시드, 레바우디오시드 A, 레바우디오시드 B, 레바우디오시드 C, 레바우디오시드 D, 레바우디오시드 E, 레바우디오시드 F, 레바우디오시드 M 및 둘코시드 A가 포함된다. 상업적 용도의 관점에서 레바우디오시드 M은 일반적으로 안전하게 간주되었고(즉, 'GRAS' 상태를 가짐) 식품 및 음료 시장에서 광범위한 용도에 대해 연구되고 있다.
건조 중량 기준으로, 스테비오시드, 레바우디오시드 A, 레바우디오시드 C 및 둘코시드 A는 각각 야생형 스테비아 잎에서 확인되는 스테비올 글리코시드의 총 중량의 9.1%, 3.8%, 0.6% 및 0.30%를 차지하는 반면, 다른 스테비올 글루코시드, 예컨대 Reb E는 상당히 더 적은 양으로 존재하며, Reb D4는 전혀 존재하지 않는다. 스테비아 레바우디아나(Stevia rebaudiana) 식물로부터의 추출물은 상업적으로 이용 가능하며, 이러한 추출물에서는 스테비오시드 및 레바우디오시드 A가 가장 자주 주요 성분이다. 상대적으로, 다른 알려진 스테비올 글리코시드는 전형적으로 소량 또는 미량 성분으로 스테비아 추출물에 존재한다. 예를 들어, 전형적인 상업적 조제물 중 레바우디오시드 A의 양은 전체 스테비올 글리코시드 함량의 약 20% 내지 90% 초과로 변할 수 있으며, 레바우디오시드 B의 양은 전체 스테비올 글리코시드의 약 1% 내지 2%, 레바우디오시드 C의 양은 약 7% 내지 15%, 그리고 레바우디오시드 D의 양은 약 2%일 수 있다. 이러한 추출물에서, 레바우디오시드 M은 극히 소량으로만 존재한다. 흥미롭게도, 레바우디오시드 E도 스테비아 레바우디아나(Stevia rebaudiana) 식물 변종에 존재하는 가장 양이 적은 스테비올 글리코시드 중 하나로, 존재하는 전체 글리코시드의 0.5% 미만을 차지한다.
천연 감미제로서 그리고 상기 언급된 바와 같이, 각각의 상이한 스테비올 글리코시드는 상이한 정도의 단맛, '구감' 및 이와 연관되는 특이한 뒷맛을 갖는다. 설탕(즉, "수크로스")에 비해, 스테비올 글리코시드의 단맛이 훨씬 더 크다. 예를 들어, 스테비오시드는 여러 맛 평가에서 주지되는 바와 같이 수크로스보다 100배 내지 150배 더 달지만 더 쓴 뒷만을 갖는 반면, 레바우디오시드 A 및 레바우디오시드 E는 수크로스보다 250배 내지 450배 더 달고 뒷맛 프로필은 스테비오시드보다 훨씬 더 낫다. 그러나, 이들 스테비올 글리코시드 자체도 여전히 두드러진 단맛을 보유한다. 따라서, 스테비아 추출물의 맛 프로필은 추출물 중 다양한 스테비올 글리코시드의 상대 함량에 의해 현저히 영향받으며, 이는 다시 기저 식물 및 사용되는 추출 공정이 겪는 환경 조건에 의해 영향받을 수 있음이 일반적으로 알려져 있다. 식물 제조, 기후 조건 및 추출 조건에서의 이러한 차이는 스테비아 추출물에서 스테비올 글리코시드의 일관되지 않은 조성을 야기할 수 있어서, 맛 프로필이 상이한 배치의 추출 산물 간에 크게 변한다. 스테비아 추출물의 맛 프로필은 또한 추출 공정 후 산물에 잔류하는 식물-유래 또는 환경-유래 오염물질(예컨대 안료, 지질, 단백질, 페놀계 화합물 및 당류)에 의해 영향받을 수 있다. 이들 오염물질은 전형적으로 이의 고유한 나쁜-풍미를 가져서, 생성 추출물을 소비재에서 사용하기 바람직하지 못하게 만든다. 또한, 스테비아 추출물에서 풍부하지 않은 개별 또는 특정 조합의 스테비올 레바우디오시드를 단리하는 비용은 고가이며 자원이 한정적이다. 일부 특정 스테비올 글리코시드의 양 및 이용 가능성이 제한되어 있으므로, 상업적 공급은 천연 효소 또는 특정 미생물이 필요한 효소를 운반하고 관심 글리코시드의 제조를 특이적으로 증가시키기 위해 상업적으로 중요한 발효 공정을 사용하도록 변형될 수 있는 생체전환에 의해 더 잘 해결될 수 있다. 예를 들어, 변형된 미생물을 이용하는 발효 경로를 통한 스테비오시드의 Reb E로의 생체-전환이 이전에 보고되었다(Yu 등, 미국 출원 제15/016,589호, 미국 특허 출원 공개 제US2016/0207954호 참고). 대안적으로, 다른 비-생물학적 합성 수단이 관심 스테비올 글리코시드를 개발하기 위해 사용될 수 있다.
따라서, 상업적 제품으로 개발되기 위해 더 우수하고 더 일관된 맛 프로필을 갖는 스테비올 글리코시드 및 상대적으로 일반적인 출발 기질, 예컨대 출발 분자로 더 풍부한 스테비올 글리코시드를 이용함으로써 요망되는 글리코시드의 이러한 제조가 최대한 상업적으로 비용 효과적일 수 있는 상기 스테비올 글리코시드에 대한 필요성이 존재한다.
본 개시는, 예컨대 세포계에서, Reb E로부터 Reb D4를 제조하는 방법을 포괄한다.
특히, 본 개시는 Reb E로부터 특정 UDP-글리코실트랜스퍼라제에 의해 (13-[(2-O-β-D-글루코피라노실-β-D-글루코피라노실)옥시]엔트-카우르-16-엔-19-오산-[(2-O-β-D-글루코피라노실-3-O-β-D-글루코피라노실-β-D-글루코피라노실)에스테르])로 확인되는 스테비올 글리코시드 레바우디오시드 D4 "Reb D4"의 제조를 제공한다.
본 발명의 방법은 특정 합성 경로를 사용하는 특정 스테비올 글리코시드의 합성을 위한 전략을 제공한다.
일부 양태에서, 본 개시는 SEQ ID NO: 7의 아미노산 서열을 포함하는 돌연변이체 CP1 효소를 제공한다. 일부 양태에서, 본 개시는 SEQ ID NO: 7과 적어도 90%(예컨대, 적어도 90%, 적어도 91%, 적어도 92%, 적어도 93%, 적어도 94%, 적어도 95%, 적어도 96%, 적어도 97%, 적어도 98%, 적어도 99% 또는 100%) 동일성을 갖는 아미노산 서열을 포함하는 재조합 폴리펩타이드를 제공한다. 일부 구현예에서, 재조합 폴리펩타이드는 본원에 기재되는 돌연변이체 CP1 효소, 예컨대, SEQ ID NO: 7의 아미노산 서열을 포함하는 돌연변이체 CP1 효소와 동일하거나 실질적으로 동일한 활성을 갖는다.
일부 양태에서, 본 개시는 SEQ ID NO: 8의 뉴클레오타이드 서열을 포함하는 핵산을 제공한다. 일부 양태에서, 본 개시는 SEQ ID NO: 8과 적어도 90%(예컨대, 적어도 90%, 적어도 91%, 적어도 92%, 적어도 93%, 적어도 94%, 적어도 95%, 적어도 96%, 적어도 97%, 적어도 98%, 적어도 99% 또는 100%) 동일성을 갖는 뉴클레오타이드 서열을 포함하는 핵산을 제공한다. 일부 구현예에서, 뉴클레오타이드 서열은 본원에서 기재되는 돌연변이체 CP1 효소, 예컨대, SEQ ID NO: 7의 아미노산 서열을 포함하는 돌연변이체 CP1 효소를 인코딩한다.
일부 양태에서, 본 개시는 SEQ ID NO: 9의 아미노산 서열을 포함하는 돌연변이체 CP1 효소를 제공한다. 일부 양태에서, 본 개시는 SEQ ID NO: 9와 적어도 90%(예컨대, 적어도 90%, 적어도 91%, 적어도 92%, 적어도 93%, 적어도 94%, 적어도 95%, 적어도 96%, 적어도 97%, 적어도 98%, 적어도 99% 또는 100%) 동일성을 갖는 아미노산 서열을 포함하는 재조합 폴리펩타이드를 제공한다. 일부 구현예에서, 재조합 폴리펩타이드는 본원에 기재되는 돌연변이체 CP1 효소, 예컨대, SEQ ID NO: 9의 아미노산 서열을 포함하는 돌연변이체 CP1 효소와 동일하거나 실질적으로 동일한 활성을 갖는다.
일부 양태에서, 본 개시는 SEQ ID NO: 10의 뉴클레오타이드 서열을 포함하는 핵산을 제공한다. 일부 양태에서, 본 개시는 SEQ ID NO: 10과 적어도 90%(예컨대, 적어도 90%, 적어도 91%, 적어도 92%, 적어도 93%, 적어도 94%, 적어도 95%, 적어도 96%, 적어도 97%, 적어도 98%, 적어도 99% 또는 100%) 동일성을 갖는 뉴클레오타이드 서열을 포함하는 핵산을 제공한다. 일부 구현예에서, 뉴클레오타이드 서열은 본원에서 기재되는 돌연변이체 CP1 효소, 예컨대, SEQ ID NO: 9의 아미노산 서열을 포함하는 돌연변이체 CP1 효소를 인코딩한다.
일부 양태에서, 본 개시는 SEQ ID NO: 11의 아미노산 서열을 포함하는 돌연변이체 HV1 효소를 제공한다. 일부 양태에서, 본 개시는 SEQ ID NO: 11과 적어도 90%(예컨대, 적어도 90%, 적어도 91%, 적어도 92%, 적어도 93%, 적어도 94%, 적어도 95%, 적어도 96%, 적어도 97%, 적어도 98%, 적어도 99% 또는 100%) 동일성을 갖는 아미노산 서열을 포함하는 재조합 폴리펩타이드를 제공한다. 일부 구현예에서, 재조합 폴리펩타이드는 본원에서 기재되는 돌연변이체 HV1 효소, 예컨대, SEQ ID NO: 11의 아미노산 서열을 포함하는 돌연변이체 HV1 효소와 동일하거나 실질적으로 동일한 활성을 갖는다.
일부 양태에서, 본 개시는 SEQ ID NO: 12의 뉴클레오타이드 서열을 포함하는 핵산을 제공한다. 일부 양태에서, 본 개시는 SEQ ID NO: 12와 적어도 90%(예컨대, 적어도 90%, 적어도 91%, 적어도 92%, 적어도 93%, 적어도 94%, 적어도 95%, 적어도 96%, 적어도 97%, 적어도 98%, 적어도 99% 또는 100%) 동일성을 갖는 뉴클레오타이드 서열을 포함하는 핵산을 제공한다. 일부 구현예에서, 뉴클레오타이드 서열은 본원에서 기재되는 돌연변이체 HV1 효소, 예컨대, SEQ ID NO: 11의 아미노산 서열을 포함하는 돌연변이체 HV1 효소를 인코딩한다.
일부 양태에서, 본 개시는 SEQ ID NO: 7의 아미노산 서열을 갖는 Clm2 효소를 제조할 수 있는 벡터를 포함하는 숙주 세포를 제공한다. 일부 양태에서, 본 개시는 SEQ ID NO: 9의 아미노산 서열을 갖는 Clm3 효소를 제조할 수 있는 벡터를 포함하는 숙주 세포를 제공한다. 일부 양태에서, 본 개시는 SEQ ID NO: 11의 아미노산 서열을 갖는 돌연변이체 HV1 효소를 제조할 수 있는 벡터를 포함하는 숙주 세포를 제공한다. 일부 구현예에서, 숙주 세포는 박테리아, 효모, 필라멘트성 진균, 시아노박테리아 조류 및 식물 세포로 구성되는 군으로부터 선택된다. 일부 구현예에서, 숙주 세포는 에스케리치아(Escherichia); 살모넬라(Salmonella); 바실러스(Bacillus); 아시네토박터(Acinetobacter); 스트렙토마이세스(Streptomyces); 코리네박테리움(Corynebacterium); 메틸로시누스(Methylosinus); 메틸로모나스(Methylomonas); 로도코쿠스(Rhodococcus); 슈도모나스(Pseudomonas); 로도박터(Rhodobacter); 시네코시스티스(Synechocystis); 사카로마이세스(Saccharomyces); 자이고사카로마이세스(Zygosaccharomyces); 클루이베로마이세스(Kluyveromyces); 칸디다(Candida); 한세눌라(Hansenula); 데바리오마이세스(Debaryomyces); 무코르(Mucor); 피치아(Pichia); 토룰롭시스(Torulopsis); 아스페르길루스(Aspergillus); 아르트로보틀리스(Arthrobotlys); 브레비박테리아(Brevibacteria); 마이크로박테리움(Microbacterium); 아르트로박터(Arthrobacter); 시트로박터(Citrobacter); 에스케리치아(Escherichia); 클렙시엘라(Klebsiella); 판토에아(Pantoea); 살모넬라 코리네박테리움(Salmonella Corynebacterium); 클로스트리디움(Clostridium); 및 클로스트리디움 아세토부틸리쿰(Clostridium acetobutylicum)으로 구성되는 군으로부터 선택된다. 일부 구현예에서, 숙주 세포는 대두; 평지씨; 해바라기; 목화; 옥수수; 담배; 알팔파; 밀; 보리; 귀리; 수수; 쌀; 브로콜리; 콜리플라워; 양배추; 파스닙; 멜론; 당근; 셀러리; 파슬리; 토마토; 감자; 딸기; 땅콩; 포도; 풀씨 작물; 사탕무; 사탕 수수; 콩; 완두콩; 호밀; 아마; 경재 나무; 연재 나무; 사료용 풀; 아라비답시스 탈리아나(Arabidopsis thaliana); 쌀(오리재 사티바(Oryza sativa)); 호르데움 율가레(Hordeum yulgare); 스위치그래스(switchgrass; 파니쿰 비그라툼(Panicum vigratum)); 브라키포디움(Brachypodium) spp.; 브라시카(Brassica) spp.; 및 크람베 애비시니카(Crambe abyssinica)로 구성되는 군으로부터 선택되는 식물로부터 단리된 세포이다.
일부 양태에서, 본 개시는 기질을 SEQ ID NO: 7과 적어도 80%(예컨대, 적어도 80%, 적어도 85%, 적어도 90%, 적어도 91%, 적어도 92%, 적어도 93%, 적어도 94%, 적어도 95%, 적어도 96%, 적어도 97%, 적어도 98%, 적어도 99% 또는 100%) 동일성을 갖는 아미노산 서열을 포함하는 재조합 폴리펩타이드와 인큐베이션하는 단계를 포함하는, 스테비올 글리코시드 조성물을 제조하는 방법을 제공한다. 일부 구현예에서, 재조합 폴리펩타이드는 SEQ ID NO: 7과 적어도 80%(예컨대, 적어도 80%, 적어도 85%, 적어도 90%, 적어도 91%, 적어도 92%, 적어도 93%, 적어도 94%, 적어도 95%, 적어도 96%, 적어도 97%, 적어도 98%, 적어도 99% 또는 100%) 동일성을 갖는 UDP-글리코실트랜스퍼라제이다. 일부 구현예에서, 기질은 스테비오시드 또는 레바우디오시드 E 및 이의 조합으로 구성되는 군으로부터 선택된다. 일부 구현예에서, 방법에 의해 제조되는 스테비올 글리코시드 화합물은 레바우디오시드 D4여서 스테비올 글리코시드 조성물은 레바우디오시드 D4를 포함한다.
일부 양태에서, 본 개시는 기질을 SEQ ID NO 7과 적어도 90%(예컨대, 적어도 90%, 적어도 91%, 적어도 92%, 적어도 93%, 적어도 94%, 적어도 95%, 적어도 96%, 적어도 97%, 적어도 98%, 적어도 99% 또는 100%) 동일성을 갖는 아미노산 서열을 포함하는 재조합 폴리펩타이드와 인큐베이션하는 단계를 포함하는, 레바우디오시드 D4를 제조하는 방법을 제공한다. 일부 구현예에서, 기질은 Reb E, 스테비오시드 및 이의 조합으로 구성되는 군으로부터 선택된다. 일부 구현예에서, 방법은 재조합 수크로스 합성효소를 기질 및 재조합 폴리펩타이드와 인큐베이션하는 단계를 추가로 포함한다.
일부 양태에서, 본 개시는 (a) 레바우디오시드 E, 수크로스, 유리딘 디포스페이트(UDP) 및 유리딘 디포스페이트 글루코스(UDP-글루코스)로 구성되는 군으로부터 선택되는 기질, 및 Clm2를 포함하는 반응 혼합물을 제조하는 단계 및 (b) 레바우디오시드 D4를 제조하기 충분한 시간 동안 반응 혼합물을 인큐베이션하는 단계를 포함하는, 레바우디오시드 E로부터 레바우디오시드 D4를 합성하는 방법을 제공하며, 여기서 글루코스는 레바우디오시드 E에 공유 커플링되어 레바우디오시드 D4를 제조한다. 일부 구현예에서, 방법은 수크로스 합성효소를 반응 혼합물에 첨가하는 단계를 추가로 포함한다. 일부 구현예에서, 수크로스 합성효소는 아라비답시스 수크로스 합성효소 1, 아라비답시스 수크로스 합성효소 3 및 비그나 라디에이트(Vigna radiate) 수크로스 합성효소로 구성되는 군으로부터 선택된다. 일부 구현예에서, 수크로스 합성효소는 아라비답시스 탈리아나(Arabidopsis thaliana) 수크로스 합성효소 1이다. 일부 구현예에서, 제조되는 Reb D4는 70% 초과(예컨대, 70% 초과, 75% 초과, 80% 초과, 85% 초과, 90% 초과, 91% 초과, 92% 초과, 93% 초과, 94% 초과, 95% 초과, 96% 초과, 97% 초과, 98% 초과, 99% 초과 또는 100%) 순수하다. 일부 구현예에서, 방법은 HV1 효소를 반응 혼합물에 첨가하는 단계를 추가로 포함한다.
일부 양태에서, 본 개시는 (a) 레바우디오시드 E, 수크로스, 유리딘 디포스페이트(UDP) 및 유리딘 디포스페이트 글루코스(UDP-글루코스)로 구성되는 군으로부터 선택되는 기질 및 Clm3을 포함하는 반응 혼합물을 제조하는 단계 및 (b) 레바우디오시드 D4를 제조하기 충분한 시간 동안 반응 혼합물을 인큐베이션하는 단계를 포함하는, 레바우디오시드 E로부터 레바우디오시드 D4를 합성하는 방법을 제공하며, 여기서 글루코스는 레바우디오시드 E에 공유 커플링되어 레바우디오시드 D4를 제조한다. 일부 구현예에서, 방법은 수크로스 합성효소를 반응 혼합물에 첨가하는 단계를 추가로 포함한다. 일부 구현예에서, 수크로스 합성효소는 아라비답시스 수크로스 합성효소 1, 아라비답시스 수크로스 합성효소 3 및 비그나 라디에이트(Vigna radiate) 수크로스 합성효소로 구성되는 군으로부터 선택된다. 일부 구현예에서, 수크로스 합성효소는 아라비답시스 탈리아나(Arabidopsis thaliana) 수크로스 합성효소 1이다. 일부 구현예에서, 제조되는 Reb D4는 70% 초과(예컨대, 70% 초과, 75% 초과, 80% 초과, 85% 초과, 90% 초과, 91% 초과, 92% 초과, 93% 초과, 94% 초과, 95% 초과, 96% 초과, 97% 초과, 98% 초과, 99% 초과 또는 100%) 순수하다. 일부 구현예에서, 방법은 HV1 효소를 반응 혼합물에 첨가하는 단계를 추가로 포함한다.
일부 양태에서, 본 개시는 상술되거나 달리 본원에 기재되는 방법에 의해 제조되는 스테비올 글리코시드 조성물 또는 스테비올 글리코시드를 포함하는 감미제를 제공한다.
일부 양태에서, 본 개시는 SEQ ID NO: 5의 아미노산 서열을 포함하는 GXT6 효소를 제공한다. 일부 양태에서, 본 개시는 SEQ ID NO: 5와 적어도 90%(예컨대, 적어도 90%, 적어도 91%, 적어도 92%, 적어도 93%, 적어도 94%, 적어도 95%, 적어도 96%, 적어도 97%, 적어도 98%, 적어도 99% 또는 100%) 동일성을 갖는 아미노산 서열을 포함하는 재조합 폴리펩타이드를 제공한다. 일부 구현예에서, 재조합 폴리펩타이드는 본원에 기재된 GXT6 효소, 예컨대, SEQ ID NO: 5의 아미노산 서열을 포함하는 GXT6 효소와 동일하거나 실질적으로 동일한 활성을 갖는다. 일부 양태에서, 본 개시는 SEQ ID NO: 5의 아미노산 서열을 갖는 GXT6 효소를 제조할 수 있는 벡터를 포함하는 숙주 세포를 제공한다.
일부 양태에서, 본 개시는 SEQ ID NO: 6의 뉴클레오타이드 서열을 포함하는 핵산을 제공한다.
일부 양태에서, 본 개시는 SEQ ID NO: 3을 포함하는 CP1 효소를 제공한다. 일부 양태에서, 본 개시는 SEQ ID NO: 4의 뉴클레오타이드 서열을 포함하는 핵산을 제공한다.
일부 양태에서, 본 개시는 도 9에 기재된 효소 및 기질, 또는 이의 하위세트를 사용하여(예컨대, 스테비오시드, Reb E 또는 Reb D4로 출발하여 및/또는 HV1, Clm2, Clm3, UGT76G1, CP1 및/또는 CR1을 이용하여) Reb M을 제조하는 방법을 제공한다. 일부 구현예에서, Reb M은 도 9에 기재된 효소 및 기질, 또는 이의 하위세트를 함유하는 시험관내 반응 혼합물을 사용하여(예컨대, 스테비오시드, Reb E 또는 Reb D4로 출발하여 및/또는 HV1, Clm2, Clm3, UGT76G1, CP1 및/또는 CR1을 이용하여) 제조된다. 일부 구현예에서, Reb M은 도 9에 기재된 효소 또는 이의 하위세트(예컨대, HV1, Clm2, Clm3, UGT76G1, CP1 및/또는 CR1)를 발현하는 세포에서 생체내 제조되며, 여기서 세포는 도 4에 기재된 기질(예컨대, 스테비오시드, Reb E 또는 Reb D4)과 인큐베이션된다. 일부 구현예에서, 세포는 효모 세포이다. 일부 구현예에서, 세포는 박테리아 세포이다. 일부 구현예에서, 세포는 식물 세포이다.
제품/상업적 유용성의 관점에서, 미국 내 시장에는 스테비올 글리코시드를 함유하는 수십 여 제품이 존재하며, 식품 내 및 식이 보충물질로서 뿐만 아니라 진통제에서부터 해충 퇴치제에 이르기까지 모든 것에서 사용될 수 있다. 스테비올 글리코시드를 함유하는 제품은 에어로졸, 액체, 겔 또는 과립 제형물일 수 있다.
세포계에 있어서, 일부 구현예에서, 이는 선택된 유전자와의 유전적 형질전환 및 이후 스테비올로부터 요망되는 스테비올 글리코시드의 생합성 제조를 허용할 임의의 세포계 또는 박테리아, 효모 및 이의 조합으로 구성되는 군으로부터 선택된다. 가장 바람직한 미생물 시스템에서, 요망되는 스테비올 글리코시드 화합물을 제조하기 위해 에스케리치아 콜라이(E. coli)가 사용된다.
본 개시에는 다양한 변형 및 대안적 형태가 적용되기 쉽지만, 이의 구체적 구현예를 도면에서 예로서 나타내며, 본원에서 상세히 설명될 것이다. 그러나, 본원에서 제시되는 도면 및 상세한 설명은 본 개시를 개시된 특정 구현예로 제한하려는 것이 아니라, 반대로, 첨부되는 청구범위에 의해 정의되는 본 개시의 정신 및 범위 내에 속하는 모든 변형, 균등부 및 대안을 커버하기 위한 것임이 이해되어야 한다.
본 발명의 다른 속성 및 장점은 첨부 도면을 참조로 하여, 본 발명의 바람직한 구현예의 하기 상세한 설명에서 보다 명확해질 것이다.
도 1은 Reb E로부터 Reb D4의 제조의 스테비올 글리코시드 생합성 경로를 나타낸다.
도 2는 Clm2 및 Clm3 효소에 의해 촉매되는 Reb E로부터 Reb D4의 시험관내 제조를 나타낸다. A: 레바우디오시드 E 표준물질("Reb E")을 나타낸다. B: 레바우디오시드 D4 표준물질("Reb D4")을 나타낸다. 16시간째에 Clm2(C) 및 Clm3(D)에 의해 효소적으로 제조된 Reb D4.
도 3은 Clm2 돌연변이체에 의해 제조된 화합물의 LC-MS 분석을 나타낸다.
도 4는 Clm3 돌연변이체에 의해 제조된 화합물의 LC-MS 분석을 나타낸다.
도 5는 GXT6 베타-글루코시다제에 의한 Reb D4, Reb E 및 Reb D의 가수분해를 나타낸다. 16시간째에 GXT6 베타-글루코시다제에 의한 Reb D4, Reb E 및 Reb D의 가수분해. A: 레바우디오시드 D 표준물질("Reb D"), 레바우디오시드 M 표준물질("Reb M") 및 레바우디오시드 A 표준물질("Reb A")을 나타낸다. B: 레바우디오시드 E 표준물질("Reb E"), 레바우디오시드 KA 표준물질("KA"), 스테비오시드 표준물질("ST") 및 루부소시드 표준물질("Rub")을 나타낸다. C: 레바우디오시드 D4 표준물질("Reb D4") 및 Reb WB2 표준물질("WB2")을 나타낸다. D: 레바우디오시드 WB1 표준물질("WB1") 및 Reb WB2 표준물질("WB2")을 나타낸다. E: Reb E의 가수분해를 나타낸다. F: D4의 가수분해. G: Reb D의 가수분해를 나타낸다.
도 6은 Clm2 및 Clm3 돌연변이체에 의한 Reb E의 Reb D4로의 생체전환을 확인하기 위한 제조된 화합물의 가수분해를 나타낸다. A: 레바우디오시드 D 표준물질("Reb D"), 레바우디오시드 M 표준물질("Reb M") 및 레바우디오시드 A 표준물질("Reb A")을 나타낸다. B: 레바우디오시드 E 표준물질("Reb E"), 레바우디오시드 KA 표준물질("KA"), 스테비오시드 표준물질("ST") 및 루부소시드 표준물질("Rub")을 나타낸다. C: 레바우디오시드 D4 표준물질("Reb D4") 및 Reb WB2 표준물질("WB2")을 나타낸다. D: 레바우디오시드 WB1 표준물질("WB1") 및 Reb WB2 표준물질("WB2")을 나타낸다. 16시간째에 Clm2(E) 및 Clm3(F)에 의한 Reb E의 생체전환. 16 hr째에 GXT6에 의해 제조된 화합물의 가수분해. G: Clm2 반응에서 제조된 화합물의 가수분해를 나타내며, H: Clm3 반응에서 제조된 화합물의 가수분해를 나타낸다.
도 7은 Hv1 및 Clm2 또는 Clm3 효소의 조합에 의한 스테비오시드로부터 Reb D4의 시험관내 제조를 나타낸다. A: 레바우디오시드 D 표준물질("Reb D"), 레바우디오시드 M 표준물질("Reb M") 및 레바우디오시드 A 표준물질("Reb A")을 나타낸다. B: 레바우디오시드 E 표준물질("Reb E") 및 스테비오시드 표준물질("ST")을 나타낸다. C: 레바우디오시드 D4 표준물질("Reb D4")을 나타낸다. Reb D4는 16시간째에 HV1과 Clm2(D) 또는 Clm3(E)의 조합에 의해 제조되었다.
도 8은 HV1과 Clm2(A) 또는 Clm3(B)의 조합에 의해 제조된 Reb D4의 LC-MS 분석을 나타낸다.
도 9는 스테비오시드로부터 Reb M의 생합성 경로를 나타낸다.
도 10은 스테비올 글리코시드 WB1의 구조를 나타낸다.
본원에서 사용되는 용어의 설명 :
스테비올 글리코시드는 남아메리카 식물 스테비아 레바우디아나(스테비아 레바우디아나(Stevia rebaudiana)(아스테라세애(Asteraceae)) 잎의 단 맛에 관여하는 화학적 화합물의 한 클래스이며, 식품, 사료 및 음료에서 감미제로서 사용될 수 있다.
정의:
세포계는 이소성 단백질의 발현을 제공하는 임의의 세포이다. 박테리아, 효모, 식물 세포 및 동물 세포가 포함된다. 원핵 및 진핵 세포가 모두 포함된다. 또한 세포 성분, 예컨대 리보솜에 기반하는 단백질의 시험관내 발현이 포함된다.
코딩 서열은 당업자에게 일반적이고 통상적인 의미로 주어지며 비제한적으로 특정 아미노산 서열을 인코딩하는 DNA 서열을 나타내기 위해 사용된다.
세포계의 성장. 성장에는 세포가 증식하고 분열할 수 있도록 하는 적절한 배지의 제공이 포함된다. 또한 세포 또는 세포 성분이 재조합 단백질을 번역하고 제조할 수 있도록 하는 자원의 제공이 포함된다.
단백질 발현. 단백질 제조는 유전자 발현 후 일어날 수 있다. 이는 DNA가 메신저 RNA(mRNA)로 전사된 후의 단계로 구성된다. 이어서 mRNA는 폴리펩타이드쇄로 번역되며, 궁극적으로 단백질로 폴딩된다. DNA는 전달감염(핵산을 세포 내로 의도적으로 도입하는 공정)을 통해 세포에 존재한다. 이 용어는 종종 진핵 세포에서 비-바이러스 방법에 대해 사용된다. 이는 또한 다른 방법 및 세포 유형을 나타낼 수 있지만, 다른 용어가 선호된다: "형질전환"은 박테리아, 식물 세포를 포함하는 비-동물 진핵 세포에서의 비-바이러스 DNA 전달을 설명하기 위해 더 자주 사용된다. 형질전환은 동물 세포에서 암성 상태로의 진행(발암)을 나타내기 위해서도 사용되므로, 이들 세포에서는 전달감염이 선호되는 용어이다. 형질도입은 바이러스-매개 DNA 전달을 설명하기 위해 종종 사용된다. 형질전환, 형질도입 및 바이러스 감염이 본 출원에 있어서 전달감염의 정의 하에 포함된다.
효모. 본 개시에 따르면, 효모는 진균계 구성원으로서 분류되는 진핵, 단세포 미생물이다. 효모는 다세포 선조로부터 진화한 단세포 유기체이지만, 본 개시에 유용한 일부 종은 가성균사 또는 위 균사로 알려진 연결된 발아 세포의 줄을 형성하여 다세포 특징을 전개하는 능력을 갖는 것들이다.
본 개시에서 사용되는 UGT 효소의 명칭은 패밀리 번호, 서브패밀리를 표시하는 문자 및 개별 유전자 번호의 조합에 의해 UGT 유전자를 분류하는 UGT 명명 위원회에서 채택되는 명명 체계와 일치한다(Mackenzie et al., "The UDP glycosyltransferase gene super family: recommended nomenclature updated based on evolutionary divergence," PHARMACOGENETICS, 1997, vol. 7, pp. 255-269). 예를 들어, 명칭 "UGT76G1"은 UGT 패밀리 번호 76(식물 기원임), 서브패밀리 G 및 유전자 번호 1에 속하는 유전자에 의해 인코딩되는 UGT 효소를 나타낸다.
구조 용어:
본원에서 사용되는 단수 형태 부정관사 및 정관사("a, an" 및 "the")에는 내용 상 명확히 달리 나타내지 않는 한, 복수의 참조물이 포함된다.
용어 "포함된다", "갖는다" 등이 설명 또는 청구범위에서 사용되는 정도까지, 이러한 용어는 "포함한다"라는 용어가 청구범위에서의 연결부로서 사용되는 것과 유사하게 포괄적인 것으로 의도된다.
단어 "예시적인"은 본원에서 "실시예, 예 또는 예시로서 작용하는" 것을 의미하기 위해 사용된다. "예시적인" 것으로서 본원에 기재된 임의의 구현예가 반드시 다른 구현예에 비해 바람직하거나 유리한 것으로 간주되어야 하는 것은 아니다.
용어 "상보적인"은 당업자에게 일반적이고 통상적인 의미로 주어지며, 비제한적으로 서로 혼성화할 수 있는 뉴클레오타이드 염기 간 관계를 설명하기 위해 사용된다. 예를 들어, DNA에 대해, 아데노신은 티민과 상보적이며 시토신은 구아닌과 상보적이다. 따라서, 종속 기술에는 실질적으로 유사한 핵산 서열뿐만 아니라 첨부된 서열 목록에서 보고되는 전체 서열과 상보적인 단리된 핵산 단편 또한 포함된다.
용어 "핵산" 및 "뉴클레오타이드"는 당업자에게 이의 각각의 일반적이고 통상적인 의미로 주어지며, 비제한적으로 단일쇄 또는 이중쇄 형태의 데옥시리보뉴클레오타이드 또는 리보뉴클레오타이드 및 이의 중합체를 나타내기 위해 사용된다. 구체적으로 제한되지 않는 한, 이 용어는 참조 핵산과 유사한 결합 특성을 가지며 천연 발생 뉴클레오타이드와 유사한 방식으로 대사되는 천연 뉴클레오타이드의 알려진 유사체를 함유하는 핵산을 포괄한다. 달리 나타내지 않는 한, 특정 핵산 서열은 명시적으로 나타낸 서열뿐만 아니라, 묵시적으로 보존적으로 변형된 변이체 또는 이의 축퇴성 변이체(예컨대, 축퇴성 코돈 치환) 및 상보적인 서열 또한 포괄한다.
용어 "단리된"은 당업자에게 일반적이고 통상적인 의미로 주어지며, 단리된 핵산 또는 단리된 폴리펩타이드의 맥락에서 사용되는 경우, 비제한적으로 인간의 손에 의해, 그 원상태 환경으로부터 벗어나 존재하고 이에 따라 천연 산물이 아닌 핵산 또는 폴리펩타이드를 나타내기 위해 사용된다. 단리된 핵산 또는 폴리펩타이드는 정제된 형태로 존재할 수 있거나, 비-원상태 환경에서, 예컨대 트랜스제닉 숙주 세포에서 존재할 수 있다.
본원에서 사용되는 용어 "인큐베이션하는" 및 "인큐베이션"은 2개 이상의 화학적 또는 생물학적 실체(예컨대 화학적 화합물 및 효소)를 혼합하고, 이들이 스테비올 글리코시드 조성물을 제조하기 바람직한 조건 하에 상호작용하도록 두는 공정을 의미한다.
용어 "축퇴성 변이체"는 하나 이상의 축퇴성 코돈 치환에 의해 참조 핵산 서열과 상이한 잔기 서열을 갖는 핵산 서열을 나타낸다. 축퇴성 코돈 치환은 하나 이상의 선택된(또는 모든) 코돈의 제3 위치가 혼합된 염기 및/또는 데옥시 이노신 잔기로 치환되는 서열을 생성하여 달성될 수 있다. 핵산 서열 및 이의 모든 축퇴성 변이체는 동일한 아미노산 또는 폴리펩타이드를 발현할 것이다.
용어 "폴리펩타이드", "단백질" 및 "펩타이드"는 당업자에게 이의 각각의 일반적이고 통상적인 의미로 주어진다; 3개 용어는 때때로 상호 교환적으로 사용되며, 그 크기 또는 기능과 무관하게 비제한적으로 아미노산 또는 아미노산 유사체의 중합체를 나타내기 위해 사용된다. "단백질"은 종종 상대적으로 큰 폴리펩타이드를 나타내는 데 사용되며 "펩타이드"는 종종 작은 폴리펩타이드를 나타내는 데 사용되고, 당분야에서 이들 용어의 사용은 중첩되며 변한다. 본원에서 사용되는 용어 "폴리펩타이드"는 달리 언급되지 않는 한, 펩타이드, 폴리펩타이드 및 단백질을 나타낸다. 용어 "단백질", "폴리펩타이드" 및 "펩타이드"는 폴리뉴클레오타이드 산물을 나타내는 경우 본원에서 상호 교환적으로 사용된다. 따라서, 예시적인 폴리펩타이드에는 폴리뉴클레오타이드 산물, 천연 발생 단백질, 동족체, 오르소로그, 파라로그, 단편 및 이의 다른 등가물, 변이체 및 유사체가 포함된다.
참조 폴리펩타이드에 대해 사용되는 경우, 용어 "폴리펩타이드 단편" 및 "단편"은 당업자에게 이의 일반적이고 통상적인 의미로 주어지며, 비제한적으로 아미노산 잔기가 참조 폴리펩타이드 자체에 비해 결실되지만, 잔여 아미노산 서열이 보통 참조 폴리펩타이드에서의 대응 위치와 동일한 폴리펩타이드를 나타내기 위해 사용된다. 이러한 결실은 참조 폴리펩타이드의 아미노-말단 또는 카복시-말단 또는 대안적으로 둘 다에서 일어날 수 있다.
용어 폴리펩타이드 또는 단백질의 "기능적 단편"은 전장 폴리펩타이드 또는 단백질의 일부이며, 전장 폴리펩타이드 또는 단백질과 실질적으로 동일한 생물학적 활성을 갖거나 실질적으로 동일한 기능을 수행하는(예컨대, 동일한 효소 반응을 수행하는) 펩타이드 단편을 나타낸다.
상호 교환적으로 사용되는 용어 "변이체 폴리펩타이드", "변형된 아미노산 서열" 또는 "변형된 폴리펩타이드"는 하나 이상의 아미노산에 의해, 예컨대, 하나 이상의 아미노산 치환, 결실 및/또는 부가에 의해 참조 폴리펩타이드와 상이한 아미노산 서열을 나타낸다. 일 양태에서, 변이체는 참조 폴리펩타이드의 일부 또는 모든 능력을 보유하는 "기능적 변이체"이다.
용어 "기능적 변이체"에는 보존적으로 치환된 변이체가 추가로 포함된다. 용어 "보존적으로 치환된 변이체"는 하나 이상의 보존적 아미노산 치환에 의해 참조 펩타이드와 상이하며 참조 펩타이드의 일부 또는 모든 활성을 유지하는 아미노산 서열을 갖는 펩타이드를 나타낸다. "보존적 아미노산 치환"은 아미노산 잔기의 기능적으로 유사한 잔기로의 치환이다. 보존적 치환의 예에는 하나의 비극성(소수성) 잔기, 예컨대 이소류신, 발린, 류신 또는 메티오닌의 또 다른 비극성(소수성) 잔기로의 치환; 하나의 하전된 또는 극성(친수성) 잔기의 또 다른 하전된 또는 극성(친수성) 잔기, 예컨대 아르기닌 및 라이신 간, 글루타민 및 아스파라긴 간, 트레오닌 및 세린 간 치환; 하나의 염기성 잔기, 예컨대 라이신 또는 아르기닌의 또 다른 염기성 잔기로의 치환; 또는 하나의 산성 잔기, 예컨대 아스파르트산 또는 글루탐산의 또 다른 산성 잔기로의 치환; 또는 하나의 방향족 잔기, 예컨대 페닐알라닌, 티로신 또는 트립토판의 또 다른 방향족 잔기로의 치환이 포함된다. 이러한 치환은 단백질 또는 폴리펩타이드의 겉보기 분자량 또는 등전점에 대한 효과를 거의 또는 전혀 갖지 않을 것으로 예상된다. 어구 "보존적으로 치환된 변이체"에는 생성 펩타이드가 본원에 기재된 바와 같은 참조 펩타이드의 일부 또는 모든 활성을 유지하는 한, 잔기가 화학적으로 유도체화된 잔기로 대체되는 펩타이드가 또한 포함된다.
주제 기술의 폴리펩타이드에 관한 용어 "변이체"에는 참조 폴리펩타이드의 아미노산 서열과 적어도 75%, 적어도 76%, 적어도 77%, 적어도 78%, 적어도 79%, 적어도 80%, 적어도 81%, 적어도 82%, 적어도 83%, 적어도 84%, 적어도 85%, 적어도 86%, 적어도 87%, 적어도 88%, 적어도 89%, 적어도 90%, 적어도 91%, 적어도 92%, 적어도 93%, 적어도 94%, 적어도 95%, 적어도 96%, 적어도 97%, 적어도 98%, 적어도 99%, 심지어 100% 동일한 아미노산 서열을 갖는 기능적으로 활성이 있는 폴리펩타이드가 추가로 포함된다.
모든 문법적 형태 및 철자 변형을 포함한 용어 "상동성"은 수퍼 패밀리로부터의 폴리뉴클레오타이드 또는 폴리펩타이드 및 상이한 종으로부터의 상동성 폴리뉴클레오타이드 또는 단백질을 포함하는, "공통 진화 기원"을 보유하는 폴리뉴클레오타이드 또는 폴리펩타이드 간 관계를 나타낸다(Reeck et al., CELL 50:667, 1987). 이러한 폴리뉴클레오타이드 또는 폴리펩타이드는 보존된 위치에서의 동일성 백분율 또는 특정 아미노산 또는 모티브의 존재의 관점과 무관하게, 이의 서열 유사성으로 반영되는 서열 상동성을 갖는다. 예를 들어, 2개의 상동성 폴리펩타이드는 적어도 75%, 적어도 76%, 적어도 77%, 적어도 78%, 적어도 79%, 적어도 80%, 적어도 81%, 적어도 82%, 적어도 83%, 적어도 84%, 적어도 85%, 적어도 86%, 적어도 87%, 적어도 88%, 적어도 89%, 적어도 900 적어도 91%, 적어도 92%, 적어도 93%, 적어도 94%, 적어도 95%, 적어도 96%, 적어도 97%, 적어도 98%, 적어도 99%, 심지어 100% 동일한 아미노산 서열을 가질 수 있다.
"적합한 조절 서열"은 당업자에게 일반적이고 통상적인 의미로 주어지며, 비제한적으로 코딩 서열의 상류(5' 비-코딩 서열), 코딩 서열 내 또는 하류(3' 비-코딩 서열)에 위치하고 연관된 코딩 서열의 전사, RNA 가공 또는 안정성 또는 번역에 영향을 미치는 뉴클레오타이드 서열을 나타내기 위해 사용된다. 조절 서열에는 프로모터, 번역 리더 서열, 인트론 및 폴리아데닐화 인식 서열이 포함될 수 있다.
"프로모터"는 당업자에게 일반적이고 통상적인 의미로 주어지며 비제한적으로 코딩 서열 또는 기능적 RNA의 발현을 제어할 수 있는 DNA 서열을 나타내기 위해 사용된다. 일반적으로, 코딩 서열은 프로모터 서열의 3'에 위치한다. 프로모터는 이의 전체가 원상태 유전자로부터 유래될 수 있거나, 자연에서 확인되는 상이한 프로모터로부터 유래되는 상이한 요소로 이루어질 수 있거나, 심지어 합성 DNA 절편을 포함할 수 있다. 당업자에게는 상이한 프로모터가 상이한 조직 또는 세포 유형에서 또는 상이한 발달 단계에서 또는 상이한 환경 조건에 반응하여 유전자의 발현을 지시할 수 있음이 이해된다. 유전자가 대부분의 시기에 대부분의 세포 유형에서 발현되도록 유도하는 프로모터는 일반적으로 "구성적 프로모터"로 언급된다. 대부분의 경우, 조절 서열의 정확한 경계가 완벽하게 정의되지 않았으므로, 상이한 길이의 DNA 단편이 동일한 프로모터 활성을 가질 수 있음이 추가로 인식된다.
용어 "작동 가능하게 연결된"은 하나의 기능이 다른 기능에 의해 영향받도록 하는 단일 핵산 단편 상에서의 핵산 서열의 연합을 나타낸다. 예를 들어, 프로모터는 이것이 해당 코딩 서열(즉, 프로모터의 전사 제어 하에 있는 코딩 서열)의 발현에 영향을 미칠 수 있는 경우 코딩 서열과 작동 가능하게 연결된 것이다. 코딩 서열은 센스 또는 안티센스 배향으로 조절 서열에 작동 가능하게 연결될 수 있다.
본원에서 사용되는 용어 "발현"은 당업자에게 일반적이고 통상적인 의미로 주어지며 비제한적으로 주제 기술의 핵산 단편으로부터 유래되는 센스(mRNA) 또는 안티센스 RNA의 전사 및 안정한 축적을 나타내기 위해 사용된다. "과발현"은 정상 또는 형질전환되지 않은 유기체에서의 제조 수준을 초과하는 트랜스제닉 또는 재조합 유기체에서의 유전자 산물의 제조를 나타낸다.
"형질전환"은 당업자에게 일반적이고 통상적인 의미로 주어지며, 비제한적으로 표적 세포 내로의 폴리뉴클레오타이드의 전달을 나타내기 위해 사용된다. 전달된 폴리뉴클레오타이드는 표적 세포의 게놈 또는 염색체 DNA 내로 혼입되어, 유전적으로 안정한 유전을 야기할 수 있거나, 숙주 염색체와 무관하게 복제할 수 있다. 형질전환된 핵산 단편을 함유하는 숙주 유기체는 "트랜스제닉" 또는 "형질전환된" 것으로 언급된다.
숙주 세포에 관해 본원에서 사용되는 경우, 용어 "형질전환된", "트랜스제닉" 및 "재조합"은 당업자에게 이의 각각의 일반적이고 통상적인 의미로 주어지며, 비제한적으로 이종성 핵산 분자가 도입된 숙주 유기체의 세포, 예컨대 식물 또는 미생물 세포를 나타내기 위해 사용된다. 핵산 분자는 숙주 세포의 게놈 내로 안정적으로 통합될 수 있거나, 핵산 분자는 염색체외 분자로서 존재할 수 있다. 이러한 염색체외 분자는 자가-복제할 수 있다. 형질전환된 세포, 조직 또는 대상체는 형질전환 공정의 최종 산물뿐만 아니라, 이의 트랜스제닉 자손도 포괄하는 것으로 이해된다.
폴리뉴클레오타이드에 관해 본원에서 사용되는 경우, 용어 "재조합", "이종성" 및 "외인성"은 당업자에게 이의 일반적이고 통상적인 의미로 주어지며, 비제한적으로 특정 숙주 세포에 대한 외래 출처에서 기인하는 또는 동일한 출처로부터인 경우, 그 원래 형태로부터 변형된 폴리뉴클레오타이드(예컨대, DNA 서열 또는 유전자)를 나타내기 위해 사용된다. 따라서, 숙주 세포 내의 이종성 유전자에는 특정 숙주 세포에 내인성인, 그러나 예를 들어, 부위-지정 돌연변이화 또는 다른 재조합 기법의 사용을 통해 변형된 유전자가 포함된다. 이 용어에는 또한 천연 발생 DNA 서열의 여러 비-천연 발생 카피가 포함된다. 따라서, 이 용어는 세포에 대해 외래이거나 이종성인 또는 세포와 상동성이지만 요소가 보통 확인되지 않는 숙주 세포 내의 위치에 있거나 형태인 DNA 절편을 나타낸다.
유사하게, 폴리펩타이드 또는 아미노산 서열에 관해 본원에서 사용되는 경우, 용어 "재조합", "이종성" 및 "외인성"은 특정 숙주 세포에 대해 외래 출처에서 기인하는 또는 동일한 출처로부터인 경우, 그 원래 형태로부터 변형된 폴리펩타이드 또는 아미노산 서열을 의미한다. 따라서, 재조합 DNA 절편은 숙주 세포에서 발현되어 재조합 폴리펩타이드를 제조할 수 있다.
용어 "플라스미드", "벡터" 및 "카세트"는 당업자에게 이의 각각의 일반적이고 통상적인 의미로 주어지며, 비제한적으로 종종 세포의 중심 대사의 일부가 아닌 유전자를 운반하고 보통 원형 이중쇄 DNA 분자 형태인 염색체외 요소를 나타내기 위해 사용된다. 이러한 요소는 임의의 출처로부터 유래되는, 단일쇄 또는 이중쇄 DNA 또는 RNA의 선형 또는 원형, 자가 복제 서열, 게놈 통합 서열, 파지 또는 뉴클레오타이드 서열일 수 있고, 여기서 여러 뉴클레오타이드 서열이 세포 내로 적절한 3' 미번역 서열을 따라 프로모터 단편 및 선택된 유전자 산물에 대한 DNA 서열을 도입할 수 있는 고유한 구성으로 연결되거나 재조합되었다. "형질전환 카세트"는 외래 유전자를 함유하며 특정 숙주 세포의 형질전환을 촉진하는 외래 유전자에 부가하는 요소를 갖는 특정 벡터를 나타낸다. "발현 카세트"는 외래 유전자를 함유하며 외래 숙주에서 해당 유전자의 발현 증강을 허용하는 외래 유전자에 부가하는 요소를 갖는 특정 벡터를 나타낸다.
본 개시는 부분적으로 Reb D4의 제조에서 Reb E의 용도에 관한 것이다. 생물학적 관점에서, 모든 스테비올 글리코시드는 스테비올의 일련의 글리코실화 반응에 의해 형성되며, 이는 전형적으로 당 모이어티의 공여체로서 유리딘 5'-디포스포글루코스(UDP-글루코스)를 사용하여 UDP-글리코실트랜스퍼라제(UGT) 효소에 의해 촉매된다. 식물에서, UGT는 UDP-글루코스로부터 스테비올로 글루코스 잔기를 전달할 수 있는 매우 폭넓은 효소 그룹이다. 이들 반응에서, 스테비오시드는 종종 다양한 레바우디오시드 화합물의 생합성에서의 중간체이다. 예를 들어, 스테비오시드의 C-13-O-글루코스의 C-3'에서 스테비오시드의 글리코실화는 레바우디오시드 A를 산출하는 반면; 스테비오시드의 19-0-글루코스 위치의 C-2'에서의 글리코실화는 레바우디오시드 E를 산출한다.
본 개시에 따르면, 레바우디오시드 E(C-19-O-글루코스에서)의 특이적이고 유도된 글리코실화는 Reb E로부터 레바우디오시드 Reb D4를 제조할 수 있고, 이어서 UGT 효소에 의해 Reb D4의 글리코실화에 대해 추가로 유도되어 레바우디오시드 M을 제조할 수 있다. 효소적으로 Reb E로부터 Reb D4를 제조하는 합성 단계는 이전에 보고되지 않았다. 스테비올 글리코시드 생합성 경로의 첫 번째 전용 단계에는 효소 KAH의 활성에 의한 엔트-카우렌산의 스테비올로의 전환이 관여된다. UGT76G1은 레바우디오시드 B를 형성하는 스테비올 바이오시드 및 레바우디오시드 A의 제조를 일으키는 스테비오시드에 대한 다중 글리코실화 활성을 나타내는 것으로 나타났다. 또한, KAH, UGT85C2, UGT74G1 및 UGT76G1의 상호작용 친화도가 엔트-카우렌산 및 스테비올에 대해 평가되었다. KAH에 대해 예측된 모델은 리간드 스테비올에 대해 가장 높은 친화도를, 다음으로 스테비올-모노시드 및 엔트-카우렌산에 대해 높은 친화도를 나타내었다. UGT76G1의 3차원 모델에 대한 도킹 결과는 엔트-카우렌산에 대한 그 가장 높은 결합 친화도를 제시하였으나, 또한 이들 효소가 스테비올 글리코시드 생합성 경로에서 하나를 초과하는 리간드와 상호작용하는 능력을 가짐을 제시한다. 본 개시에 따르면, UGT76G1의 도메인에서의 돌연변이는 글루코실화 활성의 특이적 변경을 유도하여 대안적인 레바우디오시드의 제조를 야기할 수 있다.
본 개시에 따르면, 스테비아 추출물의 맛 품질을 개선하기 위한 실제적 접근은 일반적으로 더 요망되는 맛 특징을 갖는 레바우디오시드 화합물의 수율을 증가시키고 이를 보다 생산적인 합성 경로를 통해 수행하는 것이다. 평가된 스테비올 글리코시드 중, 많은 사람들은 Reb M이 다양한 식품 및 음료에서 사용하기 위해 가장 바람직한 맛 및 화학적 특징을 갖는 것으로 여긴다. 그러나 상기 언급된 바와 같이, 식물이 그 잎에 존재하는 극히 소량의 상기 화합물을 가지며 이에 따라 상기 글리코시드의 대규모 제조를 가능하게 할 뿐만 아니라 식품 및 음료 산업에 대한 대안적인 감미제를 제공하기 위해 대안적인 생합성 공정이 개발되어야 한다. 상기 경로의 일부가 본원에서 제공된다.
따라서, 상업적 제품으로 개발되기 위해 더 우수하고 더 일관된 맛 프로필을 갖는 스테비올 글리코시드 및 비교적 일반적인 출발 기질, 예컨대 출발 분자로 보다 풍부한 스테비올 글리코시드를 이용함으로써 요망되는 글리코시드의 이러한 제조가 최대한 상업적으로 비용 효과적일 수 있도록 하는 상기 스테비올 글리코시드에 대한 필요성이 존재한다. 본 개시는 레바우디오시드 E를 통한 스테비오시드로부터 레바우디오시드 D4를 제조하는 방법을 제공한다.
추가로, 식물로부터의 추출 공정은 전형적으로 스테비올 글리코시드 회수를 위해 헥산, 클로로포름 및 에탄올과 같은 용매를 사용하는 고액 추출 기법을 채택한다(Catchpole et al., 2003). 그러나, 용매 추출 자체는 에너지 집약적이고, 독성 폐기물 처분 문제를 야기하며, 식물 자체가 재배되기 위한 광범위한 토지 면적을 필요로 하고, 소량 구성분이 회수되기 위한 추가 정제를 필요로 하는 산물을 산출한다. 따라서, 스테비올 글리코시드 제조 비용을 감소시키고 대규모 경작 및 가공의 환경적 영향을 경감시키기 위한 새로운 제조 방법이 또한 필요하다(Yao et al., 1994). 이러한 가능한 해결책의 하나는 상업화를 위해 이용 가능한 요망되는 스테비올 글리코시드의 선택성, 풍부도 및 순도를 증가시키는 소정 미생물 종의 제조를 허용하는 발효 생체-전환 기술의 사용이다.
위 내용에 부가하여, 소비자는 식품, 사료, 풍미제 또는 의약 성분에 대한 천연 및 생물학적 원천을 인정하고 적극적으로 찾지만, 이들은 또한 공급, 일관된 맛 프로필 및 환경적으로 지속 가능한 제조에 대해 우려한다. 이러한 상황에서, 본 개시의 미생물 발효 및 제조 방법은 다양한 산업 및 연구를 위해 유용한 양으로 Reb D4를 제공하면서 무기 합성 또는 현재의 식물 추출 기법에 비해 더 천연 방식으로 이를 수행한다.
따라서, 인간 및 동물 소비를 추가로 가능하게 하기 위한 경제적이고 편리한 Reb D4의 신규 제조 방법의 개발 필요성이 존재한다. 구체적으로, 본 개시는 조작된 미생물을 통해 Reb D4를 제조하기 위해 Reb E를 사용하는 방법을 제공한다.
본 개시는 그 전환을 허용하는 UGT 효소를 사용하는 Reb E로부터 관심 스테비올 글리코시드인 Reb D4의 제조에 관한 것이다. 주제 기술은 UDP 글리코실트랜스퍼라제 활성, 예컨대 스테비올 글리코시드를 합성하기 위한 1,3-13-O-글루코스 글리코실화 활성 및 1,3-19-O-글루코스 글리코실화 활성을 갖는 재조합 폴리펩타이드를 제공한다. 주제 기술의 재조합 폴리펩타이드는 스테비올 글리코시드 화합물의 생합성에 유용하다. 본 개시에서, UDP-글리코실트랜스퍼라제(UGT)는 활성화된 공여체 분자(전형적으로 UDP-글루코스)로부터 수신체 분자로 당 잔기를 전달하는 효소를 나타낸다. 1,3-19-O-글루코스 글리코실화 활성은 레바우디오시드 E의 19-O 글루코스 모이어티의 C-3'으로 당 모이어티를 전달하여 레바우디오시드 D4(Reb D4)를 제조하는 효소 활성을 나타낸다(도 1).
합성 생물학
본원에서 사용되는 표준 재조합 DNA 및 분자 클로닝 기법은 당분야에 널리 알려져 있으며, 예를 들어, 문헌[Sambrook, J., Fritsch, E. F. 및 Maniatis, T. MOLECULAR CLONING: A LABORATORY MANUAL, 2nd ed.; Cold Spring Harbor Laboratory: Cold Spring Harbor, N.Y., 1989 (이후 "Maniatis"); 및 Silhavy, T. J., Bennan, M. L. 및 Enquist, L. W. EXPERIMENTS WITH GENE FUSIONS; Cold Spring Harbor Laboratory: Cold Spring Harbor, N.Y., 1984; 및 Ausubel, F. M. et al., IN CURRENT PROTOCOLS IN MOLECULAR BIOLOGY, published by GREENE PUBLISHING 및 WILEY-INTERSCIENCE, 1987; (각각의 전문이 본원에 참조로 포함됨)]에 기재되어 있다.
글리코실화는 종종 생활성 및 식물 천연 산물의 저장을 제어하는 도처에서 일어나는 반응으로 간주된다. 소분자의 글리코실화는 지금까지 연구된 대부분의 식물 종에서 트랜스퍼라제 수퍼패밀리에 의해 촉매된다. 이들 글리코실트랜스퍼라제(GT)는 60개를 초과하는 패밀리로 분류되었다. 이들 중에서, UDP 글리코실트랜스퍼라제(UGT)로도 알려진 패밀리 1 GT 효소는 UDP-활성화된 당 모이어티를 특정 수신체 분자로 전달한다. 이들은 스테비올 글리코시드에서 이러한 당 모이어티를 전달하여 다양한 레바우디오시드를 생성하는 분자이다. 각각의 이러한 UGT는 이의 고유한 활성 프로필 및 이들이 이의 활성화된 당 모이어티를 전달하는 선호되는 구조 위치를 갖는다.
제조 시스템
원핵생물에서 단백질의 발현은 가장 흔하게는 융합 또는 비-융합 단백질의 발현을 지시하는 구성적 또는 유도성 프로모터를 함유하는 벡터로 박테리아 숙주 세포에서 수행된다. 융합 벡터는 보통 재조합 단백질의 아미노 말단에, 여기에서 인코딩되는 단백질에 여러 아미노산을 부가한다. 이러한 융합 벡터는 전형적으로 1) 재조합 단백질의 발현을 증가시키고; 2) 재조합 단백질의 용해도를 증가시키고; 3) 친화도 정제에서 리간드로서 작용하여 재조합 단백질의 정제를 보조하는 3가지 목적을 위해 작용한다. 종종, 단백분해 절단 부위가 융합 모이어티 및 재조합 단백질의 접합부에 도입되어 융합 단백질의 정제 이후 융합 모이어티로부터 재조합 단백질의 분리를 가능하게 한다. 이러한 벡터는 본 개시의 범위 내에 있다.
일 구현예에서, 발현 벡터에는 박테리아 세포에서 재조합 폴리펩타이드의 발현을 위한 유전적 요소가 포함된다. 박테리아 세포에서 전사 및 번역을 위한 요소에는 프로모터, 단백질 복합체에 대한 코딩 영역 및 전사 종결인자가 포함될 수 있다.
당업자는 발현 벡터의 제조를 위해 이용 가능한 분자 생물학 기법을 인지할 것이다. 상술된 바와 같이, 주제 기술의 발현 벡터 내로의 혼입을 위해 사용되는 폴리뉴클레오타이드는 일상적 기법, 예컨대 폴리머라제 연쇄 반응(PCR)에 의해 제조될 수 있다.
상보적인 응집성 말단을 통해 DNA를 벡터에 작동 가능하게 연결하기 위해 몇몇 분자 생물학 기법이 개발되었다. 일 구현예에서, 상보적인 단독중합체 트랙이 벡터 DNA 내로 삽입될 핵산 분자에 부가될 수 있다. 이어서 벡터 및 핵산 분자는 상보적인 단독중합체 꼬리 사이의 수소 결합 형성에 의해 연결되어 재조합 DNA 분자를 형성한다.
대안적인 구현예에서, 제공되는 하나 이상의 제한효소 부위를 함유하는 합성 링커가 주제 기술의 폴리뉴클레오타이드를 발현 벡터에 작동 가능하게 연결하기 위해 사용된다. 일 구현예에서, 폴리뉴클레오타이드는 제한효소 엔도뉴클레아제 소화에 의해 생성된다. 일 구현예에서, 핵산 분자는 이의 3'-5'-엑소뉴클레오타이드 분해 활성으로 돌출된 3'-단일쇄 말단을 제거하고 이의 중합 활성으로 오목해진 3'-말단을 채워서 무딘 말단 DNA 절편을 생성하는 효소인 박테리오파지 T4 DNA 폴리머라제 또는 에스케리치아 콜라이(E. coli) DNA 폴리머라제 I로 처리된다. 이어서 무딘-말단 절편은 무딘-말단 DNA 분자의 결찰을 촉매할 수 있는 효소, 예컨대 박테리오파지 T4 DNA 리가제의 존재 하에 큰 몰 과량의 링커 분자와 인큐베이션된다. 이에 따라, 반응 산물은 그 말단에 중합체성 링커 서열을 운반하는 폴리뉴클레오타이드이다. 이어서 이들 폴리뉴클레오타이드는 적절한 제한 효소로 절단되고 폴리뉴클레오타이드의 말단과 호환성인 말단을 생성하는 효소로 절단된 발현 벡터에 결찰된다.
대안적으로, 결찰-무관 클로닝(LIC) 부위를 갖는 벡터가 채택될 수 있다. 이어서 요구되는 PCR 증폭 폴리뉴클레오타이드가 제한효소 소화 또는 결찰 없이 LIC 벡터 내로 클로닝될 수 있다(본원과 일치하는 정도까지 본원에 참조로 포함되는, 문헌[Aslanidis 및 de Jong, NUCL. ACID. RES. 18 6069-74, (1990), Haun, et al, BIOTECHNIQUES 13, 515-18 (1992)]).
일 구현예에서, 선택된 플라스미드 내로의 삽입을 위해 관심 폴리뉴클레오타이드를 단리하고/단리하거나 변형시키기 위해, PCR을 사용하는 것이 적합하다. 핵산 분자의 요구되는 코딩 영역을 단리하고, 제한효소 엔도뉴클레아제 또는 LIC 부위를 부가하고, 요망되는 해독틀에 코딩 영역을 배치하기 위해 서열의 PCR 제조에서 사용하기 위해 적절한 프라이머가 설계될 수 있다.
일 구현예에서, 주제 기술의 발현 벡터 내로의 혼입을 위한 폴리뉴클레오타이드는 적절한 올리고뉴클레오타이드 프라이머를 사용하는 PCR을 사용하여 제조된다. 프라이머 자체가 증폭된 서열 산물 내로 혼입되는 동안 코딩 영역이 증폭된다. 일 구현예에서, 증폭 프라이머는 제한효소 엔도뉴클레아제 인식 부위를 함유하며, 이는 증폭된 서열 산물이 적절한 벡터 내로 클로닝될 수 있도록 한다.
발현 벡터는 통상적인 형질전환 또는 전달감염 기법에 의해 식물 또는 미생물 숙주 세포 내로 도입될 수 있다. 주제 기술의 발현 벡터로의 적절한 세포의 형질전환은 당분야에 알려진 방법에 의해 달성되며 전형적으로 벡터 및 세포 유형 모두에 의존한다. 적합한 기법에는 칼슘 포스페이트 또는 칼슘 클로라이드 공-침전, DEAE-덱스트란 매개 전달감염, 리포펙션, 화학천공 또는 전기천공이 포함된다.
성공적으로 형질전환된 세포, 즉, 발현 벡터를 함유하는 세포는 당분야에 널리 알려진 기법에 의해 확인될 수 있다. 예를 들어, 주제 기술의 발현 벡터로 전달감염된 세포를 배양하여 본원에 기재된 폴리펩타이드를 제조할 수 있다. 세포는 당분야에 널리 알려진 기법에 의해 발현 벡터 DNA의 존재에 대해 조사될 수 있다.
숙주 세포는 이전에 기재된 발현 벡터의 단일 카피 또는 대안적으로 발현 벡터의 복수 카피를 함유할 수 있다.
일부 구현예에서, 형질전환된 세포는 동물 세포, 곤충 세포, 식물 세포, 조류 세포, 진균 세포 또는 효모 세포이다. 일부 구현예에서, 세포는 유채 식물 세포, 평지씨 식물 세포, 야자 식물 세포, 해바라기 식물 세포, 목화 식물 세포, 옥수수 식물 세포, 땅콩 식물 세포, 아마 식물 세포, 참깨 식물 세포, 대두 식물 세포 및 페튜니아 식물 세포로 구성되는 군으로부터 선택되는 식물 세포이다.
외래 단백질의 고수준 발현을 지시하는 조절 서열을 함유하는 미생물 숙주 세포 발현 시스템 및 발현 벡터는 당업자에게 널리 알려져 있다. 이들 중 임의의 것이 미생물 숙주 세포에서 주제 기술의 재조합 폴리펩타이드의 발현을 위한 벡터를 구축하기 위해 사용될 수 있다. 이어서 이들 벡터는 주제 기술의 재조합 폴리펩타이드의 고수준 발현을 허용하기 위해 형질전환을 통해 적절한 미생물 내로 도입될 수 있다.
적합한 미생물 숙주 세포의 형질전환에 유용한 벡터 또는 카세트는 당분야에 널리 알려져 있다. 전형적으로 벡터 또는 카세트는 관련 폴리뉴클레오타이드의 전사 및 번역을 지시하는 서열, 선별 마커 및 자가 복제 또는 염색체 통합을 허용하는 서열을 함유한다. 적합한 벡터는 전사 개시 제어부를 보유하는 폴리뉴클레오타이드의 5' 영역 및 전사 종결을 제어하는 DNA 단편의 3' 영역을 포함한다. 이러한 제어 영역이 숙주로서 선택된 특정 종에 대해 원상태인 유전자로부터 유래될 필요가 없음이 이해되지만, 두 제어 영역이 모두 형질전환된 숙주 세포와 상동성인 유전자로부터 유래되는 것이 바람직하다.
요망되는 미생물 숙주 세포에서 재조합 폴리펩타이드의 발현을 유도하기 유용한 개시 제어 영역 또는 프로모터는 여럿이며 당업자에게 친숙하다. 비제한적으로 CYCI, HIS3, GALI, GALIO, ADHI, PGK, PH05, GAPDH, ADCI, TRPI, URA3, LEU2, ENO, TPI(사카로마이세스(Saccharomyces)에서의 발현에 유용함); AOXI(피치아(Pichia)에서의 발현에 유용함); 및 lac, trp, JPL, IPR, T7, tac 및 trc(에스케리치아 콜라이에서의 발현에 유용함)를 포함하는, 이들 유전자를 유도할 수 있는 실질적으로 모든 프로모터가 주제 기술을 위해 적합하다.
종결 제어 영역은 또한 미생물 숙주에 대해 원상태인 다양한 유전자로부터 유래될 수 있다. 본원에 기재된 미생물 숙주를 위해 종결 부위가 선택적으로 포함될 수 있다.
식물 세포에서, 주제 기술의 발현 벡터에는 요망되는 발생 단계에 요망되는 조직에서 주제 기술의 재조합 폴리펩타이드의 발현을 지시할 수 있는 프로모터에 작동 가능하게 연결된 코딩 영역이 포함될 수 있다. 편의 상 이유로, 발현될 폴리뉴클레오타이드는 동일한 폴리뉴클레오타이드로부터 유래된 번역 리더 서열 및 프로모터 서열을 포함할 수 있다. 전사 종결 신호를 인코딩하는 3' 비-코딩 서열이 또한 존재할 것이다. 발현 벡터는 폴리뉴클레오타이드 발현을 촉진하기 위해 하나 이상의 인트론을 또한 포함할 수 있다.
식물 숙주 세포에 있어서, 코딩 영역의 발현을 유도할 수 있는 임의의 프로모터 및 임의의 종결인자의 임의의 조합이 주제 기술의 벡터 서열에서 사용될 수 있다. 프로모터 및 종결인자의 일부 적합한 예에는 노팔린 합성효소(nos), 옥토핀 합성효소(ocs) 및 콜리플라워 모자이크 바이러스(CaMV) 유전자로부터의 것들이 포함된다. 사용될 수 있는 효율적인 식물 프로모터의 하나의 유형은 고수준 식물 프로모터이다. 주제 기술의 발현 벡터와 작동 가능하게 연결된 이러한 프로모터는 벡터의 발현을 촉진할 수 있을 것이다. 주제 기술에서 사용될 수 있는 고수준 식물 프로모터에는 예를 들어 대두로부터의 리불로스-1,5-바이포스페이트 카복실라제의 소형 서브유닛(ss)의 프로모터(이것이 본원과 일치하는 정도까지 그 전문이 본원에 포함되는, 문헌[Berry-Lowe et al., J. MOLECULAR 및 APP. GEN., 1:483 498 (1982)]) 및 엽록소 alb 결합 단백질의 프로모터가 포함된다. 이들 두 프로모터는 식물 세포에서 광-유도되는 것으로 알려져 있다(예를 들어, 이들이 본원과 일치하는 정도까지 각각이 본원에 참조로 포함되는, 문헌[Genetic Engineering of Plants, an Agricultural PerspectiveENETIC ENGINEERING OF PLANTS, AN AGRICULTURAL PERSPECTIVE, A. Cashmore, Plenum, N.Y. (1983), pages 29 38; Coruzzi, G. et al., The Journal of Biological ChemistryCHEMISTRY, 258: 1399(1983) 및 Dunsmuir, P. et al., JOURNAL OF MOLECULAR 및 APPLIED GENETICSournal of Molecular 및 Applied Genetics, 2:285(1983)] 참고).
Reb E에 대한 전구체 합성
전술된 바와 같이, 스테비올 글리코시드는 남아메리카 식물 스테비아 레바우디아나(스테비아 레바우디아나(Stevia rebaudiana)(아스테라세애(Asteraceae)) 잎 및 식물 루부스 칭기이(Rubus chingii(로사세애(Rosaceae))에서 단맛에 관여하는 화학적 화합물이다. 이들 화합물은 글리코실화된 디테르펜이다. 특히, 이의 분자는 하이드록실 수소 원자가 글루코스 분자에 의해 대체되어 에스테르를 형성하고 하이드록실 수소가 글루코스 및 람노스 조합으로 아세탈을 형성하는, 스테비올 분자로 간주될 수 있다.
본 개시의 관심 화합물의 하나의 제조 방법은 보편적인 또는 저렴한 전구체, 예컨대 화학적으로 유도되거나 조작된 미생물, 예컨대 박테리아 및/또는 효모에서 생합성을 통해 제조되는 스테비올 또는 루보소시드를 취하여, 알려져있거나 저렴한 방법을 통해 표적화된 스테비올 글리코시드, 예컨대 Reb E를 합성하는 것이다.
본 개시의 양태는 스테비올을 제조할 수 있는 미생물 시스템에서 재조합적으로 효소를 발현하는 것이 수반되는 방법에 관한 것이다. 일반적으로, 이러한 효소에는 코팔릴 디포스페이트 합성효소(CPS), 카우렌 합성효소(KS) 및 게라닐게라닐 디포스페이트 합성효소(GGPPS) 효소가 포함될 수 있다. 이는 내인성 이소프레노이드 합성 경로, 예컨대 비-메발로네이트(MEP) 경로 또는 메발론산 경로(MVA)를 발현하는 미생물 균주에서 일어난다. 일부 구현예에서, 세포는 에스케리치아 콜라이를 포함하는 박테리아 세포 또는 효모 세포, 예컨대 사카로마이세스(Saccharomyces) 세포, 피치아(Pichia) 세포 또는 야로위아(Yarrowia) 세포이다. 일부 구현예에서, 세포는 조류 세포 또는 식물 세포이다.
이후, 전구체는 화학적 합성에서의 사용을 위해 발효 배양으로부터 회수된다. 전형적으로, 이는 스테비올이지만, 세포 배양으로부터의 카우렌 또는 스테비올 글리코시드일 수 있다. 일부 구현예에서, 스테비올, 카우렌 및/또는 스테비올 글리코시드는 기상으로부터 회수되는 반면, 다른 구현예에서는 유기층 또는 중합체 수지가 세포 배양에 첨가되고 카우렌, 스테비올 및/또는 스테비올 글리코시드가 유기층 또는 중합체 수지로부터 회수된다. 일부 구현예에서, 스테비올 글리코시드는 레바우디오시드 A, 레바우디오시드 B, 레바우디오시드 C, 레바우디오시드 D, 레바우디오시드 E, 레바우디오시드 F 또는 둘코시드 A로부터 선택된다. 일부 구현예에서, 제조되는 테르페노이드는 스테비오바이오시드 또는 스테비오시드이다. 일부 구현예에서, 적어도 하나의 효소적 단계, 예컨대 하나 이상의 글리코실화 단계가 생체외 수행됨이 또한 이해되어야 한다.
본 개시의 일부는 이후 Reb D4로의 추가적인 효소적 전환을 거치는 Reb E 스테비올 글리코시드의 제조이다. 본 개시에 따르면, 미생물에 의해 제조된 스테비올을 요망되는 스테비올 글리코시드(여기서는 Reb D4)로 전환하기 위한 생합성은, 디테르페노이드 스테비올이 당 모이어티의 스테비올 골격 내로의 다단계 화학 어셈블리를 사용해서 루부소시드 및 스테비오시드로부터 전환되는 경우 일어난다.
스테비올 글리코시드의 생합성
본원에 기재된 바와 같이, 본 발명의 기술의 재조합 폴리펩타이드는 UDP-글리코실트랜스퍼라제 활성을 가지며, 자연에 존재하지 않거나 전형적으로 천연 출처에서 풍부도가 낮은 스테비올 글리코시드, 예컨대 레바우디오시드 D4 및 레바우디오시드 M 각각의 생합성 제조 방법의 개발에 유용하다. 본 발명의 기술의 재조합 폴리펩타이드는 UDP-글리코실트랜스퍼라제 활성을 가지며, 신규한 스테비올 글리코시드, 예컨대 레바우디오시드 D4의 생합성 제조 방법의 개발에 그리고 레바우디오시드 M의 합성 제조에 도달하는 데 유용하다.
기질은 하나 이상의 UDP 글리코실트랜스퍼라제에 의해 촉매되는 반응에서 스테비올 글리코시드 화합물로 전환될 수 있는 임의의 천연 또는 합성 화합물일 수 있다. 예를 들어, 기질은 천연 스테비아 추출물, 스테비올, 스테비올-13-O-글루코시드, 스테비올-19-O-글루코시드, 스테비올-1,2-바이오시드, 루부소시드, 스테비오시드, 레바우디오시드 A, 레바우디오시드 G 또는 레바우디오시드 E일 수 있다. 기질은 순수한 화합물 또는 상이한 화합물의 혼합물일 수 있다. 바람직하게는, 기질에는 루부소시드, 스테비오시드, 스테비올, 레바우디오시드 A, 레바우디오시드 E 및 이의 조합으로 구성되는 군으로부터 선택되는 화합물이 포함된다.
본원에 기재된 방법은 또한 본원에 기재된 제조합 펩타이드가 스테비올 글리코시드 화합물의 전반적 생합성의 효율을 개선하거나 결과를 변형시키기 위해 하나 이상의 추가 효소와 조합되어 기능할 수 있는 커플링 반응계를 제공한다. 예를 들어, 추가 효소는 글리코실화 반응으로부터 생성된 UDP를 다시 UDP-글루코스로 전환하여(예를 들어, 글루코스 잔기의 공여체로서 수크로스를 사용하여) 글리코실화 반응에 필요한 UDP-글루코스를 재생시킬 수 있고, 이에 따라 글리코실화 반응의 효율을 개선한다. 일부 구현예에서, 효소는 수크로스 합성효소이다. 일부 구현예에서, 추가 효소는 아라비답시스 수크로스 합성효소 1, 아라비답시스 수크로스 합성효소 3 또는 비그나 라디에이트(Vigna radiate) 수크로스 합성효소이다. 이러한 효소는, 예컨대 본원에 참조로 포함되는 미국 특허 제9,522,929호에 개시되어 있다.
또 다른 구현예에서, 주제 기술의 방법에는 재조합 UDP-글리코실트랜스퍼라제를 본원에 기재된 재조합 수크로스 합성효소, 기질 및 재조합 폴리펩타이드와 인큐베이션하는 단계가 추가로 포함된다. 재조합 UDP-글리코실트랜스퍼라제는 주제 기술의 재조합 폴리펩타이드에 의해 촉매되는 것과 상이한 글리코실화 반응을 촉매할 수 있다.
적합한 UDP-글리코실트랜스퍼라제에는 당분야에 알려지거나 스테비올 글리코시드 화합물의 생합성에서 하나 이상의 반응을 촉매할 수 있는 것으로 본원에 기재된 임의의 UGT, 예컨대 UGT85C2, UGT74G1, UGT76G1 또는 이의 기능적 동족체가 포함된다.
전형적으로, 주제 기술의 시험관내 방법에서, UDP-글루코스는 완충액에 약 0.2 mM 내지 약 5 mM, 바람직하게는 약 0.5 mM 내지 약 2 mM, 보다 바람직하게는 약 0.7 mM 내지 약 1.5 mM의 농도로 포함된다. 일 구현예에서, 재조합 수크로스 합성효소가 반응에 포함되는 경우, 수크로스는 또한 완충액에 약 100 mM 내지 약 500 mM, 바람직하게는 약 200 mM 내지 약 400 mM, 보다 바람직하게는 약 250 mM 내지 약 350 mM의 농도로 포함된다.
전형적으로, 주제 기술의 시험관내 방법에서, 건조 중량 기준으로, 재조합 폴리펩타이드 대 기질의 중량 비는 약 1:100 내지 약 1:5, 바람직하게는 약 1:50 내지 약 1:10, 보다 바람직하게는 약 1:25 내지 약 1:15이다.
전형적으로, 시험관내 방법의 반응 온도는 약 20℃ 내지 약 40℃, 적합하게는 25℃ 내지 약 37℃, 보다 적합하게는 28℃ 내지 약 32℃이다.
당업자는 본원에 기재되는 방법에 의해 제조되는 스테비올 글리코시드 조성물이 요망되는 풍미제 또는 감미제 조성물을 수득하기 위해 추가 정제되고 다른 스테비올 글리코시드, 풍미제 또는 감미제와 혼합될 수 있음을 인식할 것이다. 예를 들어, 본원에서 기재된 바와 같이 제조되는 레바우디오시드 M 또는 Reb D4가 농축된 조성물은 주요 스테비올 글리코시드로서 레바우디오시드 A를 함유하는 천연 스테비아 추출물과, 또는 요망되는 감미제 조성물을 제조하기 위한 다른 합성 또는 천연 스테비올 글리코시드 제품과 혼합될 수 있다. 대안적으로, 본원에 기재된 스테비올 글리코시드 조성물로부터 수득되는 실질적으로 정제된 스테비올 글리코시드(예컨대, 레바우디오시드 D4)는 다른 감미제, 예컨대 수크로스, 말토덱스트린, 아스파탐, 수크랄로스, 네오탐, 아세설팜 칼륨 및 사카린과 조합될 수 있다. 다른 감미제 대비 스테비올 글리코시드의 양은 당분야에 공지된 마와 같은 요망되는 맛을 수득하기 위해 조정될 수 있다. 본원에 기재된 스테비올 글리코시드 조성물(레바우디오시드 D, 레바우디오시드 E, 레바우디오시드 D4, 레바우디오시드 M 또는 이의 조합 포함)은 식품 제품(예컨대 음료, 소프트 드링크, 아이스크림, 유제품, 과자류, 시리얼, 츄잉 검, 베이킹 제품 등), 식이 보충물질, 의학적 영양분뿐만 아니라 약학 제품에 포함될 수 있다.
당업자는 본원에 기재된 방법에 의해 제조되는 스테비올 글리코시드 조성물이 요망되는 풍미제 또는 감미제 조성물을 수득하기 위해 추가 정제되고 다른 스테비올 글리코시드, 풍미제 또는 감미제와 혼합될 수 있음을 인식할 것이다. 예를 들어, 본원에 기재된 바와 같이 제조되는 레바우디오시드 D4가 농축된 조성물은 레바우디오시드 A를 우세한 스테비올 글리코시드로서 함유하는 천연 스테비아 추출물과 또는 요망되는 감미제 조성물을 제조하기 위해 다른 합성 또는 천연 스테비올 글리코시드 제품과 혼합될 수 있다. 대안적으로, 본원에 기재된 스테비올 글리코시드 조성물로부터 수득되는 실질적으로 정제된 스테비올 글리코시드(예컨대, 레바우디오시드 D4)는 다른 감미제, 예컨대 수크로스, 말토덱스트린, 아스파탐, 수크랄로스, 네오탐, 아세설팜 칼륨 및 사카린과 조합될 수 있다. 다른 감미제 대비 스테비올 글리코시드의 양은 당분야에 알려진 바와 같이, 요망되는 맛을 수득하기 위해 조정될 수 있다. 본원에 기재된 스테비올 글리코시드 조성물(레바우디오시드 D, 레바우디오시드 E, 레바우디오시드 D4, 레바우디오시드 M 또는 이의 조합을 포함함)은 식품 제품(예컨대 음료, 소프트 드링크, 아이스크림, 유제품, 과자류, 시리얼, 츄잉 검, 베이킹 제품 등), 식이 보충물질, 의학적 영양분뿐만 아니라 약학 제품에 포함될 수 있다.
동일성 스코어링을 사용하는 서열 유사성 분석
본원에서 사용되는 "서열 동일성"은 2개의 최적 정렬된 폴리뉴클레오타이드 또는 펩타이드 서열이 성분, 예컨대, 뉴클레오타이드 또는 아미노산의 정렬 윈도우에 걸쳐 변함없는 정도를 나타낸다. 평가 서열 및 참조 서열의 정렬된 절편에 대한 "동일성 분율"은, 2개의 정렬된 서열이 공유하는 동일한 성분의 수를, 참조 서열 절편에서 성분의 총 수, 즉 전체 참조 서열 또는 참조 서열의 더 작은 정의된 부분으로 나눈 것이다.
본원에서 사용되는 용어 "서열 동일성 백분율" 또는 "동일성 백분율"은 2개 서열이 최적으로 정렬되는 경우(비교 윈도우에 걸쳐 참조 서열의 총 20% 미만인 적절한 뉴클레오타이드 삽입, 결실 또는는 갭을 포함) 평가("대상체") 폴리뉴클레오타이드 분자(또는 그 상보쇄) 대비 참조("쿼리") 폴리뉴클레오타이드 분자(또는 그 상보쇄)의 선형 폴리뉴클레오타이드 서열에서 동일한 뉴클레오타이드의 백분율을 나타낸다. 비교 윈도우를 정렬하기 위한 서열의 최적 정렬은 당업자에게 잘 알려져 있고 Smith 및 Waterman의 국소 상동성 알고리즘, Needleman 및 Wunsch의 상동성 정렬 알고리즘, Pearson 및 Lipman의 유사성 검색 방법과 같은 도구에 의해, 바람직하게는 이러한 알고리즘의 전산화된 구현, 예컨대 GCG® Wisconsin Package®(Accelrys Inc., Burlington, MA)의 일환으로 이용 가능한 GAP, BESTFIT, FASTA 및 TFASTA에 의해 수행될 수 있다. 평가 서열 및 참조 서열의 정렬된 절편에 대한 "동일성 분율"은, 2개의 정렬된 서열이 공유하는 동일한 성분의 수를, 참조 서열 절편에서 성분의 총 수, 즉 전체 참조 서열 또는 참조 서열의 더 작은 정의된 부분으로 나눈 것이다. 서열 동일성 백분율은 동일성 분율에 100을 곱한 것으로 나타난다. 하나 이상의 폴리뉴클레오타이드 서열의 비교는 전장 폴리뉴클레오타이드 서열 또는 이의 일부 또는 더 긴 폴리뉴클레오타이드 서열에 대한 것일 수 있다. 본 개시의 목적을 위해 "동일성 백분율"은 또한 번역된 뉴클레오타이드 서열에 대해 BLASTX 버전 2.0을 그리고 폴리뉴클레오타이드 서열에 대해 BLASTN 버전 2.0을 사용하여 결정될 수 있다.
서열 동일성 백분율은 바람직하게는 서열 Analysis Software Package™(버전 10; Genetics Computer Group, Inc., Madison, WI)의 "Best Fit" 또는 "Gap" 프로그램을 사용하여 결정된다. "Gap"은 매칭 수를 최대화하고 갭 수를 최소화하는 2개 서열의 정렬을 찾기 위해 Needleman 및 Wunsch의 알고리즘(Needleman 및 Wunsch, JOURAL OF MOLECULAR BIOLOGYournal of Molecular Biology 48:443-453, 1970)을 이용한다. "BestFit"은 Smith 및 Waterman의 국소 상동성 알고리즘(Smith 및 Waterman, ADVANCES IN APPLIED MATHEMATICS, 2:482-489, 1981, Smith et al., Nucleic Acids Research 11:2205-2220, 1983)을 사용하여 2개 서열 간 최대 유사성 절편의 최적 정렬을 수행하고 매칭 수를 최대화하기 위해 갭을 삽입한다. 동일성 백분율은 가장 바람직하게는 "Best Fit" 프로그램을 사용하여 결정된다.
서열 동일성을 결정하기 유용한 방법은 또한 National Library of Medicine(National Institute of Health, Bethesda, Md. 20894)의 NCBI(National Center Biotechnology Information)에서 공개적으로 이용 가능한 BLAST(Basic Local Alignment Search Tool) 프로그램에 개시되어 있다; 문헌[BLAST Manual, Altschul et al., NCBI, NLM, NIH; Altschul et al., J. MOL. BIOL. 215:403-410 (1990)]을 참고한다; 버전 2.0 이상의 BLAST 프로그램은 갭(결실 및 삽입)의 정렬 내 도입을 허용한다; 펩타이드 서열에 있어서 BLASTX가 서열 동일성을 결정하기 위해 사용될 수 있으며; 폴리뉴클레오타이드 서열에 있어서 BLASTN이 서열 동일성을 결정하기 위해 사용될 수 있다.
본원에서 사용되는 용어 "상당한 서열 동일성 백분율"은 적어도 약 70% 서열 동일성, 적어도 약 80% 서열 동일성, 적어도 약 85% 동일성, 적어도 약 90% 서열 동일성 또는 훨씬 더 큰 서열 동일성, 예컨대 약 98% 또는 약 99% 서열 동일성의 서열 동일성 백분율을 나타낸다. 따라서, 본 발명의 일 구현예는 본원에 기재된 폴리뉴클레오타이드 서열과 적어도 약 70% 서열 동일성, 적어도 약 80% 서열 동일성, 적어도 약 85% 동일성, 적어도 약 90% 서열 동일성 또는 훨씬 더 큰 서열 동일성, 예컨대 약 98% 또는 약 99% 서열 동일성을 갖는 폴리뉴클레오타이드 분자이다. 본 개시의 Clm2 및 Clm3 서열의 활성을 갖는 폴리뉴클레오타이드 분자는 다양한 스테비올 글리코시드의 제조를 지시할 수 있고 본원에 제공된 폴리뉴클레오타이드 서열과 상당한 서열 동일성 백분율을 가지며 본 개시의 범위 내에 포괄된다.
동일성 및 유사성
동일성은 서열 정렬(서열 정보 또는 구조 정보 또는 일부 다른 정보만을 사용하여 수행될 수 있지만, 보통 서열 정보에만 기반함) 후 한 쌍의 서열 간에 동일한 아미노산의 분율이며, 유사성은 일부 유사성 매트릭스를 사용하는 정렬에 기반하여 할당되는 스코어이다. 유사성 지수는 하기 BLOSUM62, PAM250 또는 GONNET 또는 단백질의 서열 정렬을 위해 당업자가 사용하는 임의의 매트릭스 중 하나일 수 있다.
동일성은 2개의 하위-서열 간에 대응하는 정도이다(서열 간 갭 없음). 25% 이상은 동일성은 기능의 유사성을 시사하는 반면, 18% 내지 25%는 구조 또는 기능의 유사성을 시사한다. 2개의 완전 무관한 또는 무작위 서열(100개 잔기 초과임)이 20% 초과 동일성을 가질 수 있음을 유념한다. 유사성은 2개 서열이 비교되는 경우 이들 간 닮음의 정도이다. 이는 이의 동일성에 의존한다.
상기 설명으로부터 명백하듯이, 본 개시의 소정 양태는 본원에 예시되는 실시예의 특정 세부사항에 의해 제한되지 않으며, 이에 따라 다른 변형 및 적용 또는 이의 균등부가 당업자에게 생겨날 것임이 고려된다. 따라서 청구범위는 본 개시의 정신 및 범위에서 벗어나지 않는 모든 이러한 변형 및 적용을 커버하려는 것이다.
또한 달리 정의되지 않는 한, 본원에 사용된 모든 기술 및 과학 용어는 본 개시가 속하는 당업자에 의해 일반적으로 이해되는 바와 동일한 의미를 갖는다. 바람직한 방법 및 물질이 상술되어 있지만, 본원에 기재된 것들과 유사하거나 동등한 임의의 방법 및 물질이 본 개시의 실시 또는 평가에서 사용될 수 있다.
상기 발명이 이해의 목적을 위해 예시 및 예로서 일부 상세하게 설명되었으나, 당업자에게는 소정 변화 및 변형이 실시될 수 있음이 명백할 것이다. 따라서, 설명 및 실시예는 첨부되는 청구범위에 의해 서술되는 본 발명의 범위를 제한하는 것으로 간주되어서는 안 된다.
달리 정의되지 않는 한, 본원에서 사용된 모든 기술 및 과학 용어는 본 개시가 속하는 분야의 당업자가 일반적으로 이해하는 바와 동일한 의미를 갖는다. 본원에 기재된 것과 유사하거나 동등한 임의의 방법 및 물질이 본 개시의 실시 또는 평가에서 사용될 수 있지만, 바람직한 물질 및 방법이 아래에 기재된다.
본 개시는 하기 비제한적 실시예의 고려 시 보다 완전히 이해될 것이다. 이들 실시예는 주제 기술의 바람직한 구현예를 시사하지만, 단지 예시로서 주어짐이 이해되어야 한다. 상기 논의 및 이러한 실시예로부터, 당업자는 주제 기술의 본질적 특징을 확인할 수 있고, 이의 정신 및 범위에서 벗어나지 않고 다양한 용도 및 조건에 맞게 주제 기술을 다양하게 변화 및 변형시킬 수 있다.
실시예
1. Reb D4의 효소적 합성
Reb D4의 몇몇 효소적 제조 방법이 존재한다. Reb E로부터 출발하는 하나의 방법이 여기에 제시된다.
발현 작제물을 에스케리치아 콜라이 BL21(DE3) 내로 형질전환하고, 이후 OD600이 0.8 내지 1.0에 도달할 때까지 37℃에서 50 ㎍/㎖ 카나마이신을 함유하는 LB 배지에서 성장시켰다. 1 mM 이소프로필 β-D-1-티오갈락토피라노시드(IPTG)의 첨가에 의해 단백질 발현을 유도하고, 배양을 22시간 동안 16℃에서 추가 성장시켰다. 세포를 원심분리(3,000 × g; 10분; 4℃)에 의해 수확하였다. 세포 펠렛을 수집하고, 즉시 사용하거나 -80℃에서 보관하였다.
세포 펠렛을 용해 완충액(50 mM 인산칼륨 완충액, pH 7.2, 25 ㎍/㎖ 라이소자임, 5 ㎍/㎖ DNase I, 20 mM 이미다졸, 500 mM NaCl, 10% 글리세롤 및 0.4% TRITON X-100) 중에 재현탁하였다. 세포를 4℃에서 초음파 분쇄에 의해 손상시키고, 세포 파편을 원심분리(18,000 × g; 30분)에 의해 청정화하였다. 상청액을 평형화된(평형 완충액: 50 mM 인산칼륨 완충액, pH 7.2, 20 mM 이미다졸, 500 mM NaCl, 10% 글리세롤) Ni-NTA(Qiagen) 친화도 칼럼에 로딩하였다. 단백질 샘플의 로딩 후, 칼럼을 평형 완충액으로 세척하여 미결합 오염 단백질을 제거하였다. His-태그가 붙은 B-glu1 재조합 폴리펩타이드를 250 mM 이미다졸을 함유하는 평형 완충액에 의해 용출하였다.
사차 펌프, 온도 제어 칼럼 구획, 자동 샘플수집장치 및 UV 흡광도 검출기를 포함하는 Dionex UPLC ultimate 3000 시스템(Sunnyvale, CA)을 사용하여 HPLC 분석을 수행하였다. 가드 칼럼을 포함하는 Synergi Hydro-RP 칼럼을 스테비올 글리코시드의 특성규명을 위해 사용하였다. 수중 아세토니트릴을 HPLC 분석에서 용출을 위해 사용하였다. 검출 파장은 210 nm였다.
돌연변이체 효소
UGT76G1 구조에 기반하여, 일련의 원형 순열(PLoS computational Biology, 2012; BIOINFORMATICS, 2015) 및 돌연변이 세트를 설계하였고 이의 기능을 평가하였다. 원형 순열 분석은 관심 효소를 개발하거나 변형시키기 위한 강력한 도구이다. 몇몇 원형 순열 버전의 평가 후, 한 버전의 UGT76G1에서 유의미한 활성을 확인하였다. 상기 원형 돌연변이 "원형 순열 1"("CP1")은 스테비올 코어의 글리코실화의 관점에서 유의미한 활성을 실증하였다. 본 개시에 따라, CP1 효소의 활성을 연구하였고 Reb D4의 Reb M으로의 전환을 보조하는 그 능력을 평가하였다. 광범위하게 말하면, CP1은 그 도메인이 스위치되고 돌연변이 부위가 확인된 UGT76G1의 변이체이다.
CP1 모델링 분석에 기반하여, Reb E의 Reb D4로의 생체전환을 평가하기 위해 CP1 효소에 대한 여러 돌연변이 부위를 선택하였다. 일련의 이러한 돌연변이 후, 글리코실화 활성 및 스테비올 코어의 장식에 관해 요망되는 대로 기능할 수 있는 소수의 돌연변이체를 단리하였다. 야생형 CP1과 다른 위치 돌연변이체를 표 1에 제공한다. 이들 효소를 가지고, Reb E를 레바우디오시드 D4로 직접 생체-전환할 수 있는 유전적으로 변형된 미생물을 개발하였다. 예를 들어, 2개의 CP1 돌연변이체(Clm2 및 Clm3)가 Reb E의 Reb D4로의 생체전환을 위한 높은 효소 활성을 가짐을 확인하였다. Clm2(SEQ ID NO: 7)에는 2개의 돌연변이 부위가 포함되며 Clm3(SEQ ID NO: 9)은 CP1 서열로부터 3개의 돌연변이 부위를 함유한다.
Figure pct00001
2. Reb E로부터 Reb D4 제조를 위한 활성을 갖는 UGT 돌연변이체의 확인:
시험관내 Reb E의 레바우디오시드 D4로의 전환을 확인하기 위해, 스테비올 글리코시드 기질로서 Reb E를 사용하여 Clm2 및 Clm3 효소 돌연변이체를 검정하였다. 재조합 폴리펩타이드(10 ㎍)를 200 ㎕ 시험관내 반응 시스템에서 평가하였다. 반응 시스템은 50 mM 칼륨 포스페이트 완충액, pH 7.2, 3 mM MgCl2, 1 ㎎/㎖ Reb E 기질 및 1 mM UDP-글루코스를 함유하였다. 반응을 37℃에서 수행하고 200 ㎕의 1-부탄올을 첨가하여 종료하였다. 샘플을 200 ㎕의 1-부탄올로 3회 추출하였다. 풀링한 분획을 건조하고, 고성능 액체 크로마토그래피(HPLC) 분석을 위해 70 ㎕의 80% 메탄올 중에 용해시켰다.
사차 펌프, 온도 제어 칼럼 구획, 자동 샘플수집장치 및 UV 흡광도 검출기를 포함하는 Dionex UPLC ultimate 3000 시스템(Sunnyvale, CA)을 사용하여 HPLC 분석을 수행하였다. 가드 칼럼을 포함하는 Synergi Hydro-RP 칼럼을 스테비올 글리코시드의 특성규명을 위해 사용하였다. 수중 아세토니트릴을 HPLC 분석에서 용출을 위해 사용하였다. 검출 파장은 210 nm였다. Reb D 및 Reb D4는 HPLC 프로필에서 상이한 체류 시간을 갖는다. 그러나, Reb D4 및 Reb E는 가까운 체류 시간을 갖는다(도 2, A 및 B).
도 2에 나타낸 바와 같이, Clm2 및 Clm3 효소는 Reb E를 Reb D4 표준물질과 유사한 체류 시간을 갖는 화합물로 전환할 수 있어서, 이들 두 돌연변이체가 Reb D4 제조를 위한 효소 활성을 가짐을 시사한다.
3. LC-MS 분석에 의한 Reb D4 제조의 확인
도 2에 나타낸 바와 같이, Reb E 및 Reb D4의 체류 시간은 매우 가깝다. 현재의 HPLC 방법에 의해서는 반응에서 Reb E 및 Reb D4를 구별하기 어렵다. Reb E의 Reb D4로의 전환을 확인하기 위해, 제조된 화합물을 LC-MS 분석에 의해 분석하였다.
관련 반응에서 Reb D4 화합물을 확인하기 위해, Clm2 및 Clm3 생체전환으로부터의 샘플을 Synergy Hydro-RP 칼럼을 사용하여 LC-MS에 의해 분석하였다. 이동상 A는 수중 0.1% 포름산이었고, 이동상 B는 아세토니트릴 중 0.1% 포름산이었다. 유속은 0.5 ㎖/분이었다. 이동상 B는 20% B로 시작하여 2분 동안 유지하였다. 이어서 15분에 걸쳐 45% B까지의 선형 구배를 수행하였다. 그 후, B%를 0.5분에 걸쳐 90%까지 증가시키고 다음 8분 동안 유지하였다. 0.5분에 걸쳐 출발 조건을 재확립하고 다시 4.5분 동안 유지한 후 컬럼의 재-평형화를 위해 다음 주사를 수행하였다. 샘플의 질량 분광측정 분석을 양이온 방식으로 최적화된 방법을 이용하여 Bruker Impact II 상에서 수행하였다. 깔때기 1 RF는 400 Vp-p로, 깔때기 2 RF는 400 Vp-p로, 전달 시간 120 μs 및 펄스-전 보관 15 μs로 유지하였다. m/z 스케일의 전체 교정은 각각의 수행 말기에 나트륨 포르메이트 클러스터로 수행하였다. 소스를 깨끗하게 유지하기 위해 이차/선택적 6-포트 밸브를 사용하여 처음 2분 동안 모든 용출액을 폐기물로 돌렸다.
도 3 및 도 4에 나타낸 바와 같이, 제조된 화합물은 Reb D4와 동일한 분자량을 갖는다. Reb E 기질을 또한 동일한 체류 시간에 검출할 수 있다. 이들 결과는 이들 반응에서 Reb D4 제조가 Clm2 또는 Clm3 효소에 의해 촉매되었음을 뒷받침하는 증거를 제공한다.
4. 효소 검정에 의한 Reb D4 제조의 확인
본 개시에 따라, Reb D의 제조를 확인하기 위한 효소적 검정을 확립하였다. 베타-글루코시다제 검정을 변형시켜 관련 반응에서 Reb D4 제조를 검출하였다. 상기 검정에서, 베타-글루코시다제는 스테비올 글리코시드를 가수분해하여 글루코스기(들)를 제거할 수 있다. 스크리닝 후, 베타-글루코시다제(GXT6, SEQ: 5)가 Reb D4, Reb E 및 Reb D를 가수분해하는 특이적 효소 활성을 가짐을 확인하였다. 따라서, 본 개시의 반응에 존재하는 3가지 화합물을 구별하기 위한 효소 검정을 생성하였다.
도 5에 나타낸 바와 같이, GXT6은 Reb D4를 Reb WB1로 가수분해할 수 있다. Reb E는 GXT6에 의해 스테비오시드 및 루부소시드로 가수분해될 수 있다; Reb D는 GXT6에 의해 Reb A로 가수분해될 수 있다. 모든 화합물은 HPLC 프로필에서 상이한 체류 시간을 가지며 명확히 구별될 수 있다.
Clm2 및 Clm3에 의해 Reb E 생체전환으로부터 제조된 화합물을 사용하여 동일한 효소 반응을 수행하였다. 도 6에 나타낸 바와 같이, Clm2 및 Clm3 반응에서 Reb WB1만 제조될 수 있다. Clm2 및 Clm3 반응에서는 Reb A 및 루부소시드가 거의 또는 전혀 제조될 수 없다. 이들 결과는 Clm2 및 Clm3 반응에서 Reb D4의 생합성을 확인하기 위한 증거를 제공하였다. Clm2 및 Clm3은 Reb E의 Reb D4로의 전환에 대한 주요 효소 활성을 가지며, Reb E의 Reb D로의 전환에 대해 거의 또는 전혀 활성을 갖지 않는다.
본 개시에 따르면, Reb E는 Clm2 및 Clm3 효소의 작용에 의해 가수분해되어 Reb M을 제조하였다. 각각의 취해진 측정에서, 본 개시의 생합성 경로가 예측할 바와 함께 화합물이 제조되었다.
5. 효소 반응에 의한 스테비오시드의 Reb D4로의 생체전환
시험관내 스테비오시드의 레바우디오시드 D4로의 전환을 확인하기 위해, 스테비올 글리코시드 기질로 스테비오시드를 사용하여 HV1, Clm2 및 Clm3 효소를 검정하였다. 반응 시스템은 50 mM 칼륨 포스페이트 완충액(pH 7.2), 3 mM MgCl2, 1 ㎎/㎖ 스테비오시드, 1 mM UDP-글루코스, HV1 및 Clm2 또는 Clm3을 함유하였다. 반응을 37℃에서 수행하고 1-부탄올을 첨가하여 종료하였다. 샘플을 1-부탄올로 3회 추출하였다. 풀링한 분획을 건조하고, 고성능 액체 크로마토그래피(HPLC) 분석을 위해 80% 메탄올 중에 용해시켰다. HPLC 분석을 상술된 바와 같이 수행하였다.
도 7에 나타낸 바와 같이, HV1과 Clm2 또는 Clm3의 조합은 스테비오시드를 Reb D4로 전환할 수 있다. 반응에서, 스테비오시드는 HV1 효소에 의해 Reb E로 전환될 수 있고, 이어서 제조된 Reb E는 Clm2 또는 Clm3 효소에 의해 Reb D4로 전환될 수 있다. 관련 반응에서 Reb D4 화합물을 확인하기 위해, Synergy Hydro-RP 칼럼을 사용하여 LC-MS에 의해 샘플을 분석하였다. 도 8에 나타낸 바와 같이, 제조된 화합물(체류 시간 9.1분)은 Reb D4와 동일한 분자량을 갖는다. Reb E 기질도 동일한 체류 시간에 검출될 수 있다. 이들 결과는 반응에서의 Reb D4 제조를 뒷받침하는 증거를 제공한다.
본 개시에 따르면, 생체전환 시스템에 투입될 때, Reb E로부터 Reb D4의 제조를 허용하는 2개의 UGT 돌연변이체를 개발하였다. Reb D4를 통한 스테비오시드로부터 Reb M으로의 전체 생합성 경로를 확인하였다(도 9). 스테비오시드는 전술된 바와 같이 HV1 효소에 의해 Reb E로 전환될 수 있고, 이어서 Reb E는 본원에 기재된 바와 같이 Clm2 또는 Clm3 효소에 의해 Reb D4로 전환될 수 있다. 마지막으로, Reb D4는 UGT76G1, CP1 및 CR1로부터의 효소 중 하나에 의해 Reb M으로 전환될 수 있다.
Reb E를 Reb D4로 전환하기 위한 UGT 돌연변이체를 확인하였다. 구조 모델링 분석에 기반하여, Reb E를 Reb D4로 전환하는 이의 능력에 대해 CP1 효소(자체가 UGT76G1의 원형 버전임)의 일부 돌연변이체 변이를 스크리닝하였다. 2개의 돌연변이체가 이러한 능력을 갖는 것으로 확인하였고, 이들이 Clm2 및 Clm3으로 확인되었다.
상술된 바와 같이, Reb D4 제조를 확인하기 위한 LC-MS 방법을 확립하였다. HPLC 프로필에 나타낸 바와 같이, Reb E 및 Reb D4의 체류 시간은 매우 가깝다. 대부분의 기존 HPLC 방법에 의해서는 반응에서 Reb E 및 Reb D4를 구별하기 어렵다. Reb E의 Reb D4로의 전환을 확인하기 위해, 제조된 화합물을 LC-MS 분석에 의해 분석하였다. Clm2 및 Clm3 효소 둘 다에 의해 Reb D4 화합물이 Reb E의 생체전환에서 검출될 수 있다.
상술된 바와 같이, Reb D4 제조를 확인하기 위해 효소 검정을 확립하였다. 관련 반응에서 Reb D4의 제조를 확인하기 위해, Reb D4, Reb E 및 Reb D 스테비올 글리코시드를 구별하기 위한 베타-글루코시다제 검정을 생성하였다. 상기 검정에서, 베타-글루코시다제는 스테비올 글리코시드를 가수분해하여 글루코스기(들)를 제거할 수 있다. GXT6은 Reb D4, Red E 및 Reb D를 가수분해하기 위한 특이적 효소 활성을 갖는다. 따라서, 본 개시의 반응에 존재하는 3개 화합물을 구별하기 위한 효소 검정을 생성하였다. 효소 검정 후, Reb E로부터 Reb D4 합성에 대한 Clm2 및 Clm3의 효소 활성을 뒷받침하는 Reb D4의 존재를 관련 반응에서 확인하였다.
관심 서열:
서열:
UGT76G1 서열:
UGT76G1 서열 아미노산 서열: (SEQ ID NO: 1)
Figure pct00002
UGT76G1 서열 DNA 서열: (SEQ ID NO: 2)
Figure pct00003
CP1 서열:
CP1 서열 아미노산: (SEQ ID NO: 3)
Figure pct00004
CP1 서열 DNA 서열: (SEQ ID NO: 4)
Figure pct00005
GXT6: 아미노산. 스트렙토마이세스(Streptomyces) sp. 유래 GXT6(SEQ ID NO: 5)
Figure pct00006
GXT6: 에스케리치아 콜라이(E. coli)에 대한 DNA 코돈 최적화(SEQ ID NO: 6)
Figure pct00007
Clm2: 돌연변이체 효소에 대한 아미노산 서열(SEQ ID NO: 7)
Figure pct00008
Clm2: 돌연변이체 효소에 대한 DNA 서열(SEQ ID NO: 8)
Figure pct00009
Clm3: 돌연변이체 효소에 대한 아미노산 서열(SEQ ID NO: 9)
Figure pct00010
Clm3: 돌연변이체 효소에 대한 DNA 서열(SEQ ID NO: 10)
Figure pct00011
HV1: 아미노산 서열(SEQ ID NO: 11)
Figure pct00012
HV1: DNA 서열(SEQ ID NO: 12)
Figure pct00013
CR1: 아미노산 서열(SEQ ID NO: 13)
Figure pct00014
CR1: DNA 서열(SEQ ID NO: 14)
Figure pct00015
산업적 이용 가능성/기술 분야의 진술
본 개시는 식품, 사료, 음료 및 약리 산업에서 적용 가능성을 갖는다. 본 개시는 일반적으로, 예컨대 변형된 미생물 균주를 통한 스테비올 글리코시드의 생합성 제조 방법에 관한 것이다.
인용되고 참조로 포함된 문헌 :
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Leu Pro Gln 145 150 155 160 Phe Asp Glu Leu Gly Tyr Leu Asp Pro Asp Asp Lys Thr Arg Leu Glu 165 170 175 Glu Gln Ala Ser Gly Phe Pro Met Leu Lys Val Lys Asp Ile Lys Ser 180 185 190 Ala Tyr Ser Asn Trp Gln Ile Leu Lys Glu Ile Leu Gly Lys Met Ile 195 200 205 Lys Gln Thr Lys Ala Ser Ser Gly Val Ile Trp Asn Ser Phe Lys Glu 210 215 220 Leu Glu Glu Ser Glu Leu Glu Thr Val Ile Arg Glu Ile Pro Ala Pro 225 230 235 240 Ser Phe Leu Ile Pro Leu Pro Lys His Leu Thr Ala Ser Ser Ser Ser 245 250 255 Leu Leu Asp His Asp Arg Thr Val Phe Gln Trp Leu Asp Gln Gln Pro 260 265 270 Pro Ser Ser Val Leu Tyr Val Ser Phe Gly Ser Thr Ser Glu Val Asp 275 280 285 Glu Lys Asp Phe Leu Glu Ile Ala Arg Gly Leu Val Asp Ser Lys Gln 290 295 300 Ser Phe Leu Trp Val Val Arg Pro Gly Phe Val Lys Gly Ser Thr Trp 305 310 315 320 Val Glu Pro Leu Pro Asp Gly Phe Leu Gly Glu Arg Gly Arg Ile Val 325 330 335 Lys Trp Val Pro Gln Gln Glu Val Leu Ala His Gly Ala Ile Gly Ala 340 345 350 Phe Trp Thr His Ser Gly Trp Asn Ser Thr Leu Glu Ser Val Cys Glu 355 360 365 Gly Val Pro Met Ile Phe Ser Asp Phe Gly Leu Asp Gln Pro Leu Asn 370 375 380 Ala Arg Tyr Met Ser Asp Val Leu Lys Val Gly Val Tyr Leu Glu Asn 385 390 395 400 Gly Trp Glu Arg Gly Glu Ile Ala Asn Ala Ile Arg Arg Val Met Val 405 410 415 Asp Glu Glu Gly Glu Tyr Ile Arg Gln Asn Ala Arg Val Leu Lys Gln 420 425 430 Lys Ala Asp Val Ser Leu Met Lys Gly Gly Ser Ser Tyr Glu Ser Leu 435 440 445 Glu Ser Leu Val Ser Tyr Ile Ser Ser Leu 450 455 <210> 2 <211> 1377 <212> DNA <213> Stevia rebaudiana <400> 2 atggagaata agacagaaac aaccgtaaga cggaggcgga ggattatctt gttccctgta 60 ccatttcagg gccatattaa tccgatcctc caattagcaa acgtcctcta ctccaaggga 120 ttttcaataa caatcttcca tactaacttt aacaagccta aaacgagtaa ttatcctcac 180 tttacattca ggttcattct agacaacgac cctcaggatg agcgtatctc aaatttacct 240 acgcatggcc ccttggcagg tatgcgaata ccaataatca atgagcatgg agccgatgaa 300 ctccgtcgcg agttagagct tctcatgctc gcaagtgagg aagacgagga agtttcgtgc 360 ctaataactg atgcgctttg gtacttcgcc caatcagtcg cagactcact 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Asp Glu Glu Val Ser Cys Leu 370 375 380 Ile Thr Asp Ala Leu Trp Tyr Phe Ala Gln Ser Val Ala Asp Ser Leu 385 390 395 400 Asn Leu Arg Arg Leu Val Leu Met Thr Ser Ser Leu Phe Asn Phe His 405 410 415 Ala His Val Ser Leu Pro Gln Phe Asp Glu Leu Gly Tyr Leu Asp Pro 420 425 430 Asp Asp Lys Thr Arg Leu Glu Glu Gln Ala Ser Gly Phe Pro Met Leu 435 440 445 Lys Val Lys Asp Ile Lys Ser Ala Tyr Ser 450 455 <210> 4 <211> 1377 <212> DNA <213> Artificial sequence <220> <223> CP1 <400> 4 atgaactggc aaatcctgaa agaaatcctg ggtaaaatga tcaaacaaac caaagcgtcg 60 tcgggcgtta tctggaactc cttcaaagaa ctggaagaat cagaactgga aaccgttatt 120 cgcgaaatcc cggctccgtc gttcctgatt ccgctgccga aacatctgac cgcgagcagc 180 agcagcctgc tggatcacga ccgtacggtc tttcagtggc tggatcagca accgccgtca 240 tcggtgctgt atgtttcatt cggtagcacc tctgaagtcg atgaaaaaga ctttctggaa 300 atcgctcgcg gcctggtgga tagtaaacag tccttcctgt gggtggttcg tccgggtttt 360 gtgaaaggca gcacgtgggt tgaaccgctg ccggatggct tcctgggtga acgcggccgt 420 attgtcaaat gggtgccgca gcaagaagtg 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atggatggta actcctcctc ctcgccgctg catgtggtca tttgtccgtg gctggctctg 60 ggtcacctgc tgccgtgtct ggatattgct gaacgtctgg cgtcacgcgg ccatcgtgtc 120 agttttgtgt ccaccccgcg caacattgcc cgtctgccgc cgctgcgtcc ggctgttgca 180 ccgctggttg atttcgtcgc actgccgctg ccgcatgttg acggtctgcc ggagggtgcg 240 gaatcgacca atgatgtgcc gtatgacaaa tttgaactgc accgtaaggc gttcgatggt 300 ctggcggccc cgtttagcga atttctgcgt gcagcttgcg cagaaggtgc aggttctcgc 360 ccggattggc tgattgtgga cacctttcat cactgggcgg cggcggcggc ggtggaaaac 420 aaagtgccgt gtgttatgct gctgctgggt gcagcaacgg tgatcgctgg tttcgcgcgt 480 ggtgttagcg aacatgcggc ggcggcggtg ggtaaagaac gtccggctgc ggaagccccg 540 agttttgaaa ccgaacgtcg caagctgatg accacgcaga atgcctccgg catgaccgtg 600 gcagaacgct atttcctgac gctgatgcgt agcgatctgg ttgccatccg ctcttgcgca 660 gaatgggaac cggaaagcgt ggcagcactg accacgctgg caggtaaacc ggtggttccg 720 ctgggtctgc tgccgccgag tccggaaggc ggtcgtggcg tttccaaaga agatgctgcg 780 gtccgttggc tggacgcaca gccggcaaag tcagtcgtgt acgtcgcact gggttcggaa 840 gtgccgctgc gtgcggaaca agttcacgaa ctggcactgg gcctggaact gagcggtgct 900 cgctttctgt gggcgctgcg taaaccgacc gatgcaccgg acgccgcagt gctgccgccg 960 ggtttcgaag aacgtacccg cggccgtggt ctggttgtca cgggttgggt gccgcagatt 1020 ggcgttctgg ctcatggtgc ggtggctgcg tttctgaccc actgtggctg gaactctacg 1080 atcgaaggcc tgctgttcgg tcatccgctg attatgctgc cgatcagctc tgatcagggt 1140 ccgaatgcgc gcctgatgga aggccgtaaa gtcggtatgc aagtgccgcg tgatgaatca 1200 gacggctcgt ttcgtcgcga agatgttgcc gcaaccgtcc gcgccgtggc agttgaagaa 1260 gacggtcgtc gcgtcttcac ggctaacgcg aaaaagatgc aagaaattgt ggccgatggc 1320 gcatgccacg aacgttgtat tgacggtttt atccagcaac tgcgcagtta caaggcgtaa 1380 <210> 13 <211> 458 <212> PRT <213> Artificial sequence <220> <223> CR1 <400> 13 Met Asn Trp Gln Ile Ala Lys Glu Ile Leu Gly Lys Met Ile Lys Gln 1 5 10 15 Thr Lys Ala Ser Ser Gly Val Ile Trp Asn Ser Phe Lys Glu Leu Glu 20 25 30 Glu Ser Glu Leu Glu Thr Val Ile Arg Glu Ile Pro Ala Pro Ser Phe 35 40 45 Leu Ile Pro Leu Pro Lys His Leu Thr Ala Ser Ser Ser Ser Leu Leu 50 55 60 Asp His Asp Arg Thr Val Phe Gln Trp Leu Asp Gln Gln Pro Pro Ser 65 70 75 80 Ser Val Leu Tyr Val Ser Phe Gly Ser Thr Ser Glu Val Asp Glu Lys 85 90 95 Asp Phe Leu Glu Ile Ala Arg Gly Leu Val Asp Ser Lys Gln Ser Phe 100 105 110 Leu Trp Val Val Arg Pro Gly Phe Val Lys Gly Ser Thr Trp Val Glu 115 120 125 Pro Leu Pro Asp Gly Phe Leu Gly Glu Arg Gly Arg Ile Val Lys Trp 130 135 140 Val Pro Gln Gln Glu Val Leu Ala His Gly Ala Ile Gly Ala Phe Trp 145 150 155 160 Thr His Ser Gly Trp Asn Ser Thr Leu Glu Ser Val Cys Glu Gly Val 165 170 175 Pro Met Ile Phe Ser Asp Phe Gly Leu Asp Gln Pro Leu Asn Ala Arg 180 185 190 Tyr Met Ser Asp Val Leu Lys Val Gly Val Tyr Leu Glu Asn Gly Trp 195 200 205 Glu Arg Gly Glu Ile Ala Asn Ala Ile Arg Arg Val Met Val Asp Glu 210 215 220 Glu Gly Glu Tyr Ile Arg Gln Asn Ala Arg Val Leu Lys Gln Lys Ala 225 230 235 240 Asp Val Ser Leu Met Lys Gly Gly Ser Ser Tyr Glu Ser Leu Glu Ser 245 250 255 Leu Val Ser Tyr Ile Ser Ser Leu Glu Asn Lys Thr Glu Thr Thr Val 260 265 270 Arg Arg Arg Arg Arg Ile Ile Leu Phe Pro Val Pro Phe Gln Gly His 275 280 285 Ile Asn Pro Ile Leu Gln Leu Ala Asn Val Leu Tyr Ser Lys Gly Phe 290 295 300 Ser Ile Thr Ile Phe His Thr Asn Phe Asn Lys Pro Lys Thr Ser Asn 305 310 315 320 Tyr Pro His Phe Thr Phe Arg Phe Ile Leu Asp Asn Asp Pro Gln Asp 325 330 335 Glu Arg Ile Ser Asn Leu Pro Thr His Gly Pro Leu Ala Gly Met Arg 340 345 350 Ile Pro Ile Ile Asn Glu His Gly Ala Asp Glu Leu Arg Arg Glu Leu 355 360 365 Glu Leu Leu Met Leu Ala Ser Glu Glu Asp Glu Glu Val Ser Cys Leu 370 375 380 Ile Thr Asp Ala Leu Trp Tyr Phe Ala Gln Ser Val Ala Asp Ser Leu 385 390 395 400 Asn Leu Arg Arg Leu Val Leu Met Thr Ser Ser Leu Phe Asn Phe His 405 410 415 Ala His Val Ser Leu Pro Gln Phe Asp Glu Leu Gly Tyr Leu Asp Pro 420 425 430 Asp Asp Lys Thr Arg Leu Glu Glu Gln Ala Ser Gly Phe Pro Met Leu 435 440 445 Lys Val Lys Asp Ile Lys Ser Ala Tyr Ser 450 455 <210> 14 <211> 1377 <212> DNA <213> Artificial sequence <220> <223> CR1 <400> 14 atgaactggc aaatcgcgaa agaaatcctg ggtaaaatga tcaaacaaac caaagcgtcg 60 tcgggcgtta tctggaactc cttcaaagaa ctggaagaat cagaactgga aaccgttatt 120 cgcgaaatcc cggctccgtc gttcctgatt ccgctgccga aacatctgac cgcgagcagc 180 agcagcctgc tggatcacga ccgtacggtc tttcagtggc tggatcagca accgccgtca 240 tcggtgctgt atgtttcatt cggtagcacc tctgaagtcg atgaaaaaga ctttctggaa 300 atcgctcgcg gcctggtgga tagtaaacag tccttcctgt gggtggttcg tccgggtttt 360 gtgaaaggca gcacgtgggt tgaaccgctg ccggatggct tcctgggtga acgcggccgt 420 attgtcaaat gggtgccgca gcaagaagtg ctggcacatg gtgctatcgg cgcgttttgg 480 acccactctg gttggaacag tacgctggaa tccgtttgcg aaggtgtccc gatgattttc 540 agcgactttg gcctggacca gccgctgaat gcccgctata tgtctgatgt tctgaaagtc 600 ggtgtgtacc tggaaaacgg ttgggaacgt ggcgaaattg cgaatgccat ccgtcgcgtt 660 atggtcgatg aagaaggcga atacattcgc cagaacgctc gtgtcctgaa acaaaaagcg 720 gacgtgagcc tgatgaaagg cggtagctct tatgaatcac tggaatcgct ggttagctac 780 atcagttccc tggaaaataa aaccgaaacc acggtgcgtc gccgtcgccg tattatcctg 840 ttcccggttc cgtttcaggg tcatattaac ccgatcctgc aactggcgaa tgttctgtat 900 tcaaaaggct tttcgatcac catcttccat acgaacttca acaaaccgaa aaccagtaac 960 tacccgcact ttacgttccg ctttattctg gataacgacc cgcaggatga acgtatctcc 1020 aatctgccga cccacggccc gctggccggt atgcgcattc cgattatcaa tgaacacggt 1080 gcagatgaac tgcgccgtga actggaactg ctgatgctgg ccagtgaaga agatgaagaa 1140 gtgtcctgtc tgatcaccga cgcactgtgg tatttcgccc agagcgttgc agattctctg 1200 aacctgcgcc gtctggtcct gatgacgtca tcgctgttca attttcatgc gcacgtttct 1260 ctgccgcaat ttgatgaact gggctacctg gacccggatg acaaaacccg tctggaagaa 1320 caagccagtg gttttccgat gctgaaagtc aaagacatta aatccgccta ttcgtaa 1377

Claims (44)

  1. SEQ ID NO: 7의 아미노산 서열을 포함하는 돌연변이체 CP1 효소.
  2. SEQ ID NO: 7과 적어도 90% 동일성을 갖는 아미노산 서열을 포함하는 재조합 폴리펩타이드.
  3. SEQ ID NO: 8의 뉴클레오타이드 서열을 포함하는 핵산.
  4. SEQ ID NO: 8과 적어도 90% 동일성을 갖는 뉴클레오타이드 서열을 포함하는 핵산.
  5. SEQ ID NO: 9의 아미노산 서열을 포함하는 돌연변이체 CP1 효소.
  6. SEQ ID NO: 9와 적어도 90% 동일성을 갖는 아미노산 서열을 포함하는 재조합 폴리펩타이드.
  7. SEQ ID NO: 10의 뉴클레오타이드 서열을 포함하는 핵산.
  8. SEQ ID NO: 10과 적어도 90% 동일성을 갖는 뉴클레오타이드 서열을 포함하는 핵산.
  9. SEQ ID NO: 11의 아미노산 서열을 포함하는 돌연변이체 HV1 효소.
  10. SEQ ID NO: 11과 적어도 90% 동일성을 갖는 아미노산 서열을 포함하는 재조합 폴리펩타이드.
  11. SEQ ID NO: 12의 뉴클레오타이드 서열을 포함하는 핵산.
  12. SEQ ID NO: 12와 적어도 90% 동일성을 갖는 뉴클레오타이드 서열을 포함하는 핵산.
  13. SEQ ID NO: 7의 아미노산 서열을 갖는 Clm2 효소를 제조할 수 있는 벡터를 포함하는 숙주 세포.
  14. 제13항에 있어서, 박테리아, 효모, 필라멘트성 진균, 시아노박테리아 조류 및 식물 세포로 구성되는 군으로부터 선택되는 숙주 세포.
  15. 제13항에 있어서, 에스케리치아(Escherichia); 살모넬라(Salmonella); 바실러스(Bacillus); 아시네토박터(Acinetobacter); 스트렙토마이세스(Streptomyces); 코리네박테리움(Corynebacterium); 메틸로시누스(Methylosinus); 메틸로모나스(Methylomonas); 로도코쿠스(Rhodococcus); 슈도모나스(Pseudomonas); 로도박터(Rhodobacter); 시네코시스티스(Synechocystis); 사카로마이세스(Saccharomyces); 자이고사카로마이세스(Zygosaccharomyces); 클루이베로마이세스(Kluyveromyces); 칸디다(Candida); 한세눌라(Hansenula); 데바리오마이세스(Debaryomyces); 무코르(Mucor); 피치아(Pichia); 토룰롭시스(Torulopsis); 아스페르길루스(Aspergillus); 아르트로보틀리스(Arthrobotlys); 브레비박테리아(Brevibacteria); 마이크로박테리움(Microbacterium); 아르트로박터(Arthrobacter); 시트로박터(Citrobacter); 에스케리치아(Escherichia); 클렙시엘라(Klebsiella); 판토에아(Pantoea); 살모넬라 코리네박테리움(Salmonella Corynebacterium); 클로스트리디움(Clostridium); 및 클로스트리디움 아세토부틸리쿰(Clostridium acetobutylicum)으로 구성되는 군으로부터 선택되는 숙주 세포.
  16. 제13항에 있어서, 대두; 평지씨; 해바라기; 목화; 옥수수; 담배; 알팔파; 밀; 보리; 귀리; 수수; 쌀; 브로콜리; 콜리플라워; 양배추; 파스닙; 멜론; 당근; 셀러리; 파슬리; 토마토; 감자; 딸기; 땅콩; 포도; 풀씨 작물; 사탕무; 사탕 수수; 콩; 완두콩; 호밀; 아마; 경재 나무; 연재 나무; 사료용 풀; 아라비답시스 탈리아나(Arabidopsis thaliana); 쌀(오리재 사티바(Oryza sativa)); 호르데움 율가레(Hordeum yulgare); 스위치그래스(switchgrass; 파니쿰 비그라툼(Panicum vigratum)); 브라키포디움(Brachypodium) spp.; 브라시카(Brassica) spp.; 및 크람베 애비시니카(Crambe abyssinica)로 구성되는 군으로부터 선택되는 식물로부터 단리된 세포인 숙주 세포.
  17. 기질을 SEQ ID NO: 7과 적어도 80% 동일성을 갖는 아미노산 서열을 포함하는 재조합 폴리펩타이드와 인큐베이션하는 단계를 포함하는, 스테비올 글리코시드 조성물을 제조하는 방법.
  18. 제17항에 있어서, 재조합 폴리펩타이드가 SEQ ID NO: 7과 적어도 80% 동일성을 갖는 UDP-글리코실트랜스퍼라제인 방법.
  19. 제17항에 있어서, 기질이 스테비오시드 또는 레바우디오시드 E 및 이의 조합으로 구성되는 군으로부터 선택되는 방법.
  20. 제17항에 있어서, 방법에 의해 제조되는 스테비올 글리코시드 화합물이 레바우디오시드 D4여서 스테비올 글리코시드 조성물은 레바우디오시드 D4를 포함하는 방법.
  21. 제20항의 방법에 의해 제조되는 스테비올 글리코시드 조성물을 포함하는 감미제.
  22. 기질을 SEQ ID NO: 7과 적어도 90% 동일성을 갖는 아미노산 서열을 포함하는 재조합 폴리펩타이드와 인큐베이션하는 단계를 포함하는, 레바우디오시드 D4를 제조하는 방법.
  23. 제22항에 있어서, 기질이 Reb E, 스테비오시드 및 이의 조합으로 구성되는 군으로부터 선택되는 방법.
  24. 제23항에 있어서, 재조합 수크로스 합성효소를 기질 및 재조합 폴리펩타이드와 인큐베이션하는 단계를 추가로 포함하는 방법.
  25. 레바우디오시드 D4를 제조하기 충분한 시간 동안 반응 혼합물을 인큐베이션하는 단계, 여기서 글루코스가 레바우디오시드 E에 공유 커플링되어 레바우디오시드 D4를 제조하는 것을 포함하는,
    레바우디오시드 E로부터 레바우디오시드 D4를 합성하는 방법.
  26. 제25항에 있어서, 반응 혼합물에 수크로스 합성효소를 첨가하는 단계를 추가로 포함하는 방법.
  27. 제26항에 있어서, 수크로스 합성효소가 아라비답시스 수크로스 합성효소 1, 아라비답시스 수크로스 합성효소 3 및 비그나 라디에이트(Vigna radiate) 수크로스 합성효소로 구성되는 군으로부터 선택되는 방법.
  28. 제27항에 있어서, 수크로스 합성효소가 아라비답시스 탈리아나(Arabidopsis thaliana) 수크로스 합성효소 1인 방법.
  29. 레바우디오시드 E, 수크로스, 유리딘 디포스페이트(UDP) 및 유리딘 디포스페이트 글루코스(UDP-글루코스)로 구성되는 군으로부터 선택되는 기질, 및 Clm3을 포함하는 반응 혼합물을 제조하는 단계 및
    레바우디오시드 D4를 제조하기 충분한 시간 동안 반응 혼합물을 인큐베이션하는 단계
    를 포함하는, 레바우디오시드 E로부터 레바우디오시드 D4를 합성하는 방법으로서, 글루코스가 레바우디오시드 E에 공유 커플링되어 레바우디오시드 D4를 제조하는 방법.
  30. 제29항에 있어서, 반응 혼합물에 수크로스 합성효소를 첨가하는 단계를 추가로 포함하는 방법.
  31. 제30항에 있어서, 수크로스 합성효소가 아라비답시스 수크로스 합성효소 1, 아라비답시스 수크로스 합성효소 3 및 비그나 라디에이트(Vigna radiate) 수크로스 합성효소로 구성되는 군으로부터 선택되는 방법.
  32. 제31항에 있어서, 수크로스 합성효소가 아라비답시스 탈리아나(Arabidopsis thaliana) 수크로스 합성효소 1인 방법.
  33. 제29항에 있어서, 제조되는 상기 Reb D4가 70% 초과 순도인 방법.
  34. 제29항에 있어서, 반응 혼합물에 HV1 효소를 첨가하는 단계를 추가로 포함하는 방법.
  35. 제25항에 있어서, 반응 혼합물에 HV1 효소를 첨가하는 단계를 추가로 포함하는 방법.
  36. SEQ ID NO: 5를 포함하는 GXT6 효소.
  37. SEQ ID NO: 6의 뉴클레오타이드 서열을 포함하는 핵산.
  38. SEQ ID NO: 5와 적어도 90% 동일성을 갖는 아미노산 서열을 포함하는 재조합 폴리펩타이드.
  39. SEQ ID NO: 3을 포함하는 CP1 효소.
  40. SEQ ID NO: 4의 뉴클레오타이드 서열을 포함하는 핵산.
  41. SEQ ID NO: 9의 아미노산 서열을 갖는 Clm3 효소를 제조할 수 있는 벡터를 포함하는 숙주 세포.
  42. 제41항에 있어서, 박테리아, 효모, 필라멘트성 진균, 시아노박테리아 조류 및 식물 세포로 구성되는 군으로부터 선택되는 숙주 세포.
  43. 제41항에 있어서, 에스케리치아(Escherichia); 살모넬라(Salmonella); 바실러스(Bacillus); 아시네토박터(Acinetobacter); 스트렙토마이세스(Streptomyces); 코리네박테리움(Corynebacterium); 메틸로시누스(Methylosinus); 메틸로모나스(Methylomonas); 로도코쿠스(Rhodococcus); 슈도모나스(Pseudomonas); 로도박터(Rhodobacter); 시네코시스티스(Synechocystis); 사카로마이세스(Saccharomyces); 자이고사카로마이세스(Zygosaccharomyces); 클루이베로마이세스(Kluyveromyces); 칸디다(Candida); 한세눌라(Hansenula); 데바리오마이세스(Debaryomyces); 무코르(Mucor); 피치아(Pichia); 토룰롭시스(Torulopsis); 아스페르길루스(Aspergillus); 아르트로보틀리스(Arthrobotlys); 브레비박테리아(Brevibacteria); 마이크로박테리움(Microbacterium); 아르트로박터(Arthrobacter); 시트로박터(Citrobacter); 에스케리치아(Escherichia); 클렙시엘라(Klebsiella); 판토에아(Pantoea); 살모넬라 코리네박테리움(Salmonella Corynebacterium); 클로스트리디움(Clostridium); 및 클로스트리디움 아세토부틸리쿰(Clostridium acetobutylicum)으로 구성되는 군으로부터 선택되는 숙주 세포.
  44. 제41항에 있어서, 대두; 평지씨; 해바라기; 목화; 옥수수; 담배; 알팔파; 밀; 보리; 귀리; 수수; 쌀; 브로콜리; 콜리플라워; 양배추; 파스닙; 멜론; 당근; 셀러리; 파슬리; 토마토; 감자; 딸기; 땅콩; 포도; 풀씨 작물; 사탕무; 사탕 수수; 콩; 완두콩; 호밀; 아마; 경재 나무; 연재 나무; 사료용 풀; 아라비답시스 탈리아나(Arabidopsis thaliana); 쌀(오리재 사티바(Oryza sativa)); 호르데움 율가레(Hordeum yulgare); 스위치그래스(switchgrass; 파니쿰 비그라툼(Panicum vigratum)); 브라키포디움(Brachypodium) spp.; 브라시카(Brassica) spp.; 및 크람베 애비시니카(Crambe abyssinica)로 구성되는 군으로부터 선택되는 식물로부터 단리된 세포인 숙주 세포.
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